Showing 1 - 20 results of 93 for search '"соматосенсорные вызванные потенциалы"', query time: 0.63s Refine Results
  1. 1
    Academic Journal

    Source: Ukrainian Neurosurgical Journal, Vol 26, Iss 4, Pp 42-50 (2020)
    Ukrainian Neurosurgical Journal; Том 26, № 4 (2020); 42-50

    File Description: application/pdf

  2. 2
    Academic Journal

    Contributors: Работа выполнена в рамках проекта № 93022798 ФГБОУ ВО СПбГУ и поддержана грантом Российского научного фонда (РНФ) 22-15-00092. Работа выполнена с использованием оборудования ЦКП «Аналитический центр ФГБОУ ВО СПХФУ Минздрава России» в рамках соглашения № 075-15-2021-685 от 26.07.2021 при финансовой поддержке Минобрнауки России.

    Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 4 (2022); 190-200 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3660/2394; Muzyka IM, Estephan B. Somatosensory evoked potentials. Handb Clin Neurol. 2019; 160: 523-540. doi:10.1016/B978-0-44464032-1.00035-7; Алифирова В.М., Толмачев И.В., Королева Е.С., Кучерова К.С. Соматосенсорные вызванные потенциалы в оценке эффективности моторной реабилитации у пациентов с ишемическим инсультом. Анналы клинической и экспериментальной неврологии. 2020; 14(3): 77-81. doi:10.25692/ACEN.2020.3.10; Сысоев Ю.И., Крошкина К.А., Оковитый С.В. Особенности соматосенсорных вызванных потенциалов у крыс после черепно-мозговой травмы. Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2019; 105(6): 749-760. doi:10.1134/S0869813919060074; Sysoev YI, Prikhodko VA, Chernyakov RT, Idiyatullin RD, Musienko PE, Okovityi SV. Effects of alpha-2 adrenergic agonist mafedine on brain electrical activity in rats after traumatic brain injury. Brain Sci. 2021; 11(8): 981. doi:10.3390/brainsci11080981; Lopez MS, Vemuganti R. Modeling transient focal ischemic stroke in rodents by intraluminal filament method of middle cerebral artery occlusion. Methods Mol Biol. 2018; 1717: 101-113. doi:10.1007/978-1-4939-7526-6_9; Hu Q, Liu L, Zhou L, Lu H, Wang J, Chen X, et al. Effect of fluoxetine on HIF-1αNetrin/VEGF cascade, angiogenesis and neuroprotection in a rat model of transient middle cerebral artery occlusion. Exp Neurol. 2020; 329: 113312. doi:10.1016/j.expneurol.2020.113312; Miao Y, Wang R, Wu H, Yang S, Qiu Y. CPCGI confers neuroprotection by enhancing blood circulation and neurological function in cerebral ischemia/reperfusion rats. Mol Med Rep. 2019; 20(3): 2365-2372. doi:10.3892/mmr.2019.10472; Liu X, Liu J, Zhao S, Zhang H, Cai W, Cai M, et al. Interleukin-4 is essential for microglia/macrophage M2 polarization and longterm recovery after cerebral ischemia. Stroke. 2016; 47(2): 498-504. doi:10.1161/STROKEAHA.115.012079; Wu G, McBride DW, Zhang JH. Axl activation attenuates neuroinflammation by inhibiting the TLR/TRAF/NF-κB pathway after MCAO in rats. Neurobiol Dis. 2018; 110: 59-67. doi:10.1016/j.nbd.2017.11.009; Colli BO, Tirapelli DP, Carlotti CG Jr, Lopes Lda S, Tirapelli LF. Biochemical evaluation of focal non-reperfusion cerebral ischemia by middle cerebral artery occlusion in rats. Arq Neuropsiquiatr. 2008; 66(3B): 725-730. doi:10.1590/s0004-282x2008000500023; Cui D, Jia S, Yu J, Li D, Li T, Liu Y, et al. Alleviation of cerebral infarction of rats with middle cerebral artery occlusion by inhibition of aquaporin 4 in the supraoptic nucleus. ASN Neuro. 2020; 12: 1759091420960550. doi:10.1177/1759091420960550; Paxinos G, Watson C. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. 7th ed. Cambridge, MA: Academic Press; 2013.; Calloni RL, Winkler BC, Ricci G, Poletto MG, Homero WM, Serafini EP, et al. Transient middle cerebral artery occlusion in rats as an experimental model of brain ischemia. Acta Cir Bras. 2010; 25(5): 428-433. doi:10.1590/s0102-86502010000500008; Mazzini L, Pisano F, Zaccala M, Miscio G, Gareri F, Galante M. Somatosensory and motor evoked potentials at different stages of recovery from severe traumatic brain injury. Arch Phys Med Rehabil. 1999; 80(1): 33-39. doi:10.1016/s0003-9993(99)90304-0; Garkavenko VV, Voloshin MY, Limanskaya LI, Podol’skii MS, Karaban’IN. Parkinson’s disease and aging: Changes of somatosensory evoked potentials in humans. Neurophysiology. 1994; 26(2): 114-118. doi:10.1007/BF01053088; Bollen EL, Arts RJ, Roos RA, van der Velde EA, Buruma OJ. Somatosensory evoked potentials in Huntington’s chorea. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 1985; 62(4): 235-240. doi:10.1016/0168-5597(85)90001-2; Trenado C, Elben S, Friggemann L, Gruhn S, Groiss SJ, Vesper J, et al. Long-latency somatosensory evoked potentials of the subthalamic nucleus in patients with Parkinson’s disease. PLoS One. 2017; 12(1): e0168151. doi:10.1371/journal.pone.0168151; Noachtar S, Lüders HO, Dinner DS, Klem G. Ipsilateral median somatosensory evoked potentials recorded from human somatosensory cortex. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 1997; 104(3): 189-198. doi:10.1016/s0168-5597(97)00013-0; Schrafl-Altermatt M, Dietz V. Task-specific role of ipsilateral pathways: Somatosensory evoked potentials during cooperative hand movements. Neuroreport. 2014; 25(18): 1429-1432. doi:10.1097/WNR.0000000000000285; Nihashi T, Naganawa S, Sato C, Kawai H, Nakamura T, Fukatsu H, et al. Contralateral and ipsilateral responses in primary somatosensory cortex following electrical median nerve stimulation – an fMRI study. Clin Neurophysiol. 2005; 116(4): 842-848. doi:10.1016/j.clinph.2004.10.011; FujieW, KirinoT,Tomukai N, IwasawaT,Tamura A. Progressive shrinkage of the thalamus following middle cerebral artery occlusion in rats. Stroke. 1990; 21(10): 1485-1488. doi:10.1161/01.str.21.10.1485; Chang SJ, Cherng JH, Wang DH, Yu SP, Liou NH, Hsu ML. Transneuronal degeneration of thalamic nuclei following middle cerebral artery occlusion in rats. Biomed Res Int. 2016; 2016: 3819052. doi:10.1155/2016/3819052; Al-Rawi MA, Hamdan FB, Abdul-Muttalib AK. Somatosensory evoked potentials as a predictor for functional recovery of the upper limb in patients with stroke. J Stroke Cerebrovasc Dis. 2009; 18(4): 262-268. doi:10.1016/j.jstrokecerebrovasdis.2008.11.002; Shi H, Hu X, Leak RK, Shi Y, An C, Suenaga J, et al. Demyelination as a rational therapeutic target for ischemic or traumatic brain injury. Exp Neurol. 2015; 272: 17-25. doi:10.1016/j.expneurol.2015.03.017; Cameron MH, Horak FB, Herndon RR, Bourdette D. Imbalance in multiple sclerosis: A result of slowed spinal somatosensory conduction. Somatosens Mot Res. 2008; 25(2): 113-122. doi:10.1080/08990220802131127; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3660

  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    Source: The Russian Archives of Internal Medicine; Том 8, № 3 (2018); 209-214 ; Архивъ внутренней медицины; Том 8, № 3 (2018); 209-214 ; 2411-6564 ; 2226-6704 ; 10.20514/2226-6704-2018-8-3

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.medarhive.ru/jour/article/view/790/650; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/790/658; Табеева Г.Р. Фибромиалгия. В кн.: Избранные лекции по неврологии. Под ред. В.Л. Голубева. Эйдос Медиа, 2006; 23-27.; Dommerholt J., Grieve R., Hooks T., Layton M.A. A Critical Overview of the Current Myofascial Pain Literature. J. Bodyw Mov. Ther. 2015; 19 (4): 736-746.; Рыбак В.А., Курушина О.В., и др. Психофизиологические аспекты формирования хронических болевых синдромов. Вестник Волгоградского государственного медицинского университета. 2010; 2: 52-54.; Иваничев Г.А. Мануальная медицина. –ОАО ПИК Идель Пресс, 2008; 488 с.; Симонс Д.Г. Миофасциальные боли и дисфункции. Руководство по триггерным точкам. В 2 томах. Т. 1. Симонс Д.Г., Трэвелл Д.Г., Симонс Л.С.: Пер. с англ. — 2-е изд., переработанное и дополненное. — М.: Медицина, 2005; 1192 с.; Вейн А.М. Вегетативные расстройства: Клиника, диагностика, лечение. М.: «Медицинское информационное агентство», 2003; 752 с.; Иваничев Г.А. Мануальная медицина. М.: МЕДпресс — информ, 2003; 486 с.; Дуус П. Топический диагноз в неврологии. Дуус П. Перевод О. Пылаевой. Практическая медицина, Москва, 2014; 584 с.; Хабиров, Ф.А. Руководство по клинической неврологии Клиническая неврология позвоночника. Казань, 2003; 472 с.; Воробьева О.В. Скелетная мускулатура как причина локальных болевых синдромов. Consilium Medicum. 2012; 14(2): 39–42.; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/790

  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 62, № 3 (2017); 92-98 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 62, № 3 (2017); 92-98 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2017-62-3

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/505/511; Гузева В.И. Федеральное руководство по детской неврологии. М: СИМК. 2016; 656. [Guzeva V.I. Federal guidebook on pediatric neurology. Moscow: SIMK 2016; 656 (in Russ)]; Скоромец А.А., Скоромец А.П., Скоромец Т.А. Топическая диагностика заболеваний нервной системы. СПб: Политехника 2016; 623. [Skoromets A.A., Skoromets A.P., Skoromets T.A. Topic diagnostic of nervous system diseases. Saint-Petersburg: Politehnika 2016; 623 (in Russ)]; Скрипченко Н.В. Демиелинизирующие заболевания нервной системы у детей. М: «Комментарий» 2016’ 352. [Skripchenko N.V. Demyelinating disease of nervous system in children. Moscow: Kommentariy 2016; 352 (in Russ)]; Duquette P., Murray T.J., Pleines J., Ebers G.C., Sadovnick D., Weldon P., Warren S., Paty D.W., Upton A., Hader W. Multiple sclerosis in childhood: Clinical profile in 125 patients. J Pediatr 1987; 111: 359–363.; Sakai R.E., Feller D.J., Galetta K.M., Galetta S.L., Balcer L.J. Vision in Multiple Sclerosis ( MS): The Story, Structure- Function Correlations, and Models for Neuroprotection. J Neuroophthalmol 2011; 31(4): 362–373. DOI:10.1097/ WNO.0b013e318238937f.; Игнатова Ю.Н., Смагина И.В., Гридина А.О., Сидоренко В.А. Ретробульбарный неврит у больных рассеянным склерозом. Бюллетень сибирской медицины 2009; 8(3– 2): 115–117. [Ignatova Yu.N., Smagina I.V., Gridina A.O., Sidorenko V.A. Retrobulbar neuritis in patients with multiple sclerosis. Byulleten’ sibirskoj meditsiny 2009; 8(3–2): 115–117 (in Russ)]; Коваленко А.В., Бисага Г.Н., Коваленко И.Ю. Изменения зрительного анализатора при рассеянном склерозе, клиника и методы диагностики. Вестник Российской военно-медицинской академии 2012; 2: 128–135. [Kovalenko A.V., Bisaga G.N., Kovalenko I.Yu. Visual analyser in multiple sclerosis: clinic and diagnosis. Vestnik rossiyskoj voenno-medicinskoj academii. 2012; 2: 128–135 (in Russ)]; Команцев В.Н., Скрипченко Н.В., Войтенков В.Б., Савина М.В., Иванова Г.П. Вызванные потенциалы головного мозга при нейроинфекциях у детей. Журн инфектол 2013; 5(2): 55–62. [Komantsev V.N., Skripchenko N.V., Voitenkov V.B., Savina M.V., Ivanova G.P. Evoked potentials of the brain in children with neuroinfections. Zhurn infektol 2013; 5(2): 55–62 (in Russ)]; Dan B., Christiaens F., Christophe C., Dachy B. Transcranial Magnetic Stimulation and Other Evoked Potentials in Pediatric Multiple Sclerosis. Pediatric Neurology 2000; 22: 136–138.; Куренков А.Л., Быкова О.В., Маслова О.И., Бойко А.Н., Соколов П.Л., Никитин С.С. Применение транскраниальной магнитной стимуляции для оценки состояния кортико-спинального тракта у детей с рассеянным склерозом. Альманах клинической медицины. 2001; 4: 148–151. [Kurenkov A.L., Bykova O.V., Maslova O.I., Boyko A.N., Sokolov P.L., Nikitin S.S. Transcranial magnetic stimulation for cortico-spinal tract evaluation in children with multiple sclerosis. Almanah klinicheskoj meditsiny 2001; 4: 148–151 (in Russ)]; Polman C.H., Reingold S.C., Banwell B., Clanet M., Cohen J.A., Filippi M., Fujihara K., Havrdova E., Hutchinson M., Kappos L., et al. Diagnostic criteria for multiple sclerosis: 2010 revisions to the McDonald criteria. Ann Neurol 2011; 69: 292–302. DOI:10.1002/ana.22366.; Никитин С.С., Куренков А.Л. Магнитная стимуляция в диагностике и лечении болезней нервной системы. М: САШКО 2003; 378. [Nikitin S.S., Kurenkov A.L. Magnetic stimulation in diagnostic and treatment of nervous system diseases. Moscow: Sashko 2003; 378 (in Russ)]; Гнездицкий В.В., Пирадов М.А. Нейрофизиология комы и нарушения сознания. Иваново: ПресСто 2015; 528. [Gnezdicky V.V., Piradov M.A. Neurophysiology of coma and consciousness disturbances. Ivanovo: PresSto 2015; 528 (in Russ)]; Celesia G.G. Evoked potential techniques in the evaluation of visual function. J Clin Neurophysiol 1984; 31(1): 55–76.; Monden Y., Yamagata T., Kuroiwa Y., Takahashi T., Mori M., Fukuda T. et al. A case of ADEM with atypical MRI findings of a centrally-located long spinal cord lesion. Brain Dev 2012; 34: 380–383. DOI:10.1016/j.braindev.2011.06.010.; Sheremata W., Tornes L. Multiple sclerosis and the spinal cord. Neurol Clin 2013; 31(1): 55–77. DOI:10.1016/j. ncl.2012.09.007.; Visudtibhan A., Tuntiyathorn L., Vaewpanich J., Sukjit P., Khongkatithum C., Thampratankul L., Chiemchanya S., Visudhiphan P. Acute disseminated encephalomyelitis: A 10-year cohort study in Thai children. Eur J Paediatr Neurol 2010; 14(6): 513–518. DOI:10.1016/j.ejpn.2010.02.010.; Thorpe J.W., Kidd D., Moseley I.F., Thompson A.J., MacManus D.G., Compston D.A., McDonald W.I., Miller D.H. Spinal MRI in patients with suspected multiple sclerosis and negative brain MRI. Brain 1996; 119: 709–714.; von Meyenburg J., Wilm B.J., Weck A., Petersen J., Gallus E., Mathys J., Schaetzle E. et al. Spinal cord diffusion-tensor imaging and motor-evoked potentials in multiple sclerosis patients: Microstructural and Functional Asymmetry. Radiology 2013; 18(7): 327–329. DOI:10.1148/radiol.13112776.; Okuda D.T., Melmed K., Matsuwaki T., Blomqvist A., Craig A.D. Central neuropathic pain in MS is due to distinct thoracic spinal cord lesions.Ann Clin Transl Neurol 2014; 1(8): 554–561. DOI:10.1002/acn3.85.; Trabatti C., Foiadelli T., Sparta M.V., Gagliardone C., Rinaldi B., Delmonte M., Lozza A., Savasta S. Paediatric clinically isolated syndromes: report of seven cases, differential diagnosis and literature review. Childs Nerv Syst 2016; 32(1): 69–77. DOI:10.1007/s00381-015-2959-0.; Lu Z., Zhang B., Qiu W., Kang Z., Shen L., Long Y., Huang J., Hu X. Comparative brain stem lesions on MRI of acute disseminated encephalomyelitis, neuromyelitis optica, and multiple sclerosis. PLoS One 2011; 6(8): e22766. DOI:10.1371/ journal.pone.0022766.; Hickman S.J., Raoof N., MacLean R.J., Gottlob I. Vision and multiple sclerosis. Multiple sclerosis and related disorders 2014; 3: 3–16. DOI:10.1016/j.msard.2013.04.004.; Доценко Е.В., Леонов Г.А. О поражении черепно-мозговых нервов в дебюте рассеянного склероза. Российский медико-биологический вестник им. академика И.П. Павлова 2001; (3–4): 179–187. [Dotsenko Y.V., Leo-nov G.A. About a defeat of brain nerves in a debut of a multiple sclerosis. Rossijskij mediko-biologicheskij vestnik 2001; (3–4): 179–187 (in Russ)]; Toosy A.T., Mason D.F., Miller H.D. Optic neuritis. Lancet Neurol 2014; 13(1): 83–99. DOI:10.1016/S1474-4422(13)70259-X.; Войтенков В.Б., Mally J., Скрипченко Н.В., Климкин А.В. Транскраниальная магнитная стимуляция как диагностическая и терапевтическая методика. Неврологический журнал 2015; 20(5): 4-13. (Voytenkov V.B., Mally J., Skripchenko N.V., Klimkin A.V. Transcranial magnetic stimulation as a diagnostic and therapeutic tool. Neurological Journal 2015; 20(5): 4–13 (in Russ)]

  7. 7
    Academic Journal

    Source: Neuromuscular Diseases; № 2 (2014); 36-41 ; Нервно-мышечные болезни; № 2 (2014); 36-41 ; 2413-0443 ; 2222-8721 ; 10.17650/2222-8721-2014-0-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/21/17; Diab M., Smith A.R., Kuklo T.R. et al. The Spinal Deformity Study Group. Neural complications in the surgical treatment of adolescent idiopathic scoliosis. Spine 2007;32:2759–63.; Qiu Y., Wang S., Wang B. et al. Incidence, risk factors of neurological deficits of surgical correction for scoliosis. Analysis of 1373 cases at one Chinese institution. Spine. 2008;33:519–26.; Vauzelle C., Stagnara P., Jouvinroux P. Functional monitoring of spinal cord activity during spinal surgery. Clin Orthop 1973;93:173–8.; Mostegl A., Bauer R., Eichenbauer M. Intraoperative somatosensory potential monitoring: a clinical analysis of 127 surgical procedures. Spine 1988;13(4): 396–400.; Tamaki T., Noguchi T., Takano H. et al. Spinal cord monitoring as a clinical utilization of the spinal evoked potential. Clin Orthop Relat Res 1984;184:58–64.; Padberg A.M., Wilson-Holden T.J., Lenke L.G., Bridwell K.H. Somatosensory and motor evoked potential monitoring without a wakeup test during idiopathic scoliosis surgery. Spine 1992;23:1392–1400.; Nuwer M.R., Dawson E.G., Carlson L.G. et al. Somatosensory evoked potential spinal cord monitoring reduces neurologic deficits after scoliosis surgery: results of a large multicenter survey. Electroencephalogr Clin Neurophysiol 1995;96:6–11.; Position statement: Somatosensory evoked potential monitoring of neurologic spinal cord function during spinal surgery. Scoliosis Research Society. 1992.; Luk K.D.K., Hu Y., Wong Y.W., Cheung K.M.C. Evaluation of various evoked potenial techniques for spinal cord monitoring during scoliosis surgery. Spine 2001;26(16):1772–7.; Sutter M., Deletis V., Dvorak J. et al. Current opinions and recommendations on multimodal intraoperative monitoring during spine surgeries. Eur Spine J 2007;16(2):232–7.; Pajewski T.N., Arlet V., Phillips L.H. Current approach on spinal cord monitoring: the point of view of the neurologist, the anesthesiologist and the spine surgeon. Eur Spine J 2007;16(2):115–29.; Schwartz D.M., Sestokas A.K. A systemsbased algorithmic approach to intraoperative neurophysiological monitoring during spinal surgery. Semin Spine Surg 2002;14:136–45.; https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/21

  8. 8
    Academic Journal

    Source: General Reanimatology; Том 11, № 1 (2015); 53-63 ; Общая реаниматология; Том 11, № 1 (2015); 53-63 ; 2411-7110 ; 1813-9779 ; 10.15360/1813-9779-2015-1

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1446/907; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1446/906; Козлов И.А. Агонист б2-адренорецепторов дексмедетомидин в практике современной седации. Общая реаниматология. 2013; 9 (2): 55—65. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-2-55; Лихванцев В.В., Гребенчиков О.А., Шмелева Е.В., Левиков Д.И., Сунгуров В.А., Скрипкин Ю.В. Ингаляционные индукция и поддержание анестезии на основе севофлурана или тотальная внутривенная анестезия на основе пропофола и фентанила у пациентов с сопутствующей дисциркуляторной энцефалопатией. Общая реаниматология. 2013; 9 (3): 41—47. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-3-41; Неймарк М.И., Ковалев А.И. Влияние аналгезии на течение самопроизвольных родов у женщин, страдающих сахарным диабетом. Общая реаниматология. 2013; 9 (1): 58—62. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2013-1-58; Женило В.М., Махарин О.А. Влияние полиморфизма гена OPRM1 118A/G на перцепцию боли и фармакодинамику наркотических аналгетиков. Общая реаниматология. 2014; 10 (1): 58—67. http://dx.doi.org/10.15360/1813-9779-2014-1-58-67; Махамбетчин М.М. Вторичная болевая реакция — новый параметр болевой чувствительности. Боль. 2009; 2: 19—23.; Бычков А.А., Женило В.М. К вопросу об анальгетическом эффекте кетамина, флунитрозепама и клофелина. Мат-лы 17-ой Рос. науч.- практ. конф. с междунар. участием «Болевые синдромы в медицинской практике». Ростов-на-Дону; 2011: 89.; Coghill R.C. Individual differences in the subjective experience of pain: new insights into mechanisms and models. Headache. 2010; 50 (9): 1531—1535. http://dx.doi.org/10.1111/j.1526-4610.2010.01763.x. PMID: 20958300; Азимова Ю.Э., Мещерина М.И., Сергеев А.В., Климов Е.А., Табеева Г.Р. Полиморфизм гена MTHFR при рефрактерной мигрени. Мат-лы 17-ой Рос. науч.-практ. конф. с междунар. участием «Болевые синдромы в медицинской практике». Ростов-на-Дону; 2011: 25—26.; Пшенникова М.Г., Попкова Е.В., Смирнова Е.С., Кукушкин М.Л. Изменение устойчивости к развитию невропатического болевого синдрома на фоне стресса у крыс различных генетических линий: роль катехоламинов. Мат-лы 18-ой Рос. науч.-практ. конф. «Хроническая боль». Кисловодск; 2012: 22—23.; Каратеев А.Е., Яхно Н.Н., Лазебник Л.Б. Клинические рекомендации. Применение нестероидных противовоспалительных препаратов. М.: ИМА ПРЕСС; 2009.; Орлова Ж.Р. Возможности и перспективы использования ботуло-токсина в клинической практике. РМЖ. 2006; 14 (23): 1700—1708.; LaCroix-Fralish M.L., Mogil J.S. Progress in genetic studies of pain and analgesia. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2009; 49: 97—121. http://dx.doi.org/10.1146/annurev-pharmtox-061008-103222. PMID: 18834308; Шнайдер Н.А. Новый взгляд на проблему послеоперационной ког- нитивной дисфункции. Острые и неотложные состояния в практике врача. 2008; 5—6: 64—67.; Яхно Н.Н. Боль. Руководство для врачей и студентов. М.: МЕД- пресс — Информ; 2009.; Neziri A.Y., Scaramozzino P., Andersen O.K., Dickenson A.H., Arendt- Nielsen L., Curatolo M. Reference values of mechanical and thermal pain tests in a pain-free population. Eur. J. Pain. 2011; 15 (4): 376—383. http://dx.doi.org/10.1016/j.ejpain.2010.08.011. PMID: 20932788; Bär K.J., Terhaar J., Boettger M.K., Boettger S., Berger S., Weiss T. Pseudohypoalgesia on the skin: a novel view on the paradox of pain perception in depression. J. Clin. Psychopharmacol. 2011; 31 (1): 103—107. http://dx.doi.org/10.1097/JCP.0b013e3182046797. PMID: 21192152; Jovanovic H., Perski A., Berglund H., Savic I. Chronic stress is linked to 5-HT1A receptor changes and functional disintegration of the limbic networks. Neuroimage. 2011; 55 (3): 1178—1188. http://dx.doi.org/10.1016/j.neuroimage.2010.12.060. PMID: 21211567; Andersen S.E. Drug dispensing errors in a ward stock system. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 2010; 106 (2): 100—105. http://dx.doi.org/10.1111/j.1742-7843.2009.00481.x. PMID: 19912167; Nicholl B.I., Holliday K.L., Macfarlane G.J., Thomson W., Davies K.A., O’Neill T.W., Bartfai G., Boonen S., Casanueva F., Finn J.D., Forti G., Giwercman A., Huhtaniemi I.T., Kula K., Punab M., Silman A.J., Vanderschueren D., Wu F.C., McBeth J.; European Male Ageing Study Group. No evidence for a role of the catechol-O-methyltransferase pain sensitivity haplotypes in chronic widespread pain. Ann. Rheum. Dis. 2010; 69 (11): 2009—2012. http://dx.doi.org/10.1136/ard.2009.126086. PMID: 20570835; Vossen H., Kenis G., Rutten B., van Os J., Hermens H., Lousberg R. The genetic influence on the cortical processing of experimental pain and the moderating effect of pain status. PLoS One. 2010; 5 (10): e13641. http://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0013641. PMID: 21049025; Бурлев А.В., Шифман Е.М. Фармакогенетические аспекты клинической анестезиологии. Анестезиология и реаниматология. 2010; 6: 83—86. PMID: 21400801; Shabalina S.A., Zaykin D.V., Gris P., Ogurtsov A.Y., Gauthier J., Shibata K., Tchivileva I.E., Belfer I., Mishra B., Kiselycznyk C., Wallace M.R., Staud R., Spiridonov N.A., Max M.B., Goldman D., Fillingim R.B., Maixner W., Diatchenko L. Expansion of the human mu-opioid receptor gene architecture: novel functional variants. Hum. Mol. Genet. 2009; 18 (6): 1037— 1051. http://dx.doi.org/10.1093/hmg/ddn439. PMID: 19103668; Hayashida M., Nagashima M., Satoh Y., Katoh R., Tagami M., Ide S., Kasai S., Nishizawa D., Ogai Y., Hasegawa J., Komatsu H., Sora I., Fukuda K., Koga H., Hanaoka K., Ikeda K. Analgesic requirements after major abdominal surgery are associated with OPRM1 gene polymorphism genotype and haplotype. Pharmacogenomics. 2008; 9 (11): 1605—1616. http://dx.doi.org/10.2217/14622416.9.11.1605. PMID: 19018716; Huang С.J., Liu H.F., Su N.Y., Hsu Y.W., Yang C.H., Chen C.C., Tsai P.S. Association between human opioid receptor genes polymorphisms and pressure pain sensitivity in females. Anaesthesia. 2008; 63 (12): 1288— 1295. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2044.2008.05760.x. PMID: 19032295; Ginosar Y., Davidson E.M., Meroz Y., Blotnick S., Shacham M., Caraco Y. Mu-opioid receptor (A118G) single-nucleotide polymorphism affects alfentanil requirements for extracorporeal shock wave lithotripsy: a pharmacokinetic-pharmacodynamic study. Br. J. Anaesth. 2009; 103 (3): 420—427. http://dx.doi.org/10.1093/bja/aep192. PMID: 19605407; Kolesnikov Y., Gabovits B., Levin A., Voiko E., Veske A. Combined cate- chol-O-methyltransferase and mu-opioid receptor gene polymorphisms affect morphine postoperative analgesia and central side effects. Anesth. Analg. 2011; 112 (2): 448—453. http://dx.doi.org/10.1213/ANE.0b013e318202cc8d. PMID: 21127283; Zhang W., Chang Y.Z., Kan Q.C., Zhang L.R., Lu H., Chu Q.J., Wang Z.Y., Li Z.S., Zhang J. Association of human micro-opioid receptor gene poly- morphism A118G with fentanyl analgesia consumption in Chinese gynaecological patients. Anaesthesia. 2010; 65 (2): 130—135. http://dx.doi.org/10.1111/j.1365-2044.2009.06193.x. PMID: 20003118; Walter C., Lötsch J. Meta-analysis of the relevance of the OPRM1 118A>G genetic variant for pain treatment. Pain. 2009; 146 (3): 270— 275. http://dx.doi.org/10.1016/j.pain.2009.07.013. PMID: 19683391; Гнездицкий В.В. Вызванные потенциалы мозга в клинической практике. Таганрог: изд-во ТРТУ; 1997.; Oertel B.G., Kettner M., Scholich K., Renné C., Roskam B., Geisslinger G., Schmidt P.H., Lötsch J. A common human micro-opioid receptor genetic variant diminishes the receptor signaling efficacy in brain regions processing the sensory information of pain. J. Biol. Chem. 2009; 284 (10): 6530—6535. http://dx.doi.org/10.1074/jbc.M807030200. PMID: 19116204; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1446

  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
    Academic Journal

    Source: Acta Biomedica Scientifica; № 3(2) (2013); 27-31 ; 2587-9596 ; 2541-9420

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1483/1430; Бобовская А.Н., Никифорова Т.М., Потрохов О.И., Тирских З.В. Особенности профессиональной патологии на ОАО «Химпром» г. Усолье-Сибирское // Региональные проблемы гигиены и экологии человека: Сборник научно-практических статей / НИИ МТ и ЭЧ ВСНЦ СО РАМН, Иркутский областной ЦГСЭН. Ангарск-Иркутск,1997. - С. 34-38.; Зенков Л.Р., Ронкин М.А. Функциональная диагностика нервных болезней (руководство для врачей). 3-е изд. - М.: МЕДпресс-информ, 2004.; Илов Н.Н., Шварц Р.Н., Панова Т.Н. Особенности реактивности церебральных сосудов у пациентов с гипертонической болезнью // Российский кардиологический журнал. - 2011. - № 2. - 2011. - С. 21-26.; Катаманова Е.В. Нарушения церебральной гемодинамики в отдаленном периоде профессиональной нейроинтоксикации у пожарных: автореф. дис. канд. мед. наук. - Иркутск, 2003. - 23 с.; Колесов В.Г., Андреева О.К., Лахман О.Л., Казакова П.В. и др. Психоэмоциональные расстройства в отдаленном периоде хронической ртутной интоксикации // Бюлл. ВСНЦ СО РАМН. - 2003. - № 2. - С. 93-95.; Кузнецов А.Н., Вознюк И.А. Справочник по церебральной допплерографии / под ред. М.М. Одинака. - СПб.: РосВМедА, 1999. - 100 с.; Лахман О.Л., Катаманова Е.В., Русанова Д.В., Константинова Т.Н. и др. Клиника, диагностика нарушений в отдаленном периоде профессиональных нейроинтоксикаций. Учебное пособие. - Иркутск, 2010. - 71 с.; Лахман О.Л., Рукавишников В.С., Катаманова Е.В., Картапольцева Н.В. и др. Нейрофизиологические методы диагностики профессиональных поражений нервной системы // Пособие для врачей с приложением задач и ответами. - Иркутск, 2008. - 108 с.; Лелюк В.Г., Лелюк С.Э. Церебральное кровообращение и артериальное давление. - М.: Реальное время, 2004. - 304 с.; Москаленко Ю.Е., Калашников В.И. Допплерографическая диагностика состояния цереброваскулярной реактивности у больных с хроническими ишемическими нарушениями мозгового кровообращения различной стадии // Украинский медицинский вестник. - 2000. - № 6 (20). - С. 98-102.; Петкова Б., Караджов К. О клинике и диагностике марганцевого паркинсонизма // Гигиена труда. - 2001. - № 4. - С. 16-18.; Русанова Д.В., Лахман О.Л., Катаманова Е.В. Состояние афферентных проводящих путей у рабочих, контактировавших со ртутью, и лиц с ХРИ // Экология человека. - 2010. - № 6. - С. 12-15.; Чуйко М.Р., Бодыхов М.К., Скворцова В.И. Характеристика и особенности течения энцефалопатии при инсулинзависимом сахарном диабете // Журнал неврологии и психиатрии. - 2010. - № 5. - С. 4-8.; Шевченко О.И., Константинова Т.Н., Катаманова Е.В. и др. Некоторые аспекты формирования психоневрологических расстройств при воздействии ртути // Бюлл. ВСНЦ СО РАМН. - 2008. - Т. 63. № 5. - С. 34-38.; Gartner V., Eigentler T.K. Pathogenesis of diabetic micro- and macroangiopathy // Clin. Nephrol. - 2008. -Vol. 70, N 1. - Р. 1-9.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/1483

  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20
    Academic Journal

    Source: Neurology, Neuropsychiatry, Psychosomatics; Vol 3, No 4 (2011); 33-37 ; Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика; Vol 3, No 4 (2011); 33-37 ; 2310-1342 ; 2074-2711 ; 10.14412/2074-2711-2011-4

    File Description: application/pdf

    Relation: https://nnp.ima-press.net/nnp/article/view/103/106; Stinear C. Prediction of recovery of motor function after stroke. Lancet Neurol 2010;9(12):1228-32. Pennisi G., Rapisarda G., Bella R. et al. Absence of response to early transcranial magnetic stimulation in ischemic stroke patients: prognostic value for hand motor recovery. Stroke 1999;30(12):2666-70. Nascimbeni A., Gaffuri A., Imazio P. Motor evoked potentials: prognostic value in motor recovery after stroke. Funct Neurol. 2006;21(4):199-203. Van Kuijk A.A., Pasman J.W., Hendricks H.T. et al. Predicting hand motor recovery in severe stroke: the role of motor evoked potentials in relation to early clinical assessment. Neurorehabil Neural Repair 2009;23(1):45-51. Epub 2008 Sep 15. D'Olhaberriague L., Espadaler Gamissans J.M., Marrugat J. et al. Transcranial magnetic stimulation as a prognostic tool in stroke. J Neurol Sci 1997;147(1):73-80. Никитин С.С., Куренков А.Л. Магнитная стимуляция в диагностике и лечении болезней нервной системы, М.: Сашко, 2003;378 с. Lee S.Y., Lim J.Y., Kang E.K. et al. Prediction of good functional recovery after stroke based on combined motor and somatosensory evoked potential findings. J Rehabil Med 2010;42:16-20. Stinear C.M., Barber P.A., Smale P.R. et al. Functional potential in chronic stroke patients depends on corticospinal tract integrity. Brain 2007;130(1):170-80.