Search Results - "мультирезистентность"

1

Academic Journal

ГЛАВНЫЙ ГЕНОМ И ЭКОЛОГИЯ

Source: Высшая школа: научные исследования.

Subject Terms: экология, адаптогены, человек, бактерии, главный геном, мультирезистентность, эволюция

2

Academic Journal

The course of cystic fibrosis in adult patients with Burkholderia cepacia complex infection ; Особенности течения муковисцидоза у взрослых больных, инфицированных микроорганизмами Burkholderia cepacia complex

Authors: M. V. Afanaseva, S. A. Krasovskiy, E. L. Amelina, М. В. Афанасьева, С. А. Красовский, Е. Л. Амелина

Contributors: This study was not sponsored, Спонсорская поддержка исследования отсутствовала

Source: PULMONOLOGIYA; Том 35, № 2 (2025); 241-253 ; Пульмонология; Том 35, № 2 (2025); 241-253 ; 2541-9617 ; 0869-0189

Subject Terms: перекрестное инфицирование, Burkholderia cepacia complex, multiresistance, hospital infection, targeted therapy, cross-infection, мультирезистентность, госпитальная инфекция, таргетная терапия

File Description: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4680/3765; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3218; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3219; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3220; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3221; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3222; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3223; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/downloadSuppFile/4680/3224; Каширская Н.Ю., Капранов Н.И., Кондратьева Е.И., ред. Муковисцидоз. М.: Медпрактика-М; 2021. Доступно на: https://mukoviscidoz.org/novosti-meditsiny/904-mukovistsidoz-izdanie-2-epererabotannoe-i-dopolnennoe.html [Дата обращения: 16. 02. 25].; Шерман В.Д., Куцев С.И., Ижевская В.Л., Кондратьева Е.И. Оценка эффективности неонатального скрининга на муковисцидоз в Российской Федерации. Вопросы практической педиатрии. 2022; 17 (3): 12–19. DOI:10.20953/1817-7646-2022-3-12-19; Воронкова А.Ю., Амелина Е.Л., Каширская Н.Ю. и др. (ред.). Регистр пациентов с муковисцидозом в Российской Федерации. 2022 год. М.: Медпрактика-М; 2024. Доступно на: https://mukoviscidoz.org/doc/registr/_Registre_2022.pdf [Дата обращения: 27. 11. 24].; Elborn J.S. Cystic fibrosis. Lancet. 2016; 388 (10059): 2519–2531. DOI:10.1016/S0140-6736(16)00576-6.; Кондратьева Е.И., Каширская Н.Ю., Капранов Н.И., ред. Национальный консенсус «Муковисцидоз: определение, диагностические критерии, терапия». М.: Боргес; 2019. Доступно на: https://mukoviscidoz.org/doc/konsensus/2019/konsensus-2019-bez-rentgenogramm.pdf [Дата обращения: 16. 02. 25].; Verhaeghe С., Delbecque K., de Leval L. et al. Early inflammation in the airways of a cystic fibrosis foetus. J. Cyst. Fibros. 2007; 6 (4): 304–308. DOI:10.1016/j.jcf.2006.12.001.; Красовский С.А., Никонова В.С., Каширская Н.Ю. и др. Клинико-генетическая, микробиологическая и функциональная характеристика больных муковисцидозом, проживающих в Москве и Московской области. Вопросы современной педиатрии. 2013; 12 (1): 17–23. Доступно на: DOI:10.15690/vsp.v12i1.554.; Шагинян И.А., Капранов Н.И., Чернуха М.Ю. и др. Микробный пейзаж нижних дыхательных путей у различных возрастных групп детей, больных муковисцидозом. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010; 87 (1): 15–20. Доступно на: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13395 [Дата обращения: 27. 11. 24].; Guss A.M., Roeselers G., Newton I.L. et al. Phylogenetic and metabolic diversity of bacteria associated with cystic fibrosis. ISME J. 2011; 5 (1): 20–29. DOI:10.1038/ismej.2010.88.; Burkholder W.H. Bacteria as plant pathogens. Annu. Rev. Microbiol. 1948; 2: 389–412. DOI:10.1146/annurev.mi.02.100148.002133.; Lynch K.H., Stothard P., Dennis J.J. Genomic analysis and relatedness of P2-like phages of the Burkholderia cepacia complex. BMC Genomics. 2010; 11: 599. DOI:10.1186/1471-2164-11-599.; Чернуха М.Ю., Шагинян И.А., Капранов Н.И. и др. Персистенция Burkholderia cepacia у больных муковисцидозом. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2012; 89 (4): 93–98. Доступно на https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13755 [Дата обращения: 29. 09. 24].; Laraya-Cuasay L.R., Lipstein M., Huang N. Pseudomonas cepacia in the respiratory flora of patients with cystic fibrosis (CF). Pediatr. Res. 1977; 11: 502. DOI:10.1203/00006450-197704000-00792.; Rosenstein B.J., Hall D.E. Pneumonia and septicemia due to Pseudomonas cepacia in a patient with cystic fibrosis. Johns Hopkins Med. J. 1980; 147 (5): 188–189. Available at: https://pure.johnshopkins.edu/en/publications/pneumonia-and-septicemia-due-to-pseudomonas-cepacia-in-a-patient--3 [Accessed: November 28, 2024].; Isles A., Maclusky I., Corey M. et al. Pseudomonas cepacia infection in cystic fibrosis: an emerging problem. J. Pediatr. 1984; 104 (2): 206–210. DOI:10.1016/s0022-3476(84)80993-2.; Govan J.R., Brown P.H., Maddison J. et al. Evidence for transmission of Pseudomonas cepacia by social contact in cystic fibrosis. Lancet. 1993; 342 (8862): 15–19. DOI:10.1016/0140-6736(93)91881-l.; Hauser A.R., Jain M., Bar-Meir M., McColley S.A. Clinical significance of microbial infection and adaptation in cystic fibrosis. Clin. Microbiol. Rev. 2011; 24 (1): 29–70. DOI:10.1128/CMR.00036-10.; The UK Cystic Fibrosis Trust. The Burkholderia cepacia complex. Suggestions for prevention and infection control. 2sup>nd Edn. 2004. Available at: https://www.cysticfibrosis.org.uk/sites/default/files/2020-12/Burkholderia%20cepacia.pdf [Accessed: November 30, 2024].; Zolin A., Bakkeheim E., Van Rens J. et al. ECFSPR 2022 annual data report. 2024. Available at: https://www.ecfs.eu/sites/default/files/Annual%20Report_2022_ECFSPR_20240603.pdf [Accessed: October 1, 2024].; Cystic Fibrosis Foundation. 2023 Patient Registry Annual Data Report. Bethesda, Maryland; 2024. Available at: https://www.cff.org/medical-professionals/patient-registry [Accessed: November 30, 2024].; Регистр больных муковисцидозом в Российской Федерации. 2013 год. М.: Медпрактика-М; 2015. Доступно на: https://mukoviscidoz.org/doc/registr/_Registre_2015%20final.pdf [Дата обращения: 22. 12. 24].; De Soyza A., Ellis C.D., Khan C.M. et al. Burkholderia cenocepacia lipopolysaccharide, lipid A, and proinflammatory activity. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2004; 170 (1): 70–77. DOI:10.1164/rccm.200304-592OC.; Mahenthiralingam E., Urban T.A., Goldberg I.B. The multifarious, multireplicon Burkholderia cepacia complex. Nat. Rev. Microbiol. 2005; 3 (2): 144–156. DOI:10.1038/nrmicro1085.; Sajjan U., Wu Y., Kent G., Forstner J. Preferential adherence of cable-piliated Burkholderia cepacia to respiratory epithelia of CF knockout mice and human cystic fibrosis lung explants. J. Med. Microbiol. 2000; 49 (10): 875–885. DOI:10.1099/0022-1317-49-10-875.; Ferreira A.S., Silva I.N., Oliveira V.H. et al. Insights into the role of extracellular polysaccharides in Burkholderia adaptation to different environments. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2011; 1: 16. DOI:10.3389/fcimb.2011.00016.; Чернуха М.Ю., Данилина Г.А., Алексеева Г.В. и др. Роль регуляторной системы «Quorum sensing» в образовании биопленок бактериями Burkholderia cepacia and Pseudomonas aeruginosa. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2009; 86 (4): 39–43. Доступно на: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13295 [Дата обращения: 30. 10. 24].; TavaresM., KozakM., BalolaA., Sá-Correia I. Burkholderia cepacia complex bacteria: a feared contamination risk in water-based pharmaceutical products. Clin. Microbiol. Rev. 2020; 33 (3): e00139-19. DOI:10.1128/CMR.00139-19.; Jin Y., Zhou J., Zhou J. et al. Genome-based classification of Burkholderia cepacia complex provides new insight into its taxonomic status. Biol. Direct. 2020; 15 (1): 6. DOI:10.1186/s13062-020-0258-5.; Lambiase A., Catania M.R., Del Pezzo M. et al. Achromobacter xylosoxidans respiratory tract infection in cystic fibrosis patients. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2011; 30 (8): 973–980. DOI:10.1007/s10096-011-1182-5.; Воронина О.Л., Кунда М.С., Аксенова Е.И. и др. Экспрессдиагностика микроорганизмов, поражающих дыхательные пути больных муковисцидозом. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; (11): 53–57. Доступно на: https://cyberleninka.ru/article/n/ekspress-diagnostika-mikroorganizmov-porazhayuschihdyhatelnye-puti-bolnyh-mukovistsidozom [Дата обращения: 03. 10. 24].; Аветисян Л.Р., Чернуха М.Ю., Шагинян И.А. и др. Применение современных методов в микробиологической диагностике хронической инфекции легких у больных муковисцидозом. Сибирское медицинское обозрение. 2019; (2): 70–79. DOI:10.20333/2500136-2019-2-70-79.; Аветисян Л.Р., Шагинян И.А., Чернуха М.Ю. и др. Эпидемиологический надзор за хроническими инфекциями легких, вызванными бактериями Burkholderia cepacia complex, бактериями рода Achromobacter, Pseudomonas аeruginosa и метициллинрезистентным Staphylococcus aureus, у больных муковисцидозом. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2020; 19 (1): 14–23. DOI:10.31631/2073-3046-2020-19-1-14-23.; Drevinek P., Baldwin A., Dowson C.G., Mahenthiralingam E. Diversity of the parB and repA genes of the Burkholderia cepacia complex and their utility for rapid identification of Burkholderia cenocepacia. BMC Microbiol. 2008; 8: 44. DOI:10.1186/1471-2180-8-44.; Zlosnik J.E., Zhou G., Brant R. et al. Burkholderia species infections in patients with cystic fibrosis in British Columbia, Canada. 30 years’ experience. Ann. Am. Thorac. Soc. 2015; 12 (1): 70–78. DOI:10.1513/AnnalsATS.201408-395OC.; Geake J.B., Reid D.W., Currie B.J. et al. An international multicentre evalution and description of Burkholderia pseudomallei infection in cystic fibrosis. BMC Pulm. Med. 2015; 15: 116. DOI:10.1186/s12890-015-0109-9.; Воронина О.Л., Рыжова Н.Н., Кунда М.С. и др. Основные тенденции в изменении разнообразия буркхолдерий, инфицирующих российских больных муковисцидозом. Сибирское медицинское обозрение. 2019; (2): 80–88. DOI:10.20333/2500136-2019-2-80-88.; Воронина О.Л., Чернуха М.Ю., Шагинян И.А. и др. Характеристика генотипов штаммов Burkholderia cepacia complex, выделенных от больных в стационарах Российской Федерации. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2013; (2): 22–30. Доступно на: https://cyberleninka.ru/article/n/harakteristikagenotipov-shtammov-burkholderia-cepacia-complex-vydelennyhot-bolnyh-v-statsionarah-rossiyskoy-federatsii [Дата обращения: 03. 10. 24].; Mahenthiralingam E., Vandamme P., Campbell M.E. et al. Infection with Burkholderia cepacia complex genomovars in patients with cystic fibrosis: virulent transmissible strains of genomovar III can replace Burkholderia multivorans. Clin. Infect. Dis. 2001; 33 (9): 1469–1475. DOI:10.1086/322684.; McClean S., Callaghan M. Burkholderia cepacia complex: epithelial cell-pathogen confrontation and potential for therapeutic intervention. J. Med. Microbiol. 2009; 58 (1): 1–12. DOI:10.1099/jmm.0.47788-0.; HøibyN. Cystic fibrosis and endobronchial pseudomonas infection. Curr. Opin. Pediatr. 1993; 5 (3): 247–254. DOI:10.1097/00008480-199306000-00002.; Zhou J., Chen Y., Tabibi S. et al. Antimicrobial susceptibility and synergy studies of Burkholderia cepacia complex isolated from patients with cystic fibrosis. Antimicrob. Agents Chemother. 2007; 51 (3): 1085–1088. DOI:10.1128/AAC.00954-06.; Speert D.P. Advances in Burkholderia cepacia complex. Paediatr. Respir. Rev. 2002; 3 (3): 230–235. DOI:10.1016/s1526-0542(02)00185-9.; Cohen N.R., Lobritz M.A., Collins J.J. Microbial persistence and road to drug resistance. Cell Host Microbe. 2013; 13 (6): 632–642. DOI:10.1016/j.chom.2013.05.009.; Чернуха М.Ю., Аветисян Л.Р., Шагинян И.А. и др. Фенотипические и генотипические особенности штаммов бактерий Burkholderia cepacia complex, выделенных от больных муковисцидозом. Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского. 2014; 93 (4): 24–31. Доступно на: https://pediatriajournal.ru/archive?show=336&section=4016 [Дата обращения: 06. 10. 24].; Labbate M., Case R.J., Stokes H.W. The integron/gene cassette system: an active player in bacterial adaptation. Methods Mol. Biol. 2009; 532: 103–125. DOI:10.1007/978-1-60327-853-9_6.; Coutinho C.P., de Carvalho C.C., Maderia A. et al. Burkholderia cepacia phenotypic clonal variation during a 3,5-year colonization in the lungs of a cystic fibrosis patient. Infect. Immun. 2011; 79 (7): 2950–2960. DOI:10.1128/IAI.01366-10.; Семыкин С.Ю., Постников С.С., Поликарпова С.В. и др. Burkholderia cepacia – новaя угроза для больных муковисцидозом. Детская больница. 2013; (2): 52–55. Доступно на: https://rdkb.ru/files/file2029.pdf [Дата обращения: 14. 11. 24].; Афанасьева М.В., Красовский С.А., Амелина Е.Л. и др. Выживаемость взрослых больных муковисцидозом с хронической инфекцией респираторного тракта, обусловленной микроорганизмами Burkholderia cepacia complex. Практическая пульмонология. 2018; (1): 60–64. Доступно на: https://atmosphere-ph.ru/modules/Magazines/articles//pulmo/pp_1_2018_60.pdf [Дата обращения: 29. 09. 24].; Красовский С.А., Черняк А.В., Амелина Е.Л. и др. Динамика выживаемости больных муковисцидозом в Москве и Московской области за периоды 1992–2001 и 2002–2011 гг. Пульмонология. 2012; (3): 79–86. DOI:10.18093/0869-0189-2012-0-3-79-86.; Navarro J., Rainisio M., Harms H.K. et al. Factors associated with poor pulmonary function: cross-sectional analysis of data from the ERCF. Eur. Respir. J. 2001; 18 (2): 298–305. DOI:10.1183/09031936.01.00068901.; Blanchard A.C., Tang L., Tadros M. et al. Burkholderia cenocepacia ET12 transmission in adults with cystic fibrosis. Thorax. 2020; 75 (1): 88–90. DOI:10.1136/thoraxjnl-2019-214098.; Somayaji R., Yau Y., Tullis E. et al. Clinical outcomes associated with Burkholderia cepacia complex infection in patients with cystic fibrosis. Ann. Am. Thorac. Soc. 2020; 17 (12): 1542–1548. DOI:10.1513/AnnalsATS.202003-204OC.; Ledson M.J., Gallagher M.J., Corkill J.E. et al. Cross infection between cystic fibrosis patients colonised with Burkholderia cepacia. Thorax. 1998; 53 (5): 432–436. DOI:10.1136/thx.53.5.432.; Lipuma J.J. The changing microbial epidemiology in cystic fibrosis. Clin. Microbiol. Rev. 2010; 23 (2): 299–323. DOI:10.1128/CMR.00068-09.; Blackburn L., Brownlee K., Conway S.P., Denton M. “Cepacia syndrome” with Burkholderia multivorans, 9 years after initial colonization. J. Cyst. Fibros. 2004; 3 (2): 133–134. DOI:10.1016/j.jcf.2004.03.007.; Daccò V., Alicandro G., Consales A. et al. Cepacia syndrome in cystic fibrosis : a systematic review of the literature and possible new perspectives in treatment. Pediatr. Pulmonol. 2023; 58 (5): 1337–1343. DOI:10.1002/ppul.26359.; Regan K.H., Bhatt J. Eradication therapy for Burkholderia cepacia complex in people with cystic fibrosis. Cochrane Database Syst. Rev. 2019; 4 (4): CD009876. DOI:10.1002/14651858.CD009876.pub4.; Horsley A., Webb K., Bright-Thomas R. et al. Can early Burkholderia cepacia complex infection in cystic fibrosis be eradicated with antibiotic therapy? Front. Cell. Infect. Microbiol. 2011; 1: 18. DOI:10.3389/fcimb.2011.00018.; Folescu T.W., da Costa C.H., Cohen R.W. et al. Burkholderia cepacia complex: clinical course in cystic fibrosis patients. BMC Pulm. Med. 2015; 15: 158. DOI:10.1186/s12890-015-0148-2.; Frost F., Shaw M., Nazareth D. Antibiotic therapy for chronic infection with Burkholderia cepacian complex in people with cystic fibrosis. Cochrane Database Syst. Rev. 2021; 12 (12): CD013079. DOI:10.1002/14651858.CD013079.pub3.; Uluer A.Z., Waltz D.A., Kalish L.A. et al. Inhaled amiloride and tobramycin solutions fail to eradicate Burkholderia dolosa in patients with cystic fibrosis. J. Cyst. Fibros. 2013; 12 (1): 54–59. DOI:10.1016/j.jcf.2012.06.006.; Zeiser E.T., Becka S.A., Wilson B.M. et al. “Switching Partners”: piperacillin-avibactam is a highly potent combination against multidrug-resistant Burkholderia cepacia complex and Burkholderia gladioli cystic fibrosis isolates. J. Clin. Microbiol. 2019; 57 (8): e00181-19. DOI:10.1128/JCM.00181-19.; Becka S.A., Zeiser E.T., LiPuma J.J., Papp-Wallace K.M. Activity of imipenem-relebactam against multidrug- and extensively drug-resistant Burkholderia cepacia complex and Burkholderia gladioli. Antimicrob. Agents. Chemother. 2021; 65 (11): e0133221. DOI:10.1128/AAC.01332-21.; Mojica M.F., Zeiser E.T., Becka S.A. et al. Examining the activity of cefepime-taniborbactam against Burkholderia cepacia complex and Burkholderia gladioli isolated from cystic fibrosis patients in the United States. Antimicrob. Agents Chemother. 2023; 67 (11): e0049823. DOI:10.1128/aac.00498-23.; Skurnik D., Davis M.R. Jr, Benedetti D. et al. Targeting pan-resistant bacteria with antibodies to a broadly conserved surface polysaccharide expressed during infection. J. Infect. dis. 2012; 205 (11): 1709–1718. DOI:10.1093/infdis/jis254.; Lauman P., Dennis J.J. Advances in phage therapy: targeting the Burkholderia cepacia. Viruses. 2021; 13 (7): 1331. DOI:10.3390/v13071331.; Kamal F., Dennis J.J. Burkholderia cepacia complex phageantibiotic synergy (PAS): Antibiotics stimulate lytic phage activity. Appl. Environ. Microbiol. 2015; 81 (3): 1132–1138. DOI:10.1128/AEM.02850-14.; Aslam S., Courtwiright A.M., Koval C.E. et al. Early clinical experience of bacteriophage therapy in 3 lung transplant recipients. Am. J. Transplant. 2019; 19 (9): 2631–2639. DOI:10.1111/ajt.15503.; Roda J., Pinto-Silva C., Silva I.A.I. et al. New drugs in cystic fibrosis: what has changed in the last decade? Ther. Adv. Chronic. Dis. 2022; 13: 20406223221098136. DOI:10.1177/20406223221098136.; Taylor-Cousar J.L., Mall M.A., Ramsey B.W. et al. Clinical devel-opment of triple-combination CFTR modulators for cystic fibrosis patients with one or two F508del alleles. ERJ Open Res. 2019; 5 (2): 00082-2019. DOI:10.1183/23120541.00082-2019.; Nichols D.P., Morgan S.J., Skalland M. et al. Pharmacologic improvement of CFTR function rapidly decreases sputum pathogen density, but lung infections generally persist. J. Clin. Invest. 2023; 133 (10): e167957. DOI:10.1172/JCI167957.; Bower J.K., Volkova N., Ahluwalia N. et al. Real-world safety and effectiveness of elexacaftor/tezacaftor/ivacaftor in people with cystic fibrosis: Interim results of a long-term registry-based study. J. Cyst. Fibros. 2023; 22 (4): 730–737. DOI:10.1016/j.jcf.2023.03.002.; Gilchrist F.J., Webb A.K., Bright-Thomas R.J., Jones A.M. Successful treatment of cepacia syndrome with a combination of intravenous cyclosporin, antibiotics and oral corticosteroids. J. Cyst. Fibros. 2012; 11 (5): 458–460. DOI:10.1016/j.jcf.2012.04.002.; Etherington C., Peckham D.G., Conway S.P., Denton M. Burkholderia cepacia complex infection in adults with cystic fibrosis – is early eradication possible? J. Cyst. Fibrosis. 2003; 2 (4): 220–221. DOI:10.1016/S1569-1993(03)00096-1.; Tewkesbury D.H., Pollard L.R., Green H.D. et al. When is Burkholderia cepacia complex truly eradicated in adults with cystic fibrosis? A 20-year follow up study. J. Cyst. Fibros. 2024; 23 (1): 87–90. DOI:10.1016/j.jcf.2023.09.016.; Radhakrishna N., Morton J. Burkholderia pseudomallei in cystic fibrosis and treatment complications. Respirol. Case Rep. 2015; 3 (1): 1–2. DOI:10.1002/rcr2.86.; Murray S., Charbeneau J., Marshall B.C., LiPuma J.J. Impact of Burkholderia infection on lung transplantation in cystic fibrosis. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2008; 178 (4): 363–371. DOI:10.1164/rccm.200712-1834OC.; Stephenson A.L., Sykes J., Berthiaume Y. et al. Clinical and demographic factors associated with post-lung transplantation survival in individuals with cystic fibrosis. J. Heart Lung Transplant. 2015; 34 (9): 1139–1145. DOI:10.1016/j.healun.2015.05.003.; Aris R.M., Routh J.C., LiPuma J.J. et al. Burkholderia cepacia complex in cystic fibrosis patients after lung transplantation: survival linked to genomovar type. Am. J. Respir. Crit .Care Med. 2001; 164 (11): 2102–2106. DOI:10.1164/ajrccm.164.11.2107022.; Готье С.В., Головинский С.В., Попцов В.Н. и др. Трансплантация легких при муковисцидозе с хроническим инфицированием дыхательных путей Burkholderia cepacia (первое наблюдение в Российской Федерации). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2016; 18 (2): 110–116. DOI:10.15825/1995-1191-2016-2-110-116.; De Soyza A., Meachery G., Hester K.L. et al. Lung transplantation for patients with cystic fibro sis and Burkholderia cepacia complex infection: a single-center experience. J. Heart Lung Transplant. 2010; 29 (12): 1395–1404. DOI:10.1016/j.healun.2010.06.007.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4680

Availability: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/4680
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2025-35-2-241-253

View record from BASE

3

Academic Journal

Особливості цитокінової регуляції при мультирезистентному туберкульозі залежно від ступеня ендогенної інтоксикації

Authors: Todoriko, L.D., Yeremenchuk, I.V.

Source: Aktualʹnaâ Infektologiâ, Vol 4, Iss 1.10, Pp 59-65 (2016)
ACTUAL INFECTOLOGY; № 1.10 (2016); 59-65
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; № 1.10 (2016); 59-65
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; № 1.10 (2016): Журнал "Актуальна інфектологія"; 59-65

Subject Terms: endogenous intoxication, туберкульоз, мультирезистентність, інтерлейкіни, ендогенна інтоксикація, 0102 computer and information sciences, 02 engineering and technology, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, туберкулез, мультирезистентность, интерлейкины, эндогенная интоксикация, multidrug-resistance, 01 natural sciences, 3. Good health, interleukins, tuberculosis, 0202 electrical engineering, electronic engineering, information engineering

File Description: application/pdf

Access URL: http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/74547/119993
https://doaj.org/article/734783f006454d85b47692e17b5ba061
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/74547
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/74547/119993
https://core.ac.uk/display/87776647
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/74547

View record at OpenAIRE Full Text Finder

4

Report

РОЛЬ МУЛЬТИРЕЗИСТЕНТНЫХ ACINETOBACTER BAUMANNII В СТРУКТУРЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ВЕНТИЛЯТОРАССОЦИИРОВАННЫХ ПНЕВМОНИЙ В ОРИТ: ФАКТОРЫ РИСКА И ИСХОДЫ

Subject Terms: Acinetobacter baumannii, нозокомиальные инфекции, antibiotic resistance, клинические исходы, gramnegative bacteria, infectious, факторы риска, вентилятор-ассоциированная пневмония (ВАП), грамотрицательные бактерии, инфекционный контроль, мультирезистентность, clinical outcomes, антибиотикорезистентность, отделение реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ), multidrug resistance, ventilator-associated pneumonia (VAP), nosocomial infections, risk factors, intensive care unit (ICU)

5

Academic Journal

Spesific characteristics of tuberculosis epidemic at the present stage (litereture review)

Source: Bukovinian Medical Herald; Vol. 14 No. 4 (56) (2010); 171-174
Буковинский медицинский вестник; Том 14 № 4 (56) (2010); 171-174
Буковинський медичний вісник; Том 14 № 4 (56) (2010); 171-174

Subject Terms: вперше діагностований туберкульоз, мультирезистентність мікобактерій туберкульозу, хіміорезистентність, впервые диагностированный туберкулез, мультирезистентность микобактерий туберкулеза, химиорезистентность, newly diagnosed tuberculosis, multiresistance tuberculous mycobacteria, chemoresistance, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://e-bmv.bsmu.edu.ua/article/view/241676

View record at OpenAIRE

6

Academic Journal

Candida auris: Problems in Diagnostics and Management ; Candida auris: проблемы диагностики и лечения

Authors: Artem A. Ivanov, Tatiana V. Kulichenko, А. А. Иванов, Т. В. Куличенко

Contributors: Not specified., Не указан.

Source: Current Pediatrics; Том 19, № 1 (2020); 20-25 ; Вопросы современной педиатрии; Том 19, № 1 (2020); 20-25 ; 1682-5535 ; 1682-5527

Subject Terms: эпидемиология, fungal infection, drug resistance, multi-drug resistance, multi-drug resistance microorganism, antimycotic medications, infection prevention, epidemiology, грибковая инфекция, лекарственная устойчивость, мультирезистентность, мультирезистентный микроорганизм, противогрибковые препараты, профилактика инфекций

File Description: application/pdf

Relation: https://vsp.spr-journal.ru/jour/article/view/2302/925; Global Action Fund for Fungal Infections [Internet], Global Action Fund for Fungal Infection. Improving outcomes for patients with fungal infections across the world: a roadmap for the next decade [cited 2017 April 5]. Available from: http://gaffi.org/wp-content/uploads/GAFFI_Road_Map_interactive-final0415.pdf.; Tudela JL, Denning DW. Recovery from serious fungal infections should be realisable for everyone. Lancet Infect Dis. 2017;17(11):1111-1113. doi:10.1016/S1473-3099(17)30319-5.; Brown GD, Denning DW, Gow NA, et al. Hidden killers: human fungal infections. Sci Transl Med. 2012;4(156):165rv13. doi:10.1126/scitranslmed.3004404.; Pappas PG, Lionakis MS, Arendrup MC, et al. Invasive candidiasis. Nat Rev Dis Primers. 2018;4:18026. doi:10.1038/nrdp.2018.26.; Pfaller MA. Epidemiology of nosocomial candidiasis: the importance of molecular typing. Braz J Infect Dis. 2000;4:161-167.; Satoh K, Makimura K, Hasumi Y et al. Candida auris sp. nov., a novel ascomycetous yeast isolated from the external ear canal of an inpatient in a Japanese hospital. Microbiol Immunol. 2009;53(1):41-44. doi:10.1111/j.1348-0421.2008.00083.; Kim MN, Shin JH, Sung H, et al. Candida haemulonii and closely related species at 5 university hospitals in Korea: identification, antifungal susceptibility, and clinical features. Clin Infect Dis. 2009;48(6):e57-e61. doi:10.1086/597108.; Lee WG, Shin JH, Uh Y, et al. First three reported cases of nosocomial fungemia caused by Candida auris. J Clin Microbiol. 2011;49(9):3139-3142. doi:10.1128/JCM.00319-11.; Cortegiani A, Misseri G, Fasciana T, et al. Epidemiology, clinical characteristics, resistance, and treatment of infections by Candida auris. J Intensive Care. 2018;6(69). doi:10.1186/s40560-018-0342-4.; Jeffery-Smith A, Taori SK, Schelenz S, et al. Candida auris: a review of the literature. Clin Microbiol Rev. 2017;31(1):e00029-17. doi:10.1128/CMR.00029-17.; Lockhart SR, Etienne KA, Vallabhaneni S, et al. Simultaneous emergence of multidrug-resistant Candida auris on 3 continents Confirmed by whole-genome sequencing and epidemiological analyses. Clin Infect Dis. 2017;64(2):134-140. doi:10.1093/cid/ciw691.; Ruiz-Gaitan A, Moret AM, Tasias-Pitarch M, et al. An outbreak due to Candida auris with prolonged colonization and candidaemia in a tertiary care European hospital. Mycoses. 2018;61:498-505. doi:10.1111/myc.12781.; Kwon YJ, Shin JH, Byun SA, et al. Candida auris clinical isolates from south Korea: identification, antifungal susceptibility, and genotyping. J Clin Microbiol. 2019;57(4):e01624-18. doi:10.1128/JCM.01624-18.; Kean R, Ramage G. Combined antifungal resistance and biofilm tolerance: the global threat of Candida auris. mSphere. 2019;4(4):e00458-19. doi:10.1128/mSphere.00458-19.; Centers for Disease Control and Prevention [Internet], Antibiotic Resistance Threat Report [cited 2019 Novemder 13]. Available from: https://www.cdc.gov/drugresistance/pdf/threats-report/2019-ar-threats-report-508.pdf.; Munoz JF, Gade L, Chow NA, et al. Genomic insights into multidrug-resistance, mating and virulence in Candida auris and related emerging species. Nat Commun. 2018;9(1):5346. doi:10.1038/s41467-018-07779-6.; Ben-Ami R, Berman J, Novikov A, et al. Multidrug-Resistant, Candida haemulonii and C. auris, Tel Aviv, Israel. Emerg Infect Dis. 2017;23:195-203. doi:10.3201/eid2302.161486.; Rudramurthy SM, Chakrabarti A, Paul RA, et al. Candida auris candidaemia in Indian ICUs: analysis of risk factors. J Antimicrob Chemother. 2017;72(6):1794-1801. doi:10.1093/jac/dkx034.; Sarma S, Upadhyay S. Current perspective on emergence, diagnosis and drug resistance in Candida auris. Infect Drug Resist. 2017;10:155-165. doi:10.2147/IDR.S116229.; Osei Sekyere J. Candida auris: a systematic review and metaanalysis of current updates on an emerging multidrug-resistant pathogen [published correction appears in Microbiologyopen. 2019;8(8):e00901]. Microbiologyopen. 2018;7(4):e00578. doi:10.1002/mbo3.578.; Vasilyeva N, Kruglov A, Pchelin I, et al. The first Russian case of candidaemia due to Candida auris. 28th European Conference of Clinical Microbiology and Infectious Diseases (ECCMID), Madrid, Spain 21-24 April 2018.; Kohlenberg A, Struelens MJ, Monnet DL, et al.; The Candida Auris Survey Collaborative Group. Candida auris: epidemiological situation, laboratory capacity and preparedness in European Union and European Economic Area countries, 2013 to 2017. Euro Surveill. 2018;23(13):18-00136. doi:10.2807/1560-7917.ES.2018.23.13.18-00136.; Centers for Disease Control and Prevention [Internet], CDC report of Tracking Candida auris [cited 2019 December 11]. Available from: https://www.cdc.gov/fungal/diseases/candidiasis/tracking-c-auris.html.; Chowdhary A, Voss A, Meis JF. Multidrug-resistant Candida auris: ‘new kid on the block' in hospital-associated infections. J Hosp Infect. 2016;94(3):209-212. doi:10.1016/j.jhin.2016.08.004.; De Cassia Orlandi Sardi J, Silva DR, Soares Mendes-Giannini MJ, et al. Candida auris: epidemiology, risk factors, virulence, resistance, and therapeutic options. Microb Pathog. 2018;125:116-121. doi:10.1016/j.micpath.2018.09.014.; Schelenz S, Hagen F, Rhodes JL, et al. First hospital outbreak of the globally emerging Candida auris in a European hospital. Antimicrob Resist Infect Control. 2016;5(35). doi:10.1186/s13756-016-0132-5.; Welsh RM, Bentz ML, Shams A, et al. Survival, persistence, and isolation of the emerging multidrug-resistant pathogenic yeast Candida auris on a plastic health care surface. J Clin Microbiol. 2017;55(10):2996-3005. doi:10.1128/JCM.00921-17.; Vallabhaneni S, Kallen A, Tsay S, et al. Investigation of the first seven reported cases of Candida auris, a globally emerging invasive, multidrug-resistant fungus — United States, May 2013 — August 2016. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 2016;65(44): 1234-1237. doi:10.15585/mmwr.mm6544e1.; Sarma S, Kumar N, Sharma S, et al. Candidemia caused by amphotericin B and fluconazole resistant Candida auris. Indian J Med Microbiol. 2013;31(1):90-91. doi:10.4103/0255-0857.108746.; Borman AM, Szekely A, Johnson EM. Comparative pathogenicity of United Kingdom isolates of the emerging pathogen Candida auris and other key pathogenic Candida species. mSphere. 2016;1(4):e00189-16. doi:10.1128/mSphere.00189-16.; Kumar D, Banerjee T, Pratap CB, Tilak R. Itraconazole-resistant Candida auris with phospholipase, proteinase and hemolysin activity from a case of vulvovaginitis. J Infect Dev Ctries. 2015;9: 435-437. doi:10.3855/jidc.4582.; Larkin E, Hager C, Chandra J, et al. The emerging pathogen Candida auris: growth phenotype, virulence factors, activity of anti-fungals, and effect of SCY-078, a novel glucan synthesis inhibitor, on growth morphology and biofilm formation. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(5):e02396-16. doi:10.1128/AAC.02396-16.; Sherry L, Ramage G, Kean R, et al. Biofilm-forming capability of highly virulent, multidrug-resistant Candida auris. Emerg Infect Dis. 2017;23(2):328-331. doi:10.3201/eid2302.161320.; Schwartz IS, Hammond GW. First reported case of multidrug-resistant Candida auris in Canada. Can Commun Dis Rep. 2017;43(7/8):150-153. doi:10.14745/ccdr.v43i78a02.; Centers for Disease Control and Prevention [Internet], Identification of Candida auris [cited 2019 October 16]. Available from: https://www.cdc.gov/fungal/candida-auris/recommendations.html.; Mizusawa M, Miller H, Green R, et al. Can multidrug-resistant Candida auris be reliably identified in clinical microbiology laboratories? J Clin Microbiol. 2017;55(2):638-640. doi:10.1128/JCM.02202-16.; Snayd M, Dias F, Ryan RW, et al. Misidentification of Candida auris by RapID yeast plus, a commercial, biochemical enzyme-based manual rapid identification system. J Clin Microbiol. 2018; 56(5):e00080-18. doi:10.1128/JCM.00080-18.; Kumar A, Sachu A, Mohan K, et al. Simple low cost differentiation of Candida auris from Candida haemulonii complex using CHROMagar Candida medium supplemented with Pal's medium. Revista Iberoamericana de Micologia. 2017;34(2):109-111. doi:10.1016/j.riam.2016.11.004.; Centers for Disease Control and Prevention [Internet], Algorithm to identify Candida auris based on phenotypic laboratory method and initial species identification [cited 2019 October 11]. Available from: https://www.cdc.gov/fungal/candida-auris/pdf/Testing-algorithm_by-Method_508.pdf.; Kordalewska M, Zhao Y, Lockhart SR, et al. Rapid and accurate molecular identification of the emerging multidrug-resistant pathogen Candida auris. J Clin Microbiol. 2017;55(8):2445-2452. doi:10.1128/JCM.00630-17.; Chowdhary A, Prakash A, Sharma C, et al. A multicentre study of antifungal susceptibility patterns among 350 Candida auris isolates (2009-2017) in India: role of the ERG11 and FKS1 genes in azole and echinocandin resistance. J Antimicrob Chemother. 2018;73(4):891-899. doi:10.1093/jac/dkx480.; Rybak JM, Doorley LA, Nishimoto AT, et al. Abrogation of triazole resistance upon deletion of CDR1 in a clinical isolate of Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2019;63(4):e00057-19. doi:10.1128/AAC.00057-19.; Cowen LE, Sanglard D, Howard SJ, et al. Mechanisms of antifungal drug resistance. Cold Spring Harb Perspect Med. 2014;5(4):a019752. doi:10.1101/cshperspect.a019752.; Escandon P Chow NA, Caceres DH, et al. Molecular epidemiology of Candida auris in Colombia reveals a highly related, countrywide colonization with regional patterns in amphotericin B resistance. Clin Infect Dis. 2019;68(1):15-21. doi:10.1093/cid/ciy411.; Kordalewska M, Lee A, Park S, et al. Understanding echinocandin resistance in the emerging pathogen Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(6):e00238-18. doi:10.1128/AAC.00238-18.; Fakhim H, Chowdhary A, Prakash A, et al. In vitro interactions of echinocandins with triazoles against multidrug-resistant Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(11):e01056-17. doi:10.1128/AAC.01056-17.; Basso V, Garcia A, Tran DQ, et al. Fungicidal potency and mechanisms of 0-defensins against multidrug-resistant Candida species. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(6):e00111-18. doi:10.1128/AAC.00111-18.; Berkow EL, Angulo D, Lockhart SR. In vitro activity of a novel glucan synthase inhibitor, SCY-078, against clinical isolates of Candida auris. Antimicrob Agents Chemother. 2017;61(7):e00435-17. doi:10.1128/AAC.00435-17.; Berkow EL, Lockhart SR. Activity of CD101, a long-acting echinocandin, against clinical isolates of Candida auris. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018;90(3):196-197. doi:10.1016/j.diagmicrobio.2017.10.021.; Zhao M, Lepak AJ, VanScoy B, et al. In vivo pharmacokinetics and pharmacodynamics of APX001 against Candida spp. in a neutropenic disseminated candidiasis mouse model. Antimicrob Agents Chemother. 2018;62(4):e02542-17. doi:10.1128/AAC.02542-17.; Centers for Disease Control and Prevention [Internet], Infection Prevention and Control for Candida auris [cited 2018 December 21]. Available from: https://www.cdc.gov/fungal/candida-auris/c-auris-infection-control.html.; Cadnum JL, Shaikh AA, Piedrahita CT, et al. Relative resistance of the emerging fungal pathogen Candida auris and other Candida species to killing by ultraviolet light. Infect Control Hosp Epidemiol. 2018;39(1):94-96. doi:10.1017/ice.2017.239.; Abdolrasouli A, Armstrong-James D, Ryan L, Schelenz S. In vitro efficacy of disinfectants utilised for skin decolonisation and en-vironmental decontamination during a hospital outbreak with Candida auris. Mycoses. 2017;60(11):758-763. doi:10.1111/myc.12699.

Availability: https://vsp.spr-journal.ru/jour/article/view/2302
https://doi.org/10.15690/vsp.v19i1.2081

View record from BASE

7

Academic Journal

The synthesis and the study of antimicrobial properties of 5-r,r’-aminometylene derivatives of thiazolidine-2,4-dione and 4-thioxothiazolidine-2-one

Authors: Derkach, G. О., Golota, S. М., Zasidko, V. V., Soronovych, I. І., Kutsyk, R. V., Lesyk, R. B.

Source: Журнал органічної та фармацевтичної хімії; Том 14, № 3(55) (2016): Журнал органічної та фармацевтичної хімії; 32-37
Žurnal organìčnoï ta farmacevtičnoï hìmìï; Том 14, № 3(55) (2016): Žurnal organìčnoï ta farmacevtičnoï hìmìï; 32-37
Журнал органической и фармацевтической химии; Том 14, № 3(55) (2016): Журнал органической и фармацевтической химии; 32-37

Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, 4-тиазолидин(ти)оны, 5-аминометиленпроизводные, мультирезистентность, противомикробная активность, UDC 616-093 + 547.789, 4-тіазолідин(ті)они, 5-амінометиленпохідні, мультирезистентність, антимікробна активність, 4-thiazolidin(thi)one, 5-aminomethylene derivatives, multiresistance, antimicrobial activity, УДК 616-093 + 547.789, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: http://ophcj.nuph.edu.ua/article/download/ophcj.16.898/86058
http://ophcj.nuph.edu.ua/article/view/ophcj.16.898

View record at OpenAIRE

8

Academic Journal

Current approaches to the treatment of complicated pyelonephritis: protected cephalosporin use, including the combination of ceftriaxone/sulbactam

Authors: Dombrovskyi, Ya.A., Ivanova, M.D.

Source: Počki, Vol 5, Iss 1.11, Pp 7-11 (2015)
Počki, Vol 4, Iss 1.11, Pp 7-11 (2015)
KIDNEYS; № 1.11 (2015); 7-11
Почки-Počki; № 1.11 (2015); 7-11
Нирки-Počki; № 1.11 (2015); 7-11

Subject Terms: ceftriaxone, sulbactam, urinary tract infections, pyelonephritis, multi-drug resistance, інфекції сечової системи, пієлонефрит, мультирезистентність, цефтриаксон, сульбактам, RC870-923, инфекции мочевой системы, пиелонефрит, мультирезистентность, Diseases of the genitourinary system. Urology, 3. Good health

File Description: application/pdf

Access URL: https://doaj.org/article/a0ae8992403f4b8099991efa67c59fab
https://doaj.org/article/f7e831df47804fafa4fa5fcaafe306f0
https://core.ac.uk/display/87760077
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/75387
https://doaj.org/article/f7e831df47804fafa4fa5fcaafe306f0
http://kidneys.zaslavsky.com.ua/article/view/75387

View record at OpenAIRE Full Text Finder

9

Academic Journal

IMPACT OF BEDAQUILINE ON THE EFFICIENCY OF COMPREHENSIVE THERAPY OF RESPIRATORY TUBERCULOSIS ; ВЛИЯНИЕ БЕДАКВИЛИНА НА ЭФФЕКТИВНОСТЬ КОМПЛЕКСНОЙ ТЕРАПИИ ТУБЕРКУЛЕЗА ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ

Authors: M. N. Kondakova, V. V. Khabirov, V. F. Zhemkov, L. R. Shpakovskaya, A. V. Daynovets, A. V. Elkin, М. Н. Кондакова, В. В. Хабиров, В. Ф. Жемков, Л. Р. Шпаковская, А. В. Дайновец, А. В. Елькин

Source: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 96, № 6 (2018); 39-43 ; Туберкулез и болезни легких; Том 96, № 6 (2018); 39-43 ; 2542-1506 ; 2075-1230

Subject Terms: мультирезистентность, respiratory tuberculosis, drug resistance, tuberculous mycobacteria, multiple resistance, туберкулез органов дыхания, лекарственная устойчивость, микобактерии туберкулеза

File Description: application/pdf

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1134/1136; Жукова Е. М., Колпакова Т. А., Мышкова Е. П., Рейхруд Т. А. Опыт применения бедаквилина в комплексном лечении больного туберкулезом легких с широкой лекарственной устойчивостью M. tuberculosis // Туб. и болезни легких. ‒ 2016. ‒ № 10. С. 62-66.; Кофанов Ю. В., Докторова Н. П. Использование нового препарата «Бедаквилин» в терапии лекарственно-устойчивого туберкулеза (клиническая демонстрация) // Бюллетень медицинских интернет-конференций. ‒ 2015. ‒ Т. 5, № 5. ‒ [Режим доступа]: http://medconfer.com/node/5100; Морозова Т. И., Отпущенникова О. Н., Докторова Н. П., Данилов А. Н. Опыт применения препарата бедаквилин в лечении больных туберкулезом легких с лекарственной устойчивостью возбудителя // Туб. и болезни легких. ‒ 2016. ‒ № 2. ‒ С. 29-35.; Приказ Минздрава РФ № 951 от 29 декабря 2014 г. «Об утверждении методических рекомендаций по совершенствованию диагностики и лечения туберкулеза органов дыхания»; «Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза органов дыхания с множественной и широкой лекарственной устойчивостью возбудителя» (Васильева И.А., Аксенова В.А., Эргешов А.Э., Марьяндышев А.О., Самойлова А.Г., Багдасарян Т.Р., Комиссарова О.Г., Ловачева О.В., Перфильев А.В., Карпина Н.Л. и др.) Москва, ООО Нью-Терра, 2014, 52 с.

Availability: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1134
https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-6-39-43

View record from BASE

10

Academic Journal

EPIDEMIC SITUATION AND TREATMENT PROSPECTS OF MULTIPLE RESISTANT TUBERCULOSIS IN KANTY-MANSIYSKY AUTONOMOUS REGION ; ЭПИДЕМИЧЕСКАЯ СИТУАЦИЯ И ПЕРСПЕКТИВЫ ЛЕЧЕНИЯ МУЛЬТИРЕЗИСТЕНТНОГО ТУБЕРКУЛЕЗА В ХАНТЫ-МАНСИЙСКОМ АВТОНОМНОМ ОКРУГЕ

Authors: E. S. Ershovа, M. V. Pаvlovа, A. V. Vlаdimirov, E. A. Revyakin, Е. С. Ершова, М. В. Павлова, А. В. Владимиров, Е. А. Ревякин

Source: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 96, № 4 (2018); 5-11 ; Туберкулез и болезни легких; Том 96, № 4 (2018); 5-11 ; 2542-1506 ; 2075-1230

Subject Terms: перхлозон, incidence of tuberculosis, multiple drug resistance, tuberculous mycobacteria, treatment efficiency, bedaquiline, perhloson, заболеваемость туберкулезом, мультирезистентность микобактерий туберкулеза, эффективность лечения, бедаквилин

File Description: application/pdf

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1107/1109; Васильева И. А., Борисов С. Е., Сон И. М. и др. Туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя // Туберкулез в Российской федерации, 2012/2013/2014 гг. Аналитический обзор статистических показателей, используемых в Российской Федерации и в мире. – М., 2015. – С. 196-223.; Владимиров А. В. Результативность лечения вновь выявленных больных туберкулезом органов дыхания как фактор снижения заболеваемости в территориях Ханты-Мансийского автономного округа – Югры // Уральский мед. журнал. – 2008. – № 13. – С. 89-93.; Габбасова Л. А., Касаева Т. Ч., Стерликов С. А., Нечаева О. Б. и др. Отраслевые и экономические показатели противотуберкулезной работы в 2009–2014гг. Методика расчета показателей и статистические мате- риалы по результатам пятилетнего наблюдения. – М.: РИО ЦНИИОИЗ, 2015. – 68 с.; Габбасова Л. А., Касаева Т. Ч., Стерликов С. А. и др. Отраслевые и экономические показатели противотуберкулезной работы в 2014– 2015 гг. Аналитический обзор основных показателей и статистические материалы / под ред. С. А. Стерликова – М.: РИО ЦНИИОИЗ, 2016. – 89 с.; Казенный Б. Я., Казенный А. Б., Кирьянова Е. В. и др. Влияние эффективного лечения впервые выявленных больных туберкулезом легких и больных туберкулезом с множественной лекарственной устойчивостью на формирование резервуара туберкулезной инфекции в Орловской области // МедАльянс. – 2013. – № 3. – С. 53-61.; Нечаева О. Б. Предварительные результаты эпидемиологических показателей по туберкулезу за 2016 г. // ЦНИИОИЗ [Электронный документ] – www.mednet.ru; Нечаева О. Б., Сон И. М., Габбасова Л. А., Ерохин В. В. и др. Туберкулез в Российской Федерации 2011г. Аналитический обзор статистических показателей, используемых в Российской Федерации и в мире. – М., 2013. – 280 с.; Подгаева В.А. Эпидемическая ситуация по туберкулезу и деятельность противотуберкулезной службы на Урале. Статистические материалы за 2011, 2012, 2013, 2014, 2015, 2016 гг. / под ред. д.м.н. С. Н. Скорнякова. – Екатеринбург, 2017. [Электронный ресурс]. – http://urniif.ru/science/statistics/; The global plan to stop TB 2011-2015: transforming the fight towards elimination of tuberculosis. WHO, 2010.; The Global Tuberculosis Report 2015, WHO.; Roadmap to prevent and combat drug-resistant tuberculosis. The Consolidated Action Plan to Prevent and Combat Multidrug- and Extensively Drug-Resistant Tuberculosis in the WHO European Region, 2011-2015., WHO, 2011. – 103 р.

Availability: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1107
https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-4-5-11

View record from BASE

11

Academic Journal

PREVALENCE OF DRUG RESISTANCE TO FIRST LINE DRUGS AMONG TUBERCULOSIS PATIENTS IN ASTANA ; РАСПРОСТРАНЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЯ С УСТОЙЧИВОСТЬЮ К ПРЕПАРАТАМ ПЕРВОГО РЯДА СРЕДИ БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ В Г. АСТАНЕ

Authors: Z. K. Rakisheva, G. S. Balasanyants, A. S. Akisheva, A. B. Tsepke, N. S. Solovieva, Ж. К. Ракишева, Г. С. Баласанянц, А. С. Акишева, А. Б. Цепке, Н. С. Соловьева

Source: Tuberculosis and Lung Diseases; Том 96, № 8 (2018); 50-54 ; Туберкулез и болезни легких; Том 96, № 8 (2018); 50-54 ; 2542-1506 ; 2075-1230

Subject Terms: противотуберкулезные препараты первого ряда, multiple resistance, polyresistance, first line anti-tuberculosis drugs, мультирезистентность, полирезистентность

File Description: application/pdf

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1165/1167; Al-Mutairi N. M., Ahmad S., Mokaddas E. Molecular screening versus phenotypic susceptibility testing of multidrug-resistant mycobacterium tuberculosis Isolates for streptomycin and ethambutol // Microb. Drug. Resist. – 2018. – Jan. 16. https://doi.org/10.1089/mdr.2017.0294; Asaad A. M., Alqahtani J. M. Primary anti-tuberculous drugs resistance of pulmonary tuberculosis in southwestern Saudi Arabia // J. Infect. Public Health. – 2012. – Vol. 5, № 4. – P. 281-285.; Cambau E., Viveiros M., Machado D., Raskine L., Ritter C., Tortoli E., Matthys V., Hoffner S., Richter E., Del Molino M. P., Cirillo D. M. Revisiting susceptibility testing in MDR-TB by a standardized quantitative phenotypic assessment in a European multicentre study // J. Antimicrob. Chemother. – 2015. – Vol. 70, № 3. – P. 686-696.; Kim H. W., Kim J. S. Treatment of latent tuberculosis infection and its clinical efficacy // Tuberc. Respir. Dis. (Seoul). – 2018. – Vol. 81, № 1. – Р. 6-12.; Kuo C. Y., Wang W. H., Huang C. H., Chen Y. H., Lu P. L. Resistance to first- and second-line antituberculosis drugs in Southern Taiwan: Implications for empirical treatment // J. Microbiol. Immunol. Infect. – 2017. – Vol. 17. – Р. S1684-S1182.; Meyssonnier V., van Bu Th., Veziris N. et al. Rifampicin mono-resistant tuberculosis in France: a 2005-2010 retrospective cohort analysis // DVC Infect. Dis. – 2014. – Vol. 14. – Р. 18.; Migliori G. B., Zellweger J. P., Abubakar I. et al. European Union standards for tuberculosis care // Eur Respir J. – 2012. – Vol. 39, № 4. – Р. 807-819.; National Institute for Health and Clinical Excellence (NICE) Tuberculosis (NICE guideline 33) // London: NICE, 2016; The end TB strategy: global strategy and targets for tuberculosis prevention, care and control after 2015 // Geneva, World Health Organization, 2014.; World Health Organization. Guidelines for surveillance of drug resistance in tuberculosis.5th ed. // Geneva: WHO, 2015.; World Health Organization. Treatment guidelines for drug-resistant tuberculosis // Geneva: WHO, 2016.; World Health Organization. Guidelines for the programmatic management of drug-resistant tuberculosis. 2011 update // Geneva: WHO, 2011.; Zignol M., Dean A. S., Alikhanova N. et al. Population-based resistance of mycobacterium tuberculosis isolates to pyrazinamide and fluoroquinolones: results from a multicountry surveillance project // Lancet Infect. Dis. – 2016. – Vol. 16, № 10. – Р. 1185-1192.

Availability: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1165
https://doi.org/10.21292/2075-1230-2018-96-8-50-54

View record from BASE

12

Academic Journal

Динамика показателей эндогенной интоксикации при мультирезистентном туберкулезе легких с деструктивными изменениями

Authors: Todoriko, L.D., Yeremenchuk, I.V., Batranovskaia, S.A., Shapovalov, V.P.

Source: ACTUAL INFECTOLOGY; № 4.05 (2014); 55-58
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; № 4.05 (2014); 55-58
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; № 4.05 (2014); 55-58

Subject Terms: туберкулез, эндогенная интоксикация, воспаление, мультирезистентность, 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, tuberculosis, endogenous intoxication, inflammation, multi-drug resistance, туберкульоз, ендогенна інтоксикація, запалення, мультирезистентність, 3. Good health