-
1Academic Journal
Authors: Лапасова Зебинисо Хидировна
Source: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 4 No. 2 (2025): SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; 173-179 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 4 № 2 (2025): SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; 173-179 ; 2181-3469
Subject Terms: Тонкоигольная аспирационная биопсия, цитология щитовидной железы, рак щитовидной железы
File Description: application/pdf
-
2Academic Journal
Authors: Яровой, А.А., Мирошников, В.И., Галбацова, А.Г., Яровая, В.А., Володин, Д.П.
Source: FYODOROV JOURNAL OF OPHTHALMIC SURGERY ; No. 1 (2025): FYODOROV JOURNAL OF OPHTHALMIC SURGERY; 36-42 ; ОФТАЛЬМОХИРУРГИЯ; № 1 (2025): Офтальмохирургия; 36-42 ; 2312-4970 ; 0235-4160
Subject Terms: метастазы в хориоидею, внутриглазные опухоли, тонкоигольная аспирационная биопсия, choroidal metastases, intraocular tumors, fine needle aspiration biopsy
File Description: application/pdf
-
3Academic Journal
Authors: A. O. Tagil, A. V. Borsukov, А. О. Тагиль, А. В. Борсуков
Contributors: The study was performed without external funding, Исследование проведено без спонсорской поддержки
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 14, № 2 (2024); 10-19 ; Опухоли головы и шеи; Том 14, № 2 (2024); 10-19 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2024-14-2
Subject Terms: лучевая диагностика, fine-needle aspiration, thyroid cancer, ultrasound, thyroid nodules, diagnostic radiology, тонкоигольная аспирационная биопсия, рак щитовидной железы, ультразвуковое исследование, узлы щитовидной железы
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/976/625; Durante C., Hegedüs L., Czarniecka A. et al. 2023 European Thyroid Association clinical practice guidelines for thyroid nodule management. Eur Thyroid J 2023;12(5):e230067. DOI:10.1530/ETJ-23-0067; Guth S., Theune U., Aberle J. et al. Very high prevalence of thyroid nodules detected by high frequency (13 MHz) ultrasound examination. Eur J Clin Invest 2009;39(8):699–706. DOI:10.1111/j.1365-2362.2009.02162.x; Мельниченко Г.А., Трошина Е.А., Платонова Н.М. И др. Йододефицитные заболевания щитовидной железы в Российской Федерации: современное состояние проблемы. Аналитический обзор публикаций и данных официальной государственной статистики (Росстат). Consilium medicum 2019;21(4):14–20. DOI:10.26442/20751753.2019.4.190337; Качко В.А., Семкина Г.В., Платонова Н.М. И др. Диагностика новообразований щитовидной железы. Эндокринная хирургия 2018;12(3):109–27. DOI:10.14341/serg9977; Бельцевич Д.Г., Мудунов А.М., Ванушко В.Э. И др. Дифференцированный рак щитовидной железы. Современная онкология 2020;22(4):30–44. DOI:10.26442/18151434.2020.4.200507; Бельцевич Д.Г., Ванушко В.Э., Мельниченко Г.А. И др. Клинические рекомендации. Диагностика и лечение (много)узлового зоба у взрослых. Эндокринная хирургия 2016;10(1):31–42. DOI:10.14341/serg201615-12; Чойнзонов Е.Л., Решетов И.В., Иванов С.А. И др. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению дифференцированного рака щитовидной железы у взрослых пациентов. Эндокринная хирургия 2022;16(2):5–29. DOI:10.14341/serg12792; Абросимов А.Ю., Абдулхабирова Ф.М. Cистема классификации цитопатологии щитовидной железы Бетесда (пересмотр 2017 г.). Перспективы диагностики опухолей щитовидной железы и оптимизация тактики ведения пациентов. Новости клинической цитологии России 2017;21(4):23–31.; Абросимов А.Ю. Новая международная гистологическая классификация опухолей щитовидной железы. Архив патологии 2018;80(1):37–45.; Александров Ю.К., Шулутко А.М., Сенча А.Н. И др. Диагностическая тактика при узловых образованиях щитовидной железы на основе системы тирадс. Московский хирургический журнал 2015;3:24–6.; Александров Ю.К., Яновская Е.А., Шубин Л.Б., Дякив А.Д. Эффективность стратификационных систем в диагностике узловых заболеваний щитовидной железы. Проблемы эндокринологии 2019;65(4):216–26. DOI:10.14341/probl10087; Борсуков А.В. Анализ американской и европейской версии TI-RADS-2017: возможности воспроизводимости в кабинете ультразвуковой диагностики. Вестник новых медицинских технологий 2019;26(2):25–8.; Борсуков А.В. Комментарии и обсуждение Всемирных рекомендаций 2015 года по эластографии щитовидной железы. Эндокринная хирургия 2017;11(2):61–9. DOI:10.14341/serg2017261-69; Воробьев С.Л. Морфологическая диагностика заболеваний щитовидной железы. СПб.: Коста, 2014. 104 c.; Тимофеева Л.А., Тухбатуллин М.Г., Сенча А.Н. Ультразвуковая эластография в дифференциальной диагностике узловой патологии щитовидной железы. Кубанский научный медицинский вестник 2019;26(4):45–55. DOI:10.25207/1608-6228-2019-26-4-45-55; Тимофеева Л.А., Насруллаев М.Н., Алешина Д.Г. И др. Сравнительный анализ методик мультипараметрического ультразвукового исследования в дифференциальной диагностике рака щитовидной железы. Acta Medica Eurasica 2022;3:47–53. DOI:10.47026/2413-4864-2022-3-47-53; Фисенко Е.П., Сыч Ю.П., Ветшева Н.Н. К вопросу о классификации TI-RADS и стратификации признаков рака щитовидной железы по данным ультразвукового исследования. Медицинская визуализация 2017;5:29–38. DOI:10.24835/1607-0763-2017-5-29-38; Horvath E., Majlis S., Rossi R. et al. An ultrasonogram reporting system for thyroid nodules stratifying cancer risk for clinical management. J Clin Endocrinol Metab 2009;94(5):1748–51. DOI:10.1210/jc.2008-172; Mauri G., Hegedüs L., Bandula S. et al. European Thyroid Association and Cardiovascular and Interventional Radiological Society of Europe 2021 clinical practice guideline for the use of minimally invasive treatments in malignant thyroid lesions. Eur Thyroid J 2021;10(3):185–97. DOI:10.1159/000516469; Papini E., Monpeyssen H., Frasoldati A., Hegedüs L. et al. 2020 European thyroid association clinical practice guideline for the use of image-guided ablation in benign thyroid nodules. Eur Thyroid J 2020;9(4):172–85. DOI:10.1159/000508484; Howitt B., Chang S., Eszlinger M. et al. Fine-needle aspiration diagnoses of noninvasive follicular variant of papillary thyroid carcinoma. Am J Clin Pathol 2015;144(6):850–7. DOI:10.1309/AJCPEIE12POICULI; Russ G., Bonnema S.J., Ergogan M.F. et al. European Thyroid Association guidelines for ultrasound malignancy risk stratification of thyroid nodules in adults: the EU-TIRADS. Eur Thyroid J 2017;6(5):225–37. DOI:10.1159/000478927; Machała E., Sopinski J., Iavorska I. et al. Correlation of fine needle aspiration cytology of thyroid gland with histopatological results. Polski Przegl Chir 2018;90(6):6–13. DOI:10.5604/01.3001.0012.4712; Grani G., Zatelli M.C., Alfò M. et al. Real-world performance of the American Thyroid Association risk estimates in predicting 1-year differentiated thyroid cancer outcomes: a prospective multicenter study of 2000 patients. Thyroid 2021;31(2):264–71. DOI:10.1089/thy.2020.0272; Grani G., Zatelli M.C., Alfò M. et al. Contemporary thyroid nodule evaluation and management. J Clin Endocrinol Metab 2020;105(9):2869–83. DOI:10.1210/clinem/dgaa322; Lamartina L., Durante C., Lucisano G. et al. Are evidence-based guidelines reflected in clinical practice? An analysis of prospectively collected data of the Italian Thyroid Cancer Observatory. Thyroid 2017;27(12):1490–7. DOI:10.1089/thy.2017.0299; Mathonnet M., Cuerq A., Tresallet C. et al. What is the care pathway of patients who undergo thyroid surgery in France and its potential pitfalls? A national cohort. BMJ open 2017;7(4):e013589. DOI:10.1136/bmjopen-2016-013589; Ding M., Tang X., Cui D. et al. Clinical outcomes of ultrasoundguided radiofrequency ablation for the treatment of primary papillary thyroid microcarcinoma. Clin Radiol 2019;74(9):712–7. DOI:10.1016/j.crad.2019.05.012; Lim H.K., Cho S.J., Baek J.H. et al. US-guided radiofrequency ablation for low-risk papillary thyroid microcarcinoma: efficacy and safety in a large population. Korean J Radiol 2019;20(12):1653. DOI:10.3348/kjr.2019.0192; Rossi E.D., Adeniran A.J., Faquin W.C. Pitfalls in thyroid cytopathology. Surgical Pathol Clin 2019;12(4):865–81. DOI:10.1016/j.path.2019.08.001; Yang J., Schnadig V., Logrono R., Wasserman P.G. Fine‐needle aspiration of thyroid nodules: a study of 4703 patients with histologic and clinical correlations. Cancer 2007;111(5):306–15. DOI:10.1002/cncr.22955; Trimboli P., Treglia G., Guidobaldi L. et al. Detection rate of FNA cytology in medullary thyroid carcinoma: a meta-analysis. Clin Endocrinol (Oxf) 2015;82(2):280–5. DOI:10.1111/cen.12563; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/976
-
4Academic Journal
Authors: V. А. Yarovaya, А. V. Golanov, V. V. Nazarova, А. R. Zaretskii, I. А. Levashov, А. К. Kulagina, Т. V. Melnikova, А. D. Matyaeva, А. А. Yarovoy, В. А. Яровая, А. В. Голанов, В. В. Назарова, А. Р. Зарецкий, И. А. Левашов, А. К. Кулагина, Т. В. Мельникова, А. Д. Матяева, А. А. Яровой
Source: Malignant tumours; Том 14, № 1 (2024); 83-91 ; Злокачественные опухоли; Том 14, № 1 (2024); 83-91 ; 2587-6813 ; 2224-5057
Subject Terms: клинический случай, fine needle aspiration biopsy, molecular testing, prognostic classes, Gamma Knife stereotactic radiosurgery, surveillance for metastatic disease, liver metastases, case report, тонкоигольная аспирационная биопсия, молекулярно-генетическое тестирование, прогностические классы, стереотаксическая радиохирургия «Гамма-нож», мониторинг метастатической болезни, метастазы в печени
File Description: application/pdf
Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1289/919; Яровой А.А., Голанов А.В., Ильялов С.Р. и соавт. Стереотаксическая радиохирургия «Гамма-нож» как альтернатива энуклеации у пациентов с увеальной меланомой (первые результаты). Офтальмохирургия 2014;2:74–80.; Яровой А.А., Демидов Л.В., Зарецкий А.Р., Яровая В.А., Назарова В.В., Чудакова Л.В. и др. Способ определения тактики ведения пациентов с увеальной меланомой: Патент № 2019136524. 2019; Singh A.D., Bergman L., Seregard S. Uveal melanoma: epidemiologic aspects. Ophthalmol Clin North Am 2005;18(1):75– 84. https://doi.org/10.1016/j.ohc.2004.07.002; Damato E.M., Damato B.E. Detection and time to treatment of uveal melanoma in the United Kingdom: an evaluation of 2384 patients. Ophthalmology 2012;119(8):1582–9. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2012.01.048; Яровой А.А., Малюгин Э.Б., Яровая В.А. и соавт. Тонкоигольная аспирационная биопсия внутриглазных образований. Офтальмохирургия 2020;1:51–56. https://doi.org/10.25276/0235-4160-2020-1-51-56.; Margo C.E. The collaborative ocular melanoma study: an overview. Cancer Control 2004;11(5):304–309. https://doi.org/10.1177/107327480401100504; Яровой А.А. Органосохраняющее и функционально-сберегающее лечение меланомы хориоидеи на основе брахитерапии с рутением-106 и лазерной транспупиллярной термотерапии. Дис. . д-ра мед. наук. М., 2010.; Shah A.A., Bourne T.D., Murali R. BAP1 protein loss by immunohistochemistry: a potentially useful tool for prognostic prediction in patients with uveal melanoma. Pathology 2013;45(7):651–6. https://doi.org/10.1097/PAT.0000000000000002; Damato B., Kacperek A., Errington D., Heimann H. Proton beam radiotherapy of uveal melanoma. Saudi J Ophthalmol 2013;27(3):151–157. https://doi.org/10.1016/j.sjopt.2013.06.014; Саакян С.В., Бородин Ю.И., Ширина Т.В. Оценка эффективности лечения и выживаемости больных увеальной меланомой после лечения медицинским узким протонным пучком. Радиология-практика 2012;6:49–53; Синявский О.А., Трояновский Р.Л., Иванов П.И. и соавт. Пятилетний опыт резекции увеальных меланом после стереотаксической радиохирургии с использованием гамма-ножа. Современные технологии в офтальмологии 2018;1:316–319.; Parker T., Rigney G., Kallos J., et al. Gamma knife radiosurgery for uveal melanomas and metastases: a systematic review and meta-analysis. Lancet Oncol 2020;21(11):1526–1536. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(20)30459-9; Shields C.L., Say E.A. T., Hasanreisoglu M., et al. Personalized prognosis of uveal melanoma based on cytogenetic profile in 1059 patients over an 8-year period: the 2017 Harry S. Gradle Lecture. Ophthalmology 2017;124(10):1523– 1531. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2017.04.003; Cicinelli M.V., Nicola M.D., Gigliotti C.R., et al. Predictive factors of radio-induced complications in 194 eyes undergoing gamma knife radiosurgery for uveal melanoma. Acta Ophthalmol 2021;99(8):e1458-e1466. https://doi.org/10.1111/aos.14814; Яровая В.А. Прогностическая тонкоигольная аспирационная биопсия увеальной меланомы. Дис. . канд. ме. наук. М., 2020.; Kilic E., Naus N.C., van Gils W., et al. Concurrent loss of chromosome arm 1p and chromosome 3 predicts a decreased disease-free survival in uveal melanoma patients. Invest Ophthalmol Vis Sci 2005;46(7):2253–7. https://doi.org/10.1167/iovs.04-1460; Singh N., Bergman L., Seregard S., Singh A.D. Uveal melanoma: epidemiologic aspects. Clinical Ophthalmic Oncology. Uveal Tumors 2014:75–88. https://doi.org/10.1007/978-3-642-54255-8_6; Carvajal R.D., Schwartz G.K., Tezel T., et al. Metastatic disease from uveal melanoma: treatment options and future prospects. Br J Ophthalmol 2017;101(1):38–44. https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2016-309034; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1289
-
5Report
Subject Terms: иммуногистохимическое исследование, СППО, нейроэндокринная опухоль, endosonography, поджелудочная железа, immunohistochemical study, solid pseudopapillary neoplasm, cytological diagnostics, цитологическая диагностика, SPN, NET, НЭО, тонкоигольная аспирационная биопсия, fine-needle aspiration biopsy, эндосонография, pancreas, солидно-псевдопапиллярная опухоль, иммуноцитохимическое исследование, immunocytochemical study, neuroendocrine tumor
-
6
-
7Report
Subject Terms: образования поджелудочной железы, эндоскопическая ультрасонография, ROSE, pancreatic lesions, rapid on-site evaluation, быстрая оценка на месте, тонкоигольная аспирационная биопсия, rapid cytological diagnostics, fine-needle aspiration biopsy, цитологическое исследование, endoscopic ultrasonography
-
8Academic Journal
Authors: E. Kh. Gogieva, I. S. Romanov, E. E. Stanyakina, S. N. Berdnikov, E. L. Pimenova, A. I. Umarova, Э. Х. Гогиева, И. С. Романов, Е. Е. Станякина, С. Н. Бердников, Е. Л. Пименова, А. И. Умарова
Source: Siberian journal of oncology; Том 22, № 2 (2023); 5-13 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 2 (2023); 5-13 ; 2312-3168 ; 1814-4861
Subject Terms: высокодифференцированный рак щитовидной железы, fine-needle aspiration biopsy, highly differentiated thyroid cancer, тонкоигольная аспирационная биопсия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2523/1090; Sherman S.I. Thyroid carcinoma. Lancet. 2003; 361(9356): 501–11. doi:10.1016/s0140-6736(03)12488-9.; Злокачественные новообразования в России в 2020 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. М., 2021. 252 с.; Eun N.L., Son E.J., Kim J.A., Gweon H.M., Kang J.H., Youk J.H. Comparison of the diagnostic performances of ultrasonography, CT and fine needle aspiration cytology for the prediction of lymph node metastasis in patients with lymph node dissection of papillary thyroid carcinoma: A retrospective cohort study. Int J Surg. 2018; 51: 145–50. doi:10.1016/j.ijsu.2017.12.036.; Mazzaferri E.L., Kloos R.T. Clinical review 128: Current approaches to primary therapy for papillary and follicular thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab. 2001; 86(4): 1447–63. doi:10.1210/jcem.86.4.7407.; Khadra H., Mohamed H., Al-Qurayshi Z., Sholl A., Killackey M., Kandil E. Superior detection of metastatic cystic lymphadenopathy in patients with papillary thyroid cancer by utilization of thyroglobulin washout. Head Neck. 2019; 41(1): 225–9. doi:10.1002/hed.25488.; Liu R.B., Zhou D.L., Xu B.H., Yang X.H., Liu Q., Zhang X., Tang T., Ye Z.L., Li Y. Comparison of the diagnostic performances of US-guided fine needle aspiration cytology and thyroglobulin measurement for lymph node metastases in patients with diferentiated thyroid carcinoma: a meta-analysis. Eur Radiol. 2021; 31(5): 2903–14. doi:10.1007/s00330-020-07400-9.; Ton Eryilmaz O., Ucak R., Ozagari A.A., Kabukcuoglu F. Diagnostic value of lymph node fine-needle aspiration cytology. Cytojournal. 2021; 18: 8. doi:10.25259/Cytojournal_1_2020.; Pacini F., Fugazzola L., Lippi F., Ceccarelli C., Centoni R., Miccoli P., Elisei R., Pinchera A. Detection of thyroglobulin in fine needle aspirates of nonthyroidal neck masses: a clue to the diagnosis of metastatic diferentiated thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab. 1992; 74(6): 1401–4. doi:10.1210/jcem.74.6.1592886.; Bakuła-Zalewska E., Żyłka A., Długosińska J., Musiał E., Gałczyński J., Dedecjus M. Thyroglobulin measurements in washouts of fine-needle aspiration biopsy in the monitoring of patients with diferentiated thyroid carcinoma. Endokrynol Pol. 2021; 72(6): 601–8. doi:10.5603/EP.a2021.0077.; Li J., Zhang K., Liu X., Hao F., Liu Z., Wang Z. Cervical lymph node thyroglobulin measurement in washout of fine-needle aspirates for diagnosis of papillary thyroid cancer metastases. Br J Biomed Sci. 2016; 73(2): 79–83. doi:10.1080/09674845.2016.1173334.; Zhu X.H., Zhou J.N., Qian Y.Y., Yang K., Wen Q.L., Zhang Q.H., Xia L., Ge M.H., Sun C.X. Diagnostic values of thyroglobulin in lymph node fine-needle aspiration washout: a systematic review and meta-analysis diagnostic values of FNA-Tg. Endocr J. 2020; 67(2): 113–23. doi:10.1507/endocrj.EJ18-0558.; Jun H.H., Kim S.M., Kim B.W., Lee Y.S., Chang H.S., Park C.S. Overcoming the limitations of fine needle aspiration biopsy: detection of lateral neck node metastasis in papillary thyroid carcinoma. Yonsei Med J. 2015; 56(1): 182–8. doi:10.3349/ymj.2015.56.1.182.; Yu J., Song Y., Jiang Z. Usefulness of thyroglobulin in cervical lymph node fine-needle aspirations at initial thyroidectomy for the diagnosis of metastases in papillary thyroid cancer. Int J Clin Pharmacol Ther. 2017; 55(1): 85–8. doi:10.5414/CP202642.; Xiao J., Meng S., Zhang M., Li Y., Yan L., Li X., Yang Z., Zhang Y., Luo Y. Optimal method for detecting cervical lymph node metastasis from papillary thyroid cancer. Endocrine. 2023; 79(2): 342–8. doi:10.1007/s12020-022-03213-6.; Cignarelli M., Ambrosi A., Marino A., Lamacchia O., Campo M., Picca G., Giorgino F. Diagnostic utility of thyroglobulin detection in fine-needle aspiration of cervical cystic metastatic lymph nodes from papillary thyroid cancer with negative cytology. Thyroid. 2003; 13(12): 1163–7. doi:10.1089/10507250360731578.; Al-Hilli Z., Strajina V., McKenzie T.J., Thompson G.B., Farley D.R., Regina Castro M., Algeciras-Schimnich A., Richards M.L. Thyroglobulin Measurement in Fine-Needle Aspiration Improves the Diagnosis of Cervical Lymph Node Metastases in Papillary Thyroid Carcinoma. Ann Surg Oncol. 2017; 24(3): 739–44. doi:10.1245/s10434-016-5625-1.; Haugen B.R., Alexander E.K., Bible K.C., Doherty G.M., Mandel S.J., Nikiforov Y.E., Pacini F., Randolph G.W., Sawka A.M., Schlumberger M., Schuff K.G., Sherman S.I., Sosa J.A., Steward D.L., Tuttle R.M., Wartofsky L. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Diferentiated Thyroid Cancer: The American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Diferentiated Thyroid Cancer. Thyroid. 2016; 26(1): 1–133. doi:10.1089/thy.2015.0020.; Li F., Pan D., He Y., Wu Y., Peng J., Li J., Wang Y., Yang H., Chen J. Using ultrasound features and radiomics analysis to predict lymph node metastasis in patients with thyroid cancer. BMC Surg. 2020; 20(1): 315. doi:10.1186/s12893-020-00974-7.; Xing Z., Qiu Y., Yang Q., Yu Y., Liu J., Fei Y., Su A., Zhu J. Thyroid cancer neck lymph nodes metastasis: Meta-analysis of US and CT diagnosis. Eur J Radiol. 2020; 129. doi:10.1016/j.ejrad.2020.109103.; Melany M., Chen S. Thyroid Cancer: Ultrasound Imaging and Fine-Needle Aspiration Biopsy. Endocrinol Metab Clin North Am. 2017; 46(3): 691–711. doi:10.1016/j.ecl.2017.04.011.; Kahramangil B., Kose E., Donmez M., Aydin H., Reynolds J.P., Krishnamurthy V., Jin J., Shin J., Siperstein A., Berber E. Thyroglobulin washout from cervical lymph node fine-needle aspiration biopsies in patients with diferentiated thyroid cancer: an analysis of diferent expressions to use in post-total thyroidectomy follow-up. Surgery. 2020; 167(1): 34–9. doi:10.1016/j.surg.2019.05.083.; Martins-Costa M.C., Maciel R.M.B., Kasamatsu T.S., Nakabashi C.C.D., Camacho C.P., Crispim F., Ikejiri E.S., Mamone M.C.O., Andreoni D.M., Biscolla R.P.M. Clinical impact of thyroglobulin (Tg) and Tg autoantibody (TgAb) measurements in needle washouts of neck lymph node biopsies in the management of patients with papillary thyroid carcinoma. Arch Endocrinol Metab. 2017; 61(2): 108–14. doi:10.1590/2359-3997000000241.; da Silveira Duval M.A., Zanella A.B., Cristo A.P., Faccin C.S., Graudenz M.S., Maia A.L. Impact of Serum TSH and Anti-Thyroglobulin Antibody Levels on Lymph Node Fine-Needle Aspiration Thyroglobulin Measurements in Diferentiated Thyroid Cancer Patients. Eur Thyroid J. 2017; 6(6): 292–7. doi:10.1159/000479682.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2523
-
9Academic Journal
Authors: N. V. Severskaya, I. V. Chebotareva, N. V. Zhelonkina, A. S. Belyakova, P. A. Isaev, V. V. Polkin, A. A. Ilyin, S. A. Ivanov, A. D. Kaprin, Н. В. Северская, И. В. Чеботарева, Н. В. Желонкина, А. С. Белякова, П. А. Исаев, В. В. Полькин, А. А. Ильин, С. А. Иванов, А. Д. Каприн
Source: Siberian journal of oncology; Том 22, № 5 (2023); 60-70 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 5 (2023); 60-70 ; 2312-3168 ; 1814-4861
Subject Terms: тонкоигольная аспирационная биопсия, CEA, medullary thyroid carcinoma, thyroid nodule, needle washout, fine needle aspiration biopsy, РЭА, медуллярный рак щитовидной железы, узел щитовидной железы, смыв из иглы
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2761/1159; Wells S.A. Jr., Asa S.L., Dralle H., Elisei R., Evans D.B., Gagel R.F., Lee N., Machens A., Moley J.F., Pacini F., Raue F., Frank-Raue K., Robinson B., Rosenthal M.S., Santoro M., Schlumberger M., Shah M., Waguespack S.G.; American Thyroid Association Guidelines Task Force on Medullary Thyroid Carcinoma. Revised American Thyroid Association guidelines for the management of medullary thyroid carcinoma. Thyroid. 2015; 25(6): 567–610. doi:10.1089/thy.2014.0335.; Costante G., Meringolo D. Calcitonin as a biomarker of C cell disease: recent achievements and current challenges. Endocrine. 2020; 67(2): 273–80. doi:10.1007/s12020-019-02183-6.; Elisei R. Routine serum calcitonin measurement in the evaluation of thyroid nodules. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2008; 22(6): 941–53. doi:10.1016/j.beem.2008.09.008.; Северская Н.В., Чойнзонов Е.Л., Решетов И.В., Иванов С.А., Поляков А.П., Кропотов М.А., Мудунов А.М., Полькин В.В., Исаев П.А., Ильин А.А., Бельцевич Д.Г., Ванушко В.Э., Румянцев П.О., Мельниченко Г.А., Алымов Ю.В., Романов И.С., Игнатова А.В., Бородавина Е.В., Крылов В.В., Шуринов А.Ю., Раджабова З.А., Кульбакин Д.Е., Невольских А.А., Геворков А.Р., Хмелевский Е.В., Кутукова С.И., Гузь А.О., Слепцов И.В., Черников Р.А., Степанова А.М., Фалалеева Н.А., Подвязников С.О., Рубцова Н.А., Рудык А.Н., Мусин Ш.И., Гулидов И.А., Владимирова Л.Ю., Семиглазова Т.Ю., Агабабян Т.А., Костромина Е.В. Проект клинических рекомендаций по диагностике и лечению медуллярного рака щитовидной железы у взрослых пациентов. Эндокринная хирургия. 2022; 16(3): 5–23. doi:10.14341/serg12794.; Trimboli P., Giannelli J., Marques B., Piccardo A., Crescenzi A., Deandrea M. Head-to-head comparison of FNA cytology vs. calcitonin measurement in FNA washout fluids (FNA-CT) to diagnose medullary thyroid carcinoma. A systematic review and meta-analysis. Endocrine. 2022; 75(1): 33–9. doi:10.1007/s12020-021-02892-x.; Северская Н.В., Ильин А.А., Чеботарева И.В., Желонкина Н.В., Исаев П.А., Полькин В.В., Иванов С.А., Каприн А.Д. Исследование кальцитонина у пациентов с узловыми образованиями щитовидной железы для скрининга медуллярного рака: «серая зона». Опухоли головы и шеи. 2022; 12(2): 79–88. doi:10.17650/2222-1468-2022-12-2-79-88.; Gharib H., Papini E., Garber J.R., Duick D.S., Harrell R.M., Hegedüs L., Paschke R., Valcavi R., Vitti P.; AACE/ACE/AME Task Force on Thyroid Nodules. American Association of Clinical Endocrinologists, American College of Endocrinology, and Associazione Medici Endocrinologi Medical Guidelines for Clinical Practice for the Diagnosis and Management of Thyroid Nodules--2016 Update. Endocr Pract. 2016; 22(5): 622–39. doi:10.4158/EP161208.GL.; Diazzi C., Madeo B., Taliani E., Zirilli L., Romano S., Granata A.R., De Santis M.C., Simoni M., Cioni K., Carani C., Rochira V. The diagnostic value of calcitonin measurement in wash-out fluid from fine-needle aspiration of thyroid nodules in the diagnosis of medullary thyroid cancer. Endocr Pract. 2013; 19(5): 769–79. doi:10.4158/EP12420.OR.; Kihara M., Hirokawa M., Kudo T., Hayashi T., Yamamoto M., Masuoka H., Higashiyama T., Fukushima M., Ito Y., Miya A., Miyauchi A. Calcitonin measurement in fine-needle aspirate washout fluid by electrochemiluminescence immunoassay for thyroid tumors. Thyroid Res. 2018; 11: 15. doi:10.1186/s13044-018-0059-4.; Baloch Z.W., LiVolsi V.A. C-Cells and their Associated Lesions and Conditions: A Pathologists Perspective. Turk Patoloji Derg. 2015; 31(s1): 60–79. doi:10.5146/tjpath.2015.01315.; Machens A., Ukkat J., Hauptmann S., Dralle H. Abnormal carcinoembryonic antigen levels and medullary thyroid cancer progression: a multivariate analysis. Arch Surg. 2007; 142(3): 289–93. doi:10.1001/archsurg.142.3.289.; Trimboli P., Guidobaldi L., Locuratolo N., Piro F.R., Giordano M., Giovanella L. Serum markers measured in FNA fluids of medullary thyroid carcinoma occurring as a cyst. Int J Biol Markers. 2016; 31(2): 224–7. doi:10.5301/jbm.5000205.; Trimboli P., Cremonini N., Ceriani L., Saggiorato E., Guidobaldi L., Romanelli F., Ventura C., Laurenti O., Messuti I., Solaroli E., Madaio R., Bongiovanni M., Orlandi F., Crescenzi A., Valabrega S., Giovanella L. Calcitonin measurement in aspiration needle washout fluids has higher sensitivity than cytology in detecting medullary thyroid cancer: a retrospective multicentre study. Clin Endocrinol (Oxf). 2014; 80(1): 135–40. doi:10.1111/cen.12234.; Boi F., Maurelli I., Pinna G., Atzeni F., Piga M., Lai M.L., Mariotti S. Calcitonin measurement in wash-out fluid from fine needle aspiration of neck masses in patients with primary and metastatic medullary thyroid carcinoma. J Clin Endocrinol Metab. 2007; 92(6): 2115–8. doi:10.1210/jc.2007-0326.; de Crea C., Raffaelli M., Maccora D., Carrozza C., Canu G., Fadda G., Bellantone R., Lombardi C.P. Calcitonin measurement in fine-needle aspirate washouts vs. cytologic examination for diagnosis of primary or metastatic medullary thyroid carcinoma. Acta Otorhinolaryngol Ital. 2014; 34(6): 399–405.; Liu Z., Zhou W., Han R., Zhou W., Zhang J., Li H., Wan Z., Jin Y., Shen L., Zhou Y., Wang S., Chen X., Ye L. Cytology versus calcitonin assay in fine-needle aspiration biopsy wash-out fluid (FNAB-CT) in diagnosis of medullary thyroid microcarcinoma. Endocrine. 2021; 74: 340–8. doi:10.1007/s12020-021-02759-1.; Turkdogan S., Forest V.I., Hier M.P., Tamilia M., Florea A., Payne R.J. Carcinoembryonic antigen levels correlated with advanced disease in medullary thyroid cancer. J Otolaryngol Head Neck Surg. 2018; 47(1): 55. doi:10.1186/s40463-018-0303-x.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2761
-
10Academic Journal
Authors: E. V. Ryabchenko, Е. В. Рябченко
Source: Siberian journal of oncology; Том 22, № 4 (2023); 154-158 ; Сибирский онкологический журнал; Том 22, № 4 (2023); 154-158 ; 2312-3168 ; 1814-4861
Subject Terms: фолликулярная опухоль, autoimmune thyroiditis, fine needle aspiration biopsy, thyroidectomy, follicular tumor, аутоиммунный тиреодит, тонкоигольная аспирационная биопсия, тиреоидэктомия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2692/1151; Rhatigan R.M., Roque J.L., Bucher R.L. Mucoepidermoid carcinoma of the thyroid gland. Cancer. 1977; 39(1): 210–4. doi:10.1002/1097-0142-(197701)39:13.0.co;2-h.; Sim S.J., Ro J.Y., Ordonez N.G., Cleary K.R., Ayala A.G. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia of the thyroid: report of two patients, one with distant metastasis, and review of the literature. Hum Pathol. 1997; 28(9): 1091–6. doi:10.1016/s0046-8177(97)90064-2.; Chan J.K., Albores-Saavedra J., Battifora H., Carcangiu M.L., Rosai J. Sclerosing mucoepidermoid thyroid carcinoma with eosinophilia. A distinctive low-grade malignancy arising from the metaplastic follicles of Hashimoto’s thyroiditis. Am J Surg Pathol. 1991; 15(5): 438–48.; Hunt J.L., LiVolsi V.A., Barnes E.L. p63 expression in sclerosing mucoepidermoid carcinomas with eosinophilia arising in the thyroid. Mod Pathol 2004; 17: 526–9. doi:10.1038/modpathol.3800021.; Lai C.Y., Chao T.C., Lin J.D., Hsueh C. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia of thyroid gland in a male patient: a case report and literature review. Int J Clin Exp Pathol. 2015; 8(5): 5947–51.; Requena M., Percovich J.C., Sambo M.E., Andía V.M. Conservative Management of Sclerosing Mucoepidermoid Carcinoma with Eosinophilia of the Thyroid Gland: 12 Years Follow-Up after an Atypical Initial Therapy. Adv Diabetes Endocrinol 2017; 2(1): 2.; Pantola C., Kala S., Athar M., Thakur S. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia of the thyroid: A cytological dilemma. J Cytol. 2016; 33(1): 37–9. doi:10.4103/0970-9371.175511.; Ames E., Campbell M.J., Affy A., Krane J.F., Huang E.C. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia: Cytologic characterization of a rare distinct entity in the thyroid. Diagn Cytopathol. 2018; 46(7): 632–5. doi:10.1002/dc.23914.; Shehadeh N.J., Vernick J., Lonardo F., Madan Sh.K., Jacobs J.R., Yoo G.H., Kim H.E., Ensley J.F. Sclerosing mucoepidermoid carcinoma with eosinophilia of the thyroid: a case report and review of the literature. Am J Otolaryngol 2004; 25(1): 48–53. doi:10.1016/S0196-0709-(03)00096-6.; Sang-wook Son, Kye-ho Lee, Jai Hyuen Lee, Na-Hye Myong, Dong-soo Yoo. Mucoepidermoid Carcinoma with Distant Metastases to the Kidney, Adrenal Gland, Skull and Gluteus Maximus Muscle: a Case Report. Investig Magn Reson Imaging. 2016; 20(1): 66–70. doi:10.13104/imri.2016.20.1.66.; Toper M.H., Sarioglu S. Molecular Pathology of Salivary Gland Neoplasms: Diagnostic, Prognostic, and Predictive Perspective. Adv Anat Pathol. 2021; 28(2): 81–93. doi:10.1097/PAP.0000000000000291.; Healey W.V., Perzin K.H., Smith L. Mucoepidermoid carcinoma of salivary gland origin. Classifcation, clinical-pathologic correlation, and results of treatment. Cancer. 1970; 26(2): 368–88. doi:10.1002/1097-0142(197008)26:23.0.co;2-k.; Shafque K., Zhang P.J., Montone K.T., Song S., Livolsi V.A., Baloch Z. Pathologic grading of mucoepidermoid carcinomas of the salivary gland and its effect on clinicopathologic follow-up: an institutional experience. Hum Pathol. 2020; 98: 89–97. doi:10.1016/j.humpath.2020.02.001.; Hong D.S., Fakih M.G., Strickler J.H., Desai J., Durm G.A., Shapiro G.I., Falchook G.S., Price T.J., Sacher A., Denlinger C.S., Bang Y.J., Dy G.K., Krauss J.C., Kuboki Y., Kuo J.C., Coveler A.L., Park K., Kim T.W., Barlesi F., Munster P.N., Ramalingam S.S., Burns T.F., Meric-Bernstam F., Henary H., Ngang J., Ngarmchamnanrith G., Kim J., Houk B.E., Canon J., Lipford J.R., Friberg G., Lito P., Govindan R., Li B.T. KRASG12C Inhibition with Sotorasib in Advanced Solid Tumors. N Engl J Med. 2020; 383(13): 1207–17. doi:10.1056/NEJMoa1917239.; Loong H.H., Du N., Cheng C., Lin H., Guo J., Lin G., Li M., Jiang T., Shi Z., Cui Y., Jin X., Yao J., Xing Y., Yao M., Wang K., Mok T.S.K., Liu L. KRAS G12C mutations in Asia: a landscape analysis of 11,951 Chinese tumor samples. Transl Lung Cancer Res. 2020; 9(5): 1759–69. doi:10.21037/tlcr-20-455.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/2692
-
11Academic Journal
Authors: E. E. Stanyakina, I. S. Romanov, E. Kh. Gogieva, A. V. Ignatova, Yu. V. Alymov, K. D. Ilkaev, Е. Е. Станякина, И. С. Романов, Э. Х. Гогиева, А. В. Игнатова, Ю. В. Алымов, К. Д. Илькаев
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 12, № 3 (2022); 10-16 ; Опухоли головы и шеи; Том 12, № 3 (2022); 10-16 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2022-12-3
Subject Terms: высокодифференцированный рак щитовидной железы, fine-needle aspiration biopsy, cervical lymphadenopathy, highly differentiated thyroid cancer, тонкоигольная аспирационная биопсия, лимфаденопатия шеи
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/810/538; Dal Maso L., Tavilla A., Pacini F. et al. Survival of 86,690 patients with thyroid cancer: a population-based study in 29 European countries from EUROCARE-5. Eur J Cancer 2017;77:140–52. DOI:10.1016/j.ejca.2017.02.023; Злокачественные новообразования в России в 2015 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России, 2017. C. 33, 151.; Haugen B.R., Alexander E.K., Bible K.C. et al. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer: The American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid 2016;26(1):1–133. DOI:10.1089/thy.2015.0020; Зураева З.Т., Никанкина Л.В., Колесникова Г.С. и др. Определение тиреоглобулина в смыве из пункционной иглы в дифференциальной диагностике шейной лимфаденопатии у пациентов с высокодифференцированным раком щитовидной железы. Эндокринная хирургия 2019;13(1):17–25. DOI: https://doi.org/10.14341/serg9824; Бельцевич Д.Г., Ванушко В.Э., Румянцев П.О. и др. Россий кие клинические рекомендации по диагностике и лечению высокодифференцированного рака щитовидной железы у взрослых. Эндокринная хирургия 2017;11(1):6–27. DOI:10.14341/serg20171627; Chai Y.J., Suh H., Yi J.W. et al. Factors associated with the sensitivity of fineneedle aspiration cytology for the diagnosis of follicular variant papillary thyroid carcinoma. Head Neck 2016;38(1):E1467–71. DOI: https://doi.org/10.1002/hed.24261; Johnson N.A., Tublin M.E. Postoperative surveillance of differentiated thyroid carcinoma: rationale, techniques, and controversies. Radiolog 2008;249(2):429–44. DOI:10.1148/radiol.2492071313; Pacini F., Fugazzola L., Lippi F. et al. Detection of thyroglobulin in fine needle aspirates of nonthyroidal neck masses: a clue to the diagnosis of metastatic differentiated thyroid cancer. J Clin Endocrinol Metab 1992;74(6):1401–4. DOI:10.1210/jcem.74.6.1592886; Cooper S.D., Doherty G.M., Haugen B.R. et al. Revised American Thyroid Association management guidelines for patients with thyroid nodules and differentiated thyroid cancer. Thyroid 2009;19(11):1167–214. DOI:10.1089/thy.2009.0110; Stack B.C., Ferris R.L., Goldenberg D. et al. American Thyroid Association consensus review and statement regarding the anatomy, terminology, and rationale for lateral neck dissection in differentiated thyroid cancer. Thyroid 2012;22(5):501–8. DOI:10.1089/thy.2011.0312; Leenhardt L., Erdogan M.F., Hegedus L. et al. 2013 European Thyroid association guidelines for cervical ultrasound scan and ultrasound-guided techniques in the postoperative management of patients with thyroid cancer. Eur Thyroid J 2013;2(3):147–59. DOI:10.1159/000354537; Torres M., Neto S., Rosas R. et al. Thyroglobulin in the washout fluid of lymph-node biopsy: What is its role in the follow-up of differentiated thyroid carcinoma? Thyroid 2014;24(1):7–18. DOI:10.1089/thy.2013.0244; Baskin H.J. Detection of recurrent papillary thyroid carcinoma by thyroglobulin assessment in the needle washout by fine-needle aspiration of suspicious lymph nodes. Thyroid 2004;14(11):959–63. DOI:10.1089/thy.2004.14.959; Cignarelli M., Ambrosi A., Marino A. et al. Diagnostic utility of thyroglobulin detection in fine-needle aspiration of cervical cystic metastatic lymph nodes from papillary thyroid cancer with negative cytology. Thyroid 2003;13(12):1163–7. DOI:10.1089/10507250360731578; Uruno T., Miyauchi A., Shimizu K. et al. Usefulness of thyroglobulin measurement in fine-needle aspiration biopsy specimens for diagnosing cervical lymph node metastasis in patients with papillary thyroid cancer. World J Surg 2005;29(4):483–5. DOI:10.1007/s00268-004-7701-0; Jeon S.J., Kim E., Park J.S. et al. Diagnostic benefit of thyroglobulin measurement in fine-needle aspiration for diagnosing metastatic cervical lymph nodes from papillary thyroid cancer: correlations with US features. Korean J Radiol 2009;10(2):106–11. DOI:10.3348/kjr.2009.10.2.106; Sigstad E., Heilo A., Paus E. et al. The usefulness of detecting thyroglobulin in fine-needle aspirates from patients with neck lesions using a sensitive thyroglobulin assay. Diagn Cytopathol 2007;35(12):761–7. DOI:10.1002/dc.20726; Kim D.W., Jeon S.J., Kim C.G. Usefulness of thyroglobulin measurement in needle washouts of fine-needle aspiration biopsy for the diagnosis of cervical lymph node metastases from papillary thyroid cancer before thyroidectomy. Endocrine 2012;42(2):399–403. DOI:10.1007/s12020-012-9636-9; Boi F., Baghino G., Atzeni F. et al. The diagnostic value for differentiated thyroid carcinoma metastases of thyroglobulin (Tg) measurement in washout fluid from fine-needle aspiration biopsy of neck lymph nodes is maintained in the presence of circulating anti-Tg antibodies. J Clin Endocrinol Metab 2006;91(4):1364–9. DOI:10.1210/jc.2005-1705; Grani G., Fumarola A. Thyroglobulin in lymph node fine-needle aspiration washout: a systematic review and meta-analysis of diagnostic accuracy J Clin Endocrinol Metab 2014;99(6): 1970–82. DOI:10.1210/jc.2014-1098; Frasoldati A., Valcavi R. Challenges in neck ultrasonography: lymphadenopathy and parathyroid glands. Endocr Pract 2004;10(3):261–8. DOI:10.4158/EP.10.3.261; Spencer C.A., Bergoglio L.M., Kazarosyan M. et al. Clinical impact of thyroglobulin (Tg) and Tg autoantibody method differences on the management of patients with differentiated thyroid carcinomas. J Clin Endocrinol Metab 2005;90(10):5566–75. DOI:10.1210/jc.2005-0671; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/810
-
12Academic Journal
Authors: A. A. Musaelyan, S. V. Lapin, V. D. Nazarov, E. S. Kozorezova, S. L. Vorobyev, S. V. Orlov, А. А. Мусаелян, С. В. Лапин, В. Д. Назаров, Е. С. Козорезова, С. Л. Воробьев, С. В. Орлов
Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 12, № 2 (2022); 71-78 ; Опухоли головы и шеи; Том 12, № 2 (2022); 71-78 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2022-12-2
Subject Terms: PAX8 / PPARG, molecular genetic diagnostics, fine needle aspiration biopsy, Bethesda IV, BRAF, TERT, RAS, RET / PTC, молекулярно-генетическая диагностика, тонкоигольная аспирационная биопсия
File Description: application/pdf
Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/779/533; Valderrabano P., McIver B. Evaluation and management of indeterminate thyroid nodules: the revolution of risk stratification beyond cytological diagnosis. Cancer Control 2017;24(5):1073274817729231-1073274817729231. DOI:10.1177/1073274817729231.; Partyka K.L., Trevino K., Randolph M.L. et al. Risk of malignancy and neoplasia predicted by three molecular testing platforms in indeterminate thyroid nodules on fine-needle aspiration. Diagn Cytopathol 2019 2019;47(9):853-62. DOI:10.1002/dc.24250.; Cibas E.S., Ali S.Z. The 2017 Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopatho-logy. Thyroid 2017;17(11):1341-6. DOI:10.1089/thy.2017.0500.; Steward D.L., Carty S.E., Sippel R.S. et al. Performance of a multigene genomic classifier in thyroid nodules with indeterminate cytology: a prospective blinded multicenter study. JAMA Oncol 2019;5(2):204-12. DOI:10.1001/jamaoncol.2018.4616.; Ravella L., Lopez J., Descotes F. et al. Cytological features and nuclear scores: diagnostic tools in preoperative fine-needle aspiration of indeterminate thyroid nodules with RAS or BRAF K601E mutations? Cytopathology 2021;32(1):37-44. DOI:10.1111/cyt.12904.; WHO classification of tumours of endocrine organs. Ed. by G. Kloppel, A. Couvelard, R.H. Hruban et al. Lyon, Fr World Heal Organ, 2017.; Haugen B.R., Alexander E.K., Bible K.C. et al. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer: the American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid 2016;26(1):1-133. DOI:10.1089/thy.2015.0020.; Bardet S., Goardon N., Lequesne J. et al. Diagnostic and prognostic value of a 7-panel mutation testing in thyroid nodules with indeterminate cytology: the SWEETMAC study. Endocrine 2021;71(2):407-17. DOI:10.1007/s12020-020-02411-4.; Nikiforov Y.E., Buddinger P.W., Thompson L.D. Diagnostic pathology and molecular genetics of the thyroid: a comprehensive guide for practicing thyroid pathology. 3rd edn. 2020.; Penna G.C., Vaisman F., Vaisman M. et al. Molecular markers involved in tumorigenesis of thyroid carcinoma: focus on aggressive histotypes. Cytogenet Genome Res 2016; 150(3-4):194-207. DOI:10.1159/000456576.; Jarry A., Masson D., Cassagnau E. et al. Real-time allele-specific amplification for sensitive detection of the BRAF mutation V600E. Mol Cell Probes 2004;18(5):349-52. DOI:10.1016/j.mcp.2004.05.004.; Liu T., Brown T.C., Juhlin C.C. et al. The activating TERT promoter mutation C228T is recurrent in subsets of adrenal tumors. Endocr Relat Cancer 2014;21(3): 427-34. DOI:10.1530/ERC-14-0016.; Бельцевич Д.Г., Мудунов А.М., Ванушко В.Э. и др. Дифференцированный рак щитовидной железы. Современная онкология 2020;22(4):30-44. DOI:10.26442/18151434.2020.4.200507. =; Trimboli P., Treglia G., Condorelli E. et al. BRAF-mutated carcinomas among thyroid nodules with prior indeterminate FNA report: a systematic review and metaanalysis. Clin Endocrinol (Oxf) 2016; 84(3):315-20. DOI:10.1111/cen.12806.; Pongsapich W., Chongkolwatana C., Poungvarin N. et al. BRAF mutation in cytologically indeterminate thyroid nodules: after reclassification of a variant thyroid carcinoma. Onco Targets Ther 2019;12:1465-73. DOI:10.2147/OTT.S190001.; Vuong H.G., Duong U.N.P., Altibi A.M.A. et al. A meta-analysis of prognostic roles of molecular markers in papillary thyroid carcinoma. Endocr Connect 2017;6(3):R8-17. DOI:10.1530/EC-17-0010.; Prete A., Borges de Souza P., Censi S. et al. Update on fundamental mechanisms of thyroid cancer. Front Endocrinol 2020;11:102. DOI:10.3389/fendo.2020.00102.; Decaussin-Petrucci M., Descotes F., Depaepe L. et al. Molecular testing of BRAF, RAS and TERT on thyroid FNAs with indeterminate cytology improves diagnostic accuracy. Cytopathology 2017;28(6):482-7. DOI:10.1111/cyt.12493.; Качко В.А., Ванушко В.Э., Платонова Н.М. и др. Возможности использования свободно циркулирующей ДНК плазмы крови в дооперационной диагностике при новообразованиях щитовидной железы. Проблемы эндокринологии 2019;65(6):400-7. DOI:10.14341/probl11311).; Nikiforov Y.E., Ohori N.P., Hodak S.P., et al. Impact of mutational testing on the diagnosis and management of patients with cytologically indeterminate thyroid nodules: a prospective analysis of 1056 FNA samples. J Clin Endocrinol Metab 2011;96(11):3390-7. DOI:10.1210/jc.2011-1469.; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/779
-
13Academic Journal
Authors: A. A. Shchegolev, A. A. Larin, A. S. Slobodyanik, E. V. Svetlov, R. R. Shafigullin, А. А. Щеголев, А. А. Ларин, А. С. Слободяник, Е. В. Светлов, Р. Р. Шафигуллин
Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 14 (2022); 114-119 ; Медицинский Совет; № 14 (2022); 114-119 ; 2658-5790 ; 2079-701X
Subject Terms: гемитиреоидэктомия, puncture fine needle aspiration biopsy, Bethesda classification, nodular goiter, thyroid cancer, TIRADS, thyroidectomy, hemithyroidectomy, пункционная тонкоигольная аспирационная биопсия, классификация Bethesda, узловой зоб, рак щитовидной железы, тиреоидэктомия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7028/6321; Тимофеева Л.А. Диагностическая тактика при узловых образованиях щитовидной железы. Казанский медицинский журнал. 2012;93(1): 103–107. https://doi.org/10.17816/KMJ2157.; Соколова Е.И., Сергеева Е.Д., Александров Ю.К. Формирование показаний для тонкоигольной аспирационной пункционной биопсии при субсантиметровых узлах щитовидной железы. Хирургия. Онкология. 2013;2(67):88–90. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=19041217.; Дедов И.И., Мельниченко Г.А., Фадеев В.В. Клинические рекомендации Российской ассоциации эндокринологов по диагностике и лечению узлового зоба. Проблемы эндокринологии. 2005;51(5):40–42. https://doi.org/10.14341/probl200551540-42.; Блувштейн Г.А., Греков В.В. Сложности морфологической диагностики заболеваний щитовидной железы. Новости хирургии. 2012;20(5):18–23. Режим доступа: https://surgery.by/details.php?&laq=ru&year=2012-&issue=5&number=3.; Щеголев А.А., Ларин А.А. Малоинвазивная хирургия щитовидной железы. Лечебное дело. 2008;(2):49–51. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=11731677.; Tanaka A., Hirokawa M., Higuchi M., Kanematsu R., Suzuki A., Kuma S. et al. Optimal needle size for thyroid fine needle aspiration cytology. Endocr J. 2019;66(2):143–147. https://doi.org/10.1507/endocrj.EJ18-0422.; Бельцевич Д.Г., Ванушко В.Э. Современные аспекты диагностики узлового зоба. Эндокринная хирургия. 2014;8(3):5–13. https://doi.org/10.14341/serg201435-13.; Russ G., Bonnema S.J., Erdogan M.F., Durante C., Ngu R., Leenhardt L. European thyroid association guidelines for ultrasound malignancy risk stratification of thyroid nodules in adults: the EU-TIRADS. Eur Thyroid J. 2017;6(5):225–237. https://doi.org/10.1159/000478927.; Зубов А.Д., Чирков Ю.Э., Чередниченко С.И., Губанов Д.М. THIRADS: ультразвуковая классификация узлов щитовидной железы. Променева діагностика, променева терапія. 2010;(3):33–38 Режим доступа: https://refdb.ru/look/1704612.html.; Russ G., Royer B., Bigorgne C., Rouxel A., Bienvenu-Perrard M., Leenhardt L. Prospective evaluation of thyroid imaging reporting and data system on 4550 nodules with and without elastography. Eur J Endocrinol. 2013;168(5):649–655. https://doi.org/10.1530/EJE-12-0936.; Shin J.H., Baek J.H., Chung J., Ha E.J., Kim J.H., Lee Y.H. et al. Ultrasonography diagnosis and imaging-based management of thyroid nodules: revised Korean society of thyroid radiology consensus statement and recommendations. Korean J Radiol. 2016;17(3):370–395. https://doi.org/10.3348/kjr.2016.17.3.370.; Remonti L.R., Kramer C.K., Leitao C.B., Pinto L.C., Gross J.L. Thyroid ultrasound features and risk of carcinoma: a systematic review and metaanalysis of observational studies. Thyroid. 2015;25(5):538–550. https://doi.org/org/10.1089/thy.2014.0353.; Kim E.K., Park C.S., Chung W.Y., Oh K.K., Kim D.I., Lee J.T., Yoo H.S. New sonоgraphic criteria for recommending fine-needle aspiration biopsy of nonpalpable solid nodules of the thyroid. Am J Roent Genol. 2002;178(3):687–691. https://doi.org/10.2214/ajr.178.3.1780687.; Дедов И.И., Мельниченко Г.А. (ред.). Эндокринология. Национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2013. 752 с. Режим доступа: https://uchi-fitness.ru/about/articles/endokrinologiya-2013.; Ветшев П.С., Габаидзе Д.И., Баранова О.В. Аденомы щитовидной железы. Проблемы эндокринологии. 2001;47(2):25–32. https://doi.org/10.14341/probl11421.; Кузнецов Н.А., Бронтвейн А.Т., Абулов С.Э. Ранняя диагностика и тактика лечения очаговых образований щитовидной железы. Российский медицинский журнал. 2002;(3):13–16.; Дымов А.А., Новиков В.А., Шевченко С.П., Таранов П.А. Совершенствование методов диагностики и лечения высокодифференцированных форм рака щитовидной железы. Сибирский онкологический журнал. 2007;(2):45–46. Режим доступа: https://readera.org/14054764.; Фисенко Е.П., Сенча А.Н. О необходимости внедрения классификации TI-RADS в России. Клиническая и экспериментальная тиреоидология. 2019;15(2):55–63. https://doi.org/10.14341/ket10115.; Митьков В.В., Иванишина Т.В., Митькова М.Д. Эластография сдвиговой волной в мультипараметрической ультразвуковой диагностике рака щитовидной железы. Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2016;(1):13–28. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25849360.; Фисенко Е.П., Сыч Ю.П., Ветшева Н.Н. К вопросу о классификации TI-RADS и стратификации признаков рака щитовидной железы по данным ультразвукового исследования. Медицинская визуализация. 2017;21(5):29–38. https://doi.org/10.24835/1607-0763-2017-5-29-38.; Tessler F.N., Middleton W.D., Grant E.G., Hoang J.K., Berland L.L., Teefey S.A. et al. ACR thyroid imaging, reporting and data system (TI-RADS): White paper of the ACR TI-RADS committee. J Am Coll Radiol. 2017;14(5): 587–595. https://doi.org/10.1016/j.jacr.2017.01.046.; Сыч Ю.П., Фисенко Е.П. Сравнительный анализ модификаций TI-RADS. Медицинская визуализация. 2018;22(5):14–21. https://doi.org/10.24835/1607-0763-2018-5-14-20.; Yoon J.H., Lee H.S., Kim E.К., Moon H.J., Kwak J.Y. Thyroid Nodules: Nondiagnostic Cytologic Results according to Thyroid Imaging Reporting and Data System before and after Application of the Bethesda System. Radiology. 2015;276:579–587. https://doi.org/org/10.1148/radiol.15142308.; Абросимов А.Ю., Абдулхабирова Ф.М. Система классификации цитопатологии щитовидной железы бетесда (пересмотр 2017 г.). Перспективы диагностики опухолей щитовидной железы и оптимизация тактики ведения пациентов. Новости клинической цитологии России. 2017;21(3–4):23–31. Режим доступа: https://www.ruscytology.su/_files/ugd/fb31ad_2f687b30a5f948faa0f5d44a2d291838.pdf.; Cibas E.S., Ali S.Z. The 2017 Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology. Journal of the American Society of Cytopathology. 2017;6(6):217–222. https://doi.org/10.1016/j.jasc.2017.09.002.; Cibas E.S., Ali S.Z. The Bethesda System For Reporting Thyroid Cytopathology. American Journal of Clinical Pathology. 2009;132(5): 658–665. https://doi.org/10.1309/AJCPPHLWMI3JV4LA.; Sheffield B.S., Masoudi H., Walker B., Wiseman S.M. Preoperative diagnosis of thyroid nodules using the Bethesda system for reporting thyroid cytopathology: a comprehensive review and meta-analysis. Exp Rev Endo Metab. 2014;9(2):97–110. https://doi.org/10.1586/17446651.2014.887435.
-
14Academic Journal
Authors: I. A. Levashov, A. A. Yarovoi, V. A. Yarovaya, E. S. Bulgakova, И. А. Левашов, А. А. Яровой, В. А. Яровая, Е. С. Булгакова
Source: Malignant tumours; Том 12, № 2 (2022); 29-35 ; Злокачественные опухоли; Том 12, № 2 (2022); 29-35 ; 2587-6813 ; 2224-5057
Subject Terms: метастазы, uveal melanoma, fine-needle aspiration biopsy, prognosis, metastases, увеальная меланома, тонкоигольная аспирационная биопсия, прогнозирование
File Description: application/pdf
Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/968/680; Midena E., Parrozzani R. Biopsies in Uveal Melanoma // Current Concepts in Uveal Melanoma. 2011. P. 81–95.; Kaliki S., Shields C., Shields J. Uveal melanoma: Estimating prognosis // Indian Journal of Ophthalmology. 2015. Vol. 63, № 2. P. 93.; Radivoyevitch T., Zabor E. C., Singh A. D. Uveal melanoma: Long-term survival // PLOS ONE. 2021. Vol. 16, № 5. P. e0250939.; Singh A. D., Turell M. E., Topham A. K. Uveal Melanoma: Trends in Incidence, Treatment, and Survival // Ophthalmology. 2011. Vol. 118, № 9. P. 1881–1885.; Саакян С. В., Ширина Т. В. Анализ метастазирования и выживаемости больных увеальной меланомой // Опухоли головы и шеи. 2012. № 2.; Яровая В. А. и др. Прогностическое значение клеточного типа увеальной меланомы // Архив патологии. 2021. Вып. 83, № 4. С. 14.; Яровой А. А. и др. Тонкостенная игла для биопсии внутриглазных новообразований и способ выбора угла среза рабочего конца иглы: Патент №2020109301. 2020.; Яровая В. А. и др. Молекулярное тестирование увеальной меланомы. Находки // Современные технологии в офтальмологии. 2018. № 4. С. 297–299.; Van den Bosch T. et al. Higher Percentage of FISH-Determined Monosomy 3 and 8q Amplification in Uveal Melanoma Cells relate to Poor Patient Prognosis // Investigative Opthalmology & Visual Science. 2012. Vol. 53, № 6. P. 2668.; Martin M, Maßhöfer L, Temming P et al. Exome sequencing identifies recurrent somatic mutations in EIF1AX and SF3B1 in uveal melanoma with disomy 3. // Nat Genet. 2013. Vol. 45, № 8. P. 933–936.; Gallie B. L. et al. Local Recurrence Significantly Increases the Risk of Metastatic Uveal Melanoma // Ophthalmology. 2016. Vol. 123, № 1. P. 86–91.; Bagger M. M. Intraocular biopsy of uveal melanoma Risk assessment and identification of genetic prognostic markers // Acta Ophthalmologica. 2018. Vol. 96. P. 1–28.; Martin R. C. G. et al. Is incisional biopsy of melanoma harmful? // The American Journal of Surgery. 2005. Vol. 190, № 6. P. 927–932.; Molenkamp B. G. et al. Non-Radical Diagnostic Biopsies Do Not Negatively Influence Melanoma Patient Survival // Annals of Surgical Oncology. 2007. Vol. 14, № 4. P. 1424–1430.; Char D. H. et al. Irradiated Uveal Melanomas: Cytopathologic Correlation With Prognosis // American Journal of Ophthalmology. 1996. Vol. 122, № 4. P. 509–513.; Chattopadhyay C. et al. Uveal melanoma: From diagnosis to treatment and the science in between // Cancer. 2016. Vol. 122, № 15. P. 2299–2312.; Accuracy of Diagnosis of Choroidal Melanomas in the Collaborative Ocular Melanoma Study // Archives of Ophthalmology. 1990. Vol. 108, № 9. P. 1268.; Frizziero L. et al. Uveal Melanoma Biopsy: A Review // Cancers. 2019. Vol. 11, № 8. P. 1075.; McCannel T. A., Chang M. Y., Burgess B. L. Multi-Year Follow-up of Fine-Needle Aspiration Biopsy in Choroidal Melanoma // Ophthalmology. 2012. Vol. 119, № 3. P. 606–610.; Development of Metastatic Disease After Enrollment in the COMS Trials for Treatment of Choroidal Melanoma // Archives of Ophthalmology. 2005. Vol. 123, № 12. P. 1639.; Eskelin S. Tumor doubling times in metastatic malignant melanoma of the uvea Tumor progression before and after treatment // Ophthalmology. 2000. Vol. 107, № 8. P. 1443–1449.; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/968
-
15Academic Journal
Authors: O. P. Dribnokhodova, E. A. Dunaeva, G. V. Leshkina, E. A. Yarygina, A. Yu. Bukharina, Ya. A. Voiciehovskaya, E. V. Borisova, S. K. Bormotova, A. I. Daoud, V. N. Khlavich, K. O. Mironov, О. П. Дрибноходова, Е. А. Дунаева, Г. В. Лешкина, Е. А. Ярыгина, А. Ю. Бухарина, Я. А. Войцеховская, Э. В. Борисова, С. К. Бормотова, А. И. Дауд, В. Н. Хлявич, К. О. Миронов
Source: Siberian journal of oncology; Том 20, № 5 (2021); 75-83 ; Сибирский онкологический журнал; Том 20, № 5 (2021); 75-83 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2021-20-5
Subject Terms: рак щитовидной железы, BRAF, oncogenetics, fine-needle aspiration biopsy, thyroid cancer, онкогенетика, тонкоигольная аспирационная биопсия
File Description: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1917/904; Zaman A., Wu W., Bivona T.G. Targeting Oncogenic BRAF: Past, Present, and Future. Cancers (Basel). 2019; 11(8): 1197. doi:10.3390/ cancers11081197.; Tate J.G., Bamford S., Jubb H.C., Sondka Z., Beare D.M., Bindal N., Boutselakis H., Cole C.G., Creatore C., Dawson E., Fish P., Harsha B., Hathaway C., Jupe S.C., Kok C.Y., Noble K., Ponting L., Ramshaw C.C., Rye C.E., Speedy H.E., Stefancsik R., Thompson S.L., Wang S., Ward S., Campbell P.J., Forbes S.A. COSMIC: the Catalogue Of Somatic Mutations In Cancer. Nucleic Acids Res. 2019; 47(D1): D941–D947. doi:10.1093/nar/gky1015.; Dumaz N., Jouenne F., Delyon J., Mourah S., Bensussan A., Lebbé C. Atypical BRAF and NRAS Mutations in Mucosal Melanoma. Cancers (Basel). 2019 Aug 8; 11(8): 1133. doi:10.3390/cancers11081133.; Ducreux M., Chamseddine A., Laurent-Puig P., Smolenschi C., Hollebecque A., Dartigues P., Samallin E., Boige V., Malka D., Gelli M. Molecular targeted therapy of BRAF-mutant colorectal cancer. Ther Adv Med Oncol. 2019 Jun 18; 11: 1758835919856494. doi:10.1177/1758835919856494.; Cibas E.S., Ali S.Z. The 2017 Bethesda System for Reporting Thyroid Cytopathology. Thyroid. 2017 Nov; 27(11): 1341–1346. doi:10.1089/thy.2017.0500.; Бельцевич Д.Г., Мудунов А.М., Ванушко В.Э., Румянцев П.О., Мельниченко Г.А., Кузнецов Н.С., Подвязников С.О., Алымов Ю.В., Поляков А.П., Фадеев В.В., Болотин М.В., Севрюков Ф.Е., Крылов В.В., Феденко А.А., Болотина Л.В., Жаров А.А., Фалалеева Н.А., Филоненко Е.В., Невольских А.А., Иванов С.А., Хайлова Ж.В., Геворкян Т.Г. Клинические рекомендации: Дифференцированный рак щитовидной железы. 2020. 47 c. [Интернет]. URL: http://cr.rosminzdrav.ru/#!/recomend/977 (дата обращения: 20.10.2020).; Patel K.N., Yip L., Lubitz C.C., Grubbs E.G., Miller B.S., Shen W., Angelos P., Chen H., Doherty G.M., Fahey T.J.3rd, Kebebew E., Livolsi V.A., Perrier N.D., Sipos J.A., Sosa J.A., Steward D., Tufano R.P., McHenry C.R., Carty S.E. The American Association of Endocrine Surgeons Guidelines for the Definitive Surgical Management of Thyroid Disease in Adults. Ann Surg. 2020 Mar; 271(3): e21–e93. doi:10.1097/ SLA.0000000000003580.; Haugen B.R., Alexander E.K., Bible K.C., Doherty G.M., Mandel S.J., Nikiforov Y.E., Pacini F., Randolph G.W., Sawka A.M., Schlumberger M., Schuff K.G., Sherman S.I., Sosa J.A., Steward D.L., Tuttle R.M., Wartofsky L. 2015 American Thyroid Association Management Guidelines for Adult Patients with Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer: The American Thyroid Association Guidelines Task Force on Thyroid Nodules and Differentiated Thyroid Cancer. Thyroid. 2016 Jan; 26(1): 1–133. doi:10.1089/thy.2015.0020.; Poller D.N., Glaysher S. Molecular pathology and thyroid FNA. Cytopathology. 2017 Dec; 28(6): 475–481. doi:10.1111/cyt.12492.; Миронов К.О., Дунаева Е.А., Дрибноходова О.П., Шипулин Г.А. Опыт использования систем генетического анализа на основе технологии пиросеквенирования. Справочник заведующего КДЛ. 2016; 5: 33–42.; Дунаева Е.А., Миронов К.О., Дрибноходова О.П., Субботина Т.Е., Башмакова Е.Е., Ольховский И.А., Шипулин Г.А. Количественное определение мутации V617F в гене JAK2 методом пиросеквенирования. Клиническая лабораторная диагностика. 2014; 59(11): 60–63.; Дрибноходова О.П., Миронов К.О., Дунаева Е.А., Маркелов М.Л., Войцеховская Я.А., Демидова И.А., Баринов А.А., Шипулин Г.А. Выявление активирующих соматических мутаций в гене KRAS методом пиросеквенирования. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; 6: 49–51.; Дунаева Е.А., Миронов К.О., Субботина Т.Н., Ольховский И.А., Шипулин Г.А. Разработка и сравнительная апробация методик для повышения чувствительности определения мутации V617F в гене JAK2 методом пиросеквенирования. Клиническая лабораторная диагностика. 2017; 62 (2): 125–128.; Armbruster D.A., Pry T. Limit of blank, limit of detection and limit of quantitation. Clin Biochem Rev. 2008 Aug; 29 Suppl 1(Suppl 1): S49–52.; Hou P., Liu D., Xing M. Functional characterization of the T1799- 1801del and A1799-1816ins BRAF mutations in papillary thyroid cancer. Cell Cycle. 2007 Feb 1; 6(3): 377–9. doi:10.4161/cc.6.3.3818.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1917
-
16Academic Journal
Authors: Яровой, А.А., Малюгин, Б.Э., Яровая, В.А., Мельникова, Н.В., Котельникова, А.В., Зарецкий, А.Р.
Source: FYODOROV JOURNAL OF OPHTHALMIC SURGERY ; No. 1 (2020): Офтальмохирургия; 51-56 ; ОФТАЛЬМОХИРУРГИЯ; № 1 (2020): Офтальмохирургия; 51-56 ; 2312-4970 ; 0235-4160
Subject Terms: тонкоигольная аспирационная биопсия, увеальная меланома, метастаз, лимфома, техника
File Description: application/pdf
-
17Academic Journal
Authors: Яровая, В.А., Шацких, А.В., Левашов, И.А., Яровой, А.А.
Source: FYODOROV JOURNAL OF OPHTHALMIC SURGERY ; No. 4 (2020): Офтальмохирургия; 63-66 ; ОФТАЛЬМОХИРУРГИЯ; № 4 (2020): Офтальмохирургия; 63-66 ; 2312-4970 ; 0235-4160
Subject Terms: увеальная меланома, тонкоигольная аспирационная биопсия, энуклеация, морфология, офтальмология
File Description: application/pdf
-
18Academic Journal
Source: Head and neck. Russian Journal. 9
Subject Terms: FNAB, cervical lymph nodes, метастазы, ultrasound, рак гортани, I–VII уровни шеи, 3. Good health, папиллярный рак щитовидной железы, тонкоигольная аспирационная биопсия, laryngeal cancer, papillary thyroid cancer, level I-VII cervical lymph nodes, лимфатические узлы шеи, metastases, ультразвуковое исследование
-
19Academic Journal
Authors: Musayev, J. S., Hasanov, A. B., Karimova, I. I.
Source: Морфологія, Vol 10, Iss 1, Pp 49-53 (2016)
Morphologia; Том 10, № 1 (2016); 49-53Subject Terms: QH301-705.5, salivary glands, bilateral involvement, fine needle aspiration biopsy, слюнные железы, двусторонние поражения, тонкоигольная аспирационная биопсия, двосторонні ураження, слинні залози, тонкоголкова аспіраційна біопсія, Biology (General), 3. Good health
File Description: application/pdf
Access URL: http://morphology.dma.dp.ua/article/download/137515/134472
https://doaj.org/article/101b6b98a8cc4e55a62fc31b594e840c
https://doaj.org/article/58a31807ae8844b4bfabb3cd24dbd282
http://morphology.dma.dp.ua/article/view/137515
http://morphology.dma.dp.ua/article/view/137515/134472
http://morphology.dma.dp.ua/article/view/137515 -
20Academic Journal
Authors: T. Y. Demidova, I. N. Drozdova, N. P. Potekhin, F. A. Orlov
Source: Медицинский совет, Vol 0, Iss 3, Pp 86-91 (2016)
Subject Terms: рак щитовидной железы, ultrasound, calcitonin, тонкоигольная аспирационная биопсия, thyroid cancer, fine-needle aspiration biopsy, Medicine, ультразвуковое исследование, узловой зоб, nodular goiter, кальцитонин, 3. Good health
Access URL: https://www.med-sovet.pro/jour/article/download/65/65
https://doaj.org/article/74d5963d19f64a3b8faf41e6b79d3abb
https://cyberleninka.ru/article/n/printsipy-diagnostiki-i-lecheniya-uzlovogo-zoba
https://www.med-sovet.pro/jour/article/download/65/65
https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/65