-
1Academic Journal
Authors: G. Sh. Arzhimatova, G. M. Chernakova, E. A. Salikhov, M. Y. Shemyakin, Г. Ш. Аржиматова, Г. М. Чернакова, Э. А. Салихов, М. Ю. Шемякин
Contributors: Acknowledgments: To the head of the Moscow Coordination Center for Organ Donation (MCCOD), Professor, Doctor of Medical Sciences Minina M.G., as well as employees of the bacteriological laboratory of the “Botkin Hospital” of the Moscow Department of Health, head of the laboratory Emelyanova E.B., bacteriologist Ugolnikova A.O, Благодарности: руководителю Московского координационного центра органного донорства (МКЦОД) профессору, д.м.н. Мининой М.Г., а также сотрудникам бактериологической лаборатории ГБУЗ «ГКБ им. С.П. Боткина» ДЗМ, заведующей лаборатории Емельяновой Э.Б., врачу-бактериологу Угольниковой А.О.
Source: Ophthalmology in Russia; Том 21, № 3 (2024); 509-516 ; Офтальмология; Том 21, № 3 (2024); 509-516 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2024-3
Subject Terms: прозрачное приживление, prediction of graft disease, risk factors for corneal transplantation, graft disease, corneal transplantation, clear engraftment, прогнозирование болезни трансплантата, факторы риска при пересадке роговицы, болезнь трансплантата, трансплантация роговицы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2428/1245; Zheng Q, Zheng Q, Chen W, Li J, Zhao Z, Wang H, Jiang D, Chen W. Repeat corneal transplantation in Southern China: Indications, surgical technique, outcomes, and risk factors for repeat keratoplasty failure. Indian J Ophthalmol. 2024 May 1;72(Suppl 3):S482–S487. doi:10.4103/IJO.IJO_3333_23.; Nishino T, Kobayashi A, Yokogawa H, Mori N, Sugiyama K. Changing indications and surgical techniques for keratoplasty during a 16‑year period (2003–2018) at a tertiary referral hospital in Japan. Clin Ophthalmol. 2019 Aug 6;13:1499–1509. doi:10.2147/OPTH.S214515.; Park CY, Lee JK, Gore PK, Lim CY, Chuck RS. Keratoplasty in the United States: A 10Year Review from 2005 through 2014. Ophthalmology. 2015 Dec;122(12):2432– 2442. doi:10.1016/j.ophtha.2015.08.017.; Sun XT, Zhai HL, Cheng J, Kong QQ, Cong L, Li L, Hao WP. Indications for penetrating keratoplasty and anterior lamellar keratoplasty during 2010‑2017. Int J Ophthalmol. 2019 Dec 18;12(12):1878–1884. doi:10.18240/ijo.2019.12.10.; Tan H, Lin M, Gou Q, Li A, Gu F, Liu Q, Zhang Q, Xu M, Kijlstra A, Yang P, Li H. Trends in Corneal Transplantation and Characteristics of Donors in the Chongqing Eye Bank, China: A Retrospective Study, 1999–2018. Front Med (Lausanne). 2021 Oct 28;8:750898. doi:10.3389/fmed.2021.750898.; Dickman MM, Spekreijse LS, Dunker SL, Winkens B, Berendschot TTJM, van den Biggelaar FJHM, Kruit PJ, Nuijts RMMA. Long‑term Outcomes of Repeated Corneal Transplantations: A Prospective Dutch Registry Study. Am J Ophthalmol. 2018 Sep;193:156–165. doi:10.1016/j.ajo.2018.06.018.; Аржиматова ГШ, Салихов ЭА, Шемякин МЮ, Ибраимов АИ. Ретроспективный анализ результатов и причин сквозной кератопластики нативным донорским материалом в условиях многопрофильной больницы (на примере МГОЦ ГБУЗ «ГКБ им. Боткина» ДЗМ). Офтальмология. 2022;19(4):931–938. doi:10.18008/1816‑5095‑2022‑4‑931‑938.; Ченцова ЕВ, Боровкова НВ, Боженко ДА, Пономарев ИН, Макаров ПВ, Сторожева МВ, Макаров МС. Новый метод лечения персистирующих эрозий роговицы после кератопластики высокого риска. Российский офтальмологический журнал. 2023;16(3):94–99. doi:10.21516/2072‑0076‑2023‑16‑3‑94‑99.; Gupta PC, Ram J. Outcomes of Repeat Keratoplasty for Failed Therapeutic Keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2016 Sep;169:297–298. doi:10.1016/j.ajo.2016.04.030.; Srujana D, Kaur M, Urkude J, Rathi A, Sharma N, Titiyal JS. Long‑term Functional and Anatomic Outcomes of Repeat Graft After Optically Failed Therapeutic Keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2018 May;189:166–175. doi:10.1016/j.ajo.2018.03.011. Epub 2018 Mar 14. PMID: 29550189.; Lu LM, Boyle AB, Niederer RL, Brookes NH, McGhee CNJ, Patel DV. Repeat corneal transplantation in Auckland, New Zealand: Indications, visual outcomes and risk factors for repeat keratoplasty failure. Clin Exp Ophthalmol. 2019 Nov;47(8):987– 994. doi:10.1111/ceo.13581.; Чернакова ГМ, Майчук ДЮ, Слонимский ЮБ, Слонимский АЮ, Клещева ЕА, Мезенцева МВ. Новые свойства слезо заместителя, содержащего гепарин, в условиях in vitro (потенциальный противовирусный и противовоспалительный эффект). Офтальмология. 2018;15(2):182–188. doi:10.18008/1816‑5095‑2018‑2‑182‑188.; Труфанов СВ, Суббот АМ, Маложен СА, Саловарова ЕП, Крахмалева ДА. Факторы риска, клинические проявления, методы профилактики и лечения реакции отторжения трансплантата роговицы. Вестник офтальмологии. 2016;132(6):108–116. doi:10.17116/oftalma20161326108‑116.; Аржиматова ГШ, Салихов ЭА, Чернакова ГМ, Ибраимов АИ, Шемякин МЮ. Способ прогнозирования развития болезни трансплантата у пациентов со сквозным нативным донорским трансплантатом роговицы. Патент RU 2023109334 от 13.04.2023.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2428
-
2Academic Journal
Authors: G. Sh. Arzhimatova, Yu. B. Slonimskij, E. A. Salikhov, M. Yu. Shemyakin, A. I. Ibraimov, Г. Ш. Аржиматова, Ю. Б. Слонимский, Э. А. Салихов, М. Ю. Шемякин, А. И. Ибраимов
Source: Ophthalmology in Russia; Том 20, № 3 (2023); 557-562 ; Офтальмология; Том 20, № 3 (2023); 557-562 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2024-3
Subject Terms: многопрофильный стационар, corneal transplantation, dacryoadenitis, dry eye syndrome, native donor cornea, multidisciplinary hospital, трансплантация роговицы, дакриоаденит, синдром сухого глаза, нативная донорская роговица
File Description: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2188/1147; Бржеский В.В., Голубев С.Ю., Бржеская И.В., Попов В.Ю. Новые возможности слезозамещающей терапии у больных с синдромом сухого глаза различного генеза. Офтальмология. 2019;16(2):244–251.; Сомов Е.Е., Бржеская И.В. Современные подходы к лечению асептических язв роговицы. Известия Российской Военно-медицинской академии. 2018;37(2):15–18. doi:10.17816/rmmar14178.; Sharma B, Soni D, Saxena H, Stevenson LJ, Karkhur S, Takkar B, Vajpayee RB. Impact of corneal refractive surgery on the precorneal tear film. Indian J Ophthalmol. 2020 Dec;68(12):2804–2812. doi:10.4103/ijo.IJO_2296_19.; Starr CE, Gupta PK, Farid M, Beckman KA, Chan CC, Yeu E, Gomes JAP, Ayers BD, Berdahl JP, Holland EJ, Kim T, Mah FS. The ASCRS Cornea Clinical Committee. An algorithm for the preoperative diagnosis and treatment of ocular surface disorders. Journal of Cataract & Refractive Surgery 2019;45(5):669–684. doi:10.1016/j. jcrs.2019.03.023; Каспарова Е.А., Марченко Н.Р. Нейротрофический кератит. Этиология, патогенез, клинические проявления. Обзор литературы. Часть 1. Офтальмология. 2022;19(1):38–45.; Dua HS, Said DG, Messmer EM, Rolando M, Benitez-Del-Castillo JM, Hossain PN, Shortt AJ, Geerling G, Nubile M, Figueiredo FC, Rauz S, Mastropasqua L, Rama P, Baudouin C. Neurotrophic keratopathy. Prog. Retin. Eye Res. 2018 Sep;66:107–131. doi:10.1016/j.preteyeres.2018.04.003.; Vieira AC, Pereira T, de Freitas D. Late-onset infections after LASIK. J Refract Surg. 2008 Apr;24(4):411–413. doi:10.3928/1081597X-20080401-16.; Ferrer C Rodriguez-Prats JL, Abad JL. Pseudomonas keratitis 4 years after la ser in situ keratomileusis. Optom Vis Sci. 2011;88:1252–1254. doi:10.1097/OPX.0b013e318223c0c4.; Moss SE, Klein R, Klein BEK. Long-term incidence of dry eye in an older population. Optom Vis Sci. 2009;85:668–674. doi:10.1097/OPX.0b013e318181a947.; Rabina G, Azem N, Mimouni M, Hecht I, Varssano D. Very late-onset flap margin corneal ulcer following laser in situ keratomileusis. Int Ophthalmol. 2019 Nov;39(11):2533–2538. doi:10.1007/s10792-019-01100-0. Epub 2019 Apr 13.; Varssano D, Waisbourd M, Berkner L. Lateonset laser in situ keratomileusisrelated corneal ulcer—a case series. Cornea. 2009;28:586–588. doi:10.1097/ICO.0b013e31818c8fec 17.; Yeung SN, Lichtinger A, Kim P. Late-onset Klebsiella oxytoca flap-margin–related corneal ulcer following laser in situ keratomileusis. J Cataract Refract Surg. 2011;37:1551–1554. doi:10.1016/j.jcrs.2011.05.016.; Azuma M, Yabuta C, Fraunfelder FW, Shearer TR. Dry Eye in LASIK Patients, BMC Res Notes. 2014;7:420. doi:10.1186/1756-0500-7-420.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2188
-
3Academic Journal
Authors: G. Sh. Arzhimatova, E. A. Salikhov, M. Yu. Shemyakin, A. I. Ibraimov, Г. Ш. Аржиматова, Э. А. Салихов, М. Ю. Шемякин, А. И. Ибраимов
Source: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 4 (2022); 931-938 ; Офтальмология; Том 19, № 4 (2022); 931-938 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-4
Subject Terms: многопрофильная больница, corneal transplantation, graft disease, native donor cornea, multidisciplinary hospital, трансплантация роговицы, болезнь трансплантата, нативная донорская роговица
File Description: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2007/1063; Малюгин Б.Э., Сахнов С.Н., Мясникова В.В. Анализ результатов сквозной трансплантации роговицы в ретроспективном когортном исследовании. Офтальмохирургия. 2021;4:12–20. DOI:10.25276/0235-4160-2021-4-12-20; Слонимский А.Ю., Слонимский Ю.Б., Долгий С.С. Сквозная пересадка роговицы при гнойных процессах переднего отрезка глазного яблока. Российский медицинский журнал. Клиническая офтальмология. 2010;11(1):11 14.; Слонимский Ю.Б., Слонимский А.Ю. Hydrops corneae. Дифференциальная диагностика и лечение. Вестник Оренбургского государственного университета. 2014;12(173):276–281.; Нероев В.В., Балацкая Н.В., Ченцова Е.В. Особенности локальной и системной продукции провоспалительных, хемоаттрактантных медиаторов и сосудистых факторов роста при пересадках роговицы высокого риска. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2021;1:20–28. DOI:10.14427/jipai.2021.1.20; Миронкова Е.А., Демкин В.В., Слепова О.С. Диагностика и роль ВГЧ 6 инфекции при кератопластике высокого риска. Российский офтальмологический журнал. 2012;5(3):30–33.; Борзенок С.А., Тонаева Х.Д., Онищенко Н.А., Комах Ю.А. Индукция локальной иммунной толерантности с помощью лимбальной сотрансплантации при кератопластике высокого риска (обзор литературы). Офтальмохирургия. 2011;2:85–88.; Zazzo A.D., Kheirkhah A., Abud T.B., Goyal S., Dana R. Management of Highrisk Corneal Transplantation. Surv Ophthalmol. 2017;62(6):816–827. DOI:10.1016/j.survophthal.2016.12.010; Armitage W.J., Goodchild C., Griffin M.D., Gunn D.J., Hjortdal J., Lohan P., Murphy C., Pleyer U., Ritter T., Tole D.M., Vabres B High risk Corneal transplantation: recent developments and future possibilities. Transplantation. 2019;103(12):2468–2478. DOI:10.1097/TP.0000000000002938; Борзенок С.А., Комах Ю.А., Мороз З.И. Роль тканевого глазного банка в трансплантации роговицы. Вестник Российской академии медицинских наук. 2007;8:20–25.; Куликов А.Н., Чурашов С.В., Березин Р.Д. Первый опыт кератопластики с фемтосопровождением и использованием нативного донорского материала. Современные технологии в офтальмологии. 2017;6:230–232.; Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Слонимский Ю.Б., Слонимский А.Ю., Е.А. Клещева, Мезенцева М.В. Новые свойства слезозаместителя, содержащего гепарин, в условиях in vitro (потенциальный противовирусный и противовоспалительный эффект). Офтальмология. 2018;15(2):182–188. DOI:10.18008/1816-5095-2018-2-182-188; Folkman J., Shing Y. Control of angiogenesis by heparin and other sulfated polysaccharides. Adv Exp Med Biol. 1992;313:355–364. DOI:10.1007/978-1-4899-2444-5_34; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2007
-
4Academic Journal
Authors: O. G. Oganesyan, P. V. Makarov, A. A. Grdikanyan, V. R. Getadaryan
Source: Российский офтальмологический журнал, Vol 11, Iss 3, Pp 11-18 (2018)
Subject Terms: q-dmek, ¼ dmek, keratoplasty, RE1-994, роговица донора, donor cornea, corneal transplantation, Ophthalmology, 03 medical and health sciences, descemet membrane transplantation, 0302 clinical medicine, трансплантация десцеметовой мембраны, трансплантация роговицы, dmek, кератопластика
-
5Academic Journal
Authors: S. N. Sakhnov, V. V. Myasnikova, K. I. Melkonyan, S. V. Kravchenko, С. Н. Сахнов, В. В. Мясникова, К. И. Мелконян, С. В. Кравченко
Source: Ophthalmology in Russia; Том 18, № 4 (2021); 946-954 ; Офтальмология; Том 18, № 4 (2021); 946-954 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2021-4
Subject Terms: трансплантация роговицы, immunological status, penetrating keratoplasty, graft rejection, corneal transplantation, иммунологический статус, сквозная кератопластика, отторжение трансплантата
File Description: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1704/920; Bai J., Fu H., Bazinet L., Birsner A.E., D’amato R.J. A method for developing novel 3D cornea-on-a-chip using primary murine corneal epithelial and endothelial cells. Frontiers in pharmacology. 2020;11:453. DOI:10.3389/fphar.2020.00453; Zhang B., Xue Q., Li J., Ma L., Yao Y., Ye H., Cui Z., Yang H. 3D bioprinting for artificial cornea: Challenges and perspectives. Medical engineering & physics. 2019;71:68–78. DOI:10.1016/j.medengphy.2019.05.002; Сахнов С.Н., Мясникова В.В., Романов А.В., Кравченко С.В. Перспективы применения плазмафереза для профилактики реакции отторжения трансплантата роговицы. Современные проблемы науки и образования. 2021;3.; Hori J., Yamaguchi T., Keino H., Hamrah P., Maruyama K. Immune privilege in corneal transplantation. Progress in retinal and eye research. 2019;72:100758. DOI:10.1016/j.preteyeres.2019.04.002; Батурина Г.С., Каткова Л.Е., Соленов Е.И., Искаков И.А. Восстановление функции эндотелия роговицы глаза (обзор литературы). Сибирский научный медицинский журнал. 2019;39(3):28–34.; Inoue K., Tsuru T. ABO antigen blood-group compatibility and allograft rejection in corneal transplantation. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 1999;77(5):495– 499. DOI:10.1034/j.1600-0420.1999.770501.x; Труфанов С.В., Суббот А.М., Маложен С.А., Саловарова Е.П., Крахмалева Д.А. Факторы риска, клинические проявления, методы профилактики и лечения реакции отторжения трансплантата роговицы. Вестник офтальмологии. 2016;132(6):108–116.; Сахнов С.Н., Мясникова В.В., Марцинкевич А.О., Мелконян К.И., Русинова Т.В., Юцкевич Я.А. Прогностическая и профилактическая роль различных факторов в отторжении роговицы после кератопластики. Офтальмохирургия. 2021;1:82–87.; Xie P., Tao M., Peng K., Zhao H., Zhang K., Sheng Y., Ankawi G., Ronco C. Plasmapheresis therapy in kidney transplant rejection. Blood purification. 2019;47(1– 3):73–84. DOI:10.1159/000493521; Lee H.J., Shin K.H., Jo S.Y., Kim H.H. Transfusion and Plasmapheresis in Heart and Lung Transplantation in Korea. The Korean Journal of Blood Transfusion. 2021;32(2):129–131. DOI:10.17945/kjbt.2021.32.2.129; Brar H.S., Dadlani A., Ng A.M. Successful High-Volume Plasmapheresis in Acute Liver Failure. Cureus. 2021;13(7):e16143. DOI:10.7759/cureus.16143; Pranathi B., Nooreen N., Gadde M., Videkar A. Role of plasmapheresis in neuromyelitis optica spectrum disorders. J. Med. Sci. Res. 2019;7(4):115–119. DOI:10.17727/ jmsr.2019/7-20; Гулиева М.Г. Эфферентная терапия — плазмаферез (Обзор литературы). Azerbaijan Journal of Ophthalmology. 2020;34(3):89–104. [Gulieva M.G. Efferent therapy — plasmapheresis (literature review). Azerbaijan Journal of Ophthalmology 2020;34(3):89–104 (In Russ.)].; Merz T., Marchesoni I., Caminiti G., Romanelli F. Efficacy of plasmapheresis as treatment for bilateral hyperviscosity syndrome related retinopathy in multiple myeloma. European Journal of Ophthalmology. 2021:1120672121997069. DOI:10.1177/1120672121997069; Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Ковалева С.В., Тараканов В.А., Ломтатидзе Л.В., Колесникова Н.В., Русинова Т.В., Евглевский А.А., Малиновская В.В. Нейтрофильные гранулоциты: отражение в зеркале современных представлений. UK, USA, Moscow: Capricorn Publishing; 2018. 338 с.; Barraquer R.I., Pareja-Aricò L., Gómez-Benlloch A., Michael R. Risk factors for graft failure after penetrating keratoplasty. Medicine. 2019;98(17):e15274. DOI:10.1097/MD.0000000000015274; Уткина Е.А., Афанасьева О.И., Покровский С.Н. С-реактивный белок: патогенетические свойства и возможная терапевтическая мишень. Российский кардиологический журнал. 2021;(6):4138.; Полевщиков А.В., Назаров П.Г. Иммунология белков острой фазы воспаления и работы РВ Петрова. Иммунология. 2020;41(2):167–173.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1704
-
6Academic Journal
Authors: S. A. Borzenok, T. Z. Kerimov, N. A. Gavrilova, Yu. Yu. Kalinnikov, M. Kh. Khubetsova, A. A. Zheltonozhko, С. А. Борзенок, Т. З. Керимов, Н. А. Гаврилова, Ю. Ю. Калинников, М. Х. Хубецова, А. А. Желтоножко
Source: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 12, № 2 (2020); 112-125 ; Трансплантология; Том 12, № 2 (2020); 112-125 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2020-12-2
Subject Terms: вирусная деконтаминация, herpes simplex keratitis, keratoplasty, cornea preservation, viral decontamination, герпетический кератит, трансплантация роговицы, консервация роговицы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498/561; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498/567; Pascolini D, Mariotti SP. Global estimates of visual impairment: 2010. Br J Ophthalmol. 2012;96(5):614–618. PMID: 22133988 https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2011-300539; Resnikoff S, Pascolini D, Etya'ale D, Kocur I, Pararajasegaram R, Pokharel GP, et al. Global data on visual impairment in the year 2002. Bull World Health Organ. 2004;82(11):844–851. PMID: 15640920 https://doi.org/S004296862004001100009; Flaxman SR, Bourne RRA, Resnikoff S, Ackland P, Braithwaite T, Cicinelli MV, et al. Global causes of blindness and distance vision impairment 1990–2020: a systematic review and meta-analysis. Lancet Glob Health. 2017;5(12):e1221– e1234. PMID: 29032195 http://doi. org/10.1016/S2214-109X(17)30393-5; Oliva MS, Schottman T, Gulati M. Turnin g the tide of corneal blindness. Indian J Ophthalmol. 2012;60(5):423– 7. PMID: 22944753 http://doi. org/10.4103/0301-4738.100540; Wilson SL, El Haj AJ, Yang Y. Control of scar tissue formation in the cornea: strategies in clinical and corneal tissue engineering. J Funct Biomater. 2012;3(3):642–687. PMID: 24955637 https://doi.org/10.3390/jfb3030642.; Wong KH, Kam KW, Chen LJ, Young AL. Corneal blindness and current major treatment concern-graft scarcity. Int J Ophthalmol. 2017;10(7):1154– 1162. PMID: 28730122 http://doi. org/10.18240/ijo.2017.07.21; Gupta N, Tandon R, Gupta SK, Sreenivas V, Vashist P. Burden of corneal blindness in India. Indian J Community Med. 2013;38(4):198–206. PMID: 24302819 https://doi.org/10.4103/09700218.120153; Майчук Ю.Ф. Оптимизация фармакотерапии воспалительных болезней глазной поверхности. Российский офтальмологический журнал. 2008;(3):18–25.; Каспаров А.А. Современные аспекты лечения герпес-вирусного кератита. Клиническая Офтальмология. 2000;(2):59–61.; Marchi S, Trombetta CM, Gasparini R, Temperton N, Montomoli E. Epidemiology of herpes simplex virus type 1 and 2 in Italy: a seroprevalence study from 2000 to 2014. J Prev Med Hyg. 2017;58(1):E27–E33.PMID: 28515628; Gruffat H, Marchione R, Manet E. Herpesvirus late gene expression: a viral-specific pre-initiation complex is key. Front Microbiol. 2016;7:869. PMID: 27375590 https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.00869; Kaneko H, Higaki S, Fukuda M, Shimomura Y, Ishioka K, Fukushima E., et al. The quantitative detection of herpes simplex virus, varicella zoster virus, and cytomegalovirus DNAs in recipient corneal buttons. Cornea. 2010;29:1436–1439. PMID: 20847665 https://doi.org/10.1097/ICO.0b013e3181d3d69d; Grüter W. Experimental and clinical studies on so-called corneal herpes. Berichte über die Versammlung der Deutschen Ophthalmologischen Gesellschaft. 1920;42:162–167.; Baron S. Medical Microbiology: 4th edition. Galveston (TX): University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996.; Каспаров А.А. Офтальмогерпес. Москва: Медицина; 1994.; Brown JC, Newcomb WW. Herpesvirus capsid assembly: insights from structural analysis. Curr Opin Virol. 2011;1(2):142–9. PMID: 21927635 http:// doi.org/10.1016/j.coviro.2011.06.003; Чернакова Г.М., Майчук Д.Ю., Клещева Е.А., Слонимский Ю.Б., Семенова Т.Б. Микст-инфекции и воспалительная офтальмопатология: клинико-лабораторные наблюдения. Вестник офтальмологии. 2017;133(4):74–82.; Rowe AM, St Leger AJ, Jeon S, Dhaliwal DK, Knickelbein JE, Hendricks RL. Herpes keratitis. Prog Retin Eye Res. 2013;32:88–101. PMID: 22944008 http:// doi.org/10.1016/j.preteyeres.2012.08.002; Деев Л.А., Ярцева Н.С. Заболевания роговой оболочки глазного яблока: учебно-методическое пособие. Смоленск: Изд-во СГМА; 2006.; Akanda ZZ, Naeem A, Russell E, Belrose J, Si FF, Hodge WG. Graft rejection rate and graft failure rate of penetrating keratoplasty (PKP) vs lamellar procedures: a systematic review. PLoS One. 2015;10(3):e0119934. PMID: 25781319 https://doi.org/10.1371/journal. pone.0119934; Lawlor M, Kerridge I. Anything but the eyes: culture, identity, and the selective refusal of corneal donation. Transplantation. 2011;92(11):1188–1190. PMID: 22011764 https://doi.org/10.1097/ TP.0b013e318235c817; Armitage WJ, Tullo AB, Larkin DF. The first successful full-thickness corneal transplant: a commentary on Eduard Zirm's landmark paper of 1906. Br J Ophthalmol. 2006;90(10):1222–1223. PMID: 16980643 https://doi.org/10.1136/ bjo.2006.101527; Filatov VP, Olga Sitchevska. Transplantation of the cornea. Arch Ophthalmol. 1935;13(3):321– 347 https://doi.org/10.1001/ archopht.1935.00840030011001; Хубутия М.Ш., Солонин С.А., Годков М.А. Проблемы обеспечения инфекционной безопасности органного и тканевого донорства при лабораторной диагностике гемоконтактных вирусных инфекций. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2016;18(1):83–90.; Майчук Д.Ю., Майчук Ю.Ф. Офтальмоферон – 15 лет широкого применения в лечении и профилактике инфекционных заболеваний глаз. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение: журнал для непрерывного образования врачей. 2017;1(18):82–100.; Kaye SB, Madan N, Dowd TC, Hart CA, McCarthy K, Patterson A. Ocular shedding of herpes simplex virus. Br J Ophthalmol. 1990;74(2):114–116. PMID: 2155653https://doi.org/0.1136/ bjo.74.2.114; Kaye SB, Lynas C, Patterson A, Risk JM, McCarthy K, Hart CA. Evidence for herpes simplex viral latency in the human cornea. Br J Ophthalmol. 1991;75(4):195–200. PMID: 1850616https://doi.org/10.1136/ bjo.75.4.195; Cantin EM, Chen J, McNeill J, Willey DE, Openshaw H. Detection of herpes simplex virus DNA sequences in cornea l transplant recipients by polymerase chain reaction assays. Curr Eye Res. 1991;10S:15–21. PMID: 1650662 http:// doi.org/10.3109/02713689109020353; Cook SD, Hill JH. Herpes simplex virus: molecular biology and the possibility of corneal latency. Surv Ophthalmol. 1991;36(2):140–8. PMID: 1659745 http:// doi.org/10.1016/0039-6257(91)90127-2; Cleator GM, Klapper PE, Dennett C, Sullivan AL, Bonshek RE, Marcyniuk B, et al. Corneal donor infection by herpes simplex virus: herpes simplex virus DNA in donor corneas. Cornea. 1994;13(4):294– 304. PMID: 7924328 http://doi. org/10.1097/00003226-199407000-00003; Garweg J, Böhnke M. Slow viral replication of HSV-1 is responsible for early recurrence of herpetic keratitis after corneal grafting. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1996;234(S1):133–138. PMID: 8871164 https://doi.org/10.1007/ bf02343062; Remeijer L, Doornenbal P, Geerards AJ, Rijneveld WA, Beekhuis WH. Newly acquired herpes simplex virus keratitis after penetrating keratoplasty. Ophthalmology. 1997;104(4):648–652. PMID: 9111258https://doi.org/10.1016/ s0161-6420(97)30257-7; Cockerham GC, Krafft AE, McLean IW. Herpes simplex virus in primary graft failure. Arch Ophthalmol. 1997;115(5):586–589. PMID: 9152124 https://doi.org/10.1001/ archopht.1997.01100150588001; Holbach LM, Asano N, Naumann GO. Infection of the corneal endothelium in herpes simplex keratitis. Am J Ophthalmol. 1998;126(4):592–594. PMID: 9780108https://doi.org/10.1016/s00029394(98)00121-4; Neufeld MV, Steinemann TL, Merin LM, Stroop WG, Brown MF. Identification of a herpes simplex virus-induced dendrite in an eye-bank donor cornea. Cornea. 1999;18(4):489– 492. PMID: 10422864 http://doi. org/10.1097/00003226-199907000-00016; Biswas S, Suresh P, Bonshek RE, Corbitt G, Tullo AB, Ridgway AE. Graft failure in human donor corneas due to transmission of herpes simplex virus. Br J Ophthalmol. 2000;84(7):701-5. PMID: 10873977https://doi.org/10.1136/ bjo.84.7.701; Remeijer L, Maertzdorf J, Doornenbal P, Verjans GM, Osterhaus AD. Herpes simplex virus 1 transmission through corneal transplantation. Lancet. 2001;357(9254):442. PMID: 11273067 https://doi.org/10.1016/S01406736(00)04011-3; De Kesel RJ, Koppen C, Ieven M, Zeyen T. Primary graft failure caused by herpes simplex virus type 1. Cornea. 2001;20(2):187– 190. PMID: 11248827http://doi. org/10.1097/00003226-200103000-00016; Zheng X. Reactivation and donorhost transmission of herpes simplex virus after corneal transplantation. Cornea. 2002;21(7S):90–3. PMID: 12484706 https://doi.org/10.1097/01. ico.0000263126.76392.cf.; Tullo A. Pathogenesis and management of herpes simplex virus keratitis. Eye (Lond). 2003;17(8):919–922. PMID: 14631397 https://doi.org/10.1038/sj.eye.6700564; Rezende RA, Uchoa UB, Raber IM, Rapuano CJ, Laibson PR, Cohen EJ. New onset of herpes simplex virus epithelial keratitis after penetrating keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2004;137(3):415– 419. PMID: 15013862 http://doi. org/10.1016/j.ajo.2003.09.057; Borderie VM, Méritet JF, Chaumeil C, Rozenberg F, Baudrimont M, Touzeau O, et al. Culture-proven herpetic keratitis after penetrating keratoplasty in patients with no previous history of herpes disease. Cornea. 2004;23(2):118– 24. PMID: 15075879 http://doi. org/10.1097/00003226-200403000-00003; Robert PY, Adenis JP, Pleyer U. How "safe" is corneal transplantation? A contribution on the risk of HSV-transmission due to corneal transplantation. Klin Monbl Augenheilkd. 2005;222(11):870– 873. PMID: 16308818 http://doi. org/10.1055/s-2005-858849; Robert PY, Adenis JP, Denis F, Droue t M, Ranger-Rogez S. Herpesviruses serologic survey of corneal allograft recipients. J Fr Ophtalmol. 2006;29(3):59– 263. PMID: 16557169 https://doi.org/10.1016/s0181-5512(06)73781-0; Builles N, Kodjikian L, Burillon C, Damour O. Major endothelial loss from corneas in organ culture: importance of second endothelial count. Cornea. 2006;25(7):815–820. PMID: 17068459 https://doi.org/10.1097/01. ico.0000230253.62730.85; Aydemir O, Türkçüoğlu P, Bulut Y, Kalkan A. The relationship of graft survival and herpes simplex virus latency in recipient corneal buttons. Clin Ophthalmol. 2007;1(2):127–131. PMID: 19668501; Gatzioufas Z, Oldak M, Schnaidt A, Smola S, Seitz B. Graft-to-host transmission of herpes simplex virus - myth or reality? Acta Ophthalmol. 2011;89(5):e473–4; author reply e474–5. PMID: 21756291 https://doi.org/10.1111/ j.1755-3768.2011.02192.x; Кугушева А.Э., Слепова О.С., Гундорова Р.А., Демкин В.В., Макаров П.В., Миронкова Е.А. и др. О влиянии герпесвирусных инфекций на результаты приживления роговичного трансплантата при кератопластике высокого риска. В кн. Актуальные проблемы офтальмологии. Москва; 2012. с. 116–117.; Gatzioufas Z, Hasenfus A, Gyongyossy B, Stavridis E, Sauter M, Smola S, et al. Repeat corneal graft failure due to graft-to-host herpetic infection. J Ophthalmic Inflamm Infect. 2013;3(1):24. PMID: 23514192 http://doi. org/10.1186/1869-5760-3-24; Kuffova L, Knickelbein JE, Yu T, Medina C, Amescua G, Rowe AM, et al. High-risk corneal graft rejection in the setting of previous corneal herpes simplex virus (HSV)-1 infection. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016;57(4):1578–87. PMID: 27050878 https://doi.org/10.1167/iovs.15-17894; Agelidis AM, Shukla D. Cell entry mechanisms of HSV: what we have learned in recent years. Future Virol. 2015;10(10):1145–1154. PMID: 27066105 https://doi.org/10.2217/fvl.15.85; Akhtar J, Shukla D. Viral entry mechanisms: cellular and viral mediators of herpes simplex virus entry. FEBS J. 2009;276(24):7228–36. PMID: 19878306 https://doi.org/10.1111/j.17424658.2009.07402.x; Yu X, He S. The interplay between human herpes simplex virus infection and the apoptosis and necroptosis cell death pathways. Virol J. 2016;13:77. PMID: 27154074 https://doi.org/10.1186/ s12985-016-0528-0; Kerr JF, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. Br J Cancer. 1972;26(4):239–257. PMID: 4561027 https://doi.org/10.1038/bjc.1972.33; Wyllie AH. Glucocorticoid-induced thymocyte apoptosis is associated with endogenous endonuclease activation. Nature. 1980;284(5756):555–556. PMID: 6245367 https://doi.org/10.1038/284555a0; Thornberry NA, Lazebnik Y. Caspases: enemies within. Science. 1998;281(5381):1312–1316. PMID: 9721091 https://doi.org/10.1126/science.281.5381.1312; Guo H, Kaiser WJ, Mocarski ES. Manipulation of apoptosis and necroptosis signaling by herpesviruses. Med Microbiol Immunol. 2015;204(3):439–448. PMID: 25828583 https://doi.org/10.1007/s00430-015-0410-5; Holler N, Zaru R, Micheau O, Thome M, Attinger A, Valitutti S, et al. Fas triggers an alternative, caspase8-independent cell death pathway using the kinase RIP as effector molecule. Nat Immunol. 2000;1(6):489–495. PMID: 11101870 https://doi.org/10.1038/82732; Chawla-Sarkar M, Lindner DJ, Liu YF, Williams BR, Sen GC, Silverman RH, et al. Apoptosis and interferons: role of interferon-stimulated genes as mediators of apoptosis. Apoptosis. 2003;8(3):237–249. PMID: 12766484 https://doi.org/10.1023/a:1023668705040; Robinson N, McComb S, Mulligan R, Dudani R, Krishnan L, Sad S. Type I interferon induces necroptosis in macrophages during infection with Salmonella enterica serovar Typhimurium. Nat Immunol. 2012;13(10):954–962. PMID: 22922364 https://doi.org/10.1038/ni.2397; Haller O. A tribute to Jean Lindenmann, co-discoverer of interferon (1924-2015). Cytokine. 2015;76(1):113– 115. PMID: 25937629 http://doi. org/10.1016/j.cyto.2015.02.029; Nallar SC, Kalvakolanu DV. Interferons, Signal Transduction Pathways, and the Central Nervous System. J of Interferon Cytokine Res. 2014;34(8):559–576. PMID: 25084173 https://doi.org/10.1089/jir.2014.0021; Gonzalez-Navajas JM, Lee J, David M, Raz E. Immunomodulatory functions of type I interferons. Nat Rev Immunol. 2012;12(2):125–135. PMID: 22222875 https://doi.org/10.1038/nri3133; Ivashkiv LB, Donlin LT. Regulation of type I interferon responses. Nat Rev Immunol. 2014;14(1):36–49. PMID: 24362405https://doi.org/10.1038/nri3581; Abrams ME, Balish MJ, Brandt CR. IFN-alpha induces MxA gene expression in cultured human corneal fibroblasts. Exp Eye Res. 1995;60(2):137–42. PMID: 7540146 https://doi.org/10.1016/S00144835(95)80003-4; Калюжин О.В. Тилорон как средство выбора для профилактики и лечения острых респираторных вирусных инфекций. Лечащий врач. 2013;(10):43– 48.; Карсонова А.В. Система интерферонов I типа и NK-клеток при часто рецидивирующем простом герпесе: автореферат дис. . канд. мед. наук: 14.03.09. Москва: Первый моск. гос. мед. ун-т. им. И.М. Сеченова; 2014. 26 c.; Lin FC, Young HA. Interferons: Success in anti-viral immunotherapy. Cytokine Growth Factor Rev. 2014;25(4):369– 76. PMID: 25156421 http://doi. org/10.1016/j.cytogfr.2014.07.015; Boasso A. Type I interferon at the interface of antiviral immunity and immune regulation: the curious case of HIV-1. Scientifica. 2013;2013:580968. PMID: 24455433 http://doi. org/10.1155/2013/580968; Stetson DB, Medzhitov R. Type I interferons in host defense. Immunity. 2006;25(3):373–381. PMID: 16979569 https://doi.org/10.1016/j.immuni.2006.08.007; Kimberlin DW, Whitley RJ. Antiviral therapy of HSV-1 and -2. Cambridge University Press; 2007: 1153–1174. http:// doi.org/10.1017/CBO9780511545313.065; Sainz B, Halford WP. Alpha/Beta interferon and gamma interferon synergize to inhibit the replication of herpes simplex virus type 1. J Virol. 2002;76(22):11541–50. PMID: 12388715 https://doi.org/10.1128/JVI.76.22.1154111550.2002; Choong K, Walker NJ, Apel AJ, Whitby M. Aciclovir-resistant herpes keratitis. Clin Exp Ophthalmol. 2010;38(3):309– 313. PMID: 20447128 http://doi. org/10.1111/j.1442-9071.2010.02209.x; Toriyama K, Inoue T, Suzuki T, Kobayashi T, Ohashi Y. Necrotizing keratitis caused by acyclovir-resist ant herpes simplex virus. Case Rep Ophthalmol. 2014;5(3):325–328. PMID: 25473399 https://doi.org/10.1159/000368297; Taylor JL, Casey MS, O'Brien WJ. Synergistic antiherpes virus activity of acyclovir and interferon in human corneal stromal cells. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1989Mar;30(3):365–70. PMID: 2466806; Wilhelmus KR. The treatment of herpes simplex virus epithelial keratitis. Trans Am Ophthalmol Soc. 2000;98:505532. PMID: 11190039; Wilhelmus KR. Antiviral treatment and other therapeutic interventions for herpes simplex virus epithelial keratitis. Cochrane Database Syst Rev. 2010;12:CD002898. PMID: 21154352 https://doi.org/10.1002/14651858. CD002898.pub5; Sainz B Jr, Halford WP. Alpha/ Beta interferon and gamma interferon synergize to inhibit the replication of herpes simplex virus type 1. J Virol. 2002;76(22):11541–11550. PMID: 12388715 https://doi.org/10.1128/ JVI.76.22.11541-11550.2002; Nguyen NX, Seitz B, Martus P, Langenbucher A, Cursiefen C. Long-term topical steroid treatment improves graft survival following normal-risk penetrating keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2007;144(2):318–9. PMID: 17659972 https://doi.org/10.1016/j.ajo.2007.03.028; Борзенок С.А., Керимов Т.З. Антивирусная деконтаминация трансплантатов донорских роговиц на этапе консервации. Третий российский национальный конгресс с международным участием «Трансплантация и донорство органов», 2–4 октября 2017 г. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2017;19(3):221.; Керимов Т.З., Борзенок С.А., Гаврилова Н.А., Тонаева Х.Д. Герпесвирусная инфекция трансплантата роговицы: подходы к вирусной деконтаминации на этапе консервации. Практическая медицина. 2018;3(114):89–92.; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/498
-
7Academic Journal
Authors: ФЕРНАНДЕС-ЛОПЕЗ Э., МАЙРОН А., ГРДИКАНЯН А.А., ПОГОРЕЛОВА С.С., БАЙДОН Л., ОГАНЕСЯН О.Г., МЕЛЛИС Г.Р.Ж.
Subject Terms: DSEK,ТРАНСПЛАНТАЦИЯ РОГОВИЦЫ,ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫЕ ОСЛОЖНЕНИЯ,CORNEAL TRANSPLANTATION,POSTOPERATIVE,POSTOPERATIVE COMPLICATIONS
File Description: text/html
-
8Academic Journal
Authors: Оганесян, Оганес, Нероев, В., Гундорова, Р.
Subject Terms: КЕРАТОКОНУС, ТРАНСПЛАНТАЦИЯ РОГОВИЦЫ, KERATO^NUS
File Description: text/html
-
9Academic Journal
Source: Тихоокеанский медицинский журнал.
Subject Terms: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, DSEK,ТРАНСПЛАНТАЦИЯ РОГОВИЦЫ,ПОСЛЕОПЕРАЦИОННЫЕ ОСЛОЖНЕНИЯ,CORNEAL TRANSPLANTATION,POSTOPERATIVE,POSTOPERATIVE COMPLICATIONS, 3. Good health
File Description: text/html
-
10Academic Journal
Source: Российский медицинский журнал.
Subject Terms: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, КЕРАТОКОНУС, ТРАНСПЛАНТАЦИЯ РОГОВИЦЫ, KERATO^NUS
File Description: text/html
-
11Academic Journal
Authors: Танаш М.А., Фролов М.А., Гончар П.А., Душина Г.Н., Абабнех Л.Т.
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs
Subject Terms: corneal transplantation, indications, penetrating keratoplasty, keratoconus, трансплантация роговицы, показание, сквозная кератопластика, кератоконус
Availability: https://repository.rudn.ru/records/article/record/88419/
