Intensive Care for Acute Liver Failure in Pediatric Practice (Review) ; Интенсивная терапия острой печеночной недостаточности в педиатрической практике (обзор)

Συγγραφείς: G. A. Avakyan, Yu. V. Bykov, A. N. Obedin, Г. А. Авакян, Ю. В. Быков, А. Н. Обедин

Πηγή: General Reanimatology; Том 21, № 2 (2025); 42-54 ; Общая реаниматология; Том 21, № 2 (2025); 42-54 ; 2411-7110 ; 1813-9779

Θεματικοί όροι: трансплантация печени, children and adolescents, hepatic encephalopathy, cerebral edema, extracorporeal methods, liver transplantation, дети и подростки, печеночная энцефалопатия, отек головного мозга, экстракорпоральные методы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2532/1931; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2532/1152; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2532/1153; https://www.reanimatology.com/rmt/article/downloadSuppFile/2532/1154; Bhatt H., Rao G. S. Management of acute liver failure: a pediatric perspective. Curr Pediatr Rep. 2018; 6 (3): 246–257. DOI:10.1007/s40124-018-0174-7. PMID: 32288972.; Mandato C., Vajro P. Pediatric acute liver failure. Pediatr Rep. 2023; 15 (3): 426–430. DOI:10.3390/pediatric15030039. PMID: 37489413.; Ming H., He Y., Xu H. M. Advancements in the diagnosis and treatment of pediatric acute liver failure. (Chinese). Zhongguo Dang Dai Er Ke Za Zhi. 2024; 26 (2): 194–200. DOI:10.7499/j.issn.1008-8830.2309015. PMID: 38436319.; Deep A., Tissieres P. Editorial: Acute liver failure in children. Front Pediatr. 2024: 12: 1402119. DOI:10.3389/fped.2024.1402119. PMID: 38633329.; Jagadisan B., Dhawan A. Letter to the Editor: Pediatric acute liver failure management-view from the other side of the pond. Liver Transpl. 2023; 29 (6): E9-E10. DOI:10.1097/LVT.0000000000000101. PMID: 36789651.; Mishra S., Pallavi P. Diagnosis and management of pediatric acute liver failure: ESPGHAN and NASPGHAN 2022. Indian Pediatr. 2022; 59 (4): 307–311. PMID: 35410966.; Coilly A., Samuel D. Paediatric acute liver failure: confirm the outbreak, find the cause and explore the mechanisms. United European Gastroenterol J. 2022; 10 (8): 789–790. DOI:10.1002/ueg2.12306. PMID: 36094884.; Hegarty R., Thompson R. J. Genetic aetiologies of acute liver failure. J Inherit Metab Dis. 2024; 47 (4): 582–597. DOI:10.1002/jimd.12733. PMID: 38499319.; Putra J., Ng V. L., Perez-Atayde A. R. Pediatric acute liver failure: a clinicopathological Pperspective. Pediatr Dev Pathol. 2022; 25 (4): 361–379. DOI:10.1177/10935266211067893. PMID: 35356839.; Deep A., Alexander E. C., Bulut Y., Fitzpatrick E., Grazioli S., Heaton N., Dhawan A. Advances in medical management of acute liver failure in children: promoting native liver survival. Lancet Child Adolesc Health. 2022; 6 (10): 725–737. DOI:10.1016/S2352-4642(22)00190-0. PMID: 35931098; Kim W. R., Lake J. R., Smith J. M. OPTN/SRTR 2017 annual data report: liver. Am J Transplant. 2019; 19 (Suppl 2): 184–283. DOI:10.1111/ajt.15276. PMID: 30811890.; Kwong A. J., Ebel N. H., Kim W. R., Lake J. R., Smith J. M., Schladt D. P., Skeans M., et al. OPTN/SRTR 2020 annual data report: liver. Am J Transplant. 2022; 22: 204–309. DOI:10.1111/ajt.16978. PMID: 35266621.; Kaya S., Ekşi Bozbulut N. Therapeutic plasma exchange in children with acute and acuteon-chronic liver failure: a single-center experience. Exp Clin Transplant. 2024; 22 (Suppl 1): 88–95. DOI:10.6002/ect.MESOT2023.O12. PMID: 38385381.; de Kleine R. H., Lexmond W. S., Buescher G., Sturm E., Kelly D., Lohse A. W., Lenz D., et al. Severe acute hepatitis and acute liver failure of unknown origin in children: a questionnaire-based study within 34 paediatric liver centres in 22 European countries and Israel, April 2022. Euro Surveill. 2022; 272200369. DOI:10.2807/1560-7917.ES.2022.27.19.2200369. PMID: 35551705.; Kaliciński P., Grenda R., Szymczak M., Pietraszek P., Pawłowska J. Multidisciplinary management of children with acute liver failure — Report on 104 children treated in single center. Pediatr Transplant. 2024; 28 (1): e14654. DOI:10.1111/petr.14654. PMID: 37983943.; Taylor S. A., Whitington P. F. Neonatal acute liver failure. Liver Transpl. 2016; 22 (5): 677–85. DOI:10.1002/lt.24433. PMID: 26946058.; Mann J. P., Lenz D., Stamataki Z., Kelly D. Common mechanisms in pediatric acute liver failure. Trends Mol Med. 2023; 29 (3): 228–240. DOI:10.1016/j.molmed.2022.11.006. PMID: 36496278.; Amatya P., Kapalavai S. K., Deep A., Sankaranarayanan S., Krupanandan R., Sadasivam K., Ramachandran B. Pediatric acute liver failure: sn experience of a pediatric intensive care unit from resource limited settings. Front Pediatr. 2022; 10: 956699. DOI:10.3389/fped.2022.956699. PMID: 36120651.; Силивончик Н. Н., Гавриленко Д. И. «Острая-на-хроническую» печеночная недостаточность. Гепатология и гастроэнтерология. 2018; 2 (2): 154–159. Silivonchik N. N., Gavrilenko D. I. «Acute-to-chronic» liver failure. Hepatology and Gastroenterology = Gepatologija i Gastrojenterologija. 2018; 2 (2): 154–159. (in Russ.); Kramarov S., Yevtushenko V., Seriakova I., Voronov O., Kyrytsia N., Zakordonets L. V., Shadrin V., et al. A case report of acute liver failure in a child with hepatitis a virus and Epstein-Barr virus coinfection on the background of autoimmune sclerosing cholangitis. Int Med Case Rep J. 2024: 17: 801–807. DOI:10.2147/IMCRJ.S477802. PMID: 39355258.; Mieli-Vergani G., Vergani D., Czaja A. J., Manns M. P., Krawitt E. L., Vierling J. M., Lohse A. W., Montano-Loza A. J., et al. Autoimmune hepatitis. Nat. Rev. Dis. Primers. 2018; 4: 18017. DOI:10.1038/nrdp.2018.17. PMID: 29644994.; Samanta A., Poddar U. Pediatric acute liver failure: current perspective in etiology and management. Indian J Gastroenterol. 2024; 43 (2): 349–360. DOI:10.1007/s12664-024-01520-6. PMID: 38466551.; Lenz D., Jørgensen M. H., Kelly D., Cardinale V., Geerts A., Costa I. G., Fichtner A., et al. Etiology and outcome of adult and pediatric acute liver failure in Europe. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2023; 77: 115–120. DOI:10.1097/MPG.0000000000003777. PMID: 36930963.; Di Giorgio A., Gamba S., Sansotta N., Nicastro E., Colledan M., D’antiga L. Identifying the aetiology of acute liver failure is crucial to impact positively on outcome. Children. 2023; 10: 733. DOI:10.3390/children10040733. PMID: 37189982.; Бакулин И. Г., Абациева М. П., Белоусова Л. Н., Медведев Ю. В., Немцова Е. Г. Острая печеночная недостаточность — диагностические и прогностические проблемы. Фарматека. 2018; 9: 23–29.; Alonso E. M., Horslen S. P., Behrens E. M., Doo E. Pediatric acute liver failure of undetermined cause: a research work-shop. Hepatology. 2017; 65: 1026–1037. DOI:10.1002/hep.28944. PMID: 27862115.; Schwabe R. F., Luedde T. Apoptosis and necroptosis in the liver: a matter of life and death. Nat Rev Gastroenterol. Hepatol. 2018; 15: 738–752. DOI:10.1038/s41575-018-0065-y. PMID: 30250076.; Rao J., Zhang C., Wang P., Lu L., Qian X., Qin J., Pan X., et al. C/EBP homologous protein (CHOP) contributes to hepatocyte death via the promotion of ERO1α signalling in acute liver failure. Biochem J. 2015; 466: 369–378. DOI:10.1042/BJ20140412. PMID: 25387528.; Larsen F. S. Low-volume plasma exchange to treat children with acute liver failure. J Clin Exp Hepatol. 2023; 13 (2): 191–192. DOI:10.1016/j.jceh.2023.01.015. PMID: 36950484.; Paine C., Pichler R. How we treat hyperammonemia in acute liver failure. Clin J Am Soc Nephrol. 2024; 19 (2): 254–256. DOI:10.2215/CJN.0000000000000350. PMID: 37847521.; Bernal W., Wendon J. Acute liver failure. N Engl J Med. 2013; 369: 2525–2534. DOI:10.1056/NEJMra1208937. PMID: 24369077.; Интенсивная терапия острой печёночной недостаточности у детей и подростков: учеб. пособие. Быков Ю. В., Обедин А. Н., Волков Е. В., Зинченко О. В., Яцук И. В., Муравьёва А. А., Фишер В. В. и др. Ставрополь: Изд-во СтГМУ; 2024: 76.; Shanmugam N. P., Bansal S., Greenough A., Verma A., Dhawan A. Neonatal liver failure: aetiologies and management. State of the art. Eur J Pediatr. 2011; 170 (5): 573–581. DOI:10.1007/s00431-010-1309-1. PMID: 20886352.; Лебединский К. М. Острая печеночноклеточная недостаточность: патогенез и возможности коррекции. Практическая онкология. 2024; 25 (2): 102–110. DOI:10.31917/2502102.; Sabapathy D. G., Desai M. S. Acute liver failure in children. Pediatr Clin North Am. 2022; 69 (3): 465–495. DOI:10.1016/j.pcl.2022.02.003. PMID: 35667757.; Shah N. J., Royer A., John S. Acute liver failure. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2025. PMID: 29493996.; Abimannane A., Deepthi B., Bhowmick R., Parameswaran N. Clinical profile and outcomes of children with acute liver failure in a tertiary care center in South India: a retrospective study. Pediatr Gastroenterol Hepatol Nutr. 2024; 27 (1): 43–52. DOI:10.5223/pghn.2024.27.1.43. PMID: 38249636.; Lutfi R., Abulebda K., Nitu M. E., Molleston J. P., Bozic M. A., Subbarao G. Intensive care management of pediatric acute liver failure. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2017; 64 (5): 660–670. DOI:10.1097/MPG.0000000000001441. PMID: 27741059.; Kundan M., Gupta T., Sandeep G. Acute liver failure. Journal of Pediatric Critical Care. 2019; 6 (5): 67–74. DOI:10.21304/2019.0605.00535.; Bhatia V., Lodha R. Intensive care management of children with acute liver failure. Indian J Pediatr. 2010; 77 (11): 1288–1295. DOI:10.1007/s12098-010-0167-1. PMID: 20799075.; Lal B. B., Khanna R., Sood V., Alam S., Nagral A., Ravindranath A., Kumar A., et al. Diagnosis and management of pediatric acute liver failure: consensus recommendations of the Indian Society of Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition (ISPGHAN). Hepatol Int. 2024; 18 (5): 1343–1381. DOI:10.1007/s12072-024-10720-3. PMID: 39212863.; Лукашик С. П., Карпов И. А. Острая печеночная недостаточность у взрослых. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019; 21 (1): 46–55.; Mekeirele M. M. M., Wilmer A. Fluid Management in Liver Failure. In: Rational use of intravenous fluids in critically ill patients. 2023: 411–425. SpringerLink. DOI:10.1007/978-3-031-42205-8_21.; Squires J. E., Alonso E. M., Ibrahim S. H., Kasper V., Kehar M., Martinez M., Squires R. H. North American Society for Pediatric Gastroenterology, Hepatology, and Nutrition Position Paper on the diagnosis and management of pediatric acute liver failure. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2022; 74 (1): 138–158. DOI:10.1097/MPG.0000000000003268. PMID: 34347674.; Yang X., Liu X., Wang L., Xu J., Wen J. Hypoglycemia on admission in patients with acute on chronic liver failure: a retrospective cohort analyzing the current situation, risk factors, and associations with prognosis. Ann Palliat Med. 2023; 12 (1): 163–170. DOI:10.21037/apm-22-1422. PMID: 36747390.; Zou Y. G., Wang H., Li W. W., Dai D. L. Challenges in pediatric inherited/metabolic liver disease: focus on the disease spectrum, diagnosis and management of relatively common disorders. World J Gastroenterol. 2023; 29 (14): 2114–2126. DOI:10.3748/wjg.v29.i14.2114. PMID: 37122598.; Zechner C., Adams-Huet B., Gregory B., Neyra J. A., Rule J. A., Li X., Rakela J., et al. Hypophosphatemia in acute liver failure of a broad range of etiologies is associated with phosphaturia without kidney damage or phosphatonin elevation. Transl Res. 2021: 238: 1–11. DOI:10.1016/j.trsl.2021.07.003. PMID: 34298149.; Abenavoli L., Maurizi V., Boccuto L., Di Berardino A., Giostra N., Santori P., Scarcella M. L., et al. Nutritional support in acute liver failure. Diseases. 2022; 10 (4): 108. DOI:10.3390/diseases10040108. PMID: 36412602.; Hasse J. M., DiCecco S. R. Enteral nutrition in chronic liver disease: translating evidence into practice. Nutr Clin Pract. 2015; 30: 474–87. DOI:10.1177/0884533615591058. PMID: 26113562.; Stravitz R. T., Fontana R. J., Karvellas C., Durkalski V., McGuire B., Rule J. A., Tujios S., et al. Future directions in acute liver failure. Hepatology. 2023; 78 (4): 1266–1289. DOI:10.1097/HEP.0000000000000458. PMID: 37183883.; Стец В. В., Половников С. Г., Журавлев А. Г., Шестопалов А. Е. Нутритивно-метаболическая коррекция в интенсивной терапии перитонита. Раны и раневые инфекции. Журнал имени проф. Б. М. Костюченка. 2016; 3 (1): 25–31.; Karvellas C. J., Cavazos J., Battenhouse H., Durkalski V., Balko J., Sanders C., Leeet W. M., et al. Effects of antimicrobial prophylaxis and blood stream infections in patients with acute liver failure: a retrospective cohort study. Clin Gastroenterol Hepatol. 2014; 12 (11): 1942–9.e1. DOI:10.1016/j.cgh.2014.03.011. PMID: 24674942.; Dong Y., Sun D., Wang Y., Du Q., Zhang Y., Han R., Teng M., et al. Evaluation of the current guidelines for antibacterial therapy strategies in patients with cirrhosis or liver failure. BMC Infect Dis. 2022; 22 (1): 23. DOI:10.1186/s12879-021-07018-2. PMID: 34983426.; Liu C. C., Chen I. W., Liu P. H., Wu J. Y., Liu T. H., Huang P. Y., Yu C. H., et al. Efficacy of propofol-based anesthesia against risk of brain swelling during craniotomy: a meta-analysis of randomized controlled studies. J Clin Anesth. 2024: 92: 111306. DOI:10.1016/j.jclinane.2023.111306.; Shalimar S., Acharya S. K. Management in acute liver failure. J Clin Exp Hepatol. 2014; 5 (1): 104–115. DOI:10.1016/j.jceh.2014.11.005. PMID: 26041950.; Заболотских И. Б., Громова Е. Г., Кузовлев А. Н., Лебединский К. М., Лубнин А. Ю., Осовских В. В., Синьков С. В. с соавт. Периоперационное ведение взрослых пациентов с сопутствующими заболеваниями печени. Методические рекомендации. Анестезиология и реаниматология. 2022; 3: 5–24. DOI:10.17116/anaesthesiology20220315.; Lee W. M., Stravitz T. R., Fontana R. J. Safety and tolerability of Ornithine Phenylacetate to lower ammonia in Acute Liver Failure: Preliminary report of the STOP-ALF Trial. Hepatology. 2015; 62 (suppl): 319A.; Бойко А. В., Лукашевич Н. В. Механизмы развития и медикаментозная терапия отека головного мозга при спонтанном внутримозговом кровоизлиянии. Медицинские новости. 2022; (7): 42–45.; Диабетический кетоацидоз в педиатрической практике: учеб. пособие. Быков Ю. В., Обедин А. Н., Волков Е. В., Зинченко О. В., Яцук И. В., Муравьёва А. А., Фишер В. В. Ставрополь: Изд-во СтГМУ, 2023: 60.; Mason A., Malik A., Ginglen J. G. Hypertonic fluids. In: Stat-Pearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2023. PMID: 31194351.; Webster D. L., Fei L., Falcone R. A., Kaplan J. M. Higher-volume hypertonic saline and increased thrombotic risk in pediatric traumatic brain injury. J Crit Care. 2015; 30: 1267–1271. DOI:10.1016/j.jcrc.2015.07.022. PMID: 26307005.; Tujios S., Stravitz R. T., Lee W. M. Management of acute liver failure: update 2022. Semin Liver Dis. 2022; 42 (3): 362–378. DOI:10.1055/s-0042-1755274. PMID: 36001996.; Kochanek P. M., Carney N., Adelson P. D., Ashwal S., Bell M. J., Bratton S., Carson S., et al. Guidelines for the acute medical management of severe traumatic brain injury in infants, children, and adolescents–second edition. Pediatr Crit Care Med. 2012; 13 (suppl 1): S1–82. DOI:10.1097/PCC.0b013e31823f435c. PMID: 22217782.; Burton L., Bhargava V., Kong M. Point-of-care ultrasound in the pediatric intensive care unit. Front Pediatr. 2022: 9: 830160. DOI:10.3389/fped.2021.830160. PMID: 35178366.; Fernández J., Bassegoda O., Toapanta D., Bernal W. Acute liver failure: a practical update. JHEP Rep. 2024; 6 (9): 101131. DOI:10.1016/j.jhepr.2024.101131. PMID: 39170946.; Leventhal T. M., Liu K. D. What a nephrologist needs to know about acute liver failure. Adv Chronic Kidney Dis. 2015; 22 (5): 376–381. DOI:10.1053/j.ackd.2015.06.006. PMID: 26311599.; Cardoso F. S., Gottfried M., Tujios S., Olson J. C., Karvellas C. J. Continuous renal replacement therapy is associated with reduced serum ammonia levels and mortality in acute liver failure. Hepatology. 2018; 67 (2): 711–720. DOI:10.1002/hep.29488. PMID: 28859230.; Jalanko H., Pakarinen M. Combined liver and kidney transplantation in children. Pediatr Nephrol (Berlin, Germany). 2014; 29 (5): 805–814. DOI:10.1007/s00467-013-2487-7. PMID: 23644898.; Nadim M. K., Sung R. S., Davis C. L., Andreoni K. A., Biggins S. W., Danovitch G. M., Feng S., et al. Simultaneous liver-kidney transplantation summit: current state and future directions. Am J Transplant. 2012; 12 (11): 2901–2908. DOI:10.1111/j.1600-6143.2012.04190.x. PMID: 22822723.; Ankawi G., Neri M., Zhang J., Breglia A., Ricci Z., Ronco C. Extracorporeal techniques for the treatment of critically ill patients with sepsis beyond conventional blood purification therapy: the promises and the pitfalls. Crit Care. 2018; 22: 262. DOI:10.1186/s13054-018-2181-z. PMID: 30360755.; Vo L. T., Do V. C., Trinh T. H., Vu T., Nguyen T. T. Combined therapeutic plasma exchange and continuous renal replacement therapy in children with Dengue-associated acute liver failure and shock syndrome: single-center cohort from Vietnam. Pediatr Crit Care Med. 2023; 24 (10): 818–828. DOI:10.1097/PCC.0000000000003304. PMID: 37310173.; Кабанов М. Ю., Семенцов К. В., Бояринов Д. Ю., Мянзелин М. Н., Беликова М. Я., Алексеев В. В. Трудности оценки тяжести дисфункции печени при механической желтухе. Анналы хирургической гепатологии. 2021; 26 (2): 129–136. DOI:10.16931/1995-5464.2021-2-129-136.; Kim A., Niu B., Woreta T., Chen P. H. Clinical considerations of coagulopathy in acute liver failure. J Clin Transl Hepatol. 2020; 8 (4): 407–413. DOI:10.14218/JCTH.2020.00058. PMID: 33447524.; European Association for the Study of the Liver. EASL Clinical Practical Guidelines on the management of acute (fulminant) liver failure. J Hepatol. 2017; 66 (5): 1047–1081. DOI:10.1016/j.jhep.2016.12.003. PMID: 28417882.; Заболотских И. Б., Проценко Д. Н. (ред.). Интенсивная терапия: национальное руководство: в 2-х томах Т. II. 2-е издание, переработанное и дополненное М.: ГЭОТАР-Медиа; 2020: 1072. ISBN 978-5-9704-5018-5.; Pan J. J., Fontana R. J. CAQ Corner: acute liver failure management and liver transplantation. Liver Transpl. 2022; 28 (10): 1664–1673. DOI:10.1002/lt.26503. PMID: 35574981.; Agarwal B., Wright G., Gatt A., Riddell A., Vemala V., Mallett S., Chowdary P., et al. Evaluation of coagulation abnormalities in acute liver failure. J Hepatol. 2012; 57 (4): 780–786. DOI:10.1016/j.jhep.2012.06.020. PMID: 22735303.; Zoica B. S., Deep A. Extracorporeal renal and liver support in pediatric acute liver failure. Pediatr Nephrol. 2021; 36: 1119–1128. DOI:10.1007/s00467-020-04613-4. PMID: 32500250.; Jain V., Dhawan A. Extracorporeal liver support systems in paediatric liver failure. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2017; 64: 855–863. DOI:10.1097/MPG.0000000000001500. PMID: 28248208.; Ибадов Р. А., Исмаилов Е. Л., Ибрагимов С. Х. Применение экстракорпоральных систем протезирования функций печени при острой декомпенсированной печеночной недостаточности. Общая реаниматология. 2021; 17 (4): 12–21. DOI: 15360/1813-9779-2021-4-12-21.; Кутепов Д. Е., Пасечник И. Н., Сальников П. С. Возможности экстракорпоральных методов лечения печеночной недостаточности. Хирургия. Журнал им. Н. И. Пирогова. 2014; 2: 55–58.; Arikan A. A., Srivaths P., Himes R. W., Pekkucuksen N. T., Lam F., Nguyen N., Miloh T., et al. Hybrid extracorporeal therapies as a bridge to pediatric liver transplantation. Pediatr Crit Care Med. 2018; 19: e342–9. DOI:10.1097/PCC.0000000000001546. PMID: 29652753.; Larsen F. S., Schmidt L. E., Bernsmeier C. High-volume plasma exchange in patients with acute liver failure: an open randomised controlled trial. J Hepatol. 2016; 64: 69–78. DOI:10.1016/j.jhep.2015.08.018. PMID: 26325537.; Hanish S. I., Stein D. M., Scalea J. R., Essien E. O., Thurman P., Hutson W. R., Bartlett S. T., et al. Molecular adsorbent recirculating system effectively replaces hepatic function in severe acute liver failure. Ann Surg. 2017; 266: 677–684. DOI:10.1097/SLA.0000000000002361. PMID: 28692474.; Lexmond W. S., Van Dael C. M., Scheenstra R., Goorhuis J. F., Sieders E., Verkade H. J., Van Rheenen P. F., et al. Experience with molecular adsorbent recirculating system treatment in 20 children listed for high-urgency liver transplantation. Liver Transpl. 2015; 21: 369–80. DOI:10.1002/lt.24037. PMID: 25366362.; Alnagar A. M., Hakeem A. R., Daradka K., Kyrana E., Methga M., Palaniswamy K., Rajwal S., et al. Long-term out-comes of pediatric liver transplantation in acute liver failure vs end-stage chronic liver disease: a retrospective observational study. World J Transplant. 2023; 13 (3): 96–106. DOI:10.5500/wjt.v13.i3.96. PMID: 36968135.; Венцловайте Н. Д., Ефремова Н. А., Горячева Л. Г., Герасимова О. А. Трансплантация печени у детей: опыт последних десятилетий, актуальные проблемы и пути их решения. Детские инфекции. 2020; 19 (2): 52–57. DOI:10.22627/2072-8107-2020-19-2-52-57.; Bartlett J. M., Yanni G., Kwon Y., Emamaullee J. Pediatric acute liver failure: reexamining key clinical features, current management, and research prospects. Liver Transpl. 2022; 28 (11): 1776–1784. DOI:10.1002/lt.26500. PMID: 35557028.; Kim W. R., Lake J. R., Smith J. M., Skeans M. A., Schladt D. P., Edwards E. B., Harper A. M., et al. OPTN/SRTR 2015 Annual Data Report: liver. Am J Transplant. 2017; 17: 174–251. DOI:10.1111/ajt.14126. PMID: 28052604.; Nulty J., Anand H., Dhawan A. Human hepatocyte transplantation: three decades of clinical experience and future perspective. Stem Cells Transl Med. 2024; 13 (3): 204–218. DOI:10.1093/stcltm/szad084. PMID: 38103170.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2532

Διαθεσιμότητα: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2532
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2025-2-2532

THE ROLE OF NEUTROPHIL EXTRACELLULAR TRAPS IN THE DEVELOPMENT OF PATHOLOGICAL CONDITIONS IN CARDIAC SURGERY PATIENTS: DIAGNOSTIC AND CORRECTION METHODS ; РОЛЬ НЕЙТРОФИЛЬНЫХ ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ЛОВУШЕК В РАЗВИТИИ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ СОСТОЯНИЙ У КАРДИОХИРУРГИЧЕСКИХ БОЛЬНЫХ: МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ И КОРРЕКЦИИ

Συγγραφείς: Dmitry L. Shukevich, Timofey A. Baev, Vladislav A. Babkov, Дмитрий Леонидович Шукевич, Тимофей Александрович Баев, Владислав Анатольевич Бабков

Συνεισφορές: Авторы заявляют об отсутствии финансирования исследования.

Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 4S (2024); 230-240 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 4S (2024); 230-240 ; 2587-9537 ; 2306-1278

Θεματικοί όροι: Экстракорпоральные методы терапии, Neutrophil extracellular traps, Critical condition, Cardiac surgery, Cardiovascular diseases, Extracorporeal therapies, Внеклеточные нейтрофильные ловушки, Критические состояния, Кардиохирургия, Сердечно-сосудистые заболевания

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1557/988; Liew P.X., Kubes P. The Neutrophil's Role During Health and Disease. Physiol Rev. 2019;99(2):1223-1248. doi:10.1152/physrev.00012.2018.; Mantovani A., Cassatella M.A., Costantini C., Jaillon S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat Rev Immunol. 2011;11(8):519-31. doi:10.1038/nri3024.; Ярилин, А. А. Иммунология. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2010. 752 с.; Chu H. T., Lin H., Tsao T. T., Chang C. F., Hsiao W. W., Yeh T. J., Chang C. M., Liu Y. W., Wang T. Y., Yang K. C., Chen T. J., Chen J. C., Chen K. C., Kao C. Y. Genotyping of human neutrophil antigens (HNA) from whole genome sequencing data. BMC Med Genomics. 2013;6:31. doi:10.1186/1755-8794-6-31.; Mescher A.L. Junqueira's Basic Histology. Publisher: McGraw-Hill Medical, 2016.; Takei H., Araki A., Watanabe H., Ichinose A., Sendo F. Rapid killing of human neutrophils by the potent activator phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) accompanied by changes different from typical apoptosis or necrosis. J Leukoc Biol. 1996;59(2):229-40. doi:10.1002/jlb.59.2.229.; Долгушин И.И., Aндреева Ю.С., Савочкина A.Ю. Нейтрофильные внеклеточные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. Москва : Изд-во РAМН, 2009. 203с.; Hoyer F.F., Nahrendorf M. Neutrophil contributions to ischaemic heart disease. Eur Heart J. 2017 Feb 14;38(7):465-472. doi:10.1093/eurheartj/ehx017.; Fuchs T.A., Abed U., Goosmann C., Hurwitz R., Schulze I., Wahn V., Weinrauch Y., Brinkmann V., Zychlinsky A. Novel cell death program leads to neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2007;176(2):231-41. doi:10.1083/jcb.200606027.; Sherer Y., Gorstein A., Fritzler M.J., Shoenfeld Y. Autoantibody explosion in systemic lupus erythematosus: more than 100 different antibodies found in SLE patients. Semin Arthritis Rheum. 2004;34(2):501-37. doi:10.1016/j.semarthrit.2004.07.002.; Zhu Y., Xia X., He Q., Xiao Q.A., Wang D., Huang M., Zhang X. Diabetes-associated neutrophil NETosis: pathogenesis and interventional target of diabetic complications. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14:1202463. doi:10.3389/fendo.2023.1202463.; Pieterse E, Rother N, Yanginlar C, Gerretsen J, Boeltz S, Munoz LE, Herrmann M, Pickkers P, Hilbrands LB, van der Vlag J. Cleaved N-terminal histone tails distinguish between NADPH oxidase (NOX)-dependent and NOX-independent pathways of neutrophil extracellular trap formation. Ann Rheum Dis. 2018;77(12):1790-1798. doi:10.1136/annrheumdis-2018-213223.; Villanueva E., Yalavarthi S., Berthier C.C., Hodgin J.B., Khandpur R., Lin A.M., Rubin C.J., Zhao W., Olsen S.H., Klinker M. et al. Netting neutrophils induce endothelial damage, infiltrate tissues, and expose immunostimulatory molecules in systemic lupus erythematosus. J Immunol. 2011;187(1):538–552. doi:10.4049/jimmunol.1100450.; Здравоохранение в России. 2023. М.:Стат.сб./Росстат, 2023. 179 с.; Bahit M. C., Kochar A., Granger C. B. Post-myocardial infarction heart failure. JACC. Heart Failure. 2018;6(3):179–186. doi:10.1016/j.jchf.2017.09.015; Packer M., Lam C. S. P., Lund L. H., Redfield M. M. Interdependence of atrial fibrillation and heart failure with a preserved ejection fraction reflects a common underlying atrial and ventricular myopathy. Circulation. 2020;141(1):4–6. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.119.042996; Bonaventura A., Vecchié A., Abbate A., Montecucco F. Neutrophil extracellular traps and cardiovascular diseases: an update. Cells. 2020;9:231. doi:10.3390/cells9010231; Chen T., Li Y., Sun R., Hu H., Liu Y., Herrmann M., Zhao Y., Muñoz L.E. Receptor-Mediated NETosis on Neutrophils. Front Immunol. 2021;12:775267. doi:10.3389/fimmu.2021.775267.; Bonaventura A., Liberale L., Carbone F., Vecchie A., Diaz-Canestro C., Camici G.G., Montecucco F., Dallegri F. The pathophysiological role of neutrophil extracellular traps in inflammatory diseases. Thromb Haemost. 2018 Jan;118(1):6-27. doi:10.1160/TH17-09-0630.; Su F., Moreau A., Savi M., Salvagno M., Annoni F., Zhao L., Xie K., Vincent J.L., Taccone F.S. Circulating Nucleosomes as a Novel Biomarker for Sepsis: A Scoping Review. Biomedicines. 2024;12(7):1385. doi:10.3390/biomedicines12071385.; James P., Kaushal D., Beaumont Wilson R. NETosis in Surgery: Pathophysiology, Prevention, and Treatment. Ann Surg. 2024;279(5):765-780. doi:10.1097/SLA.0000000000006196.; Yang K., Gao R., Chen H., Hu J., Zhang P., Wei X., Shi J., Chen Y., Zhang L., Chen J. et al. Myocardial reperfusion injury exacerbation due to ALDH2 deficiency is mediated by neutrophil extracellular traps and prevented by leukotriene C4 inhibition. Eur Heart J. 2024;45(18):1662-1680. doi:10.1093/eurheartj/ehae205.; Nunez J.H., Juan C., Sun Y., Hong J., Bancroft A.C., Hwang C., Medrano J.M., Huber A.K., Tower R.J., Levi B. Neutrophil and NETosis Modulation in Traumatic Heterotopic Ossification. Ann Surg. 2023;278(6):e1289-e1298. doi:10.1097/SLA.0000000000005940.; Li R.H., Tablin F. A comparative review of neutrophil extracellular traps in sepsis. Front Vet Sci. 2018; 5:291. doi:10.3389/fvets.2018.00291.; Abrams S.T., Zhang N., Manson J., Liu T., Dart C., Baluwa F., Wang S.S., Brohi K., Kipar A., Yu W. Circulating histones are mediators of trauma-associated lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2013;187(2):160–169. doi:10.1164/rccm.201206-1037OC.; Аверина Т.Б. Искусственное кровообращение. Анналы хирургии. 2013; 2:5-12.; Maisat W., Hou L., Sandhu S., Sin Y.C., Kim S., Pelt H.V., Chen Y., Emani S., Kong S.W., Emani S., Ibla J., Yuki K. Neutrophil extracellular traps formation is associated with postoperative complications in neonates and infants undergoing congenital cardiac surgery. bioRxiv [Preprint]. 2023:2023.12.21.572768. doi:10.1101/2023.12.21.572768.; Salazar-Gonzalez H., Zepeda-Hernandez A., Melo Z., Saavedra-Mayorga D.E., Echavarria R. Neutrophil Extracellular Traps in the Establishment and Progression of Renal Diseases. Medicina (Kaunas). 2019;55(8):431. doi:10.3390/medicina55080431.; Ham A., Rabadi M., Kim M., Brown K.M., Ma Z., D'Agati V., Lee H.T. Peptidyl arginine deiminase-4 activation exacerbates kidney ischemia-reperfusion injury. Am J Physiol Renal Physiol. 2014;307(9):F1052-62. doi:10.1152/ajprenal.00243.2014.; Raup-Konsavage W.M., Wang Y., Wang W.W., Feliers D., Ruan H., Reeves W.B. Neutrophil peptidyl arginine deiminase-4 has a pivotal role in ischemia/reperfusion-induced acute kidney injury. Kidney Int. 2018;93(2):365-374. doi:10.1016/j.kint.2017.08.014.; Nakazawa D., Kumar S.V., Marschner J., Desai J., Holderied A., Rath L., Kraft F., Lei Y., Fukasawa Y., Moeckel G.W., Angelotti M.L., Liapis H., Anders H.J. Histones and Neutrophil Extracellular Traps Enhance Tubular Necrosis and Remote Organ Injury in Ischemic AKI. J Am Soc Nephrol. 2017;28(6):1753-1768. doi:10.1681/ASN.2016080925.; Stapels D.A., Geisbrecht B.V., Rooijakkers S.H. Neutrophil serine proteases in antibacterial defense. Curr Opin Microbiol. 2015;23:42-8. doi:10.1016/j.mib.2014.11.002.; Urban CF, Ermert D, Schmid M, Abu-Abed U, Goosmann C, Nacken W, et al. Neutrophil extracellular traps contain calprotectin, a cytosolic protein complex involved in host defense against candida albicans. PloS Pathog (2009) 5:e1000639. doi:10.1371/journal.ppat.1000639; Carden D, Xiao F, Moak C, Willis BH, Robinson-Jackson S, Alexander S. Neutrophil elastase promotes lung microvascular injury and proteolysis of endothelial cadherins. Am J Physiology-Heart Circulatory Physiol (1998) 275:H385–92. doi:10.1152/ajpheart.1998.275.2.H385; Suzuki K., Okada H., Takemura G., Takada C., Kuroda A., Yano H., Zaikokuji R., Morishita K., Tomita H., Oda K., et al. Neutrophil elastase damages the pulmonary endothelial glycocalyx in lipopolysaccharide-induced experimental endotoxemia. Am J Pathol. 2019;189(8):1526–35. doi:10.1016/j.ajpath.2019.05.002; Martinod K., Witsch T., Farley K., Gallant M., Remold-O’Donnell E., Wagner D.D. Neutrophil elastase-deficient mice form neutrophil extracellular traps in an experimental model of deep vein thrombosis. J Thromb Haemostasis.(2016;14(3):551–8. doi:10.1111/jth.13239; Ebrahimi F., Giaglis S., Hahn S., Blum C.A., Baumgartner C., Kutz A., van Breda S.V., Mueller B., Schuetz P., Christ-Crain M., Hasler P. Markers of neutrophil extracellular traps predict adverse outcome in community-acquired pneumonia: secondary analysis of a randomised controlled trial. Eur Respir J. 2018;51(4):1701389. doi:10.1183/13993003.01389-2017.; Vassallo A., Wood A.J., Subburayalu J., Summers C., Chilvers E.R. The counter-intuitive role of the neutrophil in the acute respiratory distress syndrome. Br Med Bull. 2019;131(1):43-55. doi:10.1093/bmb/ldz024.; Clancy D.M., Sullivan G.P., Moran H.B.T., Henry C.M., Reeves E.P., McElvaney N.G., Lavelle E.C., Martin S.J. Extracellular Neutrophil Proteases Are Efficient Regulators of IL-1, IL-33, and IL-36 Cytokine Activity but Poor Effectors of Microbial Killing. Cell Rep. 2018;22(11):2937-2950. doi:10.1016/j.celrep.2018.02.062.; Toy P., Lowell C. TRALI - definition, mechanisms, incidence and clinical relevance. Best Pract Res Clin Anaesthesiol. 2007; 21(2):183–93. doi:10.1016/j.bpa.2007.01.003; Rebetz J., Semple J.W., Kapur R. The Pathogenic Involvement of Neutrophils in Acute Respiratory Distress Syndrome and Transfusion-Related Acute Lung Injury. Transfus Med Hemother. 2018;45(5):290-298. doi:10.1159/000492950.; Caudrillier A., Kessenbrock K., Gilliss B.M., Nguyen J.X., Marques M.B., Monestier M., Toy P., Werb Z., Looney M.R. Platelets induce neutrophil extracellular traps in transfusion-related acute lung injury. J Clin Invest. 2012;122(7):2661-71. doi:10.1172/JCI61303.; Hakkim A., Fuchs T.A., Martinez N.E., Hess S., Prinz H., Zychlinsky A., Waldmann H. Activation of the Raf-MEK-ERK pathway is required for neutrophil extracellular trap formation. Nat Chem Biol. 2011;7(2):75-7. doi:10.1038/nchembio.496.; Ma Y., Yang X., Chatterjee V., Meegan J.E., Beard R.S.Jr., Yuan S.Y. Role of Neutrophil Extracellular Traps and Vesicles in Regulating Vascular Endothelial Permeability. Front Immunol. 2019;10:1037. doi:10.3389/fimmu.2019.01037.; Sun S., Duan Z., Wang X., Chu C., Yang C., Chen F., Wang D., Wang C., Li Q., Ding W. Neutrophil extracellular traps impair intestinal barrier functions in sepsis by regulating TLR9-mediated endoplasmic reticulum stress pathway. Cell Death Dis. 2021;12(6):606. doi:10.1038/s41419-021-03896-1.; Гусакова Н., Ярец Ю., Гомоляко А NET: охота продолжается. Наука и инновации. 2017; 4(170): 68-72.; Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Галина Г.В., Бойчук С.В., Донцова Н.В. Выраженность нетоза при неонатальном сепсисе. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2020;65(5):164-168. doi; 10.21508/1027-4065-2020-65-5-164-168.; Ostafin M., Pruchniak M.P., Ciepiela O., Reznick A.Z., Demkow U. Different procedures of diphenyleneiodonium chloride addition affect neutrophil extracellular trap formation. Anal Biochem. 2016;509:60-66. doi:10.1016/j.ab.2016.05.003.; Асеева ЕА, Покровский НС, Соловьев СК, Николаева ЕВ, Никишина НЮ, Абдуллин ЕТ, Решетняк ТМ, Зоткин ЕГ, Лила АМ. Первый клинический опыт применения селективной плазмосорбции ДНК с использованием сорбционной колонки «НуклеоКор®» при лечении системной красной волчанки. Современная ревматология. 2024;18(2):75-80. doi:10.14412/1996-7012-2024-2-75-80; Асвани Э. Внеклеточные нейтрофильные ловушки – новая мишень для лечебного афереза: доклинические исследования, первые клинические данные и перспективы для использования. В Лечебный гемаферез и экстракорпоральная гемокоррекция: достижения и надежд»: материалы VI конференции Национального общества специалистов в области гемафереза и экстракорпоральной гемокоррекции. Санкт-Петербург, 2023

Διαθεσιμότητα: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1557
https://doi.org/10.17802/2306-1278-2024-13-4S-230-240

Опыт успешного применения экстракорпоральных методов лечения синдрома лизиса опухоли ; Experience in the successful application of extracorporeal methods in treatment of tumor lysis syndrome

Συγγραφείς: Voroshin, D. G., Beloborodov, V. V., Vazhenin, A. V., Ermakov, M. A., Ворошин, Д. Г., Белобородов, В. В., Важенин, А. В., Ермаков, М. А.

Θεματικοί όροι: TUMOR LYSIS SYNDROME, EXTRACORPOREAL TREATMENT METHODS, ANTITUMOR DRUG THERAPY, СИНДРОМ ЛИЗИСА ОПУХОЛИ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, ПРОТИВООПУХОЛЕВАЯ ЛЕКАРСТВЕННАЯ ТЕРАПИЯ

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2021. т. 20. №2; http://elib.usma.ru/handle/usma/6276

Διαθεσιμότητα: http://elib.usma.ru/handle/usma/6276

DIFFICULTIES IN MANAGING THE PATIENT WITH MULTIPLE DRUG RESISTANT TUBERCULOSIS AND CONCURRENT CONDITIONS

Συγγραφείς: E. V. Vaniev, I. A. Vasilieva, A. E. Ergeshov, T. R. Bagdasaryan

Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 94, Iss 7, Pp 56-60 (2016)

Θεματικοί όροι: туберкулез легких с множественной лекарственной устойчивостью, патогенетическая терапия, экстракорпоральные методы, токсический гепатит, Diseases of the respiratory system, RC705-779

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/910; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/e4345c10998f4602a8d20a2e3a8fe9b0

Διαθεσιμότητα: https://doi.org/10.21292/2075-1230-2016-94-7-56-60
https://doaj.org/article/e4345c10998f4602a8d20a2e3a8fe9b0

РОЛЬ ПОЧЕЧНОЙ СИСТЕМЫ ЭЛИМИНАЦИИ В ЛЕЧЕНИИ ОСТРОГО ОТРАВЛЕНИЯ ТАЛЛИЕМ

Συγγραφείς: ШЕЙМАН Б.С., ПРОДАНЧУК Н.Г., ВОЛОШИНА Н.А., МАКАРОВ А.А., УРИН А.А., ИЦЬ В.В.

Θεματικοί όροι: ОТРАВЛЕНИЕ ТАЛЛИЕМ,THALLIUM POISONING,ПОЧЕЧНАЯ СИСТЕМА ЭЛИМИНАЦИИ,RENAL ELIMINATION SYSTEM,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION METHODS,СЕЛЕКТИВНЫЕ ДЕТОКСИКАЦИОННЫЕ СВОЙСТВА,SELECTIVE DETOXIFICATION PROPERTIES,ОТРУєННЯ ТАЛієМ,НИРКОВА СИСТЕМА ЕЛіМіНАЦії,ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНі МЕТОДИ ДЕТОКСИКАЦії,СЕЛЕКТИВНі ДЕТОКСИКАЦіЙНі ВЛАСТИВОСТі

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/rol-pochechnoy-sistemy-eliminatsii-v-lechenii-ostrogo-otravleniya-talliem
http://cyberleninka.ru/article_covers/16491054.png

ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ ДЕТОКСИКАЦИИ В ЛЕЧЕНИИ ОСТРОГО ОТРАВЛЕНИЯ ТАЛЛИЕМ

Συγγραφείς: ШЕЙМАН Б.С., ПРОДАНЧУК Н.Г., ВОЛОШИНА Н.А., МАКАРОВ А.А., УРИН А.А., ИЦЬ В.В.

Θεματικοί όροι: ОТРАВЛЕНИЕ ТАЛЛИЕМ,THALLIUM POISONING,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION METHODS,СЕЛЕКТИВНЫЕ ДЕТОКСИКАЦИОННЫЕ СВОЙСТВА,SELECTIVE DETOXIFICATION PROPERTIES,ОТРУєННЯ ТАЛієМ,ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНі МЕТОДИ ДЕТОКСИКАЦії,СЕЛЕКТИВНі ДЕТОКСИКАЦіЙНі ВЛАСТИВОСТі

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-effektivnosti-ispolzovaniya-ekstrakorporalnyh-tehnologiy-detoksikatsii-v-lechenii-ostrogo-otravleniya-talliem
http://cyberleninka.ru/article_covers/16491055.png

ПРЕДПОСЫЛКИ ЭФФЕКТИВНОГО ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ В ЛЕЧЕНИИ ОСТРЫХ ОТРАВЛЕНИЙ

Συγγραφείς: ШЕЙМАН Б.С., ПРОДАНЧУК М.Г., ВОЛОШИНА Н.О., ПОСТЕРНАК Г.И.

Θεματικοί όροι: ГОСТРі ОТРУєННЯ,ТОКСИКОКіНЕТИКА РЕЧОВИН,ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНі МЕТОДИ ДЕТОКСИКАЦії,КРИТЕРії ЕФЕКТИВНОГО ЗАСТОСУВАННЯ ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНИХ ТЕХНОЛОГіЙ,CRITERIA FOR EFFECTIVE USE OF EXTRACORPOREAL TECHNOLOGIES,ОСТРЫЕ ОТРАВЛЕНИЯ,ACUTE POISONINGS,ТОКСИКОКИНЕТИКА ВЕЩЕСТВ,SUBSTANCE TOXICOKINETICS,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION METHODS,КРИТЕРИИ ЭФФЕКТИВНОГО ПРИМЕНЕНИЯ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/predposylki-effektivnogo-ispolzovaniya-ekstrakorporalnyh-tehnologiy-v-lechenii-ostryh-otravleniy
http://cyberleninka.ru/article_covers/16491009.png

ОЦЕНКА ЭФФЕКТИВНОСТИ ЛЕЧЕНИЯ ПАЦИЕНТОВ С ПЕЧЁНОЧНОЙ ЭНЦЕФАЛОПАТИЕЙ

Συγγραφείς: Кутепов, Дмитрий

Θεματικοί όροι: ХРОНИЧЕСКАЯ ПЕЧЁНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, ПЕЧЁНОЧНАЯ ЭНЦЕФАЛОПАТИЯ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, МАРС

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-effektivnosti-lecheniya-patsientov-s-pechyonochnoy-entsefalopatiey
http://cyberleninka.ru/article_covers/15621392.png

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ПРОБИТ-АНАЛИЗА ДЛЯ ОЦЕНКИ ЭФФЕКТИВНОСТИ РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ЛЕЧЕНИЯ ХРОНИЧЕСКОЙ ПЕЧЁНОЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ

Συγγραφείς: Кутепов, Дмитрий

Θεματικοί όροι: ХРОНИЧЕСКАЯ ПЕЧЁНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, ПРОБИТ-АНАЛИЗ, ВРЕМЯ НАСТУПЛЕНИЯ 50% ЛЕТАЛЬНОСТИ, 50% MORTALITY TIME

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/ispolzovanie-probit-analiza-dlya-otsenki-effektivnosti-razlichnyh-metodov-lecheniya-hronicheskoy-pechyonochnoy-nedostatochnosti
http://cyberleninka.ru/article_covers/15576093.png

ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ МЕТОДОВ ЛЕЧЕНИЯ ПЕЧЁНОЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ

Συγγραφείς: Кутепов, Дмитрий

Θεματικοί όροι: ПЕЧЁНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, МОЛЕКУЛЯРНАЯ АДСОРБИРУЮЩАЯ РЕЦИРКУЛИРУЮЩАЯ СИСТЕМА (МАРС), MOLECULAR ADSORBENT RECIRCULATING SYSTEM (MARS)

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/ispolzovanie-ekstrakorporalnyh-metodov-lecheniya-pechyonochnoy-nedostatochnosti
http://cyberleninka.ru/article_covers/14986602.png

PATHOGENIC MECHANISMS OF SEPTIC NEPHROPATHY OF THE RENAL TRANSPLANTS AND THE SEARCH FOR WAYS OF SOLVING THIS PROBLEM WITH SELECTIVE USE OF MODERN EXTRACORPOREAL METHODS ; ПАТОГЕНЕТИЧЕСКИЕ МЕХАНИЗМЫ РАЗВИТИЯ СЕПТИЧЕСКОЙ НЕФРОПАТИИ РЕНАЛЬНОГО ТРАНСПЛАНТАТА И ПОИСК ПУТЕЙ РЕШЕНИЯ ДАННОЙ ПРОБЛЕМЫ С ПОМОЩЬЮ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ СОВРЕМЕННЫХ СЕЛЕКТИВНЫХ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ МЕТОДОВ

Συγγραφείς: Krstic М., Zulkarnayev A.B., Vatazin A.V., Prokopenko E.I.

Πηγή: Almanac of Clinical Medicine; No 29 (2013); 61-64 ; Альманах клинической медицины; No 29 (2013); 61-64 ; 2587-9294 ; 2072-0505 ; 10.18786/2072-0505-2013-29

Θεματικοί όροι: sepsis, renal transplant, selective adsorption, extracorporeal methods, сепсис, ренальный трансплантат, селективная адсорбция, экстракорпоральные методы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://almclinmed.ru/jour/article/view/33/35; https://almclinmed.ru/jour/article/view/33

Διαθεσιμότητα: https://almclinmed.ru/jour/article/view/33
https://doi.org/10.18786/2072-0505-2013-29-61-64

ОПЫТ ПРИМЕНЕНИЯ ПЛАЗМАФЕРЕЗА В КОМПЛЕКСНОЙ ТЕРАПИИ ИДИОПАТИЧЕСКОГО ФИБРОЗИРУЮЩЕГО АЛЬВЕОЛИТА

Συγγραφείς: Сагитова, О., Терехова, С., Ильинский, В., Дьякова, Е., Мингазова, Л., Спиридонова, Н.

Θεματικοί όροι: ИДИОПАТИЧЕСКИЙ ФИБРОЗИРУЮЩИЙ АЛЬВЕОЛИТ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, ПЛАЗМАФЕРЕЗ, КОМПЛЕКСНАЯ ТЕРАПИЯ ИДИОПАТИЧЕСКОГО ФИБРОЗИРУЮЩЕГО АЛЬВЕОЛИТА, « ПРОГРАММНЫЙ» ПЛАЗМАФЕРЕЗ, «PROGRAM» PLASMAPHAERESIS

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/opyt-primeneniya-plazmafereza-v-kompleksnoy-terapii-idiopaticheskogo-fibroziruyuschego-alveolita
http://cyberleninka.ru/article_covers/15138139.png

ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ В КОМПЛЕКСНОМ ЛЕЧЕНИИ ГЕПАТИТОВ

Συγγραφείς: Парфенчик, Фёдор, Кулиджанов, Александр

Θεματικοί όροι: ГЕПАТИТ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ, ПЛАЗМАФЕРЕЗ, ГЕМОСОРБЦИЯ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/ekstrakorporalnye-metody-detoksikatsii-v-kompleksnom-lechenii-gepatitov
http://cyberleninka.ru/article_covers/13925872.png

ДИНАМИКА СИСТЕМЫ ГЕМОСТАЗА В УСЛОВИЯХ МАРС-ТЕРАПИИ И ГДФ У БОЛЬНЫХ С ОСТРОЙ ПЕЧЕНОЧНО-ПОЧЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТЬЮ

Συγγραφείς: Еремеева, Л., Менщиков, В.

Θεματικοί όροι: ГЕМОСТАЗ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ, ОСТРАЯ ПЕЧЕНОЧНО-ПОЧЕЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/dinamika-sistemy-gemostaza-v-usloviyah-mars-terapii-i-gdf-u-bolnyh-s-ostroy-pechenochno-pochechnoy-nedostatochnostyu
http://cyberleninka.ru/article_covers/14122682.png

Evaluating the Efficacy of Extracorporeal Detoxification Technologies Use in the Treatment of Acute Thallium Poisoning

Συγγραφείς: Sheyman, B.S., Prodanchuk, N.G., Voloshina, N.A., Makarov, A.A., Urin, A.A., Its, V.V.

Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 4.59 (2014); 62-67
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 4.59 (2014); 62-67
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 4.59 (2014); 62-67

Θεματικοί όροι: отравление таллием, экстракорпоральные методы детоксикации, селективные детоксикационные свойства, отруєння талієм, екстракорпоральні методи детоксикації, селективні детоксикаційні властивості, thallium poisoning, extracorporeal detoxification methods, selective detoxification properties

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/83476

ВЛИЯНИЕ ГЕМОСОРБЦИИ И ПЛАЗМАФЕРЕЗА НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ ПЕЧЕНИ БОЛЬНЫХ С ХРОНИЧЕСКОЙ ПАТОЛОГИЕЙ ГЕПАТОБИЛИАРНОЙ СИСТЕМЫ

Συγγραφείς: Сухбаатар, О., Пунцаг, Ч.

Θεματικοί όροι: ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ОЧИЩЕНИЯ КРОВИ, ПЛАЗМАФЕРЕЗ, ГЕМОСОРБЦИЯ, ЭКМОК, ХРОНИЧЕСКИЙ ГЕПАТИТ, ЖЕЛЧНОКАМЕННАЯ БОЛЕЗНЬ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/vliyanie-gemosorbtsii-i-plazmafereza-na-funktsionalnye-pokazateli-pecheni-bolnyh-s-hronicheskoy-patologiey-gepatobiliarnoy-sistemy
http://cyberleninka.ru/article_covers/14584983.png

Использование экстракорпоральных методов лечения печёночной недостаточности

Πηγή: Казанский медицинский журнал.

Θεματικοί όροι: ПЕЧЁНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, МОЛЕКУЛЯРНАЯ АДСОРБИРУЮЩАЯ РЕЦИРКУЛИРУЮЩАЯ СИСТЕМА (МАРС), MOLECULAR ADSORBENT RECIRCULATING SYSTEM (MARS), 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article/n/ispolzovanie-ekstrakorporalnyh-metodov-lecheniya-pechyonochnoy-nedostatochnosti
http://cyberleninka.ru/article_covers/14986602.png

Предпосылки эффективного использования экстракорпоральных технологий в лечении острых отравлений

Πηγή: Медицина неотложных состояний.

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, ГОСТРі ОТРУєННЯ,ТОКСИКОКіНЕТИКА РЕЧОВИН,ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНі МЕТОДИ ДЕТОКСИКАЦії,КРИТЕРії ЕФЕКТИВНОГО ЗАСТОСУВАННЯ ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНИХ ТЕХНОЛОГіЙ,CRITERIA FOR EFFECTIVE USE OF EXTRACORPOREAL TECHNOLOGIES,ОСТРЫЕ ОТРАВЛЕНИЯ,ACUTE POISONINGS,ТОКСИКОКИНЕТИКА ВЕЩЕСТВ,SUBSTANCE TOXICOKINETICS,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION METHODS,КРИТЕРИИ ЭФФЕКТИВНОГО ПРИМЕНЕНИЯ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫХ ТЕХНОЛОГИЙ, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article/n/predposylki-effektivnogo-ispolzovaniya-ekstrakorporalnyh-tehnologiy-v-lechenii-ostryh-otravleniy
http://cyberleninka.ru/article_covers/16491009.png

Оценка эффективности использования экстракорпоральных технологий детоксикации в лечении острого отравления таллием

Πηγή: Медицина неотложных состояний.

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, ОТРАВЛЕНИЕ ТАЛЛИЕМ,THALLIUM POISONING,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ДЕТОКСИКАЦИИ,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION METHODS,СЕЛЕКТИВНЫЕ ДЕТОКСИКАЦИОННЫЕ СВОЙСТВА,SELECTIVE DETOXIFICATION PROPERTIES,ОТРУєННЯ ТАЛієМ,ЕКСТРАКОРПОРАЛЬНі МЕТОДИ ДЕТОКСИКАЦії,СЕЛЕКТИВНі ДЕТОКСИКАЦіЙНі ВЛАСТИВОСТі, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article_covers/16491055.png
http://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-effektivnosti-ispolzovaniya-ekstrakorporalnyh-tehnologiy-detoksikatsii-v-lechenii-ostrogo-otravleniya-talliem

Оценка эффективности лечения пациентов с печёночной энцефалопатией

Πηγή: Казанский медицинский журнал.

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, ХРОНИЧЕСКАЯ ПЕЧЁНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, ПЕЧЁНОЧНАЯ ЭНЦЕФАЛОПАТИЯ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ЛЕЧЕНИЯ, МАРС, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article/n/otsenka-effektivnosti-lecheniya-patsientov-s-pechyonochnoy-entsefalopatiey
http://cyberleninka.ru/article_covers/15621392.png