Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 30 για την αναζήτηση '"минимальная подавляющая концентрация"', χρόνος αναζήτησης: 0,77δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 3.74 (2016); 11-17
    МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 3.74 (2016); 11-17
    МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 3.74 (2016); 11-17

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Σύνδεσμος πρόσβασης: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/76136

  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; 2619-0494 ; 2073-3046

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011/1033; Pechere J.C. Macrolide resistance mechanisms in Gram-positive cocci // International Journal of Antimicrobial Agents. 2001. Vol. 18. Suppl. 1. P. 25–28.; Bartkus J.M., Juni B.A., Ehresmann K., et al. Identification of a mutation associated with erythromycin resistance in Bordetella pertussis: implications for surveillance of antimicrobial resistance // Journal of Clinical Microbiology. 2003. Vol. 41, № 3. P. 1167–1172.; Menninger J.R. Functional consequences of binding macrolides to ribosomes // The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1985. Vol. 16. Suppl. A. P. 23–34.; Бакулина Н. А., Ефимова О. Г., Высотский В. В. и др. Ультраструктура свежевыделенных штаммов B. Pertussis. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. Т. 61, № 11. С. 24–26.; Wang Z., Han R., Liu Y., et al. Direct detection of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in clinical specimens by PCR. Journal of Clinical Microbiology. 2015. Vol. 53, № 11. P. 3418–3422.; Waters V., Halperin S.A. Bordetella pertussis. In: Bennett J.E., Dolin R., Blaser M.J., editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th edition. Philadelphia: Elsevier Science; 2014. P. 2619–2628.; Lewis K., Saubolle M.A., Tenover F.C., et al. Pertussis caused by an erythromycin-resistant strain of Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995. Vol. 14, № 5. P. 388–391.; Korgenski K., Daly J.A. Surveillance and detection of erythromycin resistance in Bordetella pertussis isolates recovered from a pediatric population in the Intermountain West Region of the United States. Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 11. P. 2989–2991.; Mirzaei B., Bameri Z., Babaei R., et al Isolation of high level macrolide resistant Bordetella pertussis without transition mutation at domain V in Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015. Vol. 8, № 7. P. e18190.; Guillot S., Descours G., Gillet Y., et al. Macrolide resistant Bordetella pertussis infection in newborn girl, France. Emerging Infectious Diseases. 2012. Vol. 18, № 6. P. 966–968.; Kamachi K., Duong H.T., Dang A.D., et al. Macrolide-resistant Bordetella pertussis, Vietnam, 2016–2017. Emerging Infectious Diseases. 2020. Vol. 26, № 10. P. 2511–2513.; Wilson K.E., Cassiday P.K., Popovic T., et al. Bordetella pertussis isolates with a heterogeneous phenotype for erythromycin resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2002. Vol. 40, № 8. P. 2942–2944.; Xu Z., Wang Z., Luan Y., et al. Genomic epidemiology of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in China. Emerging Microbes & Infections. 2019. Vol. 8, № 1. P. 461–470.; Li L., Deng J., Ma X., et al. High prevalence of macrolide-resistant Bordetella pertussis and ptxP1 genotype, mainland China, 2014–2016. Emerging Infectious Diseases. 2019. Vol. 25, № 12. P. 2205–2214.; Wang Z., Cui Z., Li Y., et al. High prevalence of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in Xi’an, China. Clinical Microbiology and Infection. 2014. Vol. 20, № 11. P. O825–O830.; Yang Y., Yao K., Ma X., et al. Variation in Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin and virulence-related genotype changes in China (1970–2014). PLoS One. 2015. Vol. 10, № 9. P. e0138941.; Feng Y., Chiu C.H., Heininger U., et al. Emerging macrolide resistance in Bordetella pertussis in mainland China: findings and warning from the global pertussis initiative. The Lancet regional health. Western Pacific. 2021. Vol. 8. P. 100098.; Dinu S., Guillot S., Dragomirescu C.C., et al. Whooping cough in South-East Romania: a 1-year study. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2014. Vol. 78, № 3. P. 302–306.; Fry N.K., Duncan J., Vaghji L., et al. Antimicrobial susceptibility testing of historical and recent clinical isolates of Bordetella pertussis in the United Kingdom using the Etest method. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2010. Vol. 29, № 9. P. 1183–1185.; Galanakis E., Englund J.A., Abe P., et al. Antimicrobial susceptibility of Bordetella pertussis isolates in the state of Washington. International Journal of Antimicrobial Agents. 2007. Vol. 29, № 5. P. 609–611.; Horiba K., Nishimura N., Gotoh K., et al. Clinical manifestations of children with microbiologically confirmed pertussis infection and antimicrobial susceptibility of isolated strains in a regional hospital in Japan, 2008–2012. Japanese Journal of Infectious Diseases. 2014. Vol. 67, № 5. P. 345–348.; Jakubu V., Zavadilova J., Fabianova K., et al. Trends in the minimum inhibitory concentrations of erythromycin, clarithromycin, azithromycin, ciprofloxacin, and trimethoprim / sulfamethoxazole for strains of Bordetella pertussis isolated in the Czech Republic in 1967–2015. Central European Journal of Public Health. 2017. Vol. 25, № 4. P. 282–286.; Marchand-Austin A., Memari N., Patel S.N., et al. Surveillance of antimicrobial resistance in contemporary clinical isolates of Bordetella pertussis in Ontario, Canada. International Journal of Antimicrobial Agents. 2014. Vol. 44, № 1. P. 82–84.; Sintchenko V., Brown M., Gilbert G.L. Is Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin changing? MIC trends among Australian isolates 1971–2006. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2007. Vol. 60, № 5. P. 1178–1179.; Souder E., Vodzak J., Evangelista A.T., et al. Antimicrobial susceptibility and molecular detection of pertactin-producing and pertactin-deficient Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2017. Vol. 36, № 1. P. 119–121.; Yao S.M., Liaw G.J., Chen Y.Y., et al. Antimicrobial susceptibility testing of Bordetella pertussis in Taiwan prompted by a case of pertussis in a paediatric patient. Journal of Medical Microbiology. 2008. Vol. 57. Pt. 12. P. 1577–1580.; Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 31st edition. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.; European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST, Version 11.0. Basel: EUCAST; 2021.; Hill B.C., Baker C.N., Tenover F.C. A simplified method for testing Bordetella pertussis for resistance to erythromycin and other antimicrobial agents. Journal of Clinical Microbiology. 2000. Vol. 38, № 3. P. 1151–1155.; Gordon K.A., Fusco J., Biedenbach D.J., et al. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Bordetella pertussis from northern California: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2001. Vol. 45, № 12. P. 3599–3600.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011

  3. 3
    Academic Journal

    Συνεισφορές: This work was carried out within the framework of the state assignment of the Ministry of Health of the Russian Federation in terms of conducting research on the topic “Search and development of promising compounds with antibacterial activity among pyrimidine derivatives for the creation of drugs” 48.2-2021., Данная работа выполнена в рамках государственного задания Министерства здравоохранения РФ в части проведения НИР по теме «Поиск и разработка перспективных соединений с антибактериальной активностью среди производных пиримидина для создания лекарственных препаратов» 48.2-2021.

    Πηγή: Pharmacy & Pharmacology; Том 9, № 4 (2021); 318-329 ; Фармация и фармакология; Том 9, № 4 (2021); 318-329 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2021-9-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885/750; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885/751; Abrusán G., Marsh J.A. Ligands and receptors with broad binding capabilities have common structural characteristics: An antibiotic design perspective // J. Med. Chem. – 2019. – Vol. 62. – Р. 9357−9374. DOI:10.1021/acs.jmedchem.9b00220.; Beyzaei H., Ghasemi B. In vitro Antibacterial evaluation of newly synthesized heterocyclic compounds against Streptococcus Pneumoniae // Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran. – 2018. – Vol. 29, No.3. – Р. 211–220. DOI:10.22059/JSCIENCES.2018.67436.; Цибизова А.А., Ясенявская А.Л., Озеров А.А., Самотруева М.А., Тюренков И.Н. Оценка острой токсичности нового пиримидинового производного // Астраханский медицинский журнал. – 2021. – Т. 16, № 1. – С. 82–87. DOI:10.17021/2021.16.1.82.87.; Jampilek J. Heterocycles in Medicinal Chemistry // Molecules. – 2019. -Vol. 24. – Art. No.3839. DOI:10.3390/molecules24213839.; Patel P.R., Joshi H., Shah U., Bapna M., Patel B. New generation of quinazolinone derivatives as potent antimicrobial agents // Asian Pac. J. Health Sci. – 2021. – Vol. 8, No.2. – Р. 61–66. DOI:10.21276/apjhs.2021.8.2.12.; Etebu E., Arikekpar I. Antibiotics: Classification and mechanisms of action with emphasis on molecular perspectives // Int. J. Appl. Microbiol. Biotechnol.Res. – 2016. – Vol. 4. – Р. 90–101.; Alanazi A.M., Abdel-Aziz A.A.M., Shawer T.Z., Ayyad R.R., Al-Obaid A.M., Al-Agamy M.H.M., Maarouf A.R., El-Azab A.S. Synthesis, antitumor and antimicrobial activity of some new 6-methyl-3-phenyl-4(3H)-quinazolinone analogues: in silico studies // Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry. – 2016. – Vol. 31, No.5. – Р. 721–735. DOI:10.3109/14756366.2015.1060482.; El-Sayed N.N.E., Al-Otaibi T.M., Alonazi M., Masand V.H., Barakat A., Almarhoon Z.M., Ben Bacha A. Synthesis and characterization of some new quinoxalin-2(1H)-one and 2-methyl-3H-quinazolin-4-one derivatives targeting the onset and progression of CRC with SRA, Molecular Docking, and ADMET analyses // Molecules. – 2021. – Vol. 26. – Art. No.3121. DOI:10.3390/molecules26113121.; Hassan K.A., Liu Q., Elbourne L.D.H., Ahmad I., Sharples D., Naidu V., Chan C.L., Li L., Harborne S.P.D., Pokhrel A., Postis V.L.G., Goldman A., Henderson P.J.F., Paulsen I.T. Pacing across the membrane: the novel PACE family of efflux pumps is widespread in gram-negative pathogens // Research in Microbiology. – 2018. – Vol. 169. – P. 450–454. DOI:10.1016/j.resmic.2018.01.001.; Vila J., Moreno-Morales J., Balleste-Delpierre C. Current landscape in the discovery of novel antibacterial agents // Clinical Microbiology and Infection. – 2020. – Vol. 26. – P. 596–603. DOI:10.1016/j.cmi.2019.09.015.; Nagaraja V., Godbole A.A., Henderson S.R., Maxwell A. DNA topoisomerase I and DNA gyrase as targets for TB therapy // Drug Discovery Today. – 2017. – Vol. 22, Nо. 3. – P. 510–518. DOI:10.1016/j.drudis.2016.11.006.; D’Atanasio N., Capezzone de Joannon A., Di Sante L., Mangano G., Ombrato R., Vitiello M., Antibacterial activity of novel dual bacterial DNA type II topoisomerase inhibitors // Plos One. – 2020. – Vol. 15, No. 2. – Р. 1–21. DOI:10.1371/journal.pone.0228509.; Karaman R., Jubeh B., Breijyeh Z., Karaman R. Resistance of gram-positive bacteria to current antibacterial agents and overcoming approaches // Molecules. – 2020. – Vol. 25, No.12. – Art. No.2888. DOI:10.3390/molecules25122888.; Lepak A.J., Seiler P., Surivet J.P., Ritz D., Kohl C., Andes D.R. In vivo pharmacodynamic target investigation of two bacterial topoisomerase inhibitors, ACT-387042 and ACT-292706, in the neutropenic murine thigh model against Streptococcus pneumoniaeand Staphylococcus aureus // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. – 2016. – Vol. 60, No. 6. – Р. 3626–3632. DOI:10.1128/AAC.00363-16.; Li L., Wang Q., Zhang H., Yang M., Khan M.I., Zhou X. Sensor histidine kinase is a β-lactam receptor and induces resistance to β-lactam antibiotics // Microbiology. – 2016. – Vol. 113, No.6. – P. 1648–1653. DOI:10.1073/pnas.1520300113.; Qiao Y., Srisuknimit V., Rubino F., Schaefer K., Ruiz N., Walker S., Kahne D. Lipid II overproduction allows direct assay of transpeptidase inhibition by β-lactams // Nat Chem Biol. – 2017. – Vol. 13, No.7. – Р. 793–798. DOI:10.1038/nchembio.2388.; Janardhanan J., Bouley R., Martнnez-Caballero S., Peng Z., Batuecas-Mordillo M., Meisel J.E., Ding D., Schroeder V.A., Wolter W.R., Mahasenan K.V., Hermoso J.A., Mobashery S., Chang M. The quinazolinone allosteric inhibitor of PBP 2a synergizes with piperacillin and tazobactam against methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. – 2019. – Vol. 63, No.5. – Р. 1–12. DOI:10.1128/AAC.02637-18.; Liu J., Chen D., Peters B.M., Li L., Li B., Xu Z., Shirliff M.E. Staphylococcal chromosomal cassettes mec (SCCmec): A mobile genetic element in methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Microbial Pathogenesis. – 2016. – Vol. 101. – Р. 56–67. DOI:10.1016/j.micpath.2016.10.028.; Cai Z.Q., Jin Z.S., Zheng D.Q, Hou L., Huang G.W., Tian J.Q., Wang G.J. Synthesis of several new quinazolin-4-amines containing p-toluenesulfonate moiety // Journal of chemical research. – 2016. – Vol. 40. – Р. 573–575. DOI:10.3184/174751916X14725679922221.; Khan I., Zaib S., Batool S., Abbas N., Ashraf Z., Iqbal J., Saeed A. Quinazolines and quinazolinones as ubiquitous structural fragments in medicinal chemistry: An update on the development of synthetic methods and pharmacological diversification // Bioorg. Med. Chem. – 2016. – Vol. 24. – Р. 2361–2381. DOI:10.1016/j.bmc.2016.03.031.; Badshah S.L., Ullah A. New developments in non-quinolone-based antibiotics for the inhibition of bacterial gyrase and topoisomerase IV // European Journal of Medicinal Chemistry. – 2018. – Vol. 152. – Р. 393–400. DOI:10.1016/j.ejmech.2018.04.059.; Qian Y., Allegretta G., Janardhanan J., Peng Z., Mahasenan K.V., Lastochkin E., Gozun M.M.N., Tejera S., Schroeder V.A., Wolter W.R., Feltzer R., Mobashery S., Chang M. Exploration of the structural space in 4(3H)-quinazolinone antibacterials // J Med Chem. – 2020. – Vol. 63, No.10. – Р. 5287–5296. DOI:10.1021/acs.jmedchem.0c00153.; Masri A., Anwar A., Khan N.A., Shahbaz M.S., Khan K.M., Shahabuddin S., Siddiqui R. Antibacterial effects of quinazolin-4(3H)-one functionalized-conjugated silver nanoparticles // Antibiotics. – 2019. – Vol. 8. – Р. 179. DOI:10.3390/antibiotics8040179.; Bouley R., Ding D., Peng Z., Bastian M., Lastochkin E., Song W., Suckow M.A., Schroeder V.A., Wolter W.R., Mobashery S., Chang M. Structure−activity relationship for the 4(3H) quinazolinoneantibacterials // Journal of Medicinal Chemistry. – 2016. – Vol. 59. – P. 5011–5021. DOI:10.1021/acs.jmedchem.6b00372.; Nakano S., Fujisawa T., Ito Y., Chang B., Matsumura Y., Yamamoto M., Suga S., Ohnishi M., Nagao M. Penicillin-binding protein typing, antibiotic resistance gene identification, and molecular phylogenetic analysis of meropenem-resistant Streptococcus pneumoniaeserotype 19A-CC3111 strainsin Japan // Antimicrob Agents Chemother. – 2019. – Vol. 63. – Р. 1–9. DOI:10.1128/AAC.00711-19.; Brouwers R., Vass H., Dawson A., Squires T., Tavaddod S., Allen R.J. Stability of β-lactam antibiotics in bacterial growth media // PLoS One. – 2020. – Vol. 15, No.7. – Р. e0236198. DOI:10.1371/journal.pone.0236198.; Ligozzi M., Galia L., Bertoncelli A., Mazzariol A. Intrinsic role of coagulase negative staphylococcinor A-like efflux system in fluoroquinolones resistance // AIMS Microbiology. – 2017. – Vol. 3, No.4. – Р. 908–914. DOI:10.3934/microbiol.2017.4.908.; Ankireddy A.R., Rambabu G., Balaraju T., Banothu V., Gundla P.L., Addepally U., Mantipally M. Synthesis, characterization and antibacterial activity of some novel C-7-Substituted-2-morpholino-N-(pyridin-2-ylmethyl)quinazolin-4-amine derivatives // Der PharmaChemica. – 2018. – Vol. 10, No.11. – Р. 40–48.; Ghorab M.M., Alqahtani A.S., Soliman A.M., Askar A.A. Novel N-(Substituted) thioacetamide quinazolinone benzene sulfonamides as antimicrobial agents // International Journal of Nanomedicine. – 2020. – Vol. 15. – Р. 3161–3180. DOI:10.2147/IJN.S241433.; De Rosa M., Verdino A., Soriente A., Marabotti A. The Odd Couple(s): An overview of Beta-Lactam antibiotics bearing more than one pharmacophoric group // Int. J. Mol. Sci. – 2021. – Vol. 22. – Р. 2–21. DOI:10.3390/ijms22020617.; Kahlmeter G., Brown D. F. J., Goldstein F. W., MacGowan A. P., Mouton J. W., Odenholt I., Rodloff A., Soussy C-J., Steinbakk M., Soriano F., Stetsiouk O. European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST) Technical Notes on antimicrobial susceptibility testing // Clinical Microbiology and Infection. – 2006. – Vol. 12, No. 6. – Р. 501–503. DOI:10.1111/j.1469-0691.2006.01454.x.; Turnidge J., Kahlmeter, G., Kronvall, G. Statistical characterisation of bacterial wild-type MIC value distributions and the determination of epidemiological cut-off values // ClinMicrobiol Infect. – 2006. – Vol. 12, No.5. – Р. 418–425. DOI:10.1111/j.1469-0691.2006.01377.x.; Лужнова С.А., Воронков А.В., Кодониди И.П., Габитова Н.М., Храпова А.В., Бель С. Активность новых производных 1,3-диазинона-4 и их нециклических предшественников в отношении Staphilococcus aureus // Астраханский медицинский журнал. – 2017. – Т. 12, № 2. – С. 56–63.; Gajdács M. The continuing threat of methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antibiotics. – 2019. – Vol. 8. – Р. 52. DOI:10.3390/antibiotics8020052.; Nandwana N.K., Singh R.P., Patel O.P.S., Dhiman S., Saini H.K., Jha P.N., Kumar A. Design and synthesis of Imidazo/Benzimidazo[1,2-c]quinazolinederivatives and evaluation of their antimicrobial activity// ACS Omega. – 2018. – Vol.3, No. 11. – Р. 16338−16346. DOI:10.1021/acsomega.8b01592.; Maruthamuthu D., Rajam S., Christina Ruby Stella P., BharathiDileepan A.G., Ranjith R. The chemistry and biological significance of imidazole, benzimidazole, benzoxazole, tetrazole and quinazolinone nucleus // J. Chem. Pharm. Res. – 2016. – Vol. 8, No. 5. – Р. 505–526.; Mahato A., Shrivastava B., Shanthi N. Synthesis, Molecular Docking and Biological Evaluation of Substituted Quinazolinones as Antibacterial Agents // Chemical Science Transactions. – 2015. – Vol. 4, No. 2. – Р. 595–603. DOI:10.7598/cst2015.995.; Fisher J.F., Mobashery S. Constructing and deconstructing the bacterial cell wall // Protein Science. – 2020. – Vol. 29. – Р. 629–646. DOI:10.1002/pro.3737.; Ibrahim M.A.A., Abdeljawaad K.A.A., Abdelrahman A.H.M., Alzahrani O.R., Alshabrmi F.M., Khalaf E., Moustafa M.F., Alrumaihi F., Allemailem K.S., Soliman M.E.S., Paré P.W., Hegazy M.E.F., Atia M.A.M. Non-b-Lactam allosteric inhibitors target methicillin-resistant Staphylococcus aureus: an in silico drug discovery study // Antibiotics. – 2021. – Vol. 10, No. 8. – Art. No. 934. DOI:10.3390/antibiotics10080934.; Mahasenan K.V., Molina R., Bouley R., Batuecas M.T., Fisher J.F., Hermoso J.A., Chang M., Mobashery S. Conformational dynamics in penicillin-binding protein 2a of methicillin-resistant Staphylococcus aureus, allosteric communication network and enablement of catalysis // J Am Chem Soc. – 2017. – Vol. 139, No. 5. – Р. 2102–2110. DOI:10.1021/jacs.6b12565.; Higgins D.L., Chang R., Debabov D.V., Leung J., Wu T., Krause K.M., Sandvik E., Hubbard J.M., Kaniga K., Schmidt D.E. Jr, Gao Q., Cass R.T., Karr D.E., Benton B.M., Humphrey P.P. Telavancin, a multifunctional lipoglycopeptide, disrupts both cell wall synthesis and cell membrane integrity in methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Antimicrobial agents and chemotherapy. – 2005. – Vol. 49, No. 3. – P. 1127–1134. DOI:10.1128/AAC.49.3.1127-1134.2005.; Bayer A.S., Schneider T., Sahl H.G. Mechanisms of daptomycin resistance in Staphylococcus aureus: role of the cell membrane and cell wall // Ann N Y Acad Sci. – 2013. – Vol. 1277, No. 1. – Р. 139-158. DOI:10.1111/j.1749-6632.2012.06819.x.; Зубарева И.В., Беренштейн Т.Ф., Федянин С.Д. Об адгезии грамположительных кокков // Вестник ВГМУ. – 2010. – Т. 9, №1. – C. 1–15.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/885

  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Πηγή: Drug development & registration; № 2 (2017); 188-190 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; № 2 (2017); 188-190 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/428/423; А.Ю. Сергеев, О.Л. Иванов, Ю.В. Сергеев. Исследование современной этиологии онихомикоза в России // Российский журнал кожных и венерологических болезней. 2002. Т. 5. С. 42-46.; Н.Н. Климко, Я.И. Козлова, О.В. Шадривова и др. Распространенность тяжелых и хронических микотических заболеваний в Российской Федерации по модели LifeProgram // Проблемы медицинской микологии. 2014. Т. 16. № 1. С. 3-7.; А.Ю. Сергеев. Системная терапия онихомикозов: пособие для врачей. 2-е изд. - М.: Национальная академия микологии. 2007. C. 3-17.; А.Г. Довнар, Е.С. Носонова. Характеристика множественной резистентности клинических штаммов энтеробактерий, ацинетобактер и кандид // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2011. № 4. С. 53-54.; Д.А. Донгак, О.Г. Карноухова, Г.Ю. Коган и др. Частота выделения и лекарственная резистентность грибов рода Candida от больных ВИЧ-инфекцией в Иркутске // Сибирский медицинский журнал. 2013. № 5. С. 57-59.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/428

  6. 6
    Academic Journal

    Πηγή: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 17, № 6 (2018); 11-18 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 17, № 6 (2018); 11-18 ; 2619-0494 ; 2073-3046 ; 10.31631/2073-3046-2018-17-6

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/605/479; Дунаевский А.М., Кириченко И.М. Клиническое обоснование использования препарата мирамистин в терапии инфекционно-воспалительных заболеваний респираторной системы. Обзор литературы. // Поликлиника. 2013. Т. 5, № 3. С. 6–12.; Юркин С.А., Михирева М.М. Совершенствование местного медикаментозного лечения острых синуситов. // Российская ринология. 2009. Т. 17, № 2. С. 32.; Аполихина И.А., Муслимова С.З. Бактериальный вагиноз: что нового? // Гинекология. 2008. Т. 10, № 6. С. 36–37.; Славский А.Н., Мейтель И.Ю. Боль в горле: обоснование оптимального выбора препарата. // Медицинский совет. 2016. № 18. С. 128–132.; Свистушкин В.М., Никифорова Г.Н., Петрова Е.И. Бактериальные инфекции лор-органов: деликатная терапия. // Медицинский совет. 2017. № 8. С. 58–63.; Kuchar E., Miśkiewicz K., Szenborn L., Kurpas D. Respiratory tract infections in children in primary healthcare in Poland. // Adv Exp Med Biol. 2015. N 835. P. 53–9.; Краснова Н.А., Миронова Н.Г. Бактериальный вагиноз. Новый метод восстановления биотопа влагалища. // Вестник Самарского университета. Естественнонаучная серия. 2006. Т. 6–2, № 46. С. 95–99.; Серова О.Ф., Зароченцева Н.В., Меньшикова Н.С. Бактериальный вагиноз: лечение и профилактика. // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2009. Т. 8, № 1. С. 84–-86.; Кузнецова И.В. Вопросы диагностики и лечения инфекционных заболеваний влагалища. // Эффективная фармакотерапия. 2016. № 14. С. 12–21.; Ballesteros S., Ramón M.F., Martínez-Arrieta R. Ingestions of benzydamine-containing vaginal preparations. // Clin Toxicol (Phila). 2009. Vol. 47, N 2. P. 145–149.; Fanaki N.H., el-Nakeeb M.A. Antimicrobial activity of benzydamine, a non-steroid anti-inflammatory agent. // J Chemother. 1992. Vol. 4, N 6. P. 347–352.; Prats G. Determination of Benzydamine antibacterial activity against clinical strains: an in vitro study. Servicio de Microbiologia, Hospital de Sant Pau, Barcelona, Spain.2001, study of Angelini ACRAF S.p.A. #8655U01.; Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, методические указания МУК 4.2.1890-04. // Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2004. Т .6, № 4. С. 306–359.; CLSI. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. 13th Edition. CLSI supplement M2-A8. Wayne, PA. Clinical and Laboratory Standards Institute, 2004.; Светоч Э.А., Теймуразов М.Г., Абаимова А.А., Фурсова Н.К. Антибиотикорезистентность и детекция генов устойчивости к ванкомицину у культур Enterococcus spp., выделенных от людей и промышленной птицы в Российской Федерации. // Материалы XI съезда Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов «Обеспечение эпидемиологического благополучия: вызовы и решения». М. 16–17 ноября 2017 г. С. 380.; Прямчук С. Д., Фурсова Н. К., Абаев И. В. и др. Генетические детерминанты устойчивости к антибактериальным средствам в нозокомиальных штаммах Escherichia coli, Klebsiella spp. и Enterobacter spp., выделенных в России в 2003-2007 гг. // Антибиотики и химиотерапия. 2010. Т. 55, № 9–10. С. 3–10.; Слукин П. В., Асташкин Е. И., Ермоленко З. М., Фурсова Н. К., Ершова М. Г. Генетические детерминанты антибиотикорезистнтности и вирулентности уропатогенных Escherichia coli, выделенных в г. Ярославле в 2016–2017 гг. // Материалы 1-го Российского микробиологического конгресса, 17–18 октября 2017 г., Пущино-на-Оке. С. 124–125.; Volozhantsev N.V., Kislichkina A.A., Lev A.I., et al. Genome Sequences of Two NDM-1 Metallo-β-Lactamase-Producing Multidrug-Resistant Strains of Klebsiella pneumoniae with a High Degree of Similarity, One of Which Contains Prophage. // Genome Announc. 2017. Vol. 5, N 42. pii: e01173-17.; Скрябин Ю. П., Печерских Э. И., Коробова О. В., Шишкова Н. А., Абаев И. В. Идентификация эпидемических линий метициллин-резистентных Staphylococcus aureus, впервые выявленных в центральной России. Тезисы XIV Международного конгресса МАКМАХ по антимикробной химиотерапии. // Клиническая микробиология и антимикробная терапия. 2012. Т.14, № 2–S1. С. 20.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/605

  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Relation: Петровская, Т. А. Сравнительная оценка методов определения минимальных концентраций колистина, эффективно подавляющих развитие экстремально-антибиотикорезистентных микроорганизмов / Т. А. Петровская [и др.] // Лабораторная диагностика. Восточная Европа. – 2021. – Т. 10, № 3. – С. 335–345.; http://elib.gsmu.by/handle/GomSMU/9377; https://doi.org/10.34883/PI.2021.10.3.017

  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Πηγή: Microbiology&Biotechnology; No. 1(25) (2014); 63-71 ; Микробиология и биотехнология; № 1(25) (2014); 63-71 ; Мікробіологія і біотехнологія; № 1(25) (2014); 63-71 ; 2307-4663 ; 2076-0558

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20