Search Results - "черно-пестрая порода"

Contributors: the work was supported by a grant from the Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education of the Kostroma State Agricultural Academy (topic «Assessment of the biological usefulness of feed and its use in the organization of feeding dairy cattle»)., работа выполнена по гранту ФГБОУ ВО Костромской ГСХА (тема «Оценка биологической полноценности кормов и ее использование при организации кормления молочного скота»).

Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 24, № 3 (2023); 459-467 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 24, № 3 (2023); 459-467 ; 2500-1396 ; 2072-9081

File Description: application/pdf

Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1370/675; Позднякова В. Ф., Гусева Т. Ю., Щеголев П. О., Масленникова А. В. Современные кормовые добавки в животноводстве и их безопасность. Вестник МАНЭБ. 2018;23(3):46-50. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36310031 EDN: YLRCNF; Коновалов Е. В., Хамидуллина А. Ш. Взаимосвязь молочной продуктивности с расщепляемостью протеина в рубце. Инновационное развитие АПК Северного Зауралья: сб. мат-лов региональной науч.-практ. конф. Молодых ученых. Тюмень: ГАУ Северного Зауралья, 2013. С. 311-314. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=23260688 EDN: TPAJAL; Великанов В. В., Марусич А. Г., Суденкова Е. Н. Влияние оптимизации кормления лактирующих коров на биохимические показатели крови и состав молока. Животноводство и ветеринарная медицина. 2021;(1(40)):3-9. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=44906427 EDN: DKKRID; Гамко Л. Н., Менякина А. Г., Подольников В. Е. Стратегия кормления лактирующих коров в период раздоя в условиях сельскохозяйственных предприятий. Вестник Брянской государственной сельскохозяйственной академии. 2021;(3(85)):21-26. DOI: https://doi.org/10.52691/2500-2651-2021-85-3-21-26 EDN: KYXOCU; Кононенко С., Душкин Е., Потехин С., Кондратьева Л. Переваримостью кормов в рубце можно управлять. Животноводство России. 2014;(S1):47-49. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=22531656 EDN: SZBONN; Баранов А. В., Парамонова Н. Ю., Баранова Н. С., Гусева Т. Ю., Королев А. А., Казаков Д. С. Костромская порода крупного рогатого скота в новом столетии: состояние и перспективы (обзор). Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2019;20(6):533-547. DOI: https://doi.org/10.30766/2072-9081.2019.20.6.533-547 EDN: YICFTZ; Костомахин Н. М. Нарушение обмена веществ у дойных коров как показатель менеджмента фермы. Главный зоотехник. 2013;(6):52-56.; Костомахин Н. М. Научные основы содержания и кормления коров с различным уровнем продуктивности. Главный зоотехник. 2012;(6):27-30.; Mikolaychik I. N., Morozova L. A., Kahikalo V. G., Ovchinnikova L. Yu., Yarmots L. P., Karmatskikh Yu. A., Charykov V. I. Microbiological supplements for the metabolic rate correction in calves. International Transaction Journal of Engineering, Management and Applied Sciences and Technologies. 2020;11(2):11A02S. DOI: https://doi.org/10.14456/ITJEMAST.2020.39; Фирсов В. И., Кузьмина Л. Н., Кузьмин С. С. Доступность белка кормов для переваривания в кишечнике высокопродуктивных голштин-холмогорских коров. Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных: мат-лы международ. научн.-практ. конф. Краснодар, 2012. Ч. 2. С. 141-143. DOI: https://doi.org/10.30906/1999-5636-2018-11-36-40; David P., Casper D., Harouna A., Maiga T., Michael J., Brouk T., David J., Schingoethet N. Synchronization of carbohydrate and protein sources on fermentation and passage rates in dairy cows. Journal of Dairy Science. 1999;82(8):1779-1790. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(99)75408-1; Харитонов Е. Л., Березин А. С., Лысова Е. А. Влияние синхронизации распада в рубце углеводов и азотистых компонентов корма на состояние метаболизма и продуктивность у лактирующих коров. Проблемы биологии продуктивных животных. 2021;(3):82-91. DOI: https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2021.3.82-91 EDN: KNZTKG; National Research Council (NRC). Nutrient requirements of dairy cattle. 7th ed. Washington DC: National Academy Press; 2001. 408 p.; Casper D. P., Schingoethe D. J., Brouk M. J., Maiga H. A. Nonstructural carbohydrate and undegradable protein sources in the diet: growth responses of dairy heifers. Journal of Dairy Science. 1994;77(9):2595-2604. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(94)77200-3; Филинская О. В., Кеворкян С. А. Практические методы контроля полноценности кормления высокопродуктивных коров в условиях современного комплекса. Вестник АПК Верхневолжья. 2018;(4(44)):30-36. Режим работы: https://elibrary.ru/item.asp?id=36813748 EDN: YUMJRB

Availability: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1370
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2023.24.3.459-467

View record from BASE

13

Academic Journal

Assessment of genetic diversity and phylogenetic relationships in Black Pied cattle in the Novosibirsk Region using microsatellite markers ; Оценка генетического разнообразия и филогенетических отношений чернопестрого скота Новосибирской области с использованием микросателлитных маркеров

Authors: R. B. Aitnazarov, T. M. Mishakova, N. S. Yudin, Р. Б. Айтназаров, Т. М. Мишакова, Н. С. Юдин

Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 25, № 8 (2021); 831-838 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 25, № 8 (2021); 831-838 ; 2500-3259 ; 10.18699/VJ21.091

Subject Terms: сохранение биоразнообразия, Black Pied breed, Novosibirsk Region, microsatellite, genetic diversity, diversity preservation, чернопестрая порода, Новосибирская область, микросателлит, генетическое разнообразие

File Description: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3201/1569; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3201

Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3201
https://doi.org/10.18699/VJ21.096

View record from BASE

14

Academic Journal

ВЛИЯНИЕ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ СУХОСТОЙНОГО ПЕРИОДА НА ПРОДУКТИВНОСТЬ И ВОСПРОИЗВОДСТВО КОРОВ

Source: Зоотехния.

Subject Terms: 2. Zero hunger, воспроизводительные функции, молочная продуктивность, удой на 1 дойный день, черно-пестрая порода, Сухостойный период, коровы, сервис-период

15

Academic Journal

МОЛОЧНАЯ ПРОДУКТИВНОСТЬ КОРОВ СЫЧЕВСКОЙ И ЧЕРНО-ПЕСТРОЙ ПОРОД РАЗНЫХ ЛИНИЙ

Source: Зоотехния.

Subject Terms: 2. Zero hunger, продуктивность, стандарт породы, генеалогическая структура, сычевская порода, черно-пестрая порода, популяция

16

Academic Journal

НАРУШЕНИЕ ОБМЕНА ВЕЩЕСТВ, КАК ОДИН ИЗ ФАКТОРОВ, СНИЖАЮЩИХ ВОСПРОИЗВОДИТЕЛЬНЫЕ СПОСОБНОСТИ КОРОВ ЧЕРНО-ПЕСТРОЙ ПОРОДЫ

Source: Зоотехния.

Subject Terms: 2. Zero hunger, воспроизводительные качества, метаболизм, молочный скот, черно-пестрая порода, холестерин, сервис-период

17

Academic Journal

Откорм бычков черно-пестрой породы по природоподобной технологии

Subject Terms: 2. Zero hunger, бычки, safety, gobies, голштинизированная черно-пестрая порода, мясная продуктивность, meat productivity, природоподобная умеренно-интенсивная и интенсивная технологии, nature-like moderately intensive and intensive technologies, Holsteinized black-and-white breed, физико-химические показатели, безопасность, physical and chemical indicators

18

Academic Journal

Селекционно-генетические параметры черно-пестрого скота Костанайской области

Subject Terms: mass fraction of fat, удой за 305 дней лактации, mass fraction of protein, milk yield for 305 days of lactation, black-and-white breed, черно-пестрая порода, массовая доля жира, массовая доля белка

File Description: application/pdf

Access URL: https://rep.bsatu.by/handle/doc/14211

View record at OpenAIRE

19

Academic Journal

Single nucleotide polymorphism rs110861313 in the intergenic region of chromosome 23 is associated with the development of leukosis in the Russian Black Pied cattle ; Ассоциация однонуклеотидного полиморфизма rs110861313 в межгенном районе хромосомы 23 с развитием лейкоза у крупного рогатого скота черно-пестрой породы

Authors: R. B. Aitnazarov, E. V. Ignatieva, T. A. Agarkova, N. G. Dvoeglazov, N. A. Osipova, V. V. Khramtsov, N. S. Yudin, Р. Б. Айтназаров, Е. В. Игнатьева, Т. А. Агаркова, Н. Г. Двоеглазов, Н. А. Осипова, В. В. Храмцов, Н. С. Юдин

Contributors: This work was supported by the Integrated Program of Basic Research, SB RAS.

Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 23, № 8 (2019); 999-1005 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 23, № 8 (2019); 999-1005 ; 2500-3259

Subject Terms: ассоциация, Russian Black Pied cattle, bovine leucosis, virus carrier, persistent lymphocytosis, single nucleotide polymorphism, rs110861313, association, черно-пестрая порода, лейкоз, вирусоноситель, персистентный лимфоцитоз, однонуклеотидный полиморфизм

File Description: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2393/1325; Володина Ю.Л., Штиль А.А. Казеинкиназа 2 – универсальный регулятор выживаемости клеток. Молекуляр. биология. 2012; 46(3):423-433.; Методические указания по диагностике лейкоза крупного рогатого скота (утв. Минсельхозом РФ 23.08.2000 № 13-7-2/2130). Доступно по адресу: http://www.consultant.ru/cons/cgi/online.cgi?req=doc&base=EXP&n=371364#08727407013115032. Проверено 18 сентября 2019 г.; Юдин Н.С., Бархаш А.В., Максимов В.Н., Игнатьева Е.В., Ромащенко А.Г. Генетическая предрасположенность человека к заболеваниям, вызываемым флавиврусами. Молекуляр. биология. 2018а;52(2):190-209. DOI 10.7868/S0026898418020039.; Юдин Н.С., Воевода М.И. Молекулярно-генетические маркеры экономически важных признаков у молочного скота. Генетика. 2015;51(5):600-612. DOI 10.7868/S0016675815050082.; Юдин Н.С., Подколодный Н.Л., Агаркова Т.А., Игнатьева Е.В. Приоритизация генов, ассоциированных с патогенезом лейкоза у крупного рогатого скота. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2018б;22(8):1063-1069. DOI 10.18699/VJ18.451.; Abdalla E.A., Rosa G.J., Weigel K.A., Byrem T. Genetic analysis of leukosis incidence in United States Holstein and Jersey populations. J. Dairy Sci. 2013;96(9):6022-6029. DOI 10.3168/jds.2013-6732.; Brym P., Bojarojć-Nosowicz B., Oleński K., Hering D.M., Ruść A., Kaczmarczyk E., Kamiński S. Genome-wide association study for host response to bovine leukemia virus in Holstein cows. Vet. Immunol. Immunopathol. 2016;175:24-35. DOI 10.1016/j.vetimm.2016.04.012.; Burny A., Cleuter Y., Kettmann R., Mammerickx M., Marbaix G., Portetelle D., Broeke A., Willems L., Thomas R. Bovine leukemia: facts and hypotheses derived from the study of an infectious cancer. Vet. Microbiol. 1988;17:197-218.; Carignano H.A., Roldan D.L., Beribe M.J., Raschia M.A., Amadio A., Nani J.P., Gutierrez G., Alvarez I., Trono K., Poli M.A., Miretti M.M. Genome-wide scan for commons SNPs affecting bovine leukemia virus infection level in dairy cattle. BMC Genomics. 2018; 19(1):142. DOI 10.1186/s12864-018-4523-2.; Ferrer J.F. Bovine lymphosarcoma. Adv. Vet. Sci. Comp. Med. 1980; 24:1-68.; Gentles A.J., Newman A.M., Liu C.L., Bratman S.V., Feng W., Kim D., Nair V.S., Xu Y., Khuong A., Hoang C.D., Diehn M., West R.B., Plevritis S.K., Alizadeh A.A. The prognostic landscape of genes and infiltrating immune cells across human cancers. Nat. Med. 2015; 21(8):938-945. DOI 10.1038/nm.3909.; Gillet N., Florins A., Boxus M., Burteau C., Nigro A., Vandermeers F., Balon H., Bouzar A.B., Defoiche J., Burny A., Reichert M., Kettmann R., Willems L. Mechanisms of leukemogenesis induced by bovine leukemia virus: prospects for novel anti-retroviral therapies in human. Retrovirology. 2007;4:18.; Hamurcu Z., Ashour A., Kahraman N., Ozpolat B. FOXM1 regulates expression of eukaryotic elongation factor 2 kinase and promotes proliferation, invasion and tumorgenesis of human triple negative breast cancer cells. Oncotarget. 2016;7(13):16619-16635. DOI 10.18632/oncotarget.7672.; Hosking L., Lumsden S., Lewis K., Yeo A., McCarthy L., Bansal A., Riley J., Purvis I., Xu C.F. Detection of genotyping errors by Hardy–Weinberg equilibrium testing. Eur. J. Hum. Genet. 2004;12(5): 395-399.; Kataoka K., Nagata Y., Kitanaka A., Shiraishi Y., Shimamura T., Yasunaga J., Totoki Y., Chiba K., Sato-Otsubo A., Nagae G., Ishii R., Muto S., Kotani S., Watatani Y., Takeda J., Sanada M., Tanaka H., Suzuki H., Sato Y., Shiozawa Y., Yoshizato T., Yoshida K., Makishima H., Iwanaga M., Ma G., Nosaka K., Hishizawa M., Itonaga H., Imaizumi Y., Munakata W., Ogasawara H., Sato T., Sasai K., Muramoto K., Penova M., Kawaguchi T., Nakamura H., Hama N., Shide K., Kubuki Y., Hidaka T., Kameda T., Nakamaki T., Ishiyama K., Miyawaki S., Yoon S.S., Tobinai K., Miyazaki Y., TakaoriKondo A., Matsuda F., Takeuchi K., Nureki O., Aburatani H., Watanabe T., Shibata T., Matsuoka M., Miyano S., Shimoda K., Ogawa S. Integrated molecular analysis of adult T cell leukemia/lymphoma. Nat. Genet. 2015;47(11):1304-1315. DOI 10.1038/ng.3415.; Kulakovskiy I.V., Vorontsov I.E., Yevshin I.S., Sharipov R.N., Fedorova A.D., Rumynskiy E.I., Medvedeva Y.A., Magana-Mora A., Bajic V.B., Papatsenko D.A., Kolpakov F.A., Makeev V.J. HOCOMOCO: towards a complete collection of transcription factor binding models for human and mouse via large-scale ChIP-Seq analysis. Nucleic Acids Res. 2018;46(D1):D252-D259. DOI 10.1093/nar/gkx1106.; Li X., Ma K., Song S., Shen F., Kuang T., Zhu Y., Liu Z. Tight correlation between FoxM1 and FoxP3+ Tregs in gastric cancer and their clinical significance. Clin. Exp. Med. 2018;18(3):413-420. DOI 10.1007/s10238-018-0505-6.; Liang J., Liu Z., Zou Z., Tang Y., Zhou C., Yang J., Wei X., Lu Y. The correlation between the immune and epithelial-mesenchymal transition signatures suggests potential therapeutic targets and prognosis prediction approaches in kidney cancer. Sci. Rep. 2018;8(1): 6570. DOI 10.1038/s41598-018-25002-w.; Loeb M. Host genomics in infectious diseases. Infect. Chemother. 2013;45(3):253-259. DOI 10.3947/ic.2013.45.3.253.; Merkulova T.I., Oshchepkov D.Y., Ignatieva E.V., Ananko E.A., Levitsky V.G., Vasiliev G.V., Klimova N.V., Merkulov V.M., Kolchanov N.A. Bioinformatical and experimental approaches to investigation of transcription factor binding sites in vertebrate genes. Biochemistry (Mosc). 2007;72(11):1187-1193.; Nakashima M., Tohyama J., Nakagawa E., Watanabe Y., Siew C.G., Kwong C.S., Yamoto K., Hiraide T., Fukuda T., Kaname T., Nakabayashi K., Hata K., Ogata T., Saitsu H., Matsumoto N. Identification of de novo CSNK2A1 and CSNK2B variants in cases of global developmental delay with seizures. J. Hum. Genet. 2019;64(4):313-322. DOI 10.1038/s10038-018-0559-z.; Nandi D., Cheema P.S., Jaiswal N., Nag A. FoxM1: Repurposing an oncogene as a biomarker. Semin. Cancer Biol. 2018;52(Pt. 1):74-84. DOI 10.1016/j.semcancer.2017.08.009.; Neff M.M., Turk E., Kalishman M. Web-based primer design for single nucleotide polymorphism analysis. Trends Genet. 2002;18(12):613-615.; Niu H.M., Yang P., Chen H.H., Hao R.H., Dong S.S., Yao S., Chen X.F., Yan H., Zhang Y.J., Chen Y.X., Jiang F., Yang T.L., Guo Y. Comprehensive functional annotation of susceptibility SNPs prioritized 10 genes for schizophrenia. Transl. Psychiatry. 2019;9(1):56. DOI 10.1038/s41398-019-0398-5.; Poirier K., Hubert L., Viot G., Rio M., Billuart P., Besmond C., Bienvenu T. CSNK2B splice site mutations in patients cause intellectual disability with or without myoclonic epilepsy. Hum. Mutat. 2017; 38(8):932-941. DOI 10.1002/humu.23270.; Sakaguchi Y., Uehara T., Suzuki H., Kosaki K., Takenouchi T. Truncating mutation in CSNK2B and myoclonic epilepsy. Hum. Mutat. 2017;38(11):1611-1612. DOI 10.1002/humu.23307.; Sambrook J., Russell D.W. The Condensed Protocols from Molecular Cloning: a Laboratory Manual, Cold Spring Harbor; New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2006.; Stepanova T.V. Analysis of the economic damage caused by bovine leukemia from 2010 to 2014 in the Russian Federation. Russ. J. Agric. Socio-Economic Sci. 2016;8(56):49-56. DOI 10.18551/rjoas.2016-08.08.; Wang I.C., Chen Y.J., Hughes D.E., Ackerson T., Major M.L., Kalinichenko V.V., Costa R.H., Raychaudhuri P., Tyner A.L., Lau L.F. FoxM1 regulates transcription of JNK1 to promote the G1/S transition and tumor cell invasiveness. J. Biol. Chem. 2008;283(30):20770-20778. DOI 10.1074/jbc.M709892200.; Yang C.P., Li X., Wu Y., Shen Q., Zeng Y., Xiong Q., Wei M., Chen C., Liu J., Huo Y., Li K., Xue G., Yao Y.G., Zhang C., Li M., Chen Y., Luo X.J. Comprehensive integrative analyses identify GLT8D1 and CSNK2B as schizophrenia risk genes. Nat. Commun. 2018;9(1):838. DOI 10.1038/s41467-018-03247-3.; Zhou J., Wang Y., Wang Y., Yin X., He Y., Chen L., Wang W., Liu T., Di W. FOXM1 modulates cisplatin sensitivity by regulating EXO1 in ovarian cancer. PLoS One. 2014;9(5):e96989. DOI 10.1371/journal.pone.0096989.; Zhu Y., Luo G., Jiang B., Yu M., Feng Y., Wang M., Xu N., Zhang X. Apolipoprotein M promotes proliferation and invasion in non-small cell lung cancers via upregulating S1PR1 and activating the ERK1/2 and PI3K/AKT signaling pathways. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2018;501(2):520-526. DOI 10.1016/j.bbrc.2018.05.029.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2393

Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/2393
https://doi.org/10.18699/VJ19.576

View record from BASE

20

Academic Journal