Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 58 για την αναζήτηση '"миоглобин"', χρόνος αναζήτησης: 0,73δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 151-154 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 151-154

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907688-37-7; https://phsreda.com/e-articles/10473/Action10473-105499.pdf; Ветровой О.В. Роль HIF1-зависимой регуляции пентозофосфатного пути в обеспечении реакций мозга на гипоксию: дис. . канд. биол. наук / О.В. Ветровой. – СПб.: СПбГУ, 2018.; Федоров Д.А. Эффекты тяжелой гипобарической гипоксии и ингибирования индуцируемого гипоксией фактора HIF-1 на маркеры повреждения сердечной и скелетных мышц крыс / Д.А. Федоров, М.Ю. Фролова, И.Е. Красовская, Н.В. Кулева // Биофизика. – 2019. –Т. 64. №5. – С. 999–1002. – DOI:10.1134/S0006302919050235. – EDN: WIYTQO; Fedorov D.A. The Effects of Severe Hypobaric Hypoxia and Inhibition of Hypoxia-Inducible Factor-1 (HIF-1) on Biomarkers of Cardiac and Skeletal Muscle Injury in Rats / D.A. Fedorov, M.Y. Frolova, I.E. Krasovskaya, N.V. Kuleva // Biophysics. – 2019. – Vol. 64. №5. – P. 808–811. – DOI:10.1134/S000635091905004X. – EDN: ISWSCY; Tarazona V., Figueiredo S., Hamada S. et al. 2021. Admission serum myoglobin and the development of acute kidney injury after major trauma. Ann. Intensive Care 11, 140. – https://doi.org/10.1186/s13613-021-00924-3; https://phsreda.com/article/105499/discussion_platform

  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 19, № 6 (2022); 78-85 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 19, № 6 (2022); 78-85 ; 2541-8653 ; 2078-5658

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/740/607; Донской Д. Н. Рабдомиолиз, как причина острого повреждения почек в детском возрасте // Инновационная наука. – 2021. – № 7. – С. 148‒149.; Масолитин С. В., Проценко Д. Н., Тюрин И. Н. и др. Применение комбинированной экстракорпоральной детоксикации при лечении токсического рабдомиолиза, осложненного острым повреждением почек: одноцентровое проспективное рандомизированное исследование // Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. – 2022. – № 2. – С. 95‒107. doi.org/10.21320/1818-474X-2022-2-95-107.; Масолитин С. В., Проценко Д. Н., Тюрин И. Н. и др. Современный взгляд на применение методов экстракорпоральной детоксикации при рабдомиолизе (обзор) // Общая реаниматология. – 2022. – Т. 18, № 3. – С. 59‒68. doi.org/10.15360/1813-9779-2022-3-59-68.; Федорова А. А., Кутепов Д. Е., Зубарев А. В. и др. Рабдомиолиз: что нового в диагностике и лечении? // Кремлевская медицина. Клинический вестник. – 2020. – № 2. – С. 102‒109. doi:10.26269/4n94-0746.; Ahmad S., Anees M., Elahi I. et al. Rhabdomyolysis leading to acute kidney injury // J. Coll. Phys. Surg Pak. – 2021. – Vol. 31, № 2. – P. 235‒237. doi:10.29271/jcpsp.2021.02.235.; Ankawi G., Xie Y., Yang B. et al. What have we learned about the use of cytosorb adsorption columns? // Blood Purif. – 2019. – Vol. 48, № 3. – P. 196–202. doi:10.1159/000500013.; Beetham R. Biochemical investigation of suspected rhabdomyolysis // Ann. Clin. Biochem. – 2000. – Vol. 37, № 5. – P. 581–587. doi:10.1258/0004563001899870.; Cabral B. M. I., Edding S. N., Portocarrero J. P. et al. Rhabdomyolysis // Dis. Mon. – 2020. – Vol. 66, № 8. doi:10.1016/j.disamonth.2020.101015.; Chavez L. O., Leon M., Einav S. et al. Beyond muscle destruction: a systematic review of rhabdomyolysis for clinical practice // Crit. Care. – 2016. – Vol. 20, № 1. – P. 135. doi:10.1186/s13054-016-1314-5.; Coco T. J., Klasner A. E. Drug-induced rhabdomyolysis // Curr. Opin. Pediatr. – 2004. – Vol. 16, № 2. – P. 206–210. doi:10.1097/00008480-200404000-00017.; Donati G., Cappuccilli M., Di Filippo F. et al. The use of supra-hemodiafiltration in traumatic rhabdomyolysis and acute kidney injury: a case report // Case Rep. Nephrol. Dial. – 2021. – Vol. 11, № 1. – P. 26–35. doi:10.1159/000507424.; Esposito P., Estienne L., Serpieri N. et al. Rhabdomyolysis-associated acute kidney injury // Am. J. Kidney Dis. – 2018. – Vol. 71, № 6. – Р. A12–A14. doi:10.1053/j.ajkd.2018.03.009.; Guzman N., Podoll A. S., Bell C. S. et al. Myoglobin removal using high-volume high-flux hemofiltration in patients with oliguric acute kidney injury // Blood Purif. – 2013. – Vol. 36, № 2. – P. 107–111. doi:10.1159/000354727.; Hall A. P., Henry J. A. Acute toxic effects of 'Ecstasy' (MDMA) and related compounds: overview of pathophysiology and clinical management // Br. J. Anaesth. – 2006. – Vol. 96, № 6. – P. 678–685. doi:10.1093/bja/ael078.; Heyne N., Guthoff M., Krieger J. et al. High cut-off renal replacement therapy for removal of myoglobin in severe rhabdomyolysis and acute kidney injury: a case series // Nephron Clin. Pract. – 2012. – Vol. 121, № 3‒4. – P. 159–164. doi:10.1159/000343564.; Holt S., Moore K. Pathogenesis of renal failure in rhabdomyolysis: the role of myoglobin // Exp. Nephrol. – 2000. – Vol. 8, № 2. – P. 72–76. doi:10.1159/000020651.; Huerta-Alardín A. L., Varon J., Marik P. E. Bench-to-bedside review: Rhabdomyolysis an overview for clinicians // Crit. Care. – 2005. – Vol. 9, № 2. – P. 158–169. doi:10.1186/cc2978.; Kasaoka S., Todani M., Kaneko T. et al. Peak value of blood myoglobin predicts acute renal failure induced by rhabdomyolysis // J. Crit. Care. – 2010. – Vol. 25, № 4. – P. 601–604. doi:10.1016/j.jcrc.2010.04.002.; Khan F. Y. Rhabdomyolysis: a review of the literature // Neth. J. Med. – 2009. – Vol. 67, № 9. – P. 272–283. PMID: 19841484.; Kolovou G., Cokkinos P., Bilianou H. et al. Non-traumatic and non-drug-induced rhabdomyolysis // Arch. Med. Sci. Atheroscler Dis. – 2019. – Vol. 4. – Р. e252–e263. doi:10.5114/amsad.2019.90152.; Kwiatkowska M., Chomicka I., Malyszko J. Rhabdomyolysis induced acute kidney injury an underestimated problem // Wiad Lek. – 2020. – Vol. 73, № 11. – P. 2543–2548. PMID: 33454698.; Mannix R., Tan M. L., Wright R., Baskin M. Acute pediatric rhabdomyolysis: causes and rates of renal failure // Pediatrics. – 2006. – Vol. 118, № 5. – Р. 2119–2125. doi:10.1542/peds.2006-1352.; Melli G., Chaudhry V., Cornblath D. R. Rhabdomyolysis: an evaluation of 475 hospitalized patients // Medicine (Baltimore). – 2005. – 84, № 6. – Р. 377–385. doi:10.1097/01.md.0000188565.48918.41.; Naka T., Jones D., Baldwin I. et al. Myoglobin clearance by super high-flux hemofiltration in a case of severe rhabdomyolysis: a case report // Crit. Care. – 2005. – Vol. 2. –Р. R90– R95. doi:10.1186/cc3034.; Pasala S., Carmody J. B. How to use… serum creatinine, cystatin C and GFR // Arch. Dis. Child Educ. Pract. Ed. – 2017. – Vol. 102, № 1. – P. 37–43. doi:10.1136/archdischild-2016-311062.; Petejova N., Martinek A. Acute kidney injury due to rhabdomyolysis and renal replacement therapy: a critical review // Crit. Care. – 2014. – Vol. 18, № 3. – P. 224. doi:10.1186/cc13897.; Poorsarvi Tehrani P., Malek H. Early detection of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury through machine learning approaches // Arch. Acad. Emerg. Med. – 2021. – Vol. 9, № 1. – Р. e29. doi:10.22037/aaem.v9i1.1059.; Prendergast B. D., George C. F. Drug-induced rhabdomyolysis--mechanisms and management // Postgrad Med. J. – 1993. – Vol. 69, № 811. – P. 333–336. doi:10.1136/pgmj.69.811.333.; Ronco C. Extracorporeal therapies in acute rhabdomyolysis and myoglobin clearance // Crit. Care. – 2005. – Vol. 9, № 2. – P. 141‒142. doi:10.1186/cc3055.; Safari S., Yousefifard M., Hashemi B. et al. The value of serum creatine kinase in predicting the risk of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis // Clin. Exp. Nephrol. – 2016. – Vol. 20, № 2. – P. 153–161. doi:10.1007/s10157-015-1204-1.; Scharf C., Liebchen U., Paal M. et al. Blood purification with a cytokine adsorber for the elimination of myoglobin in critically ill patients with severe rhabdomyolysis // Crit. Care. – 2021. – Vol. 25, № 1. – P. 41. doi:10.1186/s13054-021-03468-x.; Schrezenmeier E. V., Barasch J., Budde K. et al. Biomarkers in acute kidney injury - pathophysiological basis and clinical performance // Acta Physiol. (Oxf). – 2017. – Vol. 219, № 3. – P. 554–572. doi:10.1111/apha.12764.; Sousa A., Paiva J. A., Fonseca S. et al. Rhabdomyolysis: risk factors and incidence in polytrauma patients in the absence of major disasters // Eur. J. Trauma Emerg. Surg. – 2013. – Vol. 39, № 2. – P. 131–137. doi:10.1007/s00068-012-0233-7.; Waldman W., Sein Anand J., Kabata P. The characteristics and outcomes of toxin-induced massive rhabdomyolysis // Int. J. Occup. Med. Environ. Health. – 2020. – Vol. 33, № 5. – P. 661–673. doi:10.13075/ijomeh.1896.01532.; Weidhase L., de Fallois J., Haußig E. et al. Myoglobin clearance with continuous veno-venous hemodialysis using high cutoff dialyzer versus continuous veno-venous hemodiafiltration using high-flux dialyzer: a prospective randomized controlled trial // Crit. Care. – 2020. – Vol. 24, № 1. – P. 644. doi:10.1186/s13054-020-03366-8.; Yang C. W., Li S., Dong Y., Paliwal N., Wang Y. Epidemiology and the Impact of Acute Kidney Injury on Outcomes in Patients with Rhabdomyolysis // J. Clin. Med. ‒ 2021. ‒ Vol. 10, № 9. ‒ Р. 1950. doi:10.3390/jcm10091950. PMID: 34062839; PMCID: PMC8125267.; Zhang L., Kang Y., Fu P. et al. Myoglobin clearance by continuous venous-venous haemofiltration in rhabdomyolysis with acute kidney injury: a case series // Injury. ‒ 2012. – Vol. 43, № 5. – P. 619–623. doi:10.1016/j.injury.2010.08.031.; Zorova L. D., Pevzner I. B., Chupyrkina A. A. et al. The role of myoglobin degradation in nephrotoxicity after rhabdomyolysis // Chem. Biol. Interact. – Vol. 256. – P. 64–70. doi:10.1016/j.cbi.2016.06.020.

  10. 10
    Academic Journal

    Πηγή: General Reanimatology; Том 18, № 6 (2022); 22-29 ; Общая реаниматология; Том 18, № 6 (2022); 22-29 ; 2411-7110 ; 1813-9779

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2240/1680; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2240/1687; Kolovou G., Cokkinos P, Bilianou H., Kolovou V, Katsiki N., Mavrogeni S. Non-traumatic and non-drug-induced rhabdomyolysis. Arch Med Sci Atheroscler Dis. 2019; 4: e252-e263. DOI:10.5114/amsad.2019.90152. PMID: 32368681.; ChavezL.O., Leon M., Einav S., Varon J. Beyond muscle destruction: a systematic review of rhabdomyolysis for clinical practice. Crit Care. 2016; 20 (1): 135. DOI:10.1186/s13054-016-1314-5. PMID: 27301374.; Safari S., Yousefifard M., Hashemi B., Baratloo A., Forouzanfar M.M., Rahmati F., Motamedi M., Najafi I. The value of serum creatine kinase in predicting the risk of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis. Clin Exp Nephrol. 2016; 20 (2): 153-161. DOI:10.1007/s10157-015-1204-1. PMID: 26801932.; Petejova N., Martinek A. Acute kidney injury due to rhabdomyolysis and renal replacement therapy: a critical review. Crit Care. 2014; 18 (3): 224. DOI:10.1186/cc13897. PMID: 25043142.; Хорошилов С.Е., Никулин А.В. Патогенез, диагностика и эфферентное лечение рабдомиолиза, осложненного острой почечной недостаточностью. Тверской медицинский журнал. 2017; 5: 45-51.; Федорова А.А., Кутепов Д.Е., Зубарев А.В., Пасечник И.Н., Хабарина Н.В. Рабдомиолиз: что нового в диагностике и лечении? Кремлевская медицина. Клинический вестник. 2020; 2: 102-109. DOI:10.26269/4n94-0746.; Holt S., Moore K. Pathogenesis of renal failure in rhabdomyolysis: the role of myoglobin. Exp Nephrol. 2000; 8 (2): 72-76. DOI:10.1159/000020651. PMID: 10729745.; Kodadek L., Carmichael Ii S.P., Seshadri A., Pathak A., Hoth J., Appelbaum R., Michetti C.P, Gonzalez R.P. Rhabdomyolysis: an American Association for the Surgery of Trauma Critical Care Committee Clinical Consensus Document. Trauma Surg Acute Care Open. 2022; 7 (1): e000836. DOI:10.1136/tsaco-2021-000836. PMID: 35136842.; Масолитин С.В., Проценко Д.Н., Тюрин И.Н., Мамонтова О.А., Магомедов М.А. Современный взгляд на применение методов экстракорпоральной детоксикации при рабдомиолизе (обзор). Общая реаниматология. 2022; 18 (3): 59-68. DOI:10.15360/1813-9779-2022-3-59-68.; Donati G., Cappuccilli M., Di Filippo F, Nicoletti S., Ruggeri M., Scrivo A., Angeletti A., La Manna G. The use of supra-hemodiafiltration in traumatic rhabdomyolysis and acute kidney injury: a case report. Case Rep Nephrol Dial. 2021; 11 (1): 26-35. DOI:10.1159/000507424. PMID: 33708797.; Guzman N., Podoll A.S., Bell C.S., Finkel K.W. Myoglobin removal using high-volume high-flux hemofiltration in patients with oliguric acute kidney injury. Blood Purif. 2013; 36 (2): 107-111. DOI:10.1159/000354727. PMID: 24080745.; Masaka.ne I, Sakurai K. Current approaches to middle molecule removal: room for innovation. Nephrol Dial Transplant. 2018; 33 (sup-pl_3): iii12-iii21. DOI:10.1093/ndt/gfy224. PMID: 30281129.; Weidhase L., de Fallois J., Haufiig E., Kaiser T., Mende M., Petros S. Myoglobin clearance with continuous veno-venous hemodialysis using high cutoff dialyzer versus continuous veno-venous hemodiafiltration using high-flux dialyzer: a prospective randomized controlled trial. Crit Care. 2020; 24 (1): 644. DOI:10.1186/s13054-020-03366-8. PMID: 33176824.; Cabral B.M.I., Edding S.N., Portocarrero J.P., Lerma E.V. Rhabdomyolysis. Dis Mon. 2020; 66 (8): 101015. DOI:10.1016/j.disamonth.2020.101015. PMID: 32532456.; Dilken O., Ince C, van der Hoven B., Thijsse S., Ormskerk P, de Geus H.R.H. Successful reduction of creatine kinase and myoglobin levels in severe rhabdomyolysis using extracorporeal blood purification (CytoSorb®). Blood Purif. 2020; 49 (6): 743-747. DOI:10.1159/000505899. PMID: 32114569.; Daum H.C., Schmidt B.M.W., Napp L.C. Effects of hemoadsorption with cytoSorb during severe rhabdomyolysis. Blood Purif. 2021; 50 (2): 268-269. DOI:10.1159/000508277. PMID: 32535606.; Linden K, Scamvilli V, Kreyer S.F, Belenkiy S.M., Stewart I.J., Chung K.K., Cancio L.C., Batchinsky A.I. Evaluation of the Cytosorb™ hemo-adsorptive column in a pig model of severe smoke and burn injury. Shock 2015; 44 (5): 487-495. DOI:10.1097/SHK.0000000000000439. PMID: 26368927.; Kohler T., Schwier E., Praxenthaler J., Kirchner C., Henzler D., Eickmeyer C. Therapeutic modulation of the host defense by hemoadsorption with CytoSorb®-Basics, indications and perspectives — a scoping review. Int J Mol Sci. 2021; 22 (23): 12786. DOI:10.3390/ijms222312786. PMID: 34884590.; Stahl K, Rastelli E., Schoser B. A systematic review on the definition of rhabdomyolysis. J Neurol. 2020; 267 (4): 877-882. DOI:10.1007/s00415-019-09185-4. PMID: 30617905.; Gupta A., Thorson P, Penmatsa K.R., Gupta P. Rhabdomyolysis: revisited. Ulster Med J. 2021; 90 (2): 61-69. PMID: 34276082.; Baeza-Trinidad R. Rhabdomyolysis: a syndrome to be considered. Rabdomiolisis: un síndrome a tener en cuenta. [Article in English, Spanish]. Med Clin (Barc). 2022; 158 (6): 277-283. DOI:10.1016/j.medcli.2021.09.025. PMID: 34872769.; Scharf C., Liebchen U., Paal M., Irlbeck M., Zoller M., Schroeder I. Blood purification with a cytokine adsorber for the elimination of myoglobin in critically ill patients with severe rhabdomyolysis. Crit Care. 2021; 25 (1): 41. DOI:10.1186/s13054-021-03468-x PMID: 33509234.; Perkoff G.T., Hill R. L., Brown D.M., Tyler F.H. The characterization of adult human myoglobin. J Biol Chem. 1962; 237: 2820-2827. PMID: 14037297.; Wood T.D., Chen L.H., White C.B., Babbitt P.C., Kenyon G.L., McLafferty F.W. Sequence verification of human creatine kinase (43 kDa) isozymes by high-resolution tandem mass spectrometry. Proc Natl Acad Sci U S A. 1996; 93 (21): 12051. DOI:10.1073/pnas.93.21.12051-c. PMID: 8876261.; Zorova L.D., Pevzner I.B., Chupyrkina A.A., Zorov S.D., Silachev D.N., Plotnikov E.Y., Zorov D.B. The role of myoglobin degradation in nephrotoxicity after rhabdomyolysis. Chem Biol Interact. 2016; 256: 64-70. DOI:10.1016/j.cbi.2016.06.020. PMID: 27329933.; Масолитин С. В. Проценко Д.Н., Тюрин И.Н., Мамонтова О.А., Магомедов М.А., Ким Т.Г., Яралян А.В. Применение селективной гемоперфузии при лечении токсического рабдомиолиза, осложненного острым повреждением почек. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2022; 19 (1): 58-66. DOI:10.21292/2078-5658-2022-19-1-58-66.; Schrezenmeier E.V., Barasch J., Budde K., Westhoff T., Schmidt-Ott K.M. Biomarkers in acute kidney injury — pathophysiological basis and clinical performance. Acta Physiol (Oxf). 2017; 219 (3): 554-572. DOI:10.1111/apha.12764. PMID: 27474473.; Pasala S., Carmody J.B. How to use. serum creatinine, cystatin C and GFR. Arch Dis Child Educ Pract Ed. 2017; 102 (1): 37-43. DOI:10.1136/archdischild-2016-311062. PMID: 27647862.; Padiyar S., Deokar A., Birajdar S., Walawalkar A., Doshi H. Cytosorb for management of acute kidney injury due to rhabdomyolysis in a child. Indian Pediatr. 2019; 56 (11): 974-976. PMID: 31729332.; Kwiatkowska M., Chomicka I., Malyszko J. Rhabdomyolysis — induced acute kidney injury — an underestimated problem. Wiad Lek. 2020; 73 (11): 2543-2548. PMID: 33454698.; Масолитин С.В., Проценко Д.Н., Тюрин И.Н., Мамонтова О.А., Магомедов М.А., Ким Т.Г., Попов А.Ю. Применение комбинированной экстракорпоральной детоксикации при лечении токсического рабдомиолиза, осложненного острым повреждением почек: одноцентровое проспективное рандомизированное исследование. Вестник интенсивной терапии имени АИ Салтанова. 2022; 2: 95-107. DOI:10.21320/1818-474X-2022-2-95-107.; Lang C.N., Sommer M.J., Neukamm M.A., Staudacher D.L., Supady A., Bode C., Duerschmied D., Lother A. Use of the CytoSorb adsorption device in MDMA intoxication: a first-in-man application and in vitro study. Intensive Care Med Exp. 2020; 8 (1): 21. DOI:10.1186/s40635-020-00313-3. PMID: 32542550.; Хорошилов С.Е., Никулин А. В. Детоксикация при критических состояниях: понимание научной проблемы в XXI веке (обзор). Общая реаниматология. 2017; 13 (5): 85-108. DOI:10.15360/1813-9779-2017-5-85-108.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2240

  11. 11
  12. 12
    Academic Journal

    Πηγή: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 63, № 1 (2019); 44-54 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 63, № 1 (2019); 44-54 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2019-63-1

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/584/589; Thomas, C. E. Oxygen Radicals and the Disease Process / C. E. Thomas, B. Kalyanaraman. - Harwood Academic Publishers, 1998. - 296 p.; Halliwell, B. Free Radicals in Biology and Medicine / B. Halliwell, J. M. C. Gutteridge. 4th ed. - New York: Oxford University Press, 2007. - 851 p.; Pisoschi, A. M. The role of antioxidants in the chemistry of oxidative stress: A review / A. M. Pisoschi, A. Pop // Europ. J. Med. Chem. - 2015. - Vol. 97. - P. 55-74. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2015.04.040; Свободные радикалы в живых системах / Ю. А. Владимиров [и др.]. - Москва, 1991. - Т. 29. - 249 с.; Определение антиоксидантной активности плазмы крови в экспериментальных и клинических исследованиях / И. В. Бабенкова [и др.] // Евразийский Союз Ученых № 13. Сер. Биол. науки. - 2015. - № 4. - С. 7-16.; Литвинко, Н. М. Фосфолипаза А2 IB - новый индикатор для оценки про-антиоксидантного статуса организма / Н. М. Литвинко, Л. А. Скоростецкая, Д. О. Герловский // Докл. Нац. акад. наук Беларуси. - 2017. - Т. 61, № 4. - С. 60-68.; Litvinko, N. M. The interaction of phospholipase A2 with oxidized phospholipids at the lipid-water surface with different structural organization / N. M. Litvinko, L. A. Skorostetskaya, D. O. Gerlovsky // Chemistry and Physics of Lipids. - 2017. -Vol. 211. - P. 44-51. https://doi.org/10.1016/j.chemphyslip.2017.10.010; Литвинко, Н. М. Взаимодействие фосфолипазы А2 с фосфатидилхолином в условиях УФ-облучения / Н. М. Лит-винко, Л. А. Скоростецкая, Д. О. Герловский // Тр. XIX Менделеевского съезда. - Волгоград, 2011. - Т. 1. - С. 268.; Rice-Evans, C. Total antioxidant status in plasma and body fluids / C. Rice-Evans, N. Miller // Meth. Enzymol. - 1994. -Vol. 234, N 2. - P. 279-293. https://doi.org/10.1016/0076-6879(94)34095-1; Система «окисленные фосфолипиды-гемоглобин» как мера протекторного действия природных антиоксидантов против окислительного стресса / Л. А. Скоростецкая [и др.] // Свободные радикалы в химии и жизни. - Минск, 2017. - С. 124-126.; Baron, C. P. Peroxidation of linoleate at physiological pH: hemichrome formation by substrate binding protect against metmyoglobin activation by hydrogen peroxide / C. P. Baron, L. H. Skibsted, H. J. Andersen // Free Radical Biology & Medicine. - 2000. - Vol. 28, N 4. - P. 549 -558. https://doi.org/10.1016/s0891-5849(99)00240-3; A simplified procedure for semitargeted lipidomic analysis of oxidized phosphatidylcholines induced by UVA irradiation / F. Gruber [et al.] // J. Lipid. Res. - 2012. - Vol. 53, N 6. - P. 1232-1242. https://doi.org/10.1194/jlr.d025270; Метелица, Д. И. Инициирование и ингибирование радикальных процессов в биохимических пероксидных системах (обзор) / Д. И. Метелица, Е. И. Карасева // Прикладная биохимия и микробиология. - 2007. - Т. 43, № 5. -С. 537-564.; Хромопротеины: структура, свойства и функции. Обмен гемоглобина и его нарушения / Е. В. Александрова [и др.]. - Запорожье, 2015. - 75 с.; Андреюк, Г. М. Образование гемихрома при взаимодействии с полярными производными фосфатидилхолина / Г М. Андреюк, М. А. Кисель // Биоорг. химия. - 1997 . - Т. 23, № 4. - C. 290-293.; Peptide Inhibitor of Complement C1 (PIC1) demonstrates antioxidant activity via single electron transport (SET) and hydrogen atom transfer (HAT) / M. G. Rivera [et al.] // PLoS One. - 2018. - Vol. 13, N 3. - e0193931. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0193931; Antioxidant activity of flavonoids evaluated with myoglobin method / M. Terashima [et al.] // Plant Cell Rep. - 2012. -Vol. 31, N 2. - P. 291-298. https://doi.org/10.1007/s00299-011-1163-2; Koch, J. Membrane-bound globin X protects the cell from reactive oxygen species / J. Koch, T. Burmester // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2016. - Vol. 469, N 2. - P. 275-280. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2015.11.105; Ioannou, A. Modifications of hemoglobin and myoglobin by Maillard reaction products (MRPs) / A. Ioannou, C. Var-otsis // PLoS One. - 2017. - Vol. 12, N 11. - e0188095. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0188095; Banerjee, S. Structural alterations of hemoglobin and myoglobin by glyoxal: a comparative study / S. Banerjee, A. S. Chakraborti // Int. J. Biol. Macromolec. - 2014. - Vol. 66. - P. 311-318. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2014.02.034; Banerjee, S. Methylglyoxal modification enhances the stability of hemoglobin and lowers its iron-mediated oxidation reactions: An in vitro study / S. Banerjee, A. S. Chakraborti // Int. J. Biol. Macromolec. - 2017. - Vol. 95. - P. 1159-1168. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2016.11.006; Инициирование и ингибирование радикальных процессов в системах Н2О2-метмиоглобин/метгемоглобин / Д. И. Метелица [и др.] // Биохимия. - 2001. - Т. 66, № 5. - С. 628-639.; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/584

  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Πηγή: Rational Pharmacotherapy in Cardiology; Vol 6, No 5 (2010); 631-638 ; Рациональная Фармакотерапия в Кардиологии; Vol 6, No 5 (2010); 631-638 ; 2225-3653 ; 1819-6446 ; 10.20996/1819-6446-2010-6-5

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.rpcardio.com/jour/article/view/957/990; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/957/991; Missov E., Calzolari C., Pau В. Circulating Cardiac Troponin I in Severe Congestive Heart Failure. Circulation 1997; 96(9): 2953-2958.; Beltrami C.A., Finato N., Rocco M. et al. Structural basis of end-stage failure in ischemic cardiomyopathy in humans. Circulation 1994;89(1):151-163.; Schaper J.S., Froede R., Hein S. et al. Impairment of the myocardial ultrastructure of the cytoskeleton in dilated cardiomyopathy. Circulation 1991;83(2):504-514.; Bardy G.H., Lee K.L., Mark D.B. et al.; Sudden Cardiac Death in Heart Failure Trial (SCD-HeFT) Investigators. Amiodarone or an implantable cardioverter-defibrillator for congestive heart failure. N Engl J Med 2005;352(3):225-37.; Missov E., Calzolari C. Elevated cardiac troponin I in some patients with severe congestive heart failure [abstract]. J Mol Cell Cardiol 1995;27:A405.; NapalkovD.A., Golovenko E.N., Sulimov V.A. Prognostic value of cardiac troponins in patients with chronic heart failure. Lechashhij vrach 2009; 2: 14-16. Russian. (Напалков Д.А., Головенко Е.Н., Сулимов В.А. К вопросу о прогностической значимости уровня сердечных тропонинов у больных хронической сердечной недостаточностью. Лечащий врач 2009; 2: 14-16); Del Carlo C.H., O'Connor C.M. Cardiac troponins in congestive heart failure. Am Heart J 1999;138(4 Pt 1):646-53.; https://www.rpcardio.com/jour/article/view/957

  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20