-
1Academic Journal
Συγγραφείς: S. I. Gamidov, A. Yu. Popova, T. V. Shatylko, A. V. Vedenyapin, C. И. Гамидов, А. Ю. Попова, Т. В. Шатылко, А. В. Веденяпин
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 25, № 1 (2024); 147-158 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 25, № 1 (2024); 147-158 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: метаболический синдром, male infertility, fragmentation of sperm DNA, BESTFertil, oxidative stress, spermogram, metabolic syndrome, мужское бесплодие, фрагментация ДНК сперматозоидов, «БЕСТФертил», оксидативный стресс, спермограмма
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/746/577; Gual-Frau J, Abad C, Amengual MJ et al. Oral antioxidant treatment partly improves integrity of human sperm DNA in infertile grade I varicocele patients. Hum Fertil (Camb). 2015 Sep;18(3):225-9. doi:10.3109/14647273.2015.1050462. Epub 2015 Jun 19. PMID: 26090928.; Balercia G, Regoli F, Armeni T et al. Placebo-controlled double-blind randomized trial on the use of L-carnitine, L-acetylcarnitine, or combined L-carnitine and L-acetylcarnitine in men with idiopathic asthenozoospermia. Fertil Steril. 2005 Sep;84(3):662-71. doi:10.1016/j.fertnstert.2005.03.064. PMID: 16169400.; Busetto GM, Agarwal A, Virmani A et al. Effect of metabolic and antioxidant supplementation on sperm parameters in oligo-astheno-teratozoospermia, with and without varicocele: A double-blind placebo-controlled study. Andrologia. 2018 Apr;50(3). doi:10.1111/and.12927. Epub 2018 Jan 7. PMID: 29315686.; Адъювантная антиоксидантная терапия у больных бесплодием при варикоцеле / С. И. Гамидов, Р. И. Овчинников, А. Ю. Попова [и др.] // Урология. – 2017. – № 2-S2. – С. 64-72. – DOI 10.18565/urol.2017.2(suppl.2)64-72.; Корнеев И.А. Мужское бесплодие, метаболический синдром и ожирение / И. А. Корнеев, И. А. Мацуева // Урологические ведомости. 2021. Т. 11, № 2. С. 153–162. – DOI:10.17816/uroved61509.; Engin-Ustun Y, Yílmaz N, Akgun N et al. Body Mass Index Effects Kruger’s Criteria in Infertile Men. Int J Fertil Steril. 2018 Jan;11(4):258-262. doi:10.22074/ijfs.2018.4888. Epub 2017 Oct 12. PMID: 29043700; PMCID: PMC5641456.; Abdali D, Samson SE, Grover AK. How effective are antioxidant supplements in obesity and diabetes? Med Princ Pract. 2015;24(3):201-15. doi:10.1159/000375305. Epub 2015 Mar 14. PMID: 25791371; PMCID: PMC5588240.; Jeulin C, Lewin LM. Role of free L-carnitine and acetyl-Lcarnitine in post-gonadal maturation of mammalian spermatozoa. Hum Reprod Update. 1996 Mar-Apr;2(2):87-102. doi:10.1093/humupd/2.2.87. PMID: 9079406.; Showell MG, Brown J, Yazdani A, Stankiewicz MT, Hart RJ. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev. 2011 Jan 19;(1):CD007411. doi:10.1002/14651858.CD007411. pub2. Update in: Cochrane Database Syst Rev. 2014;12:CD007411. PMID: 21249690.; Li Y, Xie Y, Qiu C, Yu B, Yang F, Cheng Y, Zhong W, Yuan J. Effects of L-carnitine supplementation on glucolipid metabolism: a systematic review and meta-analysis. Food Funct. 2023 Mar 6;14(5):2502-2517. doi:10.1039/d2fo02930h. PMID: 36815696.; Choi M, Park S, Lee M. L-Carnitine’s Effect on the Biomarkers of Metabolic Syndrome: A Systematic Review and Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. Nutrients. 2020 Sep 12;12(9):2795. doi:10.3390/nu12092795. PMID: 32932644; PMCID: PMC7551203.; Martínez-Soto JC, Domingo JC, Cordobilla B et al. Dietary supplementation with docosahexaenoic acid (DHA) improves seminal antioxidant status and decreases sperm DNA fragmentation. Syst Biol Reprod Med. 2016 Dec;62(6):387-395. doi:10.1080/19396368.2016.1246623. Epub 2016 Oct 28. PMID: 27792396.; González-Ravina C, Aguirre-Lipperheide M, Pinto F et al. Effect of dietary supplementation with a highly pure and concentrated docosahexaenoic acid (DHA) supplement on human sperm function. Reprod Biol. 2018 Sep;18(3):282-288. doi:10.1016/j.repbio.2018.06.002. Epub 2018 Jun 20. PMID: 29934046.; Попова А.Ю., Гамидов С.И., Овчинников Р.И. и др. Опыт применения докозагексаеновой кислоты (БрудиПлюс) у пациентов с повышенным индексом фрагментации ДНК сперматозоидов в Научном центре акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова. Андрология и генитальная хирургия. 2015;16(2):51-55. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2015-16-2-51-55; Виноградов И.В., Живулько А.Р. Докозагексаеновая кислота в лечении мужского бесплодия, вызванного высоким уровнем фрагментации ДНК сперматозоидов. Андрология и генитальная хирургия. 2020;21(4):89-97. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2020-21-4-89-97; Nashivochnikova NA, Krupin VN, Leanovich VE. [The role of antioxidants in the therapy of metabolic syndrome in men]. Urologiia. 2023 Sep;(4):90-97. Russian. PMID: 37850287.; Zhang JJ, Wu ZB, Cai YJ et al. L-carnitine ameliorated fastinginduced fatigue, hunger, and metabolic abnormalities in patients with metabolic syndrome: a randomized controlled study. Nutr J. 2014 Nov 26;13:110. doi:10.1186/1475-2891-13-110. PMID: 25424121; PMCID: PMC4258024.; Talenezhad N, Mohammadi M, Ramezani-Jolfaie N et al. Effects of l-carnitine supplementation on weight loss and body composition: A systematic review and meta-analysis of 37 randomized controlled clinical trials with dose-response analysis. Clin Nutr ESPEN. 2020 Jun;37:9-23. doi:10.1016/j.clnesp.2020.03.008. Epub 2020 Apr 18. PMID: 32359762.; Alberti KG, Eckel RH, Grundy SM et al. Harmonizing the metabolic syndrome: a joint interim statement of the International Diabetes Federation Task Force on Epidemiology and Prevention; National Heart, Lung, and Blood Institute; American Heart Association; World Heart Federation; International Atherosclerosis Society; and International Association for the Study of Obesity. Circulation. 2009 Oct 20;120(16):1640-5. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.109.192644. Epub 2009 Oct 5. PMID: 19805654.; Корнеев И.А. Персонифицированный подход к назначению антиоксидантной терапии мужчинам, состоящим в бесплодном браке / И. А. Корнеев // Клинический разбор в общей медицине. 2023. Т. 4, № 4. С. 82–88. DOI:10.47407/kr2023.4.4.00260.; Корнеев И.А. Изучение показателей эякулята и результатов лечения с применением вспомогательных репродуктивных технологий мужчин с избыточным весом и ожирением, состоящих в бесплодном браке / И. А. Корнеев // Урологические ведомости. 2022. Т. 12, № 1. С. 41-48. DOI:10.17816/uroved99867.; Saleh AAEW, Amin EM, Elfallah AA et al. Insulin resistance and idiopathic infertility: A potential possible link. Andrologia. 2020 Dec;52(11):e13773. doi:10.1111/and.13773. Epub 2020 Aug 20. PMID: 32816339.; Verit A, Verit FF, Oncel H et al. Is there any effect of insulin resistance on male reproductive system? Arch Ital Urol Androl. 2014 Mar 28;86(1):5-8. doi:10.4081/aiua.2014.1.5. PMID: 24704923.; Ma J, Han RY, Mei XA et al. [Correlation of insulin resistance with male reproductive hormone levels and semen parameters]. Zhonghua Nan Ke Xue. 2018 Aug;24(8):695-699. Chinese. PMID: 30173427.; La Vignera S, Condorelli RA, Duca Y et al. FSH treatment for normogonadotropic male infertility: a synergistic role for metformin? Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019 Jul;23(13): 5994-5998. doi:10.26355/eurrev_201907_18346. PMID: 31298351.; Xu Y, Jiang W, Chen G, Zhu W et al. L-carnitine treatment of insulin resistance: A systematic review and meta-analysis. Adv Clin Exp Med. 2017 Mar-Apr;26(2):333-338. doi:10.17219/acem/61609. PMID: 28791854.; Zamani M, Pahlavani N, Nikbaf-Shandiz M et al. The effects of L-carnitine supplementation on glycemic markers in adults: A systematic review and dose-response meta-analysis. Front Nutr. 2023 Jan 10;9:1082097. doi:10.3389/fnut.2022.1082097. PMID: 36704801; PMCID: PMC9871499.; Гамидов С.И. Мужское здоровье и ожирение Э диагностика и терапевтические подходы / С.И. Гамидов, Т.В. Шатылко, Н.Г. Гасанов // Ожирение и метаболизм. 2019. Т. 16, № 3. С. 29–36. DOI:10.14341/omet10314.; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Корнеев И.А., Бабенко А.Ю. Влияние ингибиторов ароматазы на мужскую фертильность: обзор литературы. Андрология и генитальная хирургия. 2023;24(4):49-58. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2023-24-4-49-58; Abbott K, Burrows TL, Acharya S et al. Dietary supplementation with docosahexaenoic acid rich fish oil increases circulating levels of testosterone in overweight and obese men. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2020 Dec;163:102204. doi:10.1016/j.plefa.2020.102204. Epub 2020 Nov 12. PMID: 33221700.; Kelley DS, Adkins Y, Woodhouse LR et al. Docosahexaenoic acid supplementation improved lipocentric but not glucocentric markers of insulin sensitivity in hypertriglyceridemic men. Metab Syndr Relat Disord. 2012 Feb;10(1):32-8. doi:10.1089/met.2011.0081. Epub 2011 Oct 14. PMID: 21999398.; Sahebkar A. Effect of L-carnitine Supplementation on Circulating C-reactive Protein Levels: A Systematic Review and Meta-Analysis. J Med Biochem. 2015 Apr;34(2):151-159. doi:10.2478/jomb-2014-0030. Epub 2015 Mar 3. PMID: 28356827; PMCID: PMC4922328.; Savica V, Santoro D, Mazzaglia G et al. L-carnitine infusions may suppress serum C-reactive protein and improve nutritional status in maintenance hemodialysis patients. J Ren Nutr. 2005 Apr;15(2):225-30. doi:10.1053/j.jrn.2004.10.002. PMID: 15827896.; Elisia I, Yeung M, Kowalski S et al. Omega 3 supplementation reduces C-reactive protein, prostaglandin E2 and the granulocyte/ lymphocyte ratio in heavy smokers: An open-label randomized crossover trial. Front Nutr. 2022 Dec 1;9:1051418. doi:10.3389/fnut.2022.1051418. PMID: 36532545; PMCID: PMC9751896.; Wang TM, Hsieh SC, Chen JW et al. Docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid reduce C-reactive protein expression and STAT3 activation in IL-6-treated HepG2 cells. Mol Cell Biochem. 2013 May;377(1-2):97-106. doi:10.1007/s11010-013-1574-1. Epub 2013 Jan 30. PMID: 23361365.; Структурные нарушения хроматина сперматозоидов. Патофизиологические аспекты. Клиническая значимость / М.Н. Коршунов, Е.С. Коршунова, П.С. Кызласов [и др.] // Вестник урологии. 2021. Т. 9, № 1. С. 95-104. DOI:10.21886/2308-6424-2021-9-1-95-104.; Фрагментация ДНК сперматозоидов: клиническая значимость, причины, методы оценки и коррекции / С.Ю. Боровец, В.А. Егорова, А.М. Гзгзян, С. Х. и др.// Урологические ведомости. 2020. Т. 10, № 2. С. 173–180. DOI:10.17816/uroved102173-180.; Лечение бесплодия, ассоциированного с высоким уровнем фрагментации ДНК сперматозоидов / Ю.В. Олефир, М.Н. Коршунов, А.Р. Живулько и др.// Экспериментальная и клиническая урология. 2022. Т. 15, № 1. С. 112–119. DOI:10.29188/2222-8543-2022-15-1-112-119.; Кореньков Д.Г., Павлов А.Л., Казимзаде Э.Д. Влияние препарата БЕСТФертил на репродуктивную функцию у мужчин с идиопатическим бесплодием. Андрология и генитальная хирургия. 2018;19(4):54-59. https://DOI.org/10.17650/2070-9781-2018-19-4-54-59; Гамидов С.И., Попова А.Ю., Гасанов Н.Г. и др. Оценка влияния комплекса «БЕСТФертил» на показатели спермограммы, оксидативного стресса и фрагментации ДНК сперматозоидов у мужчин с бесплодием. Андрология и генитальная хирургия. 2019;20(1):91-98. https://doi.org/10.17650/2070-9781-2019-20-1-91-98; Шатылко Т.В., Гамидов С.И., Попова А.Ю. Оценка влияния антиоксидантного комплекса БЕСТФертил на показатели спермограммы и выраженность астенического синдрома у мужчин, перенесших новую коронавирусную инфекцию (COVID-19). Андрология и генитальная хирургия. 2021;22(4):68-76. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2021-22-4-68-76; Оксидативный стресс сперматозоидов: клиническое значение и коррекция / С.И. Гамидов, Т.В. Шатылко, А.Ю. Попова [и др.] // Медицинский совет. 2021. № 3. С. 19–27. DOI 10.21518/2079-701X-2021-3-19-27.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/746
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: О. B. Zhukov, E. E. Bragina, A. V. Levina, V. V. Evdokimov, R. A. Terushkin, M. M. Akramov, A. S. Shakhov, A. E. Vasilyev
Πηγή: Андрология и генитальная хирургия, Vol 21, Iss 2, Pp 26-35 (2020)
Θεματικοί όροι: 2. Zero hunger, мужское бесплодие, RD1-811, патоспермия, «простатилен® ац», активные формы кислорода, Diseases of the genitourinary system. Urology, 3. Good health, 03 medical and health sciences, «аргинин-цинк», 0302 clinical medicine, Surgery, варикоцеле, RC870-923, хронический абактериальный простатит, антиспермальные антитела, фрагментация днк сперматозоидов, криотолерантность
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://agx.abvpress.ru/jour/article/download/408/360
https://doaj.org/article/b5ac5dbf881b41caad84ecb2db749c48
https://cyberleninka.ru/article/n/sravnenie-effektivnosti-preparatov-soderzhaschih-kombinatsiyu-arginina-i-tsinka-v-lechenii-muzhskogo-besplodiya/pdf
https://agx.abvpress.ru/jour/article/download/408/360
https://cyberleninka.ru/article/n/sravnenie-effektivnosti-preparatov-soderzhaschih-kombinatsiyu-arginina-i-tsinka-v-lechenii-muzhskogo-besplodiya
https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/408 -
3Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Epanchintseva, V. G. Selyatitskaya, I. A. Korneev, A. Yu. Babenko, Е. А. Епанчинцева, В. Г. Селятицкая, И. А. Корнеев, А. Ю. Бабенко
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 24, № 4 (2023); 49-58 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 24, № 4 (2023); 49-58 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: хроматин сперматозоидов, estrogens, estradiol, aromatase inhibitors, letrozole, anastrozole, sperm, spermogram, morphology according to strict Kruger criteria, sperm DNA fragmentation, oxidative stress, sperm chromatin, эстрогены, эстрадиол, ингибиторы ароматазы, летрозол, анастрозол, эякулят, спермограмма, морфология по строгим критериям Крюгера, фрагментация ДНК сперматозоидов, окислительный стресс
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/704/549; Levine H., Jørgensen N., Martino-Andrade A. et al. Temporal trends in sperm count: a systematic review and meta-regression analysis of samples collected globally in the 20th and 21st centuries. Hum Reprod Update 2022;29(2):157–76. DOI:10.1093/humupd/dmac035; Мужское бесплодие. Клинические рекомендации. Российское общество урологов, 2021. Доступно по: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/5_2 (дата обращения: 02.11.2022). .; Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадеркин И.А. и др. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000–2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология 2019;(4):4–12. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-4-12; Andrology. Male reproductive health and dysfunction. Ed. by E. Nieschlag, H.M. Behre, S. Nieschlag. Berlin: Springer Verlag, 2010. 629 р.; Jung J.H., Seo J.T. Empirical medical therapy in idiopathic male infertility: promise or panacea? Clin Exp Reprod Med 2014;41(3):108–14. DOI:10.5653/cerm.2014.41.3.108; Gundewar T., Kuchakulla M., Ramasamy R. A paradoxical decline in semen parameters in men treated with clomiphene citrate: a systematic review. Andrologia 2021;53(1):e13848. DOI:10.1111/and.13848; Huijben M., Huijsmans R.L.N., Lock M.T.W.T. et al. Clomiphene citrate for male infertility: a systematic review and meta-analysis. Andrology 2023;11(6):987–96. DOI:10.1111/andr.13388; Schlegel P.N., Sigman M., Collura B. et al. Diagnosis and treatment of infertility in men: AUA/ASRM Guideline PART II. J Urol 2021;205(1):44–51. DOI:10.1097/JU.0000000000001520; EAU guidelines on sexual and reproductive health. European Association of Urology Arnhem, Netherlands. Available at: https://uroweb.org/guidelines/sexual-and-reproductive-health/chapter/male-infertility (accessed: 02.11.2022).; Rastrelli G., Corona G., Mannucci E., Maggi M. Factors affecting spermatogenesis upon gonadotropin-replacement therapy: a meta-analytic study. Andrology 2014;2(6):794–808. DOI:10.1111/andr.262; Dostalova P., Zatecka E., Dvorakova-Hortova K. Of oestrogens and sperm: a review of the roles of oestrogens and oestrogen receptors in male reproduction. Int J Mol Sci 2017;18(5):904. DOI:10.3390/ijms18050904; Kelch R.P., Jenner M.R., Weinstein R. et al. Estradiol and testosterone secretion by human, simian, and canine testes, in males with hypogonadism and in male pseudohermaphrodites with the feminizing testes syndrome. J Clin Investig 1972;51(4):824–30. DOI:10.1172/JCI106877; Lubahn D.B., Moyer J.S., Golding T.S. et al. Alteration of reproductive function but not prenatal sexual development after insertional disruption of the mouse estrogen receptor gene. Proc Natl Acad Sci U S A 1993;90(23):11162–6. DOI:10.1073/pnas.90.23.11162; Hirata S., Shoda T., Kato J., Hoshi K. Isoform/variant mRNAs for sex steroid hormone receptors in humans. Trends Endocrinol Metab 2003;14(3):124–9. DOI:10.1016/S1043-2760(03)00028-6; Dumasia K., Kumar A., Kadam L., Balasinor N.H. Effect of estrogen receptor-subtype-specific ligands on fertility in adult male rats. J Endocrinol 2015;225(3):169–80. DOI:10.1530/JOE-15-0045; Dumasia K., Kumar A., Deshpande S. et al. Differential roles of estrogen receptors, ESR1 and ESR2, in adult rat spermatogenesis. Mol Cell Endocrinol 2016;428:89–100. DOI:10.1016/j.mce.2016.03.024; Upadhyay R.D., Kumar A.V., Ganeshan M., Balasinor N.H. Tubulobulbar complex: cytoskeletal remodeling to release spermatozoa. Reprod Biol Endocrinol 2012;10:27. DOI:10.1186/1477-7827-10-27; Lucas T.F.G., Lazari M.F.M., Porto C.S. Differential role of the estrogen receptors ESR1 and ESR2 on the regulation of proteins involved with proliferation and differentiation of Sertoli cells from 15-day-old rats. Mol Cell Endocrinol 2014;382(1):84–96. DOI:10.1016/j.mce.2013.09.015; Yanagimachi R. Mammalian fertilization. In: The physiology of reproduction. Ed. by E. Knobil, J.D. Neill. New York: Raven Press, 1994. Pp. 189–317.; Ded L., Sebkova N., Cerna M. et al. In vivo exposure to 17βestradiol triggers premature sperm capacitation in cauda epididymis. Reproduction 2013;145(3):255–63. DOI:10.1530/REP-12-0472; Справочник Видаль. Инструкция по применению препарата Летрозол. Доступно по: https://www.vidal.ru/drugs/letrozole__29301?ysclid=lddgkcwi22729917312 (дата обращения: 12.04.2022); Справочник Видаль. Инструкция по применению препарата Анастрозол. Доступно по: https://www.vidal.ru/drugs/anastrozole-1?ysclid=lddgpk4z9z942508447 (дата обращения 12.04.2022); Vigersky R.A., Glass A.R. Effects of delta 1-testolactone on the pituitary-testicular axis in oligospermic men. J Clin Endocrinol Metab 1981;52(5):897–902. DOI:10.1210/jcem-52-5-897; Pavlovich C.P., King P., Goldstein M., Schlegel P.N. Evidence of a treatable endocrinopathy in infertile men. J Urol 2001;165(3):837–41. DOI:10.1016/S0022-5347(05)66540-8; Shuling L., Sie Kuei M.L., Saffari S.E. et al. Do men with normal testosterone-oestradiol ratios benefit from letrozole for the treatment of male infertility? Reprod Biomed Online 2019;38(1):39–45. DOI:10.1016/j.rbmo.2018.09.016; Schlegel P.N. Aromatase inhibitors for male infertility. Fertil Steril 2012;98(6):1359–62. DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.10.023; Clark R.V., Sherins R.J. Treatment of men with idiopathic oligozoospermic infertility using the aromatase inhibitor, testolactone. Results of a double-blinded, randomized, placebo-controlled trial with crossover. J Androl 1989;10(3):240–7. DOI:10.1002/j.1939-4640.1989.tb00094.x; Del Giudice F., Busetto G.M., De Berardinis E. et al. A systematic review and meta-analysis of clinical trials implementing aromatase inhibitors to treat male infertility. Asian J Androl 2020;22(4):360–7. DOI:10.4103/aja.aja_101_19; Guo B., Li J.J., Ma Y.L. et al. Efficacy and safety of letrozole or anastrozole in the treatment of male infertility with low testosterone-estradiol ratio: a meta-analysis and systematic review. Andrology 2022;10(5):894–909. DOI:10.1111/andr.13185; Tian F., Diao R., Zhen W. Clinical treatment on the low testosterone estradiol ratio of patients with oligoasthenospermia. Chinese J Coal Ind Med 2016.; Kooshesh L., Bahmanpour S., Zeighami S., Nasr-Esfahani M.H. Effect of Letrozole on sperm parameters, chromatin status and ROS level in idiopathic oligo/astheno/teratozoospermia. Reprod Biol Endocrinol 2020;18(1):47. DOI:10.1186/s12958-020-00591-2; Murad M. Aromatase inhibitors in infertile patients: effects on seminal parameters, serum and seminal plasma testosterone levels, and estradiol levels during short-term follow-up. Turk J Med Sci 2009;39(4):519–24.; Павлова З.Ш., Аметов А.С., Голодников И.И., Камалов А.А. Нормализация баланса эстрогенов и андрогенов у мужчин с гиперэстрогенией при использовании препарата класса ингибиторов ароматазы – летрозол. Акушерство, гинекология и репродукция. 2022;16(1):16–28. DOI:10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.282; González-Marín C., Gosálvez J., Roy R. Types, causes, detection and repair of DNA fragmentation in animal and human sperm cells. Int J Mol Sci 2012;13(11):14026–52. DOI:10.3390/ijms131114026; Andrabi S. Mammalian sperm chromatin structure and assessment of DNA fragmentation. J Assist Reprod Genet 2007;24(12):561–9. DOI:10.1007/s10815-007-9177-y; Nili H.A., Mozdarani H., Aleyasin A. Correlation of sperm DNA damage with protamine deficiency in Iranian subfertile men. Reprod Biomed Online 2009;18(4):479–85. DOI:10.1016/s1472-6483(10)60123-x; Roca J. Topoisomerase II: a fitted mechanism for the chromatin landscape. Nucleic Acids Res 2008;37(3):721–30. DOI:10.1093/nar/gkn994; Bakshi R., Galande S., Bali P. et al. Developmental and hormonal regulation of type II DNA topoisomerase in rat testis. J Mol Endocrinol 2001;26(3):193–206. DOI:10.1677/jme.0.0260193; Muratori M., Baldi E. Effects of FSH on sperm DNA fragmentation: review of clinical studies and possible mechanisms of action. Front Endocrinol (Lausanne) 2018;9:734. DOI:10.3389/fendo.2018.00734; Colacurci N., De Leo V., Ruvolo G. et al. Recombinant FSH improves sperm DNA damage in male infertility: a phase II clinical trial. Front Endocrinol (Lausanne) 2018;9:383. DOI:10.3389/fendo.2018.00383; Ruvolo G., Fornaro F., Bosco L. et al. r-FSH administration in idiopathic oligoasthenoteratozoospermic patients (iOAT) reduces the apoptotic rate in sperm cells. Fertil Steril 2009;92(3):S72–S3. DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.07.281; Витязева И.И., Боголюбова С.В., Брагина Е.Е., Арифулин Е.А. Возможность получения сперматозоидов у мужчин с немозаичной формой синдрома Клайнфельтера в программах экстракорпорального оплодотворения. Обзор литературы и описание случая. Андрология и генитальная хирургия 2014;15(3):16–25. DOI:10.17650/2070-9781-2014-3-16-25; Почерников Д.Г., Стрельников А.И., Винокуров Е.Ю. Способ коррекции гиперэстрадиолемии и нормогонадотропного гипогонадизма у мужчин. Патент РФ № RU 2474424 C2 от 10.02.2013. Доступно по: https://patents.s3.yandex.net/RU2474424C2_20130210.pdf; Гамидов С.И., Тажетдинов О.Х. Способ прогнозирования эффективности ингибиторов ароматазы в лечении идиопатического бесплодия у мужчин с ожирением. Патент РФ № RU 2503008 C1 от 27.12.2013. Доступно по: https://patents.s3.yandex.net/RU2503008C1_20131227.pdf; Тажетдинов О.Х. Особенности диагностики и лечения бесплодия у мужчин с ожирением. Автореф. дис. … канд. мед. наук. М., 2012. 27 с.; Ожирение и избыточный вес. Информационный бюллетень ВОЗ. Доступно по: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight (дата обращения: 26.09.2021).; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Свиридова М.А., Лутов Ю.В. Медико-социальные факторы риска бесплодия у мужчин. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(3):47–53. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-3-47-53; Ng M., Fleming T., Robinson M. et al. Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980–2013: a systematic analysis for the global burden of disease study 2013. Lancet 2014;384(9945):766–81. DOI:10.1016/S0140-6736(14)60460-8; Campbell J.M., Lane M., Owens J.A., Bakos H.W. Paternal obesity negatively affects male fertility and assisted reproduction outcomes: a systematic review and meta-analysis. Reprod Biomed Online 2015;31(5):593–604. DOI:10.1016/j.rbmo.2015.07.012; Aly J.M., Polotsky A.J. Paternal diet and obesity: effects on reproduction. Semin Reprod Med 2017;35(4):313–7. DOI:10.1055/s-0037-1602593; Campbell J.M., McPherson N.O. Influence of increased paternal BMI on pregnancy and child health outcomes independent of maternal effects: a systematic review and meta-analysis. Obes Res Clin Pract 2019;13(6):511–21. DOI:10.1016/j.orcp.2019.11.003; Bieniek J.M., Kashanian J.A., Deibert C.M. et al. Influence of increasing body mass index on semen and reproductive hormonal parameters in a multi-institutional cohort of subfertile men. Fertil Steril 2016;106(5):1070–5. DOI:10.1016/j.fertnstert.2016.06.041; Sermondade N., Faure C., Fezeu L. et al. BMI in relation to sperm count: an updated systematic review and collaborative meta-analysis. Hum Reprod Update 2013;19(3):221–31. DOI:10.1093/humupd/dms050; Guo D., Wu W., Tang Q. et al. The impact of BMI on sperm parameters and the metabolite changes of seminal plasma concomitantly. Oncotarget 2017;8(30):48619–34. DOI:10.18632/oncotarget.14950; Sepidarkish M., Maleki-Hajiagha A., Maroufizadeh S. et al. The effect of body mass index on sperm DNA fragmentation: a systematic review and meta-analysis. Int J Obes (Lond) 2020;44(3):549–58. DOI:10.1038/s41366-020-0524-8; Le W., Su S.H., Shi L.H. et al. Effect of male body mass index on clinical outcomes following assisted reproductive technology: a meta-analysis. Andrologia 2016;48(4):406–24. DOI:10.1111/and.12461; Leisegang K., Henkel R., Agarwal A. Obesity and metabolic syndrome associated with systemic inflammation and the impact on the male reproductive system. Am J Reprod Immunol 2019;82(5):e13178. DOI:10.1111/aji.13178; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/704
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: O. B. Zhukov, E. E. Bragina, V. V. Evdokimov, A. E. Vasiliev, M. Ulusoylu-Dumlu, О. Б. Жуков, Е. Е. Брагина, В. В. Евдокимов, А. Э. Васильев, М. Улусойлу-Думлу
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 23, № 1 (2022); 60-75 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 23, № 1 (2022); 60-75 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: доброкачественная гиперплазия предстательной железы, infertility, pathozoospermia, reactive oxygen species, DNA fragmentation, electron microscopy of spermatozoa, uroflowmetry, prostate ultrasound, chronic pelvic pain syndrome, benign prostatic hyperplasia, бесплодие, патозооспермия, активные формы кислорода, фрагментация ДНК сперматозоидов, электронная микроскопия сперматозоидов, урофлоуметрия, ультразвуковое исследование предстательной железы, синдром хронической тазовой боли
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/546/453; Евдокимов В.В., Жуков О.Б., Бабушкина Е.В. Анализ параметров эякулята у мужчин в различных возрастных группах. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(2):39–43. [Evdokimov V.V., Zhukov O.B., Babushkina E.V. Analysis of ejaculate parameters in different age groups. Andrologiya i genital’naya khirurgiya = Andrology and Genital Surgery 2016;17(2):39–43. (In Russ.)]. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-2-00-00.; Аляев Ю.Г., Винаров А.З., Ахвледиани Н.Д. Хронический простатит и сексуальные нарушения. В кн.: Пленум правления Российского общества урологов: Материалы. Саратов, 2004. С. 169–77. [Alyaev Yu.G., Vinarov A.Z., Akhvlediani N.D. Chronic prostatitis and sexual disorders. In: Plenum of the Russian Society of Urologists Board: Proceedings. Saratov, 2004. Pp. 169–77. (In Russ.)].; Аполихин О.И., Сивков A.B., Ощепков B.Н. и др. Проблема хронического неинфекционного простатита с позиции доказательной медицины. В кн.: Материалы X Росийского съезда урологов. М., 2002. С. 223–7. [Apolikhin O.I., Sivkov A.B., Oshchepkov V.N. et al. The problem of chronic non-infectious prostatitis from the point of view of evidence-based medicine. In: Proceedings of the X Russian Congress of Urologists. Moscow, 2002. Pp. 223–7. (In Russ.)].; Аполихин О.И., Сивков А.В., Ощепков В.Н. и др. Об эффективности лекарственного средства Цернилтон® при хроническом неинфекционном простатите. Экспериментальная и клиническая урология 2010;2:56–60. [Apolikhin O.I., Sivkov A.V., Oshchepkov V.N. et al. Effectiveness of Cernilton® in patients with chronic аbacterial prostatitis. Eksperimentalnaya i klinicheskaya urologiya = Experimental and Clinical Urology 2010;2:56–60. (In Russ.)].; Аполихина И.А., Миркин Я.Б., Эйзенах И.А. и др. Тазовые дисфункции и болевые синдромы в практике уролога. Экспериментальная и клиническая урология 2012;2:84–90. [Apolihina I.A., Mirkin Ya.B., Eyzenah I.A. et al. Perinneal pain and dysfunction in urological practice. Eksperimentalnaya i klinicheskaya urologiya = Experimental and Clinical Urology 2012;2:84–90. (In Russ.)].; Арнольди Э.К. Хронический простатит: Проблемы, перспективы, опыт. Ростов-на-Дону: Феникс, 1999. 317 с. [Arnoldi E.K. Chronic prostatitis: Problems, prospects, experience. Rostov-on-Don: Feniks, 1999. 317 р. (In Russ.)].; Бойко Н.И. Нарушение репродукции при простатите/синдроме хронической тазовой боли. Международный медицинский журнал 2004;10(2):103–6. [Boyko N.I. Disturbances of reproductive function in prostatitis/syndrome of chronic pelvic pain. Mezhdunarodnyy meditsinskiy zhurnal = International Medical Journal 2004;10(2):103–6. (In Russ.)].; Болотов А.В., Извозчиков С.Б. Габапентин (нейронтин) в лечении невропатической тазовой боли/пудендоневропатии. В кн.: Медицинская реабилитация пациентов с патологией опорно-двигательной и опорной систем: Материалы 7-й городской науч.- практ. конф. М., 2006. С. 251. [Bolotov A.V., Izvozchikov S.B. Gabapentin (neurontin) in the treatment of neuropathic pelvic pain/pudendal neuropathy. In: Medical rehabilitation of patients with the pathology of musculoskeletal and supporting systems: Proceedings of the 7th City Scientific and Practical Conference. Moscow, 2006. Pp. 251. (In Russ.)].; Вакина Т.Н., Шутов А.М., Шалина С.В. и др. Дегидроэпиандростерон и половая функция у мужчин с хроническим простатитом. Урология 2003;1:49–52. [Vakina T.N., Shutov A.M., Shalina S.V. et al. Dehydroepiandrosterone (DHEA) and sexual function in men with chronic prostatitis. Urologiya = Urology 2003;1:49–52. (In Russ.)].; Вейн А.М., Вознесенская Т.Г., Голубев В.Л., Дюкова Г.М. Депрессия в неврологической практике. М.: МИА, 2007. 208 с. [Veyn A.M., Voznesenskaya T.G., Golubev V.L., Dyukova G.M. Depression in neurological practice. Moscow: MIA, 2007. 208 p. (In Russ.)].; Винник Ю.Ю. Современное состояние вопроса о диагностике хронического простатита. Андрология и генитальная хирургия 2004;5(1–2):8–15. [Vinnik Yu.Yu. Current status of the issue of diagnosis of chronic prostatitis. Andrologiya i genital’naya khirurgiya = Andrology and Genital Surgery 2004;5(1–2):8–15. (In Russ.)].; Kupelian V., Wei J.T., O’Leary M.P. et al. Prevalence of lower urinary tract symptoms and effect on quality of life in a racially and ethnically diverse random sample: the Boston Area Community Health (BACH) survey. Arch Intern Med 2006;166:2381–7. DOI:10.1001/archinte.166.21.2381.; Taylor B.C., Wilt T.J., Fink H.A. et al. Prevalence, severity and health correlates of lower urinary tract symptoms among older men: the MrOS study. Urology 2006;68(4):804–9. DOI:10.1016/j.urology.2006.04.019.; Abrams P., Cardozo L., Fall M. et al. The standardisation of terminology in lower urinary tract function: report from the standardisation sub-committee of the International Continence Society. Urology 2003;61(1):37–49. DOI:10.1016/s0090-4295(02)02243-4.; Abrams P., Artibani W., Gajewski J.B., Hussain I. Assessment of treatment outcomes in patients with overactive bladder: importance of objective and subjective measures. Urology 2006;68(2 Suppl):17–28. DOI:10.1016/j.urology.2006.05.044.; Irwin D.E., Milsom I., Hunskaar S. et al. Population-based survey of urinary incontinence, overactive bladder, and other lower urinary tract symptoms in five countries: Results of the EPIC study. Eur Urol 2006;50(6):1306–14; discussion 1314–5. DOI:10.1016/j.eururo.2006.09.019.; Корнеев И.А., Алексеева Т.А., Коган М.И., Пушкарь Д.Ю. Эпидемиология расстройств мочеиспускания у мужчин Российской Федерации. Урология 2016;2(2 Suppl):70–5. [Korneev I.A., Alekseeva T.A., Kogan M.I., Pushkar D.Yu. Epidemiology of urinary disorders in men in the Russian Federation. Urologiya = Urology 2016;2(2 Suppl):70–5. (In Russ.)].; Жуков О.Б., Капто А.А., Михайленко Д.С., Евдокимов В.В. Варикозная болезнь малого таза. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(4):72–7. [Zhukov O.B., Kapto A.A., Mikhaylenko D.S., Evdokimov V.V. Varicose veins of the pelvis men. Andrologiya i genital’naya khirurgiya = Andrology and Genital Surgery 2016;17(4):72–7. (In Russ.)]. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-4-72-77.; Madersbacher S., Berger I., Ponholzer A., Marszalek M. Plant extracts: sense or nonsense? Curr Opin Urol 2008;18(1):16–20. DOI:10.1097/MOU.0b013e3282f0d5c8.; Habib F.K., Wyllie M.G. Not all brands are created equal: a comparison of selected components of different brands of Serenoa repens extract. Prostate Cancer Prostatic Dis 2004;7(3):195–200. DOI:10.1038/sj.pcan.4500746.; Scaglione F., Lucini V., Pannacci M. et al. Comparison of the potency of different brands of Serenoa repens extract on 5alpha-reductase types I and II in prostatic co-cultured epithelial and fibroblast cells. Pharmacology 2008;82(4):270–5.; de Monte C., Carradori S., Granese A. et al. Modern extraction techniques and their impact on the pharmacological profile of Serenoa repens extracts for the treatment of lower urinary tract symptoms. BMC Urol 2014;14:63. DOI:10.1186/1471-2490-14-63.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/546
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Khmil, S. V., Mayorova, O. Yu., Malanchuk, L. M., Khmil, М. S., Khmil-Dosvald, A. S., Dudchuk, I. V.
Πηγή: Actual Problems of Pediatrics, Obstetrics and Gynecology; No. 2 (2020); 173-178 ; Актуальные вопросы педиатрии, акушерства и гинекологии; № 2 (2020); 173-178 ; Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології; № 2 (2020); 173-178 ; 2415-301X ; 2411-4944 ; 10.11603/24116-4944.2020.2
Θεματικοί όροι: ejaculate, sperm DNA fragmentation, assisted reproductive technologies, pregnancy, еякулят, фрагментація ДНК сперматозоїдів, допоміжні репродуктивні технології, виношування вагітності, эякулят, фрагментация ДНК сперматозоидов, вспомогательные репродуктивные технологии, вынашивание беременности
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: M. N. Korshunov, E. S. Korshunova, Yu. V. Kastrikin, S. P. Darenkov, М. Н. Коршунов, Е. С. Коршунова, Ю. В. Кастрикин, С. П. Даренков
Πηγή: Urology Herald; Том 9, № 2 (2021); 74-79 ; Вестник урологии; Том 9, № 2 (2021); 74-79 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-2
Θεματικοί όροι: селективные ингибиторы обратного захвата серотонина, spermatogenesis, sperm DNA fragmentation, fluoxetine, depression, selective serotonin reuptake inhibitors, сперматогенез, фрагментация ДНК сперматозоидов, флуоксетин, депрессия
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/455/330; World Health Organization. Depression. Available at: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/depression. Accessed December 21, 2020.; Jurewicz J, Radwan M, Merecz-Kot D, Sobala W, Ligocka D, Radwan P, Bochenek M, Hanke W. Occupational, life stress and family functioning: does it affect semen quality? Ann Hum Biol. 2014;41(3):220-228. https://dx.doi.org/10.3109/03014460.2013.849755; Gradvohl SM, Osis MJ, Makuch MY. The stress of men and women seeking treatment for infertility. Rev Bras Ginecol Obstet. 2013;35(6):255-261. https://dx.doi.org/10.1590/s0100-72032013000600004; Dong YZ, Yang XX, Sun YP. Correlative analysis of social support with anxiety and depression in men undergoing in vitro fertilization embryo transfer for the first time. J Int Med Res. 2013;41(4):1258-1265. https://dx.doi.org/10.1177/0300060513483416; Rockliff HE, Lightman SL, Rhidian E, Buchanan H, Gordon U, Vedhara K. A systematic review of psychosocial factors associated with emotional adjustment in vitro fertilization patients. Hum Reprod Update. 2014;20(4):594-613. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmu010; Bhongade MB, Prasad S, Jiloha RC, Ray PC, Mohapatra S, Koner BC. Effect of psychological stress on fertility hormones and seminal quality in male partners of infertile couples. Andrologia. 2014;47(3):336-342. https://dx.doi.org/10.1111/and.12268; Peterson BD, Sejbaek CS, Pirritano M, Schmidt L. Are severe depressive symptoms associated with infertility-related distress in individuals and their partners? Hum Reprod. 2014;29(1):76-82. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/det412; Chiaffarino F, Baldini MP, Scarduelli C, Bommarito F, Ambrosio S, D'Orsi C, Torretta R, Bonizzoni M, Ragni G. Prevalence and incidence of depressive and anxious symptoms in couples undergoing assisted reproductive treatment in an Italian infertility department. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2011;158(2):235-241. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2011.04.032; National Institute for Health and Clinical Exellence. Depression: the Treatment and Managment of Depression in Adults. National Institute for Health and Clinical Excellence: Guidance. British Psychological Society. 2010. PMID: 22132433; Clinical guideline. Depression in adults: recognition and management. 2009. Available at: www.nice.org.uk/CG90. Accessed December 21, 2020.; Whitaker-Azmitia PM. The discovery of serotonin and its role in neuroscience. Neuropsychopharmacology. 1999;21(Suppl.2):2-8. https://dx.doi.org/10.1016/S0893-133X(99)00031-7; Jiménez-Trejo F, Tapia-Rodríguez M, Queiroz DB, Padilla P, Avellar MC, Manzano PR, Manjarrez-Gutiérrez G, Gutiérrez-Ospina G. Serotonin concentration, synthesis, cell origin, and targets in the rat caput epididymis during sexual maturation and variations associated with adult mating status: morphological and biochemical studies. J Androl. 2007;28(1):136-149. https://dx.doi.org/10.2164/jandrol.106.000653; Jiménez-Trejo F, Tapia-Rodríguez M, Cerbón M, Kuhn DM. Manjarrez-Gutiérrez G, Mendoza-Rodríguez CA, Picazo O. Evidence of 5-HT components in human sperm: implications for protein tyrosine phosphorylation and the physiology of motility. Reproduction. 2012;144(6):677685. https://dx.doi.org/10.1530/REP-12-0145; Syed V, Gomez E, Hecht N. Messenger ribonucleic acids encoding a serotonin receptor and a novel gene are induced in Sertoli cells by a secreted factor(s) from male rat meiotic germ cells. Endocrinology. 1999;140(12):5754-5760. https://dx.doi.org/10.1210/endo.140.12.7194; Maier U, Koinig F. Andrological findings in young patients under long-term antidepressive therapy with clomipramine. Neuropsychopharmacology. 1994;116(3):357-359. https://dx.doi.org/10.1007/BF02245340; Tanrikut C, Feldman AS, Altemus M, Paduch DA, Schlegel PN. Adverse effect of paroxetine on sperm. Fertil Steril. 2010;94(3):1021-1026. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.04.039; World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination and processing of human semen. 5th ed. Prepublication version 2010. Available at: https://apps.who.int/iris/handle/10665/44261. Accessed December 21, 2020.; Jing E, Straw-Wilson K. Sexual dysfunction in selective serotonin reuptake inhibitors (SSRIs) and potential solutions: A narrative literature review. Ment Health Clin. 2016;29;6(4):191-196. https://dx.doi.org/10.9740/mhc.2016.07.191; N0rr L, Bennedsen B, Fedder J, Larsen ER. The use of selective serotonin reuptake inhibitors reduces fertility in men. Andrology. 2016;4(3):389-94. https://dx.doi.org/10.1111/andr.12184; Mueller A, Kiguti LRA, Silva EJR, Pupo AS. Contractile Effects of Serotonin (5-HT) in the Rat Cauda Epididymis: Expression and Functional Characterization of 5-HT Receptors. J Pharmacol Exp Ther. 2019;369(1):98-106. https://dx.doi.org/10.1124/jpet.118.254110; Bataineh HN, Daradka T. Effects of long-term use of fluoxetine on fertility parameters in adult male rats. Neuro Endocrinol Lett. 2007;28(3):321-325. PMID: 17627270; Monteiro Filho WO, de Torres SM, Amorim MJ, Andrade AJ, de Morais RN, Tenorio BM, da Silva Junior VA. Fluoxetine induces changes in the testicle and testosterone in adult male rats exposed via placenta and lactation. Syst Biol Reprod Med. 2014;60(5):274-281. https://dx.doi.org/10.3109/19396368.2014.933984; Kumar VS, Sharma VL, Tiwari P, Singh D, Maikhuri JP, Gupta G, Singh MM. The spermicidal and antitrichomonas activities of SSRI antidepressants. Bioorg Med Chem Lett. 20061;16(9):2509-2512. doi:10.1016/j.bmcl.2006.01.078; Curti C, Mingatto FE, Polizello A, Galastri L, Uyemura S, Santos A. Fluoxetine interacts with the lipid bilayer of the inner membrane in isolated rat brain mitochondria, inhibiting electron transport and F1F0-ATPase activity. Mol Cell Biochem. 1999;199(1-2):103-109. https://dx.doi.org/10.1023/a:1006912010550; Safarneiad MR. Sperm DNA damage and semen quality impairment after treatment with selective serotonin reuptake inhibitors detected using semen analysis andsperm chromatin structure assay. J Urol. 2008;180(5):2124-2128. https://dx.doi.org/10.1016/j.juro.2008.07.034; Beeder LA, Samplaski MK. Effect of antidepressant medications on semen parameters and male fertility. Int J Urol. 2020;27(1):39-46. https://dx.doi.org/10.1111/iju.14111; Tanrikut C, Schlegel P. Antidepressant-associated changes in semen parameters. J Urol. 2007;69(1):185-187. https://dx.doi.org/10.1016/j.urology.2006.10.034; https://www.urovest.ru/jour/article/view/455
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин
Πηγή: Urology Herald; Том 9, № 2 (2021); 142-149 ; Вестник урологии; Том 9, № 2 (2021); 142-149 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-2
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, CFTR gene, male infertility, non-obstructive azoospermia, advanced paternal age, sperm DNA fragmentation, ген CFTR, мужское бесплодие, необструктивная азооспермия, старший отцовский возраст
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/444/319; Karavani G, Kan-Tor Y, Schachter-Safrai N, Levitas E, Or Y, Ben-Meir A, Buxboim A, Har-Vardi I. Does sperm origin-Ejaculated or testicular-Affect embryo morphokinetic parameters? Andrology. 2021;9(2):632-639. DOI:10.1111/andr.12952; Moreno-Sepulveda J, Rajmil O. Seminal human papillomavirus infection and reproduction: a systematic review and meta-analysis. Andrology. 2021;9(2):478-502. DOI:10.1111/andr.12948; Gundewar T, Kuchakulla M, Ramasamy R. A paradoxical decline in semen parameters in men treated with clomiphene citrate: A systematic review. Andrologia. 2021;53(1):e13848. DOI:10.1111/and.13848; Hayon S, Moustafa S, Boylan C, Kohn TP, Peavey M, Coward RM. Surgically Extracted Epididymal Sperm from Men with Obstructive Azoospermia Results in Similar In Vitro Fertilization/Intracytoplasmic Sperm Injection Outcomes Compared with Normal Ejaculated Sperm. J Urol. 2021;205(2):561-7. DOI:10.1097/JU.0000000000001388; Salonia A, Bettocchi C, Carvalho J, Corona G, Jones TH, Kadioglu A, Martinez-Salamanca JI, Minhas S, Serefoglu EC, Verze P. Sexual and Reproductive Health. In: EAU Guidelines. Edn. presented at the EAU Annual Congress Amsterdam 2020. ISBN 978-94-92671-07-3. Publisher: EAU Guidelines Office. Place published: Arnhem, The Netherlands. 2020. https://uroweb.org/wp-content/uploads/EAU-Guidelines-on-Sexual-and-Reproductive-Health-2020.pdf; Shiraishi K, Oka S, Matsuyama H. Testicular Testosterone and Estradiol Concentrations and Aromatase Expression in Men with Nonobstructive Azoospermia. J Clin Endocrinol Metab. 2021;106(4):e1803-15. DOI:10.1210/clinem/dgaa860; Dahan MH, Mills G, Khoudja R, Gagnon A, Tan G, Tan SL. Three hour abstinence as a treatment for high sperm DNA fragmentation: a prospective cohort study. J Assist Reprod Genet. 2021;38(1):227-33. DOI:10.1007/s10815-020-01999-w; Luke B, Brown MB, Wantman E, Forestieri NE, Browne ML, Fisher SC, Yazdy MM, Ethen MK, Canfield MA, Watkins S, Nichols HB, Farland LV, Oehninger S, Doody KJ, Eisenberg ML, Baker VL. The risk of birth defects with conception by ART. Hum Reprod. 2021;36(1):116-129. DOI:10.1093/ humrep/deaa272. PMID: 33251542; Rudnik-Schoneborn S, Messner M, Vockel M, Wirleitner B, Pinggera GM, Witsch-Baumgartner M, Murtinger M, Kliesch S, Swoboda M, Sanger N, Zschocke J, Tuttelmann F. Andrological findings in infertile men with two (biallelic) CFTR mutations: results of a multicentre study in Germany and Austria comprising 71 patients. Hum Reprod. 2021;36(3):551-559. DOI:10.1093/humrep/deaa348; Van Opstal J, Fieuws S, Spiessens C, Soubry A. Male age interferes with embryo growth in IVF treatment. Hum Reprod. 2021;36(1):107-115. DOI:10.1093/humrep/deaa256; Schlegel PN, Sigman M, Collura B, De Jonge CJ, Eisenberg ML, Lamb DJ, Mulhall JP, Niederberger C, Sandlow JI, Sokol RZ, Spandorfer SD, Tanrikut C, Treadwell JR, Oristaglio JT, Zini A. Diagnosis and treatment of infertility in men: AUA/ASRM guideline part I. Fertil Steril. 2021;115(1):54-61. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.11.015; Schlegel PN, Sigman M, Collura B, De Jonge CJ, Eisenberg ML, Lamb DJ, Mulhall JP, Niederberger C, Sandlow JI, Sokol RZ, Spandorfer SD, Tanrikut C, Treadwell JR, Oristaglio JT, Zini A. Diagnosis and treatment of infertility in men: AUA/ ASRM guideline part II. Fertil Steril. 2021;115(1):62-69. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.11.016; Oldereid NB, Wennerholm UB, Pinborg A, Loft A, Laivuori H, Petzold M, Romundstad LB, Soderstrom-Anttila V, Bergh C. The effect of paternal factors on perinatal and paediatric outcomes: a systematic review and metaanalysis. Hum Reprod Update. 2018;24(3):320-389. doi:10.1093/humupd/dmy005; https://www.urovest.ru/jour/article/view/444
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин
Πηγή: Urology Herald; Том 9, № 1 (2021); 105-112 ; Вестник урологии; Том 9, № 1 (2021); 105-112 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2021-9-1
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, assisted reproductive technologies, Klinefelter's syndrome, male infertility, micro-TESE, nonobstructive azoospermia, oxidative stress, sperm DNA fragmentation, мужское бесплодие, необструктивная азооспермия, окислительный стресс, синдром Кляйнфельтера, старший отцовский возраст
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/420/307; Salonia A, Bettocchi C, Carvalho J. Sexual and Reproductive Health. In: EAU Guidelines on Sexual and Reproductive Health presented at the EAU Annual Congress Amsterdam 2020. ISBN 978-94-92671-07-3. Publisher: EAU Guidelines Office. Place published: Arnhem, The Netherlands. 2020; Esteves SC, Roque M, Bedoschi G, Haahr T, Humaidan P. Intracytoplasmic sperm injection for male infertility and consequences for offspring. Nat Rev Urol. 2018;15(9):535-562. DOI:10.1038/s41585-018-0051-8; Liu L, Wang H, Li Z, Niu J, Tang R. Obstetric and perinatal outcomes of intracytoplasmic sperm injection versus conventional in vitro fertilization in couples with nonsevere male infertility. Fertil Steril. 2020;114(4):792-800. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.04.058; Del Giudice F, Kasman AM, De Berardinis E, Busetto GM, Belladelli F, Eisenberg ML. Association between male infertility and male-specific malignancies: systematic review and meta-analysis of population-based retrospective cohort studies. Fertil Steril. 2020;114(5):984-996. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.04.042; Caetano G, Bozinovic I, Dupont C, Leger D, Levy R, Sermondade N. Impact of sleep on female and male reproductive functions: a systematic review. Fertil Steril. 2020:S0015-0282(20)32188-9. DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.08.1429; Abbasi B, Molavi N, Tavalaee M, Abbasi H, Nasr-Esfahani MH. Alpha-lipoic acid improves sperm motility in infertile men after varicocelectomy: a triple-blind randomized controlled trial. Reprod Biomed Online. 2020;41(6):1084-1091. DOI:10.1016/j.rbmo.2020.08.013; Schlegel PN, Sigman M, Collura B, De Jonge CJ, Eisenberg ML, Lamb DJ, Mulhall JP, Niederberger C, Sandlow JI, Sokol RZ, Spandorfer SD, Tanrikut C, Treadwell JR, Oristaglio JT, Zini A. Diagnosis and Treatment of Infertility in Men: AUA/ASRM Guideline PART II. J Urol. 2021;205(1):44-51. DOI:10.1097/JU.0000000000001520; Tharakan T, Salonia A, Corona G, Dhillo W, Minhas S, Jayasena C. The Role of Hormone Stimulation in Men With Nonobstructive Azoospermia Undergoing Surgical Sperm Retrieval. J Clin Endocrinol Metab. 2020;105(12):dgaa556. DOI:10.1210/clinem/dgaa556; Zeadna A, Khateeb N, Rokach L, Lior Y, Har-Vardi I, Harlev A, Huleihel M, Lunenfeld E, Levitas E. Prediction of sperm extraction in non-obstructive azoospermia patients: a machine-learning perspective. Hum Reprod. 2020;35(7):1505-1514. DOI:10.1093/humrep/deaa109; Ramasamy R, Padilla WO, Osterberg EC, Srivastava A, Reifsnyder JE, Niederberger C, Schlegel PN. A comparison of models for predicting sperm retrieval before microdissection testicular sperm extraction in men with nonobstructive azoospermia. J Urol. 2013;189(2):638-42. DOI:10.1016/j.juro.2012.09.038; Caroppo E, Colpi GM. Prediction of sperm retrieval with the aid of machine-learning models cannot help in the management of patients with non-obstructive azoospermia when a less-effective surgical treatment is used. Hum Reprod. 2020;35(12):2872-2873. DOI:10.1093/humrep/deaa260; Boitrelle F, Bendayan M, Robin G. Predicting sperm extraction in non-obstructive azoospermia patients. Hum Reprod. 2020;35(12):2871-2872. DOI:10.1093/humrep/deaa258; Zeadna A, Khateeb N, Rokach L, Lior Y, Har-Vardi I, Harlev A, Huleihel M, Lunenfeld E, Levitas E. Reply: Predicting sperm extraction in non-obstructive azoospermia patients: a machine-learning perspective. Hum Reprod. 2020;35(12):2873-2876. DOI:10.1093/humrep/deaa259; Gai J, Nosrati R, Neild A. High DNA integrity sperm selection using surface acoustic waves. Lab Chip. 2020;20(22):4262-4272. DOI:10.1039/d0lc00457j; Salmon-Divon M, Shrem G, Balayla J, Nehushtan T, Volodar-sky-Perel A, Steiner N, Son WY, Dahan MH. An age-based sperm nomogram: the McGill reference guide. Hum Reprod. 2020;35(10):2213-2225. DOI:10.1093/humrep/deaa196; Рогозин Д.С., Миронов В.Н., Сергийко С.В., Рогозина А.А., Площанская О.Г. Клиническое значение «старшего отцовского возраста» в контексте мужского бесплодия и вспомогательных репродуктивных технологий. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;11(4):60-6. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-60-66; Guo F, Fang A, Fan Y, Fu X, Lan Y, Liu M, Cao S, An G. Role of treatment with human chorionic gonadotropin and clinical parameters on testicular sperm recovery with microdissection testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection outcomes in 184 Klinefelter syndrome patients. Fertil Steril. 2020;114(5):997-1005. DOI:10.1016/j.fertn-stert.2020.05.043; Vaughan DA, Tirado E, Garcia D, Datta V, Sakkas D. DNA fragmentation of sperm: a radical examination of the contribution of oxidative stress and age in 16 945 semen samples. Hum Reprod. 2020;35(10):2188-2196. DOI:10.1093/hum-rep/deaa159; Johnson SL, Dunleavy J, Gemmell NJ, Nakagawa S. Consistent age-dependent declines in human semen quality: a systematic review and meta-analysis. Ageing Res Rev. 2015;19:22-33. DOI:10.1016/j.arr.2014.10.007; https://www.urovest.ru/jour/article/view/420
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: M. N. Korshunov, M. V. Sonina, Z. A. Kadyrov, E. S. Korshunova, R. V. Salyukov, М. Н. Коршунов, М. В. Сонина, З. А. Кадыров, Е. С. Коршунова, Р. В. Салюков
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 22, № 4 (2021); 22-26 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 22, № 4 (2021); 22-26 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, traumatic spinal cord disease, male infertility, erectile dysfunction, retrograde ejaculation, anejaculation, literature review, sperm DNA fragmentation, травматическая болезнь спинного мозга, мужское бесплодие, эректильная дисфункция, ретроградная эякуляция, анэякуляция, обзор литературы
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/518/437; World Health Organization. Spinal Cord Injiury. WHO, 2013.; Momen M.N., Fahmy I., Amer M. et al. Semen parameters in men with spinal cord injury: changes and aetiology. Asian J Androl 2007;9(5):684-9. DOI:10.1111/j.1745-7262.2007.00277.x.; Bors E.H., Comarr A.E. Neurological disturbances of sexual function with special reference to 529 patients with spinal cord injury. Urol Surv 1960;110:191221.; Rutkowski S.B., Middleton J.W., Truman G. et al. The influence of bladder management on fertility in spinal cord injured males. Paraplegia 1995;33(5): 263-6. DOI:10.1038/sc.1995.59.; Horne H.W., Paull D.P., Munro D. Fertility studies in the human male with traumatic injuries of the spinal cord and cauda equina. N Engl J Med 1948;239(25):959-61. DOI:10.1056/NEJM194812162392504.; Gomes C.M., Miranda E.P., de Bessa J. Jr. et al. Erectile Function Predicts Sexual Satisfaction in Men with Spinal Cord Injury. Sex Med 2017;5(3):e148-e55. DOI:10.1016/j.esxm.2017.06.002.; Brackett N.L., Lynne C.M., Ibrahim E. et al. Treatment of in fertility in men with spinal cord injury. Nat Rev Urol 2010;7(3):162-72. DOI:10.1038/nrurol.2010.7.; Ibrahim E., Lynne C.M., Brackett N.L. Male fertility following spinal cord injury: an update. Andrology 2016;4(1):13-26. DOI:10.1111/andr.12119.; Trofimenko V., Hotaling J.M. Fertility treatment in spinal cord injury and other neurologic disease. Transl Androl Urol 2016;5(1):102-16. DOI:10.3978/j. issn.2223-4683.2015.12.10.; Hess M.J., Hough S. Impact of spinal cord injury on sexuality: broad-based clinical practice intervention and practical application. J Spinal Cord Med 2012;35(4):211-8. DOI:10.1179/2045772312Y.0000000025.; Albright T.H., Grabel Z., De Passe J.M. et al. Sexual and reproductive function in spinal cord injury and spinal surgery patients. Orthop Rev (Pavia) 2015;7(3):5842. DOI:10.4081/or.2015.5842.; Biering-S0rensen F., S0nksen J. Sexual function in spinal cord lesioned men. Spinal Cord 2001;39(9):455-70. DOI:10.1038/sj.sc.3101198.; McMahon C.G. Management of ejaculatory dysfunction. Intern Med J 2014;44(2):124-31. DOI:10.1111/imj.12344.; Hatzimouratidis K., Amar E., Eardley I. et al. Guidelines on Male Sexual Dysfunction: Erectile Dysfunction and Premature Ejaculation. Eur Urol 2010;57(5):804-14. DOI:10.1016/j.eururo.2010.02.020.; Sadowski D.J., Butcher M.J., Kohler T.S. A Review of Pathophysiology and Management Options for Delayed Ejaculation. Sex Med Rev 2016;4(2):167-76. DOI:10.1016/j.sxmr.2015.10.006.; Mallidis C., Lim T.C., Hill S.T. et al. Collection of semen from men in acute phase of spinal cord injury. Lancet 1994;343(8905):1072-3. DOI:10.1016/s0140-6736(94)90183-x.; Brackett N.L., Ferrell S.M., Aballa T.C. et al. Semen quality in spinal cord injured men: Does it progressively decline postinjury? Arch Phys Med Rehabil 1998;79(6):625-8. DOI:10.1016/s0003-9993(98)90034-x.; Rezaian J., Movahedin M., Mowla S.J. CatSper genes expression, semen characteristics and histology of testes in the contusive spinal cord-injured mice model. Spinal Cord 2009;47(1):76-83. DOI:10.1038/sc.2008.81.; Ohl D.A., S0nksen J., Wedemeyer G. et al. Canine model of infertility after spinal cord injury: time course of acute changes in semen quality and spermatogenesis. J Urol 2001;166(3):1181-4. DOI:10.1016/s0022-5347(05)65942-3.; Sanchez-Ramos A., Vargas-Baquero E., Martin-de Francisco F.J. et al. Early spermatogenesis changes in traumatic complete spinal cord-injured adult patients. Spinal Cord 2017;55(6):570-4. DOI:10.1038/sc.2016.184.; Elliott S.P., Orejuela F., Hirsch I.H. et al. Testis biopsy findings in the spinal cord injured patient. J Urol 2000;163(3): 792-5. PMID: 10687979.; Utida C., Truzzi J.C., Bruschini H. et al. Male infertility in spinal cord trauma. Int Braz J Urol 2005;31(4):375-83. DOI:10.1590/s1677-55382005000400013.; Wieder J.A., Lynne C.M., Ferrell S.M. et al. Brown-Colored Semen in Men With Spinal Cord Injury. J Androl 1999;20(5):594-600. PMID: 10520571.; Brackett N.L., Davi R.C., Padron O.F., Lynne C.M. Seminal Plasma of Spinal Cord Injured Men Inhibits Sperm Motility of Normal Men. J Urol 1996;155(5):1632-5. PMID: 8627840.; Basu S., Aballa T.C., Ferrell S.M. et al. Inflammatory Cytokine Concentrations Are Elevated in Seminal Plasma of Men With Spinal Cord Injuries. J Androl 2004;25(2):250-4. DOI:10.1002/ j.1939-4640.2004.tb02785.x.; Trabulsi E.J., Shupp-Byrne D., Sedor J., Hirsch I.H. Leukocyte subtypes in electroejaculates of spinal cord injured men. Arch Phys Med Rehabil 2002;83(1):31-4. DOI:10.1053/apmr.2002.26250.; Brackett N.L., Lynne C.M., Aballa T.C., Ferrel S.M. Sperm motility from the vas deferens of spinal cord injured men is higher than from the ejaculate. J Urol 2000;164(3 Pt 1):712-5. DOI:10.1097/ 00005392-200009010-00022.; Zhang X., Ibrahim E., de Rivero Vaccari J.P. et al. Involvement of the inflammasome in abnormal semen quality of men with spinal cord injury. Fertil Steril 2013;99(1):118-24.e2. DOI:10.1016/j.fertnstert.2012.09.004.; Ibrahim E., Castle S.M., Aballa T.C. et al. Neutralization of ASC improves sperm motility in men with spinal cord injury. Hum Reprod 2014;29(11):2368-73. DOI:10.1093/humrep/deu230.; Fortune R.D., Grill R.J., Beeton C. et al. Changes in Gene Expression and Metabolism in the Testes of the Rat following Spinal Cord Injury. J Neurotrauma 2017;34(6):1175-86. DOI:10.1089/neu.2016.4641.; McQueen D.B., Zhang J., Robins J.C. Sperm DNA fragmentation and recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril 2019;112(1):54-60.e3. DOI:10.1016/j.fertnstert.2019.03.003.; Zhao J., Zhang Q., Wang Y., Li Y. Whether sperm deoxyribonucleic acid fragmentation has an effect on pregnancy and miscarriage after in vitro fertilization/ intracytoplasmic sperm injection: a systematic review and meta-analysis. Fertil Steril 2014;102(4):998-1005.e8. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.06.033.; Коршунов М.Н., Коршунова Е.С., Даренков С.П. Прогностическая ценность показателя ДНК-фрагментации сперматозоидов в успехе программ вспомогательных репродуктивных технологий. Эмпирическая антиоксидантная терапия в коррекции ДНК-фрагментации на фоне патологического окислительного стресса эякулята. Экспериментальная и клиническая урология 2017;(3):70-7.; Anderson R., Moses R., Lenherr S. et al. Spinal cord injury and male infertility -a review of current literature, knowledge gaps, and future research. Transl Androl Urol 2018l;7(Suppl 3):S373-S382. DOI:10.21037/tau.2018.04.12.; Sinha V., Elliott S., Ibrahim E. et al. Reproductive Health of Men with Spinal Cord Injury. Top Spinal Cord Inj Rehabil 2017;23(1):31-41. DOI:10.1310/sci2301-31.; Suominen J.J., Kilkku P.P., Taina E.J., Puntala P.V. Successful treatment of infertility due to retrograde ejaculation by instillation of serum-containing medium into the bladder. A case report. Int J Androl 1991;14(2):87-90. DOI:10.1111/j.1365-2605.1991.tb01069.x.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/518
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Epanchintseva, V. G. Selyatitskaya, S. V. Yankovskaia, Е. А. Епанчинцева, В. Г. Селятицкая, С. В. Янковская
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 22, № 3 (2021); 56-69 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 22, № 3 (2021); 56-69 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, paternal age, sperm, spermogram, morphology according to strict Kruger criteria, MAR test, HBA test, sperm DNA fragmentation, возраст отца, эякулят, спермограмма, морфология по строгим критериям Крюгера, MAR-тест, НВА-тест
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/507/429; Humphreys G. The health-care challenges posed by population ageing. Bull World Health Organ 2012;90(2):82–3. DOI:10.2471/BLT.12.020212.; Sharma R., Agarwal A., Rohra V.K. et al. Effects of increased paternal age on sperm quality, reproductive outcome and associated epigenetic risks to offspring. Reprod Biol Endocrinol 2015;13:35. DOI:10.1186/s12958-015-0028-x.; Handelsman D.J., Staraj S. Testicular size: the effects of aging, malnutrition, and illness. J Androl 1985;6(3):144–51. DOI:10.1002/j.1939-4640.1985.tb00830.x.; Алексеев Ю.Д., Ефимов А.А., Савенкова Е.Н. и др. Возрастные изменения яичек человека. Бюллетень медицинских Интернет-конференций 2016;6(12):1617–20. Доступно по: https://cyberleninka.ru/article/n/vozrastnye-izmeneniya-yaichek-cheloveka.; Feldman H.A., Longcope C., Derby C.A. et al. Age trends in the level of serum testosterone and other hormones in middle-aged men: longitudinal results from the Massachusetts male aging study. J Clin Endocrinol Metab 2002;87(2):589–98. DOI:10.1210/jcem.87.2.8201.; Селятицкая В.Г., Епанчинцева Е.А., Новикова Е.Г. и др. Гормональная характеристика андрогенного статуса у мужчин разных возрастных групп. Успехи геронтологии 2019;32(5):737–42. PMID: 32145164.; Brahem S., Mehdi M., Elghezal H., Saad A. The effects of male aging on semen quality, sperm DNA fragmentation and chromosomal abnormalities in an infertile population. J Assist Reprod Genet 2011;28(5):425–32. DOI:10.1007/s10815-011-9537-5.; Рогозин Д.С., Миронов В.Н., Сергийко С.В. и др. Клиническое значение «старшего отцовского возраста» в контексте мужского бесплодия и вспомогательных репродуктивных технологий. Экспериментальная и клиническая урология 2019;4:60–6. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-60-66.; D’Onofrio B.M., Rickert M.E., Frans E. et al. Paternal age at childbearing and offspring psychiatric and academic morbidity. JAMA Psychiatry 2014;71(4):432–8. DOI:10.1001/jamapsychiatry.2013.4525.; Kaarouch I., Bouamoud N., Madkour A. et al. Paternal age: Negative impact on sperm genome decays and IVF outcomes after 40 years. Mol Reprod Dev 2018;85(3):271–80. DOI:10.1002/mrd.22963.; Girsh E., Katz N., Genkin L. et al. Male age influences oocyte-donor program results. J Assist Reprod Genet 2008;25(4):137–43. DOI:10.1007/s10815-008-9215-4.; Щелочков А.М., Нефедова И.Ф., Чернова С.Н. и др. Региональные показатели фертильности у мужчин Самарской области, а также факторы, являющиеся причинами их изменения. Клиническая и лабораторная диагностика 2012;8:25–9. PMID: 23097988.; Хаят С.Ш., Брагина Е.Е., Арифулин Е.А. и др. Фрагментация ДНК сперматозоидов у мужчин разного возраста. Андрология и генитальная хирургия 2019;20(4):39–44. DOI:10.17650/2070-9781-2019-20-4-39-44.; Евдокимов В.В., Жуков О.Б., Бабушкина Е.В. Анализ параметров эякулята у мужчин в различных возрастных группах. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(2):65–7. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-2-65-67.; Клинические рекомендации «Мужское бесплодие». Российское общество урологов. 2019. Доступно по: https://avur.international/wp-content/uploads/2019/07/Muzhskoe-besplodie-klinicheskie-rekomendatsii.pdf.; Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадеркин И.А. и др. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000–2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология 2019;4:4–12. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-4-12.; Руководство ВОЗ по исследованию и обработке эякулята человека. 5-е издание. Пер. с англ. Н.П. Макарова, науч. ред. Л.Ф. Курило. 5-е изд. М.: Капитал Принт, 2012. 291 с.; Simard M., Laprise C., Girard S.L. Impact of paternal age at conception on human health. Clin Chem 2019;65(1):146–52. DOI:10.1373/clinchem.2018.294421.; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Митрофанов И.М. и др. Количественные и качественные нарушения в спермограмме и дополнительных анализах эякулята у мужчин из бесплодных пар. Проблемы репродукции 2017;23:90–6. DOI:10.17116/repro201723690-96.; Чалый М. Репродуктивная функция мужчин в XXI веке. Врач 2009;6:6–7.; Калинченко С.Ю., Тюзиков И.А. Окислительный стресс и мужское бесплодие – взаимосвязанные пандемии XXI в. Современные фармакотерапевтические возможности патогенетической коррекции нарушений сперматогенеза препаратами L-карнитина/ацетил-L-карнитина. Эффективная фармакотерапия 2017;22:6–19.; Киселева Ю.Ю., Азова М.М., Кодылева Т.А. и др. Увеличение анеуплоидий эмбрионов ассоциировано с пониженной долей морфологически нормальных сперматозоидов. Генетика 2017;3(12):1458–62. DOI:10.7868/S0016675817120050.; Lu J.C., Jing J., Chen L. et al. Analysis of human sperm DNA fragmentation index (DFI) related factors: A report of 1010 subfertile men in China. Reprod Biol Endocrinol 2018;16(1):23. DOI:10.1186/s12958-018-0345-y.; Belloc S., Benkhalifa M., Cohen-Bacrie M. et al. Sperm deoxyribonucleic acid damage in normozoospermic men is related to age and sperm progressive motility. Fertil Steril 2014;101(6):1588–93. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.02.006.; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Божедомов В.А. Индекс фрагментации ДНК сперматозоидов – необходимость для современной клинической практики. Андрология и генитальная хирургия 2020;21(1):14–21. DOI:10.17650/2070-9781-2020-21-1-14-21.; Клинические рекомендации «Ожирение». Российская ассоциация эндокринологов, Общество бариатрических хирургов, 2020. Доступно по: https://www.endocrincentr.ru/sites/default/files/specialists/science/clinic-recomendations/ozhirenie_vzroslye.pdf.; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Свиридова М.А., Лутов Ю.В. Медико-социальные факторы риска бесплодия у мужчин. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(3):47–53. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-3-47-53.; Lai S.F., Li R.H.W., Yeung W.S.B., Ng E.H.Y Effect of paternal age on semen parameters and live birth rate of in-vitro fertilisation treatment: a retrospective analysis. Hong Kong Med J 2018;24(5):444–50. DOI:10.12809/hkmj177111.; Shiraishi K., Matsuyama H. Effects of medical comorbidity on male infertility and comorbidity treatment on spermatogenesis. Fertil Steril 2018;110(6):1006–1011.e2. DOI:10.1016/j.fertnstert.2018.07.002.; García-Ferreyra J., Hilario R., Dueñas J. High percentages of embryos with 21, 18 or 13 trisomy are related to advanced paternal age in donor egg cycles. JBRA Assist Reprod 2018;22(1):26–34. DOI:10.5935/1518-0557.20180004.; Lotti F., Baldi E., Corona G. et al. Epididymal more than testicular abnormalities are associated with the occurrence of antisperm antibodies as evaluated by the MAR test. Hum Reprod 2018;33(8):1417–29. DOI:10.1093/humrep/dey235.; Kirkman-Brown J., Pavitt S., Khalaf Y. et al. Sperm selection for assisted reproduction by prior hyaluronan binding: the HABSelect RCT. Effic Mech Eval 2019;6(1):1–80. DOI:10.3310/eme06010.; Bender Atik R., Christiansen OB., Elson J. et al. ESHRE guideline: recurrent pregnancy loss. Hum Reprod Open 2018;2018(2):hoy004. DOI:10.1093/hropen/hoy004.; Antonouli S., Papatheodorou A., Panagiotidis Y. et al. The impact of sperm DNA fragmentation on ICSI outcome in cases of donated oocytes. Arch Gynecol Obstet 2019;300(1):207–15. DOI:10.1007/s00404-019-05133-9.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/507
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: I. V. Vinogradov, A. R. Zhivulko, И. В. Виноградов, А. Р. Живулько
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 21, № 4 (2020); 89-97 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 21, № 4 (2020); 89-97 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2020-21-4
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, male infertility, DNA fragmentation level, мужское бесплодие
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/462/391; Jungwirth А., Diemer T., Kopa Z. et al. Male infertility. EAU Guideline 2018. Available at: https://uroweb.org/guideline/male-infertility/#8.; Semet M., Paci M., Saïas-Magnan J. et al. The impact of drugs on male fertility: a review. Andrology 2017;5(4): 640–63. DOI:10.1111/andr.12366.; Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадеркин И.А. и др. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000–2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология 2019;(4):4–13.; Hamilton T.R.D.S., Assumpção M.E.O.D. Sperm DNA fragmentation: causes and identification. Zygote 2020;28(1):1–8. DOI:10.1017/S0967199419000595.; Kim G.Y. What should be done for men with sperm DNA fragmentation? Clin Exp Reprod Med 2018;45(3):101–9. DOI:10.5653/cerm.2018.45.3.101.; Zeqiraj A., Beadini S., Beadini N. et al. Male infertility and sperm DNA fragmentation. Open Access Maced J Med Sci 2018;6(8):1342–5. DOI:10.3889/oamjms.2018.311.; Qiu Y., Yang H., Li C., Xu C. Progress in research on sperm DNA fragmentation. Med Sci Monit 2020;26:e918746. DOI:10.12659/MSM.918746.; Niederberger C. Re: Sperm DNA fragmentation and recurrent pregnancy loss: a systematic review and meta-analysis. J Urol 2020;203(4):649. DOI:10.1097/JU.0000000000000722.02.; Zheng W.W., Song G., Wang Q.L. et. al. Sperm DNA damage has a negative effect on early embryonic development following in vitro fertilization. Asian J Androl 2018;20(1):75–9. DOI:10.4103/aja.aja_19_17.; Agarwal A., Barbăroșie C., Ambar R., Finelli R. The impact of single- and double-strand DNA breaks in human spermatozoa on assisted reproduction. Int J Mol Sci 2020;21(11):3882. DOI:10.3390/ijms21113882.; Bisht S., Faiq M., Tolahunase M., Dada R. Oxidative stress and male infertility. Nat Rev Urol 2017;14(8):470–85. DOI:10.1038/nrurol.2017.69.; Ribas-Maynou J., Yeste M. Oxidative stress in male infertility: causes, effects in assisted reproductive techniques, and protective support of antioxidants. Biology (Basel) 2020;9(4):77. DOI:10.3390/biology9040077.; Ritchie C., Ko E.Y. Oxidative stress in the pathophysiology of male infertility. Andrologia 2020;e13581. DOI:10.1111/and.13581.; Smits R.M., Mackenzie-Proctor R., Yazdani A. et al. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2019;3(3):CD007411. DOI:10.1002/14651858.CD007411.pub4.; Ménézo Y.J., Hazout A., Panteix G. et al. Antioxidants to reduce sperm DNA fragmentation: an unexpected adverse effect. Reprod Biomed Online 2007;14(4):418–21. DOI:10.1016/s1472-6483(10)60887-5.; Barati E., Nikzad H., Karimian M. Oxidative stress and male infertility: current knowledge of pathophysiology and role of antioxidant therapy in disease management. Cell Mol Life Sci 2020;77(1):93–113. DOI:10.1007/s00018-019-03253-8.; Thakur A.S., Littarru G.P., Funahashi I. Effect of ubiquinol therapy on sperm parameters and serum testosterone levels in oligoasthenozoospermic infertile men. J Clin Diagn Res 2015;9(9):BC01–3. DOI:10.7860/JCDR/2015/13617.6424.; Greco E., Romano S., Iacobelli M. et al. ICSI in cases of sperm DNA damage: beneficial effect of oral antioxidant treatment. Hum Reprod 2005;20(9): 2590–4. DOI:10.1093/humrep/dei091.; Haghighian H.K., Haidari F., Mohammadi-Asl J., Dadfar M. Randomized, triple-blind, placebo-controlled clinical trial examining the effects of alpha-lipoic acid supplement on the spermatogram and seminal oxidative stress in infertile men. Fertil Steril 2015;104(2):318–24. DOI:10.1016/j.fertnstert.2015.05.014.; Gual-Frau J., Abad C., Amengual M.J. et al. Oral antioxidant treatment partly improves integrity of human sperm DNA in infertile grade I varicocele patients. Hum Fertil (Camb) 2015;18(3):225–9. DOI:10.3109/14647273.2015.1050462.; Comhaire F., Christophe A., Zalata A. et al. The effects of combined conventional treatment, oral antioxidants and essential fatty acids on sperm biology in subfertile men. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 2000;63(3):159–65. DOI:10.1054/plef.2000.0174.; Martínez-Soto J.C., Domingo J.C., Cordobilla B. et al. Dietary supplementation with docosahexaenoic acid (DHA) improves seminal antioxidant status and decreases sperm DNA fragmentation. Syst Biol Reprod Med 2016;62(6):387–95. DOI:10.1080/19396368.2016.1246623.; Kim Y.J., Chung H.Y. Antioxidative and anti-inflammatory actions of docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid in renal epithelial cells and macrophages. J Med Food 2007;10(2):225–31. DOI:10.1089/jmf.2006.092.; Leahy T., Gadella B. New insights into the regulation of cholesterol effluxfrom the sperm membrane. Asian J Androl 2015;17(4):561–7. DOI:10.4103/1008-682X.153309.; Lenzi A., Picardo M., Gandini L., Dondero F. Lipids of the sperm plasma membrane: from polyunsaturated fatty acids considered as markers of sperm function to possible scavenger therapy. Hum Reprod Update 1996;2(3):246–56. DOI:10.1093/humupd/2.3.246.; Holowka D., Baird B. Roles for lipid heterogeneity in immunoreceptor signaling. Biochim Biophys Acta 2016;1861(8 Pt B):830–6. DOI:10.1016/j.bbalip.2016.03.019.; Hou T.Y., McMurray D.N., Chapkin R.S. Omega-3 fatty acids, lipid rafts, and T cell signaling. Eur J Pharmacol 2016;15:2–9. DOI:10.1016/j.ejphar.2015.03.091.; Rodríguez-Cruz M., Serna D.S. Nutrigenomics of ω-3 fatty acids: regulators of the master transcription factors. Nutrition 2017;41:90–6. DOI:10.1016/j.nut.2017.04.012.; Hashimoto M., Hossain S., Mamun A. et al. Docosahexaenoic acid: one molecule diverse functions. Crit Rev Biotechnol 2017;37(5):579–97. DOI:10.1080/07388551.2016.1207153.; Stillwell W., Wassall S.R. Docosahexaenoic acid: membrane properties of a unique fatty acid. Chem Phys Lipids 2003;126(1):1–27. DOI:10.1016/s0009-3084(03)00101-4.; Hosseini B., Nourmohamadi M., Hajipour S. et al. The effect of omega-3 fatty acids, EPA, and/or DHA on male infertility: a systematic review and meta-analysis. J Diet Suppl 2018;16(2):245–56. DOI:10.1080/19390211.2018.1431753.; Aksoy Y., Aksoy H., Altinkaynak K. et al. Sperm fatty acid composition in subfertile men. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 2006;75(2):75–9. DOI:10.1016/j.plefa.2006.06.002.; Martínez-Soto J.C., Landeras J., Gadea J. et al. Spermatozoa and seminal plasma fatty acids as predictors of cryopreser va tion success. Andrology 2013;1(3):365–75. DOI:10.1111/j.2047-2927.2012.00040.x.; Safarinejad M.R. Effect of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplementation on semen profile and enzymatic anti-oxidant capacity of seminal plasma in infertile men with idiopathic oligoasthenoteratospermia: a double-blind, placebo-controlled, randomised study. Andrologia 2011;43(1):38–47. DOI:10.1111/j.1439-0272.2009.01013.x.; Виноградов И.В., Гамидов С.И., Габлия М.Ю. и др. Докозагексаеновая кислота в лечении идиопатических форм мужского бесплодия. Урология 2019;(1):78–83. DOI:10.18565/urology.2019.16.78-83.; Виноградов И.В., Живулько А.Р., Виноградова Л.М., Королев С.В. Докозагексаеновая кислота в лечении мужского бесплодия. Андрология и генитальная хирургия 2018;(4):21–7. DOI:10.17650/2070-9781-2018-19-4-21-27.; Calder P.C. Marine omega-3 fatty acids and inflammatory processes: Effects, mechanisms and clinical relevance. Biochim Biophys Acta 2015;1851(4):469–84. DOI:10.1016/j.bbalip.2014.08.010.; Calder P.C. Omega-3 fatty acids and inflammatory processes: from molecules to man. Biochem Soc Trans 2017;45(5): 1105–15. DOI:10.1042/BST20160474.; Calder P.C. Polyunsaturated fatty acids and inflammation. Biochem Soc Trans 2005;33(Pt 2):423–7. DOI:10.1042/BST0330423.; Naqvi A.Z., Hasturk H., Mu L. et al. Docosahexaenoic acid and periodontitis in adults: a randomized controlled trial. J Dent Res 2014;93(8):767–73. DOI:10.1177/0022034514541125.; Dawczynski C., Dittrich M., Neumann T. et al. Docosahexaenoic acid in the treatment of rheumatoid arthritis: a double-blind, placebo-controlled, randomized cross-over study with microalgae vs. sun flower oil. Clin Nutr 2018;37(2):494–504. DOI:10.1016/j.clnu.2017.02.021.; Belluzzi A., Brignola C., Campieri M. et al. Effect of an enteric-coated fish-oil preparation on relapses in Crohn’s disease. N Engl J Med 1996;334(24):1557–60. DOI:10.1056/NEJM199606133342401.; Goldberg R.J., Katz J. A meta-analysis of the analgesic effects of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplementation for inflammatory joint pain. Pain 2007;129(1–2):210–23. DOI:10.1016/j.pain.2007.01.020.; Sheppard J.D. Jr, Singh R., McClellan A.J. et al. Long-term supplementation with ω-6 and ω-3 PUFAs improves moderate-to-severe keratoconjunctivitis sicca: a randomized double-blind clinical trial. Cornea 2013;32(10):1297–304. DOI:10.1097/ICO.0b013e318299549c.; Brunner R.J., Demeter J.H., Sindhwani P. Review of guidelines for the evaluation and treatment of leukocytospermia in male infertility. World J Mens Health 2019;37(2):128–37. DOI:10.5534/wjmh.180078.; Lobascio A.M., De Felici M., Anibaldi M. et al. Involvement of seminal leukocytes, reactive oxygen species, and sperm mitochondrial membrane potential in the DNA damage of the human sper matozoa. Andrology 2015;3(2):265–70. DOI:10.1111/andr.302.; Saleh R., Agarwal A., Kandirali E., Sharma R. Leukocytospermia is associated with increased reactive oxygen species production by human spermatozoa. Fertil Steril 2002;78(6):1215–24. DOI:10.1016/s0015-0282(02)04237-1.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/462
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: O. B. Zhukov, E. E. Bragina, V. V. Evdokimov, M. M. Akramov, A. S. Shakhov, А. E. Vasiliev, О. Б. Жуков, Е. Е. Брагина, В. В. Евдокимов, М. М. Акрамов, А. С. Шахов, А. Э. Васильев
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 22, № 2 (2021); 54-65 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 22, № 2 (2021); 54-65 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: мужская фертильность, pathospermia, chronic nonbacterial prostatitis, varicocele, peptide bioregulator Samprost®, sperm DNA fragmentation, electron microscopy, spermogram, male fertility, патоспермия, хронический абактериальный простатит, варикоцеле, пептидный биорегулятор Сампрост®, фрагментация ДНК сперматозоидов, электронная микроскопия сперматозоидов, спермограмма
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/493/414; Лебедев Г.С., Голубев Н.А., Шадер-кин И.А. и др. Мужское бесплодие в Российской Федерации: статистические данные за 2000—2018 годы. Экспериментальная и клиническая урология 2019;4:4-12. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-4-4-12.; Agarwal A., Mulgund A., Hamada A., Chyatte M.R. A unique view on male infertility around the globe. Reprod Biol Endocrinol 2015;13(1):37. DOI:10.1186/s12958-015-0032-1.; Евдокимов В.В., Жуков О.Б., Бабушкина Е.В. Анализ параметров эякулята у мужчин в различных возрастных группах. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(2):39-42. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-2-65-67.; Johnson S.L., Dunleavy J., Gemmell N.J., Nakagawa S. Consistent age-dependent declines in human semen quality: a systematic review and meta-analysis. Ageing Res Rev 2015;19:22-33. DOI:10.1016/j.arr.2014.10.007.; Рубрикатор клинических рекомендаций по мужскому бесплодию Минздрава РФ. Доступно по: https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/5.; Боровец С.Ю., Рыбалов М.А., Горбачев А.Г. и др. Отдаленные результаты лечения препаратом Простатилен® АЦ больных хроническим абактериаль-ным простатитом с повышенной степенью фрагментации ДНК сперматозоидов. Андрология и генитальная хирургия 2018;19(2):52—7. DOI:10.17650/2070-9781-2018-19-2-52-57.; Жуков О. Б., Брагина Е.Е., Левина А.В. и др. Сравнение эффективности препаратов, содержащих комбинацию аргинина и цинка, в лечении мужского бесплодия. Андрология и генитальная хирургия 2020;21(2):26—35. DOI:10.17650/2070-9781-2020-21-2-26-35.; Цуканов А.Ю., Ляшев Р.В. Нарушение венозного кровотока как причина хронического абактериального простатита (синдрома хронической тазовой боли). Урология 2014;4:33-8.; Жуков О.Б., Капто А.А., Михайленко Д.С., Евдокимов В.В. Варикозная болезнь органов таза мужчины. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(4):72—7. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-4-72-77.; Gat Y., Gornish M., Heiblum M., Joshua S. Reversal of benign prostate hyperplasia by selective occlusion of impaired venous drainage in the male reproductive system: novel mechanism, new treatment. Andrologia 2008;40(5):273—81.; Жуков О.Б., Уколов В.А., Жуков А.А. Комплексная терапия патоспермии у больных после рентгенэндоваскулярной склеротерапии тестикулярных вен. Андрология и генитальная хирургия 2012;13(4):70—7.; Гамидов С.И., Попков В.М., Шатылко Т.В. и др. Место медикаментозной терапии в лечении мужчин с варикоцеле. Урология 2018;5:114-21. DOI:10.18565/urology.2018.5.114-121.; Гамидов С.И., Овчинников Р.И., Попова А.Ю. и др. Современный подход к терапии мужского бесплодия у больных с варикоцеле. Терапевтический архив 2012;84(10):56—61.; Евдокимов В.В., Селиванов Т.О. Нарушение сперматогенеза при варикоцеле. Патогенез и прогноз лечения. Андрология и генитальная хирургия 2006;7(3):12—8.; Agarwal A., Rana M., Qiu E. et al. Role of oxidative stress, infection and inflammation in male infertility. Andrologia 2018;50(11):e13126. DOI:10.1111/and.13126.; Dieamant F., Petersen C.G., Mauri A.L. et al. Semen parameters in men with varicocele: DNA fragmentation, chromatin packaging, mitochondrial membrane potential, and apoptosis. JBRA Assist Reprod 2017;21(4):295-301. DOI:10.5935/1518-0557.20170053.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/493
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: D. S. Rogozin, Д. C. Рогозин
Πηγή: Urology Herald; Том 8, № 2 (2020); 93-98 ; Вестник урологии; Том 8, № 2 (2020); 93-98 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2020-8-2
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, assisted reproductive technologies, intracytoplasmic injection of morphologically selected sperm, male infertility, Kleinfelter’s syndrome, sperm DNA fragmentation, вспомогательные репродуктивные технологии, интрацитоплазматическая инъекция морфологически отобранных сперматозоидов, мужское бесплодие, синдром Кляйнфельтера
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/334/255; Norrman E, Petzold M, Clausen TD, Henningsen AK, Opdahl S, Pinborg A, Rosengren A, Bergh C, Wennerholm UB. Type 1 diabetes in children born after assisted reproductive technology: a register-based national cohort study. Hum Reprod. 1;35(1):221–231. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dez227; Рогозин Д.С. Мужская фертильность: обзор литературы октября – декабря 2019 года. Вестник урологии. 2020;8(1):69–74. https://doi.org/10.21886/2308-6424- 2020-8-1-69-74; Hargreave M, Jensen A, Hansen MK, Dehlendorff C, Winther JF, Schmiegelow K, Kjær SK. Association Between Fertility Treatment and Cancer Risk in Children. JAMA. 2019;322(22):2203–2210. https://dx.doi.org/10.1001/jama.2019.18037; Chen HG, Sun B, Chen YJ, Chavarro JE, Hu SH, Xiong CL, Pan A, Meng TQ, Wang YX, Messerlian C. Sleep duration and quality in relation to semen quality in healthy men screened as potential sperm donors. Environ Int. 2020;135:105368. https://dx.doi.org/10.1016/j.envint.2019.105368; Li Y, Altan E, Pilcher C, Hartogensis W, Hecht FM, Deng X, Delwart E. Semen virome of men with HIV on or off antiretroviral treatment. AIDS. 2020;34(6):827–832. https://dx.doi.org/10.1097/QAD.0000000000002497; Schjenken JE, Robertson SA. The Female Response to Seminal Fluid. Physiol Rev. 2020;100(3):1077–1117. https://dx.doi.org/10.1152/physrev.00013.2018; Teixeira DM, Barbosa MA, Ferriani RA, Navarro PA, RaineFenning N, Nastri CO, Martins WP. Regular (ICSI) versus ultrahigh magnification (IMSI) sperm selection for assisted reproduction. Cochrane Database Syst Rev. 2013;(7):CD010167. https://dx.doi.org/10.1002/14651858.CD010167.pub2; Teixeira DM, Hadyme Miyague A, Barbosa MA, Navarro PA, Raine-Fenning N, Nastri CO, Martins WP. Regular (ICSI) versus ultra-high magnification (IMSI) sperm selection for assisted reproduction. Cochrane Database Syst Rev. 2020;2(2):CD010167. https://dx.doi.org/10.1002/14651858.CD010167.pub3; Breuss MW, Antaki D, George RD, Kleiber M, James KN, Ball LL, Hong O, Mitra I, Yang X, Wirth SA, Gu J, Garcia CAB, Gujral M, Brandler WM, Musaev D, Nguyen A, McEvoy-Venneri J, Knox R, Sticca E, Botello MCC, Uribe Fenner J, Pérez MC, Arranz M, Moffitt AB, Wang Z, Hervás A, Devinsky O, Gymrek M, Sebat J, Gleeson JG. Autism risk in offspring can be assessed through quantification of male sperm mosaicism. Nat Med. 2020;26(1):143–150. https://dx.doi.org/10.1038/s41591-019-0711-0; Sepidarkish M, Maleki-Hajiagha A, Maroufizadeh S, Rezaeinejad M, Almasi-Hashiani A, Razavi M. The effect of body mass index on sperm DNA fragmentation: a systematic review and meta-analysis. Int J Obes (Lond). 2020;44(3):549– 558. https://dx.doi.org/10.1038/s41366-020-0524-8; Deebel NA, Galdon G, Zarandi NP, Stogner-Underwood K, Howards S, Lovato J, Kogan S, Atala A, Lue Y, Sadri-Ardekani H. Age-related presence of spermatogonia in patients with Klinefelter syndrome: a systematic review and meta-analysis. Hum Reprod Update. 2020;26(1):58–72. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmz038; Steiner AZ, Hansen KR, Barnhart KT, Cedars MI, Legro RS, Diamond MP, Krawetz SA, Usadi R, Baker VL, Coward RM, Huang H, Wild R, Masson P, Smith JF, Santoro N, Eisenberg E, Zhang H; Reproductive Medicine Network. The effect of antioxidants on male factor infertility: the Males, Antioxidants, and Infertility (MOXI) randomized clinical trial. Fertil Steril. 2020;113(3):552–560.e3. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2019.11.008; Schisterman EF, Sjaarda LA, Clemons T, Carrell DT, Perkins NJ, Johnstone E, Lamb D, Chaney K, Van Voorhis BJ, Ryan G, Summers K, Hotaling J, Robins J, Mills JL, Mendola P, Chen Z, DeVilbiss EA, Peterson CM, Mumford SL. Effect of Folic Acid and Zinc Supplementation in Men on Semen Quality and Live Birth Among Couples Undergoing Infertility Treatment: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 2020;323(1):35–48. https://dx.doi.org/10.1001/jama.2019.18714; https://www.urovest.ru/jour/article/view/334
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: D. S. Rogozin, Д. С. Рогозин
Πηγή: Urology Herald; Том 8, № 1 (2020); 69-74 ; Вестник урологии; Том 8, № 1 (2020); 69-74 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2020-8-1
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, assisted reproductive technologies, azoospermia, male infertility, micro-TESE, Kleinfelter syndrome, sperm DNA fragmentation, вспомогательные репродуктивные технологии, микро-TESE, мужское бесплодие, синдром Кляйнфельтера, старший отцовский возраст
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/307/237; Caroppo E, Colpi EM, D’Amato G, Gazzano G, Colpi GM. Prediction model for testis histology in men with nonobstructive azoospermia: evidence for a limited predictive role of serum follicle-stimulating hormone. J Assist Reprod Genet. 2019;36(12):2575–2582. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01613-8; Green KA, Patounakis G, Dougherty MP, Werner MD, Scott RT, Franasiak JM. Sperm DNA fragmentation on the day of fertilization is not associated with embryologic or clinical outcomes after IVF/ICSI. J Assist Reprod Genet. 2019 Nov 21. https://doi.org/10.1007/s10815-019-01632-5 [Epub ahead of print]; Bryan ER, McLachlan RI, Rombauts L, Katz DJ, Yazdani A, Bogoevski K, Chang C, Giles ML, Carey AJ, Armitage CW, Trim LK, McLaughlin EA, Beagley KW.Detection of chlamydia infection within human testicular biopsies. Hum Reprod. 2019;34(10):1891–1898. https://doi.org/10.1093/humrep/dez169; Horta F, Vollenhoven B, Healey M, Busija L, Catt S, Temple- Smith P. Male ageing is negatively associated with the chance of live birth in IVF/ICSI cycles for idiopathic infertility. Hum Reprod. 2019;34(12):2523–2532. https://doi.org/10.1093/humrep/dez223; Bhasin S, Oates RD. Fertility Considerations in Adolescent Klinefelter Syndrome: Current Practice Patterns. J Clin Endocrinol Metab. 2019 Dec 26. https://doi.org/10.1210/clinem/dgz308 [Epub ahead of print]; Del Giudice F, Busetto GM, De Berardinis E, Sperduti I, Ferro M, Maggi M, Gross MS, Sciarra A, Eisenberg ML. A systematic review and meta-analysis of clinical trials implementing aromatase inhibitors to treat male infertility. Asian J Androl. 2019 Oct 15. https://doi.org/10.4103/aja.aja_101_19 [Epub ahead of print]; Altmäe S, Franasiak JM, Mändar R. The seminal microbiome in health and disease. Nature Reviews Urology. 2019;16(12):703‒721. https://doi.org/10.1038/s41585-019-0250-y; Hargreave M, Jensen A, Hansen MK, Dehlendorff C, Winther JF, Schmiegelow K, Kjær SK. Association Between Fertility Treatment and Cancer Risk in Children. JAMA. 2019;322(22):2203–2210. https://doi.org/10.1001/jama.2019.18037; Simoni M, Santi D. FSH treatment of male idiopathic infertility: Time for a paradigm change. Andrology. 2019 Dec. 24. https://doi.org/10.1111/andr.12746 [Epub ahead of print]; Corona G, Minhas S, Giwercman A, Bettocchi C, Dinkelman- Smit M, Dohle G, et al. Sperm recovery and ICSI outcomes in men with non-obstructive azoospermia: A systematic review and meta-analysis. Human Reproduction Update. 2019;25(6):733‒757. https://doi.org/10.1093/humupd/dmz028; Schlegel PN. Testicular sperm extraction: Microdissection improves sperm yield with minimal tissue excision. Hum Reprod. 1999;14(1):131–135. https://doi.org/10.1093/humrep/14.1.131; https://www.urovest.ru/jour/article/view/307
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: I. V. Vinogradov, A. R. Zhivulko, S. V. Korolev, И. В. Виноградов, А. Р. Живулько, С. В. Королев
Πηγή: Urology Herald; Том 7, № 4 (2019); 43-48 ; Вестник урологии; Том 7, № 4 (2019); 43-48 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2019-7-4
Θεματικοί όροι: мужской бесплодие, oxidative stress, spermatozoa DNA damage, male infertility, оксидативный стресс, фрагментация ДНК сперматозоидов
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/283/227; Sharp VJ, Takacs EB, Powell CR. ProstaTITIs: diagnosis and treatment. Am Fam Physician. 2010;82(4):397-406. PMID: 20704171; Krieger JN, Nyberg L Jr, Nickel JC. NIH consensus definiTIon and classifi caTIon of prostaTITIs. JAMA. 1999;282(3):236- 237. DOI:10.1001/jama.282.3.236; Lewis SE. Is sperm evaluaTIon useful in predicTIng human ferTIlity? ReproducTIon. 2007;134(1):31-40. DOI:10.1530/ REP-07-0152; Dohle GR. Infl ammatory-associated obstrucTIons of the male reproducTIve tract. Andrologia. 2003;35(5):321-324. PMID: 14535864; Weidner W, Krause W, Ludwig M. Relevance of male accessory gland infecTIon for subsequent ferTIlity with special focus on prostaTITIs. Hum Reprod Update. 1999;5(5):421-432. DOI:10.1093/humupd/5.5.421; SabeTIP, Pourmasumi S, Rahiminia T, Akyash F, Talebi AR. ETIologies of sperm oxidaTIve stress. Int J Reprod Biomed (Yazd). 2016;14(4):231-240. PMID: 27351024; Kullisaar T, Turk S, Punab M, Mändar R. OxidaTIve stress – cause or consequence of male genital tract disorders? Prostate. 2012;72(9):977-983. DOI:10.1002/pros.21502; Armstrong, JS, Rajasekaran M, Chamulitrat W, Gaƫ P, Hellstrom WJ, Sikka SC. CharacterizaTIon of reacTIve oxygen species induced eff ects on human spermatozoa movement and energy metabolism. Free Radic Biol Med. 1999;26(7-8):869- 880. DOI:10.1016/s0891-5849(98)00275-5; Walczak-Jedrzejowska R, Wolski JK, Slowikowska-Hilczer J. The role of oxidaTIve stress and anTIoxidants in male ferTIlity. Cent European J Urol. 2013;66(1):60-67. DOI:10.5173/ceju.2013.01.art19; Agarwal A, Cho C, Esteves SC. Should we evaluate and treat sperm DNA fragmentaTIon? Curr Opin Obstet Gynecol. 2016;28(3):164-171. DOI:10.1097/GCO.0000000000000271; Schulz M, Sanchez R, Soto L, Risopatrón J, Villegas J. Effect of Escherichia coli and its soluble factors on mitochondrial membrane potenTIal, phosphaTIdylserine translocaTIon, viability, and moTIlity of human spermatozoa. FerTIl Steril. 2010;94(2):619-623. DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.01.140; MarTInez-Prado E, Bermudez MIC. Expression of IL-6, IL-8, TNF-alpha, IL-10, HSP-60, anTI-HSP-60 anTIbodies, and anTI- sperm anTIbodies, in semen of men with leukocytes and/or bacteria. Am J Reprod Immunol. 2010;63(3):233-243. DOI:10.1111/j.1600-0897.2009.00786.x; Vicari E. EffecTIveness and limits of anTImicrobial treatment on seminal leukocyte concentraTIon and related reacTIve oxygen speciesproducTIon in paTIents with male accessory gland infecTIon. Hum Reprod. 2000;15(12):2536-2544. DOI:10.1093/humrep/15.12.2536; Shang Y, Liu C, Cui D, Han G, Yia S. The Effect of Chronic Bacterial ProstaTITIs on Semen Quality in Adult Men: A MetaAnalysis of Case-control Studies. Sci Rep. 2014;4:7233. DOI:10.1038/srep07233; Weidner W, Jantos C, Schiefer HG, Haidl G, Friedrich HJ. Semen parameters in men with and without proven chronic prostaTITIs. Arch Androl. 1991;26(3):173-183. DOI:10.3109/01485019108987640; Henkel R, Ludwig M, Schuppe HC, Diemer T, Schill WB, Weidner W. Chronic pelvic pain syndrome/chronic prostaTITIs affect the acrosome reacTIon in human spermatozoa. World J Urol. 2006;24(1):39-44. DOI:10.1007/s00345-005-0038-y; Menkveld R, Huwe P, Ludwig M, Weidner W. Morphological sperm alternaTIons in diff erent types of prostaTITIs. Andrologia. 2003;35(5):288-293. PMID: 14535857; Leib Z, Bartoov B, Eltes F, Servadio C. Reduced semen quality caused by chronic abacterial prostaTITIs: an enigma or reality? FerTIl Steril. 1994 61(6):1109-1116. PMID: 8194626; Fu W, Zhou Z, Liu S, Li Q, Yao J, Li W, Yan J. The Effect of Chronic Prostatitis/Chronic Pelvic Pain Syndrome (CP/ CPPS) on Semen Parameters in Human Males: A Systematic Review and Meta-Analysis. PLoS One. 2014;9(4):e94991. DOI:10.1371/journal.pone.0094991; Hu YY, Cao SS, Lü JQ. Impact of chronic prostaTITIs/chronic pelvic pain syndrome on sperm DNA fragmentaTIon and nucleoprotein transiTIon. Zhonghua Nan Ke Xue. 2013;19(10):907-911. (in Chinese). PMID: 24218945; https://www.urovest.ru/jour/article/view/283
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: A. A. Artamonov, S. V. Bogolyubov, T. I. Eliseeva, O. B. Pozdnyakov, A. V. Astakhova, А. А. Артамонов, С. В. Боголюбов, Т. И. Елисеева, О. Б. Поздняков, А. В. Астахова
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 21, № 2 (2020); 36-43 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 21, № 2 (2020); 36-43 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2020-21-2
Θεματικοί όροι: 11 Dmitriya Ul’yanova St., Moscow 117036, Russia, laboratory rats, spermatogenesis, sperm DNA fragmentation, сперматогенез, фрагментация ДНК сперматозоидов Для цитирования: Артамонов А.А., Боголюбов С.В., Елисеева Т.И. и др. Ожирение как фактор нарушения сперматогенеза (экспериментальное исследование). Андрология и генитальная хирургия 2020, 21(2):36–43. DOI:10.17650/2070-9781-2020-21-2-36-43 Obesity as a factor in spermatogenesis disorders (experimental study) A.A. Artamonov1, S.V. Bogolyubov1, T.I. Eliseeva1, O.B. Pozdnyakov1, A.V. Astakhova1 1Tver State Medical University, 4 Sovetskaya St., Tver 170100, 2National Medical Research Center of Endocrinology, Ministry of Health of Russia
Time: 2
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/409/361; Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Шестакова М.В. и др. Национальные клинические рекомендации по лечению морбидного ожирения у взрослых. 3-й пересмотр (лечение морбидного ожирения у взрослых). Ожирение и метаболизм 2018;15(1):53–70. DOI:10.14341/OMET2018153-70.; Finucane M.M., Stevens G.A., Cowan M.J. et al. National, regional, and global trends in body-mass index since 1980: systematic analysis of health examination surveys and epidemiological studies with 960 countryyears and 9.1 million participants. Lancet 2011;377(9765):557–67. DOI:10.1016/S0140-6736(10)62037-5.; Ng M., Fleming T., Robinson M. et al. Global, regional, and national prevalence of overweight and obesity in children and adults during 1980–2013: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013. Lancet 2014;384(9945):766–81. DOI:10.1016/s0140-6736(14)60460-8.; Лескова И.В., Ершова Е.В., Никитина Е.А. и др. Ожирение в России: современный взгляд под углом социальных проблем. Ожирение и метаболизм 2019;16(1):20–6. DOI:10.14341/omet9988.; World Health Organisation Global Health Observatory data repository. Prevalence of obesity among adults, BMI 30, agestandardized. Estimates by country [updated 2017 Sep 22; cited 2019 Jan 28]. Available at: http://apps.who.int/gho/data/node.main.A900A?lang=en.; Меньшикова Л.В., Бабанская Е.Б. Половозрелая эпидемиология ожирения. Ожирение и метаболизм 2018;15(2):17–22. DOI:10.14341/OMET8782.; Houfflyn S., Matthys C., Soubry A. Male obesity: epigenetic origin and effects in sperm and offspring. Curr Mol Biol Rep 2017;3(4):288–96. DOI:10.1007/s40610-017-0083-5.; Епанчинцева Е.А., Селятицкая В.Г., Свиридова М.А., Лутов Ю.В. Медикосоциальные факторы риска бесплодия у мужчин. Андрология и генитальная хирургия 2016;17(3):47–53. DOI:10.17650/2070-9781-2016-17-347-53.; Витязева И.И., Боголюбов С.В., Бармина И.И. и др. Инновационные технологии в лечении бесплодия у мужчин с гипери нормогонадотропным гипогонадизмом и азооспермией. В сб.: Инновационные технологии в эндокринологии. Сборник тезисов III Всероссийского эндокринологического конгресса с международным участием. М.: Уп Принт, 2017. С. 452–453.; Руководство ВОЗ по исследованию и обработке эякулята человека. 5-е изд. Пер. с англ. Н.П. Макарова, научн. ред. Л.Ф. Курило. М.: Капитал Принт, 2012. 291 с.; Belloc S., Cohen-Bacrie M., Amar E. et al. High body mass index has a deleterious effect on semen parameters except morphology: results from a large cohort study. Fertil Steril 2014;102(5):1268–73. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.07.1212.; Campbell J.M., Lane M., Owens J.A., Bakos H.W. Paternal obesity negatively affects male fertility and assisted reproduction outcomes: a systematic review and meta-analysis. Reprod Biomed Online 2015;31(5):593–604. DOI:10.1016/j.rbmo.2015.07.012.; MacDonald A.A., Herbison G.P., Showell M., Farquhar C.M. The impact of body mass index on semen parameters and reproductive hormones in human males: a systematic review with metaanalysis. Hum Reprod Update 2010;16(3):293–311. DOI:10.1093/humupd/dmp047.; Bernardis L.L., Petterson B.D. Correlation between ‘Lee index’ and carcass fat content in weanling and adult female rats with hypothalamic lesions. J Endocrinol 1968;40(4):527–8. DOI:10.1677/joe.0.0400527.; Саноцкий И.В., Фоменко В.Н., Сальникова Л.С. и др. Методы экспериментального исследования по установлению порогов действия промышленных ядов на генеративную функцию с целью гигиенического нормирования. М., 1978. 35 c.; Маркова Е.В., Замай А.С. Фрагментация ДНК в сперматозоидах человека (обзор литературы). Проблемы репродукции 2006;12(4):42–50.; Ефремов Е.А., Ефремов Г.Д., Кирпатовский В.И. и др. Сравнительная морфологическая оценка сперматогенеза крыс после курсового воздействия ингибиторами фосфодиэстеразы 5-го типа. Экспериментальная и клиническая урология 2013;(2):26–9.; Vigueras-Villaseñor R.M., RojasCastañeda J.C., Chávez-Saldaña M. еt al. Alterations in the spermatic function generated by obesity in rats. Acta Histochem 2011;113(2):214–20. DOI:10.1016/j.acthis.2009.10.004.; Campos-Silva P., Costa W.S.,Sampaio F.J.B., Gregorio B.M. Prenatal and/or postnatal high-fat diet alters testicular parameters in adult Wistar Albino rats. Histol Histopathol 2018;33(4):407–16. DOI:10.14670/HH-11-941.; Витязева И.И., Алташина М.В., Разина О.Ю. и др. Изменение параметров эякулята и структуры сперматозоидов у мужчин с избыточной массой тела. Проблемы репродукции 2016;22(6):132–9.; Vincent H.K., Taylor A.G. Biomarkers and potential mechanisms of obesityinduced oxidant stress in humans. Int J Obes (Lond) 2006;30(3):400–18. DOI:10.1038/sj.ijo.0803177.; Божедомов В.А., Торопцева М.В., Ушакова И.В. и др. Активные формы кислорода и репродуктивная функция мужчин: фундаментальные и клинические аспекты (обзор литературы). Андрология и генитальная хирургия 2011;(3):10–6. DOI:10.1038/aja.2010.183.; Vigueras-Villaseñor R.M., RojasCastañeda J.C., Chávez-Saldaña M., Gutiérrez-Pérez O. Alterations in the spermatic function generated by obesity in rats. Acta Histochem 2011;113(2):214–20. DOI:10.1016/j.acthis.2009.10.004.; Kato Y., Shiraishi K., Matsuyama H. Expression of testicular androgen receptor in non-obstructive azoospermia and its change after hormonal therapy. Andrology 2014;2(5):734–40. DOI:10.1111/j.2047-2927.2014.00240.x.; Скопичев В.Г., Боголюбова И.О. Физиология репродуктивной системы млекопитающих. В 2 ч. Часть 2. 2-е изд., испр. и доп. М.: Юрайт, 2018. 277 с.; Bataineh H.N., Nusier M.K. Effect of cholesterol diet on reproductive function in male albino rats. Saudi Med J 2005;26(3):398–404.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/409
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: S.Kh. Al-Shukri, S. Yu. Borovets, M. A. Rybalov, С.Х. Аль-Шукри, С. Ю. Боровец, М. А. Рыбалов
Συνεισφορές: The article was published with the financial support of Pentcroft Pharma., Статья опубликована при финансовой поддержке компании ООО «Пенткрофт Фарма».
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 21, № 1 (2020); 60-64 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 21, № 1 (2020); 60-64 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2020-21-1
Θεματικοί όροι: мужское бесплодие, DNA fragmentation, spermogram, male infertility, фрагментация ДНК сперматозоидов, спермограмма
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/399/355; Божедомов В.А. Мужской фактор бездетного брака – пути решения проблемы. Урология 2016;(1, прил. 1):28–34.; Sharlip I.D., Jarow J.P., Belker A.M. et al. Best practice policies for male infertility. Fertil Steril 2002;77(5):873–82.; WHO manual for the standardized investigation, diagnosis and management of the infertile male. Cambridge: Cambridge University Press, 2000. 91 p.; Kashir J., Jones C., Lee H.C. et al. Loss of activity mutations in phospholipase C zeta (PLCζ) abolishes calcium oscillatory ability of human recombinant protein in mouse oocytes. Hum Reprod 2011;26(12):3372–87. DOI:10.1093/humrep/der336.; Брагина Е.Е., Замятнина В.А., Гаврилов Ю.А. и др. Упаковка хроматина и фрагментация ДНК: два типа нарушений наследственного материала сперматозоидов. Медицинская генетика 2009;8(10):29–35.; Wong W.Y., Thomas C.M., Merkus J.M. et al. Male factor subfertility: possible causes and the impact of nutritional factors. Fertil Steril 2000;73(3):435–42. DOI:10.1016/s0015-0282(99)00551-8.; Brody S.A. Мужское бесплодие и окислительный стресс: роль диеты, образа жизни и пищевых добавок. Андрология и генитальная хирургия 2014;15(3):33–41. [Brody S.A. Male factor infertility and oxidative stress: role of diet, lifestyle and nutritional supplements. Andrologiya i genital’naya khirurgiya = Andrology and Genital Surgery 2014;15(3):33–41. (In Russ.)]. DOI:10.17650/2070-9781-2014-3-33-41.; Kumar R., Gautam G., Gupta M.P. Drug therapy for idiopathic male infertility: rationale versus evidence. J Urol 2006;176(4 Pt 1):1307–12. DOI:10.1016/j.juro.2006.06.006.; Showell M.G., Brown J., Yazdani A. et al. Antioxidants for male subfertility. Cochrane Database Syst Rev 2011;(1): CD007411. DOI:10.1002/14651858. CD007411.pub2.; Трухан Д.И., Макушин Д.Г. Роль и место антиоксидантов в комплексной терапии мужского бесплодия. Consilium Medicum 2015;17(7):37–43. [Trukhan D.I., Makushin D.G. Role and position of antioxidants in complex therapy of male infertility. Consilium Medicum 2015;17(7):37–43. (In Russ.)].; Кореньков Д.Г., Павлов А.Л., Казимзаде Э.Д. Влияние препарата БЕСТФертил на репродуктивную функцию у мужчин с идиопатическим бесплодием. Андрология и генитальная хирургия 2018;19(4):54–9. DOI:10.17650/ 2070-9781-2018-19-4-54-59.; Нашивочникова Н.А., Крупин В.Н., Селиванова С.А. Антиоксидантная терапия бесплодного брака. Урология 2015;(3):71–4.; Павлов В.Н., Галимова Э.Ф., Катаев В.А. и др. Сравнительный анализ антиоксидантных эффектов коэнзима Q и L-карнитина у мужчин с идиопатической патоспермией. Медицинский вестник Башкортостана 2013;8(6):161–3.; Виноградов И.В., Блохин А.В., Афанасьева Л.М. и др. Опыт применения L-карнитина в лечении секреторного бесплодия у мужчин (обзор литературы). Андрология и генитальная хирургия 2009;10(2):19–22.; Ebisch I.M., Thomas C.M., Peters W.H. et al. The importance of folate, zinc and antioxidants in the pathogenesis and prevention of subfertility. Hum Reprod Update 2007;13(2):163–74. DOI:10.1093/humupd/dml054.; Momeni H.R., Eskandari N. Effect of vitamin E on sperm parameters and DNA integrity in sodium arsenite-treated rats. Iran J Reproductive Med 2012;10(3):249–56.; Safarinejad M.R. The effect of coenzyme Q10 supplementation on partner pregnancy rate in infertile men with idiopathic oligoasthenoteratozoospermia: an open-label prospective study. Int Urol Nephrol 2012;44(3):689–700. DOI:10.1007/s11255-011-0081-0.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/399
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: S. Sh. Khayat, E. E. Bragina, E. A. Arifulin, E. M. Lazareva, T. M. Sorokina, L. F. Kurilo, V. B. Chernykh, С. Ш. Хаят, Е. Е. Брагина, Е. А. Арифулин, Е. М. Лазарева, Т. М. Сорокина, Л. Ф. Курило, В. Б. Черных
Συνεισφορές: The study was performed in the framework of the state task of the Ministry of Education and Science of Russia., Работа выполнена в рамках государственного задания Минобрнауки России.
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 20, № 4 (2019); 39-44 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 20, № 4 (2019); 39-44 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2019-20-4
Θεματικοί όροι: возраст, reproduction, sperm DNA fragmentation, age, репродукция, фрагментация ДНК сперматозоидов
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/380/345; Брагина Е.Е., Арифулин Е.А., Лазарева Е.М. и др. Нарушение конденсации хроматина сперматозоидов и фрагментация ДНК сперматозоидов: есть ли корреляция? Андрология и генитальная хирургия 2017;18(1):48–61. DOI:10.17650/2070-9781-2017-18-1- 48-61.; WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th edn. Geneva: World Health Organization, 2010. 271 р.; Zini A., Libman J. Sperm DNA damage: clinical significance in the era of assisted reproduction. CMAJ 2006;175(5): 495–500. DOI:10.1503/cmaj.060218.; Vagnini L., Baruffi R.L., Mauri A.L. et al. The effects of male age on sperm DNA damage in an infertile population. Reprod Biomed Online 2007;15(5):514–9. DOI:10.1016/s1472-6483(10)60382-3.; Plastira K., Msaouel P., Angelopoulou R. et al. The effects of age on DNA fragmentation, chromatin packaging and conventional semen parameters in spermatozoa of oligoasthenoteratozoospermic patients. J Assist Reprod Genet 2007;24(10):437–43. DOI:10.1007/s10815-007-9162-5.; Sati L., Ovari L., Bennett D. et al. Double probing of human spermatozoa for persistent histones, surplus cytoplasm, apoptosis and DNA fragmentation. Reprod Biomed Online 2008;16(4):570–9. DOI:10.1016/s1472-6483(10)60464-6.; Petersen C.G., Mauri A.L., Vagnini L.D. et al. The effects of male age on sperm DNA damage: an evaluation of 2,178 semen samples. JBRA Assist Reprod 2018;22(4):323–30. DOI:10.5935/1518-0557.20180047.; Brahem S., Mehdi M., Elghezal H., Saad A. The effects of male aging on semen quality, sperm DNA fragmentation and chromosomal abnormalities in an infertile population. J Assist Reprod Genet 2011;28(5):425–32. DOI:10.1007/s10815-011-9537-5.; Colin A., Barroso G., Gómez-López N. et al. The effect of age on the expression of apoptosis biomarkers in human spermatozoa. Fertil Steril 2010;94(7):2609–14. DOI:10.1016/j.fertnstert.2010.04.043.; Moskovtsev S.I., Willis J., Mullen J.B. Age-related decline in sperm deoxyribonucleic acid integrity in patients evaluated for male infertility. Fertil Steril 2006;85(2): 496–9. DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.05.075.; Moskovtsev S.I., Willis J., White J., Mullen J.B. Sperm DNA damage: correlation to severity of semen abnormalities. Urology 2009;74(4):789–93. DOI:10.1016/j.urology.2009.05.043.; Wyrobek A.J., Eskenazi B., Young S. et al. Advancing age has differential effects on DNA damage, chromatin integrity, gene mutations, and aneuploidies in sperm. Proc Natl Acad Sci USA 2006;103(25):9601–6. DOI:10.1073/pnas.0506468103.; Singh N.P., Muller C.H., Berger R.E. Effects of age on DNA double-strand breaks and apoptosis in human sperm. Fertil Steril 2003;80(6):1420–30. DOI:10.1016/j.fertnstert.2003.04.002.; Schmid T.E., Eskenazi B., Baumgartner A. et al. The effects of male age on sperm DNA damage in healthy non-smokers. Hum Reprod 2007;22(1):180–7. DOI:10.1093/humrep/del338.; Nicoletti I., Migliorati G., Pagliacci M.C. et al. A rapid and simple method for measuring thymocyte apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry. J Immunol Methods 1991;139(2):271–9. DOI:10.1016/0022-1759(91)90198-o.; Winkle T., Rosenbusch B., Gagsteiger F. et al. The correlation between male age, sperm quality and sperm DNA fragmentation in 320 men attending a fertility center. J Assist Reprod Genet 2009;26(1):41–6. DOI:10.1007/s10815-008-9277-3.; Agarwal A., Said T.M. Role of sperm chromatin abnormalities and DNA damage in male infertility. Hum Reprod Update 2003;9(4):331–45. DOI:10.1093/humupd/dmg027.; Aitken R.J., Clarkson J.S., Fishel S. Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biol Reprod 1989;41(1):183–97. DOI:10.1095/biolreprod41.1.183.; Zandieh Z., Vatannejad A., Doosti M. et al. Comparing reactive oxygen species and DNA fragmentation in semen samples of unexplained infertile and healthy fertile men. Ir J Med Sci 2018; 187(3):657–62. DOI:10.1007/s11845-017-1708-7.; Xie D., Lu C., Zhu Y. et al. Analysis on the association between sperm DNA fragmentation index and conventional semen parameters, blood microelements and seminal plasma ROS in male patients with infertility. Exp Ther Med 2018;15(6):5173–6. DOI:10.3892/etm.2018.6115.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/380
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: S. I. Gamidov, A. Yu. Popova, N. G. Gasanov, R. I. Ovchinnikov, T. V. Shatylko, С. И. Гамидов, А. Ю. Попова, Н. Г. Гасанов, Р. И. Овчинников, Т. В. Шатылко
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 20, № 1 (2019); 91-98 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 20, № 1 (2019); 91-98 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2019-20-1
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, male infertility, oxidative stress, semen analysis, sperm DNA fragmentation, мужское бесплодие, оксидативный стресс, спермограмма
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/341/311; Dubin L., Amelar R.D. Etiologic factors in 1294 consecutive cases of male infertility. Fertil Steril 1971;22(8):469—74. PMID: 4398669.; Greenberg S.H., Lipshultz L.I., Wein A.J. Experience with 425 subfertile male patients. J Urol 1978;119(4):507—10. PMID: 25971.; Punab M., Poolamets O., Paju P. Causes of male infertility: a 9-year prospective monocentre study on 1737 patients with reduced total sperm counts. Hum Reprod 2017;32(1):18—31. PMID: 27864361. DOI:10.1093/humrep/dew284.; Камалов А.А., Чалый М.Е., Епифанова М.В. Эмпирические подходы к лечению мужского бесплодия. Эффективная фармакотерапия 2015;(27):22—4.; Henkel R., Sandhu I.S., Agarwal A. The excessive use of antioxidant therapy: A possible cause of male infertility? Andrologia 2019;51(1):e13162. PMID: 30259539. DOI:10.1111/and.13162.; Chen P., Stone J., Sullivan G. et al. Supplementary glutathione counteracts with pharmacologic ascorbate in preclinical cancer models. Free Radic Biol Med 2011;51(3):681 —7.; Овчинников Р.И., Попова А.Ю., Гамидов С.И., Квасов А.В. Антиоксидантная терапия — ключ к лечению идиопатического мужского бесплодия. Медицинский совет 2017;(20):177—81.; Виноградов И.В., Габлия М.Ю., Родионов М.А., Виноградова Л.М. Результаты общероссийского исследования эффективности комплекса ацетил^-карнитина и L-карнитина фумарата в лечении бесплодия у мужчин. Андрология и генитальная хирургия 2014;15(3):80—3. DOI:10.17650/2070-9781-2014-3-80-83.; Zopfgen A., Priem F., Sudhoff F. et al. Relationship between semen quality and the seminal plasma components carnitine, alpha-glucosidase, fructose, citrate and granulocyte elastase in infertile men compared with a normal population. Hum Reprod 2000;15(4):840-5. PMID: 10739829.; Balercia G., Regoli F., Armeni T. et al. Placebo-controlled double-blind randomized trial of the use of l-carnitine, l-acetylcarnitine, or combined l-carnitine and l-acetylcarnitine in men with idiopathic asthenozoospermia. Fertil Steril 2005;84(3):662—71. PMID: 16169400. DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.03.064.; Sigman M., Glass S., Campagnone J., Pryor J.L. Carnitine for the treatment of idiopathic asthenospermia: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Fertil Steril 2006;85(5):1409—14. PMID: 16600222. DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.10.055.; Salas-Huetos A., Rosique-Esteban N., Becerra-Tomas N. et al. The effect of nutrients and dietary supplements on sperm quality parameters: a systematic review and meta-analysis of randomized clinical trials. Adv Nutr 2018;9(6):833—48. PMID: 30462179. DOI:10.1093/advances/nmy057.; Ефремов Е.А., Касатонова Е.В., Мельник Я.И., Никушина А.А. Изолированная тератозооспермия: есть ли место антиоксидантной терапии? Урология 2017;(5):124—31. DOI:10.18565/urology.2017.5.124-131.; Овчинников Р.И., Гамидов С.И., Попова А.Ю. и др. Причины репродуктивных потерь у мужчин — фрагментация ДНК сперматозоидов. Русский медицинский журнал 2015;23(11):634—8.; Коршунов М.Н., Коршунова Е.С., Даренков С.П. Прогностическая ценность показателя ДНК-фрагментации сперматозоидов в успехе программ вспомогательных репродуктивных технологий. Эмпирическая антиоксидантная терапия в коррекции ДНК-фраг-ментации на фоне патологического окислительного стресса эякулята. Экспериментальная и клиническая урология 2017;(3):70—7.; Виноградов И.В., Виноградова Л.М., Базанов П.А., Юткин Е.В. Лечение мужского бесплодия, обусловленного высокой степенью фрагментации ДНК сперматозоидов. Проблемы репродукции 2014;20(3):67—72.; Agarwal A., Rana M., Qiu E. et al. Role of oxidative stress, infection and inflammation in male infertility. Andrologia 2018;50(11):e13126. PMID: 30569652. DOI:10.1111/and.13126.; Roychoudhury S., Sharma R., Sikka S., Agarwal A. Diagnostic application of total antioxidant capacity in seminal plasma to assess oxidative stress in male factor infertility. J Assist Reprod Genet 2016;33(5):627—35. PMID: 26941096. DOI:10.1007/s10815-016-0677-5.; Алоян К.А., Матвеев А.В., Морев В.В., Корнеев И.А. Физиологические механизмы обеспечения подвижности сперматозоидов. Урологические ведомости 2013;3(4):14—9.; Гамидов С.И., Попков В.М., Шатылко Т.В. и др. Место медикаментозной терапии в лечении мужчин с варикоцеле. Урология 2018;(5):114—21. DOI:10.18565/urology.2018.5.114-121.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/341
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: I. V. Vinogradov, A. R. Zhivulko, L. M. Vinogradova, S. V. Korolev, И. В. Виноградов, А. Р. Живулько, Л. М. Виноградова, С. В. Королев
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 19, № 4 (2018); 21-27 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 19, № 4 (2018); 21-27 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2018-19-4
Θεματικοί όροι: фрагментация ДНК сперматозоидов, docosahexaenoic acid, male infertility, sperm DNA fragmentation, докозагексаеновая кислота, мужское бесплодие
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/317/288; Greenhall E., Vessey M. The prevalence of subfertility: a review of the current confusion and a report of two new studies. Fertil Steril 1990;54(6):978—83. PMID: 2245856.; Krausz C., Escamilla A.R., Chianese C. Genetics of male infertility: from research to clinic. Reproduction 2015;150(5):159 —74. DOI:10.1530/REP-15-0261. PMID: 26447148.; Esmaeili V., Shahverdi A. H., Moghadasian M.H., Alizadeh A. R. Dietary fatty acids affect semen quality: a review. Andrology 2015;3(3):450—61. DOI:10.1111/andr.12024. PMID: 25951427.; Sanhueza Catalan J., Duran AgUero S., Torres Garcia J. [The fatty acids and relationship with health (In Spanish)]. Nutr Hosp 2015;32(3):1362—75. DOI:10.3305/nh.2015.32.3.9276. PMID: 26319861.; Zerbinati C., Caponecchia L., Rago R. et al. Fatty acids profiling reveals potential candidate markers of semen quality. Andrology 2016;4(6):1094—101. DOI:10.1111/andr.12236. PMID: 27673576.; Rodriguez-Cruz M., Serna D.S. Nutrigenomics of ю-3 fatty acids: Regulators of the master transcription factors. Nutrition 2017;41:90-6. DOI:10.1016/j.nut.2017.04.012. PMID: 28760435.; Andersen J., Ronning P., Herning H. et al. Fatty acid composition of spermatozoa is associated with BMI and with semen quality. Andrology 2016;4(5):857—65. DOI:10.1111/andr.12227. PMID: 27371336.; Hashimoto M., Hossain S., Mamun A. et al. Docosahexaenoic acid: one molecule diverse functions. Crit Rev Biotechnol 2017;37(5):579—97. DOI:10.1080/07388551.2016.1207153. PMID: 27426008.; Rato L., Alves M.G., Cavaco J.E. et al. High-energy diets: a threat for male fertility? Obes Rev 2014;15(12):996—1007. DOI:10.1111/obr.12226. PMID: 25346452.; Mitre R., Cheminade C., Allaume P. et al. Oral intake of shark liver oil modifies lipid composition and improves motility and velocity of boar sperm. Theriogenology 2004;62(8):1557—66. DOI:10.1016/j.theriogenology.2004.02.004. PMID: 15451263.; Castellano C.-A., Audet I. Bailey J. et al. Effect of dietary n-3 fatty acids(fish oils) on boar reproduction and semen quality. J Anim Sci 2010;88(7):2346—55. DOI:10.2527/jas.2009-2779. PMID: 20348371.; Gholami H., Chamani M., Towhidi A., Fazeli M.H. Effect of feeding a docosahexaenoic acid-enriched nutriceutical on the quality of fresh and frozen-thawed semen in Holstein bulls. Theriogenology 2010;74(9):1548—58. DOI:10.1016/j.theriogenology.2010.06.025. PMID: 20708237.; Roqueta-Rivera M., Abbott T.L., Sivaguru M. et al. Deficiency in the omega-3 fatty acid pathway results in failure of acrosome biogenesis in mice. Biol Reprod 2011;85(4):721 —32. DOI:10.1095/biolreprod.110.089524. PMID: 21653892.; Safarinejad M.R. Effect of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplementation on semen profile and enzymatic anti-oxidant capacity of seminal plasma in infertile men with idiopathic oligoasthenoteratospermia: a doubleblind, placebo-controlled, randomised study. Andrologia 2011;43(1):38—47. DOI:10.1111/j.1439-0272.2009.01013.x. PMID: 21219381.; Moallem U., Neta N., Zeron Y. et al. Dietary a-linolenic acid from flaxseed oil or eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids from fish oil differentially alter fatty acid composition and characteristics of fresh and frozen-thawed bull semen. Theriogenology 2015;83(7):1110—20. DOI:10.1016/j.theriogenology.2014.12.008. PMID: 25617988.; Filipcikova R., Oborna I., Brezinova J. et al. Lycopene improves the distorted ratio between AA/DHA in the seminal plasma of infertile males and increases the likelihood of successful pregnancy. Biomed Pap Med Fac Univ Palacky Olomouc Czech Repub 2015;159(1):77—82. DOI:10.5507/bp.2013.007. PMID: 23446211.; Hosseini B., Nourmohamadi M., Hajipour S. et al. The effect of omega-3 fatty acids, EPA, and/or DHA on male infertility: a systematic review and metaanalysis. J Diet Suppl 2018;16:1 —12. DOI:10.1080/19390211.2018.1431753. PMID: 29451828.; Attaman J.A., Toth T.L., Furtado J. et al. Dietary fat and semen quality among men attending a fertility clinic. Hum Reprod 2012;27(5):1466—74. DOI:10.1093/humrep/des065. PMID: 22416013.; Eslamian G., Amirjannati N., Rashidkhani B. et al. Dietary fatty acid intakes and asthenozoospermia: a case-control study. Fertil Steril 2015;103(1): 190—8. DOI:10.1016/j.fertnstert.2014.10.010. PMID: 25456794.; Calder P. C. Functional roles of fatty acids and their effects on human health. JPEN J Parenter Enteral Nutr 2015;39(1 Suppl): 18S—32S. DOI:10.1177/0148607115595980. PMID: 26177664.; Ollero M., Powers R.D., Alvarez J.G. Variation of docosahexaenoic acid content in subsets of human spermatozoa at different stages of maturation: implications for sperm lipoperoxidative damage. Mol Reprod Dev 2000;55(3):326—34. PMID: 10657052.; Connor W.E., Lin D.S., Wolf D.P., Alexander M. Uneven distribution of desmosterol and docosahexaenoic acid in the heads and tails of monkey sperm. J Lipid Res 1998;39(7):1404—11. PMID: 9684743.; Martinez-Soto J.C., Landeras J., Gadea J. Spermatozoa and seminal plasma fatty acids as predictors of cryopreservation success. Andrology 2013;1(3):365—75. DOI:10.1111/j.2047-2927.2012.00040.x. PMID: 23596043.; Speake B.K., Surai P.F., Rooke J.A. et al. Regulation of avian and mammalian sperm production by dietary fatty acids. In: Male fertility and lipid metabolism. Ed. by S.R. De Vriese, A.B. Christophe. Champaign, IL: AOCS Press, 2003. Pp. 96e117.; Lenzi A., Picardo M., Gandini L., Dondero F. Lipids of the sperm plasma membrane: from polyunsaturated fatty acids considered as markers of sperm function to possible scavenger therapy. Hum Reprod Update 1996;2(3):246—56. PMID: 9079417.; Murphy E.M., Stanton C., Brien C.O. et al. The effect of dietary supplementation of algae rich in docosahexaenoic acid on boar fertility. Theriogenology 2017;90:78—87. DOI:10.1016/j.theriogenology.2016.11.008. PMID: 28166992.; Comhaire F.H., Christophe A.B., Zalata A.A. et al. The effects of combined conventional treatment, oral antioxidants and essential fatty acids on sperm biology in subfertile men. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 2000;63(3):159—65. DOI:10.1054/plef.2000.0174. PMID: 10991774.; Martinez-Soto J.C., Domingo J.C., Cordobilla B. et al. Dietary supplementation with docosahexaenoic acid (DHA) improves seminal antioxidant status and decreases sperm DNA fragmentation. Syst Biol Reprod Med 2016;62(6):387—95. DOI:10.1080/19396368.2016.1246623. PMID: 27792396.; Calder P.C. Polyunsaturated fatty acids and inflammation. Biochem Soc Trans 2005;33(Pt 2):423—7. DOI:10.1042/BST0330423. PMID: 15787620.; Kim Y.J., Chung H.Y. Antioxidative and anti-inflammatory actions of docosahexaenoic acid and eicosapentaenoic acid in renal epithelial cells and macrophages. J Med Food 2007;10(2):225—31. DOI:10.1089/jmf.2006.092. PMID: 17651056.; Lukiw J., Bazan G. Docosahexaenoic acid and the aging brain. J Nutr 2.008;138(12.):2510—14. DOI:10.3945/jn.108.096016. PMID: 19022980.; Schumann J. It is all about fluidity: Fatty acids and macrophage phagocytosis. Eur J Pharmacol 2016;785:18-23. DOI:10.1016/j.ejphar.2015.04.057. PMID: 25987422.; Calder P.C. Omega-3 fatty acids and inflammatory processes: from molecules to man. Biochem Soc Trans 2017;45(5):1105—15. DOI:10.1042/BST20160474. PMID: 28900017.; Browning L.M., Walker C.G., Mander A.P. et al. Incorporation of eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids into lipid pools when given as supplements providing doses equivalent to typical intakes of oily fish. Am J Clin Nutr 2012;96(4):748—58. DOI:10.3945/ajcn.112.041343. PMID: 22932281.; Chapkin R.S., Akoh C.C., Miller C. C. Influence of dietary n-3 fatty acids on macrophage glycerophospholipid molecular species and peptidoleukotriene synthesis. J Lipid Res 1991;32(7): 1205—13. PMID: 1940643.; Barros K.V., Cassulino A.P., Schalch L. et al. Pharmaconutrition: acute fatty acid modulation of circulating cytokines in elderly patients in the ICU. JPEN J Parenter Enteral Nutr 2014;38(4):467—74. DOI:10.1177/0148607113480183. PMID: 23471207.; Miles E.A., Wallace F.A., Calder P.C. Dietary fish oil reduces intercellular adhesion molecule 1 and scavenger receptor expression on murine macrophages. Atherosclerosis 2000;152(1):43—50. PMID: 10996338.; Daak A.A., Elderdery A.Y., Elbashir L.M. et al. Omega 3(n-3) fatty acids down-regulate nuclear factor-kappa B (NF-kB) gene and blood cell adhesion molecule expression in patients with homozygous sickle cell disease. Blood Cells Mol Dis 2015;55(1) 48—55. DOI:10.1016/j.bcmd.2015.03.014. PMID: 25976467.; Novak T.E., Babcock T.A., Jho D.H. et al. NF-kappa B inhibition by omega —3 fatty acids modulates LPS-stimulated macrophage TNF-alpha transcription. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 2003;284(1):84—9. DOI:10.1152/ajplung.00077.2002. PMID: 12388359.; Kong W., Yen J.H., Vassiliou E. et al. Docosahexaenoic acid prevents dendritic cell maturation and in vitro and in vivo expression of the IL-12 cytokine family. Lipids Health Dis 2010;9:12. PMC2827414. DOI:10.1186/1476-511X-9—12. PMID: 20122166.; Weylandt K.H. Docosapentaenoic acid derived metabolites and mediators — the new world of lipid mediator medicine in a nutshell. Eur J Pharmacol 2016;785:108—115. DOI:10.1016/j.ejphar.2015.11.002. PMID: 26546723.; Hsiao H.M., Thatcher T.H., Colas R.A. et al. Resolvin D1 reduces emphysema and chronic inflammation. Am J Pathol 2015;185(12):3189—201. DOI:10.1016/j.ajpath.2015.08.008. PMID: 26468975.; Serhan C.N., Chiang N. Resolution phase lipid mediators of inflammation: agonists of resolution. Curr Opin Pharmacol 2013;13(4):632—40. DOI:10.1016/j.coph. 2013.05.012. PMID: 23747022.; Lima-Garcia J.F., Dutra R.C., da Silva K. et al. The precursor of resolvin D series and aspirin-triggered resolvin D1 display anti-hyperalgesic properties in adjuvant-induced arthritis in rats. Br J Pharmacol 2011;164(2):278—93.DOI:10.1111/j.1476-5381.2011.01345.x. PMID: 21418187.; Schwanke R.C., Marcon R., Bento A.F. et al. EPA- and DHA-derived resolvins» actions in inflammatory bowel disease. Eur J Pharmacol 2016;785:156—64. DOI:10.1016/j.ejphar.2015.08.050. PMID: 26325092.; Rogerio A.P., Haworth O., Croze R. et al. Resolvin D1 and aspirin-triggered resolvin D1 promote resolution of allergic airways responses. J Immunol 2012;189(4):1983—91. DOI:10.4049/jimmunol.1101665. PMID: 22802419.; Mas E., Croft K.D., Zahra P. et al. Resolvins D1, D2, and other mediators of self-limited resolution of inflammation in human blood following n-3 fatty acid supplementation. Clin Chem 2012;58(10):1476—84. DOI:10.1373/clinchem.2012.190199. PMID: 22912397.; Lecchi C., Invernizzi G., Agazzi A. et al. In vitro modulation of caprine monocyte immune functions by ю-3 polyunsaturated fatty acids. Vet J 2011;189(3):353—5. DOI:10.1016/j.tvjl.2010.09.001. PMID: 20889357.; Belluzzi A., Brignola C., Campieri. et al. Effect of an enteric-coated fish-oil preparation on relapses in Crohn’s disease. N Engl J 1996;334(24):1557—60. DOI:10.1056/NEJM199606133342401. PMID: 8628335.; Leeb B.F., Sautner J., Andel I., Rintelen B. Intravenous application of omega-3 fatty acids in patients with active rheumatoid arthritis. The ORA-1 trial. An open pilot study. Lipids 2006;41(1):29—34. PMID: 16555468.; Goldberg R.J., Katz J. A meta-analysis of the analgesic effects of omega-3 polyunsaturated fatty acid supplementation for inflammatory joint pain. Pain 2007;129(1—2):210—23. DOI:10.1016/j.pain.2007.01.020. PMID: 17335973.; Xu Q.H., Cai G.L., Lh X.C. et al. [The effects of ю-3 fish oil lipid emulsion on inflammation-immune response and organ function in patients with severe acute pancreatitis (In Chinese)]. Zhonghua Nei Ke Za Zhi 2012;51(12):962—5. PMID: 23327958.; Sheppard J.D. Jr, Singh R., McClellan A.J. Long-term supplementation with n-6 and n-3 PUFAs improves moderate-to-severe keratoconjunctivitis sicca: a randomized double-blind clinical trial. Cornea 2013;32(10):1297—304. DOI:10.1097/ICO.0b013e318299549c. PMID: 23884332.; Naqvi A.Z., Hasturk H., Mu L. et al. Docosahexaenoic acid and periodontitis in adults: a randomized controlled trial. J Dent Res 2014;93(8):767—73.; Bisht S., Faiq M., Tolahunase M., Dada R. Oxidative stress and male infertility. Nat Rev Urol 2017;14(8):470—85. DOI:10.1038/nrurol.2017.69. PMID: 28508879.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/317