Quantitating soluble fms-like tyrosine kinase-1 (sFlt-1) and placental growth factor (PlGF) biomarker levels along with sFlt-1/PlGF ratio in patients with extragenital diseases for diagnostics of early- and late-onset preeclampsia ; Исследование уровней биомаркеров – растворимой fms-подобной тирозинкиназы-1 (sFlt-1), плацентарного фактора роста (PlGF) и их соотношения sFlt-1/PlGF у пациенток с экстрагенитальными заболеваниями для диагностики ранней и поздней преэклампсии

Authors: M. O. Matveev, E. I. Prokopenko, I. G. Nikolskaya, A. A. Fedosov, D. V. Blinov, V. O. Bitsadze, М. О. Матвеев, Е. И. Прокопенко, И. Г. Никольская, А. А. Федосов, Д. В. Блинов, В. О. Бицадзе

Contributors: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 5 (2025); 632-653 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 5 (2025); 632-653 ; 2500-3194 ; 2313-7347

Subject Terms: экстрагенитальные заболевания, PE, placental growth factor, PlGF, soluble fms-like tyrosine kinase-1, sFlt-1, sFlt-1/PlGF ratio, extragenital diseases, ПЭ, плацентарный фактор роста, растворимая fms-подобная тирозинкиназа-1, соотношение sFlt-1/PlGF

File Description: application/pdf

Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2592/1389; Tsigas E.Z. The Preeclampsia Foundation: the voice and views of the patient and her family. Am J Obstet Gynecol. 2022;226(2S):S1254–S1264.e1. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2020.10.053.; Ma'ayeh M., Costantine M.M. Prevention of preeclampsia. Semin Fetal Neonatal Med. 2020;25(5):101123. https://doi.org/10.1016/j.siny.2020.101123.; Юсупова З.С., Новикова В.А., Оленев А.С. Современные представления о преэклампсии – патогенез, диагностика, прогнозирование. Практическая медицина. 2018;16(6):45–51. https://doi.org/10.32000/2072-1757-2018-16-6-45-51.; Ramos J.G.L., Sass N., Costa S.H.M. Preeclampsia. Rev Bras Ginecol Obstet. 2017;39(9):496–512. https://doi.org/10.1055/s-0037-1604471.; Сидорова И.С., Филиппов О.С., Никитина Н.А., Гусева Е.В. Причины материнской смертности от преэклампсии и эклампсии в 2013 году. Акушерство и гинекология. 2015;(4):11–7.; Серов В.Н. Профилактика материнской смертности. Акушерство и гинекология. 2011;(7–1):4–10.; Magee L.A., Brown M.A., Hall G.R. et al. The 2021 International Society for the Study of Hypertension in Pregnancy classification, diagnosis & management recommendations for international practice. Pregnancy Hypertens. 2022;27:148–69. https://doi.org/10.1016/j.preghy.2021.09.008.; Poon L., Shennan A., Hyett J.A. et al. The International Federation of Gynecology and Obstetrics (FIGO) initiative on pre-eclampsia: A pragmatic guide for first-trimester screening and prevention. Int J Gynaecol Obstet. 2019;145 Suppl 1(Suppl 1):1–33. https://doi.org/10.1002/ijgo.12802.; Pittara T., Vyrides A., Lamnisos D., Giannakou K. Pre-eclampsia and long-term health outcomes for mother and infant: an umbrella review. BJOG. 2021;128(9):1421–30. https://doi.org/10.1111/1471-0528.16683.; Kvalvik L., Wilcox A.J., Skjærven R. et al. Term complications and subsequent risk of preterm birth. BMJ. 2020;369:m1007. https://doi.org/10.1136/bmj.m1007.; Серов В.Н. Гестоз – современная лечебная тактика. Русский медицинский журнал. 2005;13(1):2–6.; Савельева Г.М., Кулаков В.И., Серов В.Н. и др. Современные подходы к диагностике, профилактике и лечению гестоза. Вестник Российской ассоциации акушеров-гинекологов. 2001;1(3):66–72.; Lee W., O'Connell C.M., Baskett T.F. Maternal and perinatal outcomes of eclampsia: Nova Scotia, 1981-2000. J Obstet Gynaecol Can. 2004;26(2):119–23. https://doi.org/10.1016/s1701-2163(16)30487-x.; Dimitriadis E., Rolnik D.L., Zhou W. et al. Pre-eclampsia. Nat Rev Dis Primers. 2023;9(1):8. https://doi.org/10.1038/s41572-023-00417-6.; Клинические рекомендации – Преэклампсия. Эклампсия. Отеки, протеинурия и гипертензивные расстройства во время беременности, в родах и послеродовом периоде – 2024-2025-2026 (05.09.2024). М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2024. 53 с. Режим доступа: http://disuria.ru/_ld/15/1564_kr24O10O16MZ.pdf. [Дата обращения: 15.05.2025].; Webster K., Fishburn S., Maresh M. et al. Diagnosis and management of hypertension in pregnancy: summary of updated NICE guidance. BMJ. 2019;366:l5119. https://doi.org/10.1136/bmj.l5119.; Здравоохранение в России: cтатистический сборник. М.: Федеральная служба государственной статистики (Росстат), 2023. 179 с.; ACOG Practice Bulletin No. 202: Gestational hypertension and preeclampsia. Obstet Gynecol. 2019;133(1):e1–25. https//doi.org/10.1097/AOG.0000000000003018.; Шалина Р.И., Михалева Л.М., Симухина М.А. и др. Особенности клинического течения тяжелых форм преэклампсии в современных условиях. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2017;16(6):16–23.; Резолюция Совета экспертов «Нормативный регламент и вопросы организации скрининга и прогнозирования преэклампсии в РФ». Акушерство и гинекология. 2021;(5):219–21. https://doi.org/10.18565/aig.2021.5.219-221.; Ходжаева З.С., Холин А.М., Шувалова М.П. и др. Российская модель оценки эффективности теста на преэклампсию sFlt-1/PlGF. Акушерство и гинекология. 2019;(2):52–8. https://doi.org/10.18565/aig.2019.2.52-58.; Stepan H., Hund M., Dilba P. et al. Elecsys® and Kryptor immunoassays for the measurement of sFlt-1 and PlGF to aid preeclampsia diagnosis: are they comparable? Clin Chem Lab Med. 2019;57(9):1339–48. https://doi.org/10.1515/cclm-2018-1228.; Гурьева В.М., Травкина А.А., Матвеев М.О. и др. Клиническое значение sFlt-1/PlGF в диагностике и прогнозировании преэклампсии. Акушерство и гинекология. 2021;(7):195–200. https://doi.org/10.18565/aig.2021.7.195-200.; Беженарь В.Ф., Смирнов А.В., Тимирбулатов Р.Р. и др. Почечная дисфункция при преэклампсии: прогнозирование и дифференциальный диагноз. Часть 1. Доктор Ру. 2020;19(6):23–9. https://doi.org/10.31550/1727-2378-2020-19-6-23-29.; Никольская И.Г., Прокопенко Е.И., Ватазин А.В., Будыкина Т.С. Ангиогенные и антиангиогенные факторы у беременных с хронической болезнью почек: роль коэффициента sFlt-1/PlGF в прогнозировании и диагностике преэклампсии. Нефрология и диализ. 2016;18(4):440–51.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2592

Availability: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2592
https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.671

Placenta crucially affects formation of fetal congenital heart disease ; Ключевая функция плаценты в формировании врожденного порока сердца плода

Authors: V. I. Tsibizova, T. M. Pervunina, V. A. Artemenko, V. O. Bitsadze, K. E. Gotsiridze, I. I. Averkin, D. V. Blinov, N. Yu. Novikova, В. И. Цибизова, Т. М. Первунина, В. А. Артеменко, В. О. Бицадзе, К. Э. Гоциридзе, И. И. Аверкин, Д. В. Блинов, Н. Ю. Новикова

Source: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 16, No 1 (2022); 66-72 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 16, No 1 (2022); 66-72 ; 2500-3194 ; 2313-7347

Subject Terms: PlGF, CHD, vascular endothelial growth factor, VEGF, soluble Fms-like tyrosine kinase-1, sFlt-1, placental growth factor, ВПС, фактор роста эндотелия сосудов, растворимая Fms-подобная тирозинкиназа-1, плацентарный фактор роста

File Description: application/pdf

Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/1242/992; van Deutekom A.W., Lewandowski A.J. Physical activity modification in youth with congenital heart disease: a comprehensive narrative review. Pediatr Res. 2020;89(7):1650–8. https://doi.org/10.1038/s41390-020-01194-8.; Lim T.B., Foo S.Y.R., Chen C.K. The role of epigenetics in congenital heart disease. Genes (Basel). 2021;12(3):390. https://doi.org/10.3390/genes12030390.; Reddy D.P., Viswamitra S. Cardiac embryology. In: CT and MRI in ongenital heart diseases. Springer, 2021. 29–54. https://doi.org/10.1007/978-981-15-6755-1_2.; Salman H.E., Alser M., Shekhar A. et al. Effect of left atrial ligation-driven altered inflow hemodynamics on embryonic heart development: Clues for prenatal progression of hypoplastic left heart syndrome. Biomech Model Mechanobiol. 2021;20(2):733–50. https://doi.org/10.1007/s10237-020-01413-5.; Burton G.J., Jauniaux E. Development of the human placenta and fetal heart: synergic or independent? Front Physiol. 2018;9:373. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.00373.; Neufeld G., Cohen T., Gengrinovitch S., Poltorak Z. Vascular endothelial growth factor (VEGF) and its receptors. FASEB J. 1999;13(1):9–22.; Fowden A., Forhead A., Coan P., Burton G. The placenta and intrauterine programming. J Neuroendocrinol. 2008;20(4):439–50. https://doi.org/10.1111/j.1365-2826.2008.01663.x.; Saleemuddin A., Tantbirojn P., Sirois K. et al. Obstetric and perinatal complications in placentas with fetal thrombotic vasculopathy. Pediatr Dev Pathol. 2010;13(6):459–64. https://doi.org/10.2350/10-01-0774-OA.1.; Verburg B.O., Jaddoe V., Wladimiroff J.W. et al. Fetal hemodynamic adaptive changes related to intrauterine growth: the Generation R Study. Circulation. 2008;117(5):649–59. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.107.709717.; Matthiesen N.B., Henriksen T.B., Agergaard P. et al. Congenital heart defects and indices of placental and fetal growth in a nationwide study of 924 422 liveborn infants. Circulation. 2016;134(20):1546–56. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.116.021793.; Khong T.Y., Mooney E.E., Ariel I. et al. Sampling and definitions of placental lesions: Amsterdam placental workshop group consensus statement. Arch Pathol Lab Med. 2016;140(7):698–713. https://doi.org/10.5858/arpa.2015-0225-CC.; Rychik J., Goff D., McKay E. et al. Characterization of the placenta in the newborn with congenital heart disease: distinctions based on type of cardiac malformation. Pediatr Cardiol. 2018;39(6):1165–71. https://doi.org/10.1007/s00246-018-1876-x.; Johnson J.A., Canavan T. Placental expression of vascular endothelial growth factor in patients with hypoplastic left heart syndrome. J Am Coll Cardiol. 2020;75(11 Suppl 1):630. https://doi.org/10.1016/s0735-1097(20)31257-2.; Barker D.J., Godfrey K.M., Gluckman P.D. et al. Fetal nutrition and cardiovascular disease in adult life. Lancet. 1993;341(8850):938–41. https://doi.org/10.1016/0140-6736(93)91224-a.; Menendez-Castro C., Rascher W., Hartner A. Intrauterine growth restriction-impact on cardiovascular diseases later in life. Mol Cell Pediatr. 2018;5(1):4. https://doi.org/10.1186/s40348-018-0082-5.; Zhao F., Lei F., Yan X. et al. Protective effects of hydrogen sulfide against cigarette smoke exposure-induced placental oxidative damage by alleviating redox imbalance via Nrf2 pathway in rats. Cell Physiol Biochem. 2018;48(5):1815–28. https://doi.org/10.1159/000492504.; Lu L., Kingdom J., Burton G.J., Cindrova-Davies T. Placental stem villus arterial remodeling associated with reduced hydrogen sulfide synthesis contributes to human fetal growth restriction. Am J Pathol. 2017;187(4):908–20. https://doi.org/10.1016/j.ajpath.2016.12.002.; Shen Y., Shen Z., Luo S. et al. The cardioprotective effects of hydrogen sulfide in heart diseases: from molecular mechanisms to therapeutic potential. Oxid Med Cell Longev. 2015;2015:925167. https://doi.org/10.1155/2015/925167.; Russell M.W., Moldenhauer J.S., Rychik J. et al. Damaging variants in proangiogenic genes impair growth in fetuses with cardiac defects. J Pediatr. 2019;213:103–9. https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2019.05.013.; Laakkonen J.P., Lähteenvuo J., Jauhiainen S. et al. Beyond endothelial cells: vascular endothelial growth factors in heart, vascular anomalies and placenta. Vascul Pharmacol. 2019;112:91–101. https://doi.org/10.1016/j.vph.2018.10.005.; Llurba E., Sanchez O., Ferrer Q. et al. Maternal and foetal angiogenic imbalance in congenital heart defects. Eur Heart J. 2014;35(11):701–7. https://doi.org/10.1093/eurheartj/eht389.; Brodwall K., Leirgul E., Greve G. et al. Possible common aetiology behind maternal preeclampsia and congenital heart defects in the child: a cardiovascular diseases in Norway project study. Paediatr Perinat Epidemiol. 2016;30(1):76–85. https://doi.org/10.1111/ppe.12252.; Hertig A., Berkane N., Lefevre G. et al. Maternal serum sFlt1 concentration is an early and reliable predictive marker of preeclampsia. Clin Chem. 2004;50(9):1702–3. https://doi.org/10.1373/clinchem.2004.036715.; Cahill L.S., Stortz G., Chandran A.R. et al. Wave reflections in the umbilical artery measured by Doppler ultrasound as a novel predictor of placental pathology. EBioMedicine. 2021;67:103326. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2021.103326.; Yagel S., Cohen S.M., Goldman-Wohl D. An integrated model of preeclampsia: a multifaceted syndrome of the maternal cardiovascularplacental-fetal array. Am J Obstet Gynecol. 2021 Mar 9;S0002- 9378(20)31197-2. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2020.10.023. [Online ahead of print].; Hanna J., Goldman-Wohl D., Hamani Y. et al. Decidual NK cells regulate key developmental processes at the human fetal-maternal interface. Nat Med. 2006;12(9):1065–74. https://doi.org/10.1038/nm1452.; Tayade C., Hilchie D., He H. et al. Genetic deletion of placenta growth factor in mice alters uterine NK cells. J Immunol. 2007;178(7):4267–75. https://doi.org/10.4049/jimmunol.178.7.4267.; Yagel S. The developmental role of natural killer cells at the fetal-maternal interface. Am J Obstet Gynecol. 2009;201(4):344–50. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2009.02.030.; Hanna J., Wald O., Goldman-Wohl D. et al. CXCL12 expression by invasive trophoblasts induces the specific migration of CD16- human natural killer cells. Blood. 2003;102(5):1569–77. https://doi.org/10.1182/blood-2003-02-0517.; Gamliel M., Goldman-Wohl D., Isaacson B. et al. Trained memory of human uterine NK cells enhances their function in subsequent pregnancies. Immunity. 2018;48(5):951–62.e5. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2018.03.030.; Goldman-Wohl D., Gamliel M., Mandelboim O., Yagel S. Learning from experience: cellular and molecular bases for improved outcome in subsequent pregnancies. Am J Obstet Gynecol. 2019;221(3):183–93. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.02.037.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/1242

Availability: https://www.gynecology.su/jour/article/view/1242
https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2022.262

Поздние преждевременные спонтанные роды: версии и контраверсии

Authors: Апресян С.В., Зюкина З.В.

Source: Доктор.Ру

Subject Terms: late premature spontaneous labor, marker serum proteins, Pregnancy-associated plasma protein-A, placental growth factor, soluble fms-like tyrosine kinase-1, gene expression, поздние преждевременные спонтанные роды, маркерные сывороточные белки, ассоциированный с беременностью протеин А, плацентарный фактор роста, растворимая fms-подобная тирозинкиназа-1, экспрессия генов

Relation: https://repository.rudn.ru/records/article/record/111170/

Availability: https://repository.rudn.ru/records/article/record/111170/