Search Results - "полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией"

1

Academic Journal

Dynamics of miRNA expression in urine extracellular vesicles of prostate cancer patients after radical prostatectomy ; Динамика экспрессии микроРНК внеклеточных везикул мочи больных раком предстательной железы после радикальной простатэктомии

Authors: Shutko E.V., Bryzgunova O.E., Ostal’cev I.A., Pak S.V., Krasi’nikov S.E., Laktionov P.P., Konoshenko M.Y.

Contributors: The research was carried out at the expense of a grant from the Russian Science Foundation (grant No. 23-25-10026, https://rscf.ru/project/23-25-10026) within the framework of the project 0000005406995998235120582 supported by the Government of the Novosibirsk Region No. r-45, Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (грант № 23-25-10026, https://rscf.ru/project/23-25-10026) в рамках поддержанного Правительством Новосибирской области проекта 0000005406995998235120582 № р-45

Source: Advances in Molecular Oncology; Vol 11, No 1 (2024); 55-78 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 11, No 1 (2024); 55-78 ; 2413-3787 ; 2313-805X

Subject Terms: prostate cancer, miRNA, extracellular vesicles of urine, radical prostatectomy, reverse transcription polymerase chain reaction, miRNA dynamics after cancer treatment, рак предстательной железы, микроРНК, внеклеточные везикулы мочи, радикальная простатэктомия, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, динамика микроРНК после лечения рака

File Description: application/pdf

Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/649/338; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/649

Availability: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/649
https://doi.org/10.17650/2313-805X-2024-11-1-55-78

View record from BASE

2

Academic Journal

Identification and genotyping of Chikungunya virus using reverse transcription polymerase chain reaction and restriction fragment length polymorphism methods ; Идентификация и генотипирование вируса Чикунгунья с использованием полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией и метода полиморфизма длин рестрикционных фрагментов

Authors: N. A. Netesova, M. A. Abdurashitov, T. G. Samartseva, O. V. Klimovich, A. S. Oksanich, Е. V. Otrashevskaia, G. M. Ignatyev, Н. А. Нетесова, М. А. Абдурашитов, Т. Г. Самарцева, О. В. Климович, А. С. Оксанич, Е. В. Отрашевская, Г. М. Игнатьев

Contributors: The study was carried out with the financial support of the Russian Science Foundation under grant No. 22-14-00184, Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РНФ 22-14-00184

Source: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 24, № 3 (2024); 270-278 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 24, № 3 (2024); 270-278 ; 2619-1156 ; 2221-996X ; 10.30895/2221-996X-2024-24-3

Subject Terms: генотипирование, reverse transcription polymerase chain reaction, restriction fragment length polymorphism, genotyping, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, метод полиморфизма длин рестрикционных фрагментов

File Description: application/pdf

Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/559/913; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/559/958; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/559/819; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/559/908; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/559/909; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/559/910; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/559/911; Burt FJ, Chen W, Miner JJ, Lenschow DJ, Merits A, Schnettler E, et al. Chikungunya virus: an update on the biology and pathogenesis of this emerging pathogen. Lancet Infect Dis. 2017;17(4):e107–17. https://doi.org/10.1016/s1473-3099(16)30385-1; Simo FBN, Burt FJ, Makoah NA. Chikungunya virus diagnosis: a review of current antigen detection methods. Trop Med Infect Dis. 2023;8(7):365. https://doi.org/10.3390/tropicalmed8070365; Cunha MS, Costa PAG, Correa IA, de Souza MRM, Calil PT, Duarte da Silva GP, et al. Chikungunya virus: an emergent arbovirus to the South American continent and a continuous threat to the world. Front Microbiol. 2020;11:1297. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.01297; Tanabe ELL, Tanabe ISB, Santos ECD, Marques JPDS, Borges AA, Lima MC, et al. Report of East-Central South African Chikungunya virus genotype during the 2016 outbreak in the Alagoas State, Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 2018;60:e19. https://doi.org/10.1590/s1678-9946201860019; Panning M, Grywna K, Van Esbroeck M, Emmerich P, Drosten C. Chikungunya fever in travelers returning to Eu rope from the Indian Ocean region, 2006. Emerg Infect Dis. 2008;14(3):416–22. https://doi.org/10.3201/eid1403.070906; Lessa-Aquino C, Trinta KS, Pestana CP, Ribeiro MO, Sucupira MVF, Boia MN, et al. Detection of East/Central/ South African genotype Chikungunya virus during an outbreak in a southeastern state of Brazil. Epidemiol Infect. 2018;146(16):2056–58. https://doi.org/10.1017/s0950268818002467; Vega-Rua A, Zouache K, Caro V, Diancourt L, Delaunay P, Grandadam M, et al. High efficiency of temperate Aedes albopictus to transmit Chikungunya and dengue viruses in the Southeast of France. PLoS One. 2013;8(3):e59716. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0059716; Mattar S, Miranda J, Pinzon H, Tique V, Bolanos A, Aponte J, et al. Outbreak of Chikungunya virus in the north Carib bean area of Colombia: clinical presentation and phylogenetic analysis. J Infect Dev Ctries. 2015;9(10):1126–32. https://doi.org/10.3855/jidc.6670; Johnson BW, Russell BJ, Goodman CH. Laboratory diagnosis of Chikungunya virus infections and commercial sources for diagnostic assays. J Infect Dis. 2016;214(suppl 5):S471–4. https://doi.org/10.1093/infdis/jiw274; Waggoner JJ, Ballesteros G, Gresh L, Mohamed-Hadley A, Tellez Y, Sahoo MK, et al. Clinical evaluation of a single-reaction real-time RT-PCR for pan-dengue and Chikungunya virus detection. J Clin Virol. 2016;78:57–61. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2016.01.007; Carletti F, Bordi L, Chiappini R, Ippolito G, Sciarrone MR, Capobianchi MR, et al. Rapid detection and quantification of Chikungunya virus by a one-step reverse transcription polymerase chain reaction real-time assay. Am J Trop Med Hyg. 2007;77(3):521–4. https://doi.org/10.4269/ajtmh.2007.77.521; Cecilia D, Kakade M, Alagarasu K, Patil J, Salunke A, Parashar D, Shah PS. Development of a multiplex real-time RT-PCR assay for simultaneous detection of dengue and Chikungunya viruses. Arch Virol. 2015;160(1):323–7. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2217-x; Кулак МВ, Белавин ПА, Нетесова НА, Юнасова ТН, Голикова ЛН, Бектемиров ТА, Игнатьев ГМ. Дифференциация вакцинного штамма Л-3 от других штаммов вируса паротита методом ОТ-ПЦР. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2008;(4):7–10. EDN: SATPMF; Игнатьев ГМ, Отрашевская ЕВ, Суханова ЛЛ, Сидоренко ЕС, Нетесова НА. Молекулярно-генетическое исследование штамма RA-27/3, используемого для производства вакцины против краснухи. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019;96(4):38–46. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-4-38-46; Игнатьев ГМ, Отрашевская ЕВ, Суханова ЛЛ, Сидоренко ЕС, Нетесова НА. Молекулярно-генетическое исследование штамма Ленинград-16, используемого для производства вакцины кори. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020;(2):182–9. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-2-182-189; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/559

Availability: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/559
https://doi.org/10.30895/2221-996X-2024-559

View record from BASE

3

Academic Journal

Analysis of the expression of matrix RNA of a panel of genes of morphologically unchanged rectal epithelium as a method of early diagnosis of colon pathology ; Анализ экспрессии матричной РНК панели генов морфологически неизмененного эпителия прямой кишки как метод ранней диагностики патологии толстой кишки

Authors: Bozhenko V. ., Goncharov S.V., Zakharenko M.V., Kiseleva Y.Y., Karmakova T.A., Kulinich T.M., Stanoevich U.S., Melnikova N.V., Senchukova A.L., Grunin .B., Bliznyukov O. ., Solodky V.A.

Source: Advances in Molecular Oncology; Vol 10, No 4 (2023); 97-107 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 10, No 4 (2023); 97-107 ; 2413-3787 ; 2313-805X

Subject Terms: gene expression, matrix RNA, reverse transcription polymerase chain reaction, unchanged colon mucosa, colorectal cancer screening, diagnosis of colorectal cancer, экспрессия генов, матричная РНК, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, неизмененная слизистая оболочка толстой кишки, скрининг колоректального рака, диагностика колоректального рака

File Description: application/pdf

Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/606/323; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/606

Availability: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/606
https://doi.org/10.17650/2313-805X-2023-10-4-97-107

View record from BASE

4

Academic Journal

Analysis of molecular phenotypes in normal mucosa and colorectal cancer in embryonic anatomical parts of the colon ; Анализ молекулярных фенотипов эмбрионально-анатомических отделов толстой кишки в нормальной слизистой оболочке и при колоректальном раке

Authors: Goncharov S.V., Bozhenko V.K., Zakharenko M.V., Kiseleva Y.Y., Chaptykov A.A., Kulinich T.M., Krashikhina T.V., Solodkiy V.A.

Contributors: 1

Source: Almanac of Clinical Medicine; Vol 51, No 8 (2023); 441-455 ; Альманах клинической медицины; Vol 51, No 8 (2023); 441-455 ; 2587-9294 ; 2072-0505

Subject Terms: adenocarcinoma, rectum, colon, mucosa, phenotype, reverse-transcriptase polymerase chain reaction, mRNA, discriminant analysis, аденокарцинома, толстая кишка, прямая кишка, слизистая оболочка, фенотип, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, мРНК, дискриминантный анализ

File Description: application/pdf

Availability: https://almclinmed.ru/jour/article/view/17178
https://doi.org/10.18786/2072-0505-2023-51-046

View record from BASE

5

Academic Journal

Evaluation of the diagnostic efficacy of a reagent kit for in vitro diagnosis of West Nile fever using reverse transcription polymerase chain reaction with fluorescent probe-based detection ; Оценка диагностической эффективности набора реагентов для in vitro диагностики лихорадки Западного Нила методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией и гибридизационно-флуоресцентной детекцией

Authors: E. V. Prokhvatilova, G. A. Tkachenko, A. A. Baturin, L. I. Belitskaya, A. V. Toporkov, Е. В. Прохватилова, Г. А. Ткаченко, А. А. Батурин, Л. И. Белицкая, А. В. Топорков

Contributors: The study reported in this publication was carried out as part of the research programme of the Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Well-being (Rospotrebnadzor) for 2016–2020 “Problem-oriented scientific research in the field of epidemiological surveillance of infectious and parasitic diseases” (R&D project No. 086-2-16) and the research programme of Rospotrebnadzor for 2021–2025 “Scientific support of epidemiological surveillance and sanitary protection of the territory of the Russian Federation. Creation of new technologies, means and methods of control and prevention of infectious and parasitic diseases” (R&D project No. 093-2-19)., Работа выполнена в рамках отраслевой научно-исследовательской программы Роспотребнадзора на 2016–2020 гг. «Проблемно-ориентированные научные исследования в области эпидемиологического надзора за инфекционными и паразитарными болезнями» (номер НИР 086-2-16) и отраслевой научно-исследовательской программы Роспотребнадзора на 2021–2025 гг. «Научное обеспечение эпидемиологического надзора и санитарной охраны территории Российской Федерации. Создание новых технологий, средств и методов контроля и профилактики инфекционных и паразитарных болезней» (номер НИР 093-2-19).

Source: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 23, № 1 (2023): Вопросы разработки новых противовирусных вакцин; 90-101 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 23, № 1 (2023): Вопросы разработки новых противовирусных вакцин; 90-101 ; 2619-1156 ; 2221-996X

Subject Terms: диагностический набор реагентов, reverse transcription polymerase chain reaction, fluorescent probe-based detection, real-time RT-PCR, genotyping, diagnostic reagent kit, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, гибридизационно-флуоресцентная детекция, ОТ-ПЦР-РВ, генотипирование

File Description: application/pdf

Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435/635; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435/638; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435/644; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435/655; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/435/438; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/435/439; https://www.biopreparations.ru/jour/article/downloadSuppFile/435/651; Львов ДК, ред. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.: МИА; 2013.; Habarugira G, Suen WW, Hobson-Peters J, Hall RA, Bielefeldt-Ohmann H. West Nile virus: an update on pathobiology, epidemiology, diagnostics, control and «One health» implications. Pathogens. 2020;9(7):589. https://doi.org/10.3390/pathogens9070589; Ferrarini I, Rigo A, Gandini A, Vinante F. West Nile virus encephalitis in haematological setting: report of two cases and a brief review of the literature. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2019;11(1):e2019033. https://doi.org/10.4084/MJHID.2019.033; Popescu CP, Florescu SA, Cotar AI, Badescu D, Ceianu CS, Zaharia M, et al. Re-emergence of severe West Nile virus neuroinvasive disease in humans in Romania, 2012 to 2017—implications for travel medicine. Travel Med Infect Dis. 2018;22:30–5. https://doi.org/10.1016/j.tmaid.2018.03.001; Byas AD, Ebel GD. Comparative pathology of West Nile virus in humans and non-human animals. Pathogens. 2020;9(1):48. https://doi.org/10.3390/pathogens9010048; Топорков АВ, ред. Лихорадка Западного Нила. Волгоград: Волга-Пресс; 2017.; Путинцева ЕВ, Удовиченко СК, Бородай НВ, Никитин ДН, Батурин АА, Молчанова ЕВ и др. Особенности эпидемиологической ситуации по лихорадке Западного Нила в Российской Федерации в 2020 г. и прогноз ее развития в 2021 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2021;(1):63–72. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2021-1-63-72; Батурин АА, Ткаченко ГА, Леденева МЛ, Лемасова ЛВ, Бондарева ОС, Кайсаров ИД и др. Молекулярно-генетический анализ вариантов вируса Западного Нила, циркулировавших на территории европейской части России в 2010–2019 гг. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 2021;98(3):308–18. https://doi.org/10.36233/0372-9311-85; Платонов АЕ, Карань ЛС, Шопенская ТА, Федорова МВ, Колясникова НМ, Русакова НМ и др. Генотипирование штаммов вируса лихорадки Западного Нила, циркулирующих на юге России, как метод эпидемиологического расследования: принципы и результаты. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011;88(2):29–37.; Жуков КВ, Топорков АВ, Викторов ДВ. Эпидемиологические аспекты и современная эволюция глобально распространяющихся арбовирусов. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018;95(6):94–102. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2018-6-94-102; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435

Availability: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/435
https://doi.org/10.30895/2221-996X-2023-23-1-90-101

View record from BASE

6

Academic Journal

CORONAVIRUS DISEASE (COVID-19). CHALLENGES AND PROSPECTS OF SPECIFIC DIAGNOSTICS ; КОРОНАВИРУСНАЯ БОЛЕЗНЬ (COVID-19). ПРОБЛЕМЫ И ПЕРСПЕКТИВЫ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ ; КОРОНАВІРУСНА ХВОРОБА(COVID-19). ВИКЛИКИ ТА ПЕРСПЕКТИВИ СПЕЦИФІЧНОЇ ДІАГНОСТИКИ

Authors: Гуменюк, К. М., Дубина, Д. О., Юрченко, О. О.

Source: Microbiology&Biotechnology; No. 1(51) (2021); 6-44 ; Микробиология и биотехнология; № 1(51) (2021); 6-44 ; Мікробіологія і біотехнологія; № 1(51) (2021); 6-44 ; 2307-4663 ; 2076-0558

Subject Terms: SARS-CoV-2 virus, specific diagnostics, reverse transcription and real-time polymerase chain reaction (rRT-PCR), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), rapid diagnostic tests (RDTs), вірус SARS-CoV-2, специфічна діагностика, полімеразна ланцюгова реакція зі зворотною транскрипцією в реальному часі (рЗТ-ПЛР), імуноферментний аналіз (ІФА), швидкі діагностичні тести, вирус SARS-CoV-2, специфическая диагностика, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией в реальном времени (рОТ-ПЦР), иммуноферментный анализ (ИФА), быстрые диагностические тесты

File Description: application/pdf

Relation: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/226901/228744; http://mbt.onu.edu.ua/article/view/226901

Availability: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/226901
https://doi.org/10.18524/2307-4663.2021.1(51).226901

View record from BASE

7

Academic Journal

CORONAVIRUS DISEASE (COVID-19). CHALLENGES AND PROSPECTS OF SPECIFIC DIAGNOSTICS

Source: Microbiology&Biotechnology; No. 1(51) (2021); 6-44
Микробиология и биотехнология; № 1(51) (2021); 6-44
Мікробіологія і біотехнологія; № 1(51) (2021); 6-44

Subject Terms: иммуноферментный анализ (ИФА), полімеразна ланцюгова реакція зі зворотною транскрипцією в реальному часі (рЗТ-ПЛР), быстрые диагностические тесты, SARS-CoV-2 virus, rapid diagnostic tests (RDTs), специфічна діагностика, 3. Good health, імуноферментний аналіз (ІФА), полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией в реальном времени (рОТ-ПЦР), вірус SARS-CoV-2, specific diagnostics, вирус SARS-CoV-2, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), reverse transcription and real-time polymerase chain reaction (rRT-PCR), специфическая диагностика, швидкі діагностичні тести

File Description: application/pdf

Access URL: http://mbt.onu.edu.ua/article/view/226901

View record at OpenAIRE Full Text Finder

8

Academic Journal

Detection of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus Markers in Samples of Ixodes Ticks Collected in the Territory of the Republic of Guinea ; Выявление маркеров вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки в пробах иксодовых клещей, собранных на территории Гвинейской Республики

Authors: E. V. Naydenova, K. S. Zakharov, M. Yu. Kartashov, D. A. Agafonov, A. V. Boiko, Zh. A. Kas’yan, A. M. Senichkina, K. A. Nikiforov, E. G. Oglodin, A. V. Shipovalov, A. A. Dubinina, A. M. Porshakov, I. Nourdine, M. G. Diallo, A. A. Nassour, A. Kourouma, F. Drame, V. A. Safronov, A. A. Lopatin, S. Boumbali, S. Kalivogui, M. Y. Boiro, S. A. Shcherbakova, V. V. Kutyrev, Е. В. Найденова, К. С. Захаров, М. Ю. Карташов, Д. А. Агафонов, А. В. Бойко, Ж. А. Касьян, А. М. Сеничкина, К. А. Никифоров, Е. Г. Оглодин, А. В. Шиповалов, А. А. Дубинина, А. М. Поршаков, В. А. Сафронов, А. А. Лопатин, С. А. Щербакова, В. В. Кутырев

Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2019); 93-98 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2019); 93-98 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2019-2

Subject Terms: полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией, Crimean-Congo hemorrhagic fever virus, ticks, Republic of Guinea, enzyme-linked immunosorbent assay, polymerase chain reaction with reverse transcription, вирус Крымской-Конго геморрагической лихорадки, иксодовые клещи, Гвинейская Республика, иммуноферментный анализ

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1155/1041; International Committee on Taxonomy of Viruses ICTV. [Электронный ресурс]. URL: https://talk.ictvonline.org/taxonomy (дата обращения 20.04.2019).; Бутенко А.М., Трусова И.Н. Заболеваемость Крымской геморрагической лихорадкой в странах Европы, Африки и Азии (1943–2012 гг.). Эпидемиология и инфекционные болезни. 2013; 5:46–8.; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В., редакторы. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. М.: ЗАО «Шико»; 2013. 560 с.; Papa A., Mirazimi A., Köksal I. Estrada-Pena A., Feldmann H. Recent advances in research on Crimean-Congo hemorrhagic fever J. Clin. Virol. 2015; 64:137–43. DOI:10.1016/j.jcv.2014.08.029.; Akuffo R., Brandful J.A.M., Zayed A., Adjei A., Watany N., Fahmy N.T., Hughes R., Doman B., Voegborlo S.V., Aziati D., Pratt D., Awuni J.A., Adams N., Dueger E. Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in livestock ticks and animal handler seroprevalence at an abattoir in Ghana. BMC Infect. Dis. 2016; 16:324. DOI:10.1186/ s12879-016-1660-6.; Burt F.J., Swanepoel R. Molecular epidemiology of African and Asian Crimean-Congo haemorrhagic fever isolates. Epidemiol. Infect. 2005; 133(4):659–66. DOI:10.1017/S0950268805003730.; Chitanga S., Gaff H., Mukaratirwa S. Tick-borne pathogens of potential zoonotic importance in the southern African Region. J. S. Afr. Vet. Assoc. 2014; 85(1):1084. DOI:10.4102/jsava.v85i1.1084.; Grard G., Drexler J.F., Fair J., Muyembe J.J, Wolfe N.D., Drosten C., Leroy E.M. Re-Emergence of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus in Central Africa. PLoS Negl Trop Dis. 2011; 5(10):e1350. DOI:10.1371/journal.pntd.0001350.; Lwande O.W., Irura Z., Tigoi C., Chepkorir E., Orindi B., Musila L., Venter M., Fischer A., Sang R. Seroprevalence of Crimean Congo Hemorrhagic Fever Virus in Ijara District, Kenya. Vector Borne Zoonotic Dis. 2012; 12(9):727–32. DOI:10.1089/vbz.2011.0914.; Nabeth P., Cheikh D.O., Lo B., Faye O., Vall I.O., Niang M., Wague B., Diop D., Diallo M., Diallo B., Diop O.M., Simon F. Crimean-Congo hemorrhagic fever, Mauritania. Emerg. Infect. Dis. 2004; 10(12):2143–9. DOI:10.3201/eid1012.040535.; O’Hearn A.E., Voorhees M.A., Fetterer D.P., Wauquier N., Coomber M.R., Bangura J., Fair J.N., Gonzalez J.-P., Schoepp R.J. Serosurveillance of viral pathogens circulating in West Africa. Virol J. 2016; 13(1):163. DOI:10.1186/s12985-016-0621-4.; Safronetz D., Sacko M., Sogoba N., Rosenke K., Martellaro C., Traoré S., Cissé I., Maiga O., Boisen M., Nelson D., Oottamasathien D., Millett M., Garry R. F, Branco L. M., Doumbia S., Feldmann H., Traoré M. S. Vector borne infections, Mali. Emerg. Infect. Dis. 2016; 22(2):340–2. DOI:10.3201/eid2202.150688.; Spengler J.R., Bergeron É., Rollin P.E. Seroepidemiological Studies of Crimean-Congo Hemorrhagic Fever Virus in Domestic and Wild Animals. PLoS Negl. Trop. Dis. 2016; 10(1):e0004210. DOI:10.1371/journal.pntd.0004210.; Tall A., Sall A.A., Faye O., Diatta B., Sylla R., Faye J. Two cases of Crimean-Congo hemorrhagic fever (CCHF) in two tourists in Senegal in 2004. Bull Soc. Pathol. Exot. 2009; 102(3):159–61. PMID: 19739410.; Tigoi C., Lwande O., Orindi B., Irura Z., Ongus J., Sang R. Seroepidemiology of Selected Arboviruses in Febrile Patients Visiting Selected Health Facilities in the Lake/River Basin Areas of Lake Baringo, Lake Naivasha, and Tana River, Kenya. Vector Borne Zoonotic Dis. 2015; 15(2):124–32. DOI:10.1089/vbz.2014.1686.; Wasfia F., Dowall S., Ghabbari T., Bosworth A., Chakroun M., Varghese A., Tiouiri H., Ben Jemaa M., Znazen A., Hewson R., Elyes Z., Letaief A. Sero-epidemiological survey of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus in Tunisia. Parasite. 2016; 23:10. DOI:10.1051/parasite/2016010.; Wilson M.L., LeGuenno B., Guillaud M., Desoutter D., Gonzalez J.P., Camicas J.L. Distribution of Crimean–Congo hemorrhagic fever viral antibody in Senegal: environmental and vectorial correlates. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1990; 43(5):557–66. DOI:10.4269/ajtmh.1990.43.557.; Zivcec M., Maïga O., Kelly A., Feldmann F., Sogoba N., Schwan T.G., Feldmann H., Safronetz D. Unique Strain of CrimeanCongo Hemorrhagic Fever Virus, Mali. Emerg Infect Dis. 2014; 20(5):911–3. DOI:10.3201/eid2005.131641.; Бутенко А.М. Изучение циркуляции арбовирусов в Гвинейской Республике. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1996; 2:40–5. 20. Walker A.R., Bouattour A., Camicas J.-L., Estrada-Peña A., Horak I.G., Latif A.A., Pegram R.G., Preston P.M. Ticks of Domestic Animals in Africa: a Guide to Identification of Species. Edinburgh: Bioscience Reports; 2014. 227 p.; Konstantinov O.K. Les tiques de la famille Ixodidae comme réservoir d’arbovirus en Republique de Guinée. II. Les arbovirus. Revue Élev. Méd. vét. Pays trop. 1990; 43(1):15–22. DOI:10.19182/remvt.8883.; Найденова Е.В., Пьянков С.А., Крицкий А.А., Касьян Ж.А., Раздорский А.С., Лопатин А.А., Сафронов В.А., Чаусов Е.В., Sylla A.L., Boumbaly S., Ibrachim N., Diallo M.G., Sow I.S., Barry M., Щербакова С.А., Boiro M.I., Кутырев В.В. Выявление специфических антител к арбовирусам в сыворотках крови людей, проживающих в провинции Киндиа, Гвинейская Республика. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 3:62–5. DOI:10.21055/0370-1069-2016-3-62-65.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1155

Availability: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1155
https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-2-93-98

View record from BASE

9

Academic Journal

Results of investigating the characteristics of bone marrow in patients with squamous cell carcinoma of the head and neck, their clinical value ; Результаты исследования характеристик костного мозга больных плоскоклеточным раком головы и шеи, их клиническое значение

Authors: E. G. Timonina, N. N. Tupitsyn, S. O. Podvyaznikov, V. A. Spiridonova, M. A. Frenkel’, O. P. Kolbatskaya, O. A. Chegrinets, Е. Г. Тимонина, Н. Н. Тупицын, С. О. Подвязников, В. А. Спиридонова, М. А. Френкель, О. П. Колбацкая, О. А. Чегринец

Source: Head and Neck Tumors (HNT); Том 6, № 1 (2016); 55-67 ; Опухоли головы и шеи; Том 6, № 1 (2016); 55-67 ; 2411-4634 ; 2222-1468 ; 10.17650/2222-1468-2016-6-1

Subject Terms: амплифицированная комплементарная ДНК Е48, micrometastases, head and neck squamous cell carcinoma, hematopoiesis, reverse-transcriptase polymerase chain reaction, amplified complementary DNA E48, микрометастазы, плоскоклеточный рак головы и шеи, гемопоэз, полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией

File Description: application/pdf

Relation: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/200/200; Статистика злокачественных новообразований в России и странах СНГ в 2013 году. Под ред.: М.И. Давыдова, Е.М. Аксель. М., 2015. [Statistics of malignant neoplasms in Russia and CIS countries in 2013. By eds.: М.I. Davydov, Е.М. Аksel’. Мoscow, 2015. (In Russ.)].; Пачес А.И. Опухоли головы и шеи. М.: Медицина, 2000. С. 126–42; 320–40. [Paches А.I. Head and neck tumors. Мoscow: Меditsina, 2000. Pp. 126–42; 320–40. (In Russ.)].; Матякин Е.Г. Клинические аспекты регионарного метастазирования рака языка и гортани. Автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 1988. [Маtyakin Е.G. Clinical aspects of the regional tongue and pharynx metastases. Author’s abstract of thesis . of doctor of medicine. Мoscow, 1988. (In Russ.)].; Нуммаев Г.М. Рак гортаноглотки (современные методы диагностики, лечения и прогноза). Автореф. дис. . д-ра мед. наук. М., 1988. [Nummaev G.М. Hypopharynx cancer (modern diagnostics, treatment and forecast method). Author’s abstract of thesis . of doctor of medicine. Мoscow, 1988. (In Russ.)].; Kademani D., Bell R.B., Bagheri S. et al. Prognostic factors in intraoral squamous cell carcinoma: the influence of histologic grade. J Oral Maxillofac Surg 2005;63(11): 1599–605.; Aхундов А.А. Клиническое значение диплоидности ДНК при плоскоклеточном раке слизистой оболочки полости рта. Автореф. дис. . канд. мед. наук. М., 2000. [Akhundov А.А. Clinical value of the DNA diploidy at the epidermoid cancer of the oral mucosa. Author’s abstract of thesis . of candidate of medicine. Мoscow, 2000. (In Russ.)].; Уваров А.А. Органосохраняющие методы лечения местно-распространенного рака орофарингеальной области. Дис. . д-ра мед. наук. М., 1997. [Uvarov А.А. Оrgan-preserving methods of treatment of the local cancer of the oropharyngeal area. Thesis . of doctor of medicine. Мoscow, 1997. (In Russ.)].; Худират С.А. Анализ ДНК-цитометрических данных и их использование для прогнозирования течения опухолевого процесса при злокачественных опухолях слизистой оболочки полости рта и гортани. Автореф. дис. . канд. биол. наук. М., 1998. [Khudirat S.А. Аnalysis of DNAcytometric data and its use for the forecasting of the tumor process course at malignant neoplasms of the mouth cavity and pharynx. Author’s abstract of thesis . of candidate of biology. Мoscow, 1998. (In Russ.)].; Colnot D.R., Nieuwenhuis E.J., Kuik D.J. et al. Clinical significance of micrometastatic cells detected by E48 (Ly-6D) reverse transcription-polymerase chain reaction in bone marrow of head and neck cancer patients. Clin Cancer Res 2004;10(23): 7827–33.; Partridge M., Brakenhoff R., Phillips E. et al. Detection of rare disseminated tumor cells identifies head and neck cancer patients at risk of treatment failure. Clin Cancer Res 2003;9(14):5287–94.; Крохина О.В. Микрометастазы рака молочной железы в костный мозг. Иммуноморфологическая диагностика. Дис. . канд. мед. наук. М., 2003. [Krokhina О.V. Мicrometastases of the mammary gland cancer to the bone marrow. Immunomorphologic diagnostics. Thesis . of candidate of medicine. Мoscow, 2003. (In Russ.)].; Mansi J.L., Easton D., Berger U. et al. Bone marrow micrometastases in primary breast cancer: prognostic significance after 6 years’ follow-up. Eur J Cancer 1991;27(12):1552–5.; Harbeck N., Untch M., Pache L., Eiermann W. Tumour cell detection in the bone marrow of breast cancer patients at primary therapy: results of a 3-year median follow-up. Br J Cancer 1994;69(3):566–71.; Wiedswang G., Borgen E., Karesen R. et al. Detection of isolated tumor cells in bone marrow is an independent prognostic factor in breast cancer. J Clin Oncol 2003;21(18):3469–78.; Кузнецов Ю.В., Ковригина Е.С., Байдун Л.В. и др. Использование эритроцитарных индексов и показателей обмена железа в дифференциальной диагностике микроцитарных анемий. Гематология и трансфузиология 2000;45(6):46–8. [Kuznetsov Yu.V., Kovriginа E.S., Baydun L.V. et al. Using of erythrocyte indices and of iron exchange indices in the differential diagnostics of microcytic anemias. Gematologiya i transfuziologiya = Hematology and Transfusiology 2000;45(6):46–8. (In Russ.)].; Hofmann T., Buchner A., Hofstetter A. et al. Prognostic relevance of disseminated tumour cells in bone marrow of patients with transitional cell carcinoma. Eur J Cancer 2007;43(18):2678–84.; Pantel K., Aignherr C., Kollerman J. et al. Immunocytochemical detection of isolated cells in bone marrow of patients with untreated stage C prostatic cancer. Eur J Cancer 1995;31A(10):1627–32.; Pantel K., Izbicki J., Passlick B. et al. Frequency and prognostic significance of isolated tumour cells in bone marrow of patients with non-small-cell lung cancer without overt metastases. Lancet 1996;347(9002):649–53.; Soeth E., Röder C., Juhl H. et al. The detection of disseminated tumor cells in bone marrow from colorectal-cancer patients by a cytokeratin-20-specific nested reverse-transcriptase-polymerase-chain reaction is related to the stage of disease. Int J Cancer 1996;69(4):278–82.; Weitz J., Kienle P., Magener A. et al. Detection of disseminated colorectal cancer cells in lymph nodes, blood and bone marrow. Clin Cancer Res 1999;5(7):1830–6.; Brakenhoff R.H., Stroomer J.G., ten Brink C. et al. Sensitive detection of squamous cells in bone marrow and blood of head and neck cancer patients by E48 reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Clin Cancer Res 1999;5(4):725–32.; Соколов В.В., Грибова И.А. Гематологические показатели здорового человека. М.: Медицина, 1972. [Sokolov V.V., Gribova I.А. Hematologic indices of healthy humans. Мoscow: Meditsina, 1972. (In Russ.)].; Наследов А.Д. SPSS. Компьютерный анализ данных в психологии и социальных науках. СПб.: Питер, 2005. [Nasledov А.D. SPSS. Computer analysis of data in psychology and social sciences. Saint Petersburg: Piter, 2005. (In Russ.)]; Реброва О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М., 2006. [Rebrovа О.Yu. Statistic analysis of medical data. Application of the applied programs’ package STATISTICA. Мoscow, 2006. (In Russ.)].; Dakhama A., Hegele R.G. A nonradioactive method for rapid and sensitive detection of polymerase chain reaction products by use of bromo-desoxyuridine. Mod Pathol 1996;9(8):849–53.; https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/200

Availability: https://ogsh.abvpress.ru/jour/article/view/200
https://doi.org/10.17650/2222-1468-2016-6-1-55-67

View record from BASE

10

Academic Journal