Αποτελέσματα αναζήτησης - "супрамолекулярные системы"

1

Academic Journal

Самособирающиеся наночастицы на основе производных тиакаликс [4]арена: синтез и биомедицинское применение

Θεματικοί όροι: супрамолекулярная самосборка, наночастицы, тетразамещенные производные, самособирающиеся наночастицы, производные тиакаликс [4]арена, п-трет-бутилтиакаликс[4]арен, самособирающиеся супрамолекулярные системы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.belstu.by/handle/123456789/56394

2

Conference

Тетрахлороаураты диарилиодония

Συγγραφείς: Алиярова, И. С., Солдатова, Наталья Сергеевна, Иванов, Д. М.

Συνεισφορές: Кукушкин, В. Ю.

Θεματικοί όροι: соли, супрамолекулярные системы, функциональные материалы, водородные связи, окислители, гипервалентный йод, галогенные связи

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XXII Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени выдающихся химиков Л. П. Кулёва и Н. М. Кижнера, посвященной 125-летию со дня основания Томского политехнического университета, Томск, 17-20 мая 2021 г. Т. 2. — Томск, 2021; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67668

Διαθεσιμότητα: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67668

View record from BASE

3

Conference

Тетрахлороаураты диарилиодония

Συνεισφορές: Кукушкин, В. Ю.

Θεματικοί όροι: гипервалентный йод, соли, окислители, супрамолекулярные системы, функциональные материалы, галогенные связи, водородные связи

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://earchive.tpu.ru/handle/11683/67668

View record at OpenAIRE

4

Conference

Аномальное поведение супрамолекулярных систем на основе четвертичных аммониевых солей и гидроксидов в водных растворах

Θεματικοί όροι: КРИОСКОПИЯ, ИОННЫЕ ПАРЫ, СУПРАМОЛЕКУЛЯРНЫЕ СИСТЕМЫ, ЭЛЕКТРОПРОВОДНОСТЬ, ЧАС, ГИДРОКСИДЫ, АССОЦИАЦИЯ

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://elar.urfu.ru/handle/10995/96609

5

Academic Journal

Diffusion-Ordered NMR Spectroscopy Application for Analysis of Polysaccharides ; Применение метода диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР для анализа полисахаридов

Συγγραφείς: N. E. Kuz’mina, S. V. Moiseev, E. Yu. Severinova, A. I. Luttseva, Н. Е. Кузьмина, С. В. Моисеев, Е. Ю. Северинова, А. И. Лутцева

Συνεισφορές: The study reported in this publication was carried out as part of publicly funded research project No. 056-00001-22-00 and was supported by the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products (R&D public accounting No. 121022400083-1), Работа выполнена в рамках государственного задания ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России № 056-00001-22-00 на проведение прикладных научных исследований (номер государственного учета НИР 121022400083-1)

Πηγή: Regulatory Research and Medicine Evaluation; Том 12, № 1 (2022); 24-40 ; Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств; Том 12, № 1 (2022); 24-40 ; 3034-3453 ; 3034-3062

Θεματικοί όροι: супрамолекулярные системы, polysaccharides, average molecular weight, self-diffusion coefficient, natural extracts, supramolecular systems, полисахариды, средняя молекулярная масса, коэффициент самодиффузии, природные экстракты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/405/634; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/405/231; Yanaki T, Ito W, Tabata K, Kojima T, Norisuye T, Takano N, Fujita H. Correlation between the antitumor activity of a polysaccharide schizophyllan and its triple-helical conformation in dilute aqueous solution. Biophys Chem. 1983;17(4):337–42. https://doi.org/10.1016/0301-4622(83)80018-0; Sasaki T, Takasuka N. Further study of the structure of lentinan, an anti-tumor polysaccharide from Lentinus edodes. Carbohydr Res. 1976;47(1):99–104. https://doi.org/10.1016/s0008-6215(00)83552-1; Sasaki T, Abiko N, Sugino Y, Nitta K. Dependence on chain length of antitumor activity of (1→3)-β-D-glucan from Alcaligenes faecalis var. myxogenes, IFO 13140, and its acid-degraded products. Cancer Res. 1978;38(2):379–83. PMID: 620409; Зуева ЕП, Лопатина КА, Разина ТГ, Гурьев АМ. Полисахариды в онкологии. Томск: Печатная мануфактура; 2010.; Медуницын НВ. Вакцинология. М.: Триада-Х; 2004.; Большаков ИН, Еремеев АВ, Черданцев ДВ, Каскаев АВ, Кириченко АК, Власов АА, Сапожников АН. Биодеградируемые раневые покрытия на основе полисахаридных полимеров в лечении обширной ожоговой травмы (клиническое исследование). Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2011;3:56–62.; Хлыстова ТС, Колаева АВ, Валуева МИ, Гусев ИВ. Природные полимеры для создания раневых покрытий. Сырье и упаковка. 2014;153(1):30–1.; Молчанов ИВ, Гольдина ОА, Горбачевский ЮВ. Растворы гидроксиэтилированного крахмала — современные и эффективные плазмозамещающие средства инфузионной терапии. М.: НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН; 1998.; Shu CH, Wen BJ, Lin KJ. Monitoring the polysaccharide quality of Agaricus blazei in submerged culture by examining molecular weight distribution and TNF-alpha release capability of macrophage cell line RAW 264.7. Biotechnol Lett. 2004;26(4):2061–4. PMID: 15055776; Беседнова НН, Кузнецова ТА, Запорожец ТС, Крыжановский СП, Гажа АК, Добряков ЕЮ, Звягинцева ТН. Воздействие полисахаридов из морских водорослей на патогенетические мишени Helicobacter pylori — новое направление в терапии и профилактике хеликобактерной инфекции. Антибиотики и химиотерапия. 2020;65(1–2):44–53. https://doi.org/10.37489/0235-2990-2020-65-1-2-44-53; Олтаржевская НД, Коровина МА, Кричевский ГЕ, Щедрина МА, Егорова ЕА. Возможности применения полисахаридов при лечении ран. Раны и раневые инфекции. Журнал им. проф. Б. М. Костюченка. 2019;6(2):24–31. https://doi.org/10.25199/2408-9613-2019-6-2-24-31; Kojima T, Tabata K, Itoh W, Yanaki T. Molecular weight dependence of the antitumor activity of schizophyllan. Agric Biol Chem. 1986;50(1):231–2. https://doi.org/10.1080/00021369.1986.10867365; Olafsdottir ES, Omarsdottir S, Paulsen BS, Wagner H. Immunologically active O6-branched (1→3)-β-glucan from the lichen Thamnolia vermicularis var. subuliformis. Phytomedicine. 2003;10(4):318–24. https://doi.org/10.1078/094471103322004811; Maeda YY, Chihara G. Lentinan and other antitumoral polysaccharides. In: Wagner H, ed. Immunomodulatory agents from plants. Basel: Birkhäuser Verlag; 1999. P. 203– 21. https://doi.org/10.1007/978-3-0348-8763-2_8; Tzianabos AO. Polysaccharide immunomodulators as therapeutic agents: structural aspects and biologic function. Clin Microbiol Rev. 2000;13(4):523–33. https://doi.org/10.1128/cmr.13.4.523-533.2000; Cozzolino R, Malvagna P, Spina E, Giori A, Fuzzati N, Anelli A, et al. Structural analysis of the polysaccharides from Echinacea angustifolia radix. Carbohydr Polym. 2006;65(3):263–72. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2006.01.012; Morris KF, Johnson Jr CS. Diffusion-ordered two-dimensional nuclear magnetic resonance spectroscopy. J Am Chem Soc. 1992;114(8):3139–41. https://doi.org/10.1021/ja00034a071; Price WS. Pulsed-field gradient nuclear magnetic resonance as a tool for studying translational diffusion: Part 1. Basic theory. Concept Magn Reson. 1997;9(5):299–336. https://doi.org/10.1002/(SICI)1099-0534(1997)9:5%3C299::AID-CMR2%3E3.0.CO;2-U; Johnson Jr CS. Diffusion ordered nuclear magnetic resonance spectroscopy: principles and applications. Prog Nucl Magn Reson Spectrosc. 1999;34(3–4):203–56.; Schulze BM, Watkins DL, Zhang J, Ghiviriga I, Castellano RK. Estimating the shape and size of supramolecular assemblies by variable temperature diffusion ordered spectroscopy. Org Biomol Chem. 2014;12(40):7932–6. https://doi.org/10.1039/c4ob01373e; Flory P. Princinples of Polymer Chemistry. New York: Cornell University Press; 1978.; Gounarides JS, Chen A, Shapiro MJ. Nuclear magnetic resonance chromatography: applications of pulse field gradient diffusion NMR to mixture analysis and ligand-receptor interactions. J Chromatogr B Biomed Sci Appl. 1999;725(1):79–90. https://doi.org/10.1016/s0378-4347(98)00512-x; Steiskal EO, Tanner JE. Spin diffusion measurements: spin echoes in presence of a time-dependent field gradient. J Chem Phys. 1965;42(1):288. https://doi.org/10.1063/1.1695690; Харламов СВ, Латыпов ШК. Современная диффузионно-упорядоченная спектроскопия ЯМР в химии супрамолекулярных систем: возможности и ограничения. Успехи химии. 2010;79(8):699–719. https://doi.org/10.1070/RC2010v079n08ABEH004148; Черныш ЮЕ, Волынкин ВА, Панюшкин ВТ, Кондаков ВИ, Коробов МС, Бородкин ГС. Применение селективных методов гетероядерной спектроскопии ЯМР в исследованиях многокомпонентных систем. Успехи химии. 2005;74(4):344–68. https://doi.org/10.1070/RC2005v074n04ABEH000892; Li D, Kagan G, Hopson R, Williard PG. Formula weight prediction by internal reference diffusion-ordered NMR spectroscopy (DOSY). J Am Chem Soc. 2009;131(15):5627– 34. https://doi.org/10.1021/ja810154u; Hsieh YSY, Chien C, Liao SKS, Liao SF, Hung WT, Yang WB, et al. Structure and bioactivity of the polysaccharides in medicinal plant Dendrobium huoshanense. Bioorg Med Chem. 2008;16(11):6054–68. https://doi.org/10.1016/j.bmc.2008.04.042; Pannakal ST, Jäger S, Duranton A, Tewari A, Saha S, Radhakrishnan A, et al. Longevity effect of a polysaccharide from Chlorophytum borivilianum on Caenorhabditis elegans and Saccharomyces cerevisiae. PLoS One. 2017;12(7):e0179813. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0179813; Zjawiony JK. Biologically active compounds from Aphyllophorales (polypore) fungi. J Nat Prod. 2004;67(2):300– 10. https://doi.org/10.1021/np030372w; Tomati U, Belardinelli M, Galli E, Iori V, Capitani D, Mannina L, et al. NMR characterization of the polysaccharidic fraction from Lentinula edodes grown on olive mill waste waters. Carbohydr Res. 2004;339(6):1129– 34. https://doi.org/10.1016/j.carres.2004.02.007; Breitenbach R, Silbernagl D, Toepel J, Sturm H, Broughton WJ, Sassaki GL, Gorbushina AA. Corrosive extracellular polysaccharides of the rock-inhabiting model fungus Knufia petricola. Extremophiles. 2018;(22):165– 75. https://doi.org/10.1007/s00792-017-0984-5; Politi M, Groves P, Chavez MI, Canada FJ, Jimeґnez-Barbero J. Useful applications of DOSY experiments for the study of mushroom polysaccharides. Carbohydrate Research. 2006;341(1):84–9. https://doi.org/10.1016/j.carres.2005.11.008; Ortner K, Sivanandam VN, Buchberger W, Müller N. Analysis of glycans in glycoproteins by diffusion-ordered nuclear magnetic resonance spectroscopy. Anal Bioanal Chem. 2007;388(1):173–7. https://doi.org/10.1007/s00216-007-1232-0; Yamanoi T, Oda Y, Katsuraya K. Separation of the αand β-anomers of carbohydrates by diffusion-ordered NMR spectroscopy. Magnetochemistry. 2017;3(4):38. https://doi.org/10.3390/magnetochemistry3040038; Szejtli J. Cyclodextrin Technology. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers; 1988. https://doi.org/10.1007/978-94-015-7797-7; Szejtli J, Osa T. Comprehensive Supramolecular Chemistry. 3. Cyclodextrins. Oxford: Pergamon; 1996.; Frömming KH, Szejtli J. Cyclodextrins in Pharmacy. Dordrecht: Kluwer Academic; 1994. https://doi.org/10.1007/978-94-015-8277-3; Rymdén R, Carlfors J, Stilbs P. Substrate binding to cyclodextrins in aqueous solution. A multicomponent self-diffusion study. J Incl Phenom Macrocycl Chem. 1983;(1):159–67. https://doi.org/10.1007/BF00656818; Wimmer R, Aachmann FL, Larsen KL, Petersen SB. NMR diffusion as a novel tool for measuring the association constant between cyclodextrin and guest molecules. Carbohydr Res. 2002;337(9):841–9. https://doi.org/10.1016/s0008-6215(02)00066-6; Bakkour Y, Vermeersch G, Morcellet M, Boschin F, MarteL B, Azaroual N. Formation of cyclodextrin inclusion complexes with doxycyclin-hyclate: NMR investigation of their characterisation and stability. J Incl Phenom Macrocycl Chem. 2006;54(1):109–14 https://doi.org/10.1007/s10847-005-5108-7; Kasprzak A, Poplawska M, Krawczyk H, Molchanov S, Kozlowski M, Bystrzejewski M. Novel non-covalent stable supramolecular ternary system comprising of cyclodextrin and branched polyethylenimine. J Incl Phenom Macrocycl Chem. 2017;87(1):53–65. https://doi.org/10.1007/s10847-016-0677-1; Danielsson J, Jarvet J, Damberg P, Gräslund A. Twosite binding of beta-cyclodextrin to the Alzheimer Abeta(1-40) peptide measured with combined PFG-NMR diffusion and induced chemical shifts. Biochemistry. 2004;43(20):6261–9. https://doi.org/10.1021/bi036254p; Ladiè R., Cosentino C., Tagliaro I, et al. Supramolecular structuring of hyaluronan-lactose-modified chitosan matrix: towards high-performance biopolymers with excellent biodegradation. Biomolecules. 2021;11(3):389. https://doi.org/10.3390/biom11030389; Senra TD, Khoukh A, Desbrières J. Interactions between quaternized chitosan and surfactant studied bydiffusion NMR and conductivity. Carbohydr Polym. 2017;156:182– 92. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2016.09.025; Peres I, Rocha S, Pereira MC, Coelho M, Rangel M, Ivanova G. NMR structural analysis of epigallocatechin gallate loaded polysaccharide Nanoparticles. Carbohydr Polym. 2010;82(3):861–6. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2010.06.007; Viel S, Capitani D, Mannina L, Segre A. Diffusion-ordered NMR spectroscopy: a versatile tool for the molecular weight determination of uncharged polysaccharides. Biomacromolecules. 2003;4(6):1843–7. https://doi.org/10.1021/bm0342638; Zhu Y, González-Ortiz G, Jiménez-Díaz R, Pérez-Trujillo M, Parella T, López-ColomP, et al. Exopolysaccharides from olive brines could reduce the adhesion of ETEC K88 to intestinal epithelial cells. Food Funct. 2018;(7):3884–94. https://doi.org/10.1039/C8FO00690C; Suárez ER, Syvitski R, Kralovec JA, Noseda MD, Barrow CJ, Ewart HS, et al. Immunostimulatory Polysaccharides from Chlorella pyrenoidosa. A new galactofuranan. measurement of molecular weight and molecular weight dispersion by DOSY NMR. Biomacromolecules. 2006;7(8):2368–76. https://doi.org/10.1021/bm060365x; Kao PF, Wang SH, Hung WT, Liao YH, Lin CM, Yang WB. Structural characterization and antioxidative activity of low-molecular-weights beta-1,3-glucan from the residue of extracted ganoderma lucidum fruiting bodies. J Biomed Biotechnol. 2012;2012:673764. https://doi.org/10.1155/2012/673764; Maina NH, Pitkänen L, Heikkinen S, Tuomainen P, Virkki L, Tenkanen M. Challenges in analysis of high-molar mass dextrans: Comparison of HPSEC, AsFlFFF and DOSY NMR spectroscopy. Carbohydr Polym. 2014;99:199–207. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2013.08.021; Maina N.H. Structure and macromolecular properties of Weissella confusa and Leuconostoc citreum dextrans with a potential application in sourdough. Ph.D. Dis. Helsinki: University of Helsinki; 2012.; Prieto A, Leal JA, Giménez-Abián MI, Canales A, Jiménez-Barbero J, Bernabé M. Isolation and structural determination of a unique polysaccharide containing mannofuranose from the cell wall of the fungus Acrospermum compressum. Glycoconj J. 2007;24(8):421–8. https://doi.org/10.1007/s10719-007-9032-5; Кузьмина НЕ, Моисеев СВ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Количественное определение средней молекулярной массы декстранов методом диффузионно упорядоченной спектроскопии ЯМР. Журнал аналитической химии. 2014;69(10):1047–53. https://doi.org/10.1134/S1061934814100086; Кузьмина НЕ, Моисеев СВ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Возможности применения метода диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР для количественной оценки средней молекулярной массы пуллуланов. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2013;(4):8–11.; Кузьмина НЕ, Моисеев СВ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Определение средней молекулярной массы гидроксиэтилкрахмалов методом диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР. Журнал аналитической химии. 2015;70(1):30–6. https://doi.org/10.1134/S1061934815010086; Моисеев СВ, Кузьмина НЕ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Валидация методики определения средней молекулярной массы декстранов методом диффузионно-упорядоченной спектроскопии. Химико-фармацевтический журнал. 2017;51(9):60–3. https://doi.org/10.1007/s11094-017-1701-5; Моисеев СВ, Кузьмина НЕ, Лутцева АИ. Разработка методик определения средневесовой молекулярной массы полисахаридов методом диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР. В кн.: Актуальные проблемы биологической и химической экологии: материалы VII международной научно-практической конференции. Москва: ИИУ МГОУ; 2021. C. 336–41.; Маклаков АИ, Скирда ВД, Фаткуллин НФ. Самодиффузия в растворах и расплавах. Казань: Изд. Казанского государственного университета; 1987.; Моисеев СВ, Кузьмина НЕ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Определение параметров молекулярно-массового распределения декстранов методом диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. 2014;(2):9–15.; Кузьмина НЕ, Моисеев СВ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Определение параметров молекулярно-массового распределения гидроксиэтилкрахмалов методом диффузионно-упорядоченной спектроскопии ЯМР. Журнал аналитической химии, 2015;70(7):727–33. https://doi.org/10.1134/S1061934815070060; Wu DH, Chen AD, Johnson CS. An improved diffusion-ordered spectroscopy experiment incorporating bipolar-gradient pulses. J Magn Reson. 1995;115(2):260–4. https://doi.org/10.1006/jmra.1995.1176; Jerschow A, Müller N. Suppression of convection artifacts in stimulatedecho diffusion experiments. Double-stimulated-echo experiments. J Magn Reson. 1997;125(2):372– 5 https://doi.org/10.1006/jmre.1997.1123; Нефедов ПП, Лавренко ПН. Транспортные методы в аналитической химии полимеров. Л.: Химия; 1979.; Моисеев СВ, Кузьмина НЕ, Крылов ВИ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Влияние молярного замещения на подвижность макромолекул гидроксиэтилкрахмалов в растворе. Химико-фармацевтический журнал. 2016;50(1):53–6. https://doi.org/10.1007/s11094-016-1399-9; Кузьмина НЕ, Моисеев СВ, Крылов ВИ, Князькина ОВ, Яшкир ВА, Меркулов ВА. Модификация методики определения молярного замещения гидроксиэтилкрахмалов методом 1 Н ЯМР-спектроскопии. Химико-фармацевтический журнал. 2015;49(8):44–8. https://doi.org/10.1007/s11094-015-1327-4; Прокофьев ЕП, Юрин ОА. Определение степени замещения и молярного замещения в оксиэтилированных крахмалах методом ЯМР 1 Н. Химико-фармацевтический журнал. 1990;24(7):82–4.; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/405