-
1Academic Journal
Source: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».
Subject Terms: БАКТЕРИОФАГ, ЭНДОЛИЗИНЫ, ПЕПТИДОГЛИКАН, РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА
-
2Academic Journal
Source: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».
Subject Terms: ДЕГРАДАЦИЯ АЛКАНОВ, АЛКАНМОНООКСИГЕНАЗА, ПЛАЗМИДА, КОНЪЮГАЦИЯ, ЛЕВАН
-
3Academic Journal
Source: VII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов», шко- ла-конференция для молодых ученых, аспирантов и студентов «Генетические технологии в микробио- логии и микробное разнообразие».
Subject Terms: лизогенный цикл, вирионы, митомицин, клетка, литический цикл, профаги, сельское хозяйство, бактериофаг, антибактериальные препараты, ветеринария, плазмида, сифовирус, полногеномное секвенирование, медицина, пищевая промышленность
-
4Academic Journal
Source: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».
Subject Terms: ПЛАЗМИДА PD4A-46, УСТОЙЧИВОСТЬ К ТЕТРАЦИКЛИНУ
-
5Academic Journal
Source: VIII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов».
Subject Terms: САЛИЦИЛАТ, ОБРАТНАЯ ТРАНСКРИПЦИЯ, КАТАБОЛИЗМ НАФТАЛИНА, ПЛАЗМИДА, МИКРООРГАНИЗМ-НЕФТЕДЕСТРУКТОР, БЕЛКИ НУКЛЕОИДА
-
6Academic Journal
Authors: V. G. Bogdan, A. S. Doronkina, I. P. Zhavoronok, E. V. Fedorova, T. A. Filippovich, S. G. Lepeshko, S. V. Mankovskaya, В. Г. Богдан, А. С. Доронькина, И. П. Жаворонок, Е. В. Федорова, Т. А. Филиппович, С. Г. Лепешко, С. В. Маньковская
Source: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 68, № 2 (2024); 138-147 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 68, № 2 (2024); 138-147 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2024-68-2
Subject Terms: VEGF, gene therapy, plasmid, vascular endothelial growth, генная терапия, плазмида, фактор роста эндотелия сосудов
File Description: application/pdf
Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1184/1185; Adam, D. J. Bypass versus angioplasty in severe ischaemia of the leg (BASIL): multicentre, randomised controlled trial / D. J. Adam, J. D. Beard, Т. Cleveland // Lancet. – 2005. – Vol. 366, N 9501. – Р. 1925–1934. https://doi.org/10.1016/s0140-6736(05)67704-5; Григорьева, А. И. Хронические облитерирующие заболевания артерий нижних конечностей. Современное амбулаторное лечение / А. И. Григорьева // Моск. хирург. журн. – 2022. – Спецвыпуск. – С. 43–51. https://doi.org/10.17238/2072-3180-2022-43-51; Скворцов, В. В. Современные аспекты диагностики и лечения облитерирующего атеросклероза артерий нижних конечностей / В. В. Скворцов, А. В. Сабанов, А. А. Еременко // Лечащий врач. – 2023. – Т. 26, № 6. – С. 55–60. https://doi.org/10.51793/os.2023.26.6.008; Богдан, В. Г. Стимуляция ангиогенеза в комплексном лечении пациентов с хронической артериальной недостаточностью нижних конечностей / В. Г. Богдан, С. Г. Лепешко // Военная медицина. – 2017. – № 2. – С. 117–119.; Safety and efficacy of plasmid DNA expressing two isoforms of hepatocyte growth factor in patients with critical limb ischemia / M. R. Kibbe [et al.] // Gene Therapy. – 2016. – Vol. 23, N 3. – Р. 306–312. https://doi.org/10.1038/gt.2015.110; Червяков, Ю. В. Эффективность генной терапии и стандартного консервативного лечения хронической ишемии нижних конечностей атеросклеротического генеза / Ю. В. Червяков, О. Н. Власенко // Вестн. хирургии им. И. И. Грекова. – 2018. – Т. 177, № 2. – С. 64–69. https://doi.org/10.24884/0042-4625-2018-177-2-64-69; Gene-based therapies in patients with critical limb ischemia / Р. Kitrou [et al.] // Expert Opin. Biol. Ther. – 2017. – Vol. 17, N 4. – P. 449–456. https://doi.org/10.1080/14712598.2017.1289170; Phase I/IIa clinical trial of therapeutic angiogenesis using hepatocyte growth factor gene transfer to treat critical limb ischemia / R. Morishita [et al.] // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. – 2011. – Vol. 31, N 3. – Р. 713–720. https://doi.org/10.1161/atvbaha.110.219550; Double VERF/HGF gene therapy in critical limb ischemia complicated by diabetes mellitus / P. Barc [et al.] // J. Cardiovasc. Transl. Res. – 2021. – Vol. 14, N 3. – P. 409–415. https://doi.org/10.1007/s12265-020-10066-9; Giacca, M. VEGF gene therapy: therapeutic angiogenesis in the clinic and beyond / M. Giacca, S. Zacchigna // Gene Ther. – 2012. – Vol. 19, N 6. – Р. 622–629. https://doi.org/10.1038/gt.2012.17; Опыт применения терапевтического ангиогенеза препаратом «Неоваскулген» у пациентов с нешунтабельным поражением артерий нижних конечностей / В. Ю. Михайличенко [и др.] // Тавр. мед.-биол. вестн. – 2022. – Т. 25, № 2. – С. 55–60.; Randall, L. O. A method for measurement of analgesic activity on inflamed tissue / L. O. Randall, J. J. Selitto // Arch. Int. Pharmacodyn. Ther. – 1957. – Vol. 111, N 4. – Р. 409–419.; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1184
-
7Academic Journal
Authors: Larisa A. Krasnobaeva, Ludmila V. Yakushevich
Source: AIMS Biophysics, Vol 8, Iss 2, Pp 221-232 (2021)
AIMS Biophysics. 2021. Vol. 8, № 2. P. 221-232Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, pBR322, плазмида, QH301-705.5, открытое состояние ДНК, молекулы ДНК, kinks, синус-Гордона уравнение, 03 medical and health sciences, double profile, open states, математические модели, plasmid pbr322, transcription bubbles, direction of transcription, Biology (General), TP248.13-248.65, Biotechnology
File Description: application/pdf
-
8Academic Journal
-
9Academic Journal
-
10Academic Journal
Authors: S. S. Dzhauari, M. N. Karagyaur, V. Yu. Balabanyan, M. N. Skryabina, A. L. Primak, D. V. Stambolsky, С. С. Джауари, М. Н. Карагяур, В. Ю. Балабаньян, М. Н. Скрябина, А. Л. Примак, Д. В. Стамбольский
Contributors: The study was financially supported by the Ministry of Industry and Trade of the Russian Federation as part of the implementation of the Federal target program “Development of the pharmaceutical and medical industries of the Russian Federation for the period up to 2020 and beyond”., Работа выполнена при финасовой поддержке МинПромТорга РФ в рамках реализации Федеральной целевой программы «Развитие фармацевтической и медицинской промышленности Российской Федерации на период до 2020 года и дальнейшую перспективу».
Source: Pharmacokinetics and Pharmacodynamics; № 2 (2022); 46-57 ; Фармакокинетика и Фармакодинамика; № 2 (2022); 46-57 ; 2686-8830 ; 2587-7836
Subject Terms: мыши, plasmid, dissemination, RealTime PCR, mice, плазмида, диссеминация, ПЦР в реальном времени
File Description: application/pdf
Relation: https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/318/304; Одинак М.М., Живолупов С.А. Заболевания и травмы периферической нервной системы. Санкт-Петербург: Издательство «СпецЛит»; 2009.; Шевелев И.Н. Травматические поражения плечевого сплетения. – М.: Издательство «Москва»; 2005.; Karagyaur M, Rostovtseva A, Semina E, Klimovich P et al. A bicistronic plasmid encoding brain-derived neurotrophic factor and urokinase plasminogen activatorstimulates peripheral nerve regeneration after injury. J Pharmacol Exp Ther. 2020;372(3):248–255. DOI:10.1124/jpet.119.261594.; Boyd JG, Gordon T. Neurotrophic factors and their receptors in axonal regeneration and functional recovery after peripheral nerve injury. Mol Neurobiol. 2003;27(3):277–324. DOI:10.1385/MN:27:3:277.; Frostick SP, Yin Q, Kemp GJ. Schwann cells, neurotrophic factors, and peripheral nerve regeneration. Microsurgery. 1998;18(7):397–405. DOI:10.1002/(sici)1098-2752(1998)18:73.0.co;2-f.; Huang Q, Wei H, Wu Z, et al. Preferentially Expressed Antigen of Melanoma Prevents Lung Cancer Metastasis. PLoS One. 2016;11(7):e0149640. DOI:10.1371/journal.pone.0149640.; Maripuu A, Björkman A, Björkman-Burtscher IM, Mannfolk P et al. Reconstruction of sciatic nerve after traumatic injury in humans - factors influencing outcome as related to neurobiological knowledge from animal research. J Brachial Plex Peripher Nerve Inj. 2012 Oct 10;7(1):7. DOI:10.1186/1749-7221-7-7.; EMEA. Guideline on bioanalytical method validation. 2011.; US FDA. Guidance for industry: Q2B validation of analytical procedures: methodology. Rockville. MD: Nov 1996.; OECD. Guidance document on the validation and international acceptance of new or updated test methods for hazard assessment. 2005.; Schechtman LM. Internationally harmonized processes for test method evaluation. Validation and regulatory acceptance: The role of OECD guidance document 34. Japanese Society for Alternatives to Animal Experiments, 14, Special Issue. Рр. 475–782 (2008).; Хамиде З. Сеньюва, Гилберт Д. Простое руководство для пользователей по разработке и валидации методов / Перевод на русский язык под ред. А. Галкин. – М.: Издательство «ООО Ториус 77»; 2011.; Ermer J, Nethercote PW. Method Validation in Pharmaceutical Analysis. Wiley, 2014.; https://www.pharmacokinetica.ru/jour/article/view/318
-
11Academic Journal
Authors: D. M. Davidov, O. P. Dmitrenko, O. L. Terekhina, M. K. Nurbekov
Source: Nauchno-prakticheskii zhurnal «Patogenez». :161-164
Subject Terms: recombinant protein S100B, аналитическая и препаративная экспрессия белков, рекомбинантный белок S100B, cloning and expression strategy, metal affinity protein chromatography, оптимизация гетерологичной экспрессии, фолдинг белка, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, Genome compiler, protein folding, металл-аффинная хроматография белков, гетерологичная экспрессия кДНК, рекомбинантная плазмида, pBT7-N-His vector system, analytical and preparative protein expression, векторная система pBT7-N-His, heterologous cDNA expression
-
12Academic Journal
Authors: Войда, Ю., Бірюкова, С.
Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 3(59) (2011); 73-76 ; Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 3(59) (2011); 73-76 ; Буковинський медичний вісник; Том 15 № 3(59) (2011); 73-76 ; 2413-0737 ; 1684-7903
Subject Terms: плазміда, кріопротектор, кріоконсервування, Escherichia coli, плазмида, криопротектор, криоконсервирование, plasmid, cryoprotector, cryopreservation
File Description: application/pdf
Availability: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232190
-
13Academic Journal
Source: Буковинський медичний вісник; Том 15 № 3(59) (2011); 73-76
Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 3(59) (2011); 73-76
Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 3(59) (2011); 73-76Subject Terms: plasmid, cryoprotector, cryopreservation, Escherichia coli, плазмида, криопротектор, криоконсервирование, 3. Good health, плазміда, кріопротектор, кріоконсервування
File Description: application/pdf
Access URL: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232190
-
14Academic Journal
Authors: L. M. Kukleva, I. V. Tuchkov, E. G. Oglodin, Z. L. Devdariani, O. A. Morozov, O. S. Kuznetsov, V. G. Germanchuk, G. A. Eroshenko, Л. М. Куклева, И. В. Тучков, Е. Г. Оглодин, З. Л. Девдариани, О. А. Морозов, О. С. Кузнецов, В. Г. Германчук, Г. А. Ерошенко
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2019); 61-66 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2019); 61-66 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2019-4
Subject Terms: плазмида pTurboGFP-B, recombinant bio-fluorescent strain, plasmid pTurboGFP-B, рекомбинантный биофлуоресцентный штамм
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1217/1075; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В., редакторы. Природные очаги чумы Кавказа, Прикаспия, Средней Азии и Сибири. М.: Медицина; 2004. 191 с.; Солдаткин И.С., Руденчик Ю.В., Ефимов С.В. Эпизоотический процесс в природных очагах чумы (обзор данных и ревизия концепции). В кн.: Эйгелис Ю.К., редактор. вопросы паразитологии и неспецифической профилактики зоонозов. Саратов; 1988. С. 83-134.; Попов Н.В., Слудский А.А., Удовиков А.И., Аникин В.В., Яковлев С.А., Караваева Т.Б. К роли нематод (Secernentea, Rhabdidae) - паразитов блох в энзоотии чумы. Энтомологические и паразитологические исследования в Поволжье. 2006; 5:88-92.; Darby C. Uniquely insidious: Yersinia pestis biofilms. Trends Microbiol. 2008; 16(4):158-64. DOI:10.1016/j.tim.2008.01.005.; Hinnebusch B., Erickson D. Yersinia pestis biofilm in the flea vector and its role in the transmission of plague. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2008; 322:229-48. DOI:10.1007/978-3-540-75418-311.; Hall-Stoodley L., Costerton J., Stoodley P. Bacterial bio-films: from the natural environment to infectious diseases. Nat. Rev. Microbiol. 2004; 2(2):95-108. DOI:10.1038/nrmicro821.; Кошель Е.И., Ерошенко Г.А., Анисимова Л.В., Новичкова Л.А., Широков А.А., Буров А.М., Кузнецов О.С., Кутырев В.В. Оценка длительности сохранения штаммов Yersinia pestis в клетках почвенных амеб Acanthamoeba sp. в экспериментальных условиях. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 2:69-74. DOI:10.21055/0370-1069-2016-2-69-74.; Никульшин С. В., Онацкая Т Г., Луканина Л. М. Изучение ассоциации почвенных амеб Hartmannella rhysodes с бактериями - возбудителями чумы и псевдотуберкулеза в эксперименте. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1992; 69(9-10):2-4.; Zhang X., Cui Z., Wang D. Sensing of biomolecular interactions using fluorescence complementing systems in living cells. Biosens. Bioelectron. 2016; 76:243-50. DOI:10.1016/j.bios.2015.07.069.; Sarcar P., Chattopadhyay A. GFP fluorescence: A few lesser-known nuggets that make it work. J. Biosci. 2018; 43(3):421-30. DOI:10.1007/s12038-018-9779-9.; Forde C., Rocco J., Fitch J., McCutchen-Maloney S. Real-time characterization of virulence factor expression in Yersinia pestis using a GFP reporter system. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2004; 324(2):795-800. DOI:10.1016/j.bbrc.2004.08.236.; Gensberger E., Kostic T. Green fluorescent protein label¬ing of food pathogens Yersinia enterocolitica and Yersinia pseudo-tuberculosis. J. Microbiol. Meth. 2017; 132:21-6. DOI:10.1016/j.mimet.2016.11.008.; Su S., Bangar H., Saldanha R., Pemberton A., Aronow B., Dean G., Lamkin T., Hassett D.J. Construction and characterization of stable, constitutively expressed, chromosomal green and red fluorescent transcriptional fusions in the select agents, Bacillus anthracis, Yersinia pestis, Burkholderia mallei and Burkholderia pseudomallei. MicrobiologyOpen. 2014; 3(5):610-29. DOI:10.1002/mbo3.192.; Shagin D.A., Barsova E.V., Yanushevich Y.G., Fradkov A.F., Lukyanov K.A., Labas Y.A., Semenova T.N., Ugalde J.A., Meyers A., Nunez J.M., Widder E.A., Lukyanov S.A., Matz M.V GFP-like proteins as ubiquitous metazoan superfamily: evolution of functional features and structural complexity. Mol. Biol. Evol. 2004; 21(5):841-50. DOI:10.1093/molbev/msh079.; Conchas R.F., Carniel E. A highly efficient electroporation system for transformation of Yersinia. Gene. 1990; 87(1):133-7. DOI:10.1016/0378-1119(90)90505-L.; Онищенко Г.Г., Кутырев В.В., редакторы. Лабораторная диагностика особо опасных инфекционных болезней. Практическое руководство. М.: ЗАО «Шико»; 2013. 560 с.; Kado C., Liu S.-T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J. Bacteriol. 1981; 145(3):1365-73. PMID: 7009583. PMCID: PMC217141.; Плохинский Н.А. Биометрия. М.: Изд-во МГУ; 1970. 367 с.; Балахонов С.В., Афанасьев М.В., Шестопалов М.Ю., Остяк А.С., Витязева С.А., Корзун В.М., Вержуцкий Д.Б., Михайлов Е.П., Мищенко А.И., Денисов А.В., Ивженко Н.И., Рождественский Е.Н., Висков Е.Н., Фомина Л.А. Первый случай выделения Yersinia pestis subsp. pestis в Алтайском горном природном очаге чумы. Сообщение I. Микробиологическая характеристика, молекулярно-генетическая и масс-спектрометрическая идентификация изолята. Проблемы особо опасных инфекций. 2013; 1:60-5. DOI:10.21055/0370-1069-2013-1-60-65.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1217
-
15Academic Journal
Authors: N. P. Peretolchina, V. T. Klimov, E. A. Voskresenskaya, G. I. Kokorina, E. A. Bogumilchik, A. L. Trukhachev, S. V. Igumnova, Y. P. Dzhioev, V. I. Zlobin, Н. П. Перетолчина, В. Т. Климов, Е. А. Воскресенская, Г. И. Кокорина, Е. А. Богумильчик, А. Л. Трухачев, С. В. Игумнова, Ю. П. Джиоев, В. И. Злобин
Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 19, № 2 (2020); 31-39 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 19, № 2 (2020); 31-39 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2020-19-2
Subject Terms: ПЦР, Y. pseudotuberculosis, CRISPR-Cas system, virulence determinants, virulence plasmid, PCR, CRSIRP-Cas система, детерминанты патогенности, плазмида вирулентности
File Description: application/pdf
Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/978/623; Fukushima H., Matsuda Y., Seki R., et al. Geographical heterogeneity between Far Eastern and Western countries in prevalence of the virulence plasmid, the superantigen Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen, and the high-pathogenicity island among Yersinia pseudotuberculosis strains. // Journal of clinical microbiology. 2001. Vol. 39, N10. P. 3541–3547.; Amphlett A. Far East scarlet-like fever: a review of the epidemiology, symptomatology, and role of superantigenic toxin: Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen A // Open forum infectious diseases. 2016. Vol. 3, N 1.; Сомов Г.П. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка (псевдотуберкулез человека) // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1976. T. 53, № 4. С. 103.; Nörenberg D., Wieser A., Magistro G., et al. Molecular analysis of a novel Toll/interleukin-1 receptor (TIR)-domain containing virulence protein of Y. pseudotuberculosis among Far East scarlet-like fever serotype I strains // International Journal of Medical Microbiology. 2013. Vol. 303, N8. P. 583–594.; Collyn F., Billault A., Mullet C., et al. YAPI, a new Yersinia pseudotuberculosis pathogenicity island // Infection and immunity. 2004. Vol. 72, N8. P. 4784–4790.; Collyn F., Fukushima H., Carnoy C., et al. Linkage of the horizontally acquired ypm and pil genes in Yersinia pseudotuberculosis. // Infection and immunity. 2005. Vol. 73, N4. P. 2556–2558.; Шурыгина И.А., Малов И.В., Шурыгин М.Г. Современные представления о факторах патогенности Yersinia pseudotuberculosis. // Acta Biomedica Scientifica. 2005. № 6. C. 208–214.; Воропаев А.В., Шурыгина И.А., Климов В.Т., и др. Иммуносупрессивные свойства плазмиды pVM82 Yersinia pseudotuberculosis // Acta Biomedica Scientifica. 2002. № 4–2. C. 49–51.; Timchenko NF, Adgamov RR, Popov AF, et al. Far East Scarlet-like fever caused by a few related genotypes of Yersinia pseudotuberculosis, Russia // Emerging infectious diseases. 2016. Vol. 22, N3. P. 503–506.; Mojica FJ, García-Martínez J, Soria E. Intervening sequences of regularly spaced prokaryotic repeats derive from foreign genetic elements // Journal of molecular evolution. 2005. Vol. 60, N2. P. 174–182.; Jiang F., Doudna J. The structural biology of CRISPR-Cas systems // Current opinion in structural biology. 2015. Vol. 30. P. 100–111.; Sternberg SH, Richter H, Charpentier E, et al. Adaptation in CRISPR-Cas systems // Molecular cell. 2016. Vol. 61, N6. P. 797–808.; Pourcel C., Salvignol G., Vergnaud G. CRISPR elements in Yersinia pestis acquire new repeats by preferential uptake of bacteriophage DNA, and provide additional tools for evolutionary studies // Microbiology. 2005. Vol. 151, N3. P. 653–663.; Платонов М.Е., Евсеева В.В., Ефременко Д.В., и др. Внутривидовая принадлежность рамнозопозитивных штаммов Yersinia pestis из природных очагов чумы Монголии // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2015. Т. 33, №1. С. 23–28.; Cui Y, Li Y, Gorgé O, et al. Insight into microevolution of Yersinia pestis by clustered regularly interspaced short palindromic repeats // PloS one. 2008. Vol. 3, N 7. P. e2652.; Barros M.P.S., França C.T., Lins R.H.F., et al. Dynamics of CRISPR loci in microevolutionary process of Yersinia pestis strains // PloS one. 2014. Vol. 9, N 9. P. e108353.; Seecharran T., Kalin-Manttari L., Koskela K., et al. Phylogeographic separation and formation of sexually discrete lineages in a global population of Yersinia pseudotuberculosis // Microbial genomics. 2017. Vol. 3, N10. P. e000133.; Bogdanovich T., Carniel E., Fukushima H., et al. Use of O-antigen gene cluster-specific PCRs for the identification and O-genotyping of Yersinia pseudotuberculosis and Yersinia pestis // Journal of Clinical Microbiology. 2003. Vol. 41, N11. P. 5103–5112.; Ito Y., Abe J., Yoshino K.I., et al. Sequence analysis of the gene for a novel superantigen produced by Yersinia pseudotuberculosis and expression of the recombinant protein // The Journal of Immunology. 1995. Vol. 154, N11. P. 5896–5906.; Schubert S., Rakin A., Karch H., et al. Prevalence of the “high-pathogenicity island” of Yersinia species among Escherichia coli strains that are pathogenic to humans // Infection and immunity. 1998. Vol. 66, N2. P. 480–485.; Eppinger M., Rosovitz M.J., Fricke W.F., et al. The complete genome sequence of Yersinia pseudotuberculosis IP31758, the causative agent of Far East scarlet-like fever // PLoS genetics. 2007. Vol. 3, N 8. P. e142.; Ye J., Coulouris G., Zaretskaya I., et al. Primer-BLAST: a tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction // BMC bioinformatics. 2012. Vol. 13, N1. P. 134.; Zhang Q., Ye Y. Not all predicted CRISPR–Cas systems are equal: isolated cas genes and classes of CRISPR like elements // BMC bioinformatics. 2017. Vol. 18, N1. P. 92.; Grissa I., Vergnaud G., Pourcel C. CRISPRFinder: a web tool to identify clustered regularly interspaced short palindromic repeats // Nucleic acids research. 2007. Vol. 35. Suppl 2. P. W52–W57.; Koskela K.A., Mattinen L., Kalin‐Mänttäri L., et al. Generation of a CRISPR database for Yersinia pseudotuberculosis complex and role of CRISPR‐based immunity in conjugation // Environmental microbiology. 2015. Vol. 17, N11. P. 4306–4321.; Carniel E. The Yersinia high-pathogenicity island: an iron-uptake island // Microbes and infection. 2001. Vol. 3, N7. P. 561–569.; Collyn F., Léty M.A., Nair S., et al. Yersinia pseudotuberculosis harbors a type IV pilus gene cluster that contributes to pathogenicity // Infection and immunity. 2002. Vol. 70, N11. P. 6196–6205.; Carnoy C., Floquet S., Marceau M., et al. The superantigen gene ypm is located in an unstable chromosomal locus of Yersinia pseudotuberculosis // Journal of Bacteriology. 2002. Vol. 184, N16. P. 4489–4499.; Patterson A.G., Jackson S.A., Taylor C., et al. Quorum sensing controls adaptive immunity through the regulation of multiple CRISPR-Cas systems // Molecular cell. 2016. Vol. 64, N6. P. 1102–1108.; Makarova K.S., Anantharaman V., Aravind L., et al. Live virus-free or die: coupling of antivirus immunity and programmed suicide or dormancy in prokaryotes // Biology direct. 2012. Vol. 7, N1. P. 40; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/978
-
16
-
17Academic Journal
Authors: T. V. Budylskaya, D. V. Byrikhina, A. I. Gosudarev, V. D. Gusarova, F. M. Izhaeva, P. V. Mikhailov, D. A. Gusarov, Т. В. Будыльская, Д. В. Бырихина, А. И. Государев, В. Д. Гусарова, Ф. М. Ижаева, П. В. Михайлов, Д. А. Гусаров
Source: Drug development & registration; № 1 (2016); 74-85 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; № 1 (2016); 74-85 ; 2658-5049 ; 2305-2066
Subject Terms: биотехнология, pharmaceutical development, supercoiled plasmid, biotechnology, фармацевтическая разработка, суперскрученная плазмида
File Description: application/pdf
Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/225/222; Е.А. Савищенко, С.С. Илисавский, А.И. Гинак, Т.Д. Алейникова, М.М. Шавловский. Наночастицы на основе производных гидрокортизона в качестве векторов доставки генетического материала в эукариотические клетки in vivo // Биотехнология. 2009. Т. 1. С. 31-38.; Неоваскулген. URL: http://hsci.ru/produkty-i-uslugi/neovaskulgen (дата обращения 20.01.2016).; Ю.А. Жогина, Д.В. Глазкова, А.С. Ветчинова, Е.В. Богословская, Г.М. Цыганова, Г.А. Шипулин. Сравнительная оценка активности различных генетических конструкций, направленных на подавление репликации ВИЧ-1 // Биофармацевтический Журнал. 2014. Т. 6(5). С. 11-18.; П.В. Михайлов, Е.К. Курбанова, В.Д. Гусарова, А.М. Лящук, Ю.Н. Новиков, Д.А. Гусаров. Периодический режим культивирования бактериального продуцента E. coli с подпиткой для продукции генно-терапевтической суперскрученной плазмиды // Биофармацевтический Журнал. 2014. Т. 6(3). С. 31-35.; J. Sambrook, E. Fritsch, T. Maniatis. Gel electrophoresis of DNA. In Molecular Cloning: a Laboratory Manual. - N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, 1989. Chapter 6.; Потеря в массе при высушивании // Государственная фармакопея Российской Федерации. XII изд. Ч. 1. - М. 2007.; Государственная фармакопея Российской Федерации. XII издание. Ч. 1. - М. 2007.; ОФС 42-0075-07 // Государственная фармакопея XII, Ч.1. - М. 2007.; ОФС 42-0066-07 // Государственная фармакопея XII, Ч.1. - М. 2007.; Контроль стерильности методом прямого посева // Государственная фармакопея CCCP. XI издание. Ч. 2. - М. 1989.; M.J. Maltesen, M. van de Weert. Drying methods for protein pharmaceuticals // Drug Discovery Today: Technologies. 2008. V. 5. № 2-3. P. e81-e88.; S. Bhattacharya, R. Suryanarayanan. Local mobility in amorphous pharmaceuticals-characterization and implications on stability // J. Pharm. Sci. 2009. V. 98. № 9. P. 2935-2953.; M.J. Pikal. Freeze Drying // Encyclopedia of Pharmaceutical Technology / Ed. by J. Swabrick, J.S. Boyland. - N.Y.: Marcel Dekker, 2001.; S. Tsinontides, P. Rajniak, D. Pham, W. Hunke, J. Placek, S.D. Reynolds. Freeze Drying - Principles and Practice for Successful Scale-up to Manufacturing // Int. J. Pharm. 2004. V. 280. P. 1-16.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/225
Availability: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/225
-
18Academic Journal
Authors: E. V. Monakhova, G. V. Demidova, R. V. Pisanov, O. V. Duvanova, B. N. Mishan’kin, Е. В. Монахова, Г. В. Демидова, Р. В. Писанов, О. В. Дуванова, Б. Н. Мишанькин
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 2 (2019); 87-92 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 2 (2019); 87-92 ; 2658-719X ; 0370-1069 ; 10.21055/0370-1069-2019-2
Subject Terms: экспрессия в Escherichia coli, gene cloning, recombinant plasmid, expression in Escherichia coli, рекомбинантная плазмида, клонирование гена
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1154/1037; Galen J.E., Ketley J.M., Fasano A., Richardson S.N., Wasserman S.S., Kaper J.B. Role of Vibrio cholerae neuraminidase in the function of cholera toxin. Infect. Immun. 1992; 60(2):406–15. PMID: 1730470. PMCID: PMC257643.; Jermyn W.S., Boyd E.F. Characterization of a novel Vibrio pathogenicity island (VPI-2) encoding neuraminidase (nanH) among toxigenic Vibrio cholerae isolates. Microbiology. 2002; 148(Pt 11):3681–93. DOI:10.1099/00221287-148-11-3681.; Figueiredo S.C., Neves-Borges A.C., Coelho A. The neuraminidase gene is present in the non-toxigenic Vibrio chol- erae Amazonia strain: a different allele in comparison to the pan- demic strains. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2005; 100(6):563–9. DOI:10.1590/S0074-02762005000600010.; Eneva R.T., Engibarov S.A., Petrova P., Abrashev R., Strateva T., Kolyovska V., Abrashev J. High production of neuraminidase by a Vibrio cholerae non-O1 strain – the first possible alternative to toxi- genic producers. Appl. Biochem. Biotechnol. 2015; 176(2):412–27. DOI:10.1007/s12010-015-1584-4.; Diesner S.C., Bergmayr C., Wang X.Y., Heiden D., Exenberger S. Roth-Walter F., Starkl P., Ret D., Palischoll J., Gabor F., Untersmayr E. Characterisation of Vibrio cholerae neuramini- dase as an immunomodulator for novel formulation of oral allergy immunotherapy. Clin. Immunol. 2018; 192:30–9. DOI:10.1016/j.clim.2018.03.017.; Mountney A., Zahner M.R., Lorenzini I., Oudega M., Schramm L.P., Schnaar R.L. Sialidase enhances recovery from spinal cord contusion injury. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2010; 107(25):11561–6. DOI:10.1073/pnas.1006683107.; Mountney A., Zahner M.R., Sturgill E.R., Riley C.J., Aston J.W., Oudega M., Schramm L.P., Hurtado A., Schnaar R.L. Sialidase, chondroitinase ABC, and combination therapy after spinal cord con- tusion injury. J. Neurotrauma. 2013; 30(3):181–90. DOI:10.1089/neu.2012.2353.; Taylor G., Vimr E., Garman E., Laver G. Purification, crys- tallization and preliminary crystallografic study of neuraminidase from Vibrio cholerae and Salmonella typhimurium LT2. J. Mol. Biol. 1992; 226(4):1287–90. PMID: 1518058.; МишанькинБ.Н., ШиманюкН.Я., РябухинаО.Ю., Власов В.П. Штамм E. coli HB101 pRD39 – продуцент нейраминидазы холерного вибриона. Авторское свидетельство № 1210278 от 08.10.1985 г., опубл. 23.02.1987, Бюл. № 7.; Vimr E.R., Lawrisuk L., Galen J., Kaper J.B. Cloning and expression of the Vibrio cholerae neuraminidase gene nanH in Escherichia coli. J. Bacteriol. 1988; 170(4):1495–504.; Moustafa I., Connaris H., Taylor M., Zaitsev V., Wilson J.C., Kiefel M.J., von Itzstein M., Taylor G. Sialic acid recognition by Vibrio cholerae neuraminidase. J. Biol. Chem. 2004; 279(39):40819– 26. DOI:10.1074/jbc.M404965200.; Монахова Е.В., Писанов Р.В., Гончарова Л.А., Михась Н.К., Непомнящая Н.Б., Асеева Л.Е., Каграманов В.С. Клонирование и экспрессия гена гемагглютинин/протеазы (hapA) Vibrio cholerae в Escherichia coli. Биотехнология. 2006; 6:8–15.; Рябухина О.Ю., Шиманюк Н.Я., Мишанькин Б.Н. Определение нейраминидазы у вибрионов О1 и не О1 групп. Лабораторное дело. 1990; (8):63–5.; Монахова Е.В., Писанов Р.В, Демидова Г.В., Непомнящая Н.Б. Штамм Escherichia coli – суперпродуцент ге- молизина Vibrio cholerae. Проблемы особо опасных инфекций. 2018; 1:90–3. DOI:10.21055/0370-1069-2018-1-90-93.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1154
-
19Academic Journal
Authors: M. V. Makarkina, E. T. Ilnitskaya, S. V. Tokmakov, М. В. Макаркина, Е. T. Ильницкая, C. В. Токмаков
Contributors: Российский фонд фундаментальных исследований (проект № 16-34-00827 мол_а)
Source: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 74, № 1 (2019); 50-58 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 74, № 1 (2019); 50-58 ; 0137-0952
Subject Terms: тест-системы, crown gall of grape, polymerase chain reaction, Ti plasmid, opine-types, test-systems, бактериальный рак винограда, полимеразная цепная реакция, Ti-плазмида, типы опинов
File Description: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/709/459; Gelvin S.B. Agrobacterium-mediated plant transformation: The biology behind the “genejockeying” tool // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2003. Vol. 67. N 1. P. 16–37.; Tarbah F.A., Goodman R.N. Rapid detection of Agrobacterium tumefaciens in grapevine propagating material and the basis for an efficient indexing system // Plant Dis. 1986. Vol. 70. P. 566–568; Бурдинская В.Ф., Арестова Н.О. Латентная зараженность винограда бактериальным раком // Защ. карант. раст. 2010. № 10. С. 38– 39; Kerr A., Panagopoulos C.G. Biotypes of Agrobacterium radiobacter var. tumefaciens and their biological control // J. Phytopathol. 1977. Vol. 90. N 2. P. 172–179.; Ophel K., Kerr A. Agrobacterium vitis sp. nov. for strains of Agrobacterium biovar 3 from grapevines // Int. J. Syst. Bacteriol. 1990. Vol. 40. N 3. P. 236–241.; Mousavi S.A, Osterman J, Wahlberg N., Nesme X., Lavire C., Vial L., Paulin L., de Lajudie P., Lindstrom K. Phylogeny of the Rhizobium-Allorhizobium-Agrobacterium clade supports the delineation of Neorhizobium gen. nov // Syst. Appl. Microbiol. 2014. Vol. 37. N 3. P. 208–215.; Ramírez-Bahena M.H., Vial L., Lassalle F., Diel B., Chapulliot D., Daubin V., Nesme X., Muller D. Single acquisition of protelomerase gave rise to speciation of a large and diverse clade within the Agrobacterium/Rhizobium supercluster characterized by the presence of a linear chromid // Mol. Phylogenet. Evol. 2014. Vol. 73. P. 202– 207.; Slater S.C., Goldman B.S., Goodner B. et al. Genome sequences of three agrobacterium biovars help elucidate the evolution of multichromosome genomes in bacteria // J. Bacteriol. 2009. Vol. 191. N 8. P. 2501–2511.; Szegedi E. Opines in naturally infected crown gall tumors // Vitis. 2003. Vol. 42. N 1. P. 39–41.; Haas J.H, Moore L.W., Ream W., Manulis S. Universal PCR primers for detection of phytopathogenic Agrobacterium strains // Appl. Environ. Microbiol. 1995. Vol. 61. N 8. P. 2879– 2884.; Матвеева Т.В., Богомаз Д.И., Лутова Л.А. Способ диагностики биоматериалов на наличие в них агробактерий. Патент РФ на изобретение № 2458142. Дата публ.: 10.08.12. Бюл. №22/12.; Puławska J., Willems A., Sobiczewski P. Rapid and specific identification of four Agrobacterium species and biovars using multiplex PCR // Syst. Appl. Microbiol. 2006. Vol. 29. N. 6. P. 470–479.; Sawada H., Ieki H., Matsuda I. PCR detection of Ti and Ri plasmid from phytopathogenic Agrobacterium strains // Appl. Environ. Microbiol. 1995. Vol. 61. N 2. P. 828– 831.; Suzaki K., Yoshida K., Sawada H. Detection of tumorigenic Agrobacterium strains from infected apple saplings by colony PCR with improved PCR primers // J. Gen. Plant. Pathol. 2004. Vol. 70. N 6. P. 342–347.; Bini F, Kuczmog A., Putnoky P. Novel pathogen-specific primers for the detection of Agrobacterium vitis and Agrobacterium tumefaciens // Vitis. 2008. Vol. 47. N 3. P. 181–190.; Eastwell K.C., Kenneth C., Leslie Willis G., Cavileer D.T. A rapid and sensitive method to detect Agrobacterium vitis in grapevine cuttings using the polymerase chain reaction // Plant Dis. 1995. Vol. 79. N 8. P. 822–827.; Herlache T.C., Hotchkiss A.T., Burr T.J., Collmer A. Characterization of the Agrobacterium vitis pehA gene and comparison of the encoded polygalacturonase with the homologous enzymes from Erwinia carotovora and Ralstonia solanacearum // Appl. Environ. Microbiol. 1997. Vol. 63. N 1. P. 338–346.; Kawaguchi A., Sawada,H., Inoue, K., Nasu H. Multiplex PCR for the identification of Agrobacterium biovar 3 strains // J. Gen. Plant Pathol. 2005. Vol. 71. N 1. P. 54–59.; Lim S.H., Kim J.G., Kang H.W. Novel SCAR primers for specific and sensitive detection of Agrobacterium vitis strains // Microbiol. Res. 2009. Vol. 164. N. 4. P. 451–460.; Canaday J., Gerard J.C., Crouzet P., Otten L. Organization and functional analysis of three T-DNAs from the vitopine Ti plasmid pTiS4 // Mol. Gen. Genet. 1992. Vol. 235. N 2–3. P. 292–303.; Szegedi E., Bottka S. Detection of Agrobacterium vitis by polymerase chain reaction in grapevine bleeding sap after isolation on a semiselective medium // Vitis. 2002. Vol. 41. N 1. P. 37–42.; Szegedi E., Bottka S., Mikulás J., Otten L., Sule S. Characterization of Agrobacterium tumefaciens strains isolated from grapevine // Vitis. 2005. Vol. 44. N 1. P. 49–54.; Bini F., Geider K., Bazzi C. Detection of Agrobacterium vitis by PCR using novel virD2 gene-specific primers that discriminate two subgroups // Eur. J. Plant Pathol. 2008. Vol. 122. N 3. P. 403–411.; Argun N., Momol M.T., Maden S., Momol E.A., Reid C.L., Celek H., Burr T.J. Characterization of Agrobacterium vitis strains isolated from Turkish grape cultivars in the Central Anatolia region // Plant Dis. 2002. Vol. 86. N 2. P. 162–166.; Lamovšek J., Zidarič I., Pleško I.M., Urek G., Trdan S. Comparative study of diagnostic methods used for monitoring of common grape vine (Vitis vinifera L.) crown gall (Agrobacterium vitis Ophel & Kerr) in Slovenia // Acta Agric. Slov. 2015. Vol. 103. N 2. P. 313–321.; Genov I., Atanassov I., Tsvetkov I., Atanassov A. Isolation and characterization of Agrobacterium strains from grapevines in Bulgarian vineyards and wild grapes, V. vinifera ssp. Silvestris // Vitis. 2015. Vol. 45. N 2. P. 97– 101.; Winans S.C., Allenza P., Stachel S.E., McBride K.E., Nester E.W. Characterization of the virE operon of the Agrobacterium Ti plasmid pTiA6 // Nucleic Acids Res. 1987. Vol. 15. N 2. P. 825–837.; Tolba I.H., Zaki M.F. Characterization of Agrobacterium vitis isolates obtained from galled grapevine plants in Egypt // Ann. Agric. Sci. 2011. Vol. 56. N 2. P. 113–119.; Kuzmanović N., Gašić K., Ivanović M., Prokić A., Obradović A. Identification of Agrobacterium vitis as a causal agent of grapevine crown gall in Serbia. Arch. Biol. Sci. 2012. Vol. 64. N 4. P. 1487–1494.; Rouhrazi K., Rahimian H. Characterization of Iranian grapevine isolates of Rhizobium (Agrobacterium) spp. // J. Plant Pathol. 2012. Vol. 94. N 3. P. 555–560.; Filo A., Sabbatini P., Sundin G.W., Zabadal T.J., Safe G.R., Cousins P.S. Grapevine crown gall suppression using biological control and genetic engineering: a review of recent research // Am. J. Enol. Vitic. 2013. Vol. 64. N. 1. DOI 10.5344/ajev.2012.12038.; Doyle J.J., Doyle J.L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh tissue // Phytochem. Bull. 1987. Vol. 19. P. 11– 15.; Makarkina M.V., Ilnitskaya E.T., Stepanov I.V. Identification of Agrobacteria on grape plants with symptoms of crown gall lesions in ampeloсenosises of Krasnodar Territory using the PCR method // Russ. Agric. Sci. 2017. Vol. 43. N 5. P. 402–405.; Макаркина М.В., Ильницкая Е.Т. Определение латентной стадии бактериального рака винограда методом полимеразной цепной реакции // Научные труды Северо-Кавказского федерального научного центра садоводства, виноградарства, виноделия. Т. 13. Краснодар, 2017. С. 100–104.; Ignatov A.N., Khodykina M.V., Vinogradova S.V., Polityko V.A., Kornev K.P., Mazurin E.S. First report of Agrobacterium vitis causing crown galls of wine grape in Russia // Plant Dis. 2016. Vol. 100. N. 4. P. 853.
Availability: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/709
-
20Academic Journal
Authors: A. A. Goryaev, M. V. Savkina, Yu. I. Obukhov, V. A. Merkulov, Yu. V. Olefir, А. А. Горяев, М. В. Савкина, Ю. И. Обухов, В. А. Меркулов, Ю. В. Олефир
Contributors: The study reported in this publication was carried out as part of a publicly funded research project No. 056-00154-19-00 and was supported by the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products (R&D public accounting No. AAAA-A18-118021590046-9)., Работа выполнена в рамках государственного задания ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России № 056-00154-19-00 на проведение прикладных научных исследований (номер государственного учета НИР AAAA-A18-118021590046-9)
Source: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 19, № 2 (2019); 72-80 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 19, № 2 (2019); 72-80 ; 2619-1156 ; 2221-996X ; 10.30895/2221-996X-2019-19-2
Subject Terms: PPLAV, DNA vaccine, plasmid, mini-circle DNA, RNA vaccine, mRNA, RNA replicon, self-amplifying RNA, iDNA, ДНК-вакцина, плазмида, мини-кольцевые ДНК, РНК-вакцина, мРНК, РНК-репликон, самоамплифицирующиеся РНК, иммунизационная ДНК
File Description: application/pdf
Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/218/186; Tang DC, DeVit M, Johnston SA. Genetic immunization is a simple method for eliciting an immune response. Nature. 1992;356(6365):152–4. https://doi.org/10.1038/356152a0; Ulmer JB, Donnelly JJ, Parker SE, Rhodes GH, Felgner PL, Dwarki VJ, et al. Heterologous protection against influenza by injection of DNA encoding a viral protein. Science. 1993;259(5102):1745–9. https://doi.org/10.1126/science.8456302; Donnelly JJ, Ulmer JB, Shiver JW, Liu MA. DNA vaccines. Annu Rev Immunol. 1997;15:617–48. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.15.1.617; Gurunathan S, Klinman DM, Seder RA. DNA vaccines: immunology, application, and optimization. Annu Rev Immunol. 2000;18:927–74. https://doi.org/10.1146/annurev.immunol.18.1.927; Hobernik D, Bros M. DNA vaccines — how far from clinical use? Int J Mol Sci. 2018;19(11):3605. https://doi.org/10.3390/ijms19113605; Liu MA, Ulmer JB. Human clinical trials of plasmid DNA vaccines. Adv Genet. 2005;55:25–40. https://doi.org/10.1016/S0065-2660(05)55002-8; Weniger BG, Anglin IE, Tong T, Pensiero M, Pullen JK, Nucleic Acid Delivery Devices for HIV Vaccines Workshop Group. Workshop report: nucleic acid delivery devices for HIV vaccines: workshop proceedings, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, Bethesda, Maryland, USA, May 21, 2015. Vaccine. 2018;36(4):427–37. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2017.10.071; Pardi N, Hogan MJ, Porter FW, Weissman D. mRNA vaccines — a new era in vaccinology. Nat Rev Drug Discov. 2018;17(4):261–79. https://doi.org/10.1038/nrd.2017.243; Kumaragurubaran K, Kaliaperumal K. DNA vaccine: the miniature miracle. Vet. World. 2013;6(4):228–32. https://doi.org/10.5455/vetworld.2013.228-232; Cranenburgh R. Development of the ideal DNA vaccine requires the optimization of delivery strategies and plasmid vectors. BioPharm International. 2011;2011 Suppl.(7). http://www.biopharminternational.com/dna-vaccine-delivery; Garmory HS, Brown KA, Titball RW. DNA vaccines: improving expression of antigens. Genet Vaccines Ther. 2003;1:2. https://doi.org/10.1186/1479-0556-1-2; Li L, Petrovsky N. Molecular mechanisms for enhanced DNA vaccine immunogenicity. Expert Rev Vaccines. 2016;15(3):313–29. https://doi.org/10.1586/14760584.2016.1124762; Liu Z, Chen O, Wall JBJ, Zheng M, Zhou Y, Wang L, et al. Systematic comparison of 2A peptides for cloning multigenes in a polycistronic vector. Sci Rep. 2017;7(1):2193. https://doi.org/10.1038/s41598-017-02460-2; Li L, Petrovsky N. Molecular adjuvants for DNA vaccines. Curr Issues Mol Biol. 2017;22:17–40. https://doi.org/10.21775/cimb.022.017; Darquet AM, Cameron B, Wils P, Scherman D, Crouzet J. A new DNA vehicle for nonviral gene delivery: supercoiled minicircle. Gene Ther. 1997;4:1341–9. https://doi.org/10.1038/sj.gt.3300540; Hardee CL, Arévalo-Soliz LM, Hornstein BD, Zechiedrich L. Advances in non-viral DNA vectors for gene therapy. Genes (Basel). 2017;8(2):65. https://doi.org/10.3390/genes8020065; Stenler S, Blomberg P, Smith CE. Safety and efficacy of DNA vaccines: plasmids vs. minicircles. Hum Vaccin Immunother. 2014;10(5):1306–8. https://doi.org/10.4161/hv.28077; Riede O, Seifert K, Oswald D, Endmann A, Hock C, Winkler A, et al. Preclinical safety and tolerability of a repeatedly administered human leishmaniasis DNA vaccine. Gene Therapy. 2015;22(8):628–35. https://doi.org/10.1038/gt.2015.35; Pushko P, Ишмухаметов АА, Вredenbeek PP, Lukashevich IS. Экспериментальные живые аттенуированные вакцины против желтой лихорадки на основе инфекционных ДНК. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2019;18(1):18–25. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2019-18-1-18-25; Pushko P, Lukashevich IS, Weaver SC, Tretyakova I. DNA-launched live-attenuated vaccines for biodefense applications. Expert Rev Vaccines. 2016;15(9):1223–34. https://doi.org/10.1080/14760584.2016.1175943; Dallmeier K, Neyts J. Bacterial artificial chromosomes. Patent WIPO N WO2014174078; 2014.; Ulmer JB, Mason PW, Geall A, Mandl CW. RNA-based vaccines. Vaccine. 2012;30(30):4414–8. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2012.04.060; Lundstrom K. RNA-based drugs and vaccines. Expert Rev Vaccines. 2015;14(2):253–63. https://doi.org/10.1586/14760584.2015.959932; Sahin U, Karikó K, Türeci Ö. mRNA-based therapeutics — developing a new class of drugs. Nat Rev Drug Discov. 2014;13(10):759–80. https://doi.org/10.1038/nrd4278; Geall AJ, Mandl CW, Ulmer JB. RNA: the new revolution in nucleic acid vaccines. Semin Immunol. 2013;25(2):152–9. https://doi.org/10.1016/j.smim.2013.05.001; Weissman D. mRNA transcript therapy. Expert Rev Vaccines. 2015;14(2):265–81. https://doi.org/10.1586/14760584.2015.973859; Youn H, Chung JK. Modified mRNA as an alternative to plasmid DNA (pDNA) for transcript replacement and vaccination therapy. Expert Opin Biol Ther. 2015;15(9):1337–48. https://doi.org/10.1517/14712598.2015.1057563; Lundstrom K. Latest development on RNA-based drugs and vaccines. Future Sci OA. 2018;4(5):FSO300. https://doi.org/10.4155/fsoa-2017-0151; Eberhardt W, Doller A, Akool el-S, Pfeilschifter J. Modulation of mRNA stability as a novel therapeutic approach. Pharmacol Ther. 2007;114(1):56–73. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2007.01.002; Atkins GJ, Fleeton MN, Sheahan BJ. Therapeutic and prophylactic applications of alphavirus vectors. Expert Rev Mol Med. 2008;10:e33. https://doi.org/10.1017/S1462399408000859; Brito LA, Kommareddy S, Maione D, Uematsu Y, Giovani C, Berlanda Scorza F, et al. Self-amplifying mRNA vaccines. Adv Genet. 2015;89:179–233. https://doi.org/10.1016/bs.adgen.2014.10.005; Klinman DM, Klaschik S, Tross D, Shirota H, Steinhagen F. FDA guidance on prophylactic DNA vaccines: analysis and recommendations. Vaccine. 2010;28(16):2801–5. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2009.11.025; Klug B, Reinhardt J, Robertson J. Current status of regulations for DNA vaccines. In: Thalhamer J, Weiss R, Scheiblhofer S, eds. Gene Vaccines. New York: Springer; 2012. P. 285–95. https://doi.org/10.1007/978-3-7091-0439-2_14; Bahl K, Senn JJ, Yuzhakov O, Bulychev A, Brito LA, Hassett KJ, et al. Preclinical and clinical demonstration of immunogenicity by mRNA vaccines against H10N8 and H7N9 influenza viruses. Mol Ther. 2017;25(6):1316–27. https://doi.org/10.1016/j.ymthe.2017.03.035; Ledwith BJ, Manam S, Troilo PJ, Barnum AB, Pauley CJ, Griffiths TG 2nd. Plasmid DNA vaccines: assay for integration into host genomic DNA. Dev Biol. 2000;104:33–43.; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/218