-
1Academic Journal
-
2Academic Journal
Authors: A. P. Galichenko, А. П. Галиченко
Source: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 1 (2024); 34-40 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 1 (2024); 34-40 ; 2072-6724
Subject Terms: гетерозис, hybrids, parental forms, economically advantageous traits, ecological-geographical zone, degree of phenotypic dominance, heterosis, гибриды, родительские формы, хозяйственно полезные признаки, экологогеографическая зона, степень фенотипического доминирования
File Description: application/pdf
Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2235/974; Фокина Е.М., Титов С.А., Губенко О.А. Наследование хозяйственно ценных признаков и гетерозис у гибридов сои F1 // Дальневосточный аграрный вестник. – 2020. – № 3 (55). – С. 76–82. – DOI:10.24411/1999-6837-2020-13036.; Синеговская В.Т. Вклад фундаментальных исследований в совершенствование селекционного процесса при создании сортов сои на Амуре // Достижения науки и техники АПК. – 2023. – Т. 37, № 6. – С. 5–11. – DOI:10.53859/02352451_2023_37_6_5.; Фокина Е.М., Беляева Г.Н., Разанцвей Д.Р. Использование зародышевой плазмы нетипичных форм сои в селекции // Достижения науки и техники АПК. – 2020. – Т. 34, № 8. – С. 8–15. – DOI:10.24411/0235-2451-2020-10801.; Минькач Т.В., Оборская Ю.В. Наследование продуктивности одного растения у межвидовых гибридов сои // Дальневосточный аграрный вестник. – 2022. – № 2 (62). – С. 24–29. – DOI:10.22450/19996837_2022_2_24.; Rani A., Kumar V. Soybean Breeding // Fundamentals of Field Crop Breeding. – Springer, Singapore, 2022. – DOI:10.1007/978-981-16-9257-4_17.; Alsanie S. Soybean Genome // Oil Crop Genomics. – Springer, Cham, 2021. – DOI:10.1007/978-3-030-70420-9_1.; Genetic studies on seed coat permeability and viability in RILs derived from an inter-specific cross of soybean [Glycine max (L.) Merrill] / A. Kumar, S. Chandra, A. Talukdar [et al.] // Indian J Genet. – 2019. – N 79 (1). – P. 48–55. – DOI:10.31742/IJGPB.79.1.7.; Селекционно-генетический анализ гибридов сои первого – третьего поколения / Е.С. Бутовец, Е.А. Васина, Г.О. Кукуруза [и др.] // Дальневосточный аграрный вестник. – 2021. – № 4 (60). – С. 15–22. – DOI:10.24412/1999-6837-2021-4-15-22.; Калицкая Н.Г., Синеговская В.Т., Кобозева Т.П. Оценка межвидовых и внутривидовых гибридов сои первого поколения // Вестник российской сельскохозяйственной науки. – 2021. – № 6. – С. 4–7. – DOI:10.30850/vrsn/2021/6/4-7.; Соя на Дальнем Востоке / А.П. Ващенко, Н.В. Мудрик, П.П. Фисенко [и др.]. – Владивосток: Дальнаука, 2014. – 435 с.; Characterization of the Common Genetic Basis Underlying Seed HilumSize, Yield, and Quality Traits in Soybean / Q. Zhao, X. Shi, L. Yan [et al.] // Frontiers in Plant Science. – 2021. – N 12. – P. 183. – DOI:10.3389/fpls.2021.610214.; Genomic resources in plant breeding for sustainable agriculture / M. Thudi, R. Palakurthi, J.C. Schnable [et al.] // Journal of Plant Physiology. – 2020. – No. 257. – P. 1–67. – DOI:10.1016j.jplph.2020.153351.; Кошкарова Т.С., Толоконников В.В., Вронская Л.В. Селекционное улучшение сортов сои на короткостебельность // Известия НВАУК. – 2022. – № 2 (66). – С. 118–126. – DOI:10.32786/2071-9485-2022-02-14.; Лепехов С.Б. Методы подбора пар для скрещивания в селекции на урожайность у самоопыляющихся культур // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции. – 2017. – Т. 178, № 4. – С. 76–89. – DOI:10.30901/2227-8834-2017-4-76-89.; Рязанцева Т.П., Малыш Л.К. Некоторые вопросы создания исходного материала для селекции сои в Приамурье // Некоторые вопросы селекции и биологии сои. – Благовещенск, 1975. – С. 30–34.; Малыш К.К., Рязанцева Т.П. Некоторые вопросы биологии сои, связанные с методикой гибридизации // Труды Амурской сельскохозяйственной опытной станции. – Хабаровск, 1968. – Т. 2, вып. 1. – С. 38–48.; Федин М.А., Силис Д.Я., Смиряев А.В. Статистические методы генетического анализа. – М.: Колос, 1980. – 207 с.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/2235
-
3Academic Journal
Source: СОВРЕМЕННЫЕ ДОСТИЖЕНИЯ И АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ В КОНЕВОДСТВЕ. :91-97
Subject Terms: conformation, breeding mare, линия, live weight, новоалтайская породы лошадей, dynamics, хозяйственно полезные признаки, economically useful traits, живая масса, племенная кобыла, динамика, Novoaltaiskaya breed of horses, line, measurements, экстерьер, промеры
-
4Academic Journal
Authors: A. A. Tevchenkov, Z. S. Fedorova, А. А. Тевченков, З. С. Федорова
Contributors: The research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of the V. S. Pustovoit All-Russian Research Institute of Oil Crops (theme No. 0528(0767)-2019-0088). The authors thank the reviewers for their contribution to the peer review of this work., Работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный научный центр «Всероссийский научно-исследовательский институт масличных культур имени В. С. Пустовойтa» (тема № 0528(0767)-2019-0088). Авторы благодарят рецензентов за их вклад в экспертную оценку этой работы.
Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 23, № 6 (2022); 796-804 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 23, № 6 (2022); 796-804 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Subject Terms: хозяйственно полезные признаки, field germination, plant height, yield, correlation, agronomic traits, полевая всхожесть, высота растений, урожайность, корреляционная связь
File Description: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1172/614; Синеговский М. О. Роль правовой защиты новых сортов сои в современных условиях. Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2022;(3):9-12. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=48559874; Лукомец В. М., Кочегура А. В., Баранов В. Ф., Махонин В. Л. Соя в России − действительность и возможность. Краснодар: ВНИИ масличных культур им. В. С. Пустовойта, 2013. 99 с.; Белышкина М. Е., Кобозева Т. П., Гуреева Е. В. Рост и развитие сортов сои северного экотипа в зависимости от влияния лимитирующих факторов вегетационного периода. Аграрный научный журнал. 2020;(9):4-9. DOI: https://doi.org/10.28983/asj.y2020i9pp4-9; Федоров В. Ф., Федорова З. С. Перспективы интродукции сои в Калужской области. Земледелие. 2006;(6):32-33.; Гуреева Е. В. Изучение и подбор исходного материала сои для создания новых сортов. Аграрная наука. 2018;(4):38-40. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=34855839; Гуреева Е. В. Влияние метеорологических условий на хозяйственно ценные признаки сои. Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2021;(1):28-31. DOI: https://doi.org/10.30850/vrsn/2021/1/28-31; Лукомец В. М., Зеленцов С. В., Бочкарев Н. И., Трунова М. В. Адаптивная селекция масличных культур. Теория и практика адаптивной селекции растений (Жученковские чтения VI): сб. научн. тр. мат-лов Международ. научн.-практ. конф. Краснодар: Кубанский ГАУ имени И. Т. Трубилина, 2021. С. 22-25. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=47173019; Трунова М. В. Признаки отбора сортов сои в селекционном питомнике в зависимости от продолжительности вегетационного периода. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. 2018;(4(176)):23-26. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=36853193; Зеленцов С. В., Мошненко Е. В., Бубнова Л. А., Зеленцов В. С. Некоторые аспекты устойчивости растений к отрицательным температурам на примере сои и масличного льна. Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. 2018;(2(174)):55-70. DOI: https://doi.org/10.25230/2412-608X-2018-2-174-55-70; Зеленцов С. В. Методические основы селекционного процесса у сои и его улучшающие модификации во ВНИИМК (обзор). Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. 2020;(2(182)):128-143. DOI: https://doi.org/10.25230/2412-608X-2020-2-182-128-143; Гуреева Е. В. Оценка селекционных номеров сои. Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2019;(1):24-26. DOI: https://doi.org/10.30850/vrsn/2019/1/24-26; Самсалиев А. Б., Самсалиев К. А., Тунгучбаева Р. Н., Намазбекова С. Ш. Новые районированные отечественные сорта сои. Вестник Кыргызского национального аграрного университета им. К. И. Скрябина. 2018;(2):64-69. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=34908196; Вишнякова М. А., Сеферова И. В., Самсонова М. Г. Требования к исходному материалу для селекции сои в контексте современных биотехнологий (обзор). Сельскохозяйственная биология. 2017;52(5):905-916. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2017.5.905rus; Жаркова С. В., Манылова О. В. Формирование густоты стояния растений и урожайности семян сои в условиях Алтайского края. Овощи России. 2021;(6):92-97. DOI: https://doi.org/10.18619/2072-9146-2021-6-92-97; Шафигуллин Д. Р., Романова Е. В., Гинс М. С., Пронина Е. П., Гинс В. К. Оценка и подбор исходного материала для селекции сои на хозяйственно ценные признаки в условиях Центрального района Европейской части России. Овощи России. 2016;(2):28-32. DOI: https://doi.org/10.18619/2072-9146-2016-2-28-32; Сихарулидзе Т. Д., Храмой В. К. Влияние температурного режима на продолжительность вегетационного периода и урожайность сои в условиях Центрального Нечерноземья. Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2017;(4):32-39. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=30538587
-
5Academic Journal
Source: Проблемы биологии продуктивных животных.
Subject Terms: 2. Zero hunger, хозяйственно-полезные признаки, gene polymorphism, ESR1, свиньи, IGF2, RT-PCR, pigs, ПЦР-РВ, полиморфизм генов, productive traits
-
6Academic Journal
Source: Horse breeding and equestrian sports. :12-14
Subject Terms: conformation, хозяйственно-полезные признаки, линия, live weight, genealogical structure, economically useful traits, живая масса, племенная кобыла, генеалогическая структура, Novoaltaiskaya breed of horses, line, новоалтайская порода лошадей, measurements, экстерьер, промеры, brood mare
-
7Academic Journal
Authors: G. M. Mousalitin, V. A. Boradoulina, Zh. V. Kouzikeev
Source: Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, Vol 177, Iss 2, Pp 47-54 (2018)
Subject Terms: ячмень, коллекция, селекция, хозяйственно полезные признаки, сортообразцы, продуктивность, устойчивость к болезням, barley, collection, breeding, agronomic traits, accessions, productivity, disease resistance, Biotechnology, TP248.13-248.65, Botany, QK1-989
File Description: electronic resource
-
8Academic Journal
Authors: N. V. Deines
Source: Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, Vol 178, Iss 4, Pp 36-42 (2018)
Subject Terms: овес, коллекция, образец, линия, хозяйственно полезные признаки, продуктивность, oat, collection, accession, line, agronomic traits, productivity, Biotechnology, TP248.13-248.65, Botany, QK1-989
File Description: electronic resource
-
9Academic Journal
Authors: O. A. Koshkina, T. E. Deniskova, N. A. Zinovieva, О. А. Кошкина, Т. Е. Денискова, Н. А. Зиновьева
Contributors: The review was prepared within the framework of the state task of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation according to the theme No. 0445-2019-0026 (AAAA-A18-118021590138-1)., Настоящий обзор подготовлен в рамках выполнения государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ по теме № 0445-2019-0026 (АААА-А18-118021590138-1).
Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 21, № 4 (2020); 355-368 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 21, № 4 (2020); 355-368 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Subject Terms: хозяйственно полезные признаки, genome organization, quantitative trait loci (QTL), DNA chips, economically significant traits, организация генома, локусы количественных признаков (QTL), ДНК-чипы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/574/399; Feuk L., Carson A. R., Scherer S. W. Structural variation in the human genome. Nat Rev Genet. 2006;7(2):85-97. DOI: https://doi.org/10.1038/nrg1767; Clop A., Vidal O., Amills M. Copy number variation in the genomes of domestic animals. Anim Genet. 2012;43(5):503-517. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2052.2012.02317.x; Egan C. M., Sridhar S., Wigler M., Hall I. M. Recurrent DNA copy number variation in the laboratory mouse. Nat Genet. 2007;39(11):1384-1389. DOI: https://doi.org/10.1038/ng.2007.19; 1000 Genomes Project Consortium, Abecasis G. R., Altshuler D., Auton A., Brooks L. D., Durbin R. M., et al. A map of human genome variation from population-scale sequencing. Nature. 2010;467:1061-1073. DOI: https://doi.org/10.1038/nature09534; Michaelson J. J., Shi Y., Gujral M., Zheng H., Malhotra D., Jin X., et al. Whole-genome sequencing in autism identifies hot spots for de novo germline mutation. Cell. 2012;151(7):1431-1442. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cell.2012.11.019; Gu W., Zhang F., Lupski J. R. Mechanisms for human genomic rearrangements. Pathogenetics. 2008;1(1):4. DOI: https://doi.org/10.1186/1755-8417-1-4; Conrad D. F., Pinto D., Redon R., Feuk L., Gokcumen O., Zhang Y., et al. Origins and functional impact of copy number variation in the human genome. Nature. 2010;464(7289):704-712. DOI: https://doi.org/10.1038/nature08516; Pang A. W., MacDonald J. R., Pinto D., Wei J., Rafiq M. A., Conrad D. F., et al. Towards a comprehensive structural variation map of an individual human genome. Genome Biol. 2010;11(5):R52. DOI: https://doi.org/10.1186/gb-2010-11-5-r52; Iafrate A. J., Feuk L., Rivera M. N., Listewnik M. L., Donahoe P. K., Ying Y., et al. Detection of large-scale variation in the human genome. Nat Genet. 2004;36(9):949-951. DOI: https://doi.org/10.1038/ng1416; Kim P. M., Lam H. Y., Urban A. E., Korbel J. O., Affourtit J., Grubert F., et al. Analysis of copy number variants and segmental duplications in the human genome: Evidence for a change in the process of formation in recent evolutionary history. Genome Res. 2008;18(12):1865-1874. DOI: https://doi.org/10.1101/gr.081422.108; Berglund J., Nevalainen E. M., Molin A. M., Perloski M., The LUPA Consortium, André C., et al. Novel origins of copy number variation in the dog genome. Genome Biology. 2012;13(8):R73. DOI: https://doi.org/10.1186/gb-2012-13-8-r73; Zhang F., Gu W., Hurles M. E., Lupski J. R. Copy number variation in human health, disease, and evolution. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2009;10:451-481. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.genom.9.081307.164217; Conrad D. F., Andrews T. D., Carter N. P., Hurles M. E., Pritchard J. K. A high-resolution survey of deletion polymorphism in the human genome. Nat Genet. 2006;38(1):75-81. DOI: https://doi.org/10.1038/ng1697; Emerson J. J., Cardoso-Moreira M., Borevitz J. O., Long M. Natural selection shapes genome-wide patterns of copy-number polymorphism in Drosophila melanogaster. Science. 2008;320(5883):1629-1631. DOI: https://doi.org/10.1126/science.1158078; Cooper G. M., Nickerson D. A., Eichler E. E. Mutational and selective effects on copy-number variants in the human genome. Nat Genet. 2007;39(7 Suppl):S22-S29. DOI: https://doi.org/10.1038/ng2054; Zhang L., Jia S., Yang M., Xu Y., Li C., Sun J., et al. Detection of copy number variations and their effects in Chinese bulls. BMC Genomics. 2014;15(1):480. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-15-480; Stankiewicz P., Lupski J. R. Structural variation in the human genome and its role in disease. Annu Rev Med. 2010;61:437-455. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-med-100708-204735; McCarroll S. A., Kuruvilla F. G., Korn J. M., Cawley S., Nemesh J., Wysoker A., et al. Integrated detection and population-genetic analysis of SNPs and copy number variation. Nat Genet. 2008;40(10):1166-1174. DOI: https://doi.org/10.1038/ng.238; Wain L. V., Armour J. A., Tobin M. D. Genomic copy number variation, human health, and disease. Lancet. 2009;374(9686):340-350. DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(09)60249-X; Schoumans J., Ruivenkamp C., Holmberg E., Kyllerman M., Anderlid B. M., Nordenskjöld M. Detection of chromosomal imbalances in children with idiopathic mental retardation by array based comparative genomic hybridisation (array-CGH). J Med Genet. 2005;42(9):699-705. DOI: https://doi.org/10.1136/jmg.2004.029637; He Y., Hoskins J. M., McLeod H. L. Copy number variants in pharmacogenetic genes. Trends Mol Med. 2011;17(5):244-251. DOI: https://doi.org/10.1016/j.molmed.2011.01.007; Li X., Tan L., Liu X., Lei S., Yan T., Chen X., et al. A genome wide association study between copy number variation (CNV) and human height in Chinese population. J Genet Genomics. 2010;37(12):779-785. DOI: https://doi.org/10.1016/S1673-8527(09)60095-3; Ma Y. L., Wen Y. F., Cao X. K., Cheng J., Huang Y. Z., Ma Y., et al. Copy number variation (CNV) in the IGF1R gene across four cattle breeds and its association with economic traits. Arch Anim Breed. 2019;62(1):171-179. DOI: https://doi.org/10.5194/aab-62-171-2019; Da Silva J. M., Giachetto P. F., da Silva L. O., Cintra L. C., Paiva S. R., Yamagishi M. E., et al. Genome-wide copy number variation (CNV) detection in Nelore cattle reveals highly frequent variants in genome regions harboring QTLs affecting production traits. BMC Genomics. 2016;17:454. DOI: https://doi.org/10.1186/s12864-016-2752-9; Liu M., Zhou Y., Rosen B. D., Van Tassell C. P., Stella A., Tosser-Klopp G., et al. Diversity of copy number variation in the worldwide goat population. Heredity (Edinb). 2019;122(5):636-646. DOI: https://doi.org/10.1038/s41437-018-0150-6; Yang L., Xu L., Zhou Y., Liu M., Wang L., Kijas J. W., Zhang H., Li L., Liu G. E. Diversity of copy number variation in a worldwide population of sheep. Genomics. 2018;110(3):143-148. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2017.09.005; Jenkins G. M., Goddard M. E., Black M. A., Brauning R., Auvray B., Dodds K. G., Kijas J. W., Cockett N., McEwan J. C. Copy number variants in the sheep genome detected using multiple approaches. BMC Genomics. 2016;17:441. DOI: https://doi.org/10.1186/s12864-016-2754-7; Alvarez C. E., Akey J. M. Copy number variation in the domestic dog. Mamm Genome. 2012;23(1-2):144-163. DOI: https://doi.org/10.1007/s00335-011-9369-8; Fontanesi L., Martelli P. L., Scotti E., Russo V., Rogel-Gaillard C., Casadio R.,Vernesi C. Exploring copy number variation in the rabbit (Oryctolagus cuniculus) genome by array comparative genome hybridization. Genomics. 2012;100(4):245-251. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2012.07.001; Fadista J., Nygaard M., Holm L. E., Thomsen B., Bendixen C. A snapshot of CNVs in the pig genome. PLoS One. 2008;3(12):e3916. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0003916; Ramayo-Caldas Y., Castelló A., Pena R. N., Alves E., Mercadé A., Souza C. A., Fernández A. I., PerezEnciso M., Folch J. M. Copy number variation in the porcine genome inferred from a 60 k SNP BeadChip. BMC Genomics. 2010;11:593. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-593; Fowler K. E., Pong-Wong R., Bauer J., Clemente E. J., Reitter C. P., Affara N. A., Waite S., Walling G. A., Griffin D. K. Genome wide analysis reveals single nucleotide polymorphisms associated with fatness and putative novel copy number variants in three pig breeds. BMC Genomics. 2013;14:784. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-14-784; Shi S. Y., Li L. J., Zhang Z. J., Wang E.-Y., Wang J., Xu J.-W., Liu H.-B., Wen Y.-F., He H., Lei C.-Z., Chen H., Huang Y.-Z. Copy number variation of MYLK4 gene and its growth traits of Capra hircus (goat). Anim Biotechnol. 2019:1-6. DOI: https://doi.org/10.1080/10495398.2019.1635137; Ma Q., Liu X., Pan J., Ma L., Ma Y., He X., Zhao Q., Pu Y., Li Y., Jiang L. Genome-wide detection of copy number variation in Chinese indigenous sheep using an ovine high-density 600 K SNP array. Sci Rep. 2017;7(1):912. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-017-00847-9; Xu Y., Shi T., Cai H., Zhou Y., Lan X., Zhang C., Lei C., Qi X., Chen H. Associations of MYH3 gene copy number variations with transcriptional expression and growth traits in Chinese cattle. Gene. 2014;535(2):106-111. DOI: https://doi.org/10.1016/j.gene.2013.11.057; D'haene B., Vandesompele J., Hellemans J. Accurate and objective copy number profiling using real-time quantitative PCR. Methods. 2010;50(4):262-270. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2009.12.007; Gryadunov D., Dementieva E., Mikhailovich V., Nasedkina T., Rubina A., Savvateeva E., Fesenko E., Chudinov A., Zimenkov D., Kolchinsky A., Zasedatelev A. Gel-based microarrays in clinical diagnostics in Russia. Expert Rev Mol Diagn. 2011;11(8):839-853. DOI: https://doi.org/10.1586/erm.11.73; Marasso S. L., Mombello D., Cocuzza M., Casalena D., Ferrante I., Nesca A., Poiklik P., Rekker K., Aaspollu A., Ferrero S., Pirri C. F. A polymer lab-on-a-chip for genetic analysis using the arrayed primer extension on microarray chips. Biomed Microdevices. 2014;16(5):661-670. DOI: https://doi.org/10.1007/s10544-014-9869-x; Peiffer D. A., Le J. M., Steemers F. J., Chang W., Jenniges T., Garcia F. et al. High-resolution genomic profiling of chromosomal aberrations using Infinium whole-genome genotyping. Genome Res. 2006;16(9):1136-1148. DOI: https://doi.org/10.1101/gr.5402306; Schouten J. P., McElgunn C. J., Waaijer R., Zwijnenburg D., Diepvens F., Pals G. Relative quantification of 40 nucleic acid sequences by multiplex ligation-dependent probe amplification. Nucleic Acids Res. 2002;30(12):e57. DOI: https://doi.org/10.1093/nar/gnf056; Carter N. P. Methods and strategies for analyzing copy number variation using DNA microarrays. Nat Genet. 2007;39(7 Suppl):S16-S21. DOI: https://doi.org/10.1038/ng2028; Rincon G., Weber K. L., Eenennaam A. L., Golden B. L., Medrano J. F. Hot topic: performance of bovine high-density genotyping platforms in Holsteins and Jerseys. J Dairy Sci. 2011;94(12):6116-6121. DOI: https://doi.org/10.3168/jds.2011-4764; Ong F. S., Lin J. C., Das K., Grosu D. S., Fan J. B. Translational utility of next-generation sequencing. Genomics. 2013;102(3):137-139. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2013.04.012; Robasky K., Lewis N. E., Church G. M. The role of replicates for error mitigation in next-generation sequencing. Nat Rev Genet. 2014;15(1):56-62. DOI: https://doi.org/10.1038/nrg3655; Bae J. S., Cheong H. S., Kim L. H., NamGung S., Park T. J., Chun J.-Y., Kim J. Y., Pasaje C. F. A., Lee J. S., Shin H. D. Identification of copy number variations and common deletion polymorphisms in cattle. BMC Genomics. 2010;11:232. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-232; Bickhart D. M., Hou Y., Schroeder S. G., Alkan С., Cardone M. F., Matukumalli L. K., et al. Copy number variation of individual cattle genomes using next-generation sequencing. Genome Res. 2012;22(4):778-790. DOI: https://doi.org/10.1101/gr.133967.111; Hou Y., Liu G. E., Bickhart D. M., Cardone M. F., Wang K., Kim E., Matukumalli L. K., Ventura M., Song J., VanRaden P. M., Sonstegard T. S., Van Tassell C. P. Genomic characteristics of cattle copy number variations. BMC Genomics. 2011;12:127. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-12-127; Kijas J. W., Barendse W., Barris W., Harrison B., McCulloch R., McWilliam S., Whan V. Analysis of copy number variants in the cattle genome. Gene. 2011;482(1-2):73-77. DOI: https://doi.org/10.1016/j.gene.2011.04.011; Cicconardi F., Chillemi G., Tramontano A., Marchitelli C., Valentini A., Ajmone-Marsan P., Nardone A. Massive screening of copy number population-scale variation in Bos taurus genome. BMC Genomics. 2013;14:124. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-14-124; Fontanesi L., Martelli P. L., Beretti F., Riggio V., Dall'Olio S., Colombo M., Casadio R., Russo V., Portolano B. An initial comparative map of copy number variations in the goat (Capra hircus) genome. BMC Genomics. 2010;11:639. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-639; Cao X. K., Huang Y. Z., Ma Y. L., Cheng J., Qu Z. X., Ma Y., Bai Y. Y., Tian F., Lin F. P., Ma Y. L., Chen H. Integrating CNVs into meta-QTL identified GBP4 as positional candidate for adult cattle stature. Funct Integr Genomics. 2018;18(5):559-567. DOI: https://doi.org/10.1007/s10142-018-0613-0; Salmon Hillbertz N. H., Isaksson M., Karlsson E. K., Hellmén E., Pielberg G. R., Savolainen P., et al. Duplication of FGF3, FGF4, FGF19 and ORAOV1 causes hair ridge and predisposition to dermoid sinus in Ridgeback dogs. Nat Genet. 2007;39(11):1318-1320. DOI: https://doi.org/10.1038/ng.2007.4; Chen C., Qiao R., Wei R., Yuanmei G., Ai H., Ma J., Ren J., Huang L. A comprehensive survey of copy number variation in 18 diverse pig populations and identification of candidate copy number variable genes associated with complex traits. BMC Genomics. 2012;13:733. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-733; Wang K., Li M., Hadley D., Liu R., Glessner J., Grant S. F. A., Hakonarson H., Bucan M. PennCNV: an integrated hidden Markov model designed for high-resolution copy number variation detection in whole-genome SNP genotyping data. Genome Res. 2007;17(11):1665-1674. DOI: https://doi.org/10.1101/gr.6861907; Johansson Moller M., Chaudhary R., Hellmén E., Höyheim B., Chowdhary B., Andersson L. Pigs with the dominant white coat color phenotype carry a duplication of the KIT gene encoding the mast/stem cell growth factor receptor. Mamm Genome. 1996;7(11):822-830. DOI: https://doi.org/10.1007/s003359900244; Fontanesi L., Beretti F., Riggio V., Gómez González E., Dall'Olio S., Davoli R., Russo V., Portolano B. Copy number variation and missense mutations of the agouti signaling protein (ASIP) gene in goat breeds with different coat colors. Cytogenet Genome Res. 2009;126(4):333-347. DOI: http://dx.doi.org/10.1159/000268089; Zhang R. Q., Wang J. J., Zhang T., Zhai H. L., Shen W. Copy-number variation in goat genome sequence: A comparative analysis of the different litter size trait groups. Gene. 2019;696:40-46. DOI: https://doi.org/10.1016/j.gene.2019.02.027; Fontanesi L., Beretti F., Martelli P. L., Colombo M., Dall'Olio S., Occidente M., Portolano B., Casadio R., Matassino D., Russo V. A first comparative map of copy number variations in the sheep genome. Genomics. 2011;97(3):158-165. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ygeno.2010.11.005; Liu J., Zhang L., Xu L., Ren H., Lu J., Zhang X., Zhang S., Zhou X., Wei C., Zhao F., Du L. Analysis of copy number variations in the sheep genome using 50K SNP BeadChip array. BMC Genomics. 2013;14:229. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-14-229; International Chicken Genome Sequencing Consortium. Sequence and comparative analysis of the chicken genome provide unique perspectives on vertebrate evolution. Nature. 2004;432(7018):695-716. DOI: https://doi.org/10.1038/nature03154; Bovine Genome Sequencing and Analysis Consortium, Elsik C. G., Tellam R. L., Worley K. C. The genome sequence of taurine cattle: a window to ruminant biology and evolution. Science. 2009;324(5926):522-528. DOI: https://doi.org/10.1126/science.1169588; Humphray S. J., Scott C. E., Clark R., Marron B., Bender C., Camm N., et al. A high utility integrated map of the pig genome. Genome Biol. 2007;8(7):R139. DOI: https://doi.org/10.1186/gb-2007-8-7-r139; Fadista J., Thomsen B., Holm L. E., Bendixen C. Copy number variation in the bovine genome. BMC Genomics. 2010;11:284. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-11-284; Jiang L., Jiang J., Yang J., Liu X., Wang J., Wang H., Ding X., Liu J., Zhang Q. Genome-wide detection of copy number variations using high-density SNP genotyping platforms in Holsteins. BMC Genomics. 2013;14:131. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2164-14-131; Norris B. J., Whan V. A. A gene duplication affecting expression of the ovine ASIP gene is responsible for white and black sheep. Genome Res. 2008;18(8):1282-1293. DOI: https://doi.org/10.1101/gr.072090.107; Zhu C., Fan H., Yuan Z., Hu S., Ma X., Xuan J., Wang H., Zhang L., Wei C., Zhang Q., Zhao F., Du L. Genomewide detection of CNVs in Chinese indigenous sheep with different types of tails using ovine high-density 600K SNP arrays. Sci Rep. 2016;6:27822. DOI: https://doi.org/10.1038/srep27822; Jiang R., Cheng J., Cao X. K., Ma Y. L., Chaogetu B., Huang Y. Z., Lan X. Y., Lei C. Z., Hu L. Y., Chen H. Copy Number Variation of the SHE Gene in Sheep and Its Association with Economic Traits. Animals (Basel). 2019;9(8):531. DOI: https://doi.org/10.3390/ani9080531; Russell R. B., Breed J., Barton G. J. Conservation analysis and structure prediction of the SH2 family of phosphotyrosine binding domains. FEBS Lett. 1992;304(1):15-20. DOI: https://doi.org/10.1016/0014-5793(92)80579-6; Hosoe Y., Numoto N., Inaba S., Ogawa S., Morii H., Abe R., Ito N., Oda M. Structural and functional properties of Grb2 SH2 dimer in CD28 binding. Biophysics and Physicobiology. 2019;16:80-88. DOI: https://doi.org/10.2142/biophysico.16.0_80; Wang X., Cao X., Wen Y., Ma Y, Elnour I. E., Huang Y., Lan X., Chaogetu B., Hu L., Chen H. Associations of ORMDL1 gene copy number variations with growth traits in four Chinese sheep breeds. Arch Anim Breed. 2019;62(2):571-578. DOI: https://doi.org/10.5194/aab-62-571-2019; Siow D. L., Wattenberg B. W. Mammalian ORMDL proteins mediate the feedback response in ceramide biosynthesis. J Biol Chem. 2012;287(48):40198-40204. DOI: https://doi.org/10.1074/jbc.C112.404012; Cai L., Oyeniran C., Biswas D. D., Allegood J., Milstien S., Kordula T., Maceyka M., Spiegel S. ORMDL proteins regulate ceramide levels during sterile inflammation. J Lipid Res. 2016;57(8):1412-1422. DOI: https://doi.org/10.1194/jlr.M065920; Hjelmqvist L., Tuson M., Marfany G., Herrero E., Balcells S., Gonzàlez-Duarte R. ORMDL proteins are a conserved new family of endoplasmic reticulum membrane proteins. Genome Biol. 2002;3(6): research0027. DOI: https://doi.org/10.1186/gb-2002-3-6-research0027; Feng Z., Li X., Cheng J., Huang R., Wang D., Huang Y., Pi L., Hu L., Chen H. Copy Number Variation of the PIGY Gene in Sheep and Its Association Analysis with Growth Traits. Animals (Basel). 2020;10(4):688. DOI: https://doi.org/10.3390/ani10040688; Ilkovski B., Pagnamenta A. T., O'Grady G. L., Kinoshita T., Howard M. F., Lek M. Mutations in PIGY: expanding the phenotype of inherited glycosylphosphatidylinositol deficiencies. Hum Mol Genet. 2015;24(21):6146-6159. DOI: https://doi.org/10.1093/hmg/ddv331; Yang Z., Cao X., Ma Y., Cheng J., Song C., Jiang R., Wang X., Huang Y., Buren C., Lan X., Ibrahim E. E., Hu L., Chen H. Novel copy number variation of the BAG4 gene is associated with growth traits in three Chinese sheep populations. Anim Biotechnol. 2020;1-9. DOI: https://doi.org/10.1080/10495398.2020.1719124; Deniskova T. E., Dotsev A. V., Selionova M. I., Kunz E., Medugorac I., Reyer H., Wimmers K., Barbato M., Traspov A. A., Brem G., Zinovieva N. A. Population structure and genetic diversity of 25 Russian sheep breeds based on whole-genome genotyping. Genet Sel Evol. 2018;50(1):29. DOI: https://doi.org/10.1186/s12711-018-0399-5; Yurchenko A. A., Deniskova T. E., Yudin N. S., Dotsev A. V., Khamiruev T. N., Selionova M. I., Egorov S. V., Reyer H., Wimmers K., Brem G., Zinovieva N. A., Larkin D. M. High-density genotyping reveals signatures of selection related to acclimation and economically important traits in 15 local sheep breeds from Russia. BMC Genomics. 2019;20(Suppl 3):294. DOI: https://doi.org/10.1186/s12864-019-5537-0
-
10Academic Journal
Subject Terms: 2. Zero hunger, клевер луговой, breeding number, evaluation, productivity, качество, 15. Life on land, коэффициент адаптивности, preliminary variety testing, хозяйственно полезные признаки, селекционный номер, предварительное сортоиспытание, продуктивность, economically useful traits, quality, adaptability coefficient, оценка, meadow clover
-
11Academic Journal
Source: Животноводство России.
Subject Terms: молекулярно-генетический метод, кроссбридные животные, многоплодие, геномная селекция, SNP-генотипирование, ДНК-чип, ДНК-технологии, полногеномные ассоциативные исследования, чистопородная популяция свиней, племенное свиноводство, хозяйственно полезные признаки, свиньи, однонуклеотидные замены, QTL-маркеры, мясные качества, гибридизация, BLUP-AM, селекционно-гибридный центр, хряки
-
12Academic Journal
Authors: V. V. Piskarev, E. V. Zuev, A. N. Brykova, В. В. Пискарев, Е. В. Зуев, А. Н. Брыкова
Contributors: Institute of Cytology and Genetics, State Budgeted Project 0324-2018-0018, VIR, State Budgeted Project 0662-2018-0018
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 22, № 7 (2018); 784-794 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 22, № 7 (2018); 784-794 ; 2500-3259
Subject Terms: корреляция, source, agronomical useful characters, correlation, источник, хозяйственно полезные признаки
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1711/1131; Апанасенко В.В., Егорова И.Н., Бардунов А.О. Сортовое районирование сельскохозяйственных культур в Новосибирской области на 2015 год. Филиал ФГБУ «Госсорткомиссия» по Новосибирской области. Новосибирск: Ареал, 2015.; Василова Н.З., Асхадуллин Д.Ф., Асхадуллин Д.Ф., Багавиева Э.З., Тазутдинова М.Р., Хусаинова И.И., Насихова Г.Р. Полевая устойчивость образцов яровой мягкой пшеницы к Erysiphe (Blumeria) graminis в условиях Предкамской зоны Республики Татарстан. Зерновое хоз-во России. 2016;6:59-62.; Ведров Н.Г., Халипский А.Н. Сравнительная оценка сортов яровой пшеницы Западно-Сибирской и Восточно-Сибирской селекции. Вестн. КрасГАУ 2009;7:95-102.; Волкова Л.В. Урожайность яровой мягкой пшеницы и ее связь с элементами продуктивности в разные по метеорологическим условиям годы. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2016; 6(55):9-15.; Воронина Л.В., Гриценко А.Г. Климат и экология Новосибирской области. Новосибирск: СГГА, 2011.; Гончаров Н.П., Гончаров П.Л. Методические основы селекции растений. Новосибирск: Акад. изд-во «Гео», 2009.; Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию на территории Российской Федерации. URL: http://reestr.gossort.com/reg/main/290 (Дата обращения 01.02.2018).; Давыдова Н.В., Казаченко А.О. Особенности подбора исходного материала для селекции яровой мягкой пшеницы в условиях Центрального Нечерноземья. Вестн. Алт. гос. аграр. ун-та. 2013;5:5-9.; Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М.: Агропромиздат, 1985.; Захаров В.Г., Яковлева О.Д. Изменение качества зерна яровой мягкой пшеницы в процессе селекции. URL: http://zhros.ru/num46(4)_2016/13.html (дата обращения 20.05.2017).; Зуев Е.В., Белан И.А., Россеева Л.П., Мешкова Л.В., Блохина Н.П. Исходный материал для селекции пшеницы мягкой яровой в условиях Омской области. Успехи соврем. науки и образования. 2016;11:122-125.; Зуев Е.В., Ляпунова О.А., Брыкова А.Н., Сурганова Л.Д., Никифоров М.Н., Разумова И.И., Плотникова Л.Н., Потокина С.Н., Бородина Р.К., Иванова О.А., Кожушко Н.Н., Жукова А.Э., Чмеле-ва З.В., Климентьева Н.Ф. Характер изменчивости скороспелых образцов яровой мягкой пшеницы в различных эколого-географических условиях. Каталог мировой коллекции ВИР. СПб.: ВИР, 1999;708:67.; Изогенная линия АНК-12. URL: http://www-sbras.nsc.ru/win/elbib/atlas/show.dhtml?Isogen+id+24 (Дата обращения 25.05.2018).; Коновалова И.В., Богдан П.М. Корреляция признаков у яровой мягкой пшеницы в условиях Приморского края. Вестн. Гос. аграр. ун-та Сев. Зауралья. 2016;3(34):74-79.; Коробейникова О.В., Красильников В.В. Сравнительное изучение сортов яровой пшеницы на сортоучастке ФГБОУ ВПО Ижевская ГСХА. Зерновое хоз-во России. 2015;2:17-21.; Лепехов С.Б. Признаки с отрицательными эффектами и их значение для селекции мягкой пшеницы (Triticum aestivum L.). Вави-ловский журнал генетики и селекции. 2016;20(3):337-343. DOI 10.18699/VJ16.114.; Лихенко И.Е., Шаманин В.П. Использование изогенных линий в моделировании и селекции яровой мягкой пшеницы в условиях Северного Зауралья. Омск: Изд-во ОмГАУ 2003.; Лихенко И.Е., Артёмова Г.В., Степочкин П.И., Сотник А.Я., Гринберг Е.Г. Генофонд и селекция сельскохозяйственных растений. Сиб. вестн. с.-х. науки. 2014;5:35-41.; Лобачев Ю.В. Проявление генов низкорослости у яровых пшениц в Нижнем Поволжье. Саратов: Изд-во СГАУ 2000.; Лубнин А.Н. Селекция мягкой яровой пшеницы в Сибири. Новосибирск: ИПЦ «Юпитер», 2006.; Мальчиков П.Н., Мясникова М.Г. Возможности создания сортов яровой твердой пшеницы (Triticum durum Desf.) с широкой изменчивостью параметров вегетационного периода. Вавилов-ский журнал генетики и селекции. 2015;19(2):176-184.; Мережко А.Ф., Удачин Р.А., Зуев Е.В., Филатенко А.А., Сербин А.А., Ляпунова О.А., Косов В.Ю., Куркиев УК., Охотникова Т.В., Наврузбеков Н.А., Богуславский Р.Л., Абдулаева А.К., Чикида Н.Н., Митрофанова О.П., Потокина С.А. Пополнение, сохранение в живом виде и изучение мировой коллекции пшеницы, эгилопса и тритикале. Методические указания. СПб.: ВИР, 1999.; Мных С.В., Бугрей И.В., Рыжов В.А. Влияние длины вегетационного периода на урожайность риса. Современные технологии сельскохозяйственного производства и приоритетные направления развития аграрной науки: Материалы междунар. науч.-практ. конф. 2014;124-126.; Образцов А.С. Биологические основы селекции растений. М.: Колос, 1981.; Пискарев В.В., Тимофеев А.А., Цильке Р.А. Результаты селекции яровой мягкой пшеницы на продуктивность в условиях лесостепи Западной Сибири. Сиб. вестн. с.-х. науки. 2010;8:18-24.; Прохоренко К.С., Горяев Д.Ю., Дмитриев В.Е. Использование методов контрастных сроков посева при изучении нормы высева яровой пшеницы. Вестн. КрасГАУ 2007;3:84-87.; Руденко М.И., Шитова И.П., Корнейчук В.А. Методические указания по изучению мировой коллекции пшеницы. Л.: ВИР, 1977.; Тимошенкова Т.А., Самуилов Ф.Д. Зависимость продуктивности современных сортов яровой пшеницы от их морфологических особенностей в условиях степи Оренбургского Предуралья. Вестн. Казан. ГАУ 2011;3(21):154-158.; Характеристики сортов растений, впервые включнных в 2016 году в Государственный реестр селекционных достижений, допущенных к использованию: официальное издание. М.: Росинформагротех, 2016.; Цильке Р.А. Изменчивость характера наследования количественных признаков у мягкой яровой пшеницы в зависимости от условий вегетации. Сиб. вестн. с.-х. науки. 1974;2:31-39.; Цыбенов Б.Б., Билтуев А.С. Связь урожайности яровой пшеницы с элементами продуктивности в аридных условиях Бурятии. Вестн. Гос. аграр. ун-та Сев. Зауралья. 2016;2(33):87-93.; Addison Ch.K., Mason R.E., Brown-Guedira G., Guedira M., Hao Yu., Miller R.G., Subramanian N., Lozada D.N., Acuna A., Arguel-lo M.N., Johnson J.W., Sutton A.M., Harrison S.A. QTL and major genes influencing grain yield potential in soft red winter wheat adapted to the southern United States. Euphytica. 2016;209:665-677. DOI 10.1007/s10681-016-1650-1.; Bhullar N.K., Street K., Mackay M., Yahiaoui N., Keller B. Unlocking wheat genetic resources for the molecular identification of previously undescribed functional alleles at the Pm3 resistance locus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2009;106(23):9519-9524. DOI 10.1073/pnas.0904152106.; Friedrich C., Longin H., Reif J.C. Redesigning the exploitation of wheat genetic resources. Trends Plant Sci. 2014;19(10):631-636. DOI 10.1016/j.tplants.2014.06.012.; Maccaferri M., Sanguineti M.C., Corneti S., Ortega J.L., Salem M.B., Bort J., Ambrogio E., Moral L.F., Demontis A., El-Ahmed A., Maalouf F., Machlab H., Martos V, Moragues M., Motawaj J., Nachit M., Nserallah N., Ouabbou H., Royo C., Slama A., Tu-berosa R. Quantitative trait loci for grain yield and adaptation of durum wheat (Triticum durum Desf.) across a wide range of water availability. Genetics. 2008;178:489-511.; Randhawa H.S., Graf R.J., Pozniak C., Clarke J.M., Asif M., Hucl P., Spaner D., Fox S.L., Humphreys D.G., Knox R.E., Depauw R.M., Singh A.K., Cuthbert R.D. Application of molecular markers to wheat breeding in Canada. Plant Breed. 2013;132(5):458-471.; Reif J.C., Zhang P., Dreisigacker S., Warburton M.L., Ginkel M., Hoisington D., Bohn M., Melchinger A.E. Wheat genetic diversity trends during domestication and breeding. Theor. Appl. Genet. 2005; 110:859-864. DOI 10.1007/s00122-004-1881-8.; Sadeque A., Turner M.A. QTL analysis of plant height in hexaploid wheat doubled haploid population. Thai J. Agric. Sci. 2010;43: 91-96.; Singh M., Kumar S. Broadening the Genetic Base of Grain Cereals. Springer, India, 2016. DOI 10.1007/978-81-322-3613-9.; Souza E., Sorrells M.E. Prediction of progeny variation in oat from parental genetic relationships. Theor. Appl. Genet. 1991;82(2):233-241. DOI 10.1007/BF00226219.; Tadesse W., Amri A., Ogbonnaya F.C., Sanchez-Garcia M., Sohail Q., Baum M. Wheat. In: Genetic and Genomic Resources for Grain Cereals Improvement. Elsevier Inc., 2016;2:81-124. DOI 10.1016/B978-0-12-802000-5.00002-2.; Wessels E., Botes W.C. Accelerating resistance breeding in wheat by integrating marker-assisted selection and doubled haploid technology. S. Afr. J. Plant Soil. 2014;31(1):35-43.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1711
-
13Academic Journal
Subject Terms: 2. Zero hunger, белый великан, репродуктивные качества, хозяйственно - полезные признаки, inbred lines and outbred lines, cross of paternal and maternal populations, meat productivity, selection, инбредные и аутбредные линии, White Giant breed, отбор, кросс отцовских и материнских популяций, мясная продуктивность, reproductive qualities, economic-useful features
-
14Academic Journal
Source: Естественные и технические науки.
Subject Terms: economically useful traits, табак, genus Nicotiana, cytoplasmic male sterility, collection of sterility sources, хозяйственно- полезные признаки, род Nicotiana, коллекция источников стерильности, tobacco, цитоплазматическая мужская стерильность
-
15Academic Journal
-
16Academic Journal
Authors: Орлова, Е., Бехтольд, Н., Лихенко, И.
Subject Terms: ТВЕРДАЯ ГОЛОВНЯ, ЯЧМЕНЬ, СОРТА, УСТОЙЧИВОСТЬ, ХОЗЯЙСТВЕННО-ПОЛЕЗНЫЕ ПРИЗНАКИ
File Description: text/html
-
17Academic Journal
Authors: БАЛЬНИКОВ А.А., МАЛЬЧЕВСКИЙ А.В., РЯБЦЕВА С.В.
File Description: text/html
-
18Academic Journal
Authors: Бальников, А., Мальчевский, А., Рябцева, С.
Subject Terms: СВИНЬЯ, ПОРОДА ЙОРКШИР, БЕЛОРУССКАЯ МЯСНАЯ ПОРОДА, МОЛОДНЯК, ПОМЕСИ, ВОЗРАСТНАЯ ДИНАМИКА, ОТКОРМОЧНЫЕ КАЧЕСТВА, МЯСНАЯ ПРОДУКТИВНОСТЬ, ХОЗЯЙСТВЕННО ПОЛЕЗНЫЕ ПРИЗНАКИ
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Authors: Бальников, А., Рябцева, С.
Subject Terms: СУПОРОСНЫЕ СВИНОМАТКИ, ПРОДУКТИВНЫЕ КАЧЕСТВА, ХОЗЯЙСТВЕННО-ПОЛЕЗНЫЕ ПРИЗНАКИ, СЕЗОН ГОДА, ПОРОСЯТА
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Authors: Гришина, Д.
Subject Terms: ГЕНОФОНД, ПОРОДА, СЕЛЕКЦИОННЫЕ ИНДЕКСЫ, ЭКСТЕРЬЕР, ХОЗЯЙСТВЕННО-ПОЛЕЗНЫЕ ПРИЗНАКИ
File Description: text/html
