-
1Academic Journal
Source: Актуальные проблемы безопасности в техносфере. :83-86
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, газовая хроматография, анализ, analysis, gas chromatography, легковоспламеняющиеся жидкости, осмотр места происшествия, crime scene inspection, горючие жидкости, fluorescence spectroscopy, fire, flammable liquids, пожар
-
2Academic Journal
Subject Terms: редкоземельные металлы, спектрометрия резерфордовского обратного рассеяния, ионно-ассистируемое осаждение, мембрана Nafion, энергодисперсионный микроанализ, платина, рентгеновская флуоресцентная спектроскопия
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/67690
-
3Academic Journal
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, оксигенация гемоглобина, конформация белка, фотодиссоциация оксигемоглобина
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/67625
-
4Academic Journal
Authors: E. V. Potapova, Е. В. Потапова
Contributors: This work was supported by Russian Science Foundation under projects No. 18-15-00201 and No. 21-15-00325., Работа выполнена при финансовой поддержке проектов РНФ № 18-15-00201 и № 21-15-00325.
Source: Journal of the Russian Universities. Radioelectronics; Том 27, № 6 (2024); 106-119 ; Известия высших учебных заведений России. Радиоэлектроника; Том 27, № 6 (2024); 106-119 ; 2658-4794 ; 1993-8985
Subject Terms: спектроскопия диффузного отражения, percutaneous puncture biopsy, fluorescence spectroscopy, time-resolved fluorescence spectroscopy, diffuse reflectance spectroscopy, флуоресцентная спектроскопия, флуоресцентная спектроскопия с временным разрешением
File Description: application/pdf
Relation: https://re.eltech.ru/jour/article/view/957/816; Cancer statistics / R. L. Siegel, K. D. Miller, H. E. Fuchs, A. Jemal // CA: a cancer j. for clinicians. 2022. Vol. 72, no. 1. P. 7–33. doi:10.3322/caac.21708; Attwa M. H., El-Etreby S. A. Guide for diagnosis and treatment of hepatocellular carcinoma // World j. of hepatology. 2015. Vol. 7, no. 12. P. 1632–1651. doi:10.4254/wjh.v7.i12.1632; Imaging Diagnosis of Hepatocellular Carcinoma: A State-of-the-Art Review / G. Candita, S. Rossi, K. Cwiklinska, S. C. Fanni, D. Cioni, R. Lencioni, E. Neri // Diagnostics. 2023. Vol. 13, no. 4. P. 625. doi:10.3390/diagnostics13040625; Imaging for the diagnosis of hepatocellular carcinoma: A systematic review and meta-analysis / L. R. Roberts, C. B. Sirlin, F. Zaiem, J. Almasri, L. J. Prokop, J. K. Heimbach, M. H. Murad, K. Mohammed // Hepatology. 2018. Vol. 67, no. 1. P. 401–421. doi:10.1002/hep.29487; When and how should we perform a biopsy for HCC in patients with liver cirrhosis in 2018? A review / F. P. Russo, A. Imondi, E. N. Lynch, F. Farinati // Digestive and liver disease: official j. of the Italian Society of Gastroenterology and the Italian Association for the Study of the Liver. 2018. Vol. 50, no. 7. P. 640– 646. doi:10.1016/j.dld.2018.03.014; Biopsy of focal liver lesions: guidelines, comparison of techniques and cost-analysis / S. M. Francque, F. F. De Pauw, G. H. Van den Steen, E. A. Van Marck, P. A. Pelckmans, P. P. Michielsen // Acta gastroenterologica Belgica. 2003. Vol. 66, no. 2. P. 160–165.; Factors affecting inadequate sampling of ultrasound-guided fine-needle aspiration biopsy of thyroid nodules / S. H. Choi, K. H. Han, J. H. Yoon, H. J. Moon, E. J. Son, J. H. Youk, E. K. Kim, J. Y. Kwak // Clinical endocrinology. 2011. Vol. 74, no. 6. P. 776–782. doi:10.1111/j.1365-2265.2011.04011.x; Inadequate fine needle aspiration biopsy samples: pathologists versus other specialists // G. S. GomezMacías, R. Garza-Guajardo, J. Segura-Luna, O. Barboza-Quintana / CytoJournal. 2009. Vol. 6. Art. № 4. doi:10.4103/1742-6413.52831; The management of hepatocellular carcinoma / M. Ducreux, G. K. Abou-Alfa, T. Bekaii-Saab, J. Berlin, A. Cervantes, T. de Baere, C. Eng, P. Galle, S. Gill, T. Gruenberger, K.Haustermans, A. Lamarca, P. Laurent-Puig, J. M. Llovet, F. Lordick, T. Macarulla, D. Mukherji, K. Muro, R. Obermannova, J. M. O'Connor, E. M. O'Reilly, P. Osterlund, P. Philip, G. Prager, E. Ruiz-Garcia, B. Sangro, T. Seufferlein, J. Tabernero, C. Verslype, H. Wasan, E. Van Cutsem // Current expert opinion and recommendations derived from the 24th ESMO/World Congress on Gastrointestinal Cancer, Barcelona, 2022. ESMO open, 2023, vol. 8, no. 3, p. 101567. doi:10.1016/j.esmoop.2023.101567; Treatment of Primary Liver Tumors and Liver Metastases, Part 1: Nuclear Medicine Techniques / N. Voutsinas, S. Lekperic, S. Barazani, J. J. Titano, S. I. Heiba, E. Kim // J. of nuclear medicine: official publication, Society of Nuclear Medicine. 2018. Vol. 59, no. 11. P. 1649–1654. doi:10.2967/jnumed.116.186346; Дунаев А. В. Мультимодальная оптическая диагностика микроциркуляторно-тканевых систем организма человека. Старый Оскол: ТНТ, 2022. 440 с.; Дунаев А. В. Метод и устройство оценки функционального состояния микроциркуляторно-тканевых систем организма человека на основе мультипараметрической оптической диагностики // Изв. вузов России. Радиоэлектроника. 2020. Т. 23, № 4. С. 77–91. doi:10.32603/1993-8985-2020-23-4-77-91; Croce A. C., Bottiroli G. Autofluorescence spectroscopy and imaging: a tool for biomedical research and diagnosis // European j. of histochemistry: EJH. 2014. Vol. 58, no. 4. P. 2461. doi:10.4081/ejh.2014.2461; Флуоресцентная диагностика митохондриальной функции в эпителиальных тканях in vivo / Е. А. Жеребцов, В. В. Дремин, А. И. Жеребцова, Е. В. Потапова, А. В. Дунаев; Орловский государственный университет им. И. С. Тургенева. Орел, 2018. 107 с.; Метод оценки местного метаболизма опухолей молочных желез на основе мультимодальной оптической технологии / М. И. Арабачян, В. В. Шуплецов, М. Ю. Кириллин, А. В. Дунаев, Е. В. Потапова // Онкологический журн.: лучевая диагностика, лучевая терапия. 2024. Т. 7, № 2. С. 37–45. doi:10.37174/2587-7593-2024-7-2-37-45; Interrogation of tumor metabolism in tissue samples ex vivo using fluorescence lifetime imaging of NAD(P)H / M. M. Lukina, L. E. Shimolina, N. M. Kiselev, V. E. Zagainov, D. V. Komarov, E. V. Zagaynova, M. V. Shirmanova // Methods and applications in fluorescence. 2019. Vol. 8, no. 1. P. 14002. doi:10.1088/2050-6120/ab4ed8; Metabolic cofactors NAD(P)H and FAD as potential indicators of cancer cell response to chemotherapy with paclitaxel / M. M. Lukina, V. V. Dudenkova, N. I. Ignatova, I. N. Druzhkova, L. E. Shimolina, E. V. Zagaynova, M. V. Shirmanova // Biochimica et biophysica acta. General subjects. 2018. Vol. 1862, no. 8. P. 1693–1700. doi:10.1016/j.bbagen.2018.04.021; Sensitive detection of intracellular environment of normal and cancer cells by autofluorescence lifetime imaging / K. Awasthi, D. Moriya, T. Nakabayashi, L. Li, N. Ohta // J. of photochemistry and photobiology. B, Biology. 2016. Vol. 165. P. 256–265. doi:10.1016/j.jphotobiol.2016.10.023; Detection of urinary bladder cancer cells using redox ratio and double excitation wavelengths autofluorescence / S. Palmer, K. Litvinova, E. U. Rafailov, G. Nabi // Biomedical optics express. 2015. Vol. 6, no. 3. P. 977–986. doi:10.1364/BOE.6.000977; Fiber-Optic System for Intraoperative Study of Abdominal Organs during Minimally Invasive Surgical Interventions / K. Kandurova, V. Dremin, E. Zherebtsov, E. Potapova, A. Alyanov, A. Mamoshin, Y. Ivanov, A. Borsukov, A. Dunaev // Applied Sciences. 2019. Vol. 9, no. 2. P. 217. doi:10.3390/app9020217; Metabolic mapping of MCF10A human breast cells via multiphoton fluorescence lifetime imaging of the coenzyme NADH / D. K. Bird, L. Yan, K. M. Vrotsos, K. W. Eliceiri, E. M. Vaughan, P. J. Keely, J. G. White, N. Ramanujam // Cancer research. 2005. Vol. 65, no. 19. P. 8766–8773. doi:10.1158/0008-5472.CAN-04-3922; Suhling K., French P. M. W., Phillips D. Timeresolved fluorescence microscopy // Photochemical & Photobiological Sciences. 2005. Vol. 4, no. 1. P. 13–22. doi:10.1039/b412924p; Real time optical Biopsy: Time-resolved Fluorescence Spectroscopy instrumentation and validation / D. S. Kittle, F. Vasefi, C. G. Patil, A. Mamelak, K. L. Black, P. V. Butte // Scientific reports. 2016. Vol. 6. P. 38190. doi:10.1038/srep38190; Preclinical ex vivo evaluation of the diagnostic performance of a new device for in situ label-free fluorescence spectral analysis of breast masses / M. C. Mathieu, A. Toullec, C. Benoit, R. Berry, P. Validire, P. Beaumel, Y. Vincent, P. Maroun, P. Vielh, L. Alchab, R. Farcy, H. Moniz-Koum, M. P. FontaineAupart, S. Delaloge, C. Balleyguier // European radiology. 2018. Vol. 28, no. 6. P. 2507–2515. doi:10.1007/s00330-017-5228-7; Towards the use of diffuse reflectance spectroscopy for real-time in vivo detection of breast cancer during surgery / L. L. de Boer, T. M. Bydlon, F. van Duijnhoven, M. T. F. D. Vranken Peeters, C. E. Loo, G. A. O. Winter-Warnars, J. Sanders, H. J. C. M. Sterenborg, B. H. W. Hendriks, T. J. M. Ruers // J. of translational medicine. 2018. Vol. 16, no. 1. P. 367. doi:10.1186/s12967-018-1747-5; Auto-fluorescence lifetime and light reflectance spectroscopy for breast cancer diagnosis: potential tools for intraoperative margin detection / V. Sharma, S. Shivalingaiah, Y. Peng, D. Euhus, Z. Gryczynski, H. Liu // Biomedical optics express. 2012. Vol. 3, no. 8. P. 1825–1840. doi:10.1364/BOE.3.001825; Pulmonary Endogenous Fluorescence Allows the Distinction of Primary Lung Cancer from the Perilesional Lung Parenchyma / L. Gust, A. Toullec, C. Benoit, R. Farcy, S. Garcia, V. Secq, J. Y. Gaubert, D. Trousse, B. Orsini, C. Doddoli, H. Moniz-Koum, P. A. Thomas, X. B. D'journo // PloS One. 2015. Vol. 10, no. 8. P. e0134559. doi:10.1371/journal.pone.0134559; A customized multispectral needle probe combined with a virtual photometric setup for in vivo detection of Lewis lung carcinoma in an animal model / F. Braun, R. Schalk, M. Nachtmann, A. Hien, R. Frank, T. Beuermann, F.-J. Methner, B. Kränzlin, M. Rädle, N. Gretz // Measurement Science and Technology. 2019. Vol. 30, no. 10. P. 104001. doi:10.1088/1361-6501/ab24a1; Real-time In Vivo Tissue Characterization with Diffuse Reflectance Spectroscopy during Transthoracic Lung Biopsy: A Clinical Feasibility Study / J. W. Spliethoff, W. Prevoo, M. A. Meier, J. de Jong, H. M. Klomp, D.J. Evers, H. J. Sterenborg, G. W. Lucassen, B. H. Hen- driks, T. J. Ruers // Clinical cancer research: an official j. of the American Association for Cancer Research. 2016. Vol. 22, no. 2. P. 357–365. doi:10.1158/1078-0432.CCR-15-0807; Diffuse reflectance spectroscopy of human liver tumor specimens – towards a tissue differentiating optical biopsy needle using light emitting diodes / A. Keller, P. Bialecki, T. J. Wilhelm, M. K. Vetter // Biomedical optics express. 2018. Vol. 9, no. 3. P. 1069–1081. doi:10.1364/BOE.9.001069; Monitoring of tumor response to Cisplatin using optical spectroscopy / J. W. Spliethoff, D. J. Evers, J. E. Jaspers, B. H. Hendriks, S. Rottenberg, T. J. Ruers // Translational oncology. 2014. Vol. 7, no. 2. P. 230– 239. doi:10.1016/j.tranon.2014.02.009; In vivo characterization of colorectal metastases in human liver using diffuse reflectance spectroscopy: toward guidance in oncological procedures / J. W. Spliethoff, L. L. de Boer, M. A. Meier, W. Prevoo, J. de Jong, K. Kuhlmann, T. M. Bydlon, H. J. Sterenborg, B. H. Hendriks, T. J. Ruers // J. of biomedical optics. 2016. Vol. 21, no. 9. P. 097004. doi:10.1117/1.JBO.21.9.097004; In vivo tumor identification of colorectal liver metastases with diffuse reflec-tance and fluorescence spectroscopy / E. Tanis, D. J. Evers, J. W. Spliethoff, V. V. Pully, K. Kuhlmann, F. van Coevorden, B. H. Hendriks, J. Sanders, W. Prevoo, T. J. Ruers, // Lasers in surgery and medicine. 2016. Vol. 48, no. 9. P. 820–827. doi:10.1002/lsm.22581; Hyperspectral imaging of human skin aided by artificial neural networks / E. Zherebtsov, V. Dremin, A. Popov, A. Doronin, D. Kurakina, M. Kirillin, I. Meglinski, A. Bykov // Biomedical optics express. 2019. Vol. 10, no. 7. P. 3545–3559. doi:10.1364/BOE.10.003545; Optical percutaneous needle biopsy of the liver: a pilot animal and clinical study / V. Dremin, E. Potapova, E. Zherebtsov, K. Kandurova, V. Shupletsov, A. Alekseyev, A.Mamoshin, A. Dunaev // Scientific reports. 2020. Vol. 10, no. 1. P. 14200. doi:10.1038/s41598-020-71089-5; International Commission on Non-Ionizing Radiation Protection (ICNIRP). Guidelines on limits of exposure to ultraviolet radiation of wavelengths between 180 nm and 400 nm (incoherent optical radiation) // Health physics. 2004. Vol. 87, no. 2. P. 171– 186. doi:10.1097/00004032-200408000-00006; Fluorescence lifetime needle optical biopsy discriminates hepatocellular carcinoma / E. A. Zherebtsov, E. V. Potapova, A. V. Mamoshin, V. V. Shupletsov, K. Y. Kandurova, V. V. Dremin, A. Y. Abramov, A. V. Dunaev // Biomedical optics express. 2022. Vol. 13, no. 2. P. 633–646. doi:10.1364/BOE.447687; Detection of NADH and NADPH levels in vivo identifies shift of glucose metabolism in cancer to energy production / E. V. Potapova, E. A. Zherebtsov, V. V. Shupletsov, V. V. Dremin, K. Y. Kandurova, A. V. Mamoshin, A. Y. Abramov, A. V. Dunaev // The FEBS j. 2024. Vol. 291, no. 12. P. 2674–2682. doi:10.1111/febs.17067; Development of arterial blood supply in experimental liver metastases / K. Dezso, E. Bugyik, V. Papp, V. László, B. Döme, J. Tóvári, J. Tímár, P. Nagy, S. Paku // The American j. of pathology. 2009. Vol. 175, no. 2. P. 835–843. doi:10.2353/ajpath.2009.090095.; In vivo multiphoton fluorescence lifetime imaging of protein-bound and free nicotinamide adenine dinucleotide in normal and precancerous epithelia / M. C. Skala, K. M. Riching, D. K. Bird, A. GendronFitzpatrick, J. Eickhoff, K. W. Eliceiri, P. J. Keely, N. Ramanujam // J. of biomedical optics. 2007. Vol. 12, no. 2. P. 024014. doi:10.1117/1.2717503; https://re.eltech.ru/jour/article/view/957
-
5Academic Journal
Authors: Irina N. Dolganova, Daria A. Varvina, Irina A. Shikunova, Anna I. Alekseeva, Pavel A. Karalkin, Maxim R. Kuznetsov, Pavel V. Nikitin, Arsen K. Zotov, Elena E. Mukhina, Gleb M. Katyba, Kirill I. Zaytsev, Valery V. Tuchin, Vladimir N. Kurlov
Source: Lasers in surgery and medicine. 2022. Vol. 54, № 4. P. 611-622
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, хирургическая онкология, Phantoms, Imaging, Lasers, Margins of Excision, рост кристаллов, медицинские инструменты, 01 natural sciences, Rats, 3. Good health, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, Neoplasms, интраоперационная визуализация, 0103 physical sciences, Aluminum Oxide, Animals, Humans, медицинские скальпели, аутофлуоресцентная спектроскопия, интраоперационная диагностика, светорассеяние, Optical Fibers
Linked Full TextAccess URL: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34918347
https://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:000898824 -
6Academic Journal
Source: Journal of Applied Spectroscopy. 87:1100-1104
Subject Terms: Hyperici herba, гиперицин, флуоресцентная спектроскопия, зверобой, Diahyperon, диагиперон, electron spectroscopy, Hypericin, hypericin, fluorescence spectroscopy, электронная спектроскопия, 01 natural sciences, 0104 chemical sciences
File Description: application/pdf
Linked Full TextAccess URL: http://ui.adsabs.harvard.edu/abs/2021JApSp..87.1100L/abstract
https://link.springer.com/article/10.1007/s10812-021-01115-5
https://elib.belstu.by/handle/123456789/45587 -
7Academic Journal
-
8Academic Journal
-
9Academic Journal
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, лекарственный препарат альбумина человека, билирубин, количественное определение, спектры флуоресценции, модифицированный метод стандартных добавок
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/57030
-
10Academic Journal
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, спектры поглощения, слабокислые водные растворы, спектры флуоресценции, абсорбционная спектроскопия, органические соединения, температурная зависимость
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/51364
-
11Patent
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, аналитическая химия, билирубин, препараты альбумина человека, альбумин, спектрофлуориметрия, концентрация билирубина
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/68459
-
12Academic Journal
Subject Terms: органическая химия, флуоресцентная спектроскопия, билирубин, альбумин, детоксикационная терапия
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/48653
-
13Academic Journal
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, билирубин, альбумин, препарат альбумина
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/48121
-
14Academic Journal
Authors: И.С. Рябова, Е.Е. Текуцкая
Subject Terms: окислительные повреждения ДНК, 8-оксогуанин, низкочастотное электромагнитное поле, активные формы кислорода, флуоресцентная спектроскопия
Relation: https://zenodo.org/records/4567909; oai:zenodo.org:4567909; https://doi.org/10.5281/zenodo.4567909
-
15Academic Journal
Authors: N. A. Daikhes, V. V. Vinogradov, I. A. Kim, S. S. Reshulsky, V. F. Prikuls, O. V. Karneeva, A. M. Khabazova, D. V. Prykule, Н. А. Дайхес, В. В. Виноградов, И. А. Ким, С. С. Решульский, В. Ф. Прикулс, О. В. Карнеева, А. М. Хабазова, Д. В. Прикуле
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 11, № 1 (2021); 86-95 ; Опухоли головы и шеи; Том 11, № 1 (2021); 86-95 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2021-11-1
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, ent-organs, differential diagnosis, fluorescent spectroscopy, лор-органы, дифференциальная диагностика
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/613/465; Антонив В.Ф., Дайхес НА., Давудов Х.Ш. Состояние и перспективы развития ЛОР-онкологии. Российская оториноларингология 2002;1(1):21—6.; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2018 г. (заболеваемость и смертность). М.: МНИОИ им. ПА. Герцена - филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России; 2019.; Дайхес Н.А., Нажмудинов И.И., Гусейнов И.Г., Романенко С.Г. Доброкачественные и предраковые заболевания гортани. Клинические рекомендации. Национальная медицинская ассоциация оториноларингологов. Москва, 2014.; Нажмудинов И.И., Саидов М.З., Серебрякова И.Ю. и др. Предраковые заболевания гортани, современные аспекты диагностики. Вестник Дагестанской государственной медицинской академии 2016;2(19):96—101.; Дайхес НА., Давудов Х.Ш., Акопян К.В., Сулейманов Ю.Б. Фиброволоконная оптика в диагностике опухолей гортани. Российская оториноларингология 2002;1(1):71—2.; Гаращенко Т.И., Радциг Е.Ю., Астахова Е.С. Роль эндоскопии в диагностике заболеваний гортани. Российская оториноларингология 2002;1(1):23—4.; Черемисина О.В., Чойнзонов Е.Л. Возможности эндоскопической диагностики предопухолевых заболеваний и рака гортани в современной онкологии. Сибирский онкологический журнал 2007;3:5-9.; Arens C. Early diagnosis of laryngeal cancer. Laryngorhinootologie 2004;83(11): 768-70. DOI:10.1055/s-2004-825996.; Нажмудинов И.И., Гаращенко Т.И., Серебрякова И.Ю. и др. Современные аспекты диагностики и хирургического лечения гиперпластических процессов гортани. Consilium Medicum 2017;19(11):29—33. DOI:10.26442/2075-1753_19.11.29-33.; Свистушкин В.М., Чучуева Н.Д. Применение контактной эндоскопии в диагностике заболеваний гортани. Российский медицинский журнал 2015;23(23):1406—8.; Cikojevic D., Gluncic I., Pesutic-Pisac V. Comparison of contact endoscopy and frozen section histopathology in the intraoperative diagnosis of laryngeal pathology. J Laryngol Otol 2008;122(8):836—9. DOI:10.1017/S0022215107000539.; Александров М.Т., Кукушкин В.И., Маргарян Э.Г. Раман-флуоресцентная диагностика состояния тканей человека в норме и при патологии и ее аппаратно-программное решение. Российский стоматологический журнал 2017;21(5):228—2. DOI:10.18821/1728-2802-2017-21-5-228-232.; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/613
-
16Academic Journal
Authors: M. M. Yatskou, V. V. Apanasovich, Н. Н. Яцков, В. В. Апанасович
Source: Informatics; Том 18, № 1 (2021); 105-122 ; Информатика; Том 18, № 1 (2021); 105-122 ; 2617-6963 ; 1816-0301
Subject Terms: флуорес- центная флуктуационная спектроскопия, biophysical processes, simulation modelling, data analysis, time-resolved fluorescence spectroscopy, fluorescence fluctuation spectroscopy, биофизические процессы, имитационное моделирование, интеллектуальный анализ данных, флуоресцентная спектроскопия с временным разрешением
File Description: application/pdf
Relation: https://inf.grid.by/jour/article/view/1110/985; https://inf.grid.by/jour/article/downloadSuppFile/1110/129; Компьютерные технологии и анализ данных (CTDA’2020) : материалы II Междунар. науч.-практ. конф., Минск, 23–24 апр. 2020 г. / Белорус. гос. ун-т; редкол. : В. В. Скакун (отв. ред.) [и др.]. – Минск : БГУ, 2020. – 299 с.; Квантовая электроника : материалы XII Междунар. науч.-техн. конф., Минск, 18–22 нояб. 2019 г. / редкол. : М. М. Кугейко (отв. ред.) [и др.]. – Минск : РИВШ, 2019. – 320 с.; Информационные технологии и системы (ИТС 2019) : материалы Междунар. науч. конф., БГУИР, Минск, 30 окт. 2019 г. / редкол. : Л. Ю. Шилин [и др.]. – Минск : БГУИР, 2019. – 305 с.; Chen, J. Integrations between autonomous systems and modern computing techniques: a mini review / J. Chen, M. Abbod, J.-S. Shieh // Sensors. – September 2019. – Vol. 19, iss. 18. – Р. 3897.; Klinger, C. M. Small genomes and big data: adaptation of plastid genomics to the high-throughput era / C. M. Klinger, E. Richardson // Biomolecules. – July 2019. – Vol. 9, iss. 8. – Р. 299.; The potential use of big data in oncology / S. M. Willems [et al.] // Oral Oncology. – 2019. – Vol. 98. – P. 8–12.; Bramer, M. Principles of Data Mining / M. Bramer. – 2nd ed. – London : Springer, 2013. – 440 p.; Aggarwal, C. C. Data Mining: The Textbook / C. C. Aggarwal. – Gewerbestrasse : Springer, 2015. – 734 p.; Hastie, T. The Elements of Statistical Learning. Data Mining, Inference, and Prediction / T. Hastie, R. Tibshirani, J. Friedman. – 2nd ed. – N. Y. : Springer, 2009. – 739 p.; Machine learning approaches for the estimation of biological aging: the road ahead for population studies / A. Gialluisi [et al.] // Frontiers in Medicine. – July 2019. – Vol. 6. – P. 146.; Jiang, P. Big data approaches for modeling response and resistance to cancer drugs / P. Jiang, W. R. Sellers, X. S. Liu // Annual Review of Biomedical Data Science. – July 2018. – Vol. 1. – Р. 1–27.; Duran, J. M. Computer Simulations in Science and Engineering / J. M. Duran. – Springer International Publishing, 2018. – 209 p.; Zeigler, B. P. Theory of Modeling and Simulation / B. P. Zeigler, A. Muzy, E. Kofman. – 3rd ed. – Academic Press, 2018. – 692 p.; Toward computational modelling on immune system function / F. Pappalardo [et al.] // BMC Bioinformatics. – December 2019. – Vol. 20, suppl. 6. – Р. 622.; Computational models of epileptiform activity / F. Wendling [et al.] // J. of Neuroscience Methods. – 2016. – Vol. 260. – P. 233–251.; Physiologically based pharmacokinetic (PBPK) modeling and simulation approaches: a systematic review of published models, applications, and model verification / J. E. Sager [et al.] // Drug Metabolism and Disposition. – 2015. – Vol. 43. – P. 1823–1837.; Modelling the effect of compliance with nordic nutrition recommendations on cardiovascular disease and cancer mortality in the nordic countries / S. Saha [et al.] // Nutrients. – June 2019. – Vol. 11, no. 6. – Р. 1434.; Periyasamy, V. Advances in Monte Carlo simulation for light propagation in tissue / V. Periyasamy, M. Pramanik // IEEE Reviews in Biomedical Engineering. – 2017. – Vol. 10. – P. 122–135.; Subramanian, A. S. R. Modeling and simulation of energy systems: a review / A. S. R. Subramanian, T. Gundersen, T. A. Adams // Processes. – November 2018. – Vol. 6, iss. 12. – Р. 238.; Modeling and simulation as support for development of human health space exploration projects / A. G. Bruzzone [et al.] // Proc. of the 9th EUROSIM Congress on Modelling and Simulation, EUROSIM 2016, the 57th SIMS Conf. on Simulation and Modelling SIMS 2016, Oulu, Finland, 12–16 Sept. 2016. – Oulu, 2016. – P. 1109–1115.; Fluorescence Spectroscopy and Microscopy: Methods and Protocols. Methods in Molecular Biology / eds. Y. Engelborghs, A. J. W. G. Visser. – Heidelberg : Springer Science+Business Media, LLC, 2014. – 816 p.; Yatskou, M. Сomputer Simulation of Energy Relaxation and Transport in Organized Porphyrin Systems / M. Yatskou. – The Netherlands, Wageningen : Ponsen & Looijen Printing Establishment, 2001. – 176 p.; Комплексный анализ данных при исследовании сложных биомолекулярных систем / Н. Н. Яцков, В. В. Апанасович // Квантовая электроника : материалы XII Междунар. науч.-техн. конф., Минск, 18–22 нояб. 2019 г. – Минск : РИВШ, 2019. – С. 282–283.; Исследование биофизических систем с использованием алгоритмов интеллектуального анализа данных и имитационного моделирования / Н. Н. Яцков, В. В. Апанасович // Компьютерные технологии и анализ данных (CTDA’2020) : материалы II Междунар. науч.-практ. конф., Минск, 23–24 апр. 2020 г. – Минск : БГУ, 2020. – С. 120–123.; Tang, J. Simulation and Computational Red Teaming for Problem Solving / J. Tang, G. Leu, H. A. Abbass. – New Jersey : John Wiley & Sons, Inc., 2020. – 464 p.; Design and evaluation of actichip, a thematic microarray for the study of the actin cytoskeleton / J. Muller [et al.] // BMC Genomics. – Aug. 2007. – Vol. 8. – Р. 294.; Advanced spot quality analysis in two-colour microarray experiments / M. Yatskou [et al.] // BMC Research Notes. – Sept. 2008. – Vol. 1. – Р. 80.; Al-Ajlan, A. Feature selection for gene prediction in metagenomic fragments / A. Al-Ajlan, A. El Allali // BioData Mining. – 2018. – Vol. 11. – Р. 9.; Разработка алгоритмов и программных средств классификации кодирующих и некодирующих нуклеотидных последовательностей / В. Р. Закирова [и др.] // Информатика. – 2019. – Т. 16, № 2. – С. 111–120.; Яцков, Н. Н. Интеллектуальный анализ данных : пособие / Н. Н. Яцков. – Минск : БГУ, 2014. – 151 с.; Шакла, Н. Машинное обучение и TensorFlow / Н. Шакла. – СПб. : Питер, 2019. – 336 с.; Исследование методов классификации для анализа сегментированных объектов на люминесцентных изображениях раковых клеток / Е. В. Лисица [и др.] // Вестник Полоцкого гос. ун-та. Сер. C. Фундаментальные науки. – 2020. – № 4. – С. 15–22.; Изучение структуры Zn-порфиринов методами флуоресцентной спектроскопии / В. В. Апанасович [и др.] // Журнал прикладной спектроскопии. – 1999. – Т. 66, № 4. – C. 549–552.; Excitation energy migration in a photonic dye-zeolite antenna: computational techniques / M. Meyer [et al.] // J. of Computational Methods in Science and Engineering. – 2003. – Vol. 3. – P. 395–402.; Dimov, I. T. Monte Carlo Methods for Applied Scientists / I. T. Dimov. – Singapore : World Scientific Publishing Co. Pte. Ltd. – 2008. – 291 p.; Rubinstein, R. Y. Simulation and the Monte Carlo Method / R. Y. Rubinstein, D. P. Kroese. – 3rd ed. – New Jersey : John Wiley & Sons, Inc., 2017. – 414 p.; Binder, K. Monte Carlo Simulation in Statistical Physics / K. Binder, D. W. Heermann. – 6th ed. – Springer International Publishing, 2019. – 258 p.; A mathematical model of actin filament turnover for fitting FRAP data / A. A. Halavatyi [et al.] // European Biophysical J. – 2010 – Vol. 39, no. 4. – P. 669–677.; Apanasovich, V. V. Data analysis in time-resolved fluorescence spectroscopy using computer simulation / V. V. Apanasovich, E. G. Novikov, N. N. Yatskov // Proc. of SPIE. – 1997. – Vol. 2980. – P. 495–502.; Анализ кинетики затухания флуоресценции сложных молекулярных систем с использованием метода Монте-Карло / В. В. Апанасович, Е. Г. Новиков, Н. Н. Яцков // Журнал прикладной спектроскопии. – 2000. – Т. 67, № 5. – С. 612–618.; Вьюгин, В. В. Математические основы машинного обучения и прогнозирования / В. В. Вьюгин. – М. : МЦНМО, 2014. – 304 с.; Kohavi, R. A study of cross-validation and bootstrap for accuracy estimation and model selection / R. Kohavi // Proc. of the 14th Intern. Joint Conf. on Artificial Intelligence IJCAI'95, Montreal, Canada, 20–25 Aug. 1995. – Montreal, 1995. – Vol. 2. – P. 1137–1143.; Encyclopedia of Database Systems / Eds. L. Liu, M. T. Ozsu. – USA : Springer Science+Business Media, LLC, 2009. – 4355 p.; Lakowicz, J. R. Principles of Fluorescence Spectroscopy / J. R. Lakowicz. – 3rd ed. – N. Y. : Springer, 2006. – 954 p.; A study of energy transfer processes in zinc-porphyrin films using Monte Carlo simulation of fluorescence decay / M. М. Yatskou [et al.] // Chemical Physics Letters. – 2001. – Vol. 345, no. 1, 2. – P. 141–150.; Non-isotropic excitation energy transport in organized molecular systems: Monte Carlo simulation-based analysis of time-resolved fluorescence / M. М. Yatskou [et al.] // J. of Physical Chemistry A. – 2001. – Vol. 105, no. 41. – P. 9498–9508.; Molecular Cell Biology / ed. H. Lodish [et al.]. – 5th ed. – USA : W. H. Freeman Hardcover, 2003. – 973 p.; Molecular Biology of the Gene / J. D. Watson [et al.]. – 6th ed. – USA : Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2007. – 880 p.; Льюин, Б. Гены / Б. Льюин; пер. с 9-го англ. изд. – М. : БИНОМ. Лаборатория знаний, 2012. – 896 с.; Shendure, J. Next-generation DNA sequencing / J. Shendure, H. Ji // Nature Biotechnology. – 2008. – Vol. 26, no. 10. – P. 1135–1145.; Metzker, M. L. Sequencing technologies – the next generation / M. L. Metzker // Nature Reviews Genetics. – 2010. – Vol. 11, no. 1. – P. 31–46.; Классификация последовательностей РНК с помощью сверточных нейронных сетей / И. В. Климук [и др.] // Компьютерные технологии и анализ данных (CTDA’2020) : материалы II Междунар. науч.-практ. конф., Минск, 23–24 апр. 2020 г. – Минск : БГУ, 2020. – С. 142–146.; Яцков, Н. Н. Автоматическое определение открытых рамок считывания в молекулах РНК человека с использованием алгоритмов векторизации и классификации / Н. Н. Яцков, В. В. Скакун, В. В. Гринев // Информационные технологии и системы (ИТС 2019) : материалы Междунар. науч. конф., Минск, 30 окт. 2019 г. – Минск : БГУИР, 2019. – С. 292–293.; Яцков, Н. Н. Вычислительный подход и программный пакет RNAexploreR для группировки молекул РНК генов человека по их экзонным признакам / Н. Н. Яцков, В. В. Скакун, В. В. Гринев // Информатика. – 2019. – Т. 16, № 4. – С. 7–24.; Bumgarner, R. Overview of DNA microarrays: types, applications, and their future / R. Bumgarner // Current Protocols in Molecular Biology. – Jan. 2013. – Vol. 101, iss. 1. – Р. 22.1.1–22.1.11.; Giganti, A. The actin cytoskeleton as a therapeutic target: state of the art and future directions / A. Giganti, E. Friederich // Progress in Cell Cycle Research. – 2003. – Vol. 5. – P. 511–525.; Pollard, T. D. Actin and actin-binding proteins / T. D. Pollard // Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. – Aug. 2016. – Vol. 8, no 8. – Р. a018226.; Kitamura, A. State-of-the-art fluorescence fluctuation-based spectroscopic techniques for the study of protein aggregation / A. Kitamura, M. Kinjo // Intern. J. of Molecular Sciences. – Mar. 2018. – Vol. 19, iss. 4. – Р. 964.; An integrative simulation model linking major biochemical reactions of actin-polymerization to structural properties of actin filaments / A. A. Halavatyi [et al.] // Biophysical Chemistry. – 2009 – Vol. 140. – P. 24–34.; Quantitative kinetic study of the actin-bundling protein l-plastin and of its impact on actin turn-over / Z. Al Tanoury [et al.] // Public Library of Science (PLoS) One. – 2010. – Vol. 5, no. 2. – Р. 669–677.; Имитационная модель трехканальных люминесцентных изображений популяций раковых клеток / Е. В. Лисица [и др.] // Журнал прикладной спектроскопии. – 2014. – Т. 81, № 6. – С. 907–913.; Алгоритм автоматической сегментации границ ядер раковых клеток на трехканальных люминесцентных изображениях / Е. В. Лисица [и др.] // Журнал прикладной спектроскопии. – 2015. – Т. 82, № 4. – С. 598–607; Яцков, Н. Н. Метод исследования флуоресценции молекулярных соединений с использованием алгоритмов интеллектуального анализа данных / Н. Н. Яцков, В. В. Скакун, В. В. Апанасович // Прикладные проблемы оптики, информатики, радиофизики и физики конденсированного состояния: материалы Пятой Междунар. науч.-практ. конф., Минск, 16–17 мая 2019 г. – Минск: Ин-т прикл. физ. проблем им. А. Н. Севченко БГУ, 2019. – С. 125–127.; Яцков, Н. Н. Метод обработки кинетических кривых затухания флуоресценции с использованием алгоритмов интеллектуального анализа данных / Н. Н. Яцков, В. В. Скакун, В. В. Апанасович // Журнал прикладной спектроскопии. – 2020. – Т. 87, № 2. – С. 311–322.; Электронные спектры и кинетика поляризации флуоресценции тонких пленок Zn-порфиринов / Н. Н. Яцков [и др.] // Журнал прикладной спектроскопии. – 2003. – Т. 70, № 3. – С. 335–339.; Excitation energy migration in a photonic dye-zeolite antenna / M. Yatskou [et al.] // European J. of Chemical Physics and Physical Chemistry. – 2003. – Vol. 4(6). – P. 567–587.; Яцков, Н. Н. Метод комплексного анализа спектров флуктуации флуоресценции молекулярных соединений / Н. Н. Яцков, В. В. Скакун, В. В. Апанасович // Прикладные проблемы оптики, информатики, радиофизики и физики конденсированного состояния: материалы Пятой Междунар. науч.-практ. конф., Минск, 16–17 мая 2019 г. – Минск : Ин-т прикл. физ. проблем им. А. Н. Севченко БГУ, 2019. – С. 122–124.; Комплексный анализ флуктуаций интенсивности флуоресценции молекулярных соединений / Н. Н. Яцков [и др.]. // Журнал прикладной спектроскопии. – 2020. – Т. 87, № 4. – С. 628–636.; https://inf.grid.by/jour/article/view/1110
-
17
-
18Academic Journal
Authors: A. V. Dunaev, А. В. Дунаев
Contributors: This work was supported by the state task of the Ministry of Education and Science, Russian Federation (basic part, no. 310) and by Russian Science Foundation under project No.18-15-00201, Работа выполнена при финансовой поддержке Минобрнауки РФ (базовая часть государственного задания № 310, проект ГЗ-14/9) и РНФ (№ 18-15-00201).
Source: Journal of the Russian Universities. Radioelectronics; Том 23, № 4 (2020); 77-91 ; Известия высших учебных заведений России. Радиоэлектроника; Том 23, № 4 (2020); 77-91 ; 2658-4794 ; 1993-8985
Subject Terms: спектроскопия, oxidative metabolism, microcirculatory-tissue systems, laser Doppler flowmetry, fluorescence spectroscopy, diffuse reflectance spectroscopy, multiparametric diagnostics, окислительный метаболизм, микроциркуляторно-тканевые системы, лазерная доплеровская флоуметрия, флуоресцентная спектроскопия
File Description: application/pdf
Relation: https://re.eltech.ru/jour/article/view/456/479; Крупаткин А. И., Сидоров В. В. Функциональная диагностика состояния микроциркуляторно-тканевых систем: колебания, информация, нелинейность: руководство для врачей. М: Книжный дом «ЛИБРОКОМ», 2013. 496 с.; Diabetes-associated macrovasculopathy: Pathophysiology and pathogenesis / S. Rahman, T. Rahman, A. A. S. Ismail, A. R. A. Rashid // Diabetes, Obesity and Metabolism. 2007. Vol. 9, № 6. P. 767–780. doi:10.1111/j.1463-1326.2006.00655.x; Юшков П. В., Опаленов К. В. Морфогенез микроангиопатий при сахарном диабете // Сахарный диабет. 2001. № 1. doi:10.14341/2072-0351-6109; Благинина И. И. Поражение системы микроциркуляции в зависимости от активности воспалительного процесса у больных ревматоидным артритом // Український ревматологічний журнал. 2008. С. 30–33.; Cutaneous vascular alterations in psoriatic patients treated with cyclosporine / G. Stinco, S. Lautieri, F. Valent, P. Patrone // Acta Derm. Venereol. 2007. Vol. 87, № 2. P. 152–154. doi:10.2340/00015555-0216; Multiple pathogenic roles of microvasculature in inflammatory bowel disease: A jack of all trades / L. Deban, C. Correale, S. Vetrano, A. Malesci, S. Danese // American Journal of Pathology. 2008. Vol. 172, № 6. P. 1457–1466. doi:10.2353/ajpath.2008.070593; Родин А. В., Плешков В. Г. Интраоперационная оценка жизнеспособности кишки при острой кишечной непроходимости // Вест. Смоленской гос. мед. академии. 2016. Т. 15, № 1.; Bigio I. J., Mourant J. R. Optical biopsy // Encycl. Opt. Eng. 2003. Vol. 1577. P. 1593. doi:10.1081/E-EOE120009717; Мультимодальная диагностика и визуализация онкологических патологий / В. П. Захаров, И. А. Братченко, О. О. Мякинин, Д. Н. Артемьев, Д. В. Корнилин, С. В. Козлов, А. А. Морятов // Квантовая электроника. 2014. Т. 44, № 8. С. 726–731.; Диагностика пигментированных кожных новообразований методами лазерно-индуцированной автофлуоресцентной и диффузной отражательной спектроскопии / Е. Борисова, П. Троянова, П. Павлова, Л. Аврамов // Квантовая электроника. 2008. Т. 38, № 6. С. 597–605. doi:10.1070/QE2008v038n06ABEH013891; Early changes in the skin microcirculation and muscle metabolism of the diabetic foot / R. L. Greenman, S. Panasyuk, X. Wang, T. E. Lyons, T. Dinh, L. Longoria, J. M. Giurini, J. Freeman, L. Khaodhiar, A. Veves // Lancet. 2005. Vol. 366, № 9498. P. 1711–1717. doi:10.1016/S0140-6736(05)67696-9; Early prediction of skin viability using visible diffuse reflectance spectroscopy and autofluorescence spectroscopy / C. Zhu, S. Chen, C. H. K. Chui, B. K. Tan, Q. Liu // Plast. Reconstr. Surg. 2014. Vol. 134, № 2. P. 240e-247e. doi:10.1097/PRS.0000000000000399.; Fredriksson I., Fors C., Johansson J. Laser doppler flowmetry – a theoretical framework // Dep. Biomed. Eng. Linköping Univ. 2007. P. 6–7.; Oscillations in the human cutaneous blood perfusion signal modified by endothelium-dependent and endothelium-independent vasodilators / H. D. Kvernmo, A. Stefanovska, K. A. Kirkebøen, K. Kvernebo // Microvasc. Res. 1999. Vol. 57, № 3. P. 298–309. doi:10.1006/mvre.1998.2139; Involvement of sympathetic nerve activity in skin blood flow oscillations in humans / T. Söderström, A. Stefanovska, M. Veber, H. Svensson // Am. J. Physiol. 2003. Vol. 284, № 5. P. H1638–H1646. doi:10.1152/ajpheart.00826.2000; Крупаткин А. И. Влияние симпатической иннервации на тонус микрососудов и колебания кровотока кожи // Физиология человека. 2006. Т. 32, № 5. С. 584–592. doi:10.1134/S0362119706050136; Крупаткин А. И. Колебания кровотока частотой около 0.1 Гц в микрососудах кожи не отражают симпатическую регуляцию их тонуса // Физиология человека. 2009. Т. 35, № 2. С. 183–191. doi:10.1134/S036211970902008X; Roustit M., Cracowski J.-L. Assessment of endothelial and neurovascular function in human skin microcirculation // Trends Pharmacol. Sci. 2013. Vol. 34, № 7. P. 373–384. doi:10.1016/j.tips.2013.05.007; Effect of local cold provocation on systolic blood pressure and skin blood flow in the finger / S. Bornmyr, J. Castenfors, E. Evander, G. Olsson, U. Hjortsberg, P. Wollmer // Clin. Physiol. 2001. Vol. 21, № 5. P. 570–575. doi:10.1046/j.1365-2281.2001.00364.x; Сагайдачный А. А. Окклюзионная проба: методы анализа, механизмы реакции, перспективы применения // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2018. Т. 17, № 3. С. 5-22. doi:10.24884/1682-6655-2018-17-3-5-22; Рогаткин Д. А. Физические основы лазерной клинической флюоресцентной спектроскопии in vivo // Медицинская физика. 2014. Т. 4, № 64. С. 78–96.; NAD(P)H and collagen as in vivo quantitative fluorescent biomarkers of epithelial precancerous changes / I. Georgakoudi, B. C. Jacobson, M. G. Müller, E. E. Sheets, K. Badizadegan, D. L. Carr-Locke, C. P. Crum, C. W. Boone, R. R. Dasari, J. Van Dam, M. S. Feld // Cancer Res. 2002. Vol. 62, № 3. P. 682–687.; In vivo native fluorescence spectroscopy and nicotinamide adinine dinucleotide/flavin adenine dinucleotide reduction and oxidation states of oral submucous fibrosis for chemopreventive drug monitoring / S. Sivabalan, C. P. Vedeswari, S. Jayachandran, D. Koteeswaran, C. Pravda, P. Aruna, S. Ganesan // J. Biomed. Opt. 2010. Vol. 15, № 1. P. 017010. doi:10.1117/1.3324771; Fokkens B. T., Smit A. J. Skin fluorescence as a clinical tool for non-invasive assessment of advanced glycation and long-term complications of diabetes // Glycoconj. J. 2016. Vol. 33, № 4. P. 527–535. doi:10.1007/s10719-016-9683-1; Галкина Е. М., Утц С. Р. Флуоресцентная диагностика в дерматологии // Саратовский научно-медицинский журн. 2013. Т. 9, № 3.; Спектрометр для флуоресцентно-отражательных биомедицинских исследований / K. Uk, В. Б. Березин, Г. В. Папаян, Н. Н. Петрищев, М. М. Галагудза // Оптический журн. 2013. Т. 80, № 1. С. 56–67.; Тучин В. В. Оптическая биомедицинская диагностика: в 2 т.: учеб. издание. 2007. 559 с.; Diffuse reflectance spectroscopy for monitoring diabetic foot ulcer – A pilot study / S. Anand, N. Sujatha, V. B. Narayanamurthy, V. Seshadri, R. Poddar // Opt. Lasers Eng. 2014. Vol. 53. P. 1–5. doi:10.1016/j.optlaseng.2013.07.020; Bradley R. S., Thorniley M. S. A review of attenuation correction techniques for tissue fluorescence // J. R. Soc. Interface. 2006. Vol. 3, № 6. P. 1. doi:10.1098/rsif.2005.0066; Combined use of laser Doppler flowmetry and skin thermometry for functional diagnostics of intradermal finger vessels / E. A. Zherebtsov, A. I. Zherebtsova, A. Doronin, A. V. Dunaev, K. V. Podmasteryev, A. Bykov, I. Meglinski // J. Biomed. Opt. 2017. Vol. 22, № 4. P. 40502. doi:10.1117/1.JBO.22.4.040502; Комплексный подход к неинвазивной оценке микроциркуляторно-тканевых нарушений в стопах пациентов с сахарным диабетом методами спектроскопии / Е. В. Потапова, В. В. Дремин, Е. А. Жеребцов, И. Н. Маковик, Е. В. Жарких, А. В. Дунаев, О. В. Пилипенко, В. В. Сидоров, А. И. Крупаткин // Оптика и спектроскопия. 2017. Т. 123, № 6. С. 946-956.; A new method of screening for diabetic neuropathy using laser Doppler and photoplethysmography / S. W. Kim, S. C. Kim, K. C. Nam, E. S. Kang, J. J. Im, D. W. Kim // Med Biol Eng Comput. 2008. Vol. 46, № 1. P. 61-67. doi:10.1007/s11517-007-0257-z; Метод и устройство диагностики функционального состояния периферических сосудов верхних конечностей / А. И. Жеребцова, Е. А. Жеребцов, А. В. Дунаев, К. В. Подмастерьев, А. В. Коськин, О. В. Пилипенко // Мед. техника. 2017. № 1. С. 33-37.; Detection of angiospastic disorders in the microcirculatory bed using laser diagnostics technologies / I. N. Makovik, A. V. Dunaev, V. V. Dremin, A. I. Krupatkin, V. V. Sidorov, L. S. Khakhicheva, V. F. Muradyan, O. V. Pilipenko, I. E. Rafailov, K. S. Litvinova // J. Innov. Opt. Health Sci. 2018. Vol. 11, № 01. P. 1750016. doi:10.1142/S179354581750016X; Postocclusive Hyperemia Measured with Laser Doppler Flowmetry and Transcutaneous Oxygen Tension in the Diagnosis of Primary Raynaud’s Phenomenon: A Prospective, Controlled Study / P. Maga, B. M. Henry, E. K. Kmiotek, I. Gregorczyk-Maga, P. Kaczmarczyk, K. A. Tomaszewski, R. Niżankowski // Biomed Res. Int. 2016. Vol. 2016. P. 9645705. doi:10.1155/2016/9645705; Multimodal Optical Diagnostics of the Microhaemodynamics in Upper and Lower Limbs / A. I. Zherebtsova, V. V. Dremin, I. N. Makovik, E. A. Zherebtsov, A. V. Dunaev, A. Goltsov, S. G. Sokolovski, E. U. Rafailov // Front. Physiol. 2019. Vol. 10. Art. 416. doi:10.3389/fphys.2019.00416; Fiber-Optic System for Intraoperative Study of Abdominal Organs during Minimally Invasive Surgical Interventions / K. Kandurova, V. Dremin, E. Zherebtsov, E. Potapova, A. Alyanov, A. Mamoshin, Y. Ivanov, A. Borsukov, A. Dunaev // Appl. Sci. 2019. Vol. 9, № 2. Art. 217. doi:10.3390/app9020217; Optical fine-needle biopsy approach for intraoperative multimodal diagnostics in minimally invasive abdominal surgery / K. Kandurova, E. Potapova, V. Shupletsov, I. Kozlov, E. Seryogina, V. Dremin, E. Zherebtsov, A. Alekseyev, A. Mamoshin, A. Dunaev // Proc. SPIE. 2019. Vol. 11079. P. 1107948. doi:10.1117/12.2526747; https://re.eltech.ru/jour/article/view/456
-
19Academic Journal
Subject Terms: гиперицин, флуоресцентная спектроскопия, трава зверобоя продырявленного, электронная спектроскопия
File Description: application/pdf
Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/36684
-
20Book
Subject Terms: флуоресцентная спектроскопия, фотоиндуцированный перенос заряда, аналитическая химия, физика, авторефераты диссертаций, квантово-химические расчеты, флуоресцентные молекулярные роторы, флуоресцентные свойства, ионное состояние, 01.04.05, оптика, бензотиазол-анилиновые производные, тиофлавин Т
File Description: application/pdf
Access URL: https://rep.vsu.by/handle/123456789/41600