Search Results - "экстракорпоральная детоксикация"

1

Academic Journal

Терапевтический плазмообмен в упреждении послеоперационных осложнений при хирургическом лечении рака легкого с воспалительным компонентом (клиническое наблюдение)

Subject Terms: therapeutic plasma exchange, lung cancer, endogenous intoxication, экстракорпоральная детоксикация, extracorporeal detoxification, эндогенная интоксикация, реактивность организма, рак лёгкого, inflammatory complications, терапевтический плазмообмен, воспалительные осложнения, organism reactivity, 3. Good health

2

Academic Journal

Use of Selective Hemosorption and Hemodiafiltration in a Patient with Toxic Rhabdomyolysis Complicated by Acute Kidney Injury ; Применение селективной гемосорбции и гемодиафильтрации у пациента с рабдомиолизом токсического генеза, осложненным острым почечным повреждением

Authors: S. V. Masolitin, M. A. Magomedov, T. G. Kim, I. N. Tyurin, V. M. Smetanina, E. Yu. Kalinin, D. N. Protsenko, С. В. Масолитин, М. А. Магомедов, Т. Г. Ким, И. Н. Тюрин, В. М. Сметанина, Е. Ю. Калинин, Д. Н. Проценко

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 19, № 6 (2022); 78-85 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 19, № 6 (2022); 78-85 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: цистатин-С, selective hemoperfusion, hemodiafiltration, acute kidney injury, combined extracorporeal detoxification, myoglobin, cystatin-C, селективная гемосорбция, гемодиафильтрация, острое почечное повреждение, комбинированная экстракорпоральная детоксикация, миоглобин

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/740/607; Донской Д. Н. Рабдомиолиз, как причина острого повреждения почек в детском возрасте // Инновационная наука. – 2021. – № 7. – С. 148‒149.; Масолитин С. В., Проценко Д. Н., Тюрин И. Н. и др. Применение комбинированной экстракорпоральной детоксикации при лечении токсического рабдомиолиза, осложненного острым повреждением почек: одноцентровое проспективное рандомизированное исследование // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2022. – № 2. – С. 95‒107. doi.org/10.21320/1818-474X-2022-2-95-107.; Масолитин С. В., Проценко Д. Н., Тюрин И. Н. и др. Современный взгляд на применение методов экстракорпоральной детоксикации при рабдомиолизе (обзор) // Общая реаниматология. – 2022. – Т. 18, № 3. – С. 59‒68. doi.org/10.15360/1813-9779-2022-3-59-68.; Федорова А. А., Кутепов Д. Е., Зубарев А. В. и др. Рабдомиолиз: что нового в диагностике и лечении? // Кремлевская медицина. Клинический вестник. – 2020. – № 2. – С. 102‒109. doi:10.26269/4n94-0746.; Ahmad S., Anees M., Elahi I. et al. Rhabdomyolysis leading to acute kidney injury // J. Coll. Phys. Surg Pak. – 2021. – Vol. 31, № 2. – P. 235‒237. doi:10.29271/jcpsp.2021.02.235.; Ankawi G., Xie Y., Yang B. et al. What have we learned about the use of cytosorb adsorption columns? // Blood Purif. – 2019. – Vol. 48, № 3. – P. 196–202. doi:10.1159/000500013.; Beetham R. Biochemical investigation of suspected rhabdomyolysis // Ann. Clin. Biochem. – 2000. – Vol. 37, № 5. – P. 581–587. doi:10.1258/0004563001899870.; Cabral B. M. I., Edding S. N., Portocarrero J. P. et al. Rhabdomyolysis // Dis. Mon. – 2020. – Vol. 66, № 8. doi:10.1016/j.disamonth.2020.101015.; Chavez L. O., Leon M., Einav S. et al. Beyond muscle destruction: a systematic review of rhabdomyolysis for clinical practice // Crit. Care. – 2016. – Vol. 20, № 1. – P. 135. doi:10.1186/s13054-016-1314-5.; Coco T. J., Klasner A. E. Drug-induced rhabdomyolysis // Curr. Opin. Pediatr. – 2004. – Vol. 16, № 2. – P. 206–210. doi:10.1097/00008480-200404000-00017.; Donati G., Cappuccilli M., Di Filippo F. et al. The use of supra-hemodiafiltration in traumatic rhabdomyolysis and acute kidney injury: a case report // Case Rep. Nephrol. Dial. – 2021. – Vol. 11, № 1. – P. 26–35. doi:10.1159/000507424.; Esposito P., Estienne L., Serpieri N. et al. Rhabdomyolysis-associated acute kidney injury // Am. J. Kidney Dis. – 2018. – Vol. 71, № 6. – Р. A12–A14. doi:10.1053/j.ajkd.2018.03.009.; Guzman N., Podoll A. S., Bell C. S. et al. Myoglobin removal using high-volume high-flux hemofiltration in patients with oliguric acute kidney injury // Blood Purif. – 2013. – Vol. 36, № 2. – P. 107–111. doi:10.1159/000354727.; Hall A. P., Henry J. A. Acute toxic effects of 'Ecstasy' (MDMA) and related compounds: overview of pathophysiology and clinical management // Br. J. Anaesth. – 2006. – Vol. 96, № 6. – P. 678–685. doi:10.1093/bja/ael078.; Heyne N., Guthoff M., Krieger J. et al. High cut-off renal replacement therapy for removal of myoglobin in severe rhabdomyolysis and acute kidney injury: a case series // Nephron Clin. Pract. – 2012. – Vol. 121, № 3‒4. – P. 159–164. doi:10.1159/000343564.; Holt S., Moore K. Pathogenesis of renal failure in rhabdomyolysis: the role of myoglobin // Exp. Nephrol. – 2000. – Vol. 8, № 2. – P. 72–76. doi:10.1159/000020651.; Huerta-Alardín A. L., Varon J., Marik P. E. Bench-to-bedside review: Rhabdomyolysis an overview for clinicians // Crit. Care. – 2005. – Vol. 9, № 2. – P. 158–169. doi:10.1186/cc2978.; Kasaoka S., Todani M., Kaneko T. et al. Peak value of blood myoglobin predicts acute renal failure induced by rhabdomyolysis // J. Crit. Care. – 2010. – Vol. 25, № 4. – P. 601–604. doi:10.1016/j.jcrc.2010.04.002.; Khan F. Y. Rhabdomyolysis: a review of the literature // Neth. J. Med. – 2009. – Vol. 67, № 9. – P. 272–283. PMID: 19841484.; Kolovou G., Cokkinos P., Bilianou H. et al. Non-traumatic and non-drug-induced rhabdomyolysis // Arch. Med. Sci. Atheroscler Dis. – 2019. – Vol. 4. – Р. e252–e263. doi:10.5114/amsad.2019.90152.; Kwiatkowska M., Chomicka I., Malyszko J. Rhabdomyolysis induced acute kidney injury an underestimated problem // Wiad Lek. – 2020. – Vol. 73, № 11. – P. 2543–2548. PMID: 33454698.; Mannix R., Tan M. L., Wright R., Baskin M. Acute pediatric rhabdomyolysis: causes and rates of renal failure // Pediatrics. – 2006. – Vol. 118, № 5. – Р. 2119–2125. doi:10.1542/peds.2006-1352.; Melli G., Chaudhry V., Cornblath D. R. Rhabdomyolysis: an evaluation of 475 hospitalized patients // Medicine (Baltimore). – 2005. – 84, № 6. – Р. 377–385. doi:10.1097/01.md.0000188565.48918.41.; Naka T., Jones D., Baldwin I. et al. Myoglobin clearance by super high-flux hemofiltration in a case of severe rhabdomyolysis: a case report // Crit. Care. – 2005. – Vol. 2. –Р. R90– R95. doi:10.1186/cc3034.; Pasala S., Carmody J. B. How to use… serum creatinine, cystatin C and GFR // Arch. Dis. Child Educ. Pract. Ed. – 2017. – Vol. 102, № 1. – P. 37–43. doi:10.1136/archdischild-2016-311062.; Petejova N., Martinek A. Acute kidney injury due to rhabdomyolysis and renal replacement therapy: a critical review // Crit. Care. – 2014. – Vol. 18, № 3. – P. 224. doi:10.1186/cc13897.; Poorsarvi Tehrani P., Malek H. Early detection of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury through machine learning approaches // Arch. Acad. Emerg. Med. – 2021. – Vol. 9, № 1. – Р. e29. doi:10.22037/aaem.v9i1.1059.; Prendergast B. D., George C. F. Drug-induced rhabdomyolysis--mechanisms and management // Postgrad Med. J. – 1993. – Vol. 69, № 811. – P. 333–336. doi:10.1136/pgmj.69.811.333.; Ronco C. Extracorporeal therapies in acute rhabdomyolysis and myoglobin clearance // Crit. Care. – 2005. – Vol. 9, № 2. – P. 141‒142. doi:10.1186/cc3055.; Safari S., Yousefifard M., Hashemi B. et al. The value of serum creatine kinase in predicting the risk of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis // Clin. Exp. Nephrol. – 2016. – Vol. 20, № 2. – P. 153–161. doi:10.1007/s10157-015-1204-1.; Scharf C., Liebchen U., Paal M. et al. Blood purification with a cytokine adsorber for the elimination of myoglobin in critically ill patients with severe rhabdomyolysis // Crit. Care. – 2021. – Vol. 25, № 1. – P. 41. doi:10.1186/s13054-021-03468-x.; Schrezenmeier E. V., Barasch J., Budde K. et al. Biomarkers in acute kidney injury - pathophysiological basis and clinical performance // Acta Physiol. (Oxf). – 2017. – Vol. 219, № 3. – P. 554–572. doi:10.1111/apha.12764.; Sousa A., Paiva J. A., Fonseca S. et al. Rhabdomyolysis: risk factors and incidence in polytrauma patients in the absence of major disasters // Eur. J. Trauma Emerg. Surg. – 2013. – Vol. 39, № 2. – P. 131–137. doi:10.1007/s00068-012-0233-7.; Waldman W., Sein Anand J., Kabata P. The characteristics and outcomes of toxin-induced massive rhabdomyolysis // Int. J. Occup. Med. Environ. Health. – 2020. – Vol. 33, № 5. – P. 661–673. doi:10.13075/ijomeh.1896.01532.; Weidhase L., de Fallois J., Haußig E. et al. Myoglobin clearance with continuous veno-venous hemodialysis using high cutoff dialyzer versus continuous veno-venous hemodiafiltration using high-flux dialyzer: a prospective randomized controlled trial // Crit. Care. – 2020. – Vol. 24, № 1. – P. 644. doi:10.1186/s13054-020-03366-8.; Yang C. W., Li S., Dong Y., Paliwal N., Wang Y. Epidemiology and the Impact of Acute Kidney Injury on Outcomes in Patients with Rhabdomyolysis // J. Clin. Med. ‒ 2021. ‒ Vol. 10, № 9. ‒ Р. 1950. doi:10.3390/jcm10091950. PMID: 34062839; PMCID: PMC8125267.; Zhang L., Kang Y., Fu P. et al. Myoglobin clearance by continuous venous-venous haemofiltration in rhabdomyolysis with acute kidney injury: a case series // Injury. ‒ 2012. – Vol. 43, № 5. – P. 619–623. doi:10.1016/j.injury.2010.08.031.; Zorova L. D., Pevzner I. B., Chupyrkina A. A. et al. The role of myoglobin degradation in nephrotoxicity after rhabdomyolysis // Chem. Biol. Interact. – Vol. 256. – P. 64–70. doi:10.1016/j.cbi.2016.06.020.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/740
https://doi.org/10.21292/2078-5658-2022-19-6-78-85

View record from BASE

3

Academic Journal

Continuous Renal Replacement Therapy Using Membranes with Increased Adsorption Capacity in Patients with Septic Shock after Neurosurgical Interventions ; Продленная заместительная почечная терапия с применением мембран с повышенной сорбционной емкостью у пациентов после нейрохирургических вмешательств с септическим шоком

Authors: А. I. Burov, T. А. Аbramov, N. V. Kurdyumova, А. V. Oshorov, D. S. Korotkov, N. S. Kostritsa, G. V. Danilov, Yu. V. Strunina, I. А. Savin, А. И. Буров, Т. А. Абрамов, Н. В. Курдюмова, А. В. Ошоров, Д. С. Коротков, Н. С. Кострица, Г. В. Данилов, Ю. В. Струнина, И. А. Савин

Source: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 18, № 6 (2021); 48-56 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 18, № 6 (2021); 48-56 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Subject Terms: мембраны с повышенной сорбционной емкостью, septic shock, blood purification, neurosurgery, continuous renal replacement therapy, membranes with increased adsorption capacity, септический шок, экстракорпоральная детоксикация, нейрохирургия, продленная заместительная почечная терапия

File Description: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/599/525; Бовкун И. В., Гаврилова Е. Г., Соколов Д. В. и др. Опыт применения селективной ЛПС-сорбции в комплексной терапии больных с грамотрицательным сепсисом // Вестник анестезиологии и реаниматологии. ‒ 2017. ‒ Т. 14, № 3. ‒ С. 68‒73. doi:10.21292/2078-5658-2017-14-3-68-73.; Ким Т. Г., Магомедов М. А., Проценко Д. Н. и др. Современное состояние проблемы применения заместительной почечной терапии при лечении сепсиса // Вестник анестезиологии и реаниматологии. ‒ 2021. ‒ Т. 18, № 4. ‒ С. 80‒89. doi:10.21292/2078-5658-2021-18-4-80-89.; Bai M., Zhou M., He L. et al. Citrate versus heparin anticoagulation for continuous renal replacement therapy: an updated meta-analysis of RCTs // Intens. Care Med. ‒ 2015. ‒ № 12 (41). ‒ P. 2098–2110. doi:10.1007/s00134-015-4099-0.; Bellaver B., Santos J., Leffa D. et al. Systemic inflammation as a driver of brain injury: the astrocyte as an emerging player // Molecul. Neurobiol. ‒ 2018. ‒ Vol. 55. doi:10.1007/s12035-017-0526-2.; Broman M. E., Hansson F., Vincent J.-L. et al. Endotoxin and cytokine reducing properties of the oXiris membrane in patients with septic shock: A randomized crossover double-blind study // Plos One. ‒ 2019. ‒ № 8 (14). ‒ P. e0220444. doi:10.1371/journal.pone.0220444.; Cole L., Bellomo R., Hart G. et al. A phase II randomized, controlled trial of continuous hemofiltration in sepsis // Crit. Care Med. ‒ 2002. ‒ № 1 (30). ‒ P. 100–106. doi:10.1097/00003246-200201000-00016.; Cruz D. N., Massimo A., Roberto F. et al. Early use of polymyxin B hemoperfusion in abdominal septic shock: the EUPHAS randomized controlled trial // JAMA. ‒ 2009. ‒ № 23 (301). ‒ P. 2445–2452. doi:10.1001/jama.2009.856.; Das M., Mohapatra S., Mohapatra S. S. New perspectives on central and peripheral immune responses to acute traumatic brain injury // J. Neuroinflammation. ‒ 2012. ‒ № 1 (9). ‒ P. 742. doi:10.1186/1742-2094-9-236.; Friesecke S. Stephanie-Susanne S., Stefan G. et al. Extracorporeal cytokine elimination as rescue therapy in refractory septic shock: a prospective single-center study // J. Artific. Organs: The Official Journal of the Japanese Society for Artificial Organs. ‒ 2017. ‒ № 3 (20). ‒ P. 252–259. doi:10.1007/s10047-017-0967-4.; Joannes-Boyau O., Honore P., Boer W. et al. Are the synergistic effects of high-volume haemofiltration and enhanced adsorption the missing key in sepsis modulation? // Nephrol. Dial. Transplant. ‒ 2008. ‒ № 2 (24). ‒ P. 354–357. doi:10.1093/ndt/gfn666.; Levy M. M., Fink M. P., Marshall J. C. et al. SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS. 2001 SCCM/ESICM/ACCP/ATS/SIS International Sepsis Definitions Conference // Crit. Care Med. – 2003. ‒ № 31(4). ‒ Р. 1250‒1256. doi:10.1097/01.CCM.0000050454.01978.3B. PMID: 12682500.; Matsui T., Nakagawa Т., Kikuchi Н. et al. The effect of continuous renal replacement therapy with the AN69ST membrane on inflammatory markers and the level of consciousness of hemodialysis patients with stroke: comparison with hemodialysis with low blood flow rate // PRILOZI. ‒ 2018. ‒ № 2–3 (39). ‒ P. 29–35. doi:10.2478/prilozi-2018-0039.; Meisner M., Hüttemann Е., Lohs, Т. et al. Plasma concentrations and clearance of procalcitonin during continuous veno-venous hemofiltration in septic patients // Shock. ‒ 2001. ‒ № 3 (15). ‒ P. 171–175. doi:10.1097/00024382-200115030-00002.; Pinsky M. R., Brochard L., Hedenstierna G. et al. applied physiology in intensive care medicine, 3d edithion / M. Berlin: Springer, 2012.; Polito A., Eischwald F., Maho A. et al. Pattern of brain injury in the acute setting of human septic shock // Crit. Care (London, England). ‒ 2013. ‒ № 5 (17). ‒ P. R204. doi:10.1186/cc12899.; Putzu A., Schorer R., Lopez-Delgado J. et al. Blood purification and mortality in sepsis and septic shock: a systematic review and meta-analysis of randomized trials // Anesthesiology. ‒ 2019. ‒ № 3 (131). ‒ P. 580–593. doi:10.1097/ALN.0000000000002820.; Rhee C. Using procalcitonin to guide antibiotic therapy // Open Forum Infectious Diseases. ‒ 2017. ‒ № 1 (4). ‒ P. ofw249. doi:10.1093/ofid/ofw249.; Rhodes A., Evans L., Alhazzani W. et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock: 2016 // Intens. Care Med. ‒ 2017. ‒ № 3 (43). ‒ P. 304–377. doi:10.1007/s00134-017-4683-6.; Schädler D., Pausch Ch., Heise D. et al. The effect of a novel extracorporeal cytokine hemoadsorption device on IL-6 elimination in septic patients: randomized controlled trial // PloS One. ‒ 2017. ‒ № 10 (12). ‒ P. e0187015. doi:10.1371/journal.pone.0187015.; Sharshar T., Bozza F., Chrétien F. Neuropathological processes in sepsis // The Lancet. Neurology. ‒ 2014. ‒ № 6 (13). ‒ P. 534–536. doi:https://doi.org/10.1016/S1474-4422(14)70064-X.; Sharshar T., Mazeraud A., Verdonk F. et al. Brain perfusion in sepsis or to resolve the macro part of the micro // Crit. Care Med. ‒ 2014. ‒ № 2 (42). ‒ P. 485–486. doi:10.1097/CCM.0000000000000007.

Availability: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/599
https://doi.org/10.21292/2078-5658-2021-18-6-48-56

View record from BASE

4

Academic Journal

Extracorporeal detoxification for septic complications in children during the acute period of severe combined craniocerebral trauma ; Экстракорпоральная детоксикация при септических осложнениях у детей в остром периоде тяжелой сочетанной черепно-мозговой травмы

Authors: Novikova T.A., Yeletskaya E.V., Ivanova T.F., Amchislavsky V.G.

Source: Russian Journal of Pediatric Surgery, Anesthesia and Intensive Care; Vol 11, No 2 (2021); 151-160 ; Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии; Vol 11, No 2 (2021); 151-160 ; 2587-6554 ; 2219-4061 ; 10.17816/psaic.20212

Subject Terms: severe concomitant traumatic brain injury in children, extracorporeal detoxification, plasmapheresis, prolonged veno-venous hemofiltration, intracranial hypertension, traumatic cerebral edema, тяжелая сочетанная черепно-мозговая травма, дети, экстракорпоральная детоксикация, плазмаферез, продленная вено-венозная гемофильтрация, внутричерепная гипертензия, отек головного мозга

File Description: application/pdf

Relation: https://rps-journal.ru/jour/article/view/938/pdf; https://rps-journal.ru/jour/article/view/938/874; https://rps-journal.ru/jour/article/downloadSuppFile/938/345; https://rps-journal.ru/jour/article/downloadSuppFile/938/538

Availability: https://rps-journal.ru/jour/article/view/938
https://doi.org/10.17816/psaic938

View record from BASE

5

Review

Терапевтический плазмообмен в упреждении послеоперационных осложнений при хирургическом лечении рака легкого с воспалительным компонентом (клиническое наблюдение)

Subject Terms: therapeutic plasma exchange, lung cancer, endogenous intoxication, экстракорпоральная детоксикация, extracorporeal detoxification, эндогенная интоксикация, реактивность организма, рак лёгкого, inflammatory complications, терапевтический плазмообмен, воспалительные осложнения, organism reactivity

6

Report

СОВРЕМЕННАЯ ТАКТИКА ДИАГНОСТИКИ И ЛЕЧЕНИЯ СЕПСИСА (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)

Subject Terms: АНТИБАКТЕРИАЛЬНАЯ ТЕРАПИЯ, ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНАЯ ДЕТОКСИКАЦИЯ, antibacterial therapy, multiple organ failure, septic focus sanitation, ИММУНОТЕРАПИЯ СЕПСИСА, 3. Good health, САНАЦИЯ СЕПТИЧЕСКОГО ОЧАГА, ПОЛИОРГАННАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ, sepsis, extracorporeal detoxification, sepsis immunotherapy, СЕПСИС, ПРОКАЛЬЦИТОНИН, procalcitonin

7

Academic Journal

СЛУЧАЙ УСПЕШНОГО ЛЕЧЕНИЯ ТЯЖЕЛОГО ПСЕВДОМЕМБРАНОЗНОГО КОЛИТА У БЕРЕМЕННОЙ, ОСЛОЖНЕННОГО СИНДРОМОМ КИШЕЧНОЙ ТРАНСЛОКАЦИИ И ТЯЖЕЛЫМ СЕПСИСОМ С ПОЛИОРГАННОЙ ДИСФУНКЦИЕЙ

Authors: ЯКУБЦЕВИЧ Р.Э., МОГИЛЕВЕЦ Э.В., ВИЗГАЛОВ С.А., МАКСИМОВИЧ А.А., ЧЕРНИЙ А.В., ПАВЛЮКЕВИЧ Е.В., ЗАСИМОВИЧ Т.В.

Subject Terms: ПСЕВДОМЕМБРАНОЗНЫЙ КОЛИТ,ТЯЖЕЛЫЙ СЕПСИС,СИНДРОМ КИШЕЧНОЙ ТРАНСЛОКАЦИИ,СИНДРОМ ПОЛИОРГАННОЙ ДИСФУНКЦИИ,БЕРЕМЕННОСТЬ,АНТИБАКТЕРИАЛЬНАЯ ТЕРАПИЯ,ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНАЯ ДЕТОКСИКАЦИЯ,МОНИТОРИНГ ИНВАЗИВНОЙ ГЕМОДИНАМИКИ PICCO,PSEUDOMEMBRANOUS COLITIS,SEVERE SEPSIS,GUT TRANSLOCATION SYNDROME,SYNDROME OF MULTIPLE ORGAN DYSFUNCTION,PREGNANCY,ANTIBIOTIC THERAPY,EXTRACORPOREAL DETOXIFICATION,INVASIVE HAEMODYNAMIC MONITORING OF PICCO

File Description: text/html

Availability: http://cyberleninka.ru/article/n/sluchay-uspeshnogo-lecheniya-tyazhelogo-psevdomembranoznogo-kolita-u-beremennoy-oslozhnennogo-sindromom-kishechnoy-translokatsii-i
http://cyberleninka.ru/article_covers/16975350.png

View record from BASE

8

Academic Journal

Impact of Extracorporeal Detoxification on the Serum Levels of Microbial Aromatic Acid Metabolites in Sepsis ; ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНОЙ ДЕТОКСИКАЦИИ НА УРОВЕНЬ АРОМАТИЧЕСКИХ МИКРОБНЫХ МЕТАБОЛИТОВ В СЫВОРОТКЕ КРОВИ ПРИ СЕПСИСЕ

Authors: S. E. Khoroshilov, N. V. Beloborodova, A. V. Nikulin, A. Yu. Bedova, С. Е. Хорошилов, Н. В. Белобородова, А. В. Никулин, А. Ю. Бедова

Source: General Reanimatology; Том 11, № 5 (2015); 6-14 ; Общая реаниматология; Том 11, № 5 (2015); 6-14 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2015-5

Subject Terms: биомаркеры, sepsis, extracorporeal detoxification, microbial aromatic acid metabolites, pnehylcarboxylic acids, hemodiafiltration, biomarkers, сепсис, экстракорпоральная детоксикация, ароматические микробные метаболиты, фенилкарбоновые кислоты, гемодиафильтрация

File Description: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1482/939; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1482/996; Дмитриева И.Б., Белобородова Н.В., Черневская Е.А. Биомаркеры прокальцитонин и белок S100в в клинико лабораторном монито ринге при критических состояниях новорожденных. Общая реани матология. 2013; 9 (3): 58–65. http://dx.doi.org/10.15360/1813 9779 2013 3 58; Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М., Половников С.Г., Шабанов А.К., Голубев М.А. Сурфактантный протеин А (SP A) — про гностический молекулярный биомаркер при остром респираторном дистресс синдроме. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 5–13. http://dx.doi.org/10.15360/1813 9779 2013 3 5; Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Писарев В.М. Новые диа гностические кандидатные молекулярные биомаркеры острого ре спираторного дистресс синдрома. Общая реаниматология. 2014; 10 (4): 6–10. http://dx.doi.org/10.15360/1813 9779 2014 4 6 10; Мороз В.В., Голубев А.М., Кузовлев А.Н., Шабанов А.К., Писарев В.М. Белок клеток Клара (Club Cell Protein) — новый диагностический кандидатный молекулярный биомаркер при нозокомиальной пнев монии. Общая реаниматология. 2014; 10 (6): 6–14. http://dx.doi. org/ 10.15360/1813 9779 2014 6 6 14; Honoré P.M., Joannes-Boyau O., Collin V., Boer W., Jennes S. Continuous hemofiltration in 2009: what is new for clinicians regard ing pathophysiology, preferred technique and recommended dose? Blood Purif. 2009; 28 (2): 135–143. http://dx.doi.org/10.1159/ 000227282. PMID: 19590180; Rabindranath K.S., Adams J., Macleod A.M., Muirhead N. Intermittent versus continuous renal replacement therapy for acute renal failure in adults. Cochrane Database Syst Rev. 2007; 18 (3): CD003773. http://dx. doi.org/10.1002/14651858.CD003773.pub3. PMID: 17636735; Lin H.H., Liu Y.L., Liu J.H., Chou C.Y., Yang Y.F., Kuo H.L., Huang C.C. Uremic pruritus, cytokines, and polymethylmethacrylate artificial kid ney. Artif. Organs. 2008; 32 (6): 468–472. http://dx.doi.org/10.1111/ j.1525 1594.2008.00568.x. PMID: 18422797; Хорошилов С.Е., Никулин А.В. Эфферентное лечение критических состояний. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 30–41. http://dx. doi.org/10.15360/1813 9779 2012 4 30; Valerio F., Lavermicocca P., Pascale M., Visconti A. Production of phenyllactic acid by lactic acid bacteria: an approach to the selection of strains contributing to food quality and preservation. FEMS Microbiol. Lett. 2004; 233 (2): 289–295. http://dx.doi.org/10.1111/j.1574 6968.2004.tb09494.x. PMID: 15063498; Белобородова Н.В., Ходакова А.С., Байрамов И.Т., Оленин А.Ю. Ми кробный путь образования фенилкарбоновых кислот в организме человека. Биохимия. 2009; 74 (12): 1657–1663. http://dx.doi.org/ 10.1134/S0006297909120086. PMID: 19961416; Russel W.R., Duncan S.H., Scobbie L., Duncan G., Cantlay L., Calder A.G., Anderson S.E., Flint H.J. Major phenylpropanoid derived metabo lites in the human gut can arise from microbial fermentation of protein. Mol. Nutr. Food Res. 2013; 57 (3): 523–535. http://dx.doi.org/ 10.1002/mnfr.201200594. PMID: 23349065; Белобородова Н.В. Интеграция метаболизма человека и его микро биома при критических состояниях. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 42–54. http://dx.doi.org/10.15360/1813 9779 2012 4 42; Белобородова Н.В., Оленин А.Ю., Ходакова А.С. Способ лаборатор ной диагностики сепсиса. Патент РФ на изобретение No2423704.; Urbschat A., Obermüller N., Haferkamp A. Biomarkers of kidney injury. Biomarkers. 2011; 16 (Suppl 1): S22 S30. http://dx.doi.org/10.3109/ 1354750X.2011.587129. PMID: 21707441; Мороз В.В., Белобородова Н.В., Хорошилов С.Е., Никулин А.В., Бедо ва А.Ю., Осипов А.А., Гецина М.Л., Саршор Ю.Н. Способ оценки эф фективности диализно фильтрационной очистки крови. Патент РФ на изобретение No2423704.; Хорошилов С.Е., Белобородова Н.В., Никулин А.В., Бедова А.Ю., Оси пов А.А., Гецина М.Л. Элиминация низкомолекулярных ароматиче ских метаболитов во время экстракорпоральной детоксикации у больных ОПН при сепсисе. Мат лы Девятой Междунар. конф. «Актуальные аспекты экстракорпорального очищения крови в ин тенсивной терапии». М.; 2014: 44–45.; Dellinger R.P., Levy M.M., Rhodes A., Annane D., Gerlach H., Opal S.M., Sevransky J.E., Sprung C.L., Douglas I.S., Jaeschke R., Osborn T.M., Nunnally M.E., Townsend S.R., Reinhart K., Kleinpell R.M., Angus D.C., Deutschman C.S., Machado F.R., Rubenfeld G.D., Webb S., Beale R.J., Vincent J.L., Moreno R.; Surviving Sepsis Campaign Guidelines Committee including The Pediatric Subgroup. Surviving Sepsis Campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock, 2012. Intensive Care Med. 2013; 39 (2): 165–228. http://dx.doi.org/10.1007/s00134 012 2769 8. PMID: 23361625; Белобородова Н.В., Мороз В.В., Бедова А.Ю., Оленин А.Ю., Карпова О.В., Гецина М.Л., Оленина Е.Г. Нормальный уровень сепсис ассо циированных фенилкарбоновых кислот в сыворотке крови челове ка. Биохимия. 2015; 80 (3): 449–455. http://dx.doi.org/10.1134/ S0006297915030128. PMID: 25761691; Белобородова Н.В., Оленин А.Ю., Ходакова А.С., Черневская Е.А., Хабиб О.Н. Происхождение и клиническое значение низкомолеку лярных фенольных метаболитов в сыворотке крови человека. Ане стезиология и реаниматология. 2012; 5: 65–72.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1482