-
1Academic Journal
Source: Высшая школа: научные исследования.
Subject Terms: хранилища данных, информационно-аналитическая система, обработка данных, секвенирование, геном, разно геномное сочетание, Ключевые слова, принятие решений, нуклеотидная последовательность, статистические методы, оптимизация
-
2Academic Journal
Source: VII Пущинская конференция «Биохимия, физиология и биосферная роль микроорганизмов», шко- ла-конференция для молодых ученых, аспирантов и студентов «Генетические технологии в микробио- логии и микробное разнообразие».
Subject Terms: аскомицеты, нетипичные лакказы, нуклеотидная последовательность, ДНК, нетипичные голубые оксидазы
-
3Academic Journal
Authors: D. E. Kireev, A. A. Kirichenko, V. G. Akimkin, Д. Е. Киреев, А. А. Кириченко, В. Г. Акимкин
Contributors: Работа выполнена в рамках выполнения государственного задания НИОКТР № ААААА21–121011990056–9 «Разработка новых методик и подходов для совершенствования лабораторной диагностики и эпидемиологического надзора за ВИЧ-инфекцией».
Source: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 16, № 4 (2024); 17-27 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 16, № 4 (2024); 17-27 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2024-16-4
Subject Terms: лекарственная устойчивость, surveillance, genomic surveillance, sequencing, nucleotide sequence, genome, molecular cluster, drug resistance, эпидемиологический надзор, геномный эпидемиологический надзор, секвенирование, нуклеотидная последовательность, геном, молекулярный кластер
File Description: application/pdf
Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/960/611; World Health Organization. HIV statistics, globally and by WHO region, 2023. Epidemiological fact sheet. https://cdn.who.int/media/docs/default-source/hq-hiv-hepatitis-and-stis-library/j0294-who-hiv-epi-factsheet-v7.pdf.; Соколова Е.В., Ладная Н.Н., Покровский В.В. и др. Влияние антиретровирусной терапии на развитие эпидемии ВИЧ-инфекции в Российской Федерации // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2023. Т. 13, № 3. С. 20–26. doi:10.18565/epidem.2023.13.3.20-6.; Покровский В.В., Ладная Н.Н., Соколова Е.В. ВИЧ-инфекция. Информационный бюллетень № 47. М.: Специализированный научно-исследовательский отдел по профилактике и борьбе со СПИДом ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, 2023.; Kirichenko A., Kireev D., Lapovok I. et al. Prevalence of Pretreatment HIV-1 Drug Resistance in Armenia in 2017–2018 and 2020–2021 following a WHO Survey // Viruses. 2022. Vol. 14, No. 11. Р. 2320. doi:10.3390/v14112320.; World Health Organization. Global genomic surveillance strategy for pathogens with pandemic and epidemic potential, 2022–2032. Geneva, 2022. https://www.who.int/publications/i/item/9789240046979.; Акимкин В.Г., Семененко Т.А., Хафизов К.Ф. и др. Стратегия геномного эпидемиологического надзора. Проблемы и перспективы // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2024. Т. 101, № 2. С. 163–172. doi:10.36233/0372-9311-507.; Poon A.F., Gustafson R., Daly P. et al. Near real-time monitoring of HIV transmission hotspots from routine HIV genotyping: an implementation case study // Lancet HIV. 2016. Vol. 3, No. 5. Р. e231–e238. doi:10.1016/S2352–3018(16)00046-1.; Howison M., Gillani F.S., Novitsky V. et al. An Automated Bioinformatics Pipeline Informing Near-Real-Time Public Health Responses to New HIV Diagnoses in a Statewide HIV Epidemic // Viruses. 2023. Vol. 15, No. 3. Р. 737. doi:10.3390/v15030737.; Hanke K., Rykalina V., Koppe U. et al. Developing a next level integrated genomic surveillance: Advances in the molecular epidemiology of HIV in Germany // International journal of medical microbiology, 2024. Vol. 314, No. 151606. doi:10.1016/j.ijmm.2024.151606.; Методические указания МУ 3.1.3342-16 «Эпидемиологический надзор за ВИЧ-инфекцией». М., 2016.; Larder B.A., Darby G., Richman D.D. HIV with reduced sensitivity to zidovudine (AZT) isolated during prolonged therapy // Science. 1989. Vol. 243, No. 4899. Р. 1731–1734. doi:10.1126/science.2467383.; World Health Organization. HIV drug resistance: brief report 2024. Geneva, 2024. https://www.who.int/publications/i/item/9789240086319.; Lazzari S., de Felici A., Sobel H., Bertagnolio S. HIV drug resistance surveillance: summary of an April 2003 WHO consultation // AIDS. 2004. Vol. 18. Р. S49–S53. doi:10.1097/00002030-200406003-00010.; World Health Organization. HIV drug resistance strategy, 2021 update. Geneva, 2021.; Методические рекомендации МР 3.1.5.0075/1-13. 3.1.5. «Эпидемиология. Профилактика инфекционных болезней. ВИЧ-инфекции. Надзор за распространением штаммов ВИЧ, резистентных к антиретровирусным препаратам». М., 2013.; Wertheim J.O., Kosakovsky Pond S.L., Forgione L.A. et al. Social and Genetic Networks of HIV-1 Transmission in New York City // PLoS pathogens. 2017. Vol. 13, No. 1. Р. e1006000. doi:10.1371/journal.ppat.1006000.; Balfe P., Simmonds P., Ludlam C.A. et al. Concurrent evolution of human immunodeficiency virus type 1 in patients infected from the same source: rate of sequence change and low frequency of inactivating mutations // Journal of virology. 1990. Vol. 64, No. 12. Р. 6221–6233. doi:10.1128/JVI.64.12.6221-6233.1990.; Ou C.Y., Ciesielski C.A., Myers G. et al. Molecular epidemiology of HIV transmission in a dental practice // Science. 1992. Vol. 256, No. 5060. Р. 1165–1171. doi:10.1126/science.256.5060.1165.; Bernard E.J., Azad Y., Vandamme A.M. et al. HIV forensics: pitfalls and acceptable standards in the use of phylogenetic analysis as evidence in criminal investigations of HIV transmission // HIV medicine. 2007. Vol. 8, No. 6. Р. 382–387. doi:10.1111/j.1468-1293.2007.00486.x.; Сандырева Т.П., Герасимова Н.А., Лопатухин А.Э. и др. Филогенетический анализ в эпидемиологических расследованиях случаев ВИЧ-инфекции // Эпидемиология и инфекционные болезни, 2014. Т. 19, № 1. С. 17–21.; Санитарно-эпидемиологические правила СП 3.1.5.2826–10 «Профилактика ВИЧ-инфекции». М., 2011.; Abecasis A.B., Pingarilho M., Vandamme A.M. Phylogenetic analysis as a forensic tool in HIV transmission investigations // AIDS. 2018. Vol. 32, No. 5. Р. 543–554. doi:10.1097/QAD.0000000000001728.; Wymant C., Hall M., Ratmann O. et al. STOP-HCV Consortium, The Maela Pneumococcal Collaboration, The BEEHIVE Collaboration. PHY-LOSCANNER: Inferring Transmission from Within- and Between-Host Pathogen Genetic Diversity // Molecular biology and evolution. 2018. Vol. 35, No. 3. Р. 719–733. doi:10.1093/molbev/msx304.; Shimotohno K., Golde D.W., Miwa M. et al. Nucleotide sequence analysis of the long terminal repeat of human T-cell leukemia virus type II // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1984. Vol. 81, No. 4. Р. 1079–1083. doi:10.1073/pnas.81.4.1079.; Ratner L., Haseltine W., Patarca R. et al. Complete nucleotide sequence of the AIDS virus, HTLV-III // Nature. 1985. Vol. 313, No. 6000. Р. 277–284. doi:10.1038/313277a0.; Abecasis A., Vandamme A.M. Origin and Distribution of HIV-1 Subtypes // Encyclopedia of AIDS. N.Y.: Springer, 2015. doi:10.1007/978-14614-9610-6_130-2.; Лаповок И.А., Лопатухин А.Э., Киреев Д.Е. и др. Молекулярно-эпидемиологический анализ вариантов ВИЧ-1, циркулировавших в России в 1987–2015 гг. // Терапевтический архив. 2017. Т. 89, № 11. С. 44–49. doi:10.17116/terarkh2017891144-49.; Baryshev P.B., Bogachev V.V., Gashnikova N.M. HIV-1 genetic diversity in Russia: CRF63_02A1, a new HIV type 1 genetic variant spreading in Siberia // AIDS research and human retroviruses. 2014. Vol. 30, No. 6. Р. 592–597. doi:10.1089/aid.2013.0196.; Сивай М.В., Екушов В.Е., Зырянова Д.П. и др. Реконструкция эпидемии, вызванной CRF63_02A ВИЧ-1 // Молекулярная диагностика и биобезопасность-2022: сборник материалов конгресса с международным участием, Москва, 27–28 апреля 2022 года. Москва: ФБУН ЦНИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, 2022. С. 107.; Murzakova A., Kireev D., Baryshev P. et al. Molecular Epidemiology of HIV-1 Subtype G in the Russian Federation // Viruses. 2019. Vol. 11, No. 4. Р. 348. doi:10.3390/v11040348.; Акимкин В.Г., Хафизов К.Ф., Дубоделов Д.В. и др. Молекулярно-генетический мониторинг и технологии цифровой трансформации в современной эпидемиологии // Вестник Российской академии медицинских наук. 2023. Т. 78, № 4. С. 363–369. doi:10.15690/vramn13672.; Kuleshov K.V., Vodop’ianov S.O., Dedkov V.G. et al. Travel-Associated Vibrio cholerae O1 El Tor, Russia // Emerging infectious diseases. 2016. Vol. 22, No. 11. Р. 2006–2008. doi:10.3201/eid2211.151727.; Кулешов К.В., Павлова А.С., Егорова А.E. и др. Филогеномный анализ изолятов Salmonella enterica subsp. enterica серовар Enteritidis, ассоциированных со спорадической и групповой заболеваемостью в России // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2023. Т. 13, № 2. С. 76–82.doi:10.18565/epidem.2023.13.2.76-82.; Киреев Д.Е., Кириченко А.А., Осадчая О.А. и др. Связанность эпидемий ВИЧ-инфекции в республике Армения и Российской Федерации // Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы, 2023. Т. 13, № 2. С. 27–34. doi:10.18565/epidem.2023.13.3.27-34.; Worobey M., Watts T.D., McKay R.A. et al. 1970s and ‚Patient 0’ HIV-1 genomes illuminate early HIV/AIDS history in North America // Nature. 2016. Vol. 539, No. 7627. Р. 98–101. doi:10.1038/nature19827.; Díez-Fuertes F., Cabello M., Thomson M.M. Bayesian phylogeographic analyses clarify the origin of the HIV-1 subtype A variant circulating in former Soviet Union’s countries. Infection, genetics and evolution // Infect. Genet Evol. 2015. Vol. 33, Р. 197–205. doi:10.1016/j.meegid.2015.05.003; Paraskevis D., Pybus O., Magiorkinis G. et al. SPREAD Programme. Tracing the HIV-1 subtype B mobility in Europe: a phylogeographic approach // Retrovirology. 2009. Vol. 6, No. 49. doi:10.1186/1742-4690-6-49.; Du L., Wu J., Qian P. et al. Phylogeographical Analysis Reveals Distinct Sources of HIV-1 and HCV Transmitted to Former Blood Donors in China // AIDS research and human retroviruses. 2017. Vol. 33, No. 3. Р. 284–289. doi:10.1089/AID.2016.0147.; Lai A., Bozzi G., Franzetti M. et al. HIV-1 A1 Subtype Epidemic in Italy Originated from Africa and Eastern Europe and Shows a High Frequency of Transmission Chains Involving Intravenous Drug Users // PloS One. 2016. Vol. 11, No. 1. Р. e0146097. doi:10.1371/journal.pone.0146097.; Phillips A.N., Sabin C., Pillay D., Lundgren J.D. HIV in the UK 1980–2006: reconstruction using a model of HIV infection and the effect of anti-retroviral therapy // HIV medicine. 2007. Vol. 8, No. 8. Р. 536–546. doi:10.1111/j.1468–1293.2007.00507.x.; Volz E.M., Kosakovsky Pond S.L., Ward M.J. et al. Phylodynamics of infectious disease epidemics // Genetics. 2009. Vol. 183, No. 4. Р. 1421– 1430. doi:10.1534/genetics.109.106021.; Dennis A. M., Hué S., Billock R. et al. Human Immunodeficiency Virus Type 1 Phylodynamics to Detect and Characterize Active Transmission Clusters in North Carolina // The Journal of infectious diseases. 2020. Vol. 221, No. 8, Р. 1321–1330. doi:10.1093/infdis/jiz176.; Jovanović L., Šiljić, M., Ćirković V. et al. Exploring Evolutionary and Transmission Dynamics of HIV Epidemic in Serbia: Bridging Socio-Demographic With Phylogenetic Approach // Frontiers in microbiology. 2019. Vol. 10, No. 287. doi:10.3389/fmicb.2019.00287.; Volz E.M., Ionides E., Romero-Severson E.O. et al. HIV-1 transmission during early infection in men who have sex with men: a phylodynamic analysis // PLoS medicine. 2013. Vol. 10, No. 12. Р. e1001568. doi:10.1371/journal.pmed.1001568.; Novitsky V., Kühnert D., Moyo S. et al. Phylodynamic analysis of HIV sub-epidemics in Mochudi, Botswana // Epidemics. 2015. Vol. 13. Р. 44–55. doi:10.1016/j.epidem.2015.07.002.; Stadler T., Kouyos R., von Wyl V. et al. Swiss HIV Cohort Study. Estimating the basic reproductive number from viral sequence data // Molecular biology and evolution. 2012. Vol. 29, No. 1. Р. 347–357. doi:10.1093/molbev/msr217.; Gray R.R., Tatem A.J., Lamers S. et al. Spatial phylodynamics of HIV-1 epidemic emergence in east Africa // AIDS. 2009. Vol. 23, No. 14. Р. F9– F17. doi:10.1097/QAD.0b013e32832faf61.; Skar H., Axelsson M., Berggren I. et al. Dynamics of two separate but linked HIV-1 CRF01_AE outbreaks among injection drug users in Stockholm, Sweden, and Helsinki, Finland // Journal of virology, 2011. Vol. 85, No. 1. Р. 510–518. doi:10.1128/JVI.01413–10.; Peters P.J., Pontones P., Hoover K.W. et al. Indiana HIV Outbreak Investigation Team. HIV Infection Linked to Injection Use of Oxymorphone in Indiana, 2014–2015 // The New England journal of medicine. 2016. Vol. 375, No. 3. Р. 229–239. doi:10.1056/NEJMoa1515195.; Golden M.R., Lechtenberg R., Glick S.N. et al. Outbreak of Human Immunodeficiency Virus Infection Among Heterosexual Persons Who Are Living Homeless and Inject Drugs — Seattle, Washington, 2018 // MMWR. Morbidity and mortality weekly report. 2019. Vol. 68, No. 15. Р. 344–349. doi:10.15585/mmwr.mm6815a2.; Alpren C., Dawson E. L., John B. et al. Opioid Use Fueling HIV Transmission in an Urban Setting: An Outbreak of HIV Infection Among People Who Inject Drugs-Massachusetts, 2015–2018 // American journal of public health. 2020. Vol. 110, No. 1. Р. 37–44. doi:10.2105/AJPH.2019.305366.; Tookes H., Bartholomew T.S., Geary S. et al. Rapid Identification and Investigation of an HIV Risk Network Among People Who Inject Drugs-Miami, FL, 2018 // AIDS and behavior, 2020. Vol. 24, No. 1. Р. 246–256. doi:10.1007/s10461-019-02680-9.; Metcalfe R., Ragonnet-Cronin M., Bradley-Stewart A. et al. From hospital to the community: redesigning the human immunodeficiency virus (HIV) clinical service model to respond to an outbreak of HIV among people who inject drugs // The Journal of infectious diseases. 2020. Vol. 222. Р. S410–S419. doi:10.1093/infdis/jiaa336.; Bavinton B.R., Jin F., Prestage G. et al.; Opposites Attract Study Group. The Opposites Attract Study of viral load, HIV treatment and HIV transmission in serodiscordant homosexual male couples: design and methods // BMC public health. 2014. Vol. 14, No. 917. doi:10.1186/1471-2458-14-917.; Cohen M. S., Chen Y. Q., McCauley M. et al.; HPTN 052 Study Team. Antiretroviral Therapy for the Prevention of HIV-1 Transmission // The New England journal of medicine. 2016. Vol. 375, No. 9. Р. 830–839. doi:10.1056/NEJMoa1600693.; Rodger A.J., Cambiano V., Bruun T. et al.; PARTNER Study Group. Risk of HIV transmission through condomless sex in serodifferent gay couples with the HIV-positive partner taking suppressive antiretroviral therapy (PARTNER): final results of a multicentre, prospective, observational study // Lancet. 2019. Vol. 393, No. 10189. Р. 2428–2438. doi:10.1016/S0140-6736(19)30418-0.; EACS Guidelines version 12.0, October 2023; CDC. Detecting and responding to HIV transmission clusters. A guide for health departments. Draft version 2.0. June 2018.; Lou J., Wu J., Chen L., Ruan Y., Shao Y. A sex-role-preference model for HIV transmission among men who have sex with men in China // BMC public health. 2009. Vol. 9, No. 1. Р. S10. doi:10.1186/1471-2458-9-S1-S10.; Kwon Y. M., Yeun E. J., Kim H. Y., Youn M. S., Cho J. Y., Lee H. J. Application of the transtheoretical model to identify aspects influencing condom use among Korean college students // Western journal of nursing research. 2008. Vol. 30, No. 8. Р. 991–1004. doi:10.1177/0193945908319988.; Wang Z., Zhang Z., Zhang C., Jin X., Wu J., Su B., Shen Y., Ruan Y., Xing H., Lou J. Trace the History of HIV and Predict Its Future through Genetic Sequences // Tropical medicine and infectious disease. 2022. Vol. 7, No. 8, Р. 190. doi:10.3390/tropicalmed7080190.; Novitsky V., Moyo S., Le, Q., DeGruttola V., Essex M. Impact of sampling density on the extent of HIV clustering // AIDS research and human retroviruses. 2014. Vol. 30, No. 12. Р. 1226–1235. doi:10.1089/aid.2014.0173.; Mazrouee S., Hallmark C. J., Mora R., Del Vecchio N., Carrasco Hernandez R., Carr M., McNeese M., Fujimoto K., Wertheim J. O. Impact of molecular sequence data completeness on HIV cluster detection and a network science approach to enhance detection // Scientific reports. 2022. Vol. 12, No. 1. Р. 19230. doi:10.1038/s41598-022-21924-8.
-
4Academic Journal
Source: Vestnik of Volga State University of Technology Series Forest. Ecology. Nature Management. :89-97
Subject Terms: repository, фитопатогены, phytopathogens, нуклеотидная последовательность, nucleotide sequence, ДНК-маркеры, 15. Life on land, DNA-markers, Q. robur, репозиторий
-
5Academic Journal
Authors: N. A. Osina, E. G. Boolgakova, A. G. Osin, I. G. Shvidenko, S. A. Shcherbakova, Н. А. Осина, Е. Г. Булгакова, А. В. Осин, И. Г. Швиденко, С. А. Щербакова
Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 4 (2023); 125-134 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 4 (2023); 125-134 ; 2658-719X ; 0370-1069
Subject Terms: виды и биовары бруцелл, omp25 gene, omp2a gene, nucleotide sequence, alleles, restriction analysis, Brucella species and biovars, ген omp25, ген omp2a, нуклеотидная последовательность, аллели, рестрикционный анализ
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1906/1440; LPSN (List of Procariotic names with Standing in Nomenclature). [Электронный ресурс]. URL: https://lpsn.dsmz.de/search?word=Brucella (дата обращения 20.09.2023).; Eisenberg T., Hamann H.-P., Kaim U., Schlez K., Seeger H., Schauerte N., Melzer F., Tomaso H., Scholz H.C., Koylass M.S., Whatmore A.M., Zschöck M. Isolation of potentially novel Brucella spp. from frogs. Appl. Environ. Microbiol. 2012; 78(10):3753–5. DOI:10.1128/AEM.07509-11.; Fischer D., Lorenz N., Heuser W., Kämpfer P., Scholz H.C., Lierz M. Abscesses associated with a Brucella inopinata-like bacterium in a big-eyed tree frog (Leptopelis vermiculatus). J. Zoo Wildl. Med. 2012; 43(3):625–8. DOI:10.1638/2011-0005R2.1.; Whatmore A.M., Dale E.-J., Stubberfield E., Muchowski J., Koylass M., Dawson C., Gopaul K.K., Perrett L.L., Jones M., Lawrie A. Isolation of Brucella from a White’s tree frog (Litoria caerulea). JMM Case Rep. 2015; 2(1). DOI:10.1099/jmmcr.0.000017.; Soler-Lloréns P.F., Quance C.R., Lawhon S.D., Stuber T.P., Edwards J.F., Ficht T.A., Robbe-Austerman S., O’Callaghan D., KerielA. A Brucella spp. isolate from a Pac-Man frog (Ceratophrys ornata) reveals characteristics departing from classical brucellae. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2016; 6:116. DOI:10.3389/fcimb.2016.00116.; Hernández-Mora G., Chacón-Díaz C., Moreira-Soto A., Barrantes-Granados O., Suárez-Esquivel M., Viquez-Ruiz E., Barquero-Calvo E., Ruiz-Villalobos N., Hidalgo-Montealegre D., González-Barrientos R., Demeter E.A., Estrella-Morales J., Zúñiga-Pereira A.-M., Quesada-Gómez C., Chaves-Olarte E., Lomonte B., Guzmán-Verri C., Drexler J.F., Moreno E. Virulent Brucella nosferati infecting Desmodus rotundus has emerging potential due to the broad foraging range of its bat host for humans and wild and domestic animals. mSphere. 2023; 8(4):е0006123. DOI:10.1128/msphere.00061-23.; Halling S.M., Peterson-Burch B.D., Bricker B.J., Zuerner R.L., Qing Z., Li L.L., Kapur V., Alt D.P., Olsen S.C. Completion of the genome sequence of Brucella abortus and comparison to the highly similar genomes of Brucella melitensis and Brucella suis. J. Bacteriol. 2005; 187(8):2715–26. DOI:10.1128/JB.187.8.2715-2726.2005.; Rajashekara G., Glasner J.D., Glover D.A., Splitter G.A. Comparative whole-genome hybridization reveals genomic islands in Brucella species. J. Bacteriol. 2004; 186(15): 5040–51. DOI:10.1128/JB.186.15.5040-5051.2004.; Mancilla M. The Brucella genomic islands. In: López-Goñi I., O’Callaghan D., editors. Brucella: Molecular Microbiology and Genomics. Wymondham, UK: Caister Academic Press; 2012. P. 36–57. DOI:10.21775/9781913652531.; Roop R.M. 2nd, Barton I.S., Hopersberger D., Martin D.W. Uncovering the hidden credentials of Brucella virulence. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2021; 85(1):e00021-19. DOI:10.1128/MMBR.00021-19.; Cloeckaert A., Verger J.M., Grayon M., Grépinet O. Restriction site polymorphism of the genes encoding the major 25 kDa and 36 kDa outer-membrane proteins of Brucella. Microbiology (Reading). 1995; 141(Pt. 9):2111–21. DOI:10.1099/13500872-141-9-2111.; Vizcaíno N., Cloeckaert A., Verger J., Grayon M., Fernández-Lago L. DNA polymorphism in the genus Brucella. Microbes Infect. 2000; 2(9):1089–100. DOI:10.1016/s1286-4579(00)01263-6.; García-Yoldi D., Marín C.M., López-Goñi I. Restriction site polymorphisms in the genes encoding new members of group 3 outer membrane protein family of Brucella spp. FEMS Microbiol. Lett. 2005; 245(1):79–84. DOI:10.1016/j.femsle.2005.02.026.; De Massis F., Zilli K., Di Donato G., Nuvoloni R., Pelini S., Sacchini L., D’Alterio N., Di Giannatale E. Distribution of Brucella field strains isolated from livestock, wildlife populations, and humans in Italy from 2007 to 2015. PLoS One. 2019; 14(3):e0213689. DOI:10.1371/journal.pone.0213689.; Осина Н.А., Касьян Ж.А., Касьян И.А., Ляшова О.Ю., Осин А.В. Определение видовой принадлежности штаммов бруцелл из фонда Государственной коллекции патогенных бактерий «Микроб» с помощью амплификационных и рестрикционных технологий. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 4:69–74. DOI:10.21055/0370-1069-2016-4-69-74.; Вершилова Н.А., Голубева А.А. Бруцеллез в СССР и пути его профилактики. М.: Медицина; 1970. 190 с.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1906
-
6Academic Journal
Subject Terms: медицина, медицинская генетика, рак желудка, ген CDH1, нуклеотидная последовательность, секвенирование, Башкортостан
Availability: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/52888
-
7Academic Journal
Source: Russian journal of genetics. 2018. Vol. 54, № 3. P. 322-327
Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, пчелы, микросателлитные локусы, Сибирь, нуклеотидная последовательность
File Description: application/pdf
Linked Full TextAccess URL: https://link.springer.com/article/10.1134/S1022795418030109
http://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/vtls:000635086 -
8Academic Journal
Authors: Alexander Stepanovich Gumenyuk, Artemiy Andreevich Skiba, Nikolay Nikolaevich Pozdnichenko, Stanislav Nikolaevich Shpynov
Source: Информатика и автоматизация, Vol 18, Iss 2, Pp 471-503 (2019)
Subject Terms: знаковая последовательность, информационная цепь, строй цепи, глубина строя, средняя удаленность, нуклеотидная последовательность, меры сходства-расхождения, матрица сходства, alignment-free genome comparison, межнуклеотидное расстояние, Electronic computers. Computer science, QA75.5-76.95
File Description: electronic resource
-
9Academic Journal
Authors: Konstantin A. Shestibratov, Oleg Yu. Baranov, Eugenia N. Mescherova, Pavel S. Kiryanov, Stanislav V. Panteleev, Ludmila V. Mozharovskaya, Konstantin V. Krutovsky, Vladimir E. Padutov
Contributors: Shestibratov, Konstantin A., Baranov, Oleg Yu., Mescherova, Eugenia N., Kiryanov, Pavel S., Panteleev, Stanislav V., Mozharovskaya, Ludmila V., Krutovsky, Konstantin V., Padutov, Vladimir E.
Source: Front Genet
Frontiers in Genetics, Vol 12 (2021)Subject Terms: 0301 basic medicine, curly birch, Curly birch, хлоропластная ДНК, QH426-470, microsatellites, полиморфизм ДНК, 03 medical and health sciences, молекулярно-генетические маркеры, chloroplast, cpDNA, Genetics, нуклеотидная последовательность, cpDNA polymorphisms, хлоропластный геном, genome, Molecular markers, nucleotide sequence, береза кудрявая, Betula pendula var. carelica, 15. Life on land, plastome, секвенирование ДНК, пластом, sequence cpDNA, molecular genetic markers, chloroplast genome
File Description: application/pdf
Access URL: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fgene.2021.625764/pdf
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/34671379
https://doaj.org/article/e132be149f4249ecb699546afe9e47b9
https://doaj.org/article/e132be149f4249ecb699546afe9e47b9
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC8521055/
https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fgene.2021.625764/full
https://resolver.sub.uni-goettingen.de/purl?gro-2/94454
https://elib.belstu.by/handle/123456789/48089 -
10Academic Journal
Authors: I. F. Radaeva, V. A. Ternovoy, A. O. Sementsova, N. B. Dumchenko, E. A. Nechaeva, И. Ф. Радаева, В. А. Терновой, А. О. Семенцова, Н. Б. Думченко, Е. А. Нечаева
Source: Biological Products. Prevention, Diagnosis, Treatment; Том 20, № 2 (2020); 116-125 ; БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение; Том 20, № 2 (2020); 116-125 ; 2619-1156 ; 2221-996X ; 10.30895/2221-996X-2020-20-2
Subject Terms: сиаловые кислоты, CHOpE cell strain, nucleotide sequence, molecular weight, identification, peptide mapping, dimers, sialic acids, штамм клеток СHOpE, нуклеотидная последовательность, молекулярная масса, подлинность, пептидное картирование, димеры
File Description: application/pdf
Relation: https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/272/317; Melli G, Jack C, Lambrinos GL, Ringkamp M, Höke A. Erythropoietin protects sensory axons against paclitaxel-induced distal degeneration. Neurobiol. Dis. 2006;24(3):525–30. https://doi.org/10.1016/j.nbd.2006.08.014; Lisowska KA, Bryl E, Witkowski JM. Erythropoietin receptor is detectable on peripheral blood lymphocytes and its expression increases in activated T lymphocytes. Haematologica. 2011;96(3):e12–e13. https://doi.org/10.3324/haematol.2010.038414; Heeschen C, Aicher A, Lehmann R, Fichtlscherer S, Vasa M, Urbich C, et al. Erythropoietin is a potent physiologic stimulus for endothelial progenitor cell mobilization. Blood. 2003;102(4):1340–6. https://doi.org/10.1182/blood-2003-01-0223; Savino C, Pedotti R, Baggi F, Ubiali F, Gallo B, Nava S, et al. Delayed administration of erythropoietin and its non-erythropoietic derivatives ameliorates chronic murine autoimmune encephalomyelitis. J. Neuroimmunol. 2006;172(1–2):27–37. https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2005.10.016; Киприянов СМ, Царева АА, Офицеров ВИ, Хромых ТИ, Сандахчиев ЛС. Рекомбинантная плазмидная ДНК pSV-dEp-poly-NeO, кодирующая эритропоэтин человека, штамм культивируемых клеток яичника китайского хомячка CHOpE – продуцент эритропоэтина человека. Патент Российской Федерации № 2070931; 1996.; Радаева ИФ, Богрянцева МП, Нечаева ЕА. Банки культур клеток для биотехнологии. Клеточные технологии в биологии и медицине. 2012;(2):110–5.; Радаева ИФ, Колесова МЕ, Сереброва ВС, Вараксин НА, Рябичева ТГ, Жилина НВ, Нечаева ЕА. Разработка технологии получения лиофилизованной субстанции рекомбинантного эритропоэтина человека. Биотехнология. 2013;29(2):67–73.; Сандахчиев ЛС, Колокольцова ТД, Костина НЕ, Нечаева ЕА, Юрченко НД, Рыжиков АБ и др. Таблетированная форма рекомбинантного человеческого эритропоэтина для перорального применения и способ ее получения. Патент Российской Федерации № 2152206; 2000.; Ханисов ВВ, Тритэк ВС, Акапов АБ, Буркитбаева СС, Джунушалиева ЧУ, Хасенбекова ЖР и др. Влияние субстанции рекомбинантного человеческого эритропоэтина на гематологические показатели в периферической крови. Биотехнология. Теория и практика. 2007;(2):101–8.; Sanger F, Nicklen S, Coulson AR. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. Proc Natl Acad Sci U S A. 1977;74(12):5463–7. https://doi.org/10.1073/pnas.74.12.5463; Lin FK, Suggs S, Lin CH, Browne JK, Smalling R, Egrie JC, et al. Cloning and expression of the human erythropoietin gene. Proc Natl Acad Sci U S A. 1985;82(22):7580–4. https://doi.org/10.1073/pnas.82.22.7580; Малыгина ВС, Радаева ИФ, Нечаева ЕА, Дроздов ИГ. Изучение свойств культуры клеток CHOpE – продуцента эритропоэтина человека. Биотехнология. 2010;2:31–5.; Nunberg JH, Kaufman RJ, Schimke RT, Urlaub G, Chasin LA. Amplified dihydrofolate reductase genes are localized to a homogeneously staining region of a single chromosome in a methotrexate-resistant Chinese hamster ovary cell line. Proc Natl Acad Sci U S A. 1978;75(11):5553–6. https://doi.org/10.1073/pnas.75.11.5553; Меркулов ВА, Солдатов АА, Авдеева ЖИ, Алпатова НА, Гайдерова ЛА, Яковлев АК и др. Препараты рекомбинантных эритропоэтинов и их характеристика. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2013;(3):4–11; Яковлев АК, Алешкин АВ, Меркулов ВА, Бондарев ВП. Совершенствование методики определения специфической активности эритропоэтина. Клиническая лабораторная диагностика. 2018;63(7):422–8.; Яковлев АК, Волкова РА, Симутенко ЛВ, Постнова ЕЛ, Батуашвили ТА, Воропаев АА и др. Разработка отраслевого стандартного образца специфической активности эритропоэтина. Химико-фармацевтический журнал. 2018;52(1):60–4.; https://www.biopreparations.ru/jour/article/view/272
-
11
-
12Academic Journal
Authors: Sadovsky, Michael G., Birukov, Vladislav V., Putintseva, Yuliya A., Oreshkova, Nataliya V., Vaganov, Eugene A., Krutovsky, Konstantin V.
Contributors: Sadovsky, Michael G., Birukov, Vladislav V., Putintseva, Yuliya A., Oreshkova, Nataliya V., Vaganov, Eugene A., Krutovsky, Konstantin V.
Source: Журнал Сибирского федерального университета: Серия Биология, Vol 8, Iss 3, Pp 278-286 (2015)
Subject Terms: 0301 basic medicine, сибирская лиственница, частотный словарь, 0303 health sciences, triplet, QH301-705.5, frequency dictionary, транскриптом, nucleotide sequence complexity, Larix sibirica, 03 medical and health sciences, сложность, нуклеотидная последовательность, порядок, order, Biology (General), Siberian larch, transcriptome, триплет, TP248.13-248.65, симметрия, symmetry, Biotechnology
-
13Academic Journal
Subject Terms: gene position, mtDNA, свиньи, pigs, нуклеотидная последовательность, nucleotide sequence, позиция гена, мтДНК, COX2
Access URL: https://research-journal.org/en/agriculture-en/izuchenie-gena-sox2-mtdnk-svinej-razlichnogo-proisxozhdeniya/
https://research-journal.org/wp-content/uploads/2019/01/1-2-79.pdf#page=10 -
14Academic Journal
Authors: A. E. Kuchboev, R. R. Karimova, B. N. Ruziev, I. B. Salahutdinov, Sh. Sh. Egamberdiev, А. Э. Кучбоев, Р. Р. Каримова, Б. Х. Рузиев, И. Б. Салахутдинов, Ш. Ш. Эгамбердиев
Source: Russian Journal of Parasitology; № 3 (2015); 7-14 ; Российский паразитологический журнал; № 3 (2015); 7-14 ; 2541-7843 ; 1998-8435
Subject Terms: нуклеотидная последовательность, hollow-horned, mollusks, DNA, ITS-2, nucleotide sequence, полорогие, моллюски
Relation: Азимов Д. А., Акрамова Ф. А., Хусанов А., Кучбоев А. Э. Структура и функционирование нематод семейства Protostrongylidae Leiper,1926 // Докл. АН РУз. – Ташкент, 1998. – №10. – С. 39–41.; Боев С. Н. Основы нематодологии. Протостронгилиды. – М.: Наука, 1975. – Т. 25. – 266 с.; Контримавичус В. Л., Делямуре С. Л., Боев С. Н. Основы нематодологии. Метастронгилоидеи домашних и диких животных. – М.: Наука, 1976. – Т. 26. – 239 с.; Кулмаматов Э. Н., Исакова Д. Т., Азимов Д. А. Гельминты позвоночных горных экосистем Узбекистана. – Ташкент: Фан, 1994. – 151 с.; Кучбоев А. Э. Популяционная экология, систематика нематод семейства Protostrongylidae Leiper, 1926 и функционально-метаболические процессы в системе “паразит–хозяин”: Автореф. дис. д-ра биол. наук. – Ташкент, 2009. – 43 с.; Рузиев Б. Х. Ассоциативная инвазия протостронгилидами овец и морфо-функциональные взаимоотношения в системе «паразит–хозяин»: Автореф. дис. … канд. биол. наук. – Ташкент, 2008. – 21 с.; Anderson R. C., Chabaud A. G., Willmott S. Key to genera of the superfamily Metastrongyloidea. – No. 5. CIN Keys to the nematode parasites of vertebrates. – Commonwealth Agricultural Bureaux, Farnham Royal, UK. – 1978. – Р. 1–40.; Carreno R. A., Nadler S. A. Phylogenetic analysis of the Metastrongyloidea (Nematoda: Strongylida) inferred from ribosomal RNA gene sequences // J. of Parasitology. – 2003. – Vol. 89. – P. 965–973.; Chilton N. B., Huby–Chilton F., Gasser R. B., Beveridge I. The evolutionary origins of nematodes within the order Strongylida are related to predilection sites within hosts // Molecular Phylogenetics and Evolution. – 2006. – Vol. 40. – P. 118–128.; Jenkins E. J., Appleyard G. D., Hoberg E. P. et al. Geographic distribution of the muscle-dwelling nematode Parelaphostrongylus odocoilei in North America, using molecular identification of first stage larvae // J. of Parasitology. – 2005. – Vol. 91. – P. 574–584.; Kutz S. J., Asmundsson I., Hoberg E. P. et al. Veitch ASerendipitous discovery of a novel protostrongylid (Nematoda: Metastrongyloidea) in caribou (Rangifer tarandus), muskoxen (Ovibos moschatus) and moose (Alces alces) from high latitudes of North America based on DNA sequence comparisons // Canadian J. of Zoology. – 2007. – Vol. 85. – P. 1143–1156.; Mortenson J. A., Abrams A., Rosenthal B. et al. Parelaphostrongylus odocoilei in Columbian black-tailed deer from Oregon // J. of Wildlife Diseases. – 2006. – Vol. 42. – P. 527–535.; Asmundsson I., Mortenson J., Hoberg E. P. Muscleworms, Parelaphostrongylus andersoni (Nematoda: Protostrongylidae), discovered in Columbia white-tailed deer from Oregon and Washington: Implications for biogeography and host associations // J. of Wildlife Disease. – 2008. – Vol. 44. – P. 16–27.; Larkin M. A., Blackshields G., Brown N. P. et al. Clustal W and Clustal X version 2.0. // Bioinformatics. – 2007. – Vol. 23. – P. 2947–2948.; https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/164
Availability: https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/164
-
15Academic Journal
Authors: I. V. Tuchkov, Ya. M. Krasnov, A. A. Goryaev, Zh. V. Matveeva, A. V. Stepanov, N. V. Mayorov, A. K. Nikiforov
Source: Проблемы особо опасных инфекций, Vol 0, Iss 4, Pp 73-75 (2013)
Subject Terms: вирус бешенства, филогенетический анализ, нуклеотидная последовательность, полимеразная цепная реакция, сиквенирование днк, rabies virus, phylogenetic analysis, nucleotide sequence, polymerase chain reaction, dna sequencing, Infectious and parasitic diseases, RC109-216
File Description: electronic resource
-
16Academic Journal
Authors: V. V. Pereverzeva, A. A. Primak, E. A. Dubinin, В. В. Переверзева, А. А. Примак, Е. А. Дубинин
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 17, № 3 (2013); 435-443 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 17, № 3 (2013); 435-443 ; 2500-3259
Subject Terms: генетическая структура популяции, mtDNA sequencing, cytochrome b (cytb), nucleotide sequence, genetic structure of a population, секвенирование мтДНК, цитохром b (cytb), нуклеотидная последовательность
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/166/168; Велижанин А.Г. Время изоляции материковых островов северной части Тихого океана // Докл. АН СССР. 1976. Т. 231. № 1. С. 205–207.; Джикия Е.Л., Колесников А.А., Чудакова Д.А. и др. Генетический полиморфизм командорских популяций песцов // Генетика. 2007. Т. 43. № 9. С. 1239–1245.; Докучаев Н.Е., Иванов В.В., Засыпкин М.Ю., Примак А.А. Красные полевки (Clethrionomys rutilus Pallas, 1779) острова Матыкиль (северная часть Охотского моря) // Териологические исследования. Вып. 1. СПб., 2002. С. 140–142.; Переверзева В.В., Засыпкин М.Ю., Соловенчук Л.Л. и др. Изменчивость гена цитохрома b митохондриальной ДНК в популяции красной полевки Сlethrionomys rutilus Pallas, 1779 поймы среднего течения реки Колымы // Изв. РАН. Сер. биол. 2011. № 3. С. 283–288.; Переверзева В.В., Лазуткин А.Н. Полиморфизм гена цитохрома b мтДНК красной полевки популяции поймы реки Буюнда // Вестн. СВНЦ ДВО РАН. 2009. № 2. С. 84–89.; Примак А.А., Засыпкин М.Ю. Аллозимная изменчивость и генетическая гетерогенность красной полевки Clethrionomys rutilus Pallas, 1779 некоторых островов северной части охотского моря // Вестн. СВНЦ ДВО РАН. 2011. № 2. С. 100–105.; Чернявский Ф.Б. Млекопитающие крайнего северо-востока Сибири. М.: Наука, 1984. 392 с.; Avise J.C. Phylogeography: The History and Formation of Species. Harvard Univ. Press, 2000. 447 p.; Bandelt H.-J., Forster P., Rőhl A. Median-joining networks for inferring intraspecifi c phylogenies // Mol. Biol. Evol. 1999. V. 16. P. 37–48.; Excoffi er L., Laval G., Schneider S. Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis // Evol. Bioinformatics Online. 2005. V. 1. P. 47–50.; Fulgione D., Guglielmi S., Odierna G. et al. Morphological differentiation and genetic structure in island lizard populations // Zool. Sci. 2008. V. 25. P. 465–474.; Hassanin A., Lecointre G., Tiller S. Related articles, links abstract. The «evolutionary signal» of homoplasy in protein-coding gene sequences and its consequences for a priori weighting in phylogeny // C.R. Acad. Sci. 1998. V. 321. No. 7. Р. 611–620.; Hinten G., Harriss F., Rossetto M., Braverstock P.R. Genetic variation and island biogeography: Microsatellite and mitochondrial DNA variation in island populations of the Australian bush rat, Rattus fuscipes greyii // Conserv. Genet. 2003. V. 4. P. 759–778.; Rogers A.R. Genetic evidence for a Pleistocene population explosion // Evolution. 1995. V. 49. P. 608–615.; Tamura K., Peterson D., Peterson N. et al. MEGA-5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods // Mol. Biol. Evol. 2011. V. 28. P. 2731–2739.; Wayne R.K., George S., Gilbert D. et al. Morphologic and genetic study of the island fox, Urocyon littoralis // Evolution. 1991. V. 5. P. 1849–1868.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/166
Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/166
-
17Academic Journal
Authors: V. V. Pereverzeva, A. A. Primak, E. A. Dubinin, В. В. Переверзева, А. А. Примак, Е. А. Дубинин
Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 17, № 3 (2013); 444-451 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 17, № 3 (2013); 444-451 ; 2500-3259
Subject Terms: филогенетические связи популяций, mtDNA sequencing, cytochrome b (cytb), nucleotide sequence, phylogenetic relationships among populations, секвенирование мтДНК, цитохром b (cytb), нуклеотидная последовательность
File Description: application/pdf
Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/167/169; Вангенгейм Э.А. Палеонтологическое обоснование стратиграфии антропогена Северной Азии (по млекопитающим). М.: Наука, 1977. 171 с.; Велижанин А.Г. Время изоляции материковых островов северной части Тихого океана // Докл. АН СССР. 1976. Т. 231. № 1. С. 205–207.; Воскресенский С.С., Чанышева М.Н., Воскресенский И.С. и др. Плейстоценовые оледенения бассейна Колымы. Плейстоценовые оледенения Востока Азии. Магадан: СВКНИИ ДВНЦ АН СССР, 1984. С. 57–65.; Глушкова О.Ю. Морфология и палеогеография позднеплейстоценовых оледенений Северо-Востока СССР. Плейстоценовые оледенения Востока Азии. Магадан: СВКНИИ ДВНЦ АН СССР, 1984. С. 28–42.; Громов И.М., Ербаева М.А. Млекопитающие фауны России и сопредельных территорий. Зайцеобразные и грызуны. СПб.: ЗИН РАН, 1995. Вып. 167. 522 с.; Громов И.М., Поляков И.Я. Фауна СССР. Млекопитающие. Л.: Наука, 1977. Т. 3. Вып. 8. 504 с.; Докучаев Н.Е., Иванов В.В., Засыпкин М.Ю., Примак А.А. Красные полевки (Clethrionomys rutilus Pallas, 1779) острова Матыкиль (северная часть Охотского моря) // Териологические исследования. Вып. 1. СПб., 2002. С. 140–142.; Переверзева В.В., Засыпкин М.Ю., Соловенчук Л.Л. и др. Изменчивость гена цитохрома b митохондриальной ДНК в популяции красной полевки Сlethrionomys rutilus Pallas, 1779 поймы среднего течения реки Колымы // Изв. РАН. Сер. биол. 2011. № 3. С. 283–288.; Переверзева В.В., Примак А.А., Дубинин Е.А. Генетическая структура популяций красной полевки Myodes (= Clethrionomys) Rutilus Pallas, 1779 Северного Приохотья по данным об изменчивости нуклеотидных последовательностей гена цитохрома b митохондриальной ДНК // Вавилов. журн. генет. и селекции. 2013. Т. 17. № 3. С. 435–443.; Примак А.А., Засыпкин М.Ю. Аллозимная изменчивость и генетическая гетерогенность красной полевки Clethrionomys rutilus Pallas, 1779 некоторых островов северной части охотского моря // Вестн. СВНЦ ДВО РАН. 2011. № 2. С. 100–105.; Чернявский Ф.Б. Млекопитающие крайнего Северо-Востока Сибири. М.: Наука, 1984. 392 с.; Abramson N.I., Bodrov S.Yu. Genetic differentiation and phytogeography of Сlethrionomys rutilus Pallas 1811 inferred from variation of mitochondrial cytochrome b gene // 11th Intern. Conf. «Rodens et Spatium» on Rodent Biology. Myshkin, Russia, July 24–28. Moscow: VTO RAS, 2008. P. 64.; Bandelt H.-J., Forster P., Rőhl A. Median-joining networks for inferring intraspecifi c phylogenies // Mol. Biol. Evol. 1999. V. 16. P. 37–48.; Cook J.A., Runck A.M., Conroy C.J. Historical biogeography at the crossroads of the northern continents: molecular phylogenetics of red-backed voles (Rodentia: Arvicolinae) // Mol. Phylogenetics and Evol. 2004. V. 30. P. 767–777.; Excoffi er L., Laval G., Schneider S. Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis // Evol. Bioinformatics Online. 2005. V. 1. P. 47–50.; Hopkins D.M. Aspects of the Paleogeography of Beringia during the Late Pleistocene // Paleoecology. of Beringia. N.Y.: Acad. Press, 1982. P. 3–28.; Irwin D.М., Koche T.D., Wilson A.С. Evolution of the cytochrome b gene of Mammals // J. Mo1. Evol. 1991. No. 32. P. 128–144.; Iwasa M.A., Kartavtseva I.V., Dobrotvorsky A.K. et al. Local differentiation of Clethrionomys rutilus in northeastern Asia inferred from mitochondrial gene sequences // Mamm. Biol. 2002. V. 67. P. 157–166.; Iwasa M.A., Kostenko V.A., Frisman L.V. et al. Phytogeography of the root vole Microtus oeconomus in Russian Far East: A special reference to comparison between Holarctic and Palearctic voles // Mammal Study. 2009. V. 34. P. 123–130.; Saitou N., Imanishi T. Relative effi ciencies of the Fitch-Margoliash, maximum-parsimony, maximum-likelihood, maximum-evolution, and neighbor-joining methods of phylogenetic tree construction in obstraining the correct tree // Mol. Biol. Evol. 1989. V. 6. P. 514–525.; Tamura K., Peterson D. et al. MEGA-5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods // Mol. Biol. Evol. 2011. V. 28. P. 2731–2739.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/167
Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/167
-
18Academic Journal
Authors: S. Yu. Sorokina, B. V. Andrianov, V. G. Mitrofanov, С. Ю. Сорокина, Б. В. Андрианов, В. Г. Митрофанов
Source: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; № 4 (2010); 108-111 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; № 4 (2010); 108-111 ; 0137-0952 ; 10.1234/XXXX-XXXX-2010-4
Subject Terms: Drosophila littoralis, nucleotide sequence intergenic spacer, Tv1 retrotransposone, нуклеотидная последовательность, межгенный спейсер, псевдоген, ретротранспозон Tv1
File Description: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/229/227; Throckmorton L.H. The virilis species group // The genetics and biology of Drosophila / Eds. M. Ashburner, H.L.Carson, J.N. Thompson. London: Academic Press, 1982. 3b. P. 227—296.; Митрофанов В.Г., Полуэктова Е.В. Инверсионный полиморфизм в природной популяции Drosophila imere- tensis Sokolov (D. littoralis Meig.) // Генетика. 1982. Т. 18. № 11. C. 1849—1855.; Гончаренко Г.Г., Митрофанов В.Г., Корочкин Л.И. Изучение генотипической структуры Drosophila imeretensis Sokolov (D. littoralis Meigen) в географически разделенных популяциях Краснодарского края и Белоруссии // Докл. АН СССР. 1984. Т. 279. № 1. C. 216—219.; Андрианов Б.В., Сорокина С.Ю., Мюге Н.С., Резник Н.Л., Митрофанов В.Г. Популяционная динамика митохондриального полиморфизма в природной популя-ции Drosophila littoralis // Генетика. 2008. Т. 44. № 2. С. 195—201.; Clary D.O., Wolstenholme D.R. The mitochondrial DNA molecule of Drosophila yakuba: Nucleotide sequence, gene organization, and genetic code // J. Mol. Evol. 1985. Vol. 22. N 3. P. 252—271.; Montooth K., Abt D., Hofmann J., Rand D. Comparati¬ve genomics of Drosophila mtDNA: Novel features of conservation and change across functional domains and lineages // J. Mol Evol. 2009. Vol. 69. N 1. P. 94—114.; Saito S., Tamura K., Aotsuka T. Replication origin of mitochondrial DNA in insects // Genetics. 2005. Vol. 171. N 4. P. 1695—1705.; Andrianov B.V., Zakharyev V.M., Reznik N.L., Gorelo- va T.V., Evgen'ev M.B. Gypsy group retrotransposon Tv1 from Drosophila virilis // Gene. 1999. Vol. 239. N 1. P. 193—199.
Availability: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/229
-
19Academic Journal
Subject Terms: полорогие, моллюски, нуклеотидная последовательность, nucleotide sequence
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Authors: Karlyshev, AV, Galyov, EE, Smirnov, OY, Guzayev, AP, Abramov, VM, Zav'yalov, VP
Source: FEBS Letters. 297:77-80
Subject Terms: DNA, Bacterial, 0301 basic medicine, Yersinia pestis, Molecular Sequence Data, Restriction Mapping, нуклеотидна послідовність, комплементационный анализ, Complementation analysis, Capsular antigen, 03 medical and health sciences, protein secretion, Operon, секреция белка, нуклеотидная последовательность, Amino Acid Sequence, Bacterial Capsules, 0303 health sciences, Base Sequence, комплементаційний аналіз, Genetic Complementation Test, complementation analysis, nucleotide sequence, capsular antigen, 3. Good health, caf1A gene, Genes, Bacterial, секреція білка, капсульний антиген, Protein secretion, капсульный антиген, Nucleotide sequence, Y. pestis, Sequence Alignment, Plasmids
File Description: application/pdf; metadata
Linked Full TextAccess URL: https://febs.onlinelibrary.wiley.com/doi/pdfdirect/10.1016/0014-5793%2892%2980331-A
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/1551441
https://febs.onlinelibrary.wiley.com/doi/pdf/10.1016/0014-5793%2892%2980331-A
https://essuir.sumdu.edu.ua/handle/123456789/9087
https://europepmc.org/abstract/MED/1551441
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/001457939280331A
https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/001457939280331A
https://essuir.sumdu.edu.ua/bitstream/123456789/9087/1/A%20new%20gene_Karl-Gal-Smirnov.pdf
http://essuir.sumdu.edu.ua/handle/123456789/9087
