-
1Academic Journal
Authors: S. V. Michurina, S. I. Kolesnikov, I. Yu. Ishchenko, S. A. Arkhipov, С. В. Мичурина, С. И. Колесников, И. Ю. Ищенко, С. А. Архипов
Contributors: Исследование поддержано бюджетным проектом Научно-исследовательского института клинической и экспериментальной лимфологии – филиала ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики СО РАН» (FWNR-2022-0009).
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 9, № 1 (2024); 203-213 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: Bcl-2/Bad, apoptosis, experimental hyperthermia, rat ovaries, corpus luteum, luteocytes, Bad, Bcl-2, апоптоз, экспериментальная гипертермия, яичники крыс, жёлтые тела, лютеоциты
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4614/2747; Бочкарева А.Л., Мичурина С.В., Коненков В.И., Бочкарев И.Г. Влияние мелатонина на фолликулярный аппарат и сосуды яичников крыс в условиях гипертермии. Морфология. 2015; 148(5): 71-76.; Duan L, Dong S, Huang K, Cong Y, Luo S, Zhang JZH. Computational analysis of binding free energies, hotspots and the binding mechanism of Bcl-xL/Bcl-2 binding to Bad/Bax. Phys Chem Chem Phys. 2021; 23(3): 2025-2037. doi:10.1039/d0cp04693k; Galluzzi L, Vitale I, Aaronson SA, Abrams JM, Adam D, Agostinis P, et al. Molecular mechanisms of cell death: Recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2018. Cell Death Differ. 2018; 25(3): 486-541. doi:10.1038/s41418-017-0012-4; Reiter RJ, Sharma R, Pires de Campos Zuccari DA, de Almeida Chuffa LG, Manucha W, Rodriguez C. Melatonin synthesis in and uptake by mitochondria: Implications for diseased cells with dysfunctional mitochondria. Future Med Chem. 2021; 13(4): 335-339. doi:10.4155/fmc-2020-0326; Michurina SV, Kolesnikov SI, Ishchenko IY, Bochkareva AL, Arkhipov SA. Effect of melatonin on expression of apoptosis regulator proteins Bcl-2 and Bad in ovarian follicular apparatus after high temperature exposure. Bull Exp Biol Med. 2021; 170(5): 598-603. doi:10.1007/s10517-021-05114-6; Michurina SV, Ishchenko IY, Arkhipov SA, Letyagin AY, Korolev MA, Zavjalov EL. The expression of apoptosis-regulating proteins Bcl-2 and Bad in liver cells of C57Bl/6 mice under lightinduced functional pinealectomy and after correction with melatonin. Vavilovskii Zhurnal Genet Selektsii. 2021; 25(3): 310-317. doi:10.18699/VJ21.034; Yang C, Liu Q, Chen Y, Wang X, Ran Z, Fang F, et al. Melatonin delays ovarian aging in mice by slowing down the exhaustion of ovarian reserve. Commun Biol. 2021; 4(1): 534. doi:10.1038/s42003-021-02042-z; Russo M, Forte G, Montanino Oliva M, Laganà AS, Unfer V. Melatonin and myo-inositol: supporting reproduction from the oocyte to birth. Int J Mol Sci. 2021; 22(16): 8433. doi:10.3390/ijms22168433; Kvetnoy I, Ivanov D, Mironova E, Evsyukova I, Nasyrov R, Kvetnaia T, et al. Melatonin as the cornerstone of neuroimmunoendocrinology. Int J Mol Sci. 2022; 23(3): 1835. doi:10.3390/ijms23031835; Zhang W, Wang Z, Zhang L, Zhang Z, Chen J, Chen W, et al. Melatonin stimulates the secretion of progesterone along with the expression of cholesterol side-chain cleavage enzyme (P450scc) and steroidogenic acute regulatory protein (StAR) in corpus luteum of pregnant sows. Theriogenology. 2018; 108: 297-305. doi:10.1016/j.theriogenology.2017.12.026; Pedreros M, Ratto M, Guerra M. Expression of functional melatonin MT(1) receptors in equine luteal cells: In vitro effects of melatonin on progesterone secretion. Reprod Fertil Dev. 2011; 23(3): 417-423. doi:10.1071/RD10137; Zhang ZL, Peng J, Yang ST, Chen JX, Wang CX, Tong DW. Expression of arylalkylamine n-acetyltransferase (AANAT) and acetylserotonin o-methyltransferase (ASMT) in the corpus luteum of pregnant sows and synthesis of melatonin in luteal cells. Cell Tissue Res. 2022; 388(1): 167-179. doi:10.1007/s00441-021-03556-y; Fang L, Li Y, Wang S, Yu Y, Li Y, Guo Y, et al. Melatonin induces progesterone production in human granulosa-lutein cells through upregulation of StAR expression. Aging (Albany NY). 2019; 11(20): 9013-9024. doi:10.18632/aging.102367; Wang J, Zhu T, Ma X, Wang Y, Liu J, Li G, et al. Melatonergic systems of AANAT, melatonin, and its receptor MT2 in the corpus luteum are essential for reproductive success in mammals. Biol Reprod. 2021; 104(2): 430-444. doi:10.1093/biolre/ioaa190; Ajayi AF, Akhigbe RE. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: An update. Fertil Res Pract. 2020; 6: 5. doi:10.1186/s40738-020-00074-3; Ефремов А.В., Пахомова Ю.В., Пахомов Е.А., Ибрагимов Р.Ш., Шорина Г.Н. Способ экспериментального моделирования общей гипертермии у мелких лабораторных животных: Патент № 2165105 С1 Рос. Федерация; МПК G09B 23/28 (2000.01). № 99126978/13; заявл. 22.12.1999; опубл. 10.04.2001. Бюл. № 10.; Yang L, Zhao Z, Cui M, Zhang L, Li Q. Melatonin restores the developmental competence of heat stressed porcine oocytes, and alters the expression of genes related to oocyte maturation. Animals (Basel). 2021; 11(4): 1086. doi:10.3390/ani11041086; Arend LS, Knox RV. Fertility responses of melatonintreated gilts before and during the follicular and early luteal phases when there are different temperatures and lighting conditions in the housing area. Anim Reprod Sci. 2021; 230: 106769. doi:10.1016/j.anireprosci.2021.106769; Bouroutzika E, Kouretas D, Papadopoulos S, Veskoukis AS, Theodosiadou E, Makri S, et al. Effects of melatonin administration to pregnant ewes under heat-stress conditions, in redox status and reproductive outcome. Antioxidants (Basel). 2020; 9(3): 266. doi:10.3390/antiox9030266; Chen Y, Shan X, Jiang H, Guo Z. Exogenous melatonin directly and indirectly influences sheep oocytes. Front Vet Sci. 2022; 9: 903195. doi:10.3389/fvets.2022.903195; Данилова М.В., Усольцева Е.Н. Значение гормона мелатонина эпифиза в поддержании здоровья женщин репродуктивного возраста (обзор). Акушерство, гинекология и репродукция. 2019; 13(4): 337-344. doi:10.17749/2313-7347.2019.13.4.337-344; Xing CH, Wang Y, Liu JC, Pan ZN, Zhang HL, Sun SC, et al. Melatonin reverses mitochondria dysfunction and oxidative stressinduced apoptosis of Sudan I-exposed mouse oocytes. Ecotoxicol Environ Saf. 2021; 225: 112783. doi:10.1016/j.ecoenv.2021.112783; Ma J, Wang J, Hu S, Li Y, Zhang Y, Yang Y, et al. Effects of melatonin on development and hormone secretion of sheep theca cells in vitro. Theriogenology. 2023; 198: 172-182. doi:10.1016/j.theriogenology.2022.12.036; Feng J, Ma WW, Li HX, Pei XY, Deng SL, Jia H, et al. Melatonin prevents cyclophosphamide-induced primordial follicle loss by inhibiting ovarian granulosa cell apoptosis and maintaining AMH expression. Front Endocrinol (Lausanne). 2022; 13: 895095. doi:10.3389/fendo.2022.895095; Ma M, Chen XY, Li B, Li XT. Melatonin protects premature ovarian insufficiency induced by tripterygium glycosides: Role of SIRT1. Am J Transl Res. 2017; 9(4): 1580-1602.; Goktepe O, Balcioglu E, Baran M, Cengiz O, Ceyhan A, Suna PA, et al. Protective effects of melatonin on female rat ovary treated with nonylphenol. Biotech Histochem. 2023; 98(1): 13-19. doi:10.1080/10520295.2022.2075566; Tamura H, Takasaki A, Taketani T, Tanabe M, Kizuka F, Lee L, et al. Melatonin as a free radical scavenger in the ovarian follicle. Endocr J. 2013; 60(1): 1-13. doi:10.1507/endocrj.ej12-0263; He C, Ma T, Shi J, Zhang Z, Wang J, Zhu K, et al. Melatonin and its receptor MT1 are involved in the downstream reaction to luteinizing hormone and participate in the regulation of luteinization in different species. J Pineal Res. 2016; 61(3): 279-290. doi:10.1111/jpi.12345; Wang X, Meng K, He Y, Wang H, Zhang Y, Quan F. Melatonin stimulates STAR expression and progesterone production via activation of the PI3K/AKT pathway in bovine theca cells. Int J Biol Sci. 2019; 15(2): 404-415. doi:10.7150/ijbs.27912; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4614
-
2Academic Journal
Authors: S. V. Michurina, S. I. Kolesnikov, I. Yu. Ishchenko, S. A. Arkhipov, С. В. Мичурина, С. И. Колесников, И. Ю. Ищенко, С. А. Архипов
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 1 (2022); 232-239 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: Bcl-2/Bad, experimental hyperthermia, rat ovaries, corpus luteum, Bad, Bcl-2, экспериментальная гипертермия, яичники крыс, жёлтые тела
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3321/2316; Al-Gubory KH, Garrel C, Faure P, Sugino N. Roles of antioxidant enzymes in corpus luteum rescue from reactive oxygen species-induced oxidative stress. Reprod Biomed Online. 2012; 25(6): 551-560. doi:10.1016/j.rbmo.2012.08.004; Makino A, Ozaki Y, Matsubara H, Sato T, Ikuta K, Nishizawa Y, et al. Role of apoptosis controlled by cytochrome c released from mitochondria for luteal function in human granulosa cells. Am J Reprod Immunol. 2005; 53(3): 144-152. doi:10.1111/j.1600-0897.2005.00258.x; Hussein MR. Apoptosis in the ovary: molecular mechanisms. Hum Reprod Update. 2005; 11(2): 162-177. doi:10.1093/humupd/dmi001; Зенкина В.Г., Каредина В.С., Солодкова О.А., Михайлов А.О. Регуляторы апоптоза и механизм их действия в женской гонаде. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2010; 7: 7-14.; Hernandez F, Peluffo MC, Bas D, Stouffer RL, Tesone M. Local effects of the sphingosine 1-phosphate on prostaglandin F2alpha-induced luteolysis in the pregnant rat. Mol Reprod Dev. 2009; 76(12): 1153-1164. doi:10.1002/mrd.21083; Al-Zi’abi MO, Fraser HM, Watson ED. Cell death during natural and induced luteal regression in mares. Reproduction. 2002; 23(1): 67-77.; Amelkina O, Zschockelt L, Painer J, Serra R, Villaespesa F, Braun BC, et al. Apoptosis-related factors in the luteal phase of the domestic cat and their involvement in the persistence of corpora lutea in lynx. PLoS One. 2015; 10(11): e0143414. doi:10.1371/journal.pone.0143414; Meng L, Jan SZ, Hamer G, van Pelt AM, van der Stelt I, Keijer J, et al. Preantral follicular atresia occurs mainly through autophagy, while antral follicles degenerate mostly through apoptosis. Biol Reprod. 2018; 99(4): 853-863. doi:10.1093/biolre/ioy116; Zheng Y, Ma L, Liu N, Tang X, Guo S, Zhang B, et al. Autophagy and apoptosis of porcine ovarian granulosa cells during follicular development. Animals (Basel). 2019; 9(12): 1111. doi:10.3390/ani912111; Мичурина С.В., Колесников С.И., Бочкарева А.Л., Архипов С.А., Ищенко И.Ю. Экспрессия белков семейства Bcl-2 в фолликулярном аппарате яичников в острый период после экспериментальной гипертермии. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017; 164(12): 754-758.; Мичурина С.В., Колесников С.И., Бочкарева А.Л., Ищенко И.Ю., Архипов С.А. Экспрессия белков-регуляторов апоптоза Bcl-2 и Bad в фолликулярном аппарате яичников крыс в восстановительном периоде после экстремальной гипертермии. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2019; 168(8): 155-160.; Мичурина С.В., Колесников С.И., Ищенко И.Ю., Бочкарева А.Л., Архипов С.А. Влияние мелатонина на экспрессию белковрегуляторов апоптоза Bcl-2 и Bad в фолликулярном аппарате яичников после воздействия высокой температуры. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2020;170(11): 552-558.; Ajayi AF, Akhigbe RE. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an Update. Fertil Res Pract. 2020; 6: 5. doi:10.1186/s40738-020-00074-3; Cora MC, Kooistra L, Travlos G. Vaginal cytology of the laboratory rat and mouse: Review and criteria for the staging of the estrous cycle using stained vaginal smears. Toxicol Pathol. 2015; 43(6): 776-793. doi:10.1177/0192623315570339; Ефремов А.В., Пахомова Ю.В., Пахомов Е.А., Ибрагимов Р.Ш., Шорина Г.Н. Способ экспериментального моделирования общей гипертермии у мелких лабораторных животных: Патент № 2165105 Рос. Федерация; МПК G09B 23/28 (2000.01); заявитель и патентообладатель Новосибирская государственная медицинская академия. № 99126978/13; заявл. 22.12.1999; опубл. 10.04.2001. 2001; (10).; Улащик В.С. Локальная гипертермия в онкологии: использование магнитного поля, лазерного излучения, ультразвука. Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. 2014; 91(2): 48-57.; Lellahi SM, Rosenlund IA, Hedberg A, Kiær LT, Mikkola I, Knutsen E, et al. The long noncoding RNA NEAT1 and nuclear paraspeckles are up-regulated by the transcription factor HSF1 in the heat shock response. J Biol Chem. 2018; 293(49): 18965- 18976. doi:10.1074/jbc.RA118.004473; Gu ZT, Li L, Wu F, Zhao P, Yang H, Liu YS, et al. Heat stress induced apoptosis is triggered by transcription-independent p53, Ca(2+) dyshomeostasis and the subsequent Bax mitochondrial translocation. Sci Rep. 2015; 5: 11497. doi:10.1038/srep11497; Wang Y, Yang C, Elsheikh NAH, Li C, Yang F, Wang G, et al. HO-1 reduces heat stress-induced apoptosis in bovine granulosa cells by suppressing oxidative stress. Aging (Albany NY). 2019; 11(15): 5535-5547. doi:10.18632/aging.102136; Luo M, Li L, Xiao C, Sun Y, Wang GL. Heat stress impairs mice granulosa cell function by diminishing steroids production and inducing apoptosis. Mol Cell Biochem. 2016; 412(1-2): 81-90. doi:10.1007/s11010-015-2610-0; Bowolaksono A, Fauzi M, Sundari AM, Pustimbara A, Lestari R, Abinawanto, et al. The effects of luteinizing hormone as a suppression factor for apoptosis in bovine luteal cells in vitro. Reprod Domest Anim. 2021; 56(5): 744-753. doi:10.1111/rda.13913; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3321
-
3Academic Journal
Subject Terms: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ГИПЕРТЕРМИЯ, ПЕЧЕНЬ, РЕГИОНАРНЫЕ ЛИМФАТИЧЕСКИЕ УЗЛЫ
File Description: text/html
-
4Academic Journal
Source: Сибирский научный медицинский журнал.
Subject Terms: ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ГИПЕРТЕРМИЯ, ПЕЧЕНЬ, РЕГИОНАРНЫЕ ЛИМФАТИЧЕСКИЕ УЗЛЫ, 3. Good health
File Description: text/html
