Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 1.275 για την αναζήτηση '"преэклампсия"', χρόνος αναζήτησης: 1,01δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 3 (2025); 443-452 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 3 (2025); 443-452 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2496/1350; Стрельцова В.Л., Падруль М.М. Теория адаптационных реакций в акушерстве. Пермский медицинский журнал. 2012;29(6):111–20.; Клинические рекомендации – Нормальная беременность – 2023-2024-2025 (15.02.2024). М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2024. 58 с. Режим доступа: https://medhelp-rb.ru/images/docs/beremennost/klinich_rekomendacii_pri_normal_berem.pdf. [Дата обращения: 25.02.2025].; Клинические рекомендации – Преэклампсия. Эклампсия. Отеки, протеинурия и гипертензивные расстройства во время беременности, в родах и послеродовом периоде – 2021-2022-2023 (24.06.2021). М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2021. 54 с. Режим доступа: http://disuria.ru/_ld/10/1046_kr21O10O16MZ.pdf. [Дата обращения: 25.02.2025].; Murphy M.S., Tayade C., Smith G.N. Maternal circulating microRNAs and preeclampsia: challenges for diagnostic potential. Mol Diagn Ther. 2017;21(1):23–30. https://doi.org/10.1007/s40291-016-0233-0.; Redman C.W., Sargent I.L. Placental stress and pre-eclampsia: a revised view. Placenta. 2009;30:Suppl A:38–42. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2008.11.021.; Каптильный В.А., Рейштат Д.Ю. Преэклампсия: определение, новое в патогенезе, методические рекомендации, лечение и профилактика. Архив акушерства и гинекологии имени В.Ф. Снегирева. 2020;7(1):19–30. https://doi.org/10.18821/2313-8726-2020-7-1-19-30.; Szarka A., Rigo J., Lazar L. et al. Circulating cytokines, chemokines and adhesion molecules in normal pregnancy and preeclampsia determined by multiplex suspension array. BMC Immunol. 2010;11:59. https://doi.org/10.1186/1471-2172-11-59.; Sargent I.L., Borzychowski A.M., Redman C.W.G. Immunoregulation in normal pregnancy and pre-eclampsia: an overview. Reprod Biomed Online. 2006;13(5):680–6. https://doi.org/10.1016/s1472-6483(10)60659-1.; Cooper M.A., Fehniger T.A., Сaligiuri M.A. The biology of human natural killer-cell subset. Trends Immunol. 2001;22(11):633–40. https://doi.org/10.1016/s1471-4906(01)02060-9.; Santner-Nanan B., Peek M.J., Khanam R. et al. Systemic increase in the ratio between Foxp3+ and IL-17-producing CD4+ T cells in healthy pregnancy but not in preeclampsia. J Immunol. 2009;183(11):7023–30. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0901154.; Lynch A.M., Eckel R.H., Murphy J.R. et al. Prepregnancy obesity and complement system activation in early pregnancy and the subsequent development of preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 2012;206(5):428.e1–8. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2012.02.035.; Абдуллаева Н.К. Состояние системы комплемента при преэклампсии. Российский вестник акушера-гинеколога. 2014;14(6):19–23.; Morgan B.P., Holmes C.H. Immunology of reproduction: protecting the placenta. Curr Biol. 2000;10(10):R381–3. https://doi.org/10.1016/s0960-9822(00)00476-0.; Макацария А.Д., Бицадзе В.О., Баймурадова С.М. и др. Антифосфолипидный синдром – иммунная тромбофилия в акушерстве и гинекологии. М.: Триада-Х, 2007. 456 с.; Abbas A.K., Litchman A.H., Pillai S. Cellular and molecular immunology. 10th edition. Elsevier, 2021. 618 р.; Contro E., Bernabini D., Farina A. Cell-free fetal DNA for the prediction of pre-eclampsia at the first and second trimesters: a systematic review and meta-analysis. Mol Diagn Ther. 2017;21(2):125–35. https://doi.org/10.1007/s40291-016-0245-9.; Tempfer C.B., Bancher-Todesca D., Zeisler H. et al. Placental expression and serum concentrations of cytokeratin 19 in preeclampsia. Obstet Gynecol. 2000;95(5):677–82. https://doi.org/10.1016/s0029-7844(00)00797-3.; Tedesco F., Radillo O., Candussi G. et al. Immunohistochemical detection of terminal complement complex and S protein in normal and preeclamptic placentae. Clin Exp Immunol. 1990;80(2):236–40. https://doi.org/10.1111/j.1365-2249.1990.tb05240.x.; Rampersad R., Barton A., Sadovsky Y., Nelson D.M. The C5b-9 membrane attack complex of complement activation localizes to villous trophoblast injury in vivo and modulates human trophoblast function in vitro. Placenta. 2008;29(10):855–61. https://doi.org/10.1016/j.placenta.2008.07.008.; Shamonki J.M., Salmon J.E., Hyjek E., Baergen R.N. Excessive complement activation is associated with placental injury in patients with antiphospholipid antibodies. Am J Obstet Gynecol. 2007;196(2):167.e1–5. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2006.10.879 .; Qing X., Redecha P.B., Burmeister M.A. et al. Targeted inhibition of complement activation prevents features of preeclampsia in mice. Kidney Int. 2011;79(3):331–9. https://doi.org/10.1038/ki.2010.393.; Sarween N., Drayson M.T., Hodson J. et al. Humoral immunity in late-onset pre-eclampsia and linkage with angiogenic and inflammatory markers. Am J Reprod Immunol. 2018;80(5):e13041. https://doi.org/10.1111/aji.13041.; Иванов И.И., Прочан Е.Н., Черипко М.В., Косолапова Н.В. Динамика уровня циркулирующих иммунных комплексов при лечении преэклампсии. Крымский журнал экспериментальной и клинической медицины. 2011;1(3–4)37–42.; Сидорова И.С., Галинова И.Л. Эндотелиальная дисфункция в развитии гестоза. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2006;5(1):75–81.; Тягунова А.В., Васильева З.В., Сластен О.П., Баранова И.Н. Диагностическая ценность некоторых показателей иммунитета в клинике гестозов. Клиническая лабораторная диагностика. 1998;(4):38–40.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2496

  8. 8
  9. 9
  10. 10
  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: Eurasian Journal of Academic Research; Vol. 5 No. 11 (2025): Eurasian Journal of Academic Research; 35-42 ; Евразийский журнал академических исследований; Том 5 № 11 (2025): Евразийский журнал академических исследований; 35-42 ; Yevrosiyo ilmiy tadqiqotlar jurnali; Jild 5 Nomeri 11 (2025): Евразийский журнал академических исследований; 35-42 ; 2181-2020

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  13. 13
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 5 (2025); 626-631 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 5 (2025); 626-631 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2591/1388; Матвеев М.О., Прокопенко Е.И., Никольская И.Г., Федосов А.А., Блинов Д.В., Бицадзе В.О. Исследование уровней биомаркеров – растворимой fms-подобной тирозинкиназы-1 (sFlt-1), плацентарного фактора роста (PlGF) и их соотношения sFlt-1/PlGF у пациенток с экстрагенитальными заболеваниями для диагностики ранней и поздней преэклампсии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):632–653. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.671.; Жильнио Е.Ю., Салов И.А., Наумова Ю.В. Персонализация вероятности рецидива и профилактики эндометриоза яичников после операции. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):654–666. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.649.; Иноятова Н.М., Каюмова Д.Т. Влияние перевязки трех пар маточных сосудов на кровоснабжение матки и яичников у пациенток с патологической кровопотерей. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):667–674. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.659.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Иловайская И.А., Громов А.Н. Комплексный биохимический анализ состава препаратов и биологически активных добавок омега-3 полиненасыщенных жирных кислот для нутрициальной поддержки беременности. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):675–689. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.669.; Пачулия О.В., Лазарева Т.Е., Халенко В.В., Илларионов Р.А., Вашукова Е.С., Постникова Т.Б., Мальцева А.Р., Милютина Ю.П., Корню­шина Е.А., Беспалова О.Н., Глотов А.С. Раннее моделирование риска преждевременных родов на платформе биоколлекции образцов беременных, созданной на разных сроках гестации согласно стратегии «лонгитюдное биобанкирование». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):691–704. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.686.; Стрюк Р.И., Крикунова О.В., Локшина Э.Э., Гомова Т.А., Федотова Е.E. Эффективность и безопасность профилактики венозных тромбоэмболических осложнений у беременных высокого риска: анализ результатов регистра беременных «БЕРЕГ». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):705–715. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.652.; Харлов Н.С., Шаповалова Е.А., Басос А.С., Карамян Р.А., Бабина У.Ф., Белоусов А.М. Блокада верхнего гипогастрального сплетения в сочетании с превентивной инфильтрационной анестезией операционных ран – новый взгляд на периоперационную анальгезию при лапароскопической миомэктомии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):717–726. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.682.; Гридасова О.С., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Иванов А.Е., Блинов Д.В., Татаринцева А.Ю. Оценка уровня фактора роста эндотелия сосудов в крови пациенток с вульвовагинальной атрофией. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):727–736. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.684.; Громова О.А., Торшин И.Ю., Тапильская Н.И. Миоинозитол и D-хироинозитол в комплексе с фолатами и марганцем как факторы мужского здоровья: воздействие на структуру и фертильность сперматозоидов. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):737–757. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.687.; Коломыцева Л.Н., Небора Е.Д., Джамалутинов А.Д., Суфияров Д.И., Мугинова Д.Р., Муллагулова И.И., Тушигов А.С., Базарова З.Д., Носинкова Т.А., Хусейнова Л.А., Деревянко К.А., Абаева М.П., Магомедова Ж.Ж., Борлакова С.М. Овариальная токсичность эндокринных дизрапторов: современное состояние проблемы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):759–775. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.658.; Павлова З.Ш., Орлова Я.А., Камалов А.А. Влияние прогестерона на заболевания предстательной железы и перспективы его использования для профилактики и лечения доброкачественной гиперплазии предстательной железы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):776–787. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.662.; Аполихина И.А., Горбунова Е.А., Саидова А.С., Тарнаева Л.А. Роль локальной гормональной терапии эстриолом в комплексном ведении женщин с генитоуринарным менопаузальным синдромом: серия клинических наблюдений. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):788–799. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.668.; Карпова А.Л., Мостовой А.В., Баранов А.А., Аникеева Л.А., Клубничкина Е.В., Заплатников А.Л., Карпов Л.Н. Врожденная инфекция у доношенного новорожденного ребенка, вызванная вирусом герпеса человека 6-го типа: обзор литературы и клинический случай. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):801–811. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.635.; Козлов Л.А., Чикмарева К.А. Педагогические раздумья о термине «Признак отделения последа Кюстнера–Чукалова». Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(5):812–817. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.685.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2591

  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Online First ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Online First ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2566/1382; Сотникова Н.Ю., Малышкина А.И., Куст А.В., Воронин Д.Н. Анализ дифференцировки периферических B-лимфоцитов у женщин с угрожающим самопроизвольным выкидышем и привычным невынашиванием беременности в анамнезе. Сибирский научный медицинский журнал. 2021;41(3):38–44. https://doi.org/10.18699/SSMJ20210305.; Галкина Д.Е., Макаренко Т.А., Окладников Д.В. Иммунологические аспекты нормальной и патологически протекающей беременности. Вестник Российской академии медицинских наук. 2022;77(1):13–24. https://doi.org/10.15690/vramn1507.; Ticconi C., Di Simone N., Campagnolo L., Fazleabas A. Clinical consequences of defective decidualization. Tissue Cell. 2021;72:101586. https://doi.org/10.1016/j.tice.2021.101586.; Saribas G.S., Akarca Dizakar O., Ozogul C. et al. Ellagic acid increases implantation rates with its antifibrotic effect in the rat model of intrauterine adhesion. Pathol Res Pract. 2023;246:154499. https://doi.org/10.1016/j.prp.2023.154499.; Марьин А.А., Танцерева И.Г., Большаков В.В., Коломиец Н.Э. Лекарственные растения в коррекции климактерических расстройств. Фундаментальная и клиническая медицина. 2019;4(1):80–90.; Arck P.C., Hecher K. Fetomaternal immune cross-talk and its consequences for maternal and offspring's health. Nat Med. 2013;19(5):548–56. https://doi.org/10.1038/nm.3160.; Vacca P., Vitale C., Montaldo E. et al. CD34+ hematopoietic precursors are present in human decidua and differentiate into natural killer cells upon interaction with stromal cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011;108(6):2402–7. https://doi.org/10.1073/pnas.1016257108.; Acar N., Ustunel I., Demir R. Uterine natural killer (uNK) cells and their missions during pregnancy: a review. Acta Histochem. 2011;113(2):82–91. https://doi.org/10.1016/j.acthis.2009.12.001.; Kopcow H.D., Allan D.S., Chen X. et al. Human decidual NK cells form immature activating synapses and are not cytotoxic. Proc Natl Acad Sci U S A. 2005;102(43):15563–8. https://doi.org/10.1073/pnas.0507835102.; Huhn O., Zhao X., Esposito L. et al. How do uterine natural killer and innate lymphoid cells contribute to successful pregnancy? Front Immunol. 2021;12:607669. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.607669.; Zhang X., Wei H. Role of decidual natural killer cells in human pregnancy and related pregnancy complications. Front Immunol. 2021;12:728291. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.728291.; Chao K.H., Yang Y.S., Ho H.N. et al. Decidual natural killer cytotoxicity decreased in normal pregnancy but not in anembryonic pregnancy and recurrent spontaneous abortion. Am J Reprod Immunol. 1995;34(5):274–80. https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.1995.tb00953.x.; King A., Birkby C., Loke Y.W. Early human decidual cells exhibit NK activity against the K562 cell line but not against first trimester trophoblast. Cell Immunol. 1989;118(2):337–44. https://doi.org/10.1016/0008-8749(89)90382-1.; Sojka D.K., Yang L., Plougastel-Douglas B. et al. Cutting edge: local proliferation of uterine tissue-resident NK cells during decidualization in mice. J Immunol. 2018;201(9):2551-2556. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1800651.; Sojka D.K., Yang L., Yokoyama W.M. Uterine natural killer cells. Front Immunol. 2019;10:960. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.00960.; Gamliel M., Goldman-Wohl D., Isaacson B. et al. Trained memory of human uterine NK cells enhances their function in subsequent pregnancies. Immunity. 2018;48(5):951–962.e5. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2018.03.030.; Prefumo F., Ganapathy R., Thilaganathan B., Sebire N.J. Influence of parity on first trimester endovascular trophoblast invasion. Fertil Steril. 2006;85(4):1032–6. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.09.055.; Ashkar A.A., Di Santo J.P., Croy B.A. Interferon gamma contributes to initiation of uterine vascular modification, decidual integrity, and uterine natural killer cell maturation during normal murine pregnancy. J Exp Med. 2000;192(2):259–70. https://doi.org/10.1084/jem.192.2.259.; Ruiz J.E., Kwak J.Y., Baum L. et al. Effect of intravenous immunoglobulin G on natural killer cell cytotoxicity in vitro in women with recurrent spontaneous abortion. J Reprod Immunol. 1996;31(1–2):125–41. https://doi.org/10.1016/0165-0378(96)00969-2.; Kuroda K., Venkatakrishnan R., James S. et al. Elevated periimplantation uterine natural killer cell density in human endometrium is associated with impaired corticosteroid signaling in decidualizing stromal cells. J Clin Endocrinol Metab. 2013;98(11):4429–37. https://doi.org/10.1210/jc.2013-1977.; Wilkens J., Male V., Ghazal P. et al. Uterine NK cells regulate endometrial bleeding in women and are suppressed by the progesterone receptor modulator asoprisnil. J Immunol. 2013;191(5):2226–35. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1300958.; Kalkunte S.S., Mselle T.F., Norris W.E. еt al. Vascular endothelial growth factor C facilitates immune tolerance and endovascular activity of human uterine NK cells at the maternal-fetal interface. J Immunol. 2009;182(7):4085–92. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0803769.; Zhou Y., Fisher S.J., Janatpour M. et al. Human cytotrophoblasts adopt a vascular phenotype as they differentiate. A strategy for successful endovascular invasion? J Clin Invest. 1997;99(9):2139–51. https://doi.org/10.1172/JCI119387.; Co E.C., Gormley M., Kapidzic M. et al. Maternal decidual macrophages inhibit NK cell killing of invasive cytotrophoblasts during human pregnancy. Biol Reprod. 2013;88(6):155. https://doi.org/10.1095/biolreprod.112.099465.; Liu Y., Gao S., Zhao Y. et al. Decidual natural killer cells: a good nanny at the maternal-fetal interface during early pregnancy. Front Immunol. 2021;12:663660. https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.663660.; King A., Allan D.S., Bowen M. et al. HLA-E is expressed on trophoblast and interacts with CD94/NKG2 receptors on decidual NK cells. Eur J Immunol. 2000;30(6):1623–31. https://doi.org/10.1002/1521-4141(200006)30:63.0.CO;2-M.; Shojaei Z., Jafarpour R., Mehdizadeh S. et al. Functional prominence of natural killer cells and natural killer T cells in pregnancy and infertility: а comprehensive review and update. Pathol Res Pract. 2022;238:154062. https://doi.org/10.1016/j.prp.2022.154062.; Martin P., Gurevich D.B. Macrophage regulation of angiogenesis in health and disease. Semin Cell Dev Biol. 2021;119:101–10. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2021.06.010.; Li X.F., Charnock-Jones D.S., Zhang E. et al. Angiogenic growth factor messenger ribonucleic acids in uterine natural killer cells. J Clin Endocrinol Metab. 2001;86(4):1823–34. https://doi.org/10.1210/jcem.86.4.7418.; El-Azzamy H., Dambaeva S.V., Katukurundage D. et al. Dysregulated uterine natural killer cells and vascular remodeling in women with recurrent pregnancy losses. Am J Reprod Immunol. 2018;80(4):e13024. https://doi.org/10.1111/aji.13024.; Quenby S., Kalumbi C., Bates M. et al. Prednisolone reduces preconceptual endometrial natural killer cells in women with recurrent miscarriage. Fertil Steril. 2005;84(4):980–4. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.05.012.; Tuckerman E., Mariee N., Prakash A. et al. Uterine natural killer cells in peri-implantation endometrium from women with repeated implantation failure after IVF. J Reprod Immunol. 2010;87(1–2):60–6. https://doi.org/10.1016/j.jri.2010.07.001.; Michimata T., Ogasawara M.S., Tsuda H. et al. Distributions of endometrial NK cells, B cells, T cells, and Th2/Tc2 cells fail to predict pregnancy outcome following recurrent abortion. Am J Reprod Immunol. 2002;47(4):196–202. https://doi.org/10.1034/j.1600-0897.2002.01048.x.; Lachapelle M.H., Miron P., Hemmings R., Roy D.C. Endometrial T, B, and NK cells in patients with recurrent spontaneous abortion. Altered profile and pregnancy outcome. J Immunol. 1996;156(10):4027–34.; Li H., Hou Y., Zhang S. et al. CD49a regulates the function of human decidual natural killer cells. Am J Reprod Immunol. 2019;81(4):e13101. https://doi.org/10.1111/aji.13101; Guo W., Fang L., Li B. et al. Decreased human leukocyte antigen-G expression by miR-133a contributes to impairment of proinvasion and proangiogenesis functions of decidual NK cells. Front Immunol. 2017;8:741. https://doi.org/10.3389/fimmu.2017.00741.; Маев И.В., Андреев Д.Н., Кучерявый Ю.А. Инфекция Helicobacter pylori и экстрагастродуоденальные заболевания. Терапевтический архив. 2015;87(8):103–10. https://doi.org/10.17116/terarkh2015878103-110.; Tossetta G., Fantone S., Giannubilo S.R. et al. Pre-eclampsia onset and SPARC: a possible involvement in placenta development. J Cell Physiol. 2019;234(5):6091–8. https://doi.org/10.1002/jcp.27344.; Croy B.A., van den Heuvel M.J., Borzychowski A.M., Tayade C. Uterine natural killer cells: a specialized differentiation regulated by ovarian hormones. Immunol Rev. 2006;214:161–85. https://doi.org/10.1111/j.1600-065X.2006.00447.x.; Kieckbusch J., Gaynor L.M., Moffett A., Colucci F. MHC-dependent inhibition of uterine NK cells impedes fetal growth and decidual vascular remodelling. Nat Commun. 2014;5:3359. https://doi.org/10.1038/ncomms4359.; Moffett A., Shreeve N. First do no harm: uterine natural killer (NK) cells in assisted reproduction. Hum Reprod. 2015;30(7):1519–25. https://doi.org/10.1093/humrep/dev098.; Fukui A., Funamizu A., Yokota M. et al. Uterine and circulating natural killer cells and their roles in women with recurrent pregnancy loss, implantation failure and preeclampsia. J Reprod Immunol. 2011;90(1):105–10. https://doi.org/10.1016/j.jri.2011.04.006.; Zhang J., Dunk C.E., Shynlova O. et al. TGFb1 suppresses the activation of distinct dNK subpopulations in preeclampsia. EBioMedicine. 2019;39:531–9. https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2018.12.015.; Du M., Wang W., Huang L. et al. Natural killer cells in the pathogenesis of preeclampsia: a double-edged sword. J Matern Fetal Neonatal Med. 2022;35(6):1028–35. https://doi.org/10.1080/14767058.2020.1740675.; Saghafian Larijani S., Biglari E., Biglarifar R. The correlation between serum sodium levels and preeclampsia severity in pregnant women: a cross-sectional study. J Renal Inj Prev. 2025;14(4):e38440. https://doi.org/10.34172/jrip.2025.38440.; Габидуллина Р.И., Кошельникова Е.А., Шигабутдинова Т.Н. и др. Эндометриоз: влияние на фертильность и исходы беременности. Гинекология. 2021;23(1):12–7. https://doi.org/10.26442/20795696.2021.1.200477.; Pant A., Moar K., Arora T.K., Maurya P.K. Implication of biosignatures in the progression of endometriosis. Pathol Res Pract. 2024;254:155103. https://doi.org/10.1016/j.prp.2024.155103.; Giuliani E., Parkin K.L., Lessey B.A. et al. Characterization of uterine NK cells in women with infertility or recurrent pregnancy loss and associated endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2014;72(3):262–9. https://doi.org/10.1111/aji.12259.; Thiruchelvam U., Wingfield M., O'Farrelly C. Increased uNK progenitor cells in Women with endometriosis and Infertility are associated with low levels of endometrial stem cell factor. Am J Reprod Immunol. 2016;75(4):493–502. https://doi.org/10.1111/aji.12486.; Pašalić E., Tambuwala M.M., Hromić-Jahjefendić A. Endometriosis: classification, pathophysiology, and treatment options. Pathol Res Pract. 2023;251:154847. https://doi.org/10.1016/j.prp.2023.154847.; Tang A.W., Alfirevic Z., Turner M.A. et al. A feasibility trial of screening women with idiopathic recurrent miscarriage for high uterine natural killer cell density and randomizing to prednisolone or placebo when pregnant. Hum Reprod. 2013;28(7):1743–52. https://doi.org/10.1093/humrep/det117.; Yang Y., Ru H., Zhang S. et al. The effect of granulocyte colony-stimulating factor on endometrial receptivity of implantation failure mouse. Reprod Sci. 2025;32(1):200–17. https://doi.org/10.1007/s43032-024-01527-6.; Kalem Z., Namli Kalem M., Bakirarar B. et al. Intrauterine G-CSF administration in recurrent implantation failure (RIF): An Rct. Sci Rep. 2020;10(1):5139. https://doi.org/10.1038/s41598-020-61955-7.; Bumbăcea R.S., Udrea M.R., Ali S., Bojincă V.C. Balancing benefits and risks: a literature review on hypersensitivity reactions to human G-CSF (granulocyte colony-stimulating factor). Int J Mol Sci. 2024;25(9):4807. https://doi.org/10.3390/ijms25094807.; Scarpellini F., Sbracia M. Use of granulocyte colony-stimulating factor for the treatment of unexplained recurrent miscarriage: a randomised controlled trial. Hum Reprod. 2009;24(11):2703–8. https://doi.org/10.1093/humrep/dep240.; Arefi S., Fazeli E., Esfahani M. et al. Granulocyte-colony stimulating factor may improve pregnancy outcome in patients with history of unexplained recurrent implantation failure: an RCT. Int J Reprod Biomed. 2018;16(5):299–304.; Santjohanser C., Knieper C., Franz C. et al. Granulocyte-colony stimulating factor as treatment option in patients with recurrent miscarriage. Arch Immunol Ther Exp (Warsz). 2013;61(2):159–64. https://doi.org/10.1007/s00005-012-0212-z.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2566

  17. 17
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 3 (2025); 322-326 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 3 (2025); 322-326 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2491/1341; Соловьевская Н.Л., Пряничников С.В. Особенности течения беременности у женщин различных возрастных групп в условиях Кольского Севера. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):327–340. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.576.; Мэлэк М.И., Игнатко И.В., Тимохина Е.В., Кузьмина Т.Е., Федюнина И.А., Самойлова Ю.А., Алиева Ф.Н., Григорьян И.С., Подсекаева С.А. Использование доплерографии глазных артерий в прогнозировании и ранней диагностике преэклампсии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):341–350. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.609.; Воробьев А.В., Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Солопова А.Г., Мамчич Д.М., Мун Э.Д., Блинов Д.В., Гри Ж.-К., Элалами И., Геротзиафас Г., Ван Дреден П., Макацария А.Д. Система гемостаза и метастазирование: терапевтический потенциал антикоагулянтов при раке яичников. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):351–359. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.644.; Тормозова А.В., Эракаева А.А., Ибадуллаева Г.А., Галата А.С., Асиновская А.С., Кузюра Д.Э., Ефремова К.Н., Чос В.М., Сварник У.В., Дьяченко А.А., Мавлютова А.Н., Мукосий Л.А., Карпусь Ю.С., Пирожкова Е.Д., Альбекова Ф.А., Сорокина Л.Е. Таксономическое разнообразие микробиомного кишечного ландшафта и его клиническое значение при привычном невынашивании беременности. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):360–368. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.620.; Сьяриф Ш.Д.Р., Ритонга М.А., Анвар Р. Взаимосвязь между индексом массы тела при подростковой беременности и преэклампсией в больнице Хасана Садыкина в 2019–2023 гг. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):369–376. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.603.; Бицадзе В.О., Хизроева Д.Х., Грандоне Э., Габидуллина Р.И., Третьякова М.В., Макацария Н.А., Гашимова Н.Р., Григорьева К.Н., Воробьев А.В., Лазарчук А.В., Муравьёва М.М., Кренделева А.Г., Полякова Т.Е., Зайнулина М.С., Капанадзе Д.Л., Ягубова Ф.Э., Гри Ж.-К., Элалами И., Геротзиафас Г., Ван Дреден П., Макацария А.Д. Венозные и артериальные тромбозы в программах ВРТ: эпидемиология и превентивные стратегии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):377–388. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.656.; Загидуллина А.А., Джамбулатова Л.А., Шатуева М.А., Донгак Т.Б., Лаубах Я.С., Шакирова Д.С., Голанцев А.С., Пайзулаева Х.Р., Ястребова Д.П., Аксенов А.М., Гончарова Е.С., Ожерельева М.А., Саргсян Д.Г. Методы сохранения фертильности в контексте лечения рака молочной железы: реальность и перспективы. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):389–407. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.607.; Дикке Г.Б., Макацария А.Д., Зиганшин А.М., Шайхиева Э.А., Бицадзе В.О. Анатомия и функция мышечного комплекса, замыкающего влагалище, в норме и при пролапсе тазовых органов. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):408–422. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.615.; Лебина В.А., Шихалахова О.Х., Кохан А.А., Рашидов И.Ю., Тажев К.А., Филиппова А.В., Мышинская Е.П., Сымолкина Ю.В., Ибуев Ю.И., Матаева А.А., Сиротенко А.Н., Габараева Т.Т., Аскерова А.И. Возможности и ограничения внедрения технологий искусственного интеллекта репродуктивную медицину. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):423–442. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.591.; Антонова А.С., Хизроева Д.Х., Калашникова И.С., Третьякова М.В., Попёнова Ю.А., Кунешко Н.Ф., Фаткуллина Л.С. Система комплемента у беременных с тяжелой преэклампсией. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):443–452. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.626.; Гасанов М.Г., Тугушева Р.А., Карапетян М.У., Воробьев А.В. Патрик Кристофер Стептоу: хирург, без которого не было бы ЭКО. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2025;19(3):453–457. https://doi.org/10.17749/2313-7347/ob.gyn.rep.2025.636.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2491

  18. 18
    Academic Journal

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 2 (2025); 201-215 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 2 (2025); 201-215 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2428/1321; Kovesdy C.P. Epidemiology of chronic kidney disease: an update 2022. Kidney Int Suppl (2011). 2022;12(1):7–11. https://doi.org/10.1016/j.kisu.2021.11.003.; Luders C. Reproductive rights for women with chronic kidney disease. Unfortunately, we are still in our infancy. J Bras Nefrol. 2023;45(2):140–1. https://doi.org/10.1590/2175-8239-JBN-2023-E008en.; Jarrick S., Lundberg S., Stephansson O. et al. Pregnancy outcomes in women with immunoglobulin A nephropathy: a nationwide population-based cohort study. J Nephrol. 2021;34(5):1591–8. https://doi.org/10.1007/s40620-021-00979-2.; Relph S., Patel T., Delaney L. et al. Adverse pregnancy outcomes in women with diabetes-related microvascular disease and risks of disease progression in pregnancy: A systematic review and meta-analysis. PLoS Med. 2021;18(11):e1003856. https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1003856.; Elahi T., Ahmed S., Mubarak M., Ahmed E. Maternal and fetal outcomes in pregnancy complicated by pre-existing lupus nephritis: Insights from a developing country Pakistan. Lupus. 2024;33(7):728–36. https://doi.org/10.1177/09612033241246642.; Jeyaraman D., Walters B., Bramham K. et al. Adverse pregnancy outcomes in pregnant women with chronic kidney disease: A systematic review and meta-analysis. BJOG. 2024;131(10):1331–40. https://doi.org/10.1111/1471-0528.17807.; Клинические рекомендации. Преэклампсия. Эклампсия. Отеки, протеинурия и гипертензивные расстройства во время беременности, в родах и послеродовом периоде. М.: Министерство здравоохранения Российской Федерации, 2021. 104 с. Режим доступа: https://globus-med.center/site/media/files/standarts/clinic-rek-16.pdf. [Дата обращения: 15.07.2024].; Hypertension in pregnancy. Report of the American College of Obstetricians and Gynecologists’ Task Force on Hypertension in Pregnancy. Obstet Gynecol. 2013;122(5):1122–31. https://doi.org/10.1097/01.AOG.0000437382.03963.88.; Heyman S.N., Raz I., Dwyer J.P. et al. Diabetic proteinuria revisited: updated physiologic perspectives. Cells. 2022;11(18):2917. https://doi.org/10.3390/cells11182917.; Comper W.D., Vuchkova J., McCarthy K.J. New insights into proteinuria/albuminuria. Front Physiol. 2022;13:991756. https://doi.org/10.3389/fphys.2022.991756.; Ye Q., Lan B., Liu H. et al. A critical role of the podocyte cytoskeleton in the pathogenesis of glomerular proteinuria and autoimmune podocytopathies. Acta Physiol (Oxf). 2022;235(4):e13850. https://doi.org/10.1111/apha.13850.; Kuo V.S., Koumantakis G., Gallery E.D. Proteinuria and its assessment in normal and hypertensive pregnancy. Am J Obstet Gynecol. 1992;167(3):723–8. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(11)91578-6.; Higby K., Suiter C.R., Phelps J.Y. et al. Normal values of urinary albumin and total protein excretion during pregnancy. Am J Obstet Gynecol. 1994;171(4):984–9. https://doi.org/10.1016/s0002-9378(13)90019-3.; Phillips J.K., McBride C.A., Hale S.A. et al. Examination of prepregnancy and pregnancy urinary protein levels in healthy nulliparous women. Reprod Sci. 2017;24:407–12. https://doi.org/10.1177/1933719116657198.; Никольская И.Г., Новикова С.В., Прокопенко Е.И. и др. Опыт ведения беременных с хронической болезнью почек разных стадий. Российский вестник акушера-гинеколога. 2023;23(6–2):189–97. https://doi.org/10.17116/rosakush202323062189.; Wiles K., Chappell L.C., Lightstone L., Bramham K. Updates in diagnosis and management of preeclampsia in women with CKD. Clin J Am Soc Nephrol. 2020;15(9):1371–80. https://doi.org/10.2215/CJN.15121219.; Yuan F., Li Z., Chen S. et al. Risk prediction for preeclampsia in CKD patients: development of a model in a retrospective cohort. J Nephrol. 2024;37(9):2499–2508. https://doi.org/10.1007/s40620-024-02010-w.; Morton A., Burke M., Jarvis E., Kumar S. Changes in proteinuria and diagnosing preeclampsia in CKD pregnancy. Pregnancy Hypertens. 2020;20:92–5. https://doi.org/10.1016/j.preghy.2020.03.005.; Piccoli G.B., Tavassoli E., Melluzza C. et al. Severe diabetic nephropathy in type 1 diabetes and pregnancy – a case series. Rev Diabet Stud. 2013;10(1):68–78. https://doi.org/10.1900/RDS.2013.10.68.; Демьянова К.А., Козловская Н.Л., Коротчаева Ю.В. и др. Анализ течения и исходов беременности у пациенток с поздними стадиями хронической болезни почек. Терапевтический архив. 2021;93(6):685–92. https://doi.org/10.26442/00403660.2021.06.200867.; Lopes van Balen V.A., van Gansewinkel T.A.G., de Haas S. et al. Maternal kidney function during pregnancy: systematic review and meta-analysis. Ultrasound Obstet Gynecol. 2019;54(3):297–307. https://doi.org/10.1002/uog.20137.; Novotny S., Lee-Plenty N., Wallace K. et al. Acute kidney injury associated with preeclampsia or hemolysis, elevated liver enzymes, and low platelets syndrome. Pregnancy Hypertens. 2020;19:94–9. https://doi.org/10.1016/j.preghy.2019.11.010.; Scurt F.G., Morgenroth R., Bose K. et al. Pr-AKI: acute kidney injury in pregnancy – etiology, diagnostic workup, management. Geburtshilfe Frauenheilkd. 2022;82(3):297–316. https://doi.org/10.1055/a-1666-0483.; Licht C., Al-Dakkak I., Anokhina K. et al. Characterization of patients with aHUS and associated triggers or clinical conditions: A Global aHUS Registry analysis. Nephrology (Carlton). 2024;29(8):519–27. https://doi.org/10.1111/nep.14304.; Wiles K., Webster P., Seed P.T. et al. The impact of chronic kidney disease stages 3-5 on pregnancy outcomes. Nephrol Dial Transplant. 2021;36(11):2008–17. https://doi.org/10.1093/ndt/gfaa247.; Reynolds M.L., Oliverio A.L., Zee J. et al. Pregnancy history and kidney disease progression among women enrolled in cure glomerulonephropathy. Kidney Int Rep. 2023;8(4):805–17. https://doi.org/10.1016/j.ekir.2023.01.036.; Wewers T.M., Schulz A., Nolte I. et al. Circulating soluble fms-like tyrosine kinase in renal diseases other than preeclampsia. J Am Soc Nephrol. 2021;32(8):1853–63. https://doi.org/10.1681/ASN.2020111579.; Wiles K., Bramham K., Seed P.T. et al. Placental and endothelial biomarkers for the prediction of superimposed pre-eclampsia in chronic kidney disease. Pregnancy Hypertens. 2021;24:58–64. https://doi.org/10.1016/j.preghy.2021.02.010.; Kurlak L.O., Pipkin F.B., Mohaupt M.G., Mistry H.D. Responses of the renin-angiotensin-aldosterone system in pregnant chronic kidney disease patients with and without superimposed pre-eclampsia. Clin Kidney J. 2019;12(6):847–54. https://doi.org/10.1093/ckj/sfz025.; Baer R.J., Nidey N., Bandoli G. et al. Risk of early birth among women with a urinary tract infection: a retrospective cohort study. AJP Rep. 2021;11(1):e5–e14. https://doi.org/10.1055/s-0040-1721668.; Sorohan B.M., Andronesi A., Ismail G. et al. Clinical predictors of preeclampsia in pregnant women with chronic kidney disease. Medicina (Kaunas). 2020;56(5):213. https://doi.org/10.3390/medicina56050213.; Li Z., Chen S., Tan Y. et al. Twenty-four-hour proteinuria levels are associated with adverse pregnancy outcomes among women with CKD. Clin Kidney J. 2023;16(10):1634–43. https://doi.org/10.1093/ckj/sfad044.; de Buhren H., Hertig A. Staging pregnancy-related acute kidney injury according to Kidney Disease: Improving Global Outcomes guidelines: what are the barriers? Nephrol Dial Transplant. 2021;36(6):959–61. https://doi.org/10.1093/ndt/gfaa259.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2428

  19. 19
  20. 20
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The authors declare no funding, Авторы заявляют об отсутствии финансовой поддержки

    Πηγή: Obstetrics, Gynecology and Reproduction; Vol 19, No 3 (2025); 341-350 ; Акушерство, Гинекология и Репродукция; Vol 19, No 3 (2025); 341-350 ; 2500-3194 ; 2313-7347

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.gynecology.su/jour/article/view/2388/1312; GBD 2015 Maternal Mortality Collaborators. Global, regional, and national levels of maternal mortality, 1990–2015: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet. 2016;388(10053):1775–812. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(16)31470-2.; GBD 2015 Child Mortality Collaborators. Global, regional, national, and selected subnational levels of stillbirths, neonatal, infant, and under-5 mortality, 1980–2015: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet. 2016;388(10053):1725–774. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(16)31575-6.; Rana S., Lemoine E., Granger J.P., Karumanchi S.A. Preeclampsia: pathophysiology, challenges, and perspectives. Circ Res. 2019;124(7):1094–112. https://doi.org/10.1161/CIRCRESAHA.118.313276.; Leal C.R.V., Botezelli H., Las Casas J.F.D.C. et al. Urinary biomarkers of preeclampsia: an update. Adv Clin Chem. 2025;124:197–211. https://doi.org/10.1016/bs.acc.2024.11.002.; Brown M.A., Magee L.A., Kenny L.C. et al. The hypertensive disorders of pregnancy: ISSHP classification, diagnosis & management recommendations for international practice. Pregnancy Hypertens. 2018;13:291–310. https://doi.org/10.1016/j.preghy.2018.05.004.; Стрижаков А.Н., Тимохина Е.В., Ибрагимова С.М. и др. Новые возможности дифференциального прогнозирования ранней и поздней преэклампсии. Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2018;12(2):55–61. https://doi.org/10.17749/2313-7347.2018.12.2.055-061.; Staff A.C, Fjeldstad H.E., Fosheim I.K. et al. Failure of physiological transformation and spiral artery atherosis: their roles in preeclampsia. Am J Obstet Gynecol. 2022;226(2S):S895–S906. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2020.09.026.; Staff A.C. The two-stage placental model of preeclampsia: an update. J Reprod Immunol. 2019;134–135:1–10. https://doi.org/10.1016/j.jri.2019.07.004.; Gestational Hypertension and Preeclampsia: ACOG Practice Bulletin, Number 222. Obstet Gynecol. 2020;135(6):e237–e260. https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000003891.; Timokhina E., Strizhakov A., Ibragimova S. et al. Matrix metalloproteinases MMP-2 and MMP-9 occupy a new role in severe preeclampsia. J Pregnancy. 2020;2020:8369645. https://doi.org/10.1155/2020/8369645.; Dai X., Kang L., Ge H. Doppler parameters of ophthalmic artery in women with preeclampsia: a meta-analysis. J Clin Hypertens (Greenwich). 2023;25(1):5–12. https://doi.org/10.1111/jch.14611.; Hikima M.S., Adamu M.Y., Lawal Y. et al. Changes in opthalmic artery Doppler velocimetry in women with preeclampsia in Kano, Nigeria. Ann Afr Med. 2023;22(1):5–10. https://doi.org/10.4103/aam.aam_26_21.; Kalafat E., Thilaganathan B. Cardiovascular origins of preeclampsia. Curr Opin Obstet Gynecol. 2017;29(6):383–9. https://doi.org/10.1097/GCO.0000000000000419.; Храмченко Н.В., Воеводин С.М., Зарецкая Н.В., Андронова Н.В. Предикторы тяжелой преэклампсии в III триместре беременности по данным периорбитальной допплерометрии. Акушерство и гинекология. 2016;(4):44–8. https://doi.org/10.18565/aig.2016.4.44-48.; Hata T., Senoh D., Hata K., Kitao M. Ophthalmic artery velocimetry in pregnant women. Lancet. 1992;340(8812):182–3. https://doi.org/10.1016/0140-6736(92)93268-r.; Alves J.A.G., de Sousa P.C P., Holanda Moura S.B.M.E. et al. First-trimester maternal ophthalmic artery Doppler analysis for prediction of pre-eclampsia. Ultrasound Obstet Gynecol. 2014;44(4):411–8. https://doi.org/10.1002/uog.13338.; Matias D.S., Costa R.F., Matias B.S. et al. Predictive value of ophthalmic artery Doppler velocimetry in relation to development of pre-eclampsia. Ultrasound Obstet Gynecol. 2014;44(4):419–26. https://doi.org/10.1002/uog.13313.; Vaz de Melo P.F.M., Roever L., Mendonça T.M.S. et al. Ophthalmic artery Doppler in the complementary diagnosis of preeclampsia: a systematic review and meta-analysis. BMC Pregnancy Childbirth. 2023;23(1):343. https://doi.org/10.1186/s12884-023-05656-9.; Sarno M., Wright A., Vieira N. et al. Ophthalmic artery Doppler in combination with other biomarkers in prediction of pre-eclampsia at 35-37 weeks' gestation. Ultrasound Obstet Gynecol. 2021;57(4):600–6. https://doi.org/10.1002/uog.23517. Erratum in: Ultrasound Obstet Gynecol. 2022;59(3):407. https://doi.org/10.1002/uog.24878.; Kumari N., Ranjan R.K., Rai N. et al. A correlational study of ophthalmic artery Doppler parameters and maternal blood pressure in normotensive and pre-eclamptic pregnancies at a tertiary care hospital. Cureus. 2023;15(6):e40713. https://doi.org/10.7759/cureus.40713.; https://www.gynecology.su/jour/article/view/2388