Εμφανίζονται 1 - 17 Αποτελέσματα από 17 για την αναζήτηση '"триацилглицериды"', χρόνος αναζήτησης: 0,60δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Συνεισφορές: This study did not receive any financial support from outside organizations., Данное исследование не имело финансовой поддержки от сторонних организаций.

    Πηγή: Pharmacy & Pharmacology; Том 10, № 1 (2022); 82-92 ; Фармация и фармакология; Том 10, № 1 (2022); 82-92 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2022-10-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1028/821; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1028/822; Falzon C.C. Balabanova A. Phytotherapy: An Introduction to Herbal Medicine // Prim Care. – 2017. – Vol. 44, No.2. – P. 217–227. DOI:10.1016/j.pop.2017.02.001.; Hemler E.C., Hu F.B. Plant-Based Diets for Personal, Population, and Planetary Health //Adv. Nutr. – 2019. – Vol. 10. – P. 275–283. DOI:10.1093/advances/nmy117.; Fresan U., Sabate J. Vegetarian Diets: Planetary Health and Its Alignment with Human Health // Adv. Nutr. – 2019. – Vol. 10. – P. 380–388. DOI:10.1093/advances/nmz019.; Farzaei M.H., Bayrami Z., Farzaei F., Aneva I., Das S.K., Patra J.K., Das G., Abdollahi M. Poisoning by Medical Plants // Arch. Iran. Med. – 2020. – Vol. 23, No.2. – P. 117–127.; Nunn A.V.W., Guy G.W., Botchway S.W., Bell J.D. From sunscreens to medicines: Can a dissipation hypothesis explain the beneficial aspects of many plant compounds // Phytother. Res. – 2020. – Vol. 34, No.8. – P. 1868–1888. DOI:10.1002/ptr.6654.; Cosmos bipinnatus Cav. in GBIF Secretariat (2017). GBIF Backbone Taxonomy. – [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.gbif.org/ru/dataset/d7dddbf4-2cf0-4f39-9b2a-bb099caae36c. DOI.org/10.15468/39omei.; Botsaris A. S. Plants used traditionally to treat malaria in Brazil: the archives of Flora Medicinal // J. Ethnobiol. Ethnomed. – 2007. – Vol. 3, No.1. – P. 18. DOI:10.1186/1746-4269-3-18.; Olajuyigbe О., Ashafa A. Chemical Composition and Antibacterial Activity of Essential Oil of Cosmos bipinnatus Cav. Leaves from South Africa // Iran. J. Pharm. Res. – 2014. – Vol. 13, No.4. – P. 1417–1423.; Cui H.X., Duan F.F., Jia S.S., Cheng F.R., Yuan K. Antioxidant and Tyrosinase Inhibitory Activities of Seed Oils from Torreya grandis Fort. ex Lindl // Biomed. Res. Int. – 2018. – Vol. 2018. – Art. No.5314320. DOI:10.1155/2018/5314320.; Diaz-Medina L.K., Colin-Navarro V., Arriaga-Jordan C.M. In vitro nutritional quality and antioxidant activity of three weed species as feed additives for sheep in the Central Highlands of Mexico // Trop. Anim. Health Prod. – 2021. – Vol. 53, No.3. – Art. No.394. DOI:10.1007/s11250-021-02819-8.; Buschhaus C., Hager D., Jetter R. Wax Layers on Cosmos bipinnatus Petals Contribute Unequally to Total Petal Water Resistance // Plant Physiol. – 2015. – Vol. 167. – P. 80–88. DOI:10.1104/pp.114.249235.; Saito K. Quantitative variation of flavonoids and related compounds in Cosmos bipinnatus // Acta Societatis Botanicorum Poloniae. – 1979. – Vol. 48, No.2. – P. 317–325. DOI:10.5586/asbp.1979.026.; Bate-Smith E.C. Astringent tannins of Cosmos bipinnatus // Phytochemistry. – 1980. – Vol. 9. – P. 982.; Konarev A.V., Anisimova I.N., Gavrilova V.A., Vachrusheva T.E., Konechnaya G.Y., Lewis M., Shewry P.R. Serine proteinase inhibitors in the Compositae: distribution, polymorphism and properties // Phytochemistry. – 2002. – Vol. 59. – P. 279–291. DOI:10.1016/s0031-9422(01)00463-0.; Akihisa T., Yasukawa K., Oinuma H., Kasahara Y., Yamanouchi S., Takido M., Kumaki K., Tamura T. Triterpene alcohols from the flowers of Compositae and their anti-inflammatory effects // Phytochemistry. – 1996. – Vol. 43, No.6. – P. 1255–1260. DOI:10.1016/s0031-9422(96)00343-3.; Тихомирова Т.И., Андреева О.А., Червонная Н.М., Аджиахметова С.Л., Лигай Л.В. Антиоксиданты листьев ирги круглолистной // Международный научно-исследовательский журнал. – 2021. – № 12–1(114). – С. 193–199. DOI:10.23670/IRJ.2021.114.12.033.; Аджиахметова С.Л., Червонная Н.М., Поздняков Д.И., Оганесян Э.Т. Изучение суммарного содержания антиоксидантов, полисахаридов, элементного состава и аминокислот растительного сырья смородины черной // Химия растительного сырья. – 2021. – № 3. – С. 265–274. DOI:10.14258/jcprm.2021037774.; Kamlesh A.R., Sampada J.S., Rishikes A.V. Synthesis and Biological Evaluation of Amino acid Derivatives of Salicylic Acid As Analgesic and Anti- inflammatory Agents // Am. J. Pharm. Technol. Res. – 2013. – Vol. 3. – P. 613–620.; Kumar K.M., Mandal B.K., Sinha M., Krishnakumar V. Terminalia chebula mediated green and rapid synthesis of gold nanoparticles, Spectrochimica Acta Part A // Mol. Biomol. Spectro. – 2012. – Vol. 86. – P. 490–494. DOI:10.1016/j.saa.2011.11.001.; Кодониди И.П., Сочнев В.С., Терехов А.Ю., Сергеева Е.О., Рябухин И.Ю. Синтез и изучение противовоспалительной активности 2-виниленпроизводных 4-(2,6-диметил-4-оксо-5-фенил-4H-пиримидин-1-ил)-бензсульфамида // Современные проблемы науки и образования. – 2021. – № 4. – С. 91. DOI:10.17513/spno.31053.; Atas M., Eruygur N., Ucar E. The Effects of different nitrogen doses on antioxidant and antimicrobial activity of Stevia (Stevia rebaudiana Bert.) // Cell Mol. Biol. (Noisy-le-grand). – 2018. – Vol. 64, No.2. – P. 39–45. DOI:10.14715/cmb/2018.64.2.8.; Thomas G.J., Herranz P., Cruz S.B., Parodi A. Treatment of actinic keratosis through inhibition of cyclooxygenase-2: Potential mechanism of action of diclofenac sodium 3% in hyaluronic acid 2.5. // Dermatol. Ther. – 2019. – Vol. 32, No.3. – e12800. DOI:10.1111/dth.12800.; Nyayiru Kannaian U.P., Edwin J.B., Rajagopal V., Nannu Shankar S., Srinivasan B. Phytochemical composition and antioxidant activity of coconut cotyledon // Heliyon. – 2020. – Vol. 6, No.2. – e03411. DOI:10.1016/j.heliyon.2020.e03411.; Vallier M.J., Bourvellec C.L., Dangles O. Iron-induced peroxidation of trilinolein nano-emulsions under model gastric conditions and its inhibition by dietary phenolic antioxidants // Food Funct. – 2020. – Vol. 11, No.10. – P. 9144–9156. DOI:10.1039/d0fo01767a.; Ruiz Á.J., Vargas-Uricoechea H., Urina-Triana M., Román-González A., Isaza D., Etayo E., Quintero A., Molina D.I., Toro J.M., Parra G., Merchán A., Cadena A., Yupanqui Lozano H., Cárdenas J.M., Quintero Á.M., Botero R., Jaramillo M., Arteaga J.M., Vesga-Angarita B., Valenzuela-Plata E., Betancur-Valencia M. Dyslipidaemias and their treatment in high complexity centres in Colombia // Clin. Investig. Arterioscler. – 2020. – Vol. 32, No.3. – P. 101–110. DOI:10.1016/j.arteri.2019.11.005.; Sharif H., Akash M.S.H., Irshad K. Pathophysiology of atherosclerosis: Association of risk factors and treatment strategies using plant-based bioactive compounds // J. Food Biochem. – 2020. – Vol. 44, No.11. – Art. No.e13449. DOI:10.1111/jfbc.13449.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/1028

  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Συνεισφορές: This work was supported by Program 5-100., Работа выполнена при поддержке Программы 5-100.

    Πηγή: Drug development & registration; Том 9, № 3 (2020); 137-141 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 9, № 3 (2020); 137-141 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/777/758; Gali-Muhtasib H., El-Najjar H. Schneider-Stock R. The medicinal potential of black seed (Nigella sativa) and its components. Advances in Phytomedicine. 2006;2:133-153. Doi:10.1016/S1572-557X(05)02008-8.; Kooti W., Hasanzadeh-Noohi Z., Sharafi-Ahvazi N., Asadi-Samani M., Ashtary-Larky D. Phytochemistry, pharmacology, and therapeutic uses of black seed (Nigella sativa). Chinese Journal of Natural Medicines. 2016;14(10):732-745. Doi:10.1016/S1875-5364(16)30088-7.; Ceikh-Rouhou S., Besbes S., Hentati B., Blecker C., Deroanne C., Attia H. Nigella sativa L.: Chemical composition and physicochemical characteristics of lipid fraction. Food Chemistry. 2007;101(2):673-681. Doi:10.1016/j.foodchem.2006.02.022.; Chaieb K., Kouidhi B., Jrah H. Antibacterial activity of thymoquinone, an active principle of Nigella sativa and its potency to prevent bacterial bio flam formation. BMC complementary and alternative medicine. 2011;11:29-34. Doi:10.1186/1472-6882-11-29.; Yehualashet B., Ermias D. HPTLC assay of thymoquinone in black seed and black seed oil (Nigella Sativa Linn) and identifcation of thymoquinone conversion with Uv-Vis. Journal of drug delivery & Therapeutics. 2014;4(4):1-5. Doi:10.1186/1472-6882-11-29.; El-Dakhakhny M., Mady N., Lembert N., Ammon H. P. The hypoglycemic effect of Nigella sativa oil is mediated by extrapancreatic actions. Planta Medica. 2002;68(5):465-466. Doi:10.1055/s-2002-32084.; Mansour M. A., Nagi M. N., El-Khatib A. S., Al-Bekairi A. M. Effects of thymoquinone on antioxidant enzyme activities, lipid peroxidation and DT-diaphorase in different tissues of mice: A possible mechanism of action. Cell Biochem. Funct. 2002;20(2):143-151. Doi:10.1002/cbf.968.; Salem M. L. Immunmodulatory and therapeutic properties of the Nigella sativa L. seed. International Immunopharmacology. 2005;5:1749-1770. Doi:10.1016/j.intimp.2005.06.008.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/777

  4. 4
  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Πηγή: Alternative Energy and Ecology (ISJAEE); № 12 (2014); 70-83 ; Альтернативная энергетика и экология (ISJAEE); № 12 (2014); 70-83 ; 1608-8298

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.isjaee.com/jour/article/view/514/504; Чернова Н.И., Киселева С.В., Коробкова Т.П., Зайцев С.И. Микроводоросли в качестве сырья для получения биотоплива // Альтернативная энергетика и экология. 2008. № 9. С. 68-74.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П. Ресурсные и экологические проблемы энергетического использования биомассы // Возобновляемые источники энергии: Лекции ведущих специалистов / Под ред. А. А. Соловьева, С.В. Киселевой. М.: Изд-во ЧеРо, 2008. Вып.5. С. 78-91.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П., Киселева С.В., Зайцев С.И. Биомасса как энергетический ресурс // Труды КубГАУ. 2009. № 4(19). С.203-208.; Коробкова Т.П., Чернова Н.И. Микроводоросли - возобновляемый энергоресурс: современные направления исследований // Возобновляемые источники энергии. Курс лекций: Учебное пособие / Под ред. А.А.Соловьева, С.В.Киселевой М.: МИРОС, 2010. С.156-170.; Chernova N.I., Korobkova T.P. and Kiseleva S.V. Use of Biomass for producing liquid Fuel: Current State and Innovation // Thermal Engineering. 2010. Vol. 57, No. 11. Р. 937-945.; Околелова Т.М., Байковская И.П., Чернова Н.И. и др. Технология получения и применения биомассы спирулины в комбикормах для птицы. Методические рекомендации. РАСХН-ВНИИТИП. Сергиев Посад, 1996. 20 с.; Пат. 2034499 Российская Федерация, МКИ3 С1 6 А 23 К 1/16. Способ приготовления премикса для сельскохозяйственной птицы / Околелова Т.М., Байковская И.П., Криворучко Л.И., Соловьев А.А., Лямин М.Я., Чернова Н.И. // Открытия. Изобретения. 1995. № 13.; Пат. 2137402 Российская Федерация, МКИ3 С1; A 23 L 1/302, A 61 K 35/80. Пищевая добавка / Зайцев С.И., Киселева С.В., Лебедева Е.М., Лямин М.Я., Самойленко И.И., Соловьев А. А., Чернова Н.И. // Открытия. Изобретения. 1999. № 26.; Пат. 2322489 Российская Федерация, МПК6 C1 C12N 1/12 C12/R 1/89. Штамм Arthrospira platensis (Nordst.) Geitl. 1/02-T/03-5 - продуцент белковой биомассы / Коробкова Т.П., Чернова Н.И., Киселева С.В., Зайцев С.И.// Открытия. Изобретения. 2008. №11.; Чернова Н.И., Киселева С.В., Чернов Н.М. Пищевая ценность спирулины: опыт выфащивания и применения // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2001. №6. С.60-63. II. Чернова Н.И., Лямин М.Я., Киселева С.В. Использование спирулины в пищевых продуктах // Пищевая промышленность. 2002. №2. С.80-82.; Сенько О.В., Гладченко М.А., Лягин И.В., Никольская А.Б., Маслова О.В., Чернова Н.И., Киселева С.В., Коробкова Т.П., Ефременко Е.Н., Варфоломеев С. Д. Трансформация биомассы фототрофных микроорганизмов в метан // Альтернативная энергетика и экология. 2012. №3. С. 89-94.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П., Киселева С.В., Зайцев С.И. Биотопливо третьего поколения из микроводорослей: получение производственных штаммов и технологии выращивания // Энергообеспечение и энергосбережение в сельском хозяйстве. Труды 7-й Межд. науч.-техн. конф. (18-19 мая 2010г.). М.: ГНУ ВИЭСХ, 2010. Ч.4. С. 307-312.; Chernova N.I., Korobkova T.P., Kiseleva S.V., Zaytsev S.I., Radomskii N.V. Microalgae as source of energy: current situation and perspectives of use / Sustainable Manufacturing. Seliger. Gunther (Ed.), Springer-Verlag Berlin Heidelberg, XIII, Chapter 5, 2012. P.221-224.; Raslavicius L., Semenov V.G., Chernova N.I., Kersys A.Kopeyka A.K. The Promise and Challenges of Algae for Transportation Biofuels / Transport Means. Proceedings of 17th International Conference. October 24-25, «TECHNOLOGIJA» KAUNAS, Lithuania, 2013. P. 83-87.; Borowitzka M.A. Fats, oils and hydrocarbons // In: Borowitzka M.A , Borowitzka L.J., editors. Microalgal biotechnology. Cambridge: Cambridge University Press, 1988. P. 257-287.; Соловченко А.Е., Чивкунова О.Б., Семенова Л.Р. и др. Влияние стрессов на содержание пигментов и жирных кислот липидов в клетках микроводоросли Desmodesmus sp из беломорского гидроида // Физиология растений. 2013. Т. 60. № 3. С. 1-10.; Guschina I.A., Harwood J.L. Algal lipids and Effect of the Environment on Their Biochemistry // Lipids in Aquatic Ecosystems / Eds. Kainz M., Brett M., Arts M. Dordrecht, Heidelberg, London. New York: Springer-Verlag, 2009. P. 1-24.; Huntley M., Redalje D. CO2 mitigation and renewable oil from photosynthetic microbes: a new appraisal // Mitigation and Adaptation Strategies for Global Change. 2007. Vol.12, P.573-608.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П., Радомский Н.В., Киселева С.В., Зайцев С.И., Гайнанова О.Ю. Использование способа двухстадийного культивирования в поиске перспективных штаммов микроводорослей для производства биотоплива / Труды 8-ой Межд. научно-техн. конф. «Энергообеспечение и энергосбережение в сельском хозяйстве» // ВИЭ. Местные энергоресурсы. Экология. М.: ГНУ ВИЭСХ, 2012. Ч. 4. С.196-203.; Коробкова Т.П., Чернова Н.И., Киселева С.В. Артроспира (спирулина) как объект микробиологической промышленности для получения нетрадиционных продуктов природного происхождения // Нетрадиционные природные ресурсы, инновационные технологии и продукты: Сборник научных трудов. Вып.13. М.: РАЕН, 2005. Вып.13, С. 3-26.; Алексеев В.В., Лямин М.Я., Чернова Н.И. и др. Энергетические плантации / Географический ф-т МГУ: «География, общество, окружающая среда», Том 3. Природные ресурсы и устойчивое развитие. М.: Изд. Дом «Городец», 2004. С.578-607.; Зайцев С.И., Лямин М.Я., Киселева С.В., Чернова Н.И., Соловьев А.А., Михайловская Н.Н. Водорослевая энергетика / Возобновляемая энергетика под ред. В.В. Алексеева, М.: Изд-во Моск. Ун-та, 1999. С.37-114.; Пиневич В.В., Верзилин Н.Н., Михайлов А.А. Изучение Spirulina platensis - нового объекта для высокоинтенсивного культивирования // Физиология растений. 1970. Т.17, Вып. 5. С.1007.; Folch J., Lees M., Stanley G.H.S. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226, N.1. P. 497-509.; Guan-Hua Huang, Gu Chen, Feng Chen. Rapid screening method for lipid production in alga based on Nile red fluorescence // Biomass and Bioenergy. 2009. 33:1386-1392.; N. Jeeji Bai. Competitive exclusion or morphological transformation? А case study with Spirulina fusiformis, Arch.Hydrobiol., Suppl. 71. Algol. Stud. 1985. 38/39. P.191-199; Сиренко Л.А., Шевченко Т.Ф. Альгологическое загрязнение промышленных культур Spirulina Turp. и трудности их идентификации. Альгология. 1996. Т.6, № 1. С. 91-96.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П. Изучение полиморфизма микроводорослей Spirulina/Arthrospira (Nordst.) Geitl. - объектов промышленного культивирования / Матер. Межд. науч.-практ. конф. «Водоросли и цианобактерии в природных и сельскохозяйственных экосистемах». 11-15.10.2010. Киров: Вятская ГСХА, 2010. С.314-318.; Uslu L., Içik O., Koç K., Göksan T. The effect of nitrogen defiencies on the lipid and protein contents of Spirulina platensis //African Journal of Biotechnology. 2011. Vol.10 (3), P.386-389.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П., Киселева С.В. и др. База данных «Культуры фототрофных микроорганизмов». Свидетельство о государственной регистрации № 2013620237. Зарегистрировано в Реестре баз данных 04 февраля 2013 г.; Чернова Н.И., Киселева С.В., Попель О.С. Эффективность производства биодизеля из микроводорослей // Теплоэнергетика. 2014. № 6. С.14-21.; heehan J., Dunahay T., Benemann J. and Roessler P. A Look Back at the U.S. Department of Energy’s Aquatic Species Program - Biodiesel From Algae, Golden, CO, National Renewable Energy Institute, NREL/TP-580-24190, 1998. 328 p.; https://www.isjaee.com/jour/article/view/514

    Διαθεσιμότητα: https://www.isjaee.com/jour/article/view/514

  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: Alternative Energy and Ecology (ISJAEE); № 21 (2015); 44-54 ; Альтернативная энергетика и экология (ISJAEE); № 21 (2015); 44-54 ; 1608-8298

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.isjaee.com/jour/article/view/199/203; Чернова Н.И., Киселева С.В., Коробкова Т.П., Зайцев С.И. Микроводоросли в качестве сырья для получения биотоплива // Альтернативная энергетика и экология – ISJAEE. 2008. № 9. С. 68-74.; Третьяков В.Ф. Конверсия биоэтанола в автомобильный бензин и реактивное топливо. Доклад на Международном конгрессе «Биомасса: топливо и энергия – 2013» (16-17 апреля 2013 г.).; Соловченко А., Чивкунова О., Семенова Л. и др. Влияние стрессов на содержание пигментов и жирных кислот липидов в клетках микроводоросли Desmodesmus sp из беломорского гидроида // Физиология растений. 2013. Т. 60, № 3. С. 1-10.; Solovchenko A., Lukyanov A., Solovchenko O. et al. Interactive effects of salinity, high light and nitrogen starvation on fatty acid and carotenoid profiles in Nannochloropsis oceanica CALA 804 // European Journal of Lipid Science and Technology. 2014. Vol. 116, no. 5. P. 635-644.; Widjaja A., Chien C.-C., Ju Y.-H. Study of increasing lipid production from fresh water microalgae Chlorella vulgaris // J. Taiwan Inst. Chem. Eng. 2009. Vol. 40. P. 13-20.; Singh S.P., Singh P. Effect of temperature and light on the growth of algae species: A review // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2015. Vol. 50. P. 431-444.; Sharma Kalpesh K., Holger Schuhmann and Peer M. Schenk. High Lipid Induction in Microalgae for Biodiesel Production // Energies. 2012. Vol. 5. P. 1532-1553; doi:10.3390/en5051532.; Brennan L., Owende P. Biofuels from microalgae – A review of technologies for production, processing, and xtractions of biofuels and co-products // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2010. Vol. 14. P. 557-577; Rodolfi L., Chini Zittelli G., Bassi N., Padovani G., Biondi N.,Bonini G., Tredici M.R. Microalgae for oil: S train selection, induction of lipid synthesis and out door mass cultivation in a low-cost photobioreactor // Biotechnol. Bioeng. 2009. Vol. 102. P. 100-112.; Чернова Н.И., Киселева С.В., Зайцев С.И. Проблемы получения биотоплива третьего поколения: воздействие стрессоров на накопление нейтральных липидов в сине-зеленых водорослях (цианобактериях) // Альтернативная энергетика и экология – ISJAEE. 2014. № 12. С. 70-83.; Чернова Н.И., Коробкова Т.П., Радомский Н.В., Киселева С.В., Зайцев С.И., Гайнанова О.Ю. Использование способа двухстадийного культивирования в поиске перспективных штаммов микроводорослей для производства биотоплива. Труды 8-й Межд. научно-техн. конф. «Энергообеспечение и энергосбережение в сельском хозяйстве». Часть 4. ВИЭ. Местные энергоресурсы. Экология. М.: ГНУ ВИЭСХ, 2012. С. 196-203.; Raslavicius L., Semenov V.G., Chernova N.I., Keršys A., Kopeyka A.K. The Promise and Challenges of Algae for Transportation Biofuels / Transport Means. Proceedings of 17th International Conference. October 24-25, «Technologija» Kaunas, Lithuania, 2013. P. 83-87.; Каталог культур микроводорослей в коллекциях СССР. М.: ИФР РАН, 1991. С. 48, 54, 55.; Коробкова Т.П. Метод определения нейтраль х липидов при первичном скрининге липидообразующих микроводорослей // Возобновляемые энергоресурсы атмосферы, гидросферы, биосферы: лабораторный практикум / Под ред. А.А. Соловьева. М.: «Университетская книга», 2013. С. 147-155.; Fábregas J., Domínguez A., Regueiro M. et al. Optimization of culture medium for the continuous cultivation of the microalga Haematococcus pluvialis Appl. Microbiol. Biotech. 2000. Vol. 53. P. 530-535.; https://www.isjaee.com/jour/article/view/199

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17