Showing 1 - 20 results of 198 for search '"молекулярно-генетический анализ"', query time: 0.96s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
    Academic Journal

    Contributors: Работа выполнена в рамках Программы стратегического академического лидерства Казанского (Приволжского) федерального университета (Приоритет 2030).

    Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 36-41 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 36-41

    File Description: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-64-5; https://phsreda.com/e-articles/10716/Action10716-138807.pdf; Blinova E. Evolutionary Formation and Distribution of Puumala Virus Genome Variants, Russia / E. Blinova, A. Deviatkin, M. Makenov [et al.] // Emerging infectious diseases. 2023. Vol. 29. Pp. 1420–1424. DOI 10.3201/eid2907.221731. EDN BOADFE; Castel G. Phylogeography of Puumala orthohantavirus in Europe / G. Castel, F. Chevenet, M. Razzauti [et al.] // Viruses. 2019. Vol. 11. P. 679. DOI 10.3390/v11080679. EDN YYRSDB; Davidyuk Y. Prevalence of the Puumala orthohantavirus strains in the pre-kama area of the Republic of Tatarstan, Russia / Y. Davidyuk, A. Shamsutdinov, E. Kabwe [et al.] // Pathogens. 2020. Vol. 9. P. 540. DOI 10.3390/pathogens9070540. EDN TMAUFS; Jiang H. Hemorrhagic fever with renal syndrome: pathogenesis and clinical picture / H. Jiang, X. Zheng, L. Wang [et al.] // Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 2016. Vol. 6. P. 1. DOI 10.3389/fcimb.2016.00001. EDN YWLWKF; Kabwe E. Analysis of Puumala orthohantavirus genome variants identified in the territories of Volga federal district / E. Kabwe, W.Al Sheikh, A.F. Shamsutdinov [et al.] // Tropical Medicine and Infectious Disease. 2022. Vol. 7. P. 46. DOI 10.3390/tropicalmed7030046. EDN OWBQNB; Kumar S. MEGA12: Molecular Evolutionary Genetic Analysis version 12 for adaptive and green computing / S. Kumar, G. Stecher, M. Suleski [et al.] // Molecular Biology and Evolution. 2024. Vol. 41. P. 263. DOI 10.1093/molbev/msae263. EDN XJLZTL; Okonechnikov K. Unipro UGENE: a unified bioinformatics toolkit / K. Okonechnikov, O. Golosova, M. Fursov // Bioinformatics. 2012. Vol. 28. Pp. 1166–1167. DOI 10.1093/bioinformatics/bts091. EDN PDNJNV; Razzauti M. Microevolution of Puumala hantavirus in its host, the bank vole (Myodes glareolus): dis. M. Razzauti PhD; 24.02.12 / M. Razzauti, Haartman Institute Faculty of Medicine. Helsinki, 2012. 88 l.; Елбоева П.И. Молекулярно-генетический анализ нуклеотидных последовательностей генома Puumala orthohantavirus, выявленных в Республике Мордовия: сборник трудов конференции / П.И. Елбоева, Ю.Н. Давидюк // Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии. – 2023. – С. 57–65. DOI 10.31483/r-106903. EDN WPSFEI; Зырянов П.М. Обзор численности носителей и переносчиков зоонозов, эпизоотической и эпидемиологической обстановки в Приволжском федеральном округе в 2024 г. и прогноз на I полугодие 2025 г. / П.М. Зырянов, А.Н. Матросов, А.В. Иванова // ФКУН «Российский противочумный институт «Микроб» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://microbe.ru/files/PFO_rev2024_prog2025_I.pdf (дата обращения: 12.04.2025).; Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом // Официальный портал органов власти Чувашской Республики [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://zivil.cap.ru/news/2025/03/17/gemorragicheskaya-lihoradka-s-pochechnim-sindromom (дата обращения: 12.04.2025).; Савицкая Т.А. Хантавирусные болезни: обзор эпидемиологической ситуации в мире. Анализ эпидемиологической ситуации по геморрагической лихорадке с почечным синдромом в Российской Федерации в 2023 г. и прогноз на 2024 г. / Т.А. Савицкая, А.В. Иванова, А.А. Зубова [и др.] // Проблемы особо опасных инфекций. – 2024. – С. 113–124. DOI 10.21055/0370-1069-2024-1-113–124. EDN WVTEWS; https://phsreda.com/article/138807/discussion_platform

  4. 4
    Academic Journal

    Source: Cancer Urology; Том 20, № 4 (2024); 44-54 ; Онкоурология; Том 20, № 4 (2024); 44-54 ; 1996-1812 ; 1726-9776

    File Description: application/pdf

    Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1828/1586; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1519; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1520; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1521; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1522; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1523; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1524; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/downloadSuppFile/1828/1525; Рак в Беларуси: цифры и факты. Анализ данных Белорусского канцер­регистра. Под ред. С.Л. Полякова. Минск: РНПЦ ОМР им. Н.Н. Александрова, 2022. 280 с.; Robinson B.D., Mosquera J.M., Ro Jar Y. et al. Precision molecular pathology of prostate cancer. Mol Pathol Libr: Springer Cham, 2018. Pp. 13–26.; Cheng H.H., Sokolova A.O., Schaeffer E.M. et al. Germline and somatic mutations in prostate cancer for the clinician. J Natl Compr Canc Netw 2019;17(5):515–21. DOI:10.6004/jnccn.2019.7307; Al Olama A.A., Kote­Jarai Z., Berndt S.I. et al. A meta­analysis of 87,040 individuals identifies 23 new susceptibility loci for prostate cancer. Nat Genet 2014;46(10):1103–9. DOI:10.1038/ng.3094; Eeles R., Goh C., Castro E. et al. The genetic epidemiology of prostate cancer and its clinical implications. Nat Rev Urol 2014;11(1):18–31. DOI:10.1038/nrurol.2013.266; Pritchard C.C., Mateo J., Walsh M.F. et al. Inherited DNA­repair gene mutations in men with metastatic prostate cancer. N Engl J Med 2016;375(5):443–53. DOI:10.1056/NEJMoa1603144; Lecarpentier J., Silvestri V., Kuchenbaecker K.B. et al. Prediction of breast and prostate cancer risks in male BRCA1 and BRCA2 muta­ tion carriers using polygenic risk scores. J Clin Oncol 2017;35(10):2240–50. DOI:10.1200/JCO.2016.69.4935; Robinson D., Van Allen E.M., Wu Y.M. et al. Integrative clinical genomics of advanced prostate cancer. Cell 2015;161(5):1215–28. DOI:10.1016/j.cell.2015.06.053; Warner E.W., Yip S.M., Chi K.N. et al. DNA repair defects in prostate cancer: impact for screening, prognostication and treatment. BJU Int 2018;123(5):769–76. DOI:10.1111/bju.14576; Castro E., Goh C., Olmos D. et al. Germline BRCA mutations are associated with higher risk of nodal involvement, distant metastasis, and poor survival outcomes in prostate cancer. J Clin Oncol 2013;31(14):1748–57. DOI:10.1200/JCO.2012.43.1882; Leongamornlert D., Saunders E., Dadaev T. et al. Frequent germline deleterious mutations in DNA repair genes in familial prostate cancer cases are associated with advanced disease. Br J Cancer 2014;110(6):1663–72. DOI:10.1038/bjc.2014.30; Na R., Zheng S.L., Han M. et al. Germline mutations in ATM and BRCA1/2 distinguish risk for lethal and indolent prostate cancer and are associated with early age at death. Eur Urol 2017;71(5):740–7. DOI:10.1016/j.eururo.2016.11.033; Abida W., Armenia J., Gopalan A. et al. Prospective genomic profiling of prostate cancer across disease states reveals germline and somatic alterations that may affect clinical decision making. JCO Precis Oncol 2017;2017:PO.17.00029. DOI:10.1200/PO.17.00029; Castro E., Romero­Laorden N., Del Pozo A. et al. PROREPAIR­B: a prospective cohort study of the impact of germline DNA repair mutations on the outcomes of patients with metastatic castration­ resistant prostate cancer. J Clin Oncol 2019;37(6):490–503. DOI:10.1200/JCO.18.00358; Cui M., Gao X.S., Gu X. et al. BRCA2 mutations should be screened early and routinely as markers of poor prognosis: evidence from 8,988 patients with prostate cancer. Oncotarget 2017;8(25):40222–32. DOI:10.18632/oncotarget.16712; Mok O.H., Alkhushaym N., Fallatah S. et al. The association of BRCA1 and BRCA2 mutations with prostate cancer risk, frequency, and mortality: A meta­analysis. Prostate 2019;79(8):880–95. DOI:10.1002/pros.23795; Kyriakopoulos C.E., Chen Y.H., Carducci M.A. et al. Chemohormonal therapy in metastatic hormone­sensitive prostate cancer: long­term survival analysis of the randomized phase III E3805 CHAARTED trial. J Clin Oncol 2018;36(11):1080–7. DOI:10.1200/JCO.2017.75.3657; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1828

  5. 5
    Academic Journal

    Source: BIOAsia-Altai; Том 4 № 1 (2024): Международный биотехнологический форум «BIOAsia–Altai»; 317-319
    BIOAsia-Altai; Vol 4 No 1 (2024): International Biotechnology Forum “BIOAsia-Altai”; 317-319

    File Description: application/pdf

  6. 6
    Academic Journal

    Contributors: Работа выполнена в рамках Программы стратегического академического лидерства Казанского (Приволжского) федерального университета (ПСАЛ-2030).

    Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 57-65
    Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 57-65

    File Description: text/html

  7. 7
    Academic Journal

    Contributors: The study was performed with the support of AstraZeneca Pharmaceuticals., Исследование проведено при поддержке ООО «АстраЗенека Фармасьютикалз».

    Source: Cancer Urology; Том 20, № 2 (2024); 87-100 ; Онкоурология; Том 20, № 2 (2024); 87-100 ; 1996-1812 ; 1726-9776

    File Description: application/pdf

    Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1836/1532; Злокачественные новообразования в России в 2022 году (забо­ леваемость и смертность). Под. ред. А.Д. Каприна, В.В. Ста­ ринского, О.В. Шахзадовой, И.В. Лисичниковой. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Мин­ здрава России, 2023. 275 с.; Achard V., Putora P.M., Omlin A. et al. Metastatic prostate cancer: treatment options. Oncology 2022;100(1):48–59. DOI:10.1159/000519861; Petrylak D.P., Tangen C.M., Hussain M.H. et al. Docetaxel and estramustine compared with mitoxantrone and prednisone for advanced refractory prostate cancer. N Engl J Med 2004;351(15):1513–20. DOI:10.1056/NEJMoa041318; Tannock I.F., Osoba D., Stockler M.R. Chemotherapy with mitoxantrone plus prednisone or prednisone alone for symptomatic hormone­resistant prostate cancer: a Canadian randomized trial with palliative end points. J Clin Oncol 1996;14(6):1756–64. DOI:10.1200/JCO.1996.14.6.1756; Tannock I.F., de Wit R., Berry W.R. et al. Docetaxel plus prednisone or mitoxantrone plus prednisone for advanced prostate cancer. N Engl J Med 2004;351(15):1502–12. DOI:10.1056/NEJMoa040720; De Bono J.S., Oudard S., Ozguroglu M. et al. Prednisone plus cabazitaxel or mitoxantrone for metastatic castration­resistant prostate cancer progressing after docetaxel treatment: a randomized open­label trial. Lancet 2010;376(9747):1147–54. DOI:10.1016/S0140-6736(10)61389­X; FDA approved enzalutamide. Reference ID 4291091. Available at: https://www.accessdata.fda.gov/drugsatfda_docs/label/2018/203415s014lbl.pdf; Ryan C.J., Smith M.R., de Bono J.S. et al. Abiraterone in metastatic prostate cancer without previous chemotherapy. N Engl J Med 2013;368(2):138–48. DOI:10.1056/NEJMoa1209096; FDA approved abiraterone acetate. Reference ID 2939553 Available at: https://www.accessdata.fda.gov/drugsatfda_docs/label/2011/202379lbl.pdf; Parker C., Nilsson S., Heinrich D. et al. Alpha emitter radium­223 and survival in metastatic prostate cancer. N Engl J Med 2013;369(3):213–23. DOI:10.1056/NEJMoa1213755; Sartor O., de Bono J., Chi K.N. et al. Lutetium­177­PSMA­617 for metastatic castration­resistant prostate cancer. N Engl J Med 2021;385(12):1091–103. DOI:10.1056/NEJMoa2107322; Hussain M., Mateo J., Fizazi K. et al. Survival with olaparib in metastatic castration­resistant prostate cancer. N Engl J Med 2020;383(24):2345–57. DOI:10.1056/NEJMoa2022485; De Bono J., Mateo J., Fizazi K. et al. Olaparib for metastatic castration resistant prostate cancer. N Engl J Med 2020;382(22):2091–102. DOI:10.1056/NEJMoa1911440; Abida W., Campbell D., Patnaik A. et al. Rucaparib for the treatment of metastatic castration­resistant prostate cancer associated with a DNA damage repair gene alteration: final results from the phase 2 TRITON2 study. Eur Urol 2023;84(3):321–30. DOI:10.1016/j.eururo.2023.05.021; Chi K.N., Rathkopf D., Smith M.R. et al. Niraparib and abiraterone acetate for metastatic castration­resistant prostate cancer. J Clin Oncol 2023;41(18):3339–51. DOI:10.1200/JCO.22.01649; De Bono J.S., Mehra N., Scagliotti G.V. et al. Talazoparib monotherapy in metastatic castration­resistant prostate cancer with DNA repair alterations (TALAPRO­1): an open­label, phase 2 trial [published correction appears in Lancet Oncol 2022;23(5):e207] [published correction appears in Lancet Oncol 2022;23(6):e249]. Lancet Oncol 2021;22(9):1250–64. DOI:10.1016/S1470­2045(21)00376­4; Agarwal N., Azad A.A., Carles J. et al. Talazoparib plus enzalutamide in men with first­line metastatic castration­resistant prostate cancer (TALAPRO­2): a randomised, placebo­controlled, phase 3 trial [published correction appears in Lancet 2023;402(10398):290]. Lancet 2023;402(10398):291–303. DOI:10.1016/S0140­6736(23)01055­3; Castro E., Mateo J., Olmos D., de Bono J.S. Targeting DNA repair: the role of PARP inhibition in the treatment of castration­resistant prostate cancer. Cancer J 2016;22(5):353–6. DOI:10.1097/PPO.0000000000000219; Chung J.H., Dewal N., Sokol E. et al. Prospective comprehensive genomic profiling of primary and metastatic prostate tumors. JCO Precis Oncol 2019;3: PO.18.00283. DOI:10.1200/PO.18.00283; Cui M., Gao X.S., Gu X. et al. BRCA2 mutations should be screened early and routinely as markers of poor prognosis: evidence from 8,988 patients with prostate cancer. Oncotarget 2017;8(25):40222–32. DOI:10.18632/oncotarget.16712; Maughan B.L., Munlde S., Nematian­Samani M. et al. Survival outcomes of APA as a starting treatment: impact in real­world patients with mCSPC (OASIS). J Clin Oncol 2024;42(4_suppl):65. DOI:10.1200/JCO.2024.42.4_suppl.6; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1836

  8. 8
    Academic Journal
  9. 9
  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Contributors: Работа выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования Российской Федерации по выполнению сотрудниками научной лаборатории «Защита леса» проекта «Фундаментальные основы защиты лесов от энтомо- и фитовредителей в Сибири

    Source: Biosfera; Том 15 №2 2023; 107-110 ; Биосфера; Том 15 №2 2023; 107-110 ; 2077-1460 ; 2077-1371

    File Description: application/pdf

  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Contributors: Rospotrebnadzor, Роспотребнадзор

    Source: Medical Immunology (Russia); Том 24, № 6 (2022); 1219-1226 ; Медицинская иммунология; Том 24, № 6 (2022); 1219-1226 ; 2313-741X ; 1563-0625

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2513/1616; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9446; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9448; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9449; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9450; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9451; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2513/9452; Демидов А. Роспотребнадзор назвал число привитых от гриппа россиян // Газета.ru, 2021. – 9 нояб. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.gazeta.ru/social/news/2021/11/09/n_16821619.shtml?updated (Дата обращения: 26.04.2022).; Adlhoch С., Mook P., Lamb F., Ferland L., Melidou A., Amato-Gauci A.J., Pebody R., European Influenza Surveillance Network. Very little influenza in the WHO European Region during the 2020/21 season, weeks 40 2020 to 8 2021. Euro Surveill., 2021, Vol. 26, no. 11, 2100221. doi:10.2807/1560-7917.ES.2021.26.11.2100221.; Groves H.E., Piche-Renaud P., Peci A., Farrar D.S., Buckrell S., Bancej C., Sevenhuysen C., Campigotto A., Gubbay J.B., Morris S. The impact of the COVID-19 pandemic on influenza, respiratory syncytial virus, and other seasonal respiratory virus circulation in Canada: A population-based study. Lancet Reg. Health Am., 2021, Vol. 1, 100015. doi:10.1016/j.lana.2021.100015.; Huang W., Li X., Tan M., Cheng Y., Chen T., Wei H., Zeng X., Xie Y., Liu J., Xiao N., Yang L., Wang D. Epidemiological and Virological Surveillance of Seasonal Influenza Viruses – China, 2020-2021. China CDC Wkly, 2021, Vol. 3, no. 44, pp. 918-922.; Kolosova N.P., Ilyicheva T.N., Danilenko A.V., Bulanovich J.A., Svyatchenko S.V., Durymanov A.G., Goncharova N.I., Gudymo A.S., Shvalov A.N., Susloparov I.M., Marchenko V.Y., Tregubchak T.V., Gavrilova E.V., Maksyutov R.A., Ryzhikov A.B. Severe cases of seasonal influenza in Russia in 2017-2018. PLoS One, 2019, Vol. 14, no. 7, e0220401. doi:10.1371/journal.pone.0220401.; Li H. Aligning sequence reads, clone sequences and assembly contigs with BWA-MEM. arXiv: Genomics, 2013. doi:10.48550/arXiv.1303.3997.; Meetings of the WHO working group on surveillance of influenza antiviral susceptibility – Geneva, November 2011 and June 2012. Weekly Epidemiol. Rec., 2012, Vol. 87, no. 39, pp. 369-374.; Petersen E., Koopmans M., Go U., Hamer D.H., Petrosillo N., Castelli F., Storgaard M., Al Khalili S., Simonsen L. Comparing SARS-CoV-2 with SARS-CoV and influenza pandemics. Lancet Infect. Dis., 2020, Vol. 20, no. 9, pp. e238-e244.; Svyatchenko S.V., Goncharova N.I., Marchenko V.Yu., Kolosova N.P., Shvalov A.N., Kovrizhkina V.L., Durymanov A.G., Onkhonova G.S., Tregubchak T.V., Susloparov I.M., Gudymo A.S., Ilyicheva T.N., Ryzhikov A.B. An influenza A(H5N8) virus isolated during an outbreak at a poultry farm in Russia in 2017 has an N294S substitution in the neuraminidase and shows reduced susceptibility to oseltamivir. Antiviral Res., 2021, Vol. 191,105079. doi:10.1016/j.antiviral.2021.105079.; Weekly Epidemiological Record. 22 October 2021, Vol. 96, no, 42, pp. 509-520.; WHO. Recommended composition of influenza virus vaccines for use in the 2021-2022 northern hemisphere influenza season (Feb 2021). Available at: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/influenza/who-influenzarecommendations/vcm-northern-hemisphere-recommendation-2021-2022/202102_recommendation.pdf?sfvrsn=2af603d8_12&download=true (last updated: 28.04.2022).; WHO. Recommended composition of influenza virus vaccines for use in the 2022 southern hemisphere influenza season (Sept 2021). Available at: https://www.who.int/publications/m/item/recommended-compositionof-influenza-virus-vaccines-for-use-in-the-2022-southern-hemisphere-influenza-season (last updated: 28.04.2022).; WHO, February 2022. Available at: https://www.who.int/publications/m/item/recommended-compositionof-influenza-virus-vaccines-for-use-in-the-2022-2023-northern-hemisphere-influenza-season (last updated: 25.04.2022).; WHO Recommended composition of influenza virus vaccines for use in the 2022 southern hemisphere influenza season. Available at: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/influenza/who-influenzarecommendations/vcm-southern-hemisphere-recommendation-2022/202109recommendation.pdf?sfvrsn=698a54b9_12&download=true (last updated: 25.04.2022).; WHO Recommended composition of influenza virus vaccines for use in the 2022-2023 northern hemisphere influenza season. Available at: https://cdn.who.int/media/docs/default-source/influenza/whoinfluenza-recommendations/vcm-northern-hemisphere-recommendation-2022-2023/202202_recommendation.pdf?sfvrsn=5c88e006_13&download=true (last updated: 25.04.2022).; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2513

  17. 17
    Academic Journal

    Contributors: The results obtained in the project “Development of a methodology for determining the status of genetic loci and lifetime modification of DNA sites affecting the psychoemotional status of a person” of the research- and-technological program of the Union State of Russia and Belarus “DNA Identification”., Работа выполнена в рамках реализации мероприятия «Разработка методики определения статуса генетических локусов и прижизненной модификации участков ДНК, влияющих на психоэмоцио нальный статус человека» НТП Союзного государства «Разра ботка инновационных геногеографических и геном ных технологий идентификации личности и индивидуаль ных особенностей человека на основе изучения генофондов регионов Союзного государства» («ДНК-идентификация»).

    Source: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 66, № 3 (2022); 294-300 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 66, № 3 (2022); 294-300 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2022-66-3

    File Description: application/pdf

    Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1067/1064; Калимуллина, Л. Б. Анализ ассоциаций по сочетаниям генотипов полиморфных ДНК-локусов (tag 1a и Ncoi) Drd2, 256А/G гена Slc6a3 и объемных характеристик миндалевидного комплекса мозга с повышенной тревожностью / Л. Б. Калимуллина, А. В. Ахмадеев, А. Я. Ханнанова // Успехи современного естествознания. – 2011. – № 11. – С. 9–11.; Benjamin, J. Molecular Genetics and the Human Personality / J. Benjamin, R. P. Ebstein, R. H. Belmaker. – American Psychiatric Pub., 2008. – 452 р.; Dopamine multilocus genetic profiles predict sex differences in reactivity of the human reward system / E. K. Diekhof [et al.] // Brain Struct. Funct. – 2021. – Vol. 226, N 4. – Р. 1099–1114. https://doi.org/10.1007/s00429-021-02227-6; A validation study of the Hospital Anxiety and Depression Scale (HADS) in different groups of Dutch subjects / P. Spinhoven [et al.] // Psychol. Med. – 1997. – Vol. 27, N 2. – Р. 363–370. https://doi.org/10.1017/s0033291796004382; Cohen, S. A Global Measure of Perceived Stress / S. Cohen, T. Kamarck, R. Mermelstein // J. Health Soc. Behav. – 1983. – Vol. 24, N 4. – P. 385–396. https://doi.org/10.2307/2136404; Валидизация русскоязычной версии опросника «Шкала воспринимаемого стресса-10» / В. А. Абабков [и др.] // Вестн. С.-Петерб. ун-та. Сер. 16: Психология. Педагогика. – 2016. – № 2. – С. 6–15. https://doi.org/10.21638/11701/spbu16.2016.202; Look beyond Catechol-O-Methyltransferase genotype for cathecolamines derangement in migraine: the BioBIM rs4818 and rs4680 polymorphisms study / M. L. De Marchis [et al.] // J. Headache Pain. – 2015. – Vol. 16, N 1. – P. 37–45. https://doi.org/10.1186/s10194-015-0520-x; Dean, B. Associations between catechol-O-methyltransferase (COMT) genotypes at rs4818 and rs4680 and gene expression in human dorsolateral prefrontal cortex / B. Dean, G. M. Parkin, A. S. Gibbons // Exp. Brain Res. – 2020. – Vol. 238, N 2. – P. 477–486. https://doi.org/10.1007/s00221-020-05730-0; Genomic organization of the human catechol O-methyltransferase gene and its expression from two distinct promoters / J. Tenhunen [et al.] // Eur. J. Biochem. – 1994. – Vol. 223, N 3. – P. 1049–1059. https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1994.tb19083.x; A haplotype implicated in schizophrenia susceptibility is associated with reduced COMT expression in human brain / N. J. Bray [et al.] // Am. J. Hum. Genet. – 2003. – Vol. 73, N 1. – P. 152–161. https://doi.org/10.1086/376578; Effect of COMT Val108/158 Met genotype on frontal lobe function and risk for schizophrenia / M. F. Egan [et al.] // Proc. Natl. Acad. Sci. – 2001. – Vol. 98, N 12. – P. 6917–6922. https://doi.org/10.1073/pnas.111134598; Regulatory Polymorphisms in Human DBH Affect Peripheral Gene Expression and Sympathetic Activity / E. S. Barrie [et al.] // Circ. Res. – 2014. – Vol. 115, N 12. – P. 1017–1025. https://doi.org/10.1161/circresaha.116.304398; Association of regulatory variants of dopamine β-hydroxylase with cognition and tardive dyskinesia in schizophrenia subjects / T. J. Punchaichira [et al.] // J. Psychopharmacol. Oxf. Engl. – 2020. – Vol. 34, N 3. – P. 358–369. https://doi.org/10.1177/0269881119895539; The dopamine β-hydroxylase –1021C/T polymorphism is associated with the risk of Alzheimer’s disease in the Epistasis Project / O. Combarros [et al.] // BMC Med. Genet. – 2010. – Vol. 11, N 1. – Р. 162–172. https://doi.org/10.1186/1471-2350-11-162; Effects of cultural intensity and density regime treatment on post-thinning loblolly pine individual tree DBH increment in the lower coastal plain of the southeastern United States / J. T. Perren [et al.] // Proc. 18th Bienn. South. Silvic. Res. Conf. E-Gen Tech Rep SRS-212 Asheville NC US Dep. Agric. For. Serv. South. Res. Stn. 614 P. – 2016. – Vol. 212. – P. 288–292.; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/1067

  18. 18
  19. 19
  20. 20
    Academic Journal

    Source: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 3 (2021); 89-97 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 3 (2021); 89-97 ; 2658-719X ; 0370-1069

    File Description: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1552/1237; Онищенко Г.Г., Марамович А.С., Голубинский Е.П., Маслов Д.В., Вершкова Т.И., Урбанович Л.Я., Алленов А.В., Мурначев Г.П., Гарковенко Л.Е., Воронок В.М. Холера на Дальнем Востоке России. Сообщение 1. Эпидемиологическая характеристика вспышки холеры Эль Тор в г. Владивосток. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2000; 5:26–31.; Онищенко Г.Г., Марамович А.С., Голубинский Е.П., Папиренко Е.В., Ганин В.С., Бурый В.Л., Морозова И.В., Мартынова Т.М. Холера на Дальнем Востоке России. Сообщение 2. Эпидемиологическая характеристика вспышки холеры Эль Тор в г. Южно-Сахалинск. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2000; 5:31–5.; Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Мишанькин Б.Н., Мазрухо Б.Л., Подосинникова Л.С., Кудрякова Т.А., Москвитина Э.А., Водопьянов С.О., Рыжко И.В., Казакова Е.С., Шарова И.Н., Плотникова Е.А., Давыдова Н.А., Абрамова Е.Г., Королев Ю.С., Шестиалтынова И.С., Шарифулина Д.М., Куряева Н.Ю., Юмангулова Е.Ф., Чернышева А.В., Бугоркова Т.В., Русакова Т.Г., Масленикова А.Л., Милова М.В., Захарова Л.И., Билалов Т.Г., Шутько А.Г., Качкина Г.В. Характеристика холерных вибрионов Эль Тор, выделенных в г. Казань в 2001 г. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2002; 2:3–6.; Ратникова Л.И., Кузьмина Н.Я. Случай холеры в Челябинске. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2002; 2:53–4.; Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Москвитина Э.А., Подосинникова Л.С., Водяницкая С.Ю., Прометной В.И., Монахова Е.В., Водопьянов C.O., Телесманич Н.Р., Дудина Н.А. Холера, обусловленная V. cholerae O1 ctxАВ-tcpA+. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2007; 1:23–9.; Luo Y., Octavia S., Jin D., Ye J., Miao Z., Jiang T., Xia S., Lan R. US Gulf-like toxigenic O1 Vibrio cholerae causing sporadic cholera outbreaks in China. J. Infect. 2016; 72(5):564–72. DOI:10.1016/j.jinf.2016.02.005.; Wang H., Yang C., Sun Z., Zheng W., Zhang W., Yu H., Wu Y., Didelot X., Yang R., Pan J., Cui Y. Genomic epidemiology of Vibrio cholerae reveals the regional and global spread of two epidemic nontoxigenic lineages. PLoS Negl. Trop. Dis. 2020; 14(2):e0008046. DOI:10.1371/journal.pntd.0008046.; Монахова Е.В., Архангельская И.В. Холерные вибрионы неО1/неО139 серогрупп в этиологии острых кишечных инфекций: современная ситуация в России и в мире. Проблемы особо опасных инфекций. 2016; 2:14–23. DOI:10.21055/0370-1069-2016-2-14-23.; Кругликов В.Д., Левченко Д.А., Титова С.В., Москвитина Э.А., Архангельская И.В., Гаевская Н.Е., Ежова М.И. Холерные вибрионы в водоемах Российской Федерации. Гигиена и санитария. 2019; 98(4):393–9. DOI:10.18821/0016-9900-2019-98-4-393-399.; Онищенко Г.Г., Попова А.Ю., Кутырев В.В., Смирнова Н.И., Щербакова С.А., Москвитина Э.А., Титова С.В. Актуальные проблемы эпидемиологического надзора, лабораторной диагностики и профилактики холеры в Российской Федерации. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2016; 1:89–101. DOI:10.36233/0372-9311-2016-1-89-101.; Шарова И.Н., Казакова Е.С., Портенко С.А., Красовская Т.Ю., Осина Н.А., Куклев В.Е., Карнаухов И.Г., Щербакова С.А., Топорков А.В., Чеснокова М.В., Куличенко А.Н., Кутырев В.В. Совершенствование и стандартизация лабораторной диагностики особо опасных, «новых» и «возвращающихся» инфекционных болезней. Проблемы особо опасных инфекций. 2013; 2:46–8. DOI:10.21055/0370-1069-2013-2-46-48.; Онищенко Г.Г., Ежлова Е.Б., Демина Ю.В., Мельникова А.А. О мерах по совершенствованию эпидемиологического надзора в части индикации возбудителей инфекционных заболеваний. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2013; 2:4–13.; Ramamurthy T., Das B., Chakraborty S., Mukhopadhyay A.K., Sack D.A. Diagnostic techniques for rapid detection of Vibrio cholerae O1/O139. Vaccine. 2020; 38(1):A73–A82. DOI:10.1016/j.vaccine.2019.07.099.; Миронова Л.В., Басов Е.А., Афанасьев М.В., Хунхеева Ж.Ю., Миткеева С.К., Ганин В.С., Урбанович Л.Я., Куликалова Е.С., Гольдапель Э.Г., Балахонов С.В. MALDI-ToF массспектрометрический анализ с молекулярно-генетической идентификацией Vibrio spp. в системе мониторинга вибриофлоры поверхностных водоемов. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2014; 19(6):27–36. DOI:10.17816/EID40838.; Brenzinger S., van der Aart L.T., van Wezel G.P., Lacroix J.M., Glatter T., Briegel A. Structural and proteomic changes in viable but non-culturable Vibrio cholerae. Front Microbiol. 2019; 10:793. DOI:10.3389/fmicb.2019.00793.; Jubair M., Morris J.G. Jr., Ali A. Survival of Vibrio cholerae in nutrient-poor environments is associated with a novel “persister” phenotype. PLoS One. 2012; 7(9):e45187. DOI:10.1371/journal.pone.0045187.; Conner J.G., Teschler J.K., Jones C.J., Yildiz F.H. Staying alive: Vibrio cholerae’s cycle of environmental survival, transmission, and dissemination. Microbiol. Spectr. 2016; 4(2):10.1128/microbiolspec.VMBF-0015-2015. DOI:10.1128/microbiolspec.VMBF-0015-2015.; Романова Ю.М., Алексеева Н.В., Гинцбург А.Л. Некультивируемое состояние у патогенных бактерий на модели Salmonela typhimurium: феномен и генетический контроль. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1997; 4:35–41.; Lutz C., Erken M., Noorian P., Sun S., McDougald D. Environmental reservoirs and mechanisms of persistence of Vibrio cholerae. Front. Microbiol. 2013; 4:375. DOI:10.3389/fmicb.2013.00375.; Меньшикова Е.А., Архангельская И.В., Левченко Д.А., Курбатова Е.М., Кругликов В.Д., Титова С.В. Влияние температурных флуктуаций воды поверхностных водоемов города Ростова-на-Дону на циркуляцию холерных вибрионов. Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2018; 14(4):14–20.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/1552