Probability of allogeneic hematopoietic stem cell transplant failure depending on the recipient's killer immunoglobulin-like receptor genotype ; Вероятность развития несостоятельности трансплантата аллогенных гемопоэтических стволовых клеток в зависимости от генотипа киллерного иммуноглобулиноподобного рецептора реципиента

Συγγραφείς: U. V. Maslikova, E. G. Khamaganova, M. Yu. Drokov, I. Yu. Urybin, E. D. Mikhaltsova, L. A. Kuzmina, E. N. Parovichnikova, У. В. Масликова, Е. Г. Хамаганова, М. Ю. Дроков, И. Ю. Урыбин, Е. Д. Михальцова, Л. А. Кузьмина, Е. Н. Паровичникова

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 15, № 1 (2023); 23-33 ; Трансплантология; Том 15, № 1 (2023); 23-33 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; undefined

Θεματικοί όροι: несостоятельность трансплантата, natural killer, stem cell transplantation, graft failure, натуральные киллеры, трансплантация аллогенных гемопоэтических стволовых клеток

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/742/751; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/742/763; Becker PS, Suck G, Nowakowska P, Ullrich E, Seifried E, Bader P, et al. Selection and expansion of natural killer cells for NK cell-based immunotherapy. Cancer Immunol Immunother. 2016;65(4):477–484. PMID: 26810567 https://doi.org/10.1007/s00262-016-1792-y; Raulet DH, Vance RE. Self-tolerance of natural killer cells. Nat Rev Immunol. 2006;6(7):520–531. PMID: 16799471 https://doi.org/10.1038/nri1863; Михальцова Е.Д., Попова Н.Н., Дроков М.Ю., Капранов Н.М., Давыдова Ю.О., Васильева В.А. и др. Влияние режимов профилактики РТПХ на восстановление клеточного звена иммунной системы у пациентов после трансплантации аллогенных гемопоэтических стволовых клеток. Медицинская иммунология. 2021;23(5):1125–1136. https://doi.org/10.15789/1563-0625-IOG-2167; Мелкова К.Н., Шароян Ж.В., Фролов Г.П. Естественные киллеры: лицензия на убийство. Клиническая онкогематология. 2020;13(3):273–279. https://doi.org/10.21320/2500-2139-2020-13-3-273-279; Ullah MA, Hill GR, Tey SK. Functional reconstitution of natural killer cells in allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Front Immunol. 2016;7:144. PMID: 27148263 https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00144 eCollection 2016.; Mikhaltsova E, Drokov MY, Davydova JO, Kuzmina LA, Popova N, Dubnyak D, et al. Impact of post-transplant high-dose cyclophosphamide on reconstitution in bone marrow recipients. Blood. 2017;130(Suppl 1):5485. https://doi.org/10.1182/blood.V130.Suppl_1.5485.5485; Bignon JD, Gagne K. KIR matching in hematopoietic stem cell transplantation. Curr Opin Immunol. 2005;17(5):553–559. PMID: 16085405 https://doi.org/10.1016/j.coi.2005.07.014; Zhao XY, Yu XX, Xu ZL, Cao XH, Huo MR, Zhao XS, et al. Donor and host coexpressing KIR ligands promote NK education after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Blood Adv. 2019;3(24):4312–4325. PMID: 31869417 https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2019000242; Kärre K, Ljunggren HG, Piontek G, Kiessling R. Selective rejection of H-2-deficient lymphoma variants suggests alternative immune defence strategy. Nature. 1986;319(6055):675–678. PMID: 3951539 https://doi.org/10.1038/319675a0; Cooper MA, Fehniger TA, Turner SC, Chen KS, Ghaheri BA, Ghayur T, et al. Human natural killer cells: a unique innate immunoregulatory role for the CD56(bright) subset. Blood. 2001;97(10):3146–3151. PMID: 11342442 https://doi.org/10.1182/blood.v97.10.3146; Montaldo E, Del Zotto G, Della Chiesa M, Mingari MC, Moretta A, De Maria A, et al. Human NK cell receptors/markers: a tool to analyze NK cell development, subsets and function. Cytometry A. 2013;83(8):702–713. PMID: 23650273 https://doi.org/10.1002/cyto.a.22302; Mancusi A, Ruggeri L, Urbani E, Pierini A, Massei MS, Carotti A, et al. Haploidentical hematopoietic transplantation from KIR ligand-mismatched donors with activating KIRs reduces nonrelapse mortality. Blood. 2015;125(20):3173–3182. PMID: 25769621 https://doi.org/10.1182/blood-2014-09-599993; Moesta AK, Parham P. Diverse functionality among human NK cell receptors for the C1 epitope of HLA-C: KIR2DS2, KIR2DL2, and KIR2DL3. Front Immunol. 2012;3:336. PMID: 23189078 https://doi.org/10.3389/fimmu.2012.00336 eCollection 2012; Хамаганова Е.Г., Паровичникова Е.Н., Кузьмина Л.А., Куликов С.М., Кузьминова Е.П., Юшкова А.А. и др. Влияние генов киллерных иммуноглобулинподобных рецепторов и их HLAлигандов на выживаемость больных острыми миелоидными лейкозами после трансплантации аллогенных гемопоэтических стволовых клеток. Гематология и трансфузиология. 2015;60(3):16–21.; Cooley S, Weisdorf DJ, Guethlein LA, Klein JP, Wang T, Le CT, et al. Donor selection for natural killer cell receptor genes leads to superior survival after unrelated transplantation for acute myelogenous leukemia. Blood. 2010;116(14):2411-2419. PMID: 20581313 https://doi.org/10.1182/blood-2010-05-283051; Barao I, Murphy WJ. The immunobiology of natural killer cells and bone marrow allograft rejection. Biol Blood Marrow Transplant. 2003;9(12):727–741. PMID: 14677112 https://doi.org/10.1016/j.bbmt.2003.09.002; Murphy WJ, Reynolds CW, Tiberghien P, Longo DL. Natural killer cells and bone marrow transplantation. J Natl Cancer Inst. 1993;85(18):1475–1482. PMID: 8360930 https://doi.org/10.1093/jnci/85.18.1475; Li L, Kolk M, Fernandez-Vina M, de Lima M, Otegbeye F. Interrogating the impact of KIR ligand mismatch in engraftment following HLA-disparate stem cell transplantation. Bone Marrow Transplant. 2020;55(12):2294–2297. PMID: 32461586 https://doi.org/10.1038/s41409-020-0957-7; Maruyama K, Aotsuka N, Kumano Y, Sato N, Kawashima N, Onda Y, et al. Immune-mediated hematopoietic failure after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation: a common cause of late graft failure in patients with complete donor chimerism. Biol Blood Marrow Transplant. 2018;24(1):43–49. PMID: 28860001 https://doi.org/10.1016/j.bbmt.2017.08.018; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/742

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/742
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2023-15-1-23-33

Clinicopathologic Analyses of Failed Endothelial Keratoplasty (the Clinical Cases) ; Клинико-морфологический анализ осложнений эндотелиальной кератопластики (клинические наблюдения)

Συγγραφείς: Yu. N. Yusef, N. V. Fisenko, T. A. Demura, G. A. Osipyan, Ю. Н. Юсеф, Н. В. Фисенко, Т. А. Демура, Г. А. Осипян

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 20, № 4 (2023); 787-798 ; Офтальмология; Том 20, № 4 (2023); 787-798 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2023-4

Θεματικοί όροι: задняя автоматизированная послойная кератопластика, corneal endothelial dysfunction, graft detachment, graft failure, Descemet membrane endothelial keratoplasty, Descemet stripping automated endothelial keratoplasty, эндотелиальная дисфункция роговицы, отслойка трансплантата, несостоятельность трансплантата, трансплантация десцеметовой мембраны с эндотелием

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2252/1178; Feizi S. Corneal endothelial cell dysfunction: etiologies and management. Ther Adv Ophthalmol. 2018 Dec 7;10:2515841418815802 doi:10.1177/2515841418815802.; Price MO, Mehta JS, Jurkunas UV, Price FW Jr. Corneal endothelial dysfunction: Evolving understanding and treatment options. Prog Retin Eye Res. 2021 May;82:100904. doi:10.1016/j.preteyeres.2020.100904.; Труфанов С.В., Саловарова Е.П. Дисфункция эндотелиального слоя роговицы: этиопатогенез и современные подходы к лечению. Клиническая офтальмология. 2019;19(2):116–119. doi:10.32364/2311-7729-2019-19-2-116-119.; Ong HS, Ang M, Mehta JS. Evolution of therapies for the corneal endothelium: past, present and future approaches. Br J Ophthalmol. 2021 Apr;105(4):454–467. doi:10.1136/bjophthalmol-2020-316149.; Price MO, Gupta P, Lass J, Price FW Jr. EK (DLEK, DSEK, DMEK): New Frontier in Cornea Surgery. Annu Rev Vis Sci. 2017 Sep 15;3:69–90. doi:10.1146/annurevvision-102016-061400.; Малюгин Б.Э., Шилова Н.Ф., Анисимова Н.С., Антонова O.П. Трансплантация эндотелия и десцеметовой мембраны. Вестник офтальмологии. 2019;135(1):98–103. doi:10.17116/oftalma201913501198.; Hemaya M, Hemaya M, Habeeb A. Evaluating Keratoplasty for Fuchs’ Endothelial Corneal Dystrophy: A Literature Review. Cureus. 2023 Jan 11;15(1):e33639. doi:10.7759/cureus.33639.; Müller TM, Verdijk RM, Lavy I, Bruinsma M, Parker J, Binder PS, Melles GR. Histopathologic Features of Descemet Membrane Endothelial Keratoplasty Graft Remnants, Folds, and Detachments. Ophthalmology. 2016 Dec;123(12):2489–2497. doi:10.1016/j.ophtha.2016.08.014.; Фисенко Н.В., Демура Т.А., Труфанов С.В., Воронин Г.В. Морфологические особенности удаленной при эндотелиальной кератопластике десцеметовой мембраны (клинические наблюдения). Вестник офтальмологии. 2022;138(2):81–86. doi:10.17116/oftalma202213802181.; Trindade BLC, Eliazar GC. Descemet membrane endothelial keratoplasty (DMEK): an update on safety, efficacy and patient selection. Clin Ophthalmol. 2019 Aug 16;13:1549–1557. doi:10.2147/OPTH.S178473.; Gómez-Benlloch A, Montesel A, Pareja-Aricò L, Mingo-Botín D, Michael R, Barraquer RI, Alió J. Causes of corneal transplant failure: a multicentric study. Acta Ophthalmol. 2021 Sep;99(6):e922–e928. doi:10.1111/aos.14708.; Hos D, Matthaei M, Bock F, Maruyama K, Notara M, Clahsen T, Hou Y, Le VNH, Salabarria AC, Horstmann J, Bachmann BO, Cursiefen C. Immune reactions after modern lamellar (DALK, DSAEK, DMEK) versus conventional penetrating corneal transplantation. Prog Retin Eye Res. 2019 Nov;73:100768. doi:10.1016/j.preteyeres.2019.07.001.; Фисенко Н.В., Демура Т.А., Осипян Г.А., Аветисов К.С. Оценка влияния сопутствующей глаукомы на уровень биологически активных эндогенных веществ во внутриглазной жидкости при эндотелиальной дистрофии роговицы Фукса и вторичной буллезной кератопатии. Офтальмология. 2023;20(2):253–259. doi:10.18008/1816-5095-2023-2-253-259.; Schrittenlocher S, Grass C, Dietlein T, Lappas A, Matthaei M, Cursiefen C, Bachmann B. Graft survival of Descemet membrane endothelial keratoplasty (DMEK) in corneal endothelial decompensation after glaucoma surgery. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2022 May;260(5):1573–1582. doi:10.1007/s00417-021-05506-4.; Yagi-Yaguchi Y, Yamaguchi T, Higa K, Suzuki T, Aketa N, Dogru M, Satake Y, Shimazaki J. Association between corneal endothelial cell densities and elevated cytokine levels in the aqueous humor. Sci Rep. 2017 Oct 19;7(1):13603. doi:10.1038/s41598-017-14131-3.; Yazu H, Yamaguchi T, Aketa N, Higa K, Suzuki T, Yagi-Yaguchi Y, Satake Y, Abe T, Tsubota K, Shimazaki J. Preoperative Aqueous Cytokine Levels are Associated With Endothelial Cell Loss After Descemet’s Stripping Automated Endothelial Keratoplasty. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2018 Feb 1;59(2):612–620. doi:10.1167/iovs.17-23049.; Yamaguchi T, Higa K, Tsubota K, Shimazaki J. Elevation of preoperative recipient aqueous cytokine levels in eyes with primary graft failure after corneal transplantation. Mol Vis. 2018 Sep 13;24:613–620.; Todokoro D, Miyakubo T, Makimura K, Tamura T, Komori A, Akiyama H. Fungal Keratitis Caused by Talaromyces coalescens: A Case Report. Mycopathologia. 2023 Jun;188(3):251–254. doi:10.1007/s11046-023-00738-w.; Bardan AS, Goweida MB, El Goweini HF, Liu CS. Management of Upside-Down Descemet Membrane Endothelial Keratoplasty: A Case Series. J Curr Ophthalmol. 2020 Apr 30;32(2):142–148. doi:10.4103/JOCO.JOCO_102_20.; Parekh M, Leon P, Ruzza A, Borroni D, Ferrari S, Ponzin D, Romano V. Graft detachment and rebubbling rate in Descemet membrane endothelial keratoplasty. Surv Ophthalmol. 2018 Mar-Apr;63(2):245–250. doi:10.1016/j.survophthal.2017.07.003.; Tapley JL, Hill JR, Bauer AJ, Straiko MMW, Straiko MD, Terry MA. Rate of Endothelial Cell Loss and Graft Survival in Descemet Membrane Endothelial Keratoplasty in Eyes Requiring a Rebubble. Cornea. 2023 Aug 1;42(8):934–939. doi:10.1097/ICO.0000000000003118.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2252

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2252
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2023-4-787-798