Αποτελέσματα αναζήτησης - "нейтрофильные гранулоциты"

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 13, No 1 (2023); 9-28 ; Инфекция и иммунитет; Vol 13, No 1 (2023); 9-28 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: COVID-19, SARS-CoV-2, neutrophil granulocytes, neutrophil extracellular traps, NETs, netopathies, ARDS, immunothrombosis, нейтрофильные гранулоциты, нейтрофильные экстацеллюлярные сети, нетопатии, иммунотромбоз

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2058/1654; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2058/1679; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2058/9011; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2058/9013; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2058/9014; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2058/9015; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2058/9016; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2058

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2058
https://doi.org/10.15789/2220-7619-TRO-2058

View record from BASE

8

Academic Journal

Characteristics of neutrophilic granulocytes of peripheral blood in patients with mechanical jaundice caused by cholangiocarcinoma ; Характеристика нейтрофильных гранулоцитов периферической крови у больных механической желтухой, обусловленной холангиокарциномой

Συγγραφείς: O. V. Smirnova, B. G. Gubanov, E. V. Kasparov, M. A. Darenskaya, L. I. Kolesnikova, S. I. Kolesnikov, О. В. Смирнова, Б. Г. Губанов, Э. В. Каспаров, М. А. Даренская, Л. И. Колесникова, С. И. Колесников

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 1 (2022); 89-96 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 1 (2022); 89-96 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: холангиокарцинома, neutrophilic granulocytes, cholangiocarcinoma, нейтрофильные гранулоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2339/1504; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8158; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8159; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8160; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8161; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8162; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8163; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2339/8164; Антонеева И.И., Генинг Т.П. Нейтрофильные гранулоциты в динамике прогрессии рака яичников // Клиническая лабораторная диагностика, 2007. № 8. С. 43-45.; Гальперин Э.И., Ахаладзе Г.Г., Ветшев П.С., Дюжева Т.Г. Дифференциальный подход к применению минимально инвазивных методов лечения опухолевой механической желтухи // Анналы хирургической гепатологии, 2019. Т. 24, № 8. С. 10-24.; Долгушин И.И., Шишкова Ю.С., Семенова А.Б., Казачков Е.Л., Важенин А.В., Шаманова А.Ю., Димов Г.П. Взгляд на роль нейтрофильной внеклеточной ДНК, как компонента микроокружения опухоли, в процессах канцерогенеза // Уральский медицинский журнал, 2014. № 2 (116). С. 19-22.; Земсков А.М., Земскова В.М., Земсков М.А., Воронцова З.А., Золоедов В.И. Инновационно-аналитические технологии по итогам традиционного иммунологического мониторинга больных // Вестник новых медицинских технологий, 2019. Т. 26, № 2. С. 40-43.; Котовский А.Е., Глебов К.Г., Дюжева Т.Г., Сюмарева Т.А., Магомедова Б.М. Ретроградное эндопротезирование желчных протоков при доброкачественных заболеваниях органов гепатопанкреатодуоденальной зоны // Анналы хирургической гепатологии, 2019. Т. 24, № 1. С. 61-70.; Кукош М.В., Демченко В.И., Колесников Д.Л., Ветюгов Д.Е. Этапное лечение механической желтухи, вызванной желчнокаменной болезнью // Ульяновский медико-биологический журнал, 2018. № 2. С. 26-31.; Мальцева В.Н., Сафронова В.Г. Неоднозначность роли нейтрофилов в генезе опухоли // Цитология, 2009. № 51 (6). С. 467-474.; Нестерова И.В., Ковалева С.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Коков Е.А., Сторожук С.В. Особенности трансформации фенотипа субпопуляций нейтрофильных гранулоцитов CD64(-) CD32(+) CD16(+) CD11b(+) и CD64(+)CD32(+)CD16(+)CD11b(+) пациентов с колоректальным раком под влиянием Г-КСФ, ИФН (альфа) и ИФН (гамма) в системе in vitro // Аллергология и иммунология, 2011. № 12 (3). С. 256-268.; Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Клещенко Е.И., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Смерчинская Т.В., Сапун О.И., Сторожук С.В. Варианты трансформации фенотипа нейтрофильных гранулоцитов CD64+CD32+ CD11b+ у новорожденных с различными инфекционно-воспалительными заболеваниями // Цитокины и воспаление, 2011. № 10 (4). С. 61-65.; Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Ковалева С.В. Ремоделирование фенотипа нейтрофильных гранулоцитов пациентов с колоректальным раком под влиянием рекомбинантного гранулоцитарного колониестимулирующего фактора (G-CSF) // Цитокины и воспаление, 2012. № 11 (3). С. 21-26.; Праздников Е.Н., Баранов Г.А., Зинатулин Д.Р., Умяров Р.Х., Шевченко В.П., Николаев Н.М. Возможности антеградного доступа в лечении холангиолитиаза, осложненного синдромом механической желтухи // Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова, 2018. № 1. С. 21-25.; Рудик Д.В., Тихомирова Е.И. Методы изучения процесса фагоцитоза и функционально-метаболического состояния фагоцитирующих клеток. Саратов: Изд-во Саратовского университета, 2006. 112 с.; Смирнова О.В., Манчук В.Т., Агилова Ю.Н. Роль неспецифического иммунитета при прогрессировании миеломной болезни // Современные проблемы науки и образования, 2014. № 2. С. 515.; Смирнова О.В., Манчук В.Т., Савченко А.А. Метаболический статус лимфоцитов крови при хроническом миелолейкозе и хроническом лимфолейкозе // Медицинская иммунология, 2008. Т. 10, № 1. С. 21-26. doi:10.15789/1563-0625-2008-1-21-26.; Смирнова О.В., Манчук В.Т. Особенности клеток иммунной системы при остром лимфобластном лейкозе // Медицинская иммунология, 2013. Т. 15, № 6. С. 577-584. doi:10.15789/1563-0625-2013-6-577-584.; Смирнова О.В., Савченко А.А., Манчук В.Т., И Москов В. Особенности клеточного и гуморального иммунитета у больных острыми нелимфобластным и лимфобластным лейкозами // Сибирский медицинский журнал (Иркутск), 2006. Т. 59, № 1. С. 35-38.; Смирнова О.В., Титова Н.М., Елманова Н.Г. Роль прооксидантной системы в прогрессировании миеломной болезни // Врач-аспирант, 2013. Т. 60, № 5.1. С. 152-157.; Смирнова О.В., Савченко А.А., Манчук В.Т. Хронические лейкозы. Клинические и иммунологические особенности возникновения и развития. Новосибирск, 2012.; Статистика злокачественных новообразований в России и странах СНГ в 2012 г. Под ред. М.И. Давыдова и Е.М. Аксель. М.: Издательская группа РОНЦ, 2014. 226 с.; Abshagen K. König M., Hoppe A., Müller I., Ebert M., Weng H., Holzhütter H.-G., Zanger U.M., Bode J., Vollmar B., Thomas M., Dooley S. Pathobiochemical signatures of cholestatic liver disease in bile duct ligated mice. BMC Syst. Biol., 2015, Vol. 9, 83. doi:10.1186/s12918-015-0229-0.; Gomi H., Takada T., Hwang T.L., K. Akazawa, Mori R., Endo I., Miura F., Kiriyama S., Matsunaga N., Itoi T., Yokoe M., Chen M.F., Jan Y.Y., Ker C.G., Wang H.P., Wada K., Yamaue H., Miyazaki M., Yamamoto M. Updated comprehensive epidemiology, microbiology, and outcomes among patients with acute cholangitis. J. Hepatobiliary Pancreat. Sci., 2017, Vol. 24, no. 6, pp. 310-318.; Martinez-Cecilia D. Oxidative stress inﬂuence on renal dysfunction in patients with obstructive jaundice: A case and control prospective study. Redox Biol., 2016, Vol. 8, pp. 160-164.; Mayumi T., Okamoto K., Takada T. Tokyo Guidelines 2018: Мanagement bundles for acute cholangitis and cholecystitis. J. Hepatobiliary Pancreat. Sci., 2018, Vol. 25, no. 1, pp. 96-100.; Mazuski J.E., Tessier J.M., May A.K., Sawyer R.G., Nadler E.P., Rosengart M.R., Chang P.K., O’Neill P.J., Mollen K.P., Huston J.M., Diaz J.J. Jr., Prince J.M. The Surgical Infection Society Revised Guidelines on the Management of Intra-Abdominal Infection. Surg. Infect. (Larchmt), 2017, Vol. 18, no. 1, pp. 1-76.; Melnick S., Fareedy S., Gish D., Nazir S. Duodenal diverticulum: incidental ﬁnding with potentially dangerous outcomes. J. Community Hosp. Intern. Med. Perspect., 2017, Vol. 7, no. 1, pp. 56-57.; Mendonça E.Q., Bernardo W.M., Moura E.G., Chaves D.M., Kondo A., Pu L.Z., Baracat F.I. Endoscopic versus surgical treatment of ampullary adenomas: a systematic review and meta-analysis. Clinics (Sao Paulo), 2016, Vol. 71, no. 1, pp. 28-35.; Tsai C.H., Yeh C.H., Sheen Chen S.M., Huang C.Y., Liu Y.W., Huang C.C., Shen S.C., Tang R.P. The kinetic expression of lipopolysaccharide-binding protein and CD14 gene in obstructive jaundice. J. Invest. Surg., 2015, Vol. 28, no. 1, pp. 18-23.; Uysal E., Dokur M. The Helminths Causing Surgical or Endoscopic Abdominal Intervention: A Review Article. Iran J. Parasitol., 2017, Vol. 12, no. 12, pp. 156-168.; Williams E., Beckingham I., Sayed G., Gurusamy K., Sturgess R., Webster G., Young Т. Updated guideline on the management of common bile duct stones (CBDS). Gut, 2017, Vol. 66, no. 5, pp. 765-782; Yang Z., Zhang Y., Dong L., Yang C., Gou S., Yin T., Wu H., Wang C. The Reduction of Peripheral Blood CD4+ T Cell Indicates Persistent Organ Failure in Acute Pancreatitis. PLoS One, 2015, Vol. 10, no. 5, e0125529. doi:10.1371/journal.pone.0125529.; Yokoe M., Hata J., Takada T. Tokyo Guidelines 2018: diagnostic criteria and severity grading of acute cholecystitis (with videos). J. Hepatobiliary Pancreat. Sci., 2018, Vol. 25, no. 1, pp. 41-54.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2339

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2339
https://doi.org/10.15789/1563-0625-CON-2339

View record from BASE

9

Academic Journal

Integrative diagnostic criterion for evaluation of COVID-19 severity and the risk of post-COVID syndrome ; Интеграционный диагностический критерий, оценивающий тяжесть течения COVID-19 и риск возникновения постковидного синдрома

Συγγραφείς: I. V. Nesterova, M. G. Atazhakhova, V. A. Matushkina, Yu. V. Teterin, V. N. Gorodin, G. A. Chudilova, И. В. Нестерова, М. Г. Атажахова, В. А. Матушкина, Ю. В. Тетерин, В. Н. Городин, Г. А. Чудилова

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 3 (2024); 545-554 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 3 (2024); 545-554 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: апоптоз, post-COVID syndrome, integral diagnostic criterion, neutrophil granulocytes, NET, apoptosis, постковидный синдром, интегральный диагностический критерий, нейтрофильные гранулоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2594/1592; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2594/1939; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10145; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10146; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10147; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10148; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10149; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10150; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10151; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10152; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10153; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10154; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10155; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2594/10156; Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Abdullah S.M., Cruz-Martins N., Batiha G.E. Case report: hyperbilirubinemia in gilbert syndrome attenuates Covid-19-Induced metabolic disturbances. Front. Cardiovasc. Med., 2021, Vol.8, 642181. doi:10.3389/fcvm.2021.642181.; Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Qusti S., Alshammari E.M., Atanu F.O., Batiha G.E. Arginine vasopressin and pathophysiology of COVID-19: An innovative perspective. Biomed. Pharmacother., 2021, Vol. 143, 112193. doi:10.1016/j.biopha.2021.112193.; Al-Kuraishy H.M., Al-Gareeb A.I., Qusty N., Cruz-Martins N., El-Saber Batiha G. Sequential doxycycline and colchicine combination therapy in Covid-19: The salutary effects. Pulm. Pharmacol. Ther. 2021, Vol. 67, 102008. doi:10.1016/j.pupt.2021.102008.; Apel F., Andreeva L., Knackstedt L., Streeck R., Frese C., Goosmann C., Zychlinsky A. The cytosolic DNA sensor cGAS recognizes neutrophil extracellular traps. Sci. Signal., 2021, Vol. 14, 7942. doi:10.1126/scisignal.aax7942.; Barnes B.J., Adrover J.M., Baxter-Stoltzfus A., Borczuk A., Cools-Lartigue J., Crawford J.M., Daßler-Plenker J., Guerci P., Huynh C., Knight J.S., Loda M., Looney M.R., McAllister F., Rayes R., Renaud S., Rousseau S., Salvatore S., Schwartz R.E., Spicer J.D., Yost C.C., Weber A., Zuo Y., Egeblad M. Targeting potential drivers of COVID-19: Neutrophil extracellular traps. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 6, 20200652. doi:10.1084/jem.20200652.; Berthelot J., Drouet L., Lioté F., Kawasaki-like diseases and thrombotic coagulopathy in COVID-19: Delayed over-activation of the STING pathway? Emerg. Microbes Infect., 2020, no. 9, pp. 1514-1522.; Bonow R.O., Fonarow G.C., O’Gara P.T., Yancy C.W. Association of coronavirus disease 2019 (COVID-19) with myocardial injury and mortality. JAMA Cardiol., 2020, Vol. 5, no. 7, pp. 751-753.; Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., Fauler B., Uhlemann Y., Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science, 2004, Vol. 303, pp. 1532-1535.; Chen N., Zhou M., Dong X., Qu J., Gong F., Han Y., Qiu Y., Wang J., Liu Y., Wei Y., Xia J., Yu T., Zhang X., Zhang L. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet, 2020, Vol. 395, no. 10223, pp. 507-513.; Darcy C., Minigo G., Piera K., Davis J., McNeil Y., Chen Y., Volkheimer A.D., Weinberg J.B., Anstey N.M., Woodberry T. Neutrophils with myeloid derived suppressor function deplete arginine and constrain T Cell function in septic shock patients. Crit. Care, 2014, Vol. 18, 163. doi:10.1186/cc14003.; Dennison D., Al Khabori M., Al Mamari S., Aurelio A., Al Hinai H., Al Maamari K., Alshekaili J., Al Khadouri G. Circulating activated neutrophils in COVID-19: An independent predictor for mechanical ventilation and death. Int. J. Infect. Dis., 2021, Vol. 106, pp. 155-159.; Fois A.G., Paliogiannis P., Scano V., Cau S., Babudieri S., Perra R., Ruzzittu G., Zinellu E., Pirina P., Carru C., Arru L.B., Fancellu A., Mondoni M., Mangoni A. A., Zinellu A. The systemic inflammation index on admission predicts in-hospital mortality in COVID-19 patients. Molecule, 2020, Vol. 25, 5725. doi:10.3390/molecules25235725.; Hiroki C., Toller-Kawahisa J., Fumagalli M., Colon D., Figueiredo L., Fonseca B., Franca R.F.O., Cunha F.Q. Neutrophil extracellular traps effectively control acute chikungunya virus infection. Front. Immunol., 2020, Vol. 10, 3108. doi:10.3389/fimmu.2019.03108; Jimeno S., Ventura P.S., Castellano J.M., García-Adasme S.I., Miranda M., Touza P., Lllana I.L, López-Escobar A. Prognostic implications of neutrophil-lymphocyte ratio in COVID-19. Eur. J. Clin. Invest., 2021, Vol. 51, no. 1, 13404. doi:10.1111/eci.13404.; Jorch S.K., Kubes P. An emerging role for neutrophil extracellular traps in noninfectious disease. Nat. Med., 2017, Vol. 23, pp. 279-287.; Kantri A., Ziati J., Khalis M., Haoudar A., Aidaoui K.E., Daoudi Y., Chikhaoui I., Yamani K.E., Mouhaoui M., Bakkouri J.E., Dini N., Mahi M., Naitlho A., Bahlaoui A., Bennana A., Noussair M., Belyamani L., Kettani Ch.El. Hematological and biochemical abnormalities associated with severe forms of COVID-19: A retrospective singlecenter study from Morocco. PLoS One, 2021, Vol. 16, 0246295. doi:10.1371/journal.pone.0246295.; Lefrançais E., Mallavia B., Zhuo H., Calfee C.S., Looney M.R. Maladaptive role of neutrophil extracellular traps in pathogen-induced lung injury. JCI Insight, 2018, Vol.3, no. 3, 98178. doi:10.1172/jci.insight.98178.; Masso-Silva J., Moshensky A., Lam M., Odish M., Patel A., Xu L., Hansen E., Trescott S., Nguyen C., Kim R., Perofsky K., Perera S., Ma L., Pham J., Rolfsen M., Olay J., Shin J., Dan J.M., Abbott R.K., Ramirez S., Alexander T.H., Lin G.Y., Fuentes A.L., Advani I., Gunge D., Pretorius V., Malhotra A., Sun X., Duran J., Hepokoski M., Crotty Sh., Coufal N.G., Meier A., Crotty A.L.E. Increased peripheral blood neutrophil activation phenotypes and neutrophil extracellular trap formation in critically Ill Coronavirus Disease 2019 (COVID-19) patients: A case series and review of the literature. Clin. Infect. Dis., 2022, Vol. 74, pp. 479-489.; McKenna E., Wubben R., Isaza-Correa J.M., Melo A.M., Mhaonaigh A.U., Conlon N., O’Donnell J.S., Ní Cheallaigh C., Hurley T., Stevenson N.J., Little M.A., Molloy E.J. Neutrophils in COVID-19: Not innocent bystanders. Front. Immunol., 2022, Vol. 13, 864387. doi:10.3389/fimmu.2022.864387.; Merino A., Vlagea A., Molina A., Egri N., Laguna J., Barrera K., Boldú L., Acevedo A., Díaz-Pavón M., Sibina F., Bascón F., Sibila O., Juan M., Rodellar J. Atypical lymphoid cells circulating in blood in COVID-19 infection: morphology, immunophenotype and prognosis value. J. Clin. Pathol., 2022, Vol. 75, pp. 104-111.; Middleton E.A., He X.Y., Denorme F., Campbell R.A., Ng D., Salvatore S.P., Mostyka M., Baxter-Stoltzfus A., Borczuk A.C., Loda M., Cody M.J., Manne B.K., Portier I., Harris E.S., Petrey A.C., Beswick E.J., Caulin A.F., Iovino A., Abegglen L.M., Weyrich A.S., Rondina M.T., Egeblad M., Schiffman J.D., Yost C.C. Neutrophil extracellular traps contribute to immunothrombosis in COVID-19 acute respiratory distress syndrome. Blood, 2020, Vol. 136, no. 10, pp. 1169-1179.; Naumenko V., Turk M., Jenne C., Kim S. Neutrophils in Viral Infection. Cell Tissue Res., 2018, Vol. 371, pp. 505-516.; Nesterova I.V., Khalturina E.O., Malinovskaya V.V., Nguen Duen L. Recombinant IFNα2b in complex with immunotropic drugs restored antiviral functions of subset IFNα/βR1+IFNγR+TLR4+ neutrophilic granulocyte and demonstrated good clinical efficacy in patients with active chronic herpes-viral infections and chronic fatigue syndrome. Ebook Edition, Filodiritto Publisher, 2021, pp. 70-78.; Nicolai L., Leunig A., Brambs S., Kaiser R., Joppich M., Hoffknecht M.L., Gold C., Engel A., Polewka V., Muenchhoff M., Hellmuth J.C., Ruhle A., Ledderose S., Weinberger T., Schulz H., Scherer C., Rudelius M., Zoller M., Keppler O.T., Zwißler B., von Bergwelt-Baildon M., Kääb S., Zimmer R., Bülow R.D., von Stillfried S., Boor P., Massberg S., Pekayvaz K., Stark K. Vascular neutrophilic inflammation and immunothrombosis distinguish severe COVID-19 from influenza pneumonia. J. Thromb. Haemost., 2021, Vol. 19, no. 2, pp. 574-581.; Papayannopoulos V. Neutrophil extracellular traps in immunity and disease. Nat. Rev. Immunol., 2018, Vol. 18, no. 2, pp. 134-147.; Qu R., Ling Y., Zhang Y.H., Wei L.Y., Chen X., Li X.M., Liu X.Y., Liu H.M., Guo Z., Ren H., Wang Q. Platelet-to-lymphocyte ratio is associated with prognosis in patients with coronavirus disease-19. J. Med. Virol., 2020, Vol. 92, no. 9, pp. 1533-1541.; Singh A., Sood N., Narang V., Narang V., Goyal A. Morphology of COVID-19–affected cells in peripheral blood film. BMJ Case Rep., 2020, Vol. 13, no. 5, e236117. doi:10.1136/bcr-2020-236117.; Teluguakula N. Neutrophils set extracellular traps to injure lungs in coronavirus disease 2019. J. Infect. Dis., 2021, Vol. 223, no. 9, pp. 1503-1505.; Thiam H., Wong S., Wagner D., Waterman C. Cellular mechanisms of NETosis. Annu Rev. Cell Dev. Biol., 2020, Vol. 36, pp. 191-218.; Veras F.P., Pontelli M.C., Silva C.M., Toller-Kawahisa J.E., de Lima M., Nascimento D.C., Schneider A.H., Caetité D., Tavares L.A., Paiva I.M., Rosales R., Colón D., Martins R., Castro I.A., Almeida G.M., Lopes M.I.F., Benatti M.N., Bonjorno L.P., Giannini M.C., Luppino-Assad R., Almeida S.L., Vilar F., Santana R., Bollela V.R., Auxiliadora-Martins M., Borges M., Miranda C.H., Pazin-Filho A., da Silva L.L.P., Cunha L.D., Zamboni D.S., dal-Pizzol F., Leiria L.O., Siyuan L., Batah S., Fabro A., Mauad T., Dolhnikoff M., Duarte-Neto A., Saldiva P., Cunha T.M., Alves-Filho J.C., Arruda E., Louzada-Junior P., Oliveira R.D., Cunha F.Q. SARS-CoV-2-triggered neutrophil extracellular traps mediate COVID-19 pathology. J. Exp. Med., 2020, Vol. 217, no. 12, 20201129. doi:10.1084/jem.20201129.; Wang X., Li X., Shang Y., Wang J., Zhang X., Su D., Zhao S., Wang Q., Liu L., Li Y., Chen H. Ratios of neutrophil-to-lymphocyte and platelet-to-lymphocyte predict all-cause mortality in inpatients with coronavirus disease 2019 (COVID-19): a retrospective cohort study in a single medical centre. Epidemiol. Infect., 2020, Vol. 148, e211. doi:10.1017/S0950268820002071.; Wang Y., Luo L., Braun O.Ö., Westman J., Madhi R., Herwald H., Mörgelin M., Thorlacius H. Neutrophil extracellular trap-microparticle complexes enhance thrombin generation via the intrinsic pathway of coagulation in mice. Sci. Rep., 2018 ,Vol. 8, no. 1, 4020. doi:10.1038/s41598-018-22156-5.; Wu C., Chen X., Cai Y., Xia J., Zhou X., Xu Sh., Huang H., Zhang Li, Zhou X., Du Ch., Zhang Y., Song J., Wang S., Chao Y., Yang Z., Xu J., Zhou X., Chen D., Xiong W., Xu L., Zhou F., Jiang J., Bai Ch., Zheng J., Song Y. Risk Factors associated with acute respiratory distress syndrome and death in patients with coronavirus disease 2019 pneumonia in Wuhan, China. JAMA Intern. Med., 2020, Vol. 180, no. 7, pp. 934-943.; Yang A.-P., Liu J., Tao W., Li H. The Diagnostic and predictive role of NLR, d-NLR and PLR in COVID-19 patients. Int. Immunopharmacol., 2020, Vol. 84, 106504. doi:10.1016/j.intimp.2020.106504.; Yip C.Y.C., Yap E.S., de Mel S., Teo Z. Y., Lee Ch.-T., Kan S., Lee M.C.C., Loh W.N.H., Lim E.L., Lee Sh.Y. Temporal changes in immune blood cell parameters in COVID-19 infection and recovery from severe infection. Br. J. Haematol., 2020, Vol. 190, no. 1, pp. 33-36.; Zhang D., Guo R., Lei L., Liu H., Wang Y., Wang Y., Qian H., Dai T., Zhang T., Lai Y., Wang J., Liu Z., Chen T., He A., O’Dwyer M., Hu J. COVID-19 infection induces readily detectable morphological and inflammation-related phenotypic changes in peripheral blood monocytes, the severity of which correlate with patient outcome. MedRxiv, 2020.03.24.20042655. doi:10.1101/2020.03.24.20042655.; Zuo Y., Zuo M., Yalavarthi S., Gockman K., Madison J., Shi H., Madison J.A., Woodard H.Sh.W., Lezak S.P., Lugogo N.L., Knight J.S., Kanthi Y. Neutrophil extracellular traps and thrombosis in COVID-19. J. Thromb. Thrombolysis, 2021, Vol. 51, no. 2, pp. 446-453.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2594

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2594
https://doi.org/10.15789/1563-0625-IDC-2594

View record from BASE

10

Academic Journal

The modulatory effects of glucosaminylmuramildipeptide on the transformed phenotype of the subset of IFNα/βR1+IFNγR+TLR4+ neutrophilic granulocytes of patients with chronic herpes-viral infections in the experiment in vitro

Συγγραφείς: S. Khaidukov, T. Nguyen, I. Nesterova, S. Guryanova, E. Khalturina, Rudn, Shemyakin

Πηγή: Российский иммунологический журнал. 12:379-384

Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, хронические герпес-вирусные инфекции, фенотипические трансформации, нейтрофильные гранулоциты, глюкозаминилмурамилдипептид, эксперимент in vitro

11

Academic Journal

Pathogenetic role of neutrophilic granulocytes in the development of acute lung injury ; Патогенетическая роль нейтрофильных гранулоцитов в развитии острого поражения легких ; Патогенетична роль нейтрофільних гранулоцитів у розвитку гострого ураження легень

Συγγραφείς: Гудима, А., Марущак, М., Габор, Г., Куліцька, М.

Πηγή: Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 3(59) (2011); 82-85 ; Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 3(59) (2011); 82-85 ; Буковинський медичний вісник; Том 15 № 3(59) (2011); 82-85 ; 2413-0737 ; 1684-7903

Θεματικοί όροι: нейтрофільні гранулоцити, бронхоальвеолярний змив, гостре ураження легень, нейтрофильные гранулоциты, бронхоальвеолярный смыв, острое поражение легких, neutrophilic granulocytes, bronchoalveolar lavage, acute lung injury

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232332/231135

Διαθεσιμότητα: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232332

View record from BASE

12

Academic Journal

THE DEPENDENCE OF METABOLISM OF NEUTROPHILIC GRANULOCYTES ON THE DEGREE OF THE ADVANCED PURULENT PERITONITIS

Συγγραφείς: Ivan Igorevich Gvozdev, Vasily Dmitrievich Belenyuk

Πηγή: Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, Vol 11, Iss 5, Pp 48-53 (2019)

Θεματικοί όροι: перитонит, воспаление, нейтрофильные гранулоциты, метаболизм, Agriculture, Science

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journal-s.org/index.php/vmno/article/view/12157; https://doaj.org/toc/2658-6649; https://doaj.org/toc/2658-6657

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/356645fa4b164831ad0117f0dc517854

View record in DOAJ Full Text Finder

13

Academic Journal

INDICATORS OF CHEMILUMINESCENT ACTIVITY OF NEUTROPHILIC GRANULOCYTES IN HELICOBACTER PYLORI, ASSOCIATED STOMACH CANCER

Συγγραφείς: Olga Valentinovna Smirnova, Vladislav Vladimirovich Tsukanov, Alexander Alexandrovich Sinyakov, Olga Leonidovna Moskalenko, Nina Georgievna Elmanova, Elizaveta Sergeevna Ovcharenko, Irina Eduardovna Kasparova

Πηγή: Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, Vol 11, Iss 2, Pp 139-154 (2019)

Θεματικοί όροι: хемилюминесцентная активность, нейтрофильные гранулоциты, хронический атрофический гастрит, h. pylori, рак желудка, Agriculture, Science

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journal-s.org/index.php/vmno/article/view/12361; https://doaj.org/toc/2658-6649; https://doaj.org/toc/2658-6657

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/7dd6b183e7be44608ae7f70e581c229e

View record in DOAJ Full Text Finder

14

Academic Journal

Pathogenetic role of neutrophilic granulocytes in the development of acute lung injury

Πηγή: Буковинський медичний вісник; Том 15 № 3(59) (2011); 82-85
Буковинский медицинский вестник; Том 15 № 3(59) (2011); 82-85
Bukovinian Medical Herald; Vol. 15 No. 3(59) (2011); 82-85

Θεματικοί όροι: нейтрофильные гранулоциты, бронхоальвеолярный смыв, острое поражение легких, neutrophilic granulocytes, bronchoalveolar lavage, acute lung injury, нейтрофільні гранулоцити, бронхоальвеолярний змив, гостре ураження легень, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/232332

View record at OpenAIRE

15

Academic Journal

Metabolic activity of peripheral blood neutrophils in patients with Opisthorchis felineus invasion and skin syndrome ; Метаболическая активность нейтрофилов крови у больных с инвазией Opisthorchis felineus с кожным синдромом

Συγγραφείς: Tsukanov V.V., Gorchilova E.G., Kolenchukova O.A., Gvozdev I.I., Savchenko A.A., Vasyutin A.V., Tonkikh J.L., Rzhavicheva O.S., Borisov A.G.

Συνεισφορές: Krasnoyarsk Regional Fund of Science, Проект «Иммуно-биохимическая модель прогнозирования выраженности предраковых изменений в печени у больных хроническим описторхозом» проведен при поддержке КГАУ «Красноярский краевой фонд поддержки научной и научно-технической деятельности» (код заявки: 2019051404996).

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 11, No 3 (2021); 570-576 ; Инфекция и иммунитет; Vol 11, No 3 (2021); 570-576 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: Opisthorchis felineus, skin syndrome, neutrophilic granulocytes, functional activity, liver fibrosis, reactive oxygen species, chemiluminescence, кожный синдром, нейтрофильные гранулоциты, функциональная активность, фиброз печени, активные формы кислорода, хемилюминесценция

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1415
https://doi.org/10.15789/2220-7619-MAO-1415

View record from BASE

16

Academic Journal

Neutrophil granulocytes: participation in homeostatic and reparative processes. Part I ; Нейтрофильные гранулоциты: участие в гомеостатических и репаративных процессах. Часть I

Συγγραφείς: Dolgushin I.I., Mezentseva E.A.

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 10, No 4 (2020); 609-624 ; Инфекция и иммунитет; Vol 10, No 4 (2020); 609-624 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: neutrophilic granulocytes, life cycle, homeostasis, repair, skin, lungs, oral cavity, intestines, female reproductive tract, нейтрофильные гранулоциты, жизненный цикл, гомеостаз, репарация, кожа, легкие, ротовая полость, кишечник, женский репродуктивный тракт

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1257/1130; https://iimmun.ru/iimm/article/view/1257

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1257
https://doi.org/10.15789/2220-7619-NGP-1257

View record from BASE

17

Academic Journal

INDICATORS OF PHAGOCYTOSIS OF GRANULOCYTES NEUTROPHILES IN COWS BLOOD SICK ON SUBCLINICAL FORM OF MASTITIS AND UNDER THE INFLUENCE OF PREPARATION «ANTYMAST»

Συγγραφείς: SOBKO G.

Πηγή: Scientific Messenger of LNU of Veterinary Medicine and Biotechnologies. 18:244-247

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, CATTLE,SUBCLINICAL MASTITIS,SOMATIC CELL,PHAGOCYTOSIS,PHAGOCYTIC ACTIVITY,PHAGOCYTIC INDEX,PHAGOCYTIC NUMBER,NEUTROPHIL GRANULOCYTES,NBT-TEST OF BLOOD,ВЕЛИКА РОГАТА ХУДОБА,СУБКЛіНіЧНИЙ МАСТИТ,СОМАТИЧНі КЛіТИНИ,ФАГОЦИТОЗ,ФАГОЦИТАРНА АКТИВНІСТЬ,ФАГОЦИТАРНИЙ іНДЕКС,ФАГОЦИТАРНЕ ЧИСЛО,НЕЙТРОФіЛЬНі ГРАНУЛОЦИТИ,НСТ-ТЕСТ,КРОВ,КРУПНЫЙ РОГАТЫЙ СКОТ,СУБКЛИНИЧЕСКИЙ МАСТИТ,СОМАТИЧЕСКИЕ КЛЕТКИ,ФАГОЦИТАРНАЯ АКТИВНОСТЬ,ФАГОЦИТАРНЫЙ ИНДЕКС,ФАГОЦИТАРНОЕ ЧИСЛО,НЕЙТРОФИЛЬНЫЕ ГРАНУЛОЦИТЫ,КРОВЬ, 0302 clinical medicine, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://cyberleninka.ru/article/n/indicators-of-phagocytosis-of-granulocytes-neutrophiles-in-cows-blood-sick-on-subclinical-form-of-mastitis-and-under-the-influence-of
https://cyberleninka.ru/article/n/indicators-of-phagocytosis-of-granulocytes-neutrophiles-in-cows-blood-sick-on-subclinical-form-of-mastitis-and-under-the-influence-of.pdf
http://cyberleninka.ru/article_covers/16914004.png
http://cyberleninka.ru/article/n/indicators-of-phagocytosis-of-granulocytes-neutrophiles-in-cows-blood-sick-on-subclinical-form-of-mastitis-and-under-the-influence-of-1
http://cyberleninka.ru/article/n/indicators-of-phagocytosis-of-granulocytes-neutrophiles-in-cows-blood-sick-on-subclinical-form-of-mastitis-and-under-the-influence-of
http://cyberleninka.ru/article_covers/16911751.png

View record at OpenAIRE

18

Academic Journal

FEATURES OF NEUTROPHIL CHEMILUMINESCENCE IN THE PATIENTS WITH ADVANCED RECTAL CANCER ; ОСОБЕННОСТИ ХЕМИЛЮМИНЕСЦЕНТНОЙ АКТИВНОСТИ НЕЙТРОФИЛЬНЫХ ГРАНУЛОЦИТОВ У БОЛЬНЫХ РАКОМ ПРЯМОЙ КИШКИ В ДИНАМИКЕ

Συγγραφείς: O. V. Smirnova, E. V. Kasparov, Ya. I. Perepechay, A. A. Nesytykh, V. S. Belyaev, О. В. Смирнова, Э. В. Каспаров, Я. И. Перепечай, А. А. Несытых, В. С. Беляев

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 1 (2019); 157-164 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 1 (2019); 157-164 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-1

Θεματικοί όροι: рак прямой кишки, induced chemiluminescent activity, neutrophil granulocytes, rectal cancer, индуцированная хемилюминесцентная активность нейтрофильные гранулоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1710/1111; Балканов А.С., Гуров А.Н., Катунцева Н.А., Белоусова Е.А. Заболеваемость раком прямой кишки населения Московской области в 2010–2014 гг. // Альманах клинической медицины, 2016. Т 44, № 5. С. 599-605. [Balkanov A.S., Gurov A.N., Katuntseva N.A., Belousova E.A. Incidence of rectal cancer in the population of the Moscow region in 2010–2014. Almanakh klinicheskoy meditsiny = Almanac of Clinical Medicine, Vol. 44, no. 5, pp. 599-605. (In Russ.)]; Грачева Т.А. Совершенствование хемилюминесцентного метода исследования функциональной активности фагоцитирующих клеток // Клиническая лабораторная диагностика, 2008. № 2. С. 54- 55. [Gracheva T.A. Improvement of the chemiluminescence technique for investigating the functional activity of phagocytes. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika = Russian Clinical Laboratory Diagnostics, 2008, no. 2, pp. 54-55. (In Russ.)]; Давыдов М.И., Патютко Ю.И., Личиницер М.Р., Расулов А.О., Ткачев С.И., Подлужный Д.В., Алиев В.А., Татаев И.Ш., Овчинникова А.И. Современная лечебная тактика при раке прямой кишки с синхронными отдаленными метастазами (клиническое наблюдение) // Онкологическая колопрокторология, 2014. № 1. С. 33-39. [Davydov M.I., Patyutko Yu.I., Lichinitser M.R., Rasulov A.O., Tkachev S.I., Podluzhny D.V., Aliev V.A., Tataev I.Sh., Ovchinnikova A.I. Current treatment policy for rectal cancer with synchronous distant metastases (a clinical case). Onkologicheskaya koloproktorologiya = Colorectal Oncology, 2014, no. 1, pp. 33-39.(In Russ.)]; Кит О.И., Франциянц Е.М., Никипелова Е.А., Комарова Е.Ф. Состояние свободнорадикальных процессов в ткани злокачественной опухоли толстой кишки // Сибирское медицинское обозрение, 2014. № 1. С. 30-34. [Kit O.I., Frantsiyants E.M., Nikipelova E.A., Komarova E.F. Condition of free radical processes in the tissue of a malignant tumor of the colon. Sibirskoe meditsinskoe obozrenie = Siberian Medical Review, no. 1, pp. 30-34. (In Russ.)]; Кохнюк В.Т. Рак прямой кишки в Республике Беларусь: распространенность, диагностика и результаты лечения // Онкологическая колопрокторология, 2013. № 2. С. 31-34. [Kokhniuk V.T. Rectal cancer in the Republic of Belarus: prevalence, diagnosis and treatment outcomes. Onkologicheskaya koloproktorologiya = Colorectal Oncology, 2013, no. 2, pp. 31-34.(In Russ.)]; Мальцева В.Н., Сафронова В.Г. Неоднозначность роли нейтрофила в генезе опухоли // Цитология, 2009. Т. 51, № 6. С. 467-474. [Maltseva V.N., Safronova V.G. Ambiguity role of neutrophils in oncogenesis. Tsitologiya = Сytology, 2009, Vol. 51, no. 6, pp. 467-474.(In Russ.)]; Нестерова И.В., Ковалева С.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Евглевский А.А. Двойственная роль нейтрофильных гранулоцитов в реализации противоопухолевой защиты // Иммунология, 2012. № 5. С. 281-285. [Nesterova I.V., Kovaleva S.V., Chudilova G.A., Lomtatidze L.V., Yevglevsky A.A. The dual role of neutrophils in the antitumor protection. Immunologiya = Immunology, no. 5, pp. 281-285.(In Russ.)]; Райков Н.С., Чупин Р.Н., Попов И.Н., Сбродов О.В., Дорогина Л.В., Роговских А.Н. Рак прямой кишки // Тюменский медицинский журнал, 2010. № 3-4. С. 75-77. [Raykov N.S., Chupin R.N., Popov I.N., Sbrodov O.V., Dorogina L.V., Rogovskikh A.N. Rectal cancer. Tyumenskiy meditsinskiy zhurnal = Tyumen Medical Journal, 2010, no. 3-4, pp. 75-77. (In Russ.)]; Смирнова О.В., Манчук В.Т., Агилова Ю.Н. Роль неспецифического иммунитета при прогрессировании миеломной болезни // Современные проблемы науки и образования, 2014. № 2. С. 515. [Smirnova O.V., Manchuk V.T., Agilova Yu.N. Role nonspecific immunity in the progression of myeloma diseas. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya = Modern Problems of Science and Education, 2014, no. 2, p. 515.(In Russ.)]; Fridlender Z.G., Sun J., Kim S. Polarization of tumor-associated neutrophil (TAN) phenotype by TGF-β: "N1" versus "N2" TAN. Cancer Cell, 2009, Vol. 16, no. 3. pp. 183-194.; Galdiero M.R., Garlanda C., Jaillon S., Montovani. A. Tumor associated macrophages neutrophils in tumor progression. J. Cell. Physiol., 2013, Vol. 228, no. 7. pp. 1404-1412.; Mishalian I., Bayuh R., Levy L., Zolotarov L., Michaeli J., Fridlender Z.G. Tumor-associated neutrophils (TAN) develop pro-tumorigenic properties during tumor progression. Cancer Immunol. Immunother., 2013, Vol. 62, no. 11, pp. 1745-1756.; Prestwich R.J., Errington F., Hatfield Р., Roodman D.G. The immune system – is it relevant to саnсеr development, progression and treatment? Clin. Oncol., 2008, Vol. 20, pp. 101-112.; Schins R.Р.F., Воrm Р.J.А., van Schooten F.J. Neutropihis and respiratory tract DNA damage and mutagenesis: а review. Mutagenesis, 2006, Vol. 21, pp. 225-236.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1710

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1710
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-157-164

View record from BASE

19

Academic Journal

Neutrophil granulocytes: new faces of old acquaintances ; Нейтрофильные гранулоциты: новые лица старых знакомых

Συγγραφείς: I. Dolgushin I., И. Долгушин И.

Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 18, № 1 (2019); 30-37 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 18, № 1 (2019); 30-37 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2019-18-1

Θεματικοί όροι: neutrophil granulocytes, immunoregulatory functions, inflammation, adaptive immunity, cancer, tumor-associated neutrophils, нейтрофильные гранулоциты, иммунорегуляторные функции, воспаление, адаптивный иммунитет, рак, тумор-ассоциированные нейтрофилы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2168/1535; Куликов В.А., Гребенников И.Н. Резольвины, протектины и марезины: новые медиаторы воспаления. Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2012; 11 (1): 25–30.; Kruger P., Saffarzadeh M., Weber A.N., Rieber N., Radsak M., von Bernuth H., Benarafa C., Roos D., Skokowa J., Hartl D. Neutrophils: Between Host Defence, Immune Modulation, and Tissue Injury. PLoS Pathogens. 2015; 11 (3): e1004651. DOI:10.1371/journal.ppat.1004651.; McDonald B., Pittman K., Menezes G.B., Hirota S.A., Slaba I., Waterhouse C.C., Beck P.L., Muruve D.A., Kubes P. Intravascular danger signals guide neutrophils to sites of sterile inflammation. Science. 2010; 330 (6002): 362–366.; Pillay J., Kamp V.M., van Hoffen E., Visser T., Tak T., Lammers J.W., Ulfman L.H., Leenen L.P., Pickkers P., Koenderman L. A subset of neutrophils in human systemic inflammation inhibits T cell responses through Mac- 1. The Journal of Clinical Investigation. 2012; 122 (1): 327–336.; Colom B., Bodkin J.V., Beyrau M., Woodfin A., Ody C., Rourke C., Chavakis T., Brohi K., Imhof B.A., Nourshargh S. Leukotriene B4-neutrophil elastase axis drives neu-trophil reverse transendothelial cell migration in vivo. Immunity. 2015; 42 (6): 1075–1086. DOI:10.1016/j.immuni.2015.05.010; Woodfin A., Voisin M.B., Beyrau M., Colom B., Caille D., Diapouli F.M., Nash G.B., Chavakis T., Albelda S.M., Rainger G.E., Meda P., Imhof B.A., Nourshargh S. The junctional adhesion molecule (JAM-C) regulates polarized transendothelial migration of neutrophils in vivo. Nature Immunology. 2011; 12 (8): 761–769. DOI:10.1038/ni.2062.; Jenne C.N., Liao S., Singh B. Neu-trophils: multitasking first responders of immunity and tissue homeostasis. Cell and Tissue Research. 2018; 371 (3): 395–397. DOI:10.1007/s00441-018-2802-5.; Lopez-Lago M.A., Posner S., Thodima V.J., Molina A.M., Motzer R.J., Chaganti R.S. Neutrophil chemokines secreted by tumor cells mount a lung antimetastatic response during renal cell carcinoma progression. Oncogene. 2013; 32 (14): 1752–1760.; De Kleijn S., Langereis J.D., Leentjens J., Kox M., Netea M.G., Koenderman L., Ferwerda G., Pickkers P., Hermans P.W. IFN-γ-stimulated neutrophils suppress lymphocyte proliferation through ex-pression of PD-L1. PLoS ONE. 2013; (8): e72249.; Cross A., Bucknall R.C., Cassatella M.A., Edwards S.W., Moots R.J. Synovial fluid neutrophils transcribe and express class II major histocompatibility complex molecules in rheumatoid arthritis. Arthritis and Rheumatology. 2003; 48, (10): 2796–2806.; Puga I., Cols M., Barra C.M., He B., Cassis L., Gentile M., Comerma L., Chorny A., Shan M., Xu W., Magri G., Knowles D.M., Tam W., Chiu A., Bussel J.B., Serrano S., Lorente J.A., Bellosillo B., Lloreta J., Juanpere N., Alameda F., Barу T., de Heredia C.D., Torán N., Catalа A., Torrebadell M., Fortuny C., Cusн V., Carreras C., Diaz G.A., Blander J.M., Farber C.M., Silvestri G., Cunningham-Rundles C., Calvillo M., Dufour C., Notarangelo L.D., Lougaris V., Plebani A., Casanova J.L., Ganal S.C., Diefenbach A., Arуstegui J.I., Juan M., Yagüe J., Mahlaoui N., Donadieu J., Chen K., Cerutti A. B cell–helper neutrophils stimulate immunoglobulin diversification and production in the marginal zone of the spleen. Nature Immunology. 2011; 13 (2): 170–180. DOI:10.1038/ni.2194.; Valladeau J., Saeland S. Cutaneous dendritic cells. Seminars in Immunologyю. 2005;17 (4): 273–283.; Nicolás-Ávila J.Á., Adrover J.M., Hidalgo A. Neutrophils in homeostasis, immunity, and cancer. Immunity. 2017; 46 (1): 15–28. DOI:10.1016/j.immuni.2016.12.012.; Powell D.R., Huttenlocher A. Neu-trophils in the tumor microenvironment. Trends in Immunology. 2016; 37 (1): 41–52. DOI:10.1016/j.it.2015.11.008.; Shaul M.E., Fridlender Z.G. Cancer related circulating and tumor-associated neutrophils – subtypes, sources and function. The FEBS Journal. 2018. DOI:10.1111/ febs.14524.; Fridlender Z.G., Albelda S.M. Tumor-associated neutrophils: friend or foe? Carcinogenesis. 2012; 33 (5): 949– 955. DOI:10.1093/carcin/bgs123.; Singhal S., Bhojnagarwala P.S., O’Brien S., Moon E.K., Garfall A.L., Rao A.S., Quatromoni J.G., Stephen T.L., Litzky L., Deshpande C., Feldman M.D., Hancock W.W., Conejo-Garcia J.R., Albelda S.M., Eruslanov E.B. Origin and role of a subset of tumor-associated neutrophils with antigen-presenting cell features in early-stage human lung cancer. Cancer Cell. 2016; 30 (1): 120–135. DOI:10.1016/j.ccell.2016.06.001.; Семенова А.Б., Казачков Е.Л., Долгушин И.И., Важенин А.В. Формирование нейтрофильными гранулорцитами сетей внеклеточной ДНК как дополнительный диагностический критерий степени злокачественности карцином молочной железы. Уральский медицинский журнал. 2016; 3 (136): 70–73.; Park S.A., Hyun Y.M. Neutrophil ex-travasation cascade: what can we learn from two-photon intravital im-aging? Immune Network. 2016; 16 (6): 317–321.; Grayson P.C., Kaplan M. At the Bench: Neutrophils extracellular traps (NETs) highlight novel aspects of innate immune system involvement in autoimmune diseases. J. Leukoc Biol. 2016; 99 (2): 253–264. DOI:10.1189/jlb.5BT0615-247R.; Escors D., Kochan G. Myeloid-derived suppressor cells and their “inconvenient” plasticity. Journal of Immunological Sciences. 2018; 2 (2): 42–47.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2168

Διαθεσιμότητα: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2168
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2019-1-30-37

View record from BASE

20

Academic Journal