Αποτελέσματα αναζήτησης - "сомаклональная изменчивость"

1

Academic Journal

Effect of culture filtrates of Fusarium sporotrichioides on wheat callus culture ; Влияние фильтрата культуральной жидкости Fusarium sporotrichioides на каллусную культуру пшеницы

Συγγραφείς: Valentina Yu. Stupko, Svetlana Yu. Lugovtsova, Nadezhda A. Neshumaeva, В. Ю. Ступко, С. Ю. Луговцова, Н. А. Нешумаева

Συνεισφορές: the research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of Federal Research Center “Krasnoyarsk Science Center of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences” (theme No. 124012900555-6)., работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр «Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук» (тема № 124012900555-6).

Πηγή: Agricultural Science Euro-North-East; Том 26, № 1 (2025); 129-140 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 26, № 1 (2025); 129-140 ; 2500-1396 ; 2072-9081

Θεματικοί όροι: сомаклональная изменчивость, culture filtrate, cell selection, somaclonal variation, культуральный фильтрат, клеточная селекция

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1892/863; Костерина Н. А. Анализ современного состояния проблемы фузариоза колоса и зерна пшеницы в Российской Федерации. Аграрный вестник Урала. 2023;23(5):49–60. DOI: https://doi.org/10.32417/1997-4868-2023-234-05-49-60 EDN: LQLAOZ; Гагкаева Т. Ю., Гаврилова О. П., Орина А. С., Гогина Н. Н. Чрезвычайная ситуация 2019 г. и болезни зерна в Амурской области. Защита и карантин растений. 2020;(8):19–21. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=43459556 EDN: VPTQZH; Кремнева О. Ю., Кудинова O. A., Волкова Г. В. Эффективность фунгицида «Фалькон», КЭ против фузариоза колоса пшеницы в условиях Краснодарского края. Современные подходы и методы в защите растений: мат-лы Всеросс. научн.-практ. конф. с международ. участием. Екатеринбург: Уральский федеральный университет имени первого Президента России Б. Н. Ельцина, 2018. С. 29–31. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=39109155 EDN: DPEOYO; Gagkaeva T., Gavrilova O., Orina A., Lebedin Y., Shanin I., Petukhov P., Eremin S. Analysis of toxigenic Fusarium species associated with wheat grain from three regions of Russia: Volga, Ural, and West Siberia. Toxins. 2019;11(5):252. DOI: https://doi.org/10.3390/toxins11050252; Fernando D., Oghenekaro A. O., Tucker J. R., Badea A. Building on a foundation: advances in epidemiology, resistance breeding, and forecasting research for reducing the impact of Fusarium head blight in wheat and barley. Canadian Journal of Plant Pathology. 2021;43(8):495–526. DOI: https://doi.org/10.1080/07060661.2020.1861102; Yao J., Ma H., Lu W. Progress on inheritance and breeding for wheat scab resistance in JAAS. Cereal Research Communications. 2008;36:189–191.; Луговцова С. Ю., Ступко В. Ю., Нешумаева Н. А. Влияние культуральных фильтратов грибов рода Fusarium на каллусные культуры овса. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2023;53(10):15–22. DOI: https://doi.org/10.26898/0370-8799-2023-10-2 EDN: NAVHBS; Eudes F., Badea A., Laroche A., Gaudet D., Graf R., Sadasivaiah S. In vitro selection and molecular markers for early screening of Fusarium head blight resistance wheat. In: Xu Z., Li J., Xue Y., Yang W. (eds) Biotechnology and Sustainable Agriculture 2006 and Beyond. Springer, Dordrecht, 2007. pp. 349–352. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4020-6635-1_56; Legge W. G., Tucker J. R., Bizimungu B., Tekauz A., Noll J. S., Fetch Jr. T. G., et al. Norman barley. Canadian Journal of Plant Science. 2011;91(6):1105–1113. DOI: https://doi.org/10.4141/cjps2010-020; Legge W. G., Tucker J. R., Bizimungu B., Tekauz A., Fetch Jr. T. G., Haber S., et al. Taylor barley. Canadian Journal of Plant Science. 2013;93(5):969–977. DOI: https://doi.org/10.4141/cjps2013-126; Ryabova D., Randhawa H. S., Kathiria P., Jiang F., Spaner D., Hucl P., et al. Development of new wheat varieties resistant to FHB through microspore in vitro selection technology. National Fusarium Head Blight Forum: proceedings. St. Louis MO, United States, 2016. pp. 92.; Gosman N., Chandler E., Thomsett M., Draeger R., Nicholson P. Analysis of the relationship between parameters of resistance to Fusarium head blight and in vitro tolerance to deoxynivalenol of the winter wheat cultivar WEK0609. European Journal Plant Pathology. 2005;111(1):57–66. DOI: https://doi.org/10.1007/s10658-004-2733-8; Zhang Y. P., Jiang S., Qu S. P., Yang X. M., Wang X. N., Ma L. L., et al. In vitro selection for Fusarium resistant oriental lily mutants using culture filtrate of the fungal agent. Acta Horticulturae. 2014;1027:205–212. DOI: https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1027.22; Shaunak I., Sharma R., Sharma P., Gupta M., Bhardwaj R. K. Developing resistance against soil-borne Fusarium pathogen causing tomato wilt through in vitro cell line selection. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2023;153:91–104. DOI: https://doi.org/10.1007/s11240-023-02446-1; Kuanar A., Nayak P. K., Subudhi E., Nayak S. In vitro selection of turmeric somaclone resistant to Fusarium oxysporum f. sp. Zingiberi. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences. 2014;84:1077–1082. DOI: https://doi.org/10.1007/s40011-013-0295-2; Тагиманова Д. С., Рашиденова Ж. А., Хапилина О. Н. Скрининг резистентных каллусов гороха (Pisum sativum L.) на селективных средах с культуральным фильтратом Fusarium oxysporum L. Биотехнология. Теория и практика. 2013;(3):55–60. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=25612905 EDN: VOMRDH; Borras O., Bermudez R. S. The pineapple-Fusarium subglutinans interaction: an early selection system for disease resistance. In Book: Mass screening techniques for selecting crops resistant to disease. FAO/IAEA (eds). Vienna: International Atomic Energy Agency, 2010. pp. 159–172.; Терлецкая Н. В., Ступко В. Ю., Искакова А. Б., Зобова Н. В., Гаевский Н. А. Фотоморфогенез эмбриогенных каллусов пшеницы в условиях эдафических стрессов. Известия Уфимского научного центра РАН. 2018;(3-5):43–51. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=36293992 EDN: VJYVJJ; Yerzhebayeva R. S., Abekova A. M., Bersimbaeva G. H., Konysbekov K. T., Bastaubaeva S. O., Roik N. V., Urazaliev K. R. In Vitro Cell Selection of Sugar Beet for Resistance to Culture Filtrate of the Fungus Fusarium oxysporum. Cytology and Genetics. 2019;53:307–314. DOI: https://doi.org/10.3103/S0095452719040042; Баймухаметова Э. А., Кулуев Б. Р. Потемнение растительных тканей при культивировании in vitro и способы его предотвращения. Биотехнология. 2020;36(2):26–42. DOI: https://doi.org/10.21519/0234-2758-2020-36-2-26-42 EDN: ZBGVAO.

Διαθεσιμότητα: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1892
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2025.26.1.129-140

View record from BASE

2

Academic Journal

APPLICATION OF CALLUS CULTURES OF CEREALS UNDER SELECTIVE MEDIA IN THE BREEDING WORK OF KRASNOYARSK RESEARCH INSTITUTE OF AGRICULTURE

Πηγή: BIOAsia-Altai; Том 4 № 1 (2024): Международный биотехнологический форум «BIOAsia–Altai»; 224-228
BIOAsia-Altai; Vol 4 No 1 (2024): International Biotechnology Forum “BIOAsia-Altai”; 224-228

Θεματικοί όροι: сомаклональная изменчивость, wheat, пшеница, ячмень, овес, barley, in vitro, эдафические стрессы, somaclonal variations, edaphic stresses, oats

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://journal.asu.ru/bioasia/article/view/16319

3

Academic Journal

Сomprehensive assessment of barley plants regenerated from resistant to cadmium callus lines ; Комплексная оценка растений ячменя, полученных путем клеточной селекции на устойчивость к кадмию

Συγγραφείς: I. G. Shirokikh, O. N. Shupletsova, E. V. Tovstik, S. Yu. Ogorodnikova, Ya. I. Nazarova, G. I. Berezin, И. Г. Широких, О. Н. Шуплецова, Е. В. Товстик, С. Ю. Огородникова, Я. И. Назарова, Г. И. Березин

Πηγή: Agricultural Science Euro-North-East; № 4 (2018); 19-29 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; № 4 (2018); 19-29 ; 2500-1396 ; 2072-9081

Θεματικοί όροι: аккумуляция кадмия, soil background, barley, somaclonal variability, cell selection, plant regenerated, oxidative stress, stability, productivity, accumulation of cadmium, почвенный фон, ячмень, сомаклональная изменчивость, клеточная селекция, растения-регенеранты, окислительный стресс, устойчивость, продуктивность

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/231/231; Khan M.A., Khan S., Khan A., Alam M. Soil contamination with cadmium, consequences and remediation using organic amendments // Science of the Total Environment. 2017. Vol. 601. P. 1591-1605.; Rizwan M., Ali S., Abbas T., Zia-ur-Rehman M., Hannan F., Keller C., Ok Y.S. Cadmium minimization in wheat: a critical review // Ecotoxicology and environmental safety. 2016. Vol.130. Р. 43-53.; Доклад о состоянии и использовании земель сельскохозяйственного назначения за 2011 год [Электронный ресурс]: http://www.mcx.ru/ documents/ docu-ment/show/17135.133. htm (дата обращения: 24.01.2018).; Методические рекомендации по гигиеническому обоснованию ПДК химических веществ в почве. М.: Минздрав СССР, 1982. 57 с.; Alloway B.J., Jackson, A.P. The Transfer of Cadmium from Agricultural Soils to the Human Food Chain // Biogeochemistry of Trace Metals. 2017. P. 121-170. CRC Press.; Szolnoki Z.S., Farsang A., Puskas I. Cumulative impacts of human activities on urban garden soils: origin and accumulation of metals // Environmental Pollution. 2013. Vol. 177. Р. 106-115.; Ok Y.S., Chang S.X., Gao B., Chung, H.J. SMART biochar technology-a shifting paradigm towards advanced materials and healthcare research // Environmental Technology & Innovation. 2015. Vol. 4. P. 206-209.; Проблемы деградации и восстановления продуктивности земель сельскохозяйственного назначения в России / Под ред. А.В. Гордеева, Г. А. Романенко. М.: Росинформагротех, 2008. 67 с.; Gallego S.M., Pena L.B., Barcia R.A., Azpilicueta C.E., Iannone M.F., Rosales E.P., Benavides M.P. Unravelling cadmium toxicity and tolerance in plants: insight into regulatory mechanisms // Environmental and Experimental Botany. 2012. Vol. 83. P. 33-46.; Cuypers A., Plusquin M., Remans T., Jozef-czak M., Keunen E., Gielen H., Nawrot T. Cadmium stress: an oxidative challenge // Biometals. 2010. Vol. 23(5). P. 927-940.; Кабата-Пендиас А., Пендиас Х. Микроэлементы в почвах и растениях. М.: Мир, 1989. 439 с.; Naeem A., Saifullah Rehman M.Z.U., Akhtar T., Ok Y.S., Rengel Z. Genetic variation in cadmium accumulation and tolerance among wheat cultivars at the seedling stage // Communications in Soil Science and Plant Analysis. 2016. Vol. 47(5). P. 554-562.; Гладков Е.А. Получение растений, толерантных к ионам кадмия и свинца // Биотехнология. 2006. №4. С. 87-93.; Мохаммед С.Е., Каранова С.Л., Долгих Ю.И. Получение толерантных к ионам кадмия клеточных линий и растений пшеницы методом клеточной селекции // Мат. Всерос. конф. «Современные аспекты структурно-функциональной биологии растений и грибов». Орел, 2010. С. 155-159.; Шуплецова О.Н., Широких И.Г. Повышение устойчивости ячменя к токсичности металлов и осмотическому стрессу путем клеточной селекции // Зерновое хозяйство России. 2015. №1 (37). С. 57-62.; Лукаткин А.С. Холодовое повреждение теплолюбивых растений и окислительный стресс. Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 2002. 208 с.; Шлык А.А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зелёных листьев// Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971. С. 154-171.; Маслова Т.Г., Попова И.А., Попова О.Ф. Критическая оценка спектрофотометрического метода количественного определения каротиноидов // Физиология растений. 1986. Т.39. Вып. 6. С. 615-619.; Муравьева Д.А., Бубенчикова В.Н., Беликов В.В. Спектрофотометрическое определение суммы антоцианов в цветках василька синего // Фармация. 1987. Т. 36. С. 28-29.; Beauchamp C., Fridovich J. Superoxide Dismutase: Improved Assays and an Assay Applicable to Acrylamide Gels // Anal. Biochem. 1971. Vol. 44. P. 276-287.; Khan N.A., Singh S., Nazar R. Activities of antioxidative enzymes, sulphur assimilation, photosynthetic activity and growth of wheat (Triticum aestivum) cultivars differing in yield potential under cadmium stress // Journal of Agronomy and Crop Science. 2007. Vol. 193(6). P. 435-444.; Ильин И.Б. Тяжелые металлы в системе почва - растение. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1991. 151 с.

Διαθεσιμότητα: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/231
https://doi.org/10.30766/2072-9081.2018.65.4.19-29

View record from BASE

4

Academic Journal

СОМАКЛОНАЛЬНАЯ ИЗМЕНЧИВОСТЬ IN VITRO КАК ИСТОЧНИК СОЗДАНИЯ ИСХОДНОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ СЕЛЕКЦИИ МЯГКОЙ ПШЕНИЦЫ

Συγγραφείς: E. D. Nikitina, L. P. Khlebova, R. D. Pronina

Πηγή: Acta Biologica Sibirica, Vol 1, Iss 3-4, Pp 171-186 (2015)

Θεματικοί όροι: мягкая пшеница, незрелые зародыши, сомаклональная изменчивость, регенерант, хозяйственно-биологические признаки, частота и спектр изменчивости., Biology (General), QH301-705.5

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journal.asu.ru/index.php/biol/article/view/929; https://doaj.org/toc/2412-1908

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/97e838221a8b438eae4b4306b5573678

View record in DOAJ Full Text Finder

5

Academic Journal

Conservation of the West Sayan endemic Fritillaria sonnikovae Schaulo et A. Erst (Liliaceae) in in vitro collection ; Сохранение эндемика Западного Саяна Fritillaria sonnikovae Schaulo et A. Erst (Liliaceae) в коллекции in vitro

Συγγραφείς: D. S. Muraseva, N. S. Zvyagina, T. I. Novikova, O. V. Dorogina, Д. С. Мурасева, Н. С. Звягина, Т. И. Новикова, О. В. Дорогина

Συνεισφορές: Integrated Program of Basic Research, Siberian Branch of the RAS

Πηγή: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 21, № 5 (2017); 554-560 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 21, № 5 (2017); 554-560 ; 2500-3259

Θεματικοί όροι: сохранение биоразнообразия, in vitro collection, ISSR, somaclonal variation, slow-growth storage, biodiversity conservation, коллекция in vitro, ISSR-анализ, сомаклональная изменчивость, депонирование in vitro

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1139/956; Al Khateeb W., Bahar E., Lahham J., Schroeder D., Hussein E. Regeneration and assessment of genetic fidelity of the endangered tree Moringa peregrina (Forsk.) Fiori using Inter Simple Sequence Repeat (ISSR). Physiol. Mol. Biol. Plants. 2013;19(1):157-164. DOI 10.1007/ s12298-012-0149-z.; Antonova O.Yu., Truskinov E.V., Frolova D.V., Gavrilenko T.A. Analysis of the genetic stability of potato samples stored under in vitro conditions. Agrarnaya Rossiya = Agricultural Russia. 2004;6:25-30. (in Russian); Bacchetta L., Remotti P.C., Bernardini C., Saccardo F. Adventitious shoot regeneration from leaf explants and stem nodes of Lilium. Plant. Cell Tiss. Org. Cult. 2003;74:37-44. DOI 10.1023/A:1023315321931.; Bairu M.W., Aremu A.O., Van Staden J. Somaclonal variation in plants: causes and detection methods. Plant Growth Regul. 2011;63:147-173. DOI 10.1007/s10725-010-9554-x.; Bairu M.W., Fennell C.W., Van Staden J. The effect of plant growth regulators on somaclonal variation in Cavendish banana (Musa AAA cv. “Zelig”). Sci. Hortic. 2006;108(4):347-351. DOI 10.1016/j.scienta.2006.01.039.; Bell R.L., Reed B.M. In vitro tissue culture of pear: Advances in techniques for micropropagation and germplasm preservation. Proc. 8th IS on Pear. 2002;412-418. Benson E.E. Plant Conservation Biotechnology. L.; Philadelphia P.A.: Taylor and Francis, 2002.; Bonnier F.J.M., Van Tuyl J.M. Long term in vitro storage of lily: effects of temperature and concentration of nutrients and sucrose. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1997;49:81-87. DOI 10.1023/A:1005810728215.; Bublyk O.M., Andreev I.O., Spiridonova K.V., Kunakh V.A. Genetic variability in regenerated plants of Ungernia victoris. Biologia Plantarum. 2012;56(2):395-400. DOI 10.1007/s10535-012-0106-2.; Cordeiro S.Z., Simas N.K., Henriques A.B., Sato A. In vitro conservation of Mandevilla moricandiana (Apocynaceae): short-term storage and encapsulation-dehydration of nodal segments. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant. 2014;50:326-336. DOI 10.1007/s11627-014- 9600-x.; Cruz-Cruz C.A., González-Arnao M.T., Engelmann F. Biotechnology and conservation of plant biodiversity. Resources. 2013;2:73-95. DOI 10.3390/resources2020073.; Dunstan D.J., Short K.C. Improved growth of tissue cultures of the onion Allium cepa. Phisiol. Plant. 1977;41(1):70-72.; Engelmann F. Use of biotechnologies for the conservation of plant biodiversity. In vitro Cell. Dev. Biol. – Plant. 2011;47:5-16. DOI 10.1007/s11627-010-9327-2.; Gamborg O.L., Eveleigh D.E. Culture methods and detection of glucanases in cultures of wheat and barley. Can. J. Biochem. 1968;46(5): 417-421.; Jain S.M., Ochatt S.J. Protocols for in vitro propagation of ornamental plants, methods in molecular biology. New Jersey: Humana Press, 2010. DOI 10.1007/978-1-60327-114-1.; Jevremović S., Petrić M., Zivković S., Trifunović M., Subotić A. Superoxide dismutase activity and isoenzyme profiles in bulbs of snake’s head fritillary in response to cold treatment. Arch. Biol. Sci. 2010; 62(3):553-558. DOI 10.2298/ABS1003553J.; Joshi S.K., Dhar U., Andola H.C. In vitro bulblet regeneration and evaluation of Fritillaria roylei Hook. – a high value medicinal herb of the Himalaya. Acta Hortic. 2007;756:75-84. DOI 10.17660/ActaHortic.2007.756.8.; Kamenetsky R., Okubo H. Ornamental geophytes: from basic science to sustainable production. Boca Raton, F.L.: CRC Press, 2013.; Keller J. Influence of different temperature treatments on viability of in vitro cultivated Allium shoots and bulblets. Acta Hort. 1992;319:307-312. DOI 10.17660/ActaHortic.1992.319.47.; Krishnan P.N., Decruse S.W., Radha R.K. Conservation of medicinal plants of Western Ghats, India and its sustainable utilization through in vitro technology. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant. 2011;47:110-122. DOI 10.1007/s11627-011-9344-9.; Kul’khanova D.S., Erst A.A., Novikova T.I. In vitro regeneration from bulbous scales of Fritillaria sonnikovae, an endemic species. Ontogenez = Ontogenesis (Moscow). 2015;46(4):259-266. DOI 10.7868/ S0475145015040059. (in Russian); Liu X., Yang G. Adventitious shoot regeneration of oriental lily (Lilium orientalis) and genetic stability evaluation based on ISSR marker variation. In Vitro Cell. Dev. Biol.– Plant. 2012;48:172-179. DOI 10.1007/s11627-012-9429-0.; Marinangeli P.А., Hernandez L.F., Pellegrini C.P., Curvetto N.R. Bulblet differentiation after scale propagation of Lilium longiflorum. J. Am. Soc. Hort. Sci. 2003;128(3);324-329.; Miller M.P. Tools for populations genetic analyses (TFPGA) 1.3. A Windows program for the analysis of allozyme and molecular population genetic data. 1997. Available at http://www.ccg.unam. mx/~vinuesa/tlem09/docs/TFPGADOC.PDF.; Nei M. Genetic distance between populations. Am. Nat. 1972;106: 283-292.; Nikolić М., Misić D., Maksimović V., Jevremović S., Trifunović M., Subotić A. Effect of low temperature on rooting rate and carbohydrate content of Fritillaria meleagris bulbs formed in culture in vitro. Arch. Biol. Sci., Belgrade. 2008;60(1):5-6. DOI 10.2298/ ABS080105PN.; Novikova T.I. Use of biotechnological approaches for the conservation of plant biodiversity. Rastitelnyy mir Aziatskoy Rossii = Plant Life of Asian Russia. 2013;2(12):119-128. (in Russian); Parić А., Cakar J., Muratovic E., Karalija E. Induction of bulblets on leaf and bulb explants of endangered Lilium bosniacum (G. Beck) G. Beck ex Fritsch. Botanica Serbica. 2011;35(1):31-35.; Poluboyarova T.V., Novikova T.I. Clonal micropropagation of ornamental onions of the subgenus Melanocrommyum from flower organs. Byulleten Gosudarstvennogo Nikitskogo botanicheskogo sada = Bulletin of the State Nikitskiy Botanical Gardens. 2013;107:46-52. (in Russian); Rakosy-Tican E., Bors B., Szatmari A.-M. In vitro culture and mediumterm conservation of the rare wild species Gladiolus imbricatus. African J. Biotech. 2012;11(81):14703-14712. DOI 10.5897/AJB12.784.; Rani V., Parida A., Raina S. Random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers for genetic analysis in micropropagated plants of Populus deltoides Marsh. Plant. Cell. Report. 1995;14:459-462. DOI 10.1007/BF00234055.; Reed B.M., Sarasan V., Kane M., Bunn E., Pence V.C. Biodiversity conservation and conservation biotechnology tools. In Vitro Cell Dev. Biol. – Plant. 2011;47:1-4. DOI 10.1007/s11627-010-9337-0.; Shaulo D.N., Erst A.S. A new species of Fritillaria L. (Liliaceae) from West Sayan. Turczaninowia. 2010;13(3):46-49. (in Russian); Song J.Y., Mattson N.S., Jeong B.R. Efficiency of shoot regeneration from leaf, stem, petiole and petal explants of six cultivars of Chrysanthemum morifolium. Plant. Cell Tiss. Org. Cult. 2011;107:295- 304. DOI 10.1007/s11240-011-9980-0.; Tavartkiladze O.K., Vechernina N.A. Conservation of the plant gene pool in in vitro culture collections. Izvestiya Altayskogo gosudarstvennogo universiteta = Izvestiya of the Altai State University. 1999;5:13-15. (in Russian); Varshney A., Lakshmikumaran M., Srivastava P.S., Dhawan V. Establishment of genetic fidelity of in vitro-raised Lilium bulblets through RAPD markers. In Vitro Cell. Dev. Biol. – Plant. 2001;37:227-231. DOI 10.1007/s11627-001-0040-z.; Vasil I.K., Thorpe T.A. Plant cell and tissue culture. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1994.; Vinci V.A., Parekh S.R. Handbook of industrial cell culture: mammalian, microbial and plant cells. New Jersey: Humana Press, 2003. DOI 10.1007/978-1-59259-346-0.; Zvyagina N.S., Dorogina O.V., Krasnikov A.A. Genetic differentiation and karyotype variation in Hedysarum chaiyrakanicum, an endemic species of Tuva Republic, Russia. Indian J. Experim. Biol. 2016; 54(5):338-344.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1139

Διαθεσιμότητα: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/1139
https://doi.org/10.18699/VJ17.272

View record from BASE

6

Academic Journal