Analysis of the cellular composition of the native auto-transplantation mixture used for plastics of bone tissue defects ; Анализ клеточного состава нативной трансплантационной аутосмеси, используемой для пластики дефектов костной ткани

Authors: N. V. Chueshova, I. A. Cheshik, E. A. Nadyrov, V. I. Nikolaev, S. I. Kirilenko, V. V. Rozhin, A. N. Kondrachuk, N. S. Serdyuchenko, Н. В. Чуешова, И. А. Чешик, Э. А. Надыров, В. И. Николаев, С. И. Кириленко, В. В. Рожин, А. Н. Кондрачук, Н. С. Сердюченко

Source: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 65, № 6 (2021); 715-723 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 65, № 6 (2021); 715-723 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2021-65-6

Subject Terms: мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, native bone dust, flow cytometry, apoptosis, immunophenotyping, multipotent mesenchymal stromal cells, нативная трансплантационная аутосмесь, проточная цитометрия, апоптоз, иммунофенотипирование

File Description: application/pdf

Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024/1021; Предеин, Ю. А. Костные и клеточные имплантанты для замещения дефектов кости / Ю. А. Предеин, В. В. Рерих // Современные проблемы науки и образования. – 2016. – № 6. – С. 132.; Результаты трансплантации культуры аутогенных стромальных клеток костного мозга в область краевого дефекта длинных трубчатых костей / Р. В. Деев [и др.] // Травматология и ортопедия России. – 2007. – № 2(44). – С. 57–63.; A novel method for the salvage of bone dust generated by high-speed burrs in spinal surgery / N. Heidari [et al.] // Ann. R. Coll. Surg. Engl. – 2007. – Vol. 89, N 5. – Р. 533–534. https://doi.org/10.1308/rcsann.2007.89.5.533; Histologic evaluation of high speed burr shavings collected during spinal decompression surgery / V. V. Patel [et al.] // Orthopedics. – 2009. – 32. – Vol. 32, N 1. – Р. 23. https://doi.org/10.3928/01477447-20090101-17; Ekanayake J. Use of the novel ANSPACH bone collector for bone autograft in anterior cervical discectomy and cage fusion / J. Ekanayake, A. Shad // Acta Neurochirurgica. – 2009. – Vol. 152, N 4. – P. 651–653. https://doi.org/10.1007/s00701-009-0513-0; Blay, A. Viability of autogenous bone grafts obtained by using bone collectors: histological and microbiological study / A. Blay, S. Tunchel, W. R. Sendyk // Pesqui. Odontol. Bras. – 2003. – Vol. 17, N 3. – P. 234–240. https://doi.org/10.1590/s1517-74912003000300007; Autologous bone graft harvested during implant site preparation: histological study / M. Santagata [et al.] // Plast Aesthet. Res. – 2014. – Vol. 1, N 3. – Р. 94–97. https://doi.org/10.4103/2347-9264.143553; Autografts for spinal fusion: osteogenic potential of laminectomy bone chips and bone shavings collected via high speed drill / C. Eder [et al.] // Eur. Spine J. – 2011. – Vol. 20, N 11. – P. 1791–1795. https://doi.org/10.1007/s00586-011-1736-3; Comparative study between cortical bone grafts versus bone dust for reconstruction of cranial burr holes / V. P. Worm [et al.] // Surg. Neurol. Int. – 2010. – Vol. 1, N 1. – P. 91. https://doi.org/10.4103/2152-7806.74160; Устройство для фильтрации костной стружки / С. И. Кириленко [и др.] // Ортопедия, травматология и протезирование. – 2020. – № 2. – С. 75–79. https://doi.org/10.15674/0030-59872020275-79; Костно-пластические материалы для выполнения спондилодеза / В. В. Рожин [и др.] // Проблемы здоровья и экологии. – 2019. – № 2(60). – С. 13–19.; Mesenchymal stromal/stem cells in regenerative medicine and tissue engineering / R. E. B. Fitzsimmons [et al.] // Stem. Cells International. – 2018. – Vol. 2018. – P. 1–16. https://doi.org/10.1155/2018/8031718; Pittenger, M. F. Mesenchymal stem cells from adult bone marrow / M. F. Pittenger // Mesenchymal stem cells: methods and protocol / eds. D. J. Prockop, D. G. Phinney, B. A. Bunnell. – Humana Press, 2008. – P. 27–44. https://doi.org/10.1007/978-1-60327-169-1_2; Kode, J. Mesenchymal stromal cells and their clinical applications / J. Kode, V. Tanavde // Applications of Flow Cytometry in Stem Cell Research and Tissue Regeneration / ed. A. Krishan, H. Krishnamurthy, S. Totey. – Bangalore, 2010. – Р. 175–188. https://doi.org/10.1002/9780470631119.ch12; Проточная цитометрия в медицине и биологии / А. В. Зурочка [и др.]. – 2-е изд. – Екатеринбург, 2014. – 576 с.; Warnes, G. The multiplexing of assays for the measurement of early stages of apoptosis by polychromatic flow cytometry / G. Warnes // Flow cytometry – Select topics. – London, 2016. – Р. 85–99. https://doi.org/10.5772/60549; Isolation, characterization, differentiation and immunomodulatory capacity of mesenchymal stromal/stem cells from human perirenal adipose tissue / P. C. Baer [et al.] // Cells. – 2019. – Vol. 8, N 11. – Art. 1346. https://doi.org/10.3390/cells8111346; Пулин, А. А. Поверхностные маркеры, характеризующие мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки (ММСК) костного мозга человека / А. А. Пулин, И. Н. Сабурина, В. С. Репин // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2008. – Т. 3, № 3. – С. 25–30.; Шахпазян, Н. К. Мезенхимальные стволовые клетки из различных тканей человека: биологические свойства, оценка качества и безопасности для клинического применения / Н. К. Шахпазян, Т. А. Астрелина, М. В. Яковлева // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2012. – Т. 7, № 1. –С. 23–33.; Adult Mesenchymal stem cells and cell surface characterization – A systematic review of the literature / P. Mafi [et al.] // Open Orthopaedics J. – 2011. – Vol. 5, N 1. – Р. 253–260. https://doi.org/10.2174/1874325001105010253; Рылова, Ю. В. Воздействие цисплатина на мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки жировой ткани человека при различном уровне кислорода / Ю. В. Рылова, Л. Б. Буравкова, Б. Д. Животовский // Вестн. Рос. акад. мед. наук. – 2016. – Т. 71, № 2. – С. 114–120. https://doi.org/10.15690/vramn614; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024

Availability: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1024
https://doi.org/10.29235/1561-8323-2021-65-6-715-723