Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 1.505 για την αναζήτηση '"микроциркуляция"', χρόνος αναζήτησης: 0,71δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Πηγή: A breakthrough in science: development strategies; ; Новое слово в науке: стратегии развития

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: https://interactive-plus.ru/e-articles/957/Action957-586644.pdf; Агафонова Н.В. Психофизиологические механизмы стресса и пути его коррекции / Н.В. Агафонова, Е.А. Павлова. – М.: Медицинская наука, 2020. – 128 с.; Варламов А.С. Аффективное прикосновение в нейрофизиологии и эстетике / А.С. Варламов, Г.В. Портнова // Журнал прикладной психофизиологии. – 2019. – Т. 5. №3. – С. 22–29.; Григорьева Н.С. Нейросенсорные методики в косметологии / Н.С. Григорьева, П.В. Куликов // Эстетическая медицина. – 2020. – Т. 19. №1. – С. 58–63.; Дубинская Н.А. Нейровегетативные эффекты массажных техник / Н.А. Дубинская // Журнал физиотерапии и реабилитации. – 2023. – Т. 4. №2. – С. 24–31.; Дубинская Н.А. Влияние мануальных техник на вегетативную регуляцию и сон / Н.А. Дубинская, И.Н. Жукова, А.В. Сергеев // Вестник реабилитационной медицины. – 2023. – Т. 18. №2. – С. 45–52. DOI 10.47370/rehab.2023.2.45; Кашетский Н.В. Фотограмметрия в дерматологии: методические аспекты и стандартизация / Н.В. Кашетский, М.Н. Леонова, Е.А. Сидорова // Клиническая дерматология и венерология. – 2023. – Т. 22. №1. – С. 12–19. DOI 10.17116/klinderma2023220112; Лапитан А.В. Лазерная допплеровская флоуметрия в оценке микроциркуляции кожи / А.В. Лапитан, Д.А. Рогаткин // Медицинская техника. – 2016. – №5. – С. 34–39. DOI 10.1007/s10527–016–0945–4; Лисицын П.А. Физиология массажа и миофасциальных техник / П.А. Лисицын, И.В. Рыжова // Реабилитационная медицина. – 2022. – Т. 26. №3. – С. 48–55.; Митрофанова О.В. Тенденции немедикаментозных методов восстановительной медицины / О.В. Митрофанова, Т.С. Костина // Современные проблемы науки и образования. – 2022. – №3. – С. 76–83.; Поляков И.С. Исторические традиции восточных массажных практик / И.С. Поляков // Восточная медицина. – 2018. – Т. 4. №2. – С. 51–56.; Селиверстов В.А. Миофасциальные и лимфодренажные техники в реабилитации / В.А. Селиверстов, Е.В. Воронина // Физиотерапия, балнеология и реабилитация. – 2021. – Т. 20. №4. – С. 37–44. DOI 10.17116/fizireab202120437; Трифонова О.В. Методологические принципы систематических обзоров в медицине / О.В. Трифонова // Наука и образование. – 2021. – Т. 9. №2. – С. 87–95.; McGlone F. Discriminative and affective touch: sensing and feeling / F. McGlone, J. Wessberg, H. Olausson // Neuron. – 2014. – №82 (4). – P. 737–755. DOI 10.1016/j.neuron.2014.05.001. – EDN SOIOEV; Laborde S. Heart rate variability and cardiac vagal tone in psychophysiological research / S. Laborde, E. Mosley, J.F. Thayer // Front Psychol. – 2017. – №8. – P. 213. DOI 10.3389/fpsyg.2017.00213; Shaffer F. An overview of heart rate variability metrics and norms / F. Shaffer, J.P. Ginsberg // Front Public Health. – 2017. – №5. – P. 258. DOI 10.3389/fpubh.2017.00258. – EDN DUAAGU; Brinca A. Laser Speckle Contrast Imaging for microcirculation quantification / A. Brinca, A. Henriques, M.J. Vasconcelos // Clin Hemorheol Microcirc. – 2020. – №76 (3). – P. 287–296. DOI 10.3233/CH-200960; Hellmann M. Laser speckle contrast imaging in microcirculation assessment: a review / M. Hellmann, A. Brinca // Microvasc Res. – 2022. – №141. – P. 104282. DOI 10.1016/j.mvr.2022.104282; Smith V. Nailfold capillaroscopy and microvascular assessment / V. Smith, C. Ickinger, E. Hysa // Best Pract Res Clin Rheumatol. – 2023. – №37(1). – P. 101849. DOI 10.1016/j.berh.2023.101849. EDN YWNEJE; Alexander H. Research Techniques Made Simple: Transepidermal Water Loss Measurement as a Research Tool / H. Alexander, S. Brown, S. Danby, C. Flohr // J Invest Dermatol. – 2018. – №138 (11). – P. 2295–2300. DOI 10.1016/j.jid.2018.08.028; Akdeniz M. Transepidermal water loss in healthy adults: a systematic review and meta-analysis update / M. Akdeniz, S. Gabriel, A. Lichterfeld-Kottner, U. Blume-Peytavi, J. Kottner // Contact Dermatitis. – 2018. – №79 (1). – P. 75–82. DOI 10.1111/cod.12963; Tricco A.C. PRISMA Extension for Scoping Reviews (PRISMA-ScR): Checklist and Explanation / A.C. Tricco, E. Lillie, W. Zarin // Ann Intern Med. – 2018. – 169 (7). – P. 467–473. DOI 10.7326/M18–0850

  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: The Russian Archives of Internal Medicine; Том 15, № 3 (2025); 206-215 ; Архивъ внутренней медицины; Том 15, № 3 (2025); 206-215 ; 2411-6564 ; 2226-6704

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.medarhive.ru/jour/article/view/2006/1415; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/2006/1423; Yang Y., Liu B., Xia W., et al. FTO genotype and type 2 diabetes mellitus: Spatial analysis and meta-analysis of 62 case-control studies from different regions. Genes. 2017; 8(2).; Turner RC., Holman RR., Matthews DR., et al. UK prospective diabetes study (UKPDS) — VIII. Study design, progress and performance. Diabetologia. 1991; 34(12), 877–890.; Tian J., Hu S., Sun Y., et al. Vasa vasorum and plaque progression, and responses to atorvastatin in a rabbit model of atherosclerosis: Contrast-enhanced ultrasound imaging and intravascular ultrasound study. Heart. 2012; 99(1), 48–54.; O’Leary D.H., Polak JF., Kronmal RA., et al. Carotid-Artery Intima and Media Thickness as a Risk Factor for Myocardial Infarction and Stroke in Older Adults. New England Journal of Medicine. 1991; 340(1), 14–22.; Chamberlain JJ, Rhinehart AS, Shaefer CF Jr., Neuman A. Diagnosis and management of diabetes: Synopsis of the 2016 American Diabetes Association Standards of Medical Care in Diabetes Ann Intern Med. 2016;164:542–52; Barchetta I., Riccieri V., Vasile M., et al. High prevalence of capillary abnormalities in patients with diabetes and association with retinopathy. Diabetic Medicine. 2011; 28(9), 1039–1044.; Chojnowski MM., Felis-Giemza A., & Olesińska M. Capillaroscopy — A role in modern rheumatology. Reumatologia. 2016; 54(2), 67–72.; Gasser P., & Berger W. Nailfold Videomicroscopy and Local Cold Test in Type I Diabetics. Angiology. 1992; 43(5), 395–400.; Meyer M., Pfohl M., & Schatz H. Assessment of diabetic alterations of microcirculation by means of capillaroscopy and laser-Doppler anemometry. Medizinische Klinik (Munich, Germany: 1983). 2001; 96, 71–77.; Pazos-Moura, C. C., Moura, E. G., Bouskela, E., et al. Nailfold capillaroscopy in diabetes mellitus: morphological abnormalities and relationship with microangiopathy. Brazilian journal of medical and biological research= Revista brasileira de pesquisas medicas e biologicas. 1987; 20(6), 777-780.; Tavakol E., Fatemi M., Karbalaie A., et al. Nailfold capillaroscopy in rheumatic diseases: which parameters should be evaluated?. BioMed research international, 2015(1), 974530.; Cutolo M., Sulli A., Pixzorni C., & Accardo S. Nailfold videocapillaroscopy assessment of microvascular damage in systemic sclerosis. 2000; 27, 155–160.; Grassi, Walter, and Patrizia Del Medico. “Atlas of capillaroscopy.” Edra, 2004.; Rajaei A., Dehghan P., & Farahani Z. Nailfold Capillaroscopy Findings in Diabetic Patients (A Pilot Cross-Sectional Study). 2015; April, 65–72.; Maricq HR. Widefield capillary microscopy. Technique and Rating Scale for Abnormalities Seen in Scleroderma and Related Disorders. Arthritis & Rheumatism. 1981; 24(9), 1159–1165.; Bluth, E. I., Stavros, A. T., Marich, K. et al. Carotid duplex sonography: a multicenter recommendation for standardized imaging and Doppler criteria. Radiographics. 1988; 8(3), 487-506.; Mancia G., Fagard R., Narkiewicz K., et al. 2013 ESH/ESC practice guidelines for the management of arterial hypertension: ESH-ESC the task force for the management of arterial hypertension of the European Society of Hypertension (ESH) and of the European Society of Cardiology (ESC). Blood pressure. 2014; 23(1), 3-16.; Li R, Duncan BB, Metcalf PA, et al. B-mode-detected carotid artery plaque in a general population. Atherosclerosis Risk in Communities (ARIC) Study Investigators. Stroke. 1994;25:2377–2383.; Brohall G., Odén A., & Fagerberg B. Carotid artery intima-media thickness in patients with Type 2 diabetes mellitus and impaired glucose tolerance: A systematic review. Diabetic Medicine. 2005; 23(6), 609–616.; Hsu PC., Liao PY., Chang HH., et al. Nailfold capillary abnormalities are associated with type 2 diabetes progression and correlated with peripheral neuropathy. Medicine (United States). 2016; 95(52).; Mukai N., Ninomiya T., Hata J., et al. Association of hemoglobin A1c and glycated albumin with carotid atherosclerosis in communitydwelling Japanese subjects: The Hisayama Study. Cardiovascular Diabetology. 2015; 14(1), 1–11.; Huang Y., Bi Y., Wang W., et al. Glycated hemoglobin A1c, fasting plasma glucose, and two-hour postchallenge plasma glucose levels in relation to carotid intima-media thickness in Chinese with normal glucose tolerance. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2011; 96(9), 1461–1465.; Venkataraman V., Amutha A., Anbalagan VP., et al. Association of glycated hemoglobin with carotid intimal medial thickness in Asian Indians with normal glucose tolerance. Journal of Diabetes and Its Complications. 2012; 26(6), 526–530.; Ma X., Shen Y., Hu X., et al. Associations of glycated haemoglobin A1c and glycated albumin with subclinical atherosclerosis in middle-aged and elderly Chinese population with impaired glucose regulation. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 2015; 42(6), 582–587.; Du HW., Li JY., & He Y. Glycemic and blood pressure control in older patients with hypertension and diabetes: Association with carotid atherosclerosis. Journal of Geriatric Cardiology. 2011; 8(1), 24–30.; Kota SK., Mahapatra GB., Kota SK., et al. Carotid intima media thickness in type 2 diabetes mellitus with ischemic stroke. Indian Journal of Endocrinology and Metabolism. 2013; 17(4), 716–722.; https://www.medarhive.ru/jour/article/view/2006

  8. 8
    Academic Journal

    Πηγή: The Topical Issues of the Humanities and Social Sciences; ; Актуальные вопросы гуманитарных и социальных наук

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: https://phsreda.com/e-articles/10777/Action10777-150243.pdf; Российский кардиологический журнал. – 2017. – №4 (144). – С. 44–48.; Кардиологический вестник. – 2022. – Т. 17. №1. – С. 58–60.; Рылова Н.В. Кардиореспираторное нагрузочное тестирование в спортивной медицине / Н.В. Рылова, А.А. Биктимирова, А.С. Самойлов // Наука и спорт: современные тенденции. – 2014. – №3 (4) [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/kardiorespiratornoe-nagruzochnoe-testirovanie-v-sportivnoy-meditsine (дата обращения: 15.09.2025).; https://phsreda.com/article/150243/discussion_platform

  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 1 (2025); 246-253 ; Медицинский Совет; № 1 (2025); 246-253 ; 2658-5790 ; 2079-701X

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8988/7817; Уманцева АМ, Ахминеева АХ, Аракельян РС. Ретроспективный эпидемиологический анализ заболеваемости ОРВИ. Международный научноисследовательский журнал. 2021;114(12):25–34. https://doi.org/10.23670/IRJ.2021.114.12.068.; Семененко ТА, Акимкин ВГ, Бурцева ЕИ, Ноздрачева АВ, Симонова ЕГ, Тутельян АВ и др. Особенности эпидемической ситуации по острым респираторным вирусным инфекциям с учетом пандемического распространения COVID-19. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2022;21(4):4–15. https://doi.org/10.31631/2073-3046-2022-21-4-4-15.; Салтыкова ТС, Жигарловский БА, Иваненко АВ, Волкова НА, Антонова ВИ, Брико НИ. Эпидемиологическая характеристика ОРВИ и гриппа на территории РФ и г. Москвы. Журнал инфектологии. 2019;11(2):124–132. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2019-11-2-124-132.; Осидак ЛВ, Додурей ЕА, Образцова ЕВ, Головачева ЕГ, Афанасьева ОИ. Структура заболеваемости и современные подходы к терапии ОРВИ у детей. РМЖ. 2019;3(3):350–358. Режим доступа: https://www.rmj.ru/articles/pediatriya/Struktura_zabolevaemosti_i_sovremennye_podhody_k_terapii_ORVI_u_detey/.; Лобзин ЮВ, Рычкова СВ, Усков АН, Скрипченко НВ, Федоров ВВ. Современные тенденции инфекционной заболеваемости у детей в Российской Федерации. Кубанский научный медицинский вестник. 2020;27(4):119–133. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2020-27-4-119-133.; Хмилёвская СА. Зрячкин НМ, Михайлов ВЕ. Клинико-эпидемические особенности острых респираторных инфекций у детей и оценка эффективности противовирусной терапии. Журнал инфектологии. 2019;11(3):38–45. https://doi.org/10.22625/2072-6732-2019-11-3-38-45.; Чугунова ОЛ. Противовирусная терапия острых респираторных заболеваний у детей. Практика педиатра. 2020;(4):6–13. Режим доступа: https://medi.ru/pp/2020/04/26360.; Денисова АР, Максимов МЛ. Острые респираторные вирусные инфекции: этиология, диагностика, современный взгляд на лечение. РМЖ. Медицинское обозрение. 2018;1(II):99–103. Режим доступа: https://www.rmj.ru/articles/infektsionnye_bolezni/Ostrye_respiratornye_virusnye_infekcii_etiologiya_diagnostika_sovremennyy_vzglyad_na_lechenie.; Мигачёва НБ. Персонифицированный подход к ведению детей с рецидивирующими респираторными инфекциями: клинический опыт детского иммунолога. Эффективная фармакотерапия. 2022;18(12):44–50. https://doi.org/10.33978/2307-3586-2023-18-12-44-50.; Чупак ЭЛ, Арутюнян КА, Манукян АМ. Особенности детей с рекуррентными респираторными заболеваниями. Амурский медицинский журнал. 2021;31(1):58–61. https://doi.org/10.24412/2311-5068-2021-1-58-61.; Pasternak G, Lewandowicz-Uszyńska A, Królak-Olejnik B. Recurrent respiratory tract infections in children. Pol Merkur Lekarski. 2020;49(286):260–266. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32827422.; Мазанкова ЛН, Самитова ЭР, Османов ИМ, Афуков ИИ, Акимкин ВГ, Анцупова МА и др. COVID-19 и коморбидная патология у детей. Вопросы практической педиатрии. 2022;17(1):16–23. https://doi.org/10.20953/1817-7646-2022-1-16-23.; Хакимжанова АС кизи. Возрастные особенности физиологии дыхательной системы. Восточно-Европейский научный журнал. 2022;79(3):26–29. Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/vozrastnye-ossobennostifiziologii-dyhatelnoy-sistemy.; Серебренникова СН, Семинский ИЖ, Гузовская ЕВ, Гуцол ЛО. Воспаление – фундаментальный патологический процесс: лекция 1 (Альтерация, сосудистые реакции). Байкальский медицинский журнал. 2023;2(2):53–64. https://doi.org/10.57256/2949-0715-2023-2-53-64.; Двораковская ИВ, Титова ОН, Ариэль БМ, Платонова ИС, Волчков ВА, Кузубова НА. Патологическая анатомия поражения сосудов при гриппе и вирусно-бактериальной пневмонии. РМЖ. 2021;(3):3–7. Режим доступа: https://www.rmj.ru/articles/infektsionnye_bolezni/Patologicheskaya_anatomiya_poragheniya_sosudov_pri_grippe_i_virusnobakterialynoy_pnevmonii.; Золотовская ИА, Шацкая ПР, Давыдкин ИЛ. Основные характеристики параметров микроциркуляции у пациентов, перенесших COVID-19. Профилактическая медицина. 2020;23(7):56–62. https://doi.org/10.17116/profmed20202307156.; Михеева ИГ, Курасова ОБ, Милехина МЮ, Моисеев АБ, Кузнецова НИ, Калиновская ИИ и др. Анализ состояния микрососудистого русла и планирование реабилитационных мероприятий у детей после перенесенной новой коронавирусной инфекции. РМЖ. Мать и дитя. 2024;7(2):171–176. https://doi.org/10.32364/2618-8430-2024-7-2-13.; Золотницкая ВП, Титова ОН, Кузубова НА, Амосова ОВ, Сперанская АА. Изменения микроциркуляции в легких у пациентов, перенесших COVID-19. Пульмонология. 2021;31(5):588–597. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2021-31-5-588-597.; Borch L, Holm M, Knudsen M, Ellermann-Eriksen S, Hagstroem S. Long COVID symptoms and duration in SARS-CoV-2 positiv children – a nationwide cohort study. Eur J Pediatr. 2022;181(4):1597–1607. https://doi.org/10.1007/s00431-021-04345-z.; Ладожская-Гапеенко ЕЕ, Храпов КН, Полушин ЮС, Шлык ИВ, Петрищев НН, Вартанова ИВ. Нарушения микроциркуляции у больных с тяжелым течением COVID-19. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2021;18(4):7–19. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2021-18-4-7-19.; Маколкин ВИ. Микроциркуляция в кардиологии М.: Визарт; 2004. 135 с.; Лелюк ВГ, Лелюк СЭ. Ультразвуковая ангиология. М.: Реальное время; 2003. 324 с.; Чуян ЕН, Трибрат НС. Методические аспекты применения метода лазерной допплеровской флоуметрии. Ученые записки Таврического национального университета им. В.И. Вернадского. 2008;60(21):156–171.; Крупаткин АИ, Сидоров ВВ. Лазерная допплеровская флоуметрия микроциркуляции крови. М.: Медицина; 2005. 254 с.; Баранова ЕА, Виноградова ВВ, Гаврилова ЭЮ, Мифтахова ДЗ, Мухамадиева ДК. Факторы, влияющие на уровень линейной скорости кровотока, при ультразвуковом исследовании церебральной гемодинамики. Российский кардиологический журнал. 2022;27(5S):3–69. https://doi.org/10.15829/1560-4071-2022-5S.; Роганова ИВ. Математическое моделирование изменений основных параметров гемодинамики в зависимости от совокупности показателей микроциркуляции при гриппе. Вестник медицинского института «РЕАВИЗ»: реабилитация, врач и здоровье. 2019;37(1):155–159. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/gisawp.; Кириченко АА. Острые респираторные вирусные инфекции и сердце. Consilium Medicum. 2020;22(5):22–27. https://doi.org/10.26442/20751753.2020.5.200136.

  10. 10
    Academic Journal

    Συνεισφορές: This study was supported by the State funding allocated to the Pavlov Institute of Physiology Russian Academy of Sciences (No. 1021062411784-3-3.1.8)., Работа поддержана средствами федерального бюджета в рамках государственного задания ФГБУН Институт физиологии им. И.П.Павлова РАН (№1021062411784-3-3.1.8).

    Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 79, № 4 (2024); 315-321 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 79, № 4 (2024); 315-321 ; 0137-0952

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1439/704; Clària J., Arroyo V., Moreau R. Roles of systemic inflammatory and metabolic responses in the pathophysiology of acute-on-chronic liver failure. JHEP Rep. 2023;5(9):100807.; Lee K.-S., Yoon S.-H., Hwang I., Ma J.-H., Yang E., Kim R.H., Kim E., Yu J.-W. Hyperglycemia enhances brain susceptibility to lipopolysaccharide-induced neuroinflammation via astrocyte reprogramming. J. Neuroinflammation. 2024;21(1):137.; Markousis-Mavrogenis G., Pepe A., Lupi A., Apostolou D., Argyriou P., Velitsista S., Vartela V., Quaia E., Mavrogeni S.I. Combined brain-heart MRI identifies cardiac and white matter lesions in patients with systemic lupus erythematosus and/or antiphospholipid syndrome: A pilot study. Eur. J. Radiol. 2024;8(176):111500.; Ju Y.-N., Zou Z.-W., Jia B.-W. Ac2-26 activated the AKT1/GSK3β pathway to reduce cerebral neurons pyroptosis and improve cerebral function in rats after cardiopulmonary bypass. BMC Cardiovasc. Disord. 2024;24(1):266.; Otsuka S., Matsuzaki R., Kakimoto S., Tachibe Y., Kawatani T., Takada S., Tani A., Nakanishi K., Matsuoka T., Kato Y., Inadome M., Nojima N., Sakakima H., Mizuno K., Matsubara Y., Maruyama I. Ninjin’yoeito reduces fatigue-like conditions by alleviating inflammation of the brain and skeletal muscles in aging mice. PLoS One. 2024;19(5):e0303833.; Белобородова Н.В., Острова И.В. Сепсис-ассоциированная энцефалопатия (обзор). Общая реаниматология. 2017;13(5):121–139. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2017-5-121-139.; Fruekilde S.K., Bailey C.J., Lambertsen K.L., Clausen B.H., Carlsen J., Xu N-L., Drasbek K.R., Gutiérrez-Jiménez E. Disturbed microcirculation and hyperaemic response in a murine model of systemic inflammation. J. Cereb. Blood Flow Metab. 2022;42(12):2303–2317.; Lorenzini L., Zanella L., Sannia M., Baldassarro V.A., Moretti M., Cescatti M., Quadalti C., Baldi S., Bartolucci G., Di Gloria L., Ramazzotti M., Clavenzani P., Costanzini A., De Giorgio R., Amedei A., Calzà L., Giardino L. Experimental colitis in young Tg2576 mice accelerates the onset of an Alzheimer’s-like clinical phenotype. Alzheimers Res. Ther. 2024;16(1):116.; Li L., Xing M., Wang L., Zhao Y. Maresin 1 alleviates neuroinflammation and cognitive decline in a mouse model of cecal ligation and puncture. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2024;49(6):890–902.; Zhou Y., Deng Q., Vong C.T., Khan H., Cheang W.S. Oxyresveratrol reduces lipopolysaccharide-induced inflammation and oxidative stress through inactivation of MAPK and NF-κB signaling in brain endothelial cells. Biochem. Biophys. Rep. 2024;40:101823.; Yin X.-Y., Tang X.-H., Wang S.-X., Zhao Y.-C., Jia M., Yang J.-J., Ji M.-H., Shen J.-C. HMGB1 mediates synaptic loss and cognitive impairment in an animal model of sepsis-associated encephalopathy. J. Neuroinflammation. 2023;20(1):69.; Robledo-Montaña J., Díaz-García C., Martí- nez M., Ambrosio N., Montero E., Marín M.J., Virto L., Muñoz-López M., Herrera D., Sanz M., Leza J.C., García-Bueno B., Figuero E., Martín-Hernández D. Microglial morphological/inflammatory phenotypes and endocannabinoid signaling in a preclinical model of periodontitis and depression. J. Neuroinflammation. 2024;21(1):219.; Никифорова Л.Р., Крышень К.Л., Боровкова К.Е. Обзор доклинических моделей сепсиса и септического шока. Лабораторные животные для научных исследований. 2021;4:17–28.; Петрищев Н.Н., Беркевич О.А., Власов Т.Д., Волкова Е.В., Зуева Е.Е., Мозговая Е.В. Диагностическая ценность определения дескваминированных эндотелиальных клеток в крови. Клиническая лабораторная диагностика. 2001;1:50–52.; Вдовин В.А., Муравьев А.В., Певзнер А.А. Способ определения степени агрегации клеток крови. Ярославский педагогический вестник (Естественные науки). 2012;III(3):151–154.; Предтеченский В.Е., Боровская В.М., Марголина Л.Т. Лабораторные методы исследования. Ред. Л.Г. Смирнова, Л.А. Кост. М.: Медгиз. 1950. 804 с.; Sokolova I.B. Effects of metabolic disorders and streptozotocin-induced diabetes on cerebral circulation in rats on a hight-fat diet. J. Evol. Biochem. Physiol. 2022;58(3):915–921.; Scott J.A., Machoun M., McCormack D.G. Inducible nitric oxide synthase and vascular reactivity in rat thoracic aorta: effect of aminoguanidine. J. Appl. Physiol. 1996;80(1):271–277.; Tabernero A., Nadaud S., Corman B., Atkinson J., Capdeville-Atkinson C. Effects of chronic and acute aminoguanidine treatment on tail artery vasomotion in ageing rats. Br. J. Pharmacol. 2000;131(6):1227–1235.; Misko T.P., Moore W.M., Kasten T.P., Nickols G.A., Corbett J.A., Tilton R.G., McDaniel M.L., Williamson J.R., Currie M.G. Selective inhibition of the inducible nitric oxide synthase by aminoguanidine. Eur. J. Pharmacol. 1993;233(1):119–125.; Zamora R., Vodovotz Y., Billiar T.R. Inducible nitric oxide synthase and inflammatory diseases. Mol. Med. 2000;6(5):347–373.; Галагудза М.М., Бельский Ю.П., Бельская Н.В. Индуцибельная NO-синтаза как фармакологическая мишень противовоспалительной терапии: надежда не потеряна? Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023;38(1):13–20.; Cinelli M.A., Do H.T., Miley G.P., Silverman R.B. Inducible nitric oxide synthase: Regulation, structure, and inhibition. Med. Res. Rev. 2020;40(1):158–189. https://doi.org/10.1002/med.21599.; Abalenikhina Y.V., Kosmachevskaya O.V., Topunov A.F. Peroxynitrite: Toxic agent and signaling molecule. Appl. Biochem. Microbiol. 2020;56(6):611–623.; Герасимов Л.В., Мороз В.В., Исакова А.А. Микрореологические нарушения при критических состояниях. Общая реаниматология. 2010;1(1):74–78.; Vallon M., Chang J., Zhang H., Kuo C.J. Developmental and pathological angiogenesis in the central nervous system. Cell. Mol. Life Sci. 2014;71(18):3489–3506.; Evans L.E., Taylor J.L., Smith C.J., Pritchard H.A.T., Greenstein A.S., Allan S.M. Cardiovascular comorbidities, inflammation, and cerebral small vessel disease. Cardiovascular Res. 2021;117:2575–2588.; Godo S., Shimokawa H. Endothelial functions. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2017;37(9):e108–e114.; Ritson M., Wheeler-Jones C., Stolp H.B. Endothelial dysfunction in neurodegenerative disease: Is endothelial inflammation an overlooked druggable target? J. Neuroimmunol. 2024;391:578363.

  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
    Academic Journal

    Συνεισφορές: 1

    Πηγή: Marine Medicine; Vol 10, No 4 (2024); 92-102 ; Морская медицина; Vol 10, No 4 (2024); 92-102 ; 2587-7828 ; 2413-5747

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  19. 19
    Academic Journal

    Συνεισφορές: Исследование проведено при спонсорской поддержке компании «Биотехнос».

    Πηγή: Rheumatology Science and Practice; Vol 62, No 1 (2024); 104-108 ; Научно-практическая ревматология; Vol 62, No 1 (2024); 104-108 ; 1995-4492 ; 1995-4484

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://rsp.mediar-press.net/rsp/article/view/3519/2354; Галушко ЕА, Насонов ЕЛ. Распространенность ревматических заболеваний в России. Альманах клинической медицины. 2018; 46(1):32-39. Galushko EA, Nasonov EL. Prevalence of rheumatic diseases in Russia. Almanac of Clinical Medicine. 2018;46(1):32-39 (In Russ.) doi:10.18786/2072-0505-2018-46-1-32-39; Ткачева ОН, Воробьева НМ, Котовская ЮВ, Остроумова ОД, Черняева МС, Силютина МВ, и др. Распространенность гериатрических синдромов у лиц в возрасте старше 65 лет: первые результаты российского эпидемиологического исследования ЭВКАЛИПТ. Российский кардиологический журнал. 2020;25(10):168-178. doi:10.15829/1560-4071-2020-3985; Лила АМ, Мазуров ВИ, Мартынов АИ, Загородний НВ, Алексеева ЛИ, Чичасова НВ, и др. Резолюция консенсуса экспертов Российской Федерации по диагностике и лечению остеоартрита 2022. Современная ревматология. 2022;16(6):106-116. doi:10.14412/1996-7012-2022-6-106-116; Мазуров ВИ (ред.). Клиническая ревматология. Руководство для врачей; 3-е изд., переработанное и дополненное. М.:Е-ното;2021.; Robinson WH, Lepus CM, Wang Q, Raghu H, Mao R, Lindstrom TM, et al. Low-grade inflammation as a key mediator of the pathogenesis of osteoarthritis. Nat Rev Rheumatol. 2016;12(10):580-592. doi:10.1038/nrrheum.2016.136; Molnar V, Matišić V, Kodvanj I, Bjelica R, Jeleč Ž, Hudetz D, et al. Cytokines and chemokines involved in osteoarthritis pathogenesis. Int J Mol Sci. 2021;22(17):9208. doi:10.3390/ijms22179208; Aigner T, McKenna L, Zien A, Fan Z, Gebhard PM, Zimmer R. Gene expression profiling of serum- and interleukin-1 beta-stimulated primary human adult articular chondrocytes – a molecular analysis based on chondrocytes isolated from one donor. Cytokine. 2005;31(3):227-240. doi:10.1016/j.cyto.2005.04.009; Henrotin YE, De Groote DD, Labasse AH, Gaspar SE, Zheng SX, Geenen VG, et al. Effects of exogenous IL-1 beta, TNF alpha, IL-6, IL-8 and LIF on cytokine production by human articular chondrocytes. Osteoarthritis Cartilage. 1996;4(3):163-173. doi:10.1016/s1063-4584(96)80012-4; Haywood L, McWilliams DF, Pearson CI, Gill SE, Ganesan A, Wilson D, et al. Inflammation and angiogenesis in osteoarthritis. Arthritis Rheum. 2003;48(8):2173-2177. doi:10.1002/art.11094; Fay J, Varoga D, Wruck CJ, Kurz B, Goldring MB, Pufe T. Reactive oxygen species induce expression of vascular endothelial growth factor in chondrocytes and human articular cartilage explants. Arthritis Res Ther. 2006;8(6):R189. doi:10.1186/ar2102; Jansen H, Meffert RH, Birkenfeld F, Petersen W, Pufe T. Detection of vascular endothelial growth factor (VEGF) in moderate osteoarthritis in a rabbit model. Ann Anat. 2012;194(5):452-456. doi:10.1016/j.aanat.2012.01.006; Cutolo M, Sulli A, Secchi ME, Pizzorni C. Capillaroscopy and rheumatic diseases: State of the art. Z Rheumatol. 2006;65(4):290-296. doi:10.1007/s00393-006-0071-2; Cutolo M, Sulli A, Pizzorni C, Accardo S. Nailfold videocapillaroscopy assessment of microvascular damage in systemic sclerosis. J Rheumatol. 2000;27(1):155-160.; Anyfanti P, Angeloudi E, Dara A, Arvanitaki A, Bekiari E, Kitas GD, et al. Nailfold videocapillaroscopy for the evaluation of peripheral microangiopathy in rheumatoid arthritis. Life (Basel). 2022;12(8):1167. doi:10.3390/life12081167; Пенин ИН, Маслянский АЛ, Конради АО, Мазуров ВИ. Возможности капилляроскопии ногтевого ложа в дифференциальной диагностике иммуновоспалительных и ревматологических заболеваний. Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И.И. Мечникова. 2020;12(3):21-26. doi:10.17816/mechnikov43996; Zhang W, Doherty M, Leeb BF, Alekseeva L, Arden NK, Bijlsma JW, et al.; ESCISIT. EULAR evidence-based recommendations for the diagnosis of hand osteoarthritis: Report of a task force of ESCISIT. Ann Rheum Dis. 2009;68(1):8-17. doi:10.1136/ard.2007.084772; Алексеева ЛИ, Шарапова ЕП, Лила АМ. Остеоартрит суставов кистей: распространенность, факторы риска, фенотипы, диагностика, лечение. Современная ревматология. 2022;16(6):98-105. doi:10.14412/1996-7012-2022-6-98-105; Лила АМ, Алексеева ЛИ, Таскина ЕА, Кашеварова НГ. Обновленные рекомендации по ведению пациентов с остеоартритом суставов кистей. РМЖ. 2020;28(7):2-8.; Buse E, Dumitriu B, Olariu L, Ene D, Bojinca M, Papacocea T. Сellular and molecular activity of a standardized small sea fish extract in an experimental model of primary human cartilage cells. Roman J Rheumatol. 2018; 27(1):23-31 doi:10.37897/RJR.2018.1.4

  20. 20
    Academic Journal

    Συνεισφορές: this work was not funded., финансирование данной работы не проводилось.

    Πηγή: Research and Practical Medicine Journal; Том 11, № 4 (2024); 88-100 ; Research'n Practical Medicine Journal; Том 11, № 4 (2024); 88-100 ; 2410-1893 ; 10.17709/2410-1893-2024-11-4

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1057/667; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1127; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1128; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1129; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1130; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1131; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1132; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/downloadSuppFile/1057/1133; Wu X, Xue F, Zhang N, Zhang W, Hou J, Yi Lv. et al. Global burden of liver cirrhosis and other chronic liver diseases caused by specific etiologies from 1990 to 2019. 2024 Feb 3;24(1):363. doi:10.1186/s12889‑024‑17948‑6; Венидиктова Д. Ю., Борсуков А. В. К вопросу о биопсии печени у пациентов с метаболически ассоциированной жировой болезнью печени. Acta Medica Eurasica. 2022;4:12–26. doi:10.47026/2413‑4864‑2022‑4‑12‑26; Жирков И. И., Гордиенко А. В. Эластография в диагностике хронических невирусных диффузных заболеваний печени. Методические рекомендации. М.: Новый формат; 2021, 90 с.; Ветшева Н. Н., Солдатов И. В., Лантух З. А., Киреев С. Г., Гуревич А. И., Мухортова А. Н. Минимальный стандарт оснащения поликлиник города Москвы ультразвуковыми диагностическими приборами. Digital Diagnostics. 2022;3(4):362–372. doi:10.17816/dd111194; Braverman IM. The cutaneous microcirculation. Journal of Investigative Dermatology Symposium Proceedings. 2000;5(1):3–9. doi:10.1046/j.1087‑0024.2000.00010.x; Bhandari A, Mahajan R. Skin changes in cirrhosis. Journal of Clinical and Experimental Hepatology. 2022;12(4):1215–1224. doi:10.1016/j.jceh.2021.12.013; Liu Y, Zhao Y, Gao X, Liu J, Ji F, Yao‑Chon H et al. Recognizing skin conditions in patients with cirrhosis : a narrative review. Annals of Medicine. 2022;54(1):3016–3028. doi:10.1080/07853890.2022.2138961; Naeem AS, Samreen DS, Shumaila S, Zahid AS, Irfan AS, Sham L. Dermatological manifestations of chronic liver disease. Journal of Health Science and Medical Research. 2022;16:1149–1150. doi:10.53350/pjmhs221611149; Гельт Т. Д., Борсуков А. В. Возможности неинвазивной лазерной допплерографии в определении нарушений микроциркуляции у пациентов с диффузными заболеваниями печени. Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2014;8(1):21–27. doi:10.12737/2906; Роспатент. Зарегистрировано 28. 04. 2021. Патент на изобретение. Способ оценки клинически значимой хронической болезни почек. Борсуков А. В., Венидиктова Д. Ю., Горбатенко О. А., Борсуков С. А. Доступно по: https://patenton.ru/patent/RU2747159C1; Wong QYA, Chew FT. Defining skin aging and its risk factors : a systematic review and meta‑analysis. Sci Rep. 2021 Nov 11;11(1):22075. doi:10.1038/s41598‑021‑01573‑z; Addolorato G, Vassallo GA, Mirijello A, Gasbarrini A. Diagnosis and Management of Alcohol Use Disorder in Patients with Liver Disease: Lights and Shadows. Neurotherapeutics. 2020 Jan;17(1):127–141. doi:10.1007/s13311‑019‑00802‑8; Kulkarni AV, Singal AK. Screening for alcohol use disorder and monitoring for alcohol use in the liver clinic. Clin Liver Dis (Hoboken). 2023 Jun 19;22(6):219–224. doi:10.1097/cld.0000000000000053; Lee CM, Yoon EL, Nakajima A, Yoneda M, Toyoda H, Yasuda S, et al. A Reappraisal of the Diagnostic Performance of B‑Mode Ultrasonography for Mild Liver Steatosis. Am J Gastroenterol. 2023 May 1;118(5):840–847. doi:10.14309/ajg.0000000000002020; Petzold G, Lasser J, Ruhl J, Bremer SCB, Knoop RF, Ellenrieder V, et al. Diagnostic accuracy of B‑mode ultrasound and Hepatorenal Index for graduation of hepatic steatosis in patients with chronic liver disease. PLoS One. 2020;15(5): e0231044 doi:10.1371/journal.pone.0231044; Chimoriya R, Piya MK, Simmons D, Ahlenstiel G, Ho V. The use of two‑dimensional shear wave elastography in people with obesity for the assessment of liver fibrosis in non‑alcoholic fatty liver disease. Journal of Clinical Medicine. 2020;10(1):95. doi:10.3390/jcm10010095; Фазылов А. А., Саипова Г. Г. Инновационные технологии ультразвуковой эластографии печени : обзор состояния и перспективы. Клиническая и экспериментальная онкология. 2021;1:51–60.; Жирков И. И., Гордиенко А. В., Павлович И. М., Яковлев В. В., Сердюков Д. Ю. Возможности транзиентной и двухмерной сдвиговолновой эластографии в диагностике фиброза при хронических диффузных заболеваниях печени невирусной этиологии. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2020;7(179):86–91. doi:10.31146/1682‑8658‑ecg‑179‑7‑86‑91; Борсуков А. В., Амосов В. И., Александров Ю. К., Арабачян М. И., Бобров Е. И., Бусько Е. А., и др. Ультразвуковая эластография: как делать правильно (учебно‑методическое пособие). 2‑е изд., перераб. и доп. Смоленск: «Смоленская городская типография»; 2023, 104 с.; Борсуков А. В. (общая редакция). Эластография сдвиговых волн. Анализ клинических примеров (практическое руководство для последипломной профессиональной переподготовки врачей). 2‑е изд., перераб. и доп. М.: Издательство «СИМК»; 2022, 468 с.; Ferraioli G, Barr RG, Berzigotti A, Sporea I, Wong VW, Reiberger T, et al. WFUMB Guideline/Guidance on Liver Multiparametric Ultrasound: Part 1. Update to 2018 Guidelines on Liver Ultrasound Elastography. Ultrasound Med Biol. 2024 Aug;50(8):1071–1087. doi:10.1016/j.ultrasmedbio.2024.03.013; Santiago T, Santos EJF, Luis M, Gaspar C, Lima J, Caramelo F et al. Normal percentile reference curves for skin ultrasound thickness and stiffness at Rodnan sites. RMD Open. 2022;8(2):e002577. doi:10.1136/rmdopen‑2022‑002577; Catalano O, Wortsman X. Dermatology ultrasound: Imaging technique, tips and tricks, high‑resolution anatomy. Ultrasound Quarterly. 2020;36(4):321–327. doi:10.1097/ruq.0000000000000520; Бондаренко И. Н. Сравнительный анализ ультразвукового исследования кожи высокочастотными датчиками. Радиология–практика. 2021;6:22–30. doi:10.52560/2713‑0118‑2021‑6‑22‑30; Jain D, Torres R, Celli R, Koelmel J, Charkoftaki G, Vasiliou V. Evolution of the liver biopsy and its future. Transl Gastroenterol Hepatol. 2021 Apr 5;6:20. doi:10.21037/tgh.2020.04.01; Жирков И. И., Гордиенко А. В., Павлович И. М., Чумак Б. А., Яковлев В. В. Диагностика фиброза печени: акцент на эластографию. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2021;10(194):72–81. doi:10.31146/1682‑8658‑ecg‑194‑10‑72‑81; Баврина А. П. Современные правила использования методов описательной статистики в медико‑биологических исследованиях. Медицинский альманах. 2020;2(63):95–105.; Lenasi H, Potočnik N, Petrishchev N, Papp M, Egorkina A, Girina M, Skedina M, Kovaleva A. The measurement of cutaneous blood flow in healthy volunteers subjected to physical exercise with ultrasound Doppler imaging and laser Doppler flowmetry. Clin Hemorheol Microcirc. 2017;65(4):373–381. doi:10.3233/ch‑16204; https://www.rpmj.ru/rpmj/article/view/1057