Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 351 για την αναζήτηση '"полиорганная-недостаточность"', χρόνος αναζήτησης: 1,23δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    Συνεισφορές: 1

    Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 15, No 4 (2025); 609-618 ; Инфекция и иммунитет; Vol 15, No 4 (2025); 609-618 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  5. 5
    Academic Journal

    Πηγή: FARMAKOEKONOMIKA. Modern Pharmacoeconomics and Pharmacoepidemiology; Vol 18, No 3 (2025); 376-389 ; ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология; Vol 18, No 3 (2025); 376-389 ; 2070-4933 ; 2070-4909

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1220/640; Жуйкова Т.В., Безель В.С. Экологическая токсикология. М.: Юрайт; 2025: 362 с.; Торшин И.Ю., Громова О.А. Проблемы использования фенола (гидроксибензола) и парабенов в качестве стабилизаторов фармацевтических средств: анализ с применением методов машинного обучения. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2025; 18 (1): 125–39. https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2024.263.; Громова О.А., Калачева А.Г., Торшин И.Ю. и др. Недостаточность магния – достоверный фактор риска коморбидных состояний: результаты крупномасштабного скрининга магниевого статуса в регионах России. Фарматека. 2013; 6: 115–29.; Громова О.А., Лиманова О.А., Гоголева И.В. и др. Анализ взаимосвязи между обеспеченностью магнием и риском соматических заболеваний у россиянок 18–45 лет методами интеллектуального анализа данных. Эффективная фармакотерапия. 2014; 23: 10–23.; Лиманова О.А., Торшин И.Ю., Сардарян И.С. и др. Обеспеченность микронутриентами и женское здоровье: интеллектуальный анализ клинико-эпидемиологических данных. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2014; 13 (2): 5–15.; Торшин И.Ю., Громова О.А., Тетруашвили Н.К. и др. Метрический анализ соотношений коморбидности между невынашиванием, эндометриозом, нарушениями менструального цикла и микронутриентной обеспеченностью в скрининге женщин репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2019; 5: 156–68. https://doi.org/10.18565/aig.2019.5.156-168; Торшин И.Ю., Лила А.М., Загородний Н.В. и др. Разработка верифицированной шкалы риска остеоартрита на основе кросс-секционного исследования клинико-анамнестических параметров и фармакологического анамнеза пациентов. ФАРМАКОЭКОНОМИКА. Современная фармакоэкономика и фармакоэпидемиология. 2023; 16 (1): 70–9. https://doi.org/10.17749/2070-4909/farmakoekonomika.2023.158.; Торшин И.Ю., Тапильская Н.И., Тетруашвили Н.К. и др. Разработка и апробация верифицированной балльной шкалы для оценки обеспеченности женщин репродуктивного возраста омега-3-полиненасыщенными жирными кислотами. Гинекология. 2021; 23 (6): 563–70. https://doi.org/10.26442/20795696.2021.6.201249.; Громова О.А., Егорова Е.Ю., Торшин И.Ю., Юдина Н.В. Верифицированная комплексная шкала «Калий: плазма, эритроциты, моча» (КПЭМ) для неинвазивной оценки состояния гомеостаза калия у пациентов. Терапия. 2017; 3 (6): 18–28.; Торшин И.Ю. О задачах оптимизации, возникающих при применении топологического анализа данных к поиску алгоритмов прогнозирования с фиксированными корректорами. Информатика и ее применения. 2023; 17 (2): 2–10. https://doi.org/10.14357/19922264230201.; Torshin I.Y. On solvability, regularity, and locality of the problem of genome annotation. Pattern Recognit Image Anal. 2010; 20: 386–95. https://doi.org/10.1134/S1054661810030156.; Рудаков К.В., Торшин И.Ю. Вопросы разрешимости задачи распознавания вторичной структуры белка. Информатика и ее применения. 2010; 4 (2): 25–35.; Торшин И.Ю. О формировании множеств прецедентов на основе таблиц разнородных признаковых описаний методами топологической теории анализа данных. Информатика и еe применения. 2023; 17 (3): 2–7. https://doi.org/10.14357/19922264230301.; Bingham C.O. 3rd, Buckland-Wright J.C., Garnero P., et al. Risedronate decreases biochemical markers of cartilage degradation but does not decrease symptoms or slow radiographic progression in patients with medial compartment osteoarthritis of the knee: results of the two-year multinational knee osteoarthritis structural arthritis study. Arthritis Rheum. 2006; 54 (11): 3494–507. https://doi.org/10.1002/art.22160.; Cheon E., Yang Y.S., Jo S., et al. Smoking-attributable Mortality in Korea, 2020: a meta-analysis of 4 databases. J Prev Med Public Health. 2024; 57 (4): 327–38. https://doi.org/10.3961/jpmph.23.471.; https://www.pharmacoeconomics.ru/jour/article/view/1220

  6. 6
  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 5.84 (2017); 91-99
    МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 5.84 (2017); 91-99
    МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 5.84 (2017); 91-99

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  10. 10
    Academic Journal

    Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 4.75 (2016); 96-101
    МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 4.75 (2016); 96-101
    МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 4.75 (2016); 96-101

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 21, № 4 (2024); 78-84 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 21, № 4 (2024); 78-84 ; 2541-8653 ; 2078-5658

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/1037/737; Алимова Х. П., Мустакимов А. А., Алибекова М. Б. Полиорганная недостаточность у детей: критерии диагностики, патофизиология и прогноз // Вестник экстренной медицины. – 2019. – № 6. – С. 92–97.; Бердиярова Г. С., Анохина С. Т., Абентаева Б. А. и др. Анализ мониторинга критических состояний в неонатологии // Наука о жизни и здоровье. – 2018. – № 3. – С. 21–26.; Кирилочев О. К., Китиашвили И. З., Тарасова З. Г. Перинатальные заболевания как ведущая причина летальных исходов у детей // Лечащий врач. – 2019. – № 9. – С. 46–51.; Bagshaw S.M., Stelfox H.T., Mc Dermid R.C. et al. Association between frailty and short- and long-term outcomes among critically ill patients: a multicentre prospective cohort study // CMAJ. – 2014. – Vol. 186, № 2. – P. 95–102. DOI:10.1503/cmaj.130639.; Gorga S. M., Carlton E. F., Kohne J. G. et al. Consensus acute kidney injury criteria integration identifies children at risk for long-term kidney dysfunction after multiple organ dysfunction syndrome // Pediatr. Nephrol. – 2021. – Vol. 36, № 6. – P. 1637–1646. DOI:10.1007/s00467-020-04865-0.; Kahn J. M., Le T., Angus D. C. et al. The epidemiology of chronic critical illness in the United States // Crit. Care Med. – 2015. – Vol. 43, № 2. – P. 282–287. DOI:10.1097/CCM.0000000000000710.; Lone N. I., Walsh T. S. Prolonged mechanical ventilation in critically ill patients: epidemiology, outcomes and modelling the potential cost consequences of establishing a regional weaning unit // Crit. Care. – 2011. – Vol. 15, № 2. – P. 102. DOI:10.1186/cc10117.; Meert K. L., Banks R., Holubkov R. at al. Eunice Kennedy Shriver National Institute of Child Health and Human Development Collaborative Pediatric Critical Care Research Network. Morbidity and mortality in critically ill children. II. A qualitative patient-level analysis of pathophysiologies and potential therapeutic solutions // CritCareMed. – 2020. – Vol. 48, № 6. – P. 799–807. DOI:10.1097/CCM.0000000000004332.; Poisson K., Lin J. J., Chen A. et al. Case 2: respiratory failure and multiple organ system dysfunction in a 7-day-old infant // Pediatr. Rev. – 2019. – Vol. 40, № 11. – P. 593–595. DOI:10.1542/pir.2017-0102.; Shapiro M. C., Henderson C. M., Hutton N. et al. Defining pediatric chronic critical illness for clinical care, research, and policy // Hosp. Pediatr. – 2017. – Vol. 7, № 4. – P. 236–244. DOI:10.1542/hpeds.2016-0107.; Sison S. M., Sivakumar G. K., Caufield-Noll C. et al. Mortality outcomes of patients on chronic mechanical ventilation in different care settings: A systematic review // Heliyon. – 2021. – Vol. 7, № 2. – 06230. DOI:10.1016/j.heliyon.2021.e06230.; Troch R., Schwartz J., Boss R. Slow and steady: a systematic review of icu care models relevant to pediatric chronic critical illness // J. Pediatr. Intens. Care. – 2020. – Vol. 9, № 4. – P. 233–240. DOI:10.1055/s-0040-1713160.; Watson R. S., Crow S. S., Hartman M. E. at al. Epidemiology and outcomes of pediatric multiple organ dysfunction syndrome // Pediatr Crit Care Med. – 2017. – Vol. 18, № 3, Suppl 1. – S4–S16. DOI:10.1097/PCC.0000000000001047.; Wynn J. L., Polin R. A. A neonatal sequential organ failure assessment scorepredicts mortality to late-onset sepsis in preterm very low birth weight infants // Pediatr. Res. – 2019. – Vol. 88. – P. 85–90. DOI:10.1038/s41390-019-0517-2.

  13. 13
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was carried out with financial support of the grant of Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education VolgSMU of the Ministry of Health of the Russian Federation “The role of systemic inflammation, endothelial dysfunction and coagulopathy in the pathogenesis of traumatic disease in severe combined injury” (order dated 12/26/2022 No. 2127-KO), Исследование выполнено при финансовом обеспечении за счет средств гранта ФГБОУ ВО ВолгГМУ МЗ РФ «Роль системного воспаления, эндотелиальной дисфункции и коагулопатии в патогенезе травматической болезни при тяжелой сочетанной травме» (приказ от 26.12.2022 № 2127-КО)

    Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 13, № 3 (2024); 385-398 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 13, № 3 (2024); 385-398 ; 2541-8017 ; 2223-9022

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1925/1481; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1925/1616; Лупинская З.А., Зарифьян А.Г., Гурович Т.Ц., Шлейфер С.Г. Эндотелий. Функция и дисфункция. Бишкек: КРСУ; 2008.; Малкова О.Г., Медведева С.Ю., Лейдерман И.Н. Взаимосвязь нарушений липидного обмена и эндотелиальной дисфункции у пациентов с тяжелым сепсисом. Вестник Уральской медицинской академической науки. 2011;(3):17–22.; Фирсов С.А., Матвеев Р.П. Эндотелиальная дисфункция и ее прогностическое значение при критических состояниях в результате дорожно-транспортного травматизма. Современные проблемы науки и образования. 2014;(6):1171.; Борщикова Т.И., Епифанцева Н.Н., Кан С.Л., Лызлов А.Н. Дисфункция сосудистого эндотелия при тяжелой черепно-мозговой травме. Медицина в Кузбассе. 2019;18(2):5–11.; Шабров А.В., Апресян А.Г., Добкес А.Л., Ермолов С.Ю., Ермолова Т. В., Манасян С.Г., и др. Современные методы оценки эндотелиальной дисфункции и возможности их применения в практической медицине. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2016;12(6):733–742. https://doi.org/10.20996/1819-6446-2016-12-6-733-742; Моррисон В.В., Божедомов А.Ю., Моррисон А.В. Эндотелиальная дисфункция при термической травме. Саратовский научно-медицинский журнал. 2019;15(2):377–379.; Гуманенко Е.К., Козлова В.К. (ред.) Политравма: травматическая болезнь, дисфункция иммунной системы. Современная стратегия лечения. Москва: ГЭОТАР–Медиа; 2008.; Петрищев Н.Н., Беркович О.А. Диагностическая ценность определения десквамированных эндотелиоцитов в крови. Клиническая лабораторная диагностика. 2001;(1):50–52.; Стрельникова Е.А., Трушкина П.Ю., Суров И.Ю., Короткова Н.В., Мжаванадзе Н.Д., Деев Р.В. Эндотелий in vivo и in vitro. Часть 1: гистогенез, структура, цитофизиология и ключевые маркеры. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2019;7(3):450–465. https://doi.org/10.23888/HMJ201973450–465; Власов Т.Д., Петрищев Н.Н. Дисфункция эндотелия: причины, механизмы, фармакологическая коррекция. В кн.: Физиология и патофизиология эндотелия. Санкт-Петербург СПбГМУ; 2003. с 4–38.; Foresta C, Schipilliti M, De Toni L, Magagna S, Lancerotto L, Azzena B, et al. Blood levels, apoptosis, and homing of the endothelial progenitor cells after skin burns and escharectomy. J Trauma. 2011;70(2):459–465. PMID: 21307748 https://doi.org/10.1097/TA.0b013e3181fcf83c; Kung CT, Su CM, Chen CT, Cheng HH, Chang MW, Hung CW, et al. Circulating endothelial progenitor cells may predict outcomes in adult patients with severe sepsis in the emergency department. Clin Chim Acta. 2016;455:1–6. PMID: 26797673 https://doi.org/10.1016/j.cca.2016.01.015; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1925

  14. 14
    Academic Journal

    Πηγή: General Reanimatology; Том 20, № 3 (2024); 42-52 ; Общая реаниматология; Том 20, № 3 (2024); 42-52 ; 2411-7110 ; 1813-9779

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479/1839; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479/1846; Costabella F., Patel K.B., Adepoju A.V., Singh P., Mahmoud H.A.H., Zafar A., Patel T., et al. Healthcare cost and outcomes associated with surgical site infection and patient outcomes in low- and middle-income countries. Cureus. 2023; 15 (7): e42493. DOI:10.7759/cureus.42493.; Charalampous P., Haagsma J.A., Jakobsen L.S. Gorasso V., Noguer I., Padron-Monedero A., Sarmiento R., et al. Burden of infectious disease studies in Europe and the United Kingdom: a review of methodological design choices. Epidemiol Infect. 2023; 151: e19. DOI:10.1017/S0950268823000031. PMID: 36621004.; Afzal M.S., Chennuri R.N., Naveed H., Bai B.R., Hanif R., Shahzad Z., Umer M., et al. Comparison of clinical outcomes between culture-positive and culture-negative sepsis and septic shock patients: a meta-analysis. Cureus. 2023; 15 (2): e35416. DOI:10.7759/cureus.35416. PMID: 36987463.; Wang W., Liu C.F. Sepsis heterogeneity. World J Pediatr. 2023; 19 (10): 919–927. DOI:10.1007/s12519-023-00689-8. PMID: 36735197.; Batool M., Galloway-Peña J. Clinical metagenomics-challenges and future prospects. Front Microbiol. 2023; 14: 1186424. DOI:10.3389/fmicb.2023.1186424. PMID: 37448579.; Remick B.C., Gaidt M.M., Vance R.E. Effector-triggered immunity. Annu Rev Immunol. 2023; 41: 453–481. DOI:10.1146/annurev-immunol-101721-031732. PMID: 36750319.; Martins Y.C., Ribeiro-Gomes F.L., Daniel-Ribeiro C.T. A short history of innate immunity. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2023; 118: e230023. DOI:10.1590/0074-02760230023. PMID: 37162063.; Belizaire R., Wong W.J., Robinette M.L., Ebert B.L. Clonal haematopoiesis and dysregulation of the immune system. Nat Rev Immunol. 2023; 23 (9): 595–610. DOI:10.1038/s41577-023-00843-3. PMID: 36941354.; Cron R.Q., Goyal G., Chatham W.W. Cytokine storm syndrome. Annu Rev Med. 2023; 74: 321–337. DOI:10.1146/annurev-med-042921-112837. PMID: 36228171.; Silva E.E., Skon-Hegg C., Badovinac V.P., Griffith T.S. The calm after the storm: implications of sepsis immunoparalysis on host immunity. J Immunol. 2023; 211 (5): 711–719. DOI:10.4049/jimmunol.2300171. PMID: 37603859.; Nasrollahi H., Talepoor A.G., Saleh Z., Vakili M.A., Heydarinezhad O., Karami N., Noroozi M., et al. Immune responses in mildly versus critically ill COVID-19 patients. Front Immunol. 2023; 14: 1077236. DOI:10.3389/fimmu.2023.1077236. PMID: 36793739.; Li J., Zhang K., Zhang Y., Gu Z., Huang C. Neutrophils in COVID-19: recent insights and advances. Virol J. 2023; 20 (1): 169. DOI:10.1186/s12985-023-02116-w. PMID: 37533131.; Fu X., Liu Z., Wang Y. Advances in the study of immunosuppressive mechanisms in sepsis. J Inflamm Res. 2023; 16: 3967–3981. DOI:10.2147/JIR.S426007. PMID: 37706064.; Zhang W., Fang X., Gao C., Song C., He Y., Zhou T., Yang X., et al. MDSCs in sepsis-induced immunosuppression and its potential therapeutic targets. Cytokine Growth Factor Rev. 2023; 69: 90–103. DOI:10.1016/j.cytogfr.2022.07.007. PMID: 35927154.; Kobayashi S.D., DeLeo F.R., Quinn M.T. Microbes and the fate of neutrophils. Immunol Rev. 2023; 314 (1): 210–228. DOI:10.1111/imr.13163. PMID: 36345955.; Liu S., Duan C., Xie J., Zhang J., Luo X., Wang Q., Liang X., et al. Peripheral immune cell death in sepsis based on bulk RNA and single-cell RNA sequencing. Heliyon. 2023; 9 (7): e17764. DOI:10.1016/j.heliyon.2023.e17764. PMID: 37455967.; Wu H., Tang T., Deng H., Chen D., Zhang C., Luo J., Chen S., et al. Immune checkpoint molecule Tim-3 promotes NKT cell apoptosis and predicts poorer prognosis in sepsis. Clin Immunol. 2023; 254: 109249. DOI:10.1016/j.clim.2023.109249. PMID: 36736642.; Huang L., Zhang X., Fan J., Liu X., Luo S., Cao D., Liu Y., et al. EGFR promotes the apoptosis of CD4+ T lymphocytes through TBK1/Glut1 induced Warburg effect in sepsis. J Adv Res. 2023; 44: 39–51. DOI:10.1016/j.jare.2022.04.010. PMID: 35618635.; Chao Y., Huang W., Xu Z., Li P., Gu S. Effect of RUNX1/FOXP3 axis on apoptosis of T and B lymphocytes and immunosuppression in sepsis. Open Med (Wars). 2023; 18 (1): 20230728. DOI:10.1515/med-2023-0728. PMID: 37636994.; Yu D., Xie Y., Li X. Based on the Hippo signaling pathway to explore the mechanism of autophagy in lung injury of acute respiratory distress syndrome induced by sepsis. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (8): 884–888. DOI:10.3760/cma.j.cn121430-20220705-00633. PMID: 37593872.; Yang L., Zhou L., Li F., Chen X., Li T., Zou Z., Zhi Y., et al. Diagnostic and prognostic value of autophagy-related key genes in sepsis and potential correlation with immune cell signatures. Front Cell Dev Biol. 2023; 11: 1218379. DOI:10.3389/fcell.2023.1218379. PMID: 37701780.; Di C., Du Y., Zhang R. Zhang L., Wang S. Identification of autophagy-related genes and immune cell infiltration characteristics in sepsis via bioinformatic analysis. J Thorac Dis. 2023; 15 (4): 1770–1784. DOI:10.21037/jtd-23-312. PMID: 37197531.; Yang Y.S., Zheng W.J., Liu C.Y., Chen W.-C., Xie W.-Z., He H.- F. Mitophagy-related genes could facilitate the development of septic shock during immune infiltration. Medicine (Baltimore). 2023; 102 (42): e35154. DOI:10.1097/MD.0000000000035154. PMID: 37861563.; Mangalesh S., Dudani S., Malik A. The systemic immuneinflammation index in predicting sepsis mortality. Postgrad Med. 2023; 135 (4): 345–351. DOI:10.1080/00325481.2022.2140535.PMID: 36287784.; Kourilovitch M., Galarza-Maldonado C. Could a simple biomarker as neutrophil-to-lymphocyte ratio reflect complex processes orchestrated by neutrophils? J Transl Autoimmun. 2022; 6: 100159. DOI:10.1016/j.jtauto.2022.100159. PMID: 37396460.; Zhao J., Dai R.S., Chen Y.Z., Zhuang Y.G. Prognostic significance of lymphocyte subpopulations for ICU-acquired infections in patients with sepsis: a retrospective study. J Hosp Infect. 2023; 140: 40-45. DOI:10.1016/j.jhin.2023.05.022. PMID: 37399906.; Plebani M. Why C-reactive protein is one of the most requested tests in clinical laboratories? Clin Chem Lab Med. 2023; 61 (9): 1540–1545. DOI:10.1515/cclm-2023-0086. PMID: 36745137.; Jiang X., Zhang C., Pan Y., Cheng X., Zhang W. Effects of Creactive protein trajectories of critically ill patients with sepsis on in-hospital mortality rate. Sci Rep. 2023; 13 (1): 15223. DOI:10.1038/s41598-023-42352-2. PMID: 37709919.; Ji S.-R., Zhang S.-H., Chang Y., Li H.-Y., Wang M.-Y., Zhu L., et al. C-reactive protein: the most familiar stranger. Immunol. 2023; 210 (6): 699–707. DOI:10.4049/jimmunol.2200831. PMID: 36881905.; Saura O., Luyt C-.E. Procalcitonin as a biomarker to guide treatments for patients with lower respiratory tract infections. Expert Rev Respir Med. 2023; 17 (8): 651–661. DOI:10.1080/17476348.2023.2251394. PMID: 37639716.; August B.A., Kale-Pradhan P.B., Giuliano C., Johnson L.B. Biomarkers in the intensive care setting: a focus on using procalcitonin and C-reactive protein to optimize antimicrobial duration of therapy. Pharmacotherapy. 2023; 43 (9): 935–949. DOI:10.1002/phar.2834. PMID: 37300522.; Molano-Franco D., Arevalo-Rodriguez I., Muriel A., Del Campo-Albendea L., Fernández-García S., Alvarez-Méndez A., Simancas-Racines D., et al., SEPSIS-BIOMARKERS Collaborators. Basal procalcitonin, C-reactive protein, interleukin-6, and presepsin for prediction of mortality in critically ill septic patients: a systematic review and metaanalysis. Diagn Progn Res. 2023; 7 (1): 15. DOI:10.1186/s41512-023-00152-2. PMID: 37537680.; Long A., Kleiner A., Looney R.J. Immune dysregulation. J Allergy Clin Immunol. 2023; 151 (1): 70–80. DOI:10.1016/j.jaci.2022.11.001. PMID: 36608984.; Das U.N. Infection, inflammation, and immunity in sepsis. Biomolecules. 2023; 13 (9): 1332. DOI:10.3390/biom13091332. PMID: 37759732.; Afshar Z.M., Barary M., Babazadeh A., Pirzaman A.T., Hosseinzadeh R., Alijanpour A., AllahgholipourA., et al. The role of cytokines and their antagonists in the treatment of COVID-19 patients. Rev Med Virol. 2023; 33 (1): e2372. DOI:10.1002/rmv.2372. PMID: 35621229.; Chen Y., Dong P., Zhang X. [Research advance on the role of pro-inflammatory cytokines in sepsis]. Zhonghua Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue. 2023; 35 (2): 212–216. DOI:10.3760/cma.j.cn121430-20220919-00846. PMID: 36916385.; Qin R., He L., Yang Z., Jia N., Chen R., Xie J., Fu W., et al. Identification of parameters representative of immune dysfunction in patients with severe and fatal COVID-19 infection: a systematic review and meta-analysis. Clin Rev Allergy Immunol. 2023; 64 (1): 33–65. DOI:10.1007/s12016-021-08908-8. PMID: 35040086.; Яковенко М. П., Антипин Э. Э., Бочкарева Н. А., Королева Н.И., Дроботова Е.Ф., Недашковский Э.В. Модифицированные блокады надключичного и грудных нервов при имплантации внутривенной портсистемы у онкологических пациентов. Общая реаниматология. 2023; 19 (3): 28–38. DOI:10.15360/1813-9779-2023-3-28-38.; Ратников В. А., Щеглов А. Н., Абрамовский С. В., Симутис И.С., Данилов М.С., Иванова Г.Г., Сыроватский А.А. Предикторы клинической эффективности гемосорбции цитокинов при COVID-19. Общая реаниматология. 2023; 19 (1): 20–26. DOI:10.15360/1813-9779-2023-1-2224.; Румянцев А.Г., Демина О.М., Греченко В.В., Ганковская Л.В., Потекаев Н.Н. Патогенетическое значение семейства ИЛ-10 при акне тяжелой степени. Иммунология. 2023; 44 (4): 463–470. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-4-463-470.; Порошина А.С., Шершакова Н.Н., Шиловский И.П., Кадушкин А.Г., Таганович А.Д., Гудима Г.О., Хаитов М.Р. Роль ИЛ-25, ИЛ-33 и TSLP в развитии кортикостероидной резистентности. Иммунология. 2023; 44 (4): 500–510. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-4-500-510.; Бязрова М.Г., Порошина А.С., Сухова М.М., Фролов Е.А., Шилкина А.Б., Латышева Е.А., Латышева Т.В., с соавт. Продукция цитокинов наивными В-лимфоцитами и В-клетками памяти при стимуляции in vitro. Иммунология. 2023; 44 (5): 575-585. DOI:10.33029/0206-4952-2023-44-5-575-585.; Pham H.M., Nguyen D.L.M., Duong M.C., Tran L.T., Pham T.T.N. Diagnostic value of neutrophil CD64 in sepsis patients in the intensive care unit: a cross-sectional study. Diagnostics (Basel). 2023; 13 (8): 1427. DOI:10.3390/diagnostics13081427. PMID: 37189528.; Han J., Zhang Y., Ge P., Dakal T.C., Wen H., Tang S., Luo Y., et al. Exosome-derived CIRP: an amplifier of inflammatory diseases. Front Immunol. 2023; 14: 1066721. DOI:10.3389/fimmu.2023.1066721. PMID: 36865547.; Scott J., Trevi L., McNeil H., Ewen T., Mawson P., McDonald D., Filby A., et al. Role of immunosuppression in an antibiotic stewardship intervention and its association with clinical outcomes and antibiotic use: protocol for an observational study (RISC-sepsis). BMJ Open. 2022; 12 (12): e068321. DOI:10.1136/bmjopen-2022-068321. PMID: 36600326.; Zou S., Jie H., Han X., Wang J. The role of neutrophil extracellular traps in sepsis and sepsis-related acute lung injury. Int Immunopharmacol. 2023; 124 (Pt A): 110436. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110436. PMID: 37688916.; Ansari M.A., Das S., Rai G., Singh P.K., Lahan S., Tyagi A., Alamer E., et al. Low monocytic HLA-DR expression in critically ill patients of sepsis: an indicator for antimicrobial and/or immunomodulatory intervention. Transpl Immunol. 2023; 81: 101942. DOI:10.1016/j.trim.2023.101942. PMID: 37866671.; Joshi I., Carney W.P., Rock E.P. Utility of monocyte HLA-DR and rationale for therapeutic GM-CSF in sepsis immunoparalysis. Front Immunol. 2023; 14: 1130214. DOI:10.3389/fimmu.2023.1130214. PMID: 36825018.; Quirant-Sánchez B., Plans-Galván O., Lucas E., Argudo E., Martinez-Cáceres E.M., Arméstar F. HLA-DR expression on monocytes and sepsis index are useful in predicting sepsis. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1836. DOI:10.3390/biomedicines11071836. PMID: 37509475.; Ostrand-Rosenberg S., Lamb T.J., Pawelec G. Here, there, and everywhere: myeloid-derived suppressor cells in immunology. J Immunol. 2023; 210 (9): 1183–1197. DOI:10.4049/jimmunol.2200914. PMID: 37068300.; Wang F., Cui Y., He D., Gong L., Liang H. Natural killer cells in sepsis: friends or foes? Front Immunol. 2023; 14: 1101918. DOI:10.3389/fimmu.2023.1101918. PMID: 36776839.; Etemad B., Sun X., Li Y., Melberg M., Moisi D., Gottlieb R., Ahmed H., et al. HIV post-treatment controllers have distinct immunological and virological features. Proc Natl Acad Sci USA. 2023; 120 (11): e2218960120. DOI:10.1073/pnas.2218960120. PMID: 36877848.; Sohn H., Cooper M.A. Metabolic regulation of NK cell function: implications for immunotherapy. Immunometabolism (Cobham). 2023; 5 (1): e00020. DOI:10.1097/IN9.0000000000000020. PMID: 36710923.; Yao Y.M., Zhang H., Wu Y. [Novel strategy of sepsis immunomodulation targeting dendritic cells]. Zhonghua Shao Shang Yu Chuang Mian Xiu Fu Za Zhi. 2023; 39 (7): 606–611. DOI:10.3760/cma.j.cn501225-20230321-00087. PMID: 37805688.; Zhao F.-Z., Gu W.-J., Li L.-Z., Qu Z.-K., Xu M.-Y., Liu K.,Zhang F., et al. Cannabinoid receptor 2 alleviates sepsis-associated acute lung injury by modulating maturation of dendritic cells. Int Immunopharmacol. 2023; 123: 110771. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110771. PMID: 37582314.; Wu Y., Chen L., Qiu Z., Zhang X., Zhao G., Lu Z. PINK1 protects against dendritic cell dysfunction during sepsis through the regulation of mitochondrial quality control. Mol Med. 2023; 29 (1): 25. DOI:10.1186/s10020-023-00618-5. PMID: 36809929.; Bénard A., Hansen F.J., Uhle F., Klösch B., Czubayko F., Mittelstädt A., Jacobsen A., et al. Interleukin-3 protects against viral pneumonia in sepsis by enhancing plasmacytoid dendritic cell recruitment into the lungs and T cell priming. Front Immunol. 2023; 14: 1140630. DOI:10.3389/fimmu.2023.1140630. PMID: 36911737.; Zhang T., Lian G., Fang W., Tian L., Ma W., Zhang J., Meng Z., et al. Comprehensive single-cell analysis reveals novel anergic antigen-presenting cell subtypes in human sepsis. Front Immunol. 2023; 14: 1257572 DOI:10.3389/fimmu.2023.1257572. PMID: 37781404.; Li J.-B., Xie M.-R., Duan M.-L., Yu Y.-N., Hang C.-C., Tang Z.-R., Li C.-S. Over-expression of programmed death-ligand 1 and programmed death-1 on antigen-presenting cells as a predictor of organ dysfunction and mortality during early sepsis: a prospective cohort study. World J Emerg Med. 2023; 14 (3): 179–185. DOI:10.5847/wjem.j.1920-8642.2023.041. PMID: 37152526.; Turner S., Raisley B., Roach K., Bajaña S., Munroe M.E., James J.A., Coggeshall K.M., et al. Gram-positive bacteria cell wall peptidoglycan polymers activate human dendritic cells to produce IL-23 and IL-1β and promote TH17 cell differentiation. Microorganisms. 2023; 11 (1): 173. DOI:10.3390/microorganisms11010173. PMID: 36677464.; Liu H., Li J.-F., Zhang L.-M., Wang H.-H., Wang X.-Q., Kiu G.-Q., Du H.-B., et al. Posthemorrhagic shock mesenteric lymph impairs splenic dendritic cell function in mice. Shock. 2023; 59 (2): 256–266. DOI:10.1097/SHK.0000000000002056. PMID: 36427100.; Finfer S., Venkatesh B., Hotchkiss R.S., Sasson S.C. Lymphopenia in sepsis- an acquired immunodeficiency? Immunol Cell Biol. 2023; 101 (6): 535–544. DOI:10.1111/imcb.12611. PMID: 36468797.; Winer H., Rodrigues G.O.L, Hixon J.A., Aielo F.B., Hsu T.C., Wachter B.T., Li W., et al. IL-7: comprehensive review. Cytokine. 2022; 160: 156049. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156049. PMID: 36201890.; Gao Y., Ya Y., Zhang X., Chen F., Meng X.-L., Chen X.-S., Wang C.-L., et al. Regulatory T cells: angels or demons in the pathophysiology of sepsis? Front. Immunol. 2022; 13: 829210. DOI:10.3389/fimmu.2022.829210. PMID: 35281010.; Li X.-Y., Liu M., Fu Y-.J., Jiang Y.-J., Zhang Z.-N. Alterations in levels of cytokine following treatment to predict outcome of sepsis: a meta-analysis. Cytokine. 2023; 161: 156056. DOI:10.1016/j.cyto.2022.156056. PMID: 36240721.; Wautier J.L., Wautier M.P. Pro- and anti-Inflammatory prostaglandins and cytokines in humans: a mini review. Int J Mol Sci. 2023; 24 (11): 9647. DOI:10.3390/ijms24119647. PMID: 37298597.; Barber G., Tanic J., Leligdowicz A. Circulating protein and lipid markers of early sepsis diagnosis and prognosis: a scoping review. Curr Opin Lipidol. 2023; 34 (2): 70–81. DOI:10.1097/MOL.0000000000000870. PMID: 36861948.; Korzhenevich J., Janowska I., van der Burg M., Rizzi M. Human and mouse early B cell development: So similar but so different. Immunol Lett. 2023; 261: 1–12. DOI:10.1016/j.imlet.2023.07.004. PMID: 37442242.; Dong X., Tu H., Qin S., Bai X., Yang F., Li Z. Insights into the roles of B cells in patients with sepsis. J Immunol Res. 2023; 2023: 7408967. DOI:10.1155/2023/7408967. PMID: 37128298.; Pan B., Sun P., Pei R., Lin F., Cao H. Efficacy of IVIG therapy for patients with sepsis: a systematic review and metaanalysis. J Transl Med. 2023; 21 (1): 765. DOI:10.1186/s12967-023-04592-8. PMID: 37898763.; Du K., Hao S., Luan H. Retracted: expression of peripheral blood DCs CD86, CD80, and Th1/Th2 in sepsis patients and their value on survival prediction. Comput Math Methods Med. 2023; 2023: 9832093. DOI:10.1155/2023/9832093. PMID: 37416269.; Dong X., Tu H., Bai X., Qin S., Li Z. Intrinsic/extrinsic apoptosis and pyroptosis contribute to the selective depletion of B cell subsets in septic shock patients. Shock. 2023; 60 (3): 345–353. DOI:10.1097/SHK.0000000000002174. PMID: 37477437.; Sharma P., Goswami S., Raychaudhuri D., Siddiqui B.A., Singh P., Nagarajan A., Liu J. Immune checkpoint therapycurrent perspectives and future directions. Cell. 2023; 186 (8): 1652–1669. DOI:10.1016/j.cell.2023.03.006. PMID: 37059068.; Liu D., Huang S.Y., Sun J.H., Zhang H.-C., Cai Q.-L., Gao C., Li L. Sepsis-induced immunosuppression: mechanisms, diagnosis and current treatment options. Mil Med Res. 2022; 9 (1): 56. DOI:10.1186/s40779-022-00422-y. PMID: 36209190.; van den Haak D.A.C., Otten L.S., Koenen HJ.PM., Smeets R.L., Piet B., Pickkers P., Kox M., et al. Evidence-based rationale for low dose nivolumab in critically ill patients with sepsis-induced immunosuppression. Clin Transl Sci. 2023; 16 (6): 978–986. DOI:10.1111/cts.13503. PMID: 37002646.; Kim G.-R., Choi J.-M. Current understanding of cytotoxic T lymphocyte antigen-4 (CTLA-4) signaling in T-cell biology and disease therapy. Mol Cells. 2022; 45 (8): 513–521. DOI:10.14348/molcells.2022.2056. PMID: 35950451.; Bailly C., Thuru X., Goossens L., Goossens J.-F. Soluble TIM3 as a biomarker of progression and therapeutic response in cancers and other of human diseases. Biochem Pharmacol. 2023; 209: 115445. DOI:10.1016/j.bcp.2023.115445. PMID: 36739094.; Ibrahim R., Saleh K., Chahine C., Khoury R., Khalife N., Cesne A.L. LAG-3 Inhibitors: novel immune checkpoint inhibitors changing the landscape of immunotherapy. Biomedicines. 2023; 11 (7): 1878. DOI:10.3390/biomedicines11071878. PMID: 37509517.; Sordo-Bahamonde C., Lorenzo-Herrero S., Granda-Díaz R., Martínez-Pérez A., Aguilar-García C., Rodrigo J.P., GarcíaPedrero J.M., et al. Beyond the anti-PD-1/PD-L1 era: promising role of the BTLA/HVEM axis as a future target for cancer immunotherapy. Mol Cancer. 2023; 22 (1): 142. DOI:10.1186/s12943-023-01845-4. PMID: 37649037.; García Melián M.F., Moreno M., Cerecetto H., Calzada V. Aptamer-based immunotheranostic strategies. Cancer Biother Radiopharm. 2023; 38 (4): 246–255. DOI:10.1089/cbr.2022.0064. PMID: 36603108.; Rienzo M., Skirecki T., Monneret G., Timsit J.-F. Immune checkpoint inhibitors for the treatment of sepsis: insights from preclinical and clinical development. Expert Opin Investig Drugs. 2022; 31 (9): 885–894. DOI:10.1080/13543784.2022.2102477. PMID: 35944174.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2479

  15. 15
    Academic Journal

    Πηγή: CHILDREN INFECTIONS; Том 23, № 2 (2024); 39-44 ; ДЕТСКИЕ ИНФЕКЦИИ; Том 23, № 2 (2024); 39-44 ; 2618-8139 ; 2072-8107

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/947/666; Oza S., Lawn J.E., Hogan D.R., Mathers C., Cousens S.N. Neonatal cause-ofdeath estimates for the early and late neonatal periods for 194 countries: 2000—2013. Bull World Health Organ. 2015 Jan 1;93(1):19—28. doi:10.2471/BLT.14.139790.; Иванова О. Н., Григорьев Е. В. Диагностические маркеры раннего неонатального сепсиса — ограничения и перспективы. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2020. 17(6):72—79. DOI:10.21292/2078-5658-2020-17-6-72-79; Singh M., Alsaleem M., Gray C.P. Neonatal Sepsis. 2022 Sep 29. In: Stat-Pearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2024 Jan.; Köstlin-Gille N., Härtel C., Haug C., Göpel W., Zemlin M., Müller A., Poets C.F., Herting E., Gille C. Epidemiology of Early and Late Onset Neonatal Sepsis in Very Low Birthweight Infants: Data From the German Neonatal Network. Pediatr Infect Dis J. 2021 Mar 1; 40(3):255—259. doi:10.1097/INF.0000000000002976; Клингенберг К., Р.Ф. Корнелиссе, Д. Буонокоре [и др.] Ранний неонатальный сепсис с отрицательными культурами: на перекрестке между эффективным лечением сепсиса и стратегией антибактериальной терапии. Неонатология: новости, мнения, обучение. 2020. 8(1(27):95— 106.; Гусев Е.Ю., Зотова Н.В., Черешнев В.А. «Сепсис-3»: новая редакция — старые проблемы. Анализ с позиции общей патологии. Инфекция и иммунитет. 2021. 11(4):649—662. doi:10.15789/2220-7619-SAN-1629; Лекманов А.У., Миронов П.И., Александрович Ю.С., Азовский Д.К., Попов Д.А., Пшениснов К.В., Музуров А.Л., Дегтярева Е.А. Сепсис у детей: федеральные клинические рекомендации (проект). Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии. 2021. 11(2):241—292. DOI: https://doi.org/10.17816/psaic969р; Кирилочев О. К., Эйберман А. С., Бочкова Л. Г. Возможности использования оценочной шкалы pSOFA для диагностики сепсиса у новорожденных. Лечащий Врач. 2022; 1(25):8—13. DOI:10.51793/OS.2022.25.1.001; Идрисова Р.Г., Амирова В.Р., Миронов П.И., Лекманов А.У. Сравнительная оценка прогностической способности шкал nSOFA и NEOMOD у недоношенных новорожденных. Российский вестник детской хирургии, анестезиологии и реаниматологии. 2022. 12(3):351—359. DOI: https://doi.org/10.17816/psaic1278; Сепсис: классификация, клинико-диагностическая концепция и лечение. Под ред. акад. РАН Б.Р. Гельфанда. 4-е изд., доп. и перераб. Москва: ООО «Медицинское информационное агентство», 2017:408.; Qiu X., J. Li, X. Yang et al. Is neutrophil CD11b a special marker for the early diagnosis of sepsis in neonates? A systematic review and meta-analysis. BMJ Open. 2019. 9(4):e025222; Boscarino G, Migliorino R, Carbone G, Davino G, Dell'Orto VG, Perrone S, Principi N, Esposito S. Biomarkers of Neonatal Sepsis: Where We Are and Where We Are Going. Antibiotics (Basel). 2023 Jul 26; 12(8):1233. doi:10.3390/antibiotics12081233.; Morris R., Jones S., Banerjee S., Collinson A., Hagan H., Walsh H., Thorn-ton G., Barnard I., Warren C., Reid J., et al. Comparison of the management recommendations of the Kaiser Permanente neonatal early-onset sepsis risk calculator (SRC) with NICE guideline CG149 in infants ≥34 weeks’ gestation who developed early-onset sepsis. Arch. Dis. Child. Fetal Neonatal Ed. 2020; 105:581—586. doi:10.1136/archdischild-2019-317165; Hershkovich-Shporen C., Guri A., Gluskina T., Flidel-Rimon O. Centers for disease control and prevention guidelines identified more neonates at risk of early-onset sepsis than the Kaiser-Permanente calculator. Acta Paediatr. 2022; 111:767—771. doi:10.1111/apa.16232; Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Мустафин И.Г., Бойчук C.В., Хасанова Г.Р., Любин С.А. Иммуносупрессия при неонатальном сепсисе. Практическая медицина. 2019. 17(5):165—169. DOI:10.32000/2072-1757-2019-5-165-169; Ипполитова Л.И., Коротаева Н.В., Першина Е.С. Маркёры раннего воспаления в диагностике неонатального сепсиса. Научно-медицинский вестник Центрального Черноземья. 2023. 91:66—72.; Brown J, Meader N, Cleminson J, McGuire W. C-reactive protein for diagnosing late-onset infection in newborn infants. Cochrane Database of Systematic Reviews 2019, Issue 1. Art. No.: CD012126. DOI:10.1002/14651858.CD012126.pub2; Обедин А.Н., А.Ю. Васильев, Е.В. Волков. Диагностическая информативность пресепсина и традиционных маркеров в сыворотке крови недоношенных новорожденных при раннем неонатальном сепсисе. Российские биомедицинские исследования. 2022. 7(4):68—73. DOI 10.56871/RBR.2022.92.20.010; O'Sullivan C, Tsai DH, Wu IC, Boselli E, Hughes C, Padmanabhan D, Hsia Y. Machine learning applications on neonatal sepsis treatment: a scoping review. BMC Infect Dis. 2023 Jun 29; 23(1):441. doi:10.1186/s12879-023-08409-3; Jarovsky D, Marchetti IC, da Silva Mori MA, de Souza RM, Almeida FJ, Sáfadi MAP, Berezin EN. Early-onset Neonatal Pneumococcal Sepsis: A Fatal Case Report and Brief Literature Review. Pediatr Infect Dis J. 2018 Apr; 37(4):e111-e112. doi:10.1097/INF.0000000000001818; Агаркова А.А., М.В. Покровский, Л.В. Корокина, О.А. Землянский. Пневмококковый менингит: современные аспекты диагностики и лечения. Клиническая фармакология и терапия. 2019; 28(2):84—92.; https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/947

  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20