-
1Academic Journal
Συγγραφείς: N. I. Burdaev, L. L. Nikolaeva, V. V. Kosenko, Z. S. Shprakh, N. D. Bunyatyan, Н. И. Бурдаев, Л. Л. Николаева, В. В. Косенко, З. С. Шпрах, Н. Д. Бунятян
Συνεισφορές: The study was performed without external funding., Работа выполнена без спонсорской поддержки.
Πηγή: Regulatory Research and Medicine Evaluation; Том 13, № 2-1 (2023); 316-332 ; Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств; Том 13, № 2-1 (2023); 316-332 ; 3034-3453 ; 3034-3062
Θεματικοί όροι: микрофлюидика, liposomal medicinal products, classification of liposomes, structure and composition of liposomes, liposome preparation methods, microfluidics, липосомальные лекарственные препараты, классификация липосом, структура и состав липосом, методы получения липосом
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/508/1023; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/508/1099; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/downloadSuppFile/508/395; Gregoriadis G. Liposomes in drug delivery: how it all happened. Pharmaceutics. 2016;8(2):19. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics8020019; Filipczak N, Pan J, Yalamarty SSK, Torchilin VP. Recent advancements in liposome technology. Adv Drug Deliver Rev. 2020;156:4–22. https://doi.org/10.1016/j.addr.2020.06.022; Sanarova E, Lantsova A, Oborotova N, Orlova O, Polozkova A, Dmitrieva M, Nikolaeva N. Liposome drug delivery. J Pharm Sci & Res. 2019;11(3):1148–55.; Pattni BS, Chupin VV, Torchilin VP. New developments in liposomal drug delivery. Chem Rev. 2015;115(19):10938–66. https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.5b00046; Almeida B, Nag OK, Rogers KE, Delehanty JB. Recent progress in bioconjugation strategies for liposome-mediated drug delivery. Molecules. 2020;25(23):5672. https://doi.org/10.3390/molecules25235672; Crommelin DJA, van Hoogevest P, Storm G. The role of liposomes in clinical nanomedicine development. What now? Now what? J Control Release. 2020;318:256–63. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2019.12.023; Shan X, Gong X, Li J, Wen J, Li Y, Zhang Z. Current approaches of nanomedicines in the market and various stage of clinical translation. Acta Pharm Sin B. 2022;12(7):3028–48. https://doi.org/10.1016/j.apsb.2022.02.025; Liu P, Chen G, Zhang J. A review of liposomes as a drug delivery system: current status of approved products, regulatory environments, and future perspectives. Molecules. 2022;27(4):1372. https://doi.org/10.3390/molecules27041372; Bangham AD, Standish MM, Watkins JC. Diffusion of univalent ions across the lamellae of swollen phospholipids. J Mol Biol. 1965;13(1):238–52. https://doi.org/10.1016/s0022-2836(65)80093-6; Gulati M, Bajad S, Singh S, Ferdous AJ, Singh M. Development of liposomal amphotericin B formulation. J Microencapsul. 1998;15(2):137–51. https://doi.org/10.3109/02652049809006844; Barenholz Y. Doxil® — the first FDA-approved nano-drug: lessons learned. J Control Release. 2012;160(2):117–34. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2012.03.020; Zhao M, Ding X, Shen J, Zhang X, Ding X, Xu B. Use of liposomal doxorubicin for adjuvant chemotherapy of breast cancer in clinical practice. J Zhejiang Univ Sci B. 2017;18(1):15–26. https://doi.org/10.1631/jzus.B1600303; Petre CE, Dittmer DP. Liposomal daunorubicin as treatment for Kaposi’s sarcoma. Int J Nanomedicine. 2007;2(3):277–88. PMID: 18019828; Taléns-Visconti R, Díez-Sales O, de Julián-Ortiz JV, Nácher A. Nanoliposomes in cancer therapy: marketed products and current clinical trials. Int J Mol Sci. 2022;23(8):4249. https://doi.org/10.3390/ijms23084249; Stone NR, Bicanic T, Salim R, Hope W. Liposomal amphotericin B (AmBisome(®)): a review of the pharmacokinetics, pharmacodynamics, clinical experience and future directions. Drugs. 2016;76(4):485–500. https://doi.org/10.1007/s40265-016-0538-7; Shirley M. Amikacin liposome inhalation suspension: a review in Mycobacterium avium complex lung disease. Drugs. 2019;79(5):555–62. https://doi.org/10.1007/s40265-019-01095-z; Wang N, Chen M, Wang T. Liposomes used as a vaccine adjuvant-delivery system: from basics to clinical immunization. J Control Release. 2019;303:130–50. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2019.04.025; Bulbake U, Doppalapudi S, Kommineni N, Khan W. Liposomal formulations in clinical use: an updated review. Pharmaceutics. 2017;9(2):12. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics9020012; Andra VVSNL, Pammi SVN, Bhatraju LVKP, Ruddaraju LK. A comprehensive review on novel liposomal methodologies, commercial formulations, clinical trials and patents. Bionanoscience. 2022;12(1):274–91. https://doi.org/10.1007/s12668-022-00941-x; Ilfeld BM, Eisenach JC, Gabriel RA. Clinical effectiveness of liposomal bupivacaine administered by infiltration or peripheral nerve block to treat postoperative pain. Anesthesiology. 2021;134(2):283–344. https://doi.org/10.1097/ALN.0000000000003630; Ren H, He Y, Liang J, Cheng Z, Zhang M, Zhu Y, et al. Role of liposome size, surface charge, and PEGylation on rheumatoid arthritis targeting therapy. ACS Appl Mater Interfaces. 2019;11(22):20304–15. https://doi.org/10.1021/acsami.8b22693; Tretiakova DS, Vodovozova EL. Liposomes as adjuvants and vaccine delivery systems. Biochem (Mosc) Suppl Ser A Membr Cell Biol. 2022;16(1):1–20. https://doi.org/10.1134/S1990747822020076; Mukhamadiyarov RA, Senokosova EA, Krutitsky SS, Voevoda DV, Pyshnaya IA, Ivanov VV, et al. Size-dependent ability of liposomes to accumulate in the ischemic myocardium and protect the heart. J Cardiovasc Pharm. 2018;72(3):143–52. https://doi.org/10.1097/FJC.0000000000000606; Zhang H. Thin-film hydration followed by extrusion method for liposome preparation. Methods Mol Biol. 2017;1522:17–22. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6591-5_2; Salehi B, Mishra AP, Nigam M, Kobarfard F, Javed Z, Rajabi S, et al. Multivesicular liposome (depofoam) in human diseases. Iran J Pharm Res. 2020;19(2):9–21. https://doi.org/10.22037/ijpr.2020.112291.13663; Salehi B, Selamoglu ZS, Mileski K, Pezzani R, Redaelli M, Cho WC, et al. Liposomal cytarabine as cancer therapy: from chemistry to medicine. Biomolecules. 2019;9(12):773. https://doi.org/10.3390/biom9120773; Chaurasiya A, Gorajiya A, Panchal K, Katke S, Singh AK. A review on multivesicular liposomes for pharmaceutical applications: preparation, characterization, and translational challenges. Drug Deliv Transl Res. 2022;12(7):1569–87. https://doi.org/10.1007/s13346-021-01060-y; Angst MS, Drover DR. Pharmacology of drugs formulated with DepoFoam™. Clin Pharmacokinet. 2006;45(12):1153–76. https://doi.org/10.2165/00003088-200645120-00002; Ibrahim M, Abuwatfa WH, Awad NS, Sabouni R, Husseini GA. Encapsulation, release, and cytotoxicity of doxorubicin loaded in liposomes, micelles, and metal-organic frameworks: a review. Pharmaceutics. 2022;14(2):254. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14020254; Beiranvand S, Eatemadi A, Karimi A. New updates pertaining to drug delivery of local anesthetics in particular bupivacaine using lipid nanoparticles. Nanoscale Res Lett. 2016;11(1):307–17. https://doi.org/10.1186/s11671-016-1520-8; Silverman JA, Deitcher SR. Marqibo® (vincristine sulfate liposome injection) improves the pharmacokinetics and pharmacodynamics of vincristine. Cancer Chemother Pharmacol. 2013;71(3):555–64. https://doi.org/10.1007/s00280-012-2042-4; Venkatakrishnan K, Liu Y, Noe D, Mertz J, Bargfrede M, Marbury T, et al. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of liposomal mifamurtide in adult volunteers with mild or moderate hepatic impairment. Br J Clin Pharmacol. 2014;77(6):998–1010. https://doi.org/10.1111/bcp.12261; Swenson CE, Perkins WR, Roberts P, Janoff AS. Liposome technology and the development of Myocet™ (liposomal doxorubicin citrate). Breast. 2001;10:1–7. https://doi.org/10.1016/S0960-9776(01)80001-1; Skupin-Mrugalska P, Piskorz J, Goslinski T, Mielcarek J, Konopka K, Düzgüneş N. Current status of liposomal porphyrinoid photosensitizers. Drug Discov Today. 2013;18(15–16):776–84. https://doi.org/10.1016/j.drudis.2013.04.003; Milano G, Innocenti F, Minami H. Liposomal irinotecan (Onivyde): exemplifying the benefits of nanotherapeutic drugs. Cancer Sci. 2022;113(7):2224–31. https://doi.org/10.1111/cas.15377; Dicko A, Kwak S, Frazier AA, Mayer LD, Liboiron BD. Biophysical characterization of a liposomal formulation of cytarabine and daunorubicin. Int J Pharm. 2010;391(1–2):248–59. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2010.02.014; Li Z, Perkins W, Cipolla D. Robustness of aerosol delivery of amikacin liposome inhalation suspension using the eFlow® Technology. Eur J Pharm Biopharm. 2021;166:10–8. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2021.05.021; Perkins W, Malinin V, Li X, Miller B, Seidel D, Holzmann P, et al. System for treating pulmonary infections. US Patent No. 9566234 B2, 2017. https://patents.google.com/patent/US9566234B2/en; Gouda A, Sakr OS, Nasr M, Sammour OA. Ethanol injection technique for liposomes formulation: An insight into development, influencing factors, challenges and applications. J Drug Deliv Sci Technol. 2020;61:102174. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2020.102174; Alving CR, Beck Z, Matyas GR, Rao M. Liposomal adjuvants for human vaccines. Expert Opin Drug Deliv. 2016;13(6):807–16. https://doi.org/10.1517/17425247.2016.1151871; Li J, Wang X, Zhang T, Wang C, Huang Z, Luo X, et al. A review on phospholipids and their main applications in drug delivery systems. Asian J Pharm Sci. 2015;10(2):81–98. https://doi.org/10.1016/j.ajps.2014.09.004; Ferrer JR, Sinegra AJ, Ivancic D, Yeap XY, Qiu L, Wang JJ, et al. Structure-dependent biodistribution of liposomal spherical nucleic acids. ACS Nano. 2020;14(2):1682–93. https://doi.org/10.1021/acsnano.9b07254; Nunes SS, Fernandes RS, Cavalcante CH, da Costa César I, Leite EA, Lopes SCA, et al. Influence of PEG coating on the biodistribution and tumor accumulation of pH-sensitive liposomes. Drug Deliv and Transl Res. 2019;9(1):123–30. https://doi.org/10.1007/s13346-018-0583-8; Carter KA, Shao S, Hoopes MI, Luo D, Ahsan B, Grigoryants VM, et al. Porphyrin-phospholipid liposomes permeabilized by near-infrared light. Nat Commun. 2014;5:3546. https://doi.org/10.1038/ncomms4546; Park SM, Kim MS, Park S-J, Park ES, Choi K-S, Kim Y-S, et al. Novel temperature-triggered liposome with high stability: formulation, in vitro evaluation, and in vivo study combined with high-intensity focused ultrasound (HIFU). J Control Release. 2014;170(3):373–9. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2013.06.003; Nasr G, Greige-Gerges H, Elaissari A, Khreich N. Liposomal membrane permeability assessment by fluorescence techniques: main permeabilizing agents, applications and challenges. Int J Pharm. 2020;580:119198. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2020.119198; Nsairat H, Khater D, Sayed U, Odeh F, Bawab AA, Alshaer W. Liposomes: structure, composition, types, and clinical applications. Heliyon. 2022;8(5):e09394. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2022.e09394; Quinn PJ. The effect of tocopherol on the structure and permeability of phosphatidylcholine liposomes. J Control Release. 2012;160(2):158–63. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2011.12.029; De Leo V, Milano F, Agostiano A, Catucci L. Recent advancements in polymer/liposome assembly for drug delivery: from surface modifications to hybrid vesicles. Polymers. 2021;13(7):1027. https://doi.org/10.3390/polym13071027; Lamichhane N, Udayakumar TS, D’Souza WD, Simone CB., Raghavan SR, Polf J, et al. Liposomes: clinical applications and potential for image-guided drug delivery. Molecules. 2018;23(2):288. https://doi.org/10.3390/molecules23020288; Tsermentseli SK, Kontogiannopoulos KN, Papageorgiou VP, Assimopoulou AN. Comparative study of PEGylated and conventional liposomes as carriers for shikonin. Fluids. 2018;3(2):36. https://doi.org/10.3390/fluids3020036; Torchilin V. PEGylated pharmaceutical nanocarriers. In: Wright J, Burgess D, eds. Long acting injections and implants. Advances in delivery science and technology. Boston, MA: Springer; 2012. P. 263–93. https://doi.org/10.1007/978-1-4614-0554-2_14; Caddeo C, Pucci L, Gabriele M, Carbone C, Fernàndez-Busquets X, Valenti D, et al. Stability, biocompatibility and antioxidant activity of PEG-modified liposomes containing resveratrol. Int J Pharm. 2018;538(1–2):40–7. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2017.12.047; Nosova AS, Koloskova OO, Nikonova AA, Simonova VA, Smirnov VV, Kudlay D, et al. Diversity of PEGylation methods of liposomes and their influence on RNA delivery. Medchemcomm. 2019;10(3):369–77. https://doi.org/10.1039/c8md00515j; Ilinskaya AN, Dobrovolskaia MA. Understanding the immunogenicity and antigenicity of nanomaterials: past, present and future. Toxicol Appl Pharmacol. 2016;299:70–7. https://doi.org/10.1016/j.taap.2016.01.005; Третьякова ДС, Хайдуков CВ, Бабаянц АА, Фролова ИС, Щегловитова ОН, Онищенко НР и др. Липофильное пролекарство метотрексата в мембране липосом усиливает их фагоцитоз в крови человека. Acta Naturae. 2020;12(1):99–109. https://doi.org/10.32607/actanaturae.10946; Kularatne RN, Crist RM, Stern ST. the future of tissue-targeted lipid nanoparticle-mediated nucleic acid delivery. Pharmaceuticals (Basel). 2022;15(7):897. https://doi.org/10.3390/ph15070897; Riaz MK, Riaz MA, Zhang X, LinC, Wong KH, Chen X, et al. Surface functionalization and targeting strategies of liposomes in solid tumor therapy: a review. Int J Mol Sci. 2018;19(1):195. https://doi.org/10.3390/ijms19010195; Горбик ВС, Шпрах ЗС, Козлова ЖМ, Салова ВГ. Липосомы как система таргетной доставки лекарственных средств (обзор). Российский биотерапевтический журнал. 2021;20(1):33–41. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2021-20-1-33-41; Новикова АА, Кезимана П, Станишевский ЯМ. Методы получения липосом, используемых в качества носителей лекарственных средств (обзор). Разработка и регистрация лекарственных средств. 2017;19(2):134–8.; Lombardo D, Kiselev MA. Methods of liposomes preparation: formation and control factors of versatile nanocarriers for biomedical and nanomedicine application. Pharmaceutics. 2022;14(3):543. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14030543; Sanarova EV, Lantsova AV, Nikolaeva LL, Orlova OL. Technolohical aspects of obtaining liposomal drug delivery systems. World J Pharm Pharm Sci. 2022;11(8):1979–2009.; Shvets VI, Kaplun AP, Krasnopol’skii YM, Stepanov AE, Chekhonin VP. From liposomes of the 1970s to 21st century nanobiotechnology. Nanotechnol Russia. 2008;3:643–55. https://doi.org/10.1134/S1995078008110013; Akbarzadeh A, Rezaei-Sadabady R, Davaran S, Joo SW, Zarghami N, Hanifehpour Y, et al. Liposome: classification, preparation, and applications. Nanoscale Res Lett. 2013;8(1):102. https://doi.org/10.1186/1556-276X-8-102; Shaker S, Gardouh AR, Ghorab MM. Factors affecting liposomes particle size prepared by ethanol injection method. Res Pharm Sci. 2017;12(5):346–52. https://doi.org/10.4103/1735-5362.213979; Shi NQ, Qi XR. Preparation of drug liposomes by reverse-phase evaporation. In: Lu W, Qi XR, eds. Liposome-based drug delivery systems. Biomaterial engineering. Berlin: Springer; 2018. P. 1–10. https://doi.org/10.1007/978-3-662-49231-4_3-1; Lu B, Ma Q, Zhang J, Liu R, Yue Z, Xu C, et al. Preparation and characterization of bupivacaine multivesicular liposome: a QbD study about the effects of formulation and process on critical quality attributes. Int J Pharm. 2021;598:120335. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2021.120335; Boban Z, Mardesic I, Subczynski WK, Raguz M. Giant unilamellar vesicle electroformation: what to use, what to avoid, and how to quantify the results. Membranes. 2021;11(11):860. https://doi.org/10.3390/membranes11110860; Maritim S, Boulas P, Lin Y. Comprehensive analysis of liposome formulation parameters and their influence on encapsulation, stability and drug release in glibenclamide liposomes. Int J Pharm. 2021;592:120051. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2020.120051; Дмитриева МВ, Лугэнь Б, Оборотова НА, Краснюк ИИ, Краснюк ИИ (мл.), Беляцкая АВ и др. Метод экструзии в технологии получения липосом. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2020;(3):87–96.; Ong SG, Chitneni M, Lee KS, Ming LC, Yuen KH. Evaluation of extrusion technique for nanosizing liposomes. Pharmaceutics. 2016;8(4):36. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics8040036; Doskocz J, Dalek P, Przybylo M, Trzebicka B, Forys A, Kobyliukh A, et al. The elucidation of the molecular mechanism of the extrusion process. Materials. 2021;14(15):4278. https://doi.org/10.3390/ma14154278; Xiang B, Cao DY. Preparation of drug liposomes by thin-film hydration and homogenization. In: Lu WL, Qi XR, eds. Liposome-based drug delivery systems. Biomaterial engineering. Berlin: Springer; 2018. P. 1–11. https://doi.org/10.1007/978-3-662-49231-4_2-1; Preksha V, Patel JK, Patel MM. High-pressure homogenization techniques for nanoparticles. In: Patel JK, Pathak YV, eds. Emerging technologies for nanoparticle manufacturing. Cham: Springer; 2021. P. 263–86. https://doi.org/10.1007/978-3-030-50703-9_11; Roces CB, Lou G, Jain N, Abraham S, Thomas A, Halbert GW, et al. Manufacturing considerations for the development of lipid nanoparticles using microfluidics. Pharmaceutics. 2020;12(11):1095. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12111095; Has C, Sunthar P. A comprehensive review on recent preparation techniques of liposomes. J Liposome Res. 2020;30(4):336–65. https://doi.org/10.1080/08982104.2019.1668010; Carugo D, Bottaro E, Owen J, Stride E, Nastruzzi C. Liposome production bymicrofluidics: potential andlimiting factors. Sci Rep. 2016;6:25876. https://doi.org/10.1038/srep25876; Zhang G, Sun J. Lipid in chips: a brief review of liposomes formation by microfluidics. Int J Nanomedicine. 2021;16:7391–16. https://doi.org/10.2147/IJN.S331639; Lin WS, Malmstadt N. Liposome production and concurrent loading of drug simulants by microfluidic hydrodynamic focusing. Eur Biophys J. 2019;48(6):549–58. https://doi.org/10.1007/s00249-019-01383-2; Garg S, Heuck G, Ip S, Ramsay E. Microfluidics: a transformational tool for nanomedicine development and production. J Drug Target. 2016;24(9):821–35. https://doi.org/10.1080/1061186X.2016.1198354; Capretto L, Carugo D, Mazzitelli S, Nastruzzi C, Zhang X. Microfluidic and lab-on-a-chip preparation routes for organic nanoparticles and vesicular systems for nanomedicine applications. Adv Drug Deliv Rev. 2013;65(11–12):1496–532. https://doi.org/10.1016/j.addr.2013.08.002; Balbino TA, Aoki NT, Gasperini AAM, Oliveira CLP, Azzoni AR, Cavalcanti LP, et al. Continuous flow production of cationic liposomes at high lipid concentration in microfluidic devices for gene delivery applications. Chem Eng J. 2013;226:423–33. https://doi.org/10.1016/j.cej.2013.04.053; Maeki M, Kimura N, Sato Y, Harashima H, Tokeshi M. Advances in microfluidics for lipid nanoparticles and extracellular vesicles and applications in drug delivery systems. Adv Drug Deliv Rev. 2018;128:84–100. https://doi.org/10.1016/j.addr.2018.03.008; Koki K, Toshihisa O, Shoji T. Formation of nano-sized lipid vesicles with asymmetric lipid components using a pulsed-jet flow method. Sens Actuators B Chem. 2021;327:128917. https://doi.org/10.1016/j.snb.2020.128917; Chiba M, Miyazaki M, Ishiwata S. Quantitative analysis of the lamellarity of giant liposomes prepared by the inverted emulsion method. Biophys J. 2014;107(2):346–54. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2014.05.039; Sugiura S, Kuroiwa T, Kagota T, Nakajima M, Sato S, Mukataka S, et al. Novel method for obtaining homogeneous giant vesicles from a monodisperse water-in-oil emulsion prepared with a microfluidic device. Langmuir. 2008;24(9):4581–8. https://doi.org/10.1021/la703509r; Kuroiwa T, Fujita R, Kobayashi I, Uemura K, Nakajima M, Sato S, et al. Efficient preparation of giant vesicles as biomimetic compartment systems with high entrapment yields for biomacromolecules. Chem Biodivers. 2012;9(11):2453–72. https://doi.org/10.1002/cbdv.201200274; Ota S, Yoshizawa S, Takeuchi S. Microfluidic formation of monodisperse, cell-sized, and unilamellar vesicles. Angew Chem Int Ed. 2009;48(35):6533–7. https://doi.org/10.1002/anie.200902182; Zhigaltsev IV, Belliveau N, Hafez I, Leung AK, Huft J, Hansen C, et al. Bottom-up design and synthesis of limit size lipid nanoparticle systems with aqueous and triglyceride cores using millisecond microfluidic mixing. Langmuir. 2012;28(7):3633–40. https://doi.org/10.1021/la204833h; Lou G, Anderluzzi G, Woods S, Roberts CW, Perrie Y. A novel microfluidic-based approach to formulate size-tuneable large unilamellar cationic liposomes: formulation, cellular uptake and biodistribution investigations. Eur J Pharm Biopharm. 2019;143:51–60. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2019.08.013; Mitchell MJ, Billingsley MM, Haley RM, Wechsler ME, Peppas NA, Langer R. Engineering precision nanoparticles for drug delivery. Nat Rev Drug Discov. 2021;20(2):101–24. https://doi.org/10.1038/s41573-020-0090-8; Ma Z, Li B, Peng J, Gao D. Recent development of drug delivery systems through microfluidics: from synthesis to evaluation. Pharmaceutics. 2022;14(2):434. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14020434; https://www.vedomostincesmp.ru/jour/article/view/508
-
2Academic Journal
Θεματικοί όροι: биологическая активность мелатонина, лекарственные препараты, липосомальная форма мелатонина, липосомальные лекарственные препараты, мелатонин
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.belstu.by/handle/123456789/34591
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: V. I. Shvets, A. I. Lyutik, В. И. Швец, А. И. Лютик
Πηγή: Fine Chemical Technologies; Vol 9, No 3 (2014); 11-20 ; Тонкие химические технологии; Vol 9, No 3 (2014); 11-20 ; 2686-7575 ; 2410-6593
Θεματικοί όροι: фосфолипиды, химический и биотехнологический синтез, лекарственные субстанции, наноконтейнеры, липосомальные лекарственные препараты, медицинская биотехнология
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/462/508; Кейтс М. Техника липидологии. М.: Мир, 1975. 322 с.; Parthasarathy R., Eisenberg J.V. Biochemistry, stereochemistry, and nomenclature of inositol phosphates // In: ACS Symposium Series 463 “Inositol Phosphates and Derivatives. Synthesis, Biochemistry and Therapeutic Potential”. American Chemical Society, Washington, DC, 1991. P. 1-19.; Kaufmann F., Massy D.J., Pirson W., Wyss P. Synthesis and biological evaluation of inositol derivatives as inhibitors of phospholipase C // In: ACS Symposium Series 463 “Inositol Phosphates and Derivatives. Synthesis, Biochemistry and Therapeutic Potential”. American Chemical Society, Washington, DC, 1991. P. 202-213.; Ward J.G., Young R. Synthesis and biological evaluation of inositol phospholipid analogues // In: ACS Symposium Series 463 “Inositol Phosphates and Derivatives. Synthesis, Biochemistry and Therapeutic Potential”. American Chemical Society, Washington, DC, 1991. P. 214-228.; Kubiak R., Yne X., Bruzik K. Stereospecific syntheses of inositol phospholipids and their phosphorothioate analogs // In: ACS Symposium Series 718 “Phosphoinositides. Chemistry, Biochemistry and Biomedical Applications.” American Chemical Society, Washington, 1998. P. 180-196.; Schlever G., Guedat P., Ballerean S., Schmitt L., Spiess P. Inositol phosphates. Intramolecular physico-chemical studies: Correlation with binding properties // In: ACS Symposium Series 718 “Phosphoinositides. Chemistry, Biochemistry and Biomedical Applications”. American Chemical Society,Washington, 1998. P. 255-270.; Постановление Центрального Комитета КПСС и Совета Министров СССР от 31 октября 1985 года о присуждении Государственной премии СССР в области науки и техники за цикл работ «Структура и функции липидов», опубликованных в 1965-1983 годах.; Бергельсон Л.Д., Дятловицкая Э.В., Молотковский Ю.Г. Препаративная биохимия липидов. М.: Наука, 1981. 259 с.; Евстигнеева Р.П., Звонкова Е.Н., Серебренникова Г.А., Швец В.И. Химия липидов. М.: Химия, 1983. 296 с.; Сенникова И.Г., Орлова Г.Л., Темиров Ю.П., Иванова Н.Н., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ получения лецитина : пат. Рос. Федерация. № 2058787 С1. 1996. ________________________________________________ 8Государственный контракт от 25 июня 2012 г. № 05.РМ.11.001 Минобрнауки РФ по теме: «Разработка образовательных программ и образовательных модулей для профильных высших и средних специальных заведений по направлению развития фармацевтической промышленности «Биотехнология» для федеральной целевой программы «Развитие фармацевтической и медицинской промышленности РФ на период до 2020 года и дальнейшую перспективу». 9Шорт-лист номинантов международной премии в области нанотехнологий Rusnanoprize 2012.; Сенников Г.А., Гольбец И.И., Орлова Г.Л., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ получения кардиолипина : а. с. СССР № 740740. 1980.; Мензелеева Г.К., Мензелеев Р.Ф., Сенников Г.А., Петров В.И., Гольбец И.И., Швец В.И. Способ получения фосфатидилэтаноламина : пат. Украины № 1219. 1995.; Мензелеева Г.К., Мензелеев Р.Ф., Темиров Ю.П., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ получения фосфатидилсерина : а. с. СССР № 1558215. 1991.; Пинчук А.Н., Сенников Г.А., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ получения сфингомиелина: а. c. СССР № 1624741. 1990; пат. Украины № 1220. 1995.; Межова И.В., Клящицкий Б.А., Шемякова Е.А., Мирошников А.И., Сенников Г.А., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ выделения анионных фосфолипидов : а. с. СССР. № 1284981. 1987; пат. Украины № 1221. 1995.; Сенников Г.А., Гольбец И.И., Орлова Г.Л., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Кардио-липиновый антиген : а. с. СССР № 62927. 1978.; Краснопольский Ю.М., Гольбец И.И., Орлова Г.Л., Сенников Г.А., Швец В.И. Способ получения антигена из микобактерий : а. с. СССР № 1218523. 1985.; Stepanov A.E., Shvets V.I. Formation of phosphoesterbonds in phosphoglyceride synthesis // Chem. Phys. Lipids. 1986. V. 41. № 1. P. 1-51.; Швец В.И., Степанов А.Е., Крылова В.Н., Гулак П.В. Мио-инозит и фосфоинозитиды // М.: Наука, 1987. 247 с.; Богомолов О.В., Каплун А.П., Швец В.И. Современные методы получения модифици-рованных глицерофосфолипидов // Успехи химии. 1988. Т. 57. С. 684-710.; Степанов А.Е., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Физиологически активные липиды. М.: Наука, 1991. 135 с.; Shvets V.I., Stepanov A.E., Schmitt L., Spiess P., Schlever G. Synthesis and complexation properties of inositol phosphates // ACS Symposium Series 463 “Inositol Phosphates and Derivatives. Synthesis, Biochemistry and Therapeutic Potential”. American Chemical Society, Washington, DC. 1991. P. 155-171.; Zhdanov R.I, Sukhanov V.A., Shvets V.I. Synthesis and properties of spin-labelled phospholipids (p. 297-315); Zhdanov R.I., Komarov P.G., Artemova L.G., Ritov V.B., Shvets V.I. Spin-labelled phospholipids for protein-lipid interactions (p. 317-336) // In: Bioactive Spin Labels / R.I. Zhdanov (Ed.). Berlin, New-York, London, Paris, Tokyo: Springer-Verlag, 1992. 636 p.; Zamyatina A.Yu., Shvets V.I. The synthesis of 1-O-(2-N-stearoyl-D-erytro-sphinganine-1-phosphoryl)-2-O-(α-D-mannopyranosyl)-D-myo-inositol: A fragment of naturally occurring inositol-containing glycerol-phosphosphingolipids // Сhem.Phys. Lipids. 1995. V. 76. № 3. P. 225-270.; Stepanov A.E., Shvets V.I. Synthesis of inositol-containing glycophospholipids with natural and modified structure // ACS Symposium Series 718 “Phosphoinositides. Chemistry, Biochemistry and Biomedical Applications.” American Chemical Society, Washington, 1998. P. 244-270.; Kaplun A.P., Bogomolov O.V., Yakunina N.B., Kuzmina Yu.V., Shvets V.I. General route to glycerophospholipids modified in the hydrophobic region // Chem. Phys. Lipids. 1998. V. 94. № 3. P. 193-208.; Oskolkova O.V., Hermetler A., Paltauf F., Shvets V.I. Synthesis and trans membrane exchange of pyrene-lablled liponucleotides: Ceramide phosphothymidines // Chem. Phys. Lipids. 1999. V. 99. № 1. P. 73-86.; Каплун А.П., Ле Банг Шон, Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Липосомы и другие наночастицы как средство доставки лекарственных веществ // Вопросы мед. химии. 1999. Т. 45. № 1. С. 3-12.; Дудниченко А.С., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Липосомальные лекарственные препараты в эксперименте и клинике. Харьков: Издательская группа «РА-Каравелла», 2001. 143 с.; Швец В.И. Наноструктуры - перспективные лекарственные формы // Сб. материалов XIX (82) сессии Общего собрания РАМН «Научные основы и перспективы развития онкологии» и «Нанотехнологии и наноматериалы в медицине» 20-21 декабря 2007 г.- М.: Медицина, 2008.- С. 159-179.; Швец В.И., Каплун А.П., Краснопольский Ю.М., Степанов А.Е., Чехонин В.П. От липосом семидесятых к нанобиотехнологии 21 века // Рос. нанотехнологии. 2008. Т. 3. № 11-12. С. 52-67.; Швец В.И. Фосфолипиды в биотехнологиях // Вестник МИТХТ. 2009. Т. 4. № 4. С. 4-25.; Гельперина С.Э., Швец В.И. Системы доставки лекарственных веществ на основе полимерных наночастиц // Биотехнология. 2009. № 3. С. 8-24.; Kaplun A.P., Bezrukov D.A., Shvets V.I. Rational design of nano- and micro-size medicinal forms of biotechnologically active substances // Appl. Biochem. & Microbiol. 2011. V. 47. № 8. P. 711-717.; Швец В.И., Кубатиев А.А., Шоболов Д.Л., Балабаньян В.Ю. Биофармацевтические технологии на основе фосфолипидов (химия, биохимия, биофизика, биотехнология, физиология, иммунология, фармакология, технологии получения лекарственных и диагностических препаратов, в том числе нанодиапазона) // Обзорный журнал по химии. 2013. Т. 3. № 3. С. 1-29.; Всесоюзная программа «Липосомы и их применение в биологии и медицине» (научная и научно-практическая часть программы) // Вестник Академии медицинских наук СССР. 1990. № 6. С. 4-6.; Швец В.И., Дудниченко А.С., Краснопольский Ю.М., Сенникова И.Г. Способ получения противоопухолевого антибиотика : пат. Украины № 6700. 1995; № 10187. 1997; № 64591А. 2003.; Стефанов А.В., Темиров Ю.П., Краснопольский Ю.М. Способ получения липосомального препарата : пат. Украины № 5654. 1994.; Дубовик Е.А., Безруков Д.А., Каплун А.П., Швец В.И. Способ получения липосом : пат. Рос. Федерация № 25423967. 2011.; Григорьева А.С., Конахович Н.Ф., Стефанов А.В., Краснопольский Ю.М., Темиров Ю.П. Способ получения гепатопротекторного средства : пат. Украины № 46528. 2003.; Стефанов А.В., Григорьева А.С., Соловьев А.Н., Хромов А.С., Конахович Н.Ф., Краснопольский Ю.М. Способ получения липосомального препарата, содержащего кверцетин : пат. Украины № 76393. 2006.; Дудниченко А.С., Швец В.И., Темиров Ю.П., Краснопольский Ю.М. Способ получения липо-сомальной формы противоопухолевого цитостатика : пат. Украины № 10187. 1997.; Швец В.И., Дудниченко А.С., Краснопольский Ю.М., Темиров Ю.П. Способ получения липосомальной формы противоопухолевого препарата (цисплатин) : пат. Украины № 66633 А. 2003.; Григорьева А.С., Конахович Н.Ф., Краснопольский Ю.М., Темиров Ю.П., Прохоров В.В., Швец В.И. Гепатопротекторный препарат на основе природных фосфолипидов : заявка № 2006-01448 на выдачу патента Украины от 16.01.2007.; Иванова Н.Н., Петров Г.И., Сенников Г.А., Каплун А.П., Швец В.И. Способ получения фосфолипидного комплекса : а. с. СССР № 1104707. 1984.; Каплун А.П., Багров С.Н., Новиков С.В., Лозинская О.Л., Швец В.И. Препарат для лечения заболеваний и повреждений роговицы : пат. Рос. Федерация № 2172061. 2002.; Лепарская Н.А., Сорокоумова Г.М., Сычева Ю.В., Хорошилова-Маслова И.П., Каплун А.П., Киреев И.И., Гундорова Р.А., Нероев В.В., Швец В.И. Липосомы, содержащие дексаметазон: получение, характеристика и использование в офтальмологии // Вестник МИТХТ. 2011. Т. 6. № 2. С. 37-42.; Лескова Г.Ф., Крыжановский Г.Н., Архипенко Ю.В., Каплун А.П., Краснопольский Ю.М., Швец В.И. Способ применения липосом для коррекции геморрагического шока : пат. Рос. Федерация № 2191583. 2002.; Швец В.И., Темиров Ю.П., Краснопольский Ю.М., Сенникова И.Г. Способ получения липо-сомального антибактериологического препарата : пат. Украины № 69303 А. 2003.; Быков В.А., Безруков Д.А., Дигтярь А.В., Каплун А.П., Красильникова В.В., Луценко Е.В., Луценко С.В., Фельдман Н.Б., Швец В.И. Ингибитор ангиогенеза, антиангиогенная фармацевтическая композиция на его основе и способ лечения злокачественных новообразований : пат. Рос. Федерация № RU 2287341 C1. 2006.; Юрасов В.В., Подгорный Г.Н., Кучеряну В.Г., Кудрин В.С., Никулин В.Е., Жигальцев И.В., Сандалов Ю.Г., Каплун А.П., Крыжановский Г.Н., Швец В.И. Влияние липосомальной формы L-DOPA на содержание дофамина, его метаболитов и обмен фосфолипидов в стриатуме мышей с экспериментальным синдромом Паркинсона // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1996. Т. 122. № 2. С. 614-617.; Юрасов В.В., Кучеряну В.Г., Кудрин В.С., Жигальцев И.В., Никулин В.Е., Сандалов Ю.Г., Каплун А.П., Швец В.И. Влияние парентерального введения липосом и L-DOPA, заключенного в липосомы, на обмен дофамина и его метаболитов в стриатуме у мышей с экспериментальным паркинсоническим синдромом // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. Т.1 23. № 2. С. 150-153.; Жигальцев И.В., Коломейчук С.Н., Каплун А.П., Юрасов В.В., Швец В.И. Концентрирование допамина в липосомах с помощью трансмембранного градиента концентрации сульфата аммония // Биоорган. химия. 1999. Т. 25. № 5. С. 401-408.; Селищева А.А., Сорокоумова Г.М., Швец В.И. Способ получения липосомальной формы изониазида : пат. № 2429841 Рос. Федерация. № 2009146717/15, заявл. 16.12.2009б опубл. 27.09.2011, Бюл. № 27. 8 с.; Селищева А.А., Сорокоумова Г.М., Швец В.И. Способ получения капсулированной формы противотуберкулезных препаратов рифампицинового ряда : пат. № 2420287 Рос. Федерация. № 2009146716/15, заявл. 16.12.2009, опубл. 10.06.2011, Бюл. № 16. 8 с.; Подольская С.В., Сорокоумова Г.М., Каплун А.П., Лютик А.И., Исакова Е.Б., Швец В.И. Создание липосомных препаратов антибиотика гелиомицина и их противоопухолевая активность // Вопросы биол., мед. и фарм. химии. 2004. № 3. С. 33-35.; Шевченко К.В., Храпко А.П., Мясоедов Н.Ф., Швец В.И. Использование фосфолипидных наночастиц для повышения устойчивости семакса в различных биологических средах, обладающих протеолитической активностью // Доклады Академии наук. 2009. Т. 429. № 4. С. 554-557.; Курилко Н.А., Киямов А.К., Иванова М.А., Пашков Е.П., Александров М.Т., Сорокоумова Г.М., Швец В.И. Действие липосом и липосомной формы цефтриаксона на заживление кожной раны крыс // Антибиотики и химиотерапия. 2009. Т. 54. № 5. С. 25-30.; Мензелеев Р.Ф., Швец В.И., Тихонов О.И. Изучение зависимости биологической активности гонадотропина от состава используемых липосом // Фармацевтичний журнал. 1992. № 2. С. 60- 63.; Решетников А.В., Жигальцев И.В., Коломейчук С.Н., Каплун А.П., Швец В.И., Жукова О.С., Карменян А.В., Иванов А.В., Пономарев Г.В. Получение и некоторые свойства липосомного препарата 2,4-ди(1-метил-3-гидроксибутил)дейтеропорфирина-IХ // Биоорган. химия. 1999. Т. 25. № 10. С. 782-790.; Рукосуева Н.В., Захарова Д.А., Безруков Д.А., Каплун А.П., Швец В.И., Зигангирова Н.А., Гинцбург А.А. Липосомальная форма десферала как эффективный противохламидийный агент // Вестник МИТХТ. 2012. Т. 7. № 6. С. 22-26.; Прохоров Д.И., Сариев А.К., Абаимов Д.А., Воронина Т.А., Капица И.Г., Журавко А.С., Ширяева М.В., Каплун А.П., Сейфулла Р.Д. Изучение фармакодинамики и фармакокинетики наноэмульсионной формы карбамазепина в эксперименте. // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2014. Т. 157. № 6. С. 712-717.; Севастьянов Ю.С., Рыбаков Ю.Л. Аналитико-статистические данные конкурсов ФЦНТП в 2005-2006 гг. по приоритетному направлению «Живые системы: Результаты открытого конкурса ФЦНТП для научных школ в 2006 г.» // Научные труды ФГУ НИИ РИНКЦЭ «Инноватика и экспертиза». М., 2007. С. 112-122.; Халанский А.С., Хекматара Т., Бернройтер К., Рубцов Б.В., Кондакова Л.И., Матчке К., Кройтер И., Глатцел М., Гельперина С.Э., Швец В.И. Морфологическая оценка противоопухолевого эффекта наносомальной формы доксорубицина в отношении экспериментальной глиобластомы у крыс // Биофарм. журн. 2011. Т. 3. № 2. С. 41-50.; Каплун А.П., Безруков Д.А., Швец В.И. Рациональный дизайн нано- и микроразмерных лекарственных форм биологически активных субстанций // Биотехнология. 2010. № 6. С. 9-18.; Цалман А.Я., Безруков Д.А., Каплун А.П., Поручикова Л.А., Швец В.И. Способ определения оптимального состава смеси для получения водных дисперсий сферических наночастиц : пат. Рос. Федерация № 2424516. 2011.; Каплун А.П., Безруков Д.А., Попенко В.И., Швец В.И. Сферические аморфные наночастицы из тритерпеноидов бересты - новый тип субмикронных средств доставки лекарственных субстанций // Биофарм. журн. 2011. Т. 3. № 2. С. 19-28.; Каплун А.П., Гаврилова Л.А., Константинова С.В., Журавская А.Ю., Безруков Д.А., Еремин С.В., Попенко В.И. Сферические аморфные наночастицы из экстрактов бересты. Решение некоторых аналитических задач // Прикл. аналит. химия. 2012. № 4. С. 32-36.; Андреевская С.Н., Смирнова Т.Г., Жогина Ю.А., Смирнова Д.И., Микулович Ю.Л., Сорокоумова Г.М., Черноусова Л.Н., Селищева А.А., Швец В.И. Влияние экзогенного кардиолипина на рост и жизнеспособность культуры Mycobacterium tuberculosis H37RV in vitro // Доклады Академии наук. 2010. Т. 434. № 5. С. 705-708.; Смирнова Т.Г., Микулович Ю.Л., Андреевская С.Н., Сорокоумова Г.М., Черноусова Л.Н., Селищева А.А., Швец В.И. Лизопроизводные кардиолипина подавляют жизнеспособность чувстви-тельного и резистентного штаммов Mycobacterium tuberculosis // Биофарм. журн. 2011. Т. 3. № 2. С. 19-27.; Красильников И.В., Гамбарян А.С., Машин В.В., Лобастова А.К. Иммуногенные и протективные свойства инактивированных и живых кандидатов вакцин против высокопатогенных вирусов H5N1 // Вопросы вирусологии. 2010. № 4. С. 21-24.; Шоболов Д.Л., Краснопольский Ю.М., Ульянов А.М., Тарасов В.В., Балабаньян В.Ю., Швец В.И. Способ получения липосомальной формы цитохрома с : заявка о выдаче евразийского патента на изобретение № 201201592 от 24.12.2012.; Шоболов Д.Л., Краснопольский Ю.М., Ульянов А.М., Тарасов В.В., Балабаньян В.Ю., Швец В.И. Способ получения липосомальной формы оксалиплатина : заявка о выдаче евразийского патента на изобретение № 201201596 от 24.12.2012.; Шоболов Д.Л., Краснопольский Ю.М., Ульянов А.М., Тарасов В.В., Балабаньян В.Ю., Швец В.И. Способ получения липосомальной формы кверцетина: заявка о выдаче евразийского патента на изобретение № 201201593 от 24.12.2012.; Шоболов Д.Л., Краснопольский Ю.М., Ульянов А.М., Тарасов В.В., Балабаньян В.Ю., Швец В.И. Способ получения липосомальной формы доцетаксела : заявка о выдаче евразийского патента на изобретение № 201201591 от 24.12.2012.; Шоболов Д.Л., Краснопольский Ю.М., Ульянов А.М., Тарасов В.В., Балабаньян В.Ю., Швец В.И. Способ получения ингаляционной липосомальной формы рифабутина : заявка о выдаче евразийского патента на изобретение № 201201595 от 24.12.2012.; Победители Третьего открытого конкурса на получение грантов, проведенного в рамках Постановления Правительства Российской Федерации от 9 апреля 2010 года № 220 // «Поиск». № 17 (1247). 25 апреля 2013. С. 7.
Διαθεσιμότητα: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/462
-
4Academic Journal
Θεματικοί όροι: liposomes, active pharmaceutical ingredients, стандартизация технологии, активные фармацевтические субстанции, liposomal drugs, nanopharmacology, методы включения активных фармацевтических субстанций, technology standardization, липосомальные лекарственные препараты, нанофармакология, липосомы, methods of introduction of the active pharmaceutical ingredients
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/59051
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Кремнева, Галина, Ефременко, Виталий, Романова, Людмила, Литвиненко, Ирина, Ефременко, Анна, Килинкарова, Нина, Николенко, Татьяна
Θεματικοί όροι: САЛЬМОНЕЛЛЕЗНЫЙ ЭНДОТОКСИН,ЛИПОСОМАЛЬНЫЕ ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ПРЕПАРАТЫ,ПЕРЕКИСНОЕ ОКИСЛЕНИЕ ЛИПИДОВ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: Романова, Людмила, Ефременко, Виталий, Кремнева, Галина, Литвиненко, Ирина, Ефременко, Анна, Килинкарова, Нина, Николенко, Татьяна
Θεματικοί όροι: ЧЕТЫРЕХХЛОРИСТЫЙ УГЛЕРОД,ЛИПОСОМАЛЬНЫЕ ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ПРЕПАРАТЫ,ОСТРАЯ ПЕЧЕНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ,СВОБОДНОРАДИКАЛЬНОЕ ОКИСЛЕНИЕ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
7Academic Journal
Πηγή: Медицинский вестник Северного Кавказа.
Θεματικοί όροι: ЧЕТЫРЕХХЛОРИСТЫЙ УГЛЕРОД,ЛИПОСОМАЛЬНЫЕ ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ПРЕПАРАТЫ,ОСТРАЯ ПЕЧЕНОЧНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ,СВОБОДНОРАДИКАЛЬНОЕ ОКИСЛЕНИЕ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
8Academic Journal
Πηγή: Медицинский вестник Северного Кавказа.
Θεματικοί όροι: САЛЬМОНЕЛЛЕЗНЫЙ ЭНДОТОКСИН,ЛИПОСОМАЛЬНЫЕ ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ПРЕПАРАТЫ,ПЕРЕКИСНОЕ ОКИСЛЕНИЕ ЛИПИДОВ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: Ковалева, К. И.
Θεματικοί όροι: мелатонин, биологическая активность мелатонина, липосомальная форма мелатонина, лекарственные препараты, липосомальные лекарственные препараты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://elib.belstu.by/handle/123456789/34591; 612.4
Διαθεσιμότητα: https://elib.belstu.by/handle/123456789/34591
-
10Dissertation/ Thesis
Συγγραφείς: Григорьева, Анна Саввовна, Кацай, А. Л., Конахович, Наталья Филимоновна, Прохоров, Виталий Валентинович, Стадниченко, Александр Викторович, Краснопольский, Юрий Михайлович, Швец, Виталий Иванович
Θεματικοί όροι: лекарственные препараты, медецина, наночастицы, активные фармацевтические субстанции, липосомальные лекарственные препараты, нанобиотехнологии, терапевтический эффект, фармакокинетика
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: Нанофармакология – перспективное направление фармацевтической науки и промышленности / А. С. Григорьева [и др.] // Химия, био- и нанотехнологии, экология и экономика в пищевой и косметической промышленности : сб. материалов 4-й Междунар. науч.-практ. конф., 17-18 октября 2016 г. / ред. кол. T. Mdzinarashvili [и др.]; Нац. техн. ун-т "Харьков. политехн. ин-т" [и др.]. – Харьков : Панов А. М., 2016. – С. 76-79.; http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/50996
Διαθεσιμότητα: http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/50996
-
11Dissertation/ Thesis
Θεματικοί όροι: наночастицы, медецина, активные фармацевтические субстанции, лекарственные препараты, нанобиотехнологии, терапевтический эффект, фармакокинетика, липосомальные лекарственные препараты
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://repository.kpi.kharkov.ua/handle/KhPI-Press/50996
