Influence of antibiotic therapy on indicators of endotoxinemia and systemic inflammation in acute SARS-CoV-2 lung damage ; Влияние антибиотикотерапии на показатели эндотоксинемии и системного воспаления при остром SARS-CoV-2-поражении лёгких

Συγγραφείς: I. A. Yatskov, V. A. Beloglazov, A. V. Kubyshkin, A. P. Nikolaeva, N. A. Shadchneva, E. Yu. Zyablitskaya, Yu. E. Kunitskaya, N. E. Lavrenchuk, И. А. Яцков, В. А. Белоглазов, А. В. Кубышкин, А. П. Николаева, Н. А. Шадчнева, Е. Ю. Зяблицкая, Ю. Е. Куницкая, Э. Н. Лавренчук

Πηγή: Acta Biomedica Scientifica; Том 7, № 1 (2022); 12-18 ; 2587-9596 ; 2541-9420

Θεματικοί όροι: поражение лёгких, antibacterial drugs, LBP, endotoxemia, ferritin, lung damage, антибактериальные препараты, липополисахарид-связывающий белок, эндотоксинемия, ферритин

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3285/2293; COVID-19 coronavirus pandemic worldometer. URL: https://www.worldometers.info/coronavirus/ [date of access: 06.09.2021].; Tang D, Comish P, Kang R. The hallmarks of COVID-19 disease. PLoS Pathog. 2020; 16(5): e1008536. doi:10.1371/journal. ppat.1008536; Tong M, Jiang Y, Xia D, Xiong Y, Zheng Q, Chen F, et al. Elevated expression of serum endothelial cell adhesion molecules in COVID-19 patients. J Infect Dis. 2020; 222(6): 894-898. doi:10.1093/infdis/jiaa349; Grylls A, Seidler K, Neil J. Link between microbiota and hypertension: Focus on LPS/TLR4 pathway in endothelial dysfunction and vascular inflammation, and therapeutic implication of probiotics. Biomed Pharmacother. 2021; 137: 111334. doi:10.1016/j.biopha.2021.111334; Wang C, Xu J, Yang L, Xu Y, Zhang X, Bai C, et al. Prevalence and risk factors of chronic obstructive pulmonary disease in China (the China Pulmonary Health [CPH] study): A national cross-sectional study. Lancet. 2018; 391(10131): 1706-1717. doi:10.1016/S0140-6736(18)30841-9; Lu YC, Yeh WC, Ohashi PS. LPS/TLR4 signal transduction pathway. Cytokine. 2008; 42(2): 145-151. doi:10.1016/j.cyto.2008.01.006; Petruk G, Puthia M, Petrlova J, Samsudin F, Strömdahl AC, Cerps S, et al. SARS-CoV-2 spike protein binds to bacterial lipopolysaccharide and boosts proinflammatory activity. J Mol Cell Biol. 2020; 12(12): 916-932. doi:10.1093/jmcb/mjaa067; Kim HS. Do an altered gut microbiota and an associated leaky gut affect COVID-19 severity? mBio. 2021; 12(1): e03022- e03020. doi:10.1128/mBio.03022-20; Langford BJ, So M, Raybardhan S, Leung V, Soucy JR, Westwood D, et al. Antibiotic prescribing in patients with COVID-19: Rapid review and meta-analysis. Clin Microbiol Infect. 2021; 27(4): 520-531. doi:10.1016/j.cmi.2020.12.018; Покусаева Д.П., Аниховская И.А., Коробкова Л.А., Яковлев М.Ю., Энукидзе Г.Г. Прогностическая значимость показателей системной эндотоксинемии в атерогенезе. Физиология человека. 2019; 45(5): 543-551. doi:10.1134/S0131164619050138; Яковлев М.Ю. Роль кишечной микрофлоры и недостаточность барьерной функции печени в развитии эндотоксинемии и воспаления. Казанский медицинский журнал. 1988; 69(5): 353-358.; Schumann RR, Leong SR, Flaggs GW, Gray PW, Wright SD, Mathison JC, et al. Structure and function of lipopolysaccharide binding protein. Science. 1990; 249(4975): 1429-1431. doi:10.1126/science.2402637; Zuo T, Zhang F, Lui GCY, Yeoh YK, Li AYL, Zhan H, et al. Alterations in gut microbiota of patients with COVID-19 during time of hospitalization. Gastroenterology. 2020; 159(3): 944-955. e8. doi:10.1053/j.gastro.2020.05.048; Hoel H, Heggelund L, Reikvam DH, Stiksrud B, Ueland T, Michelsen AE, et al. Elevated markers of gut leakage and inflammasome activation in COVID-19 patients with cardiac involvement. J Intern Med. 2021; 289(4): 523-531. doi:10.1111/joim.13178; Da Silva Correia J, Soldau K, Christen U, Tobias PS, Ulevitch RJ. Lipopolysaccharide is in close proximity to each of the proteins in its membrane receptor complex. Transfer from CD14 to TLR4 and MD-2. J Biol Chem. 2001; 276(24): 21129- 21135. doi:10.1074/jbc.M009164200; Morikawa A, Koide N, Kato Y, Sugiyama T, Chakravortty D, Yoshida T, et al. Augmentation of nitric oxide production by gamma interferon in a mouse vascular endothelial cell line and its modulation by tumor necrosis factor alpha and lipopolysaccharide. Infect Immun. 2000; 68(11): 6209-6214. doi:10.1128/IAI.68.11.6209-6214.2000; Yuan SY. Protein kinase signaling in the modulation of microvascular permeability. Vascul Pharmacol. 2002; 39(4-5): 213-223. doi:10.1016/s1537-1891(03)00010-7; Ulbrich H, Eriksson EE, Lindbom L. Leukocyte and endothelial cell adhesion molecules as targets for therapeutic interventions in inflammatory disease. Trends Pharmacol Sci. 2003; 24(12): 640-647. doi:10.1016/j.tips.2003.10.004; Pawlinski R, Mackman N. Tissue factor, coagulation proteases, and protease-activated receptors in endotoxemia and sepsis. Crit Care Med. 2004; 32(5): S293-S297. doi:10.1097/01.ccm.0000128445.95144.b8; Brenchley JM, Douek DC. Microbial translocation across the GI tract. Annu Rev Immunol. 2012; 30: 149-173. doi:10.1146/annurev-immunol-020711-075001; Dahan S, Segal G, Katz I, Hellou T, Tietel M, Bryk G, et al. Ferritin as a marker of severity in COVID-19 patients: A fatal correlation. Isr Med Assoc J. 2020; 22(8): 494-500.; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3285

Διαθεσιμότητα: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3285
https://doi.org/10.29413/ABS.2022-7.1.2

Роль эндогенных антимикробных пептидов при оценке тяжести течения гепатита С в сочетании с пневмонией ; Роль ендогенних антимікробних пептидів при оцінці тяжкості перебігу гепатиту С в поєднанні з пневмонією ; The role of endogenous antimicrobial peptides in assessing the severity of hepatitis C combined with pneumonia

Συγγραφείς: Гидаятова, З. Г., Азизова, Г. И., Дадашова, А. Р., Гідаятова, З. Г., Hidayatova, Z. G., Azizova, G. I., Dadashova, A. R.

Θεματικοί όροι: гепатит С, дефензіни, ліпополісахарид-зв’язуючий білок, ендотоксини, лімфоцити, циркулюючі імунні комплекси, дефензины, липополисахарид-связывающий белок, эндотоксины, лимфоциты, циркулирующие иммунные комплексы, hepatitis C, defensins, lipopolysaccharide binding protein, endotoxins, lymphocytes, circulating immune complexes

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Гидаятова З. Г. Роль эндогенных антимикробных пептидов при оценке тяжести течения гепатита С в сочетании с пневмонией / З. Г. Гидаятова, Г. И. Азизова, А. Р. Дадашова // Вісник проблем біології і медицини. – 2017. – Вип. 1 (135). – С. 121–124.; https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/10905

Διαθεσιμότητα: https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/10905

Paradox: Does liver insuffi ciency protect the patient? A hypothesis ; Парадокс: печеночная недостаточность «защищает» больного?

Συγγραφείς: A. M. Dzyadz'ko, A. E. Shcherba, O. O. Rummo, M. L. Katin, A. F. Minov, S. V. Korotkov, O. A. Chugunova, E. O. Santotskiy, D. Yu. Efimov, M. Yu. Gurova, А. М. Дзядзько, А. Е. Щерба, О. О. Руммо, М. Л. Катин, А. Ф. Минов, С. В. Коротков, О. А. Чугунова, Е. О. Сантоцкий, Д. Ю. Ефимов, М. Ю. Гурова

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 9, № 1 (2017); 52-70 ; Трансплантология; Том 9, № 1 (2017); 52-70 ; 2542-0909 ; 2074-0506 ; 10.23873/2074-0506-2017-9-1

Θεματικοί όροι: липополисахарид-связывающий белок, systemic inflammatory response, Kupffer cells, hepatic failure, lipopolysaccharide, lipopolysaccharide- binding protein, системный воспалительный ответ, клетки Купфера, печеночная недостаточность, липополисахарид

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/153/190; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/153/220; Torio C.M., Andrews R.M. National Inpatient Hospital Costs: The most Expansive Conditions by Payer, 2011. Healthcare Cost and Utilization Pro ject (HCUP) Statistical Briefs, Publi sher: Agency for Health Care Policy and Research (US); Statistical brief #160. PMID:24199255; Руммо О.О. Семь лет трансплантации печени в Республике Беларусь. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2015; (2) (Трансплантация и донорство органов: материалы Второго Рос. нац. конгр., г. Москва, 8–10 июня 2015 г.): 100–104.; Song A.T., Avelino-Silva V.I., Pecora R.A. et al. Liver transplantation: Fifty years of experience. World J. Gastroenterol. 2014; 20 (18): 5363–5374. PMID:24833866 DOI:10.3748/wjg.v20.i18.5363; Mueller A.R., Platz K.P., Kremer B. Early postoperative complications following liver transplantation. Best Pract. Res. Clin. Gastroenterol. 2004; 18 (5): 881–900. PMID:15494284 DOI:10.1016/j.bpg.2004.07.004; Kehlet H., Wilmore D.W. Multimodal strategies to improve surgical outcome. Am. J. Surg. 2002; 183 (6): 630–641. PMID:12095591; Arroyo V, Jiménez W. Complication of cirrhosis. II. Renal and circulatory dysfunction. Lights and shadows in an important clinical problem. J Hepatol. 2000; 32 (Suppl.1): 157–170. PMID:10728802; Федосьина Е.А., Маевская М.В. Спонтанный бактериальный перитонит. Клиника, диагностика, лечение, профилактика. РЖГГК. 2007; (2): 4–9.; Хаитов Р.М., Пащенков М.В., Пинегин Б.В. Роль паттерн-распознающих рецепторов во врожденном и адаптивном иммунитете. Иммунология. 2009; 1: 66–76.; Janeway C.A. Jr, Medzhitov R. Innate immune recognition. Annu. Rev. Immunol. 2002; 20: 197–216. PMID:11861602 DOI:10.1146/annurev.immunol.20.083001.084359; Seong S.Y., Matzinger P. Hydrophobicity: an ancient damage-associated molecular pattern that initiates innate immune responces. Nat. Rev. Immunol. 2004; 4 (6): 469–478. PMID:15173835 DOI:10.1038/nri1372; Chen G.Y., Nuñez G. Sterile inflammation: sensing and reaction to demage. Nat. Rev. Immunol. 2010; 10 (12): 826–37. PMID:21088683 DOI:10.1038/nri2873; Kumar H., Kawai T., Akira S. Pathogen recognition by the innate immune system. Int. Rev. Immunol. 2011; 30 (1): 16–34. PMID:21235323 DOI:10.3109/08830185.2010.529976; Hailman E., Lichenstein H.S., Wurfel M.M. et al. Lipopolysaccharide (LPS) binding protein accelerates binding of LPS to CD14. J. Exp. Med. 1994; 179 (1): 269–277. PMID:7505800; Wright S.D., Ramos R.A., Tobias P.S. et al. CD14, a receptor for complexes of lipopolysaccharide (LPS) and LPS binding protein. Science. 1990; 249 (4975): 1431–1433. PMID:1698311; Zweigner J., Schumann R.R., Weber J.R. The role of lipopolysaccharidebinding protein in modulation the innate immune response. Microbes. Infect. 2006; 8 (3): 946–952. PMID:16483818 DOI:10.1016/j.micinf.2005.10.006; Красуцкая C.А., Ефимов Д.Ю., Фролова М.А. и др. Патогенетическая роль ТЛР- рецепторов в развитии осложнений после трансплантации солидных органов. Военная медицина. 2016; (3): 133–137.; Deng M., Scott M.J., Loughran P. et al. Lipopolysaccharide clearance, bacterial clearance, and systemic inflammatory responses are regulated by cell typespecific functions of TLR4 during sepsis. J. Immunol. 2013; 190 (10): 5152–5160. PMID:23562812 DOI:10.4049/jimmunol.1300496; Takeuchi O., Akira S. Pattern recognition receptors and inflammation. Cell. 2010; 140 (6): 805–820. PMID:20303872 DOI:10.1016/j.cell.2010.01.022; Sakr Y., Dubois M.J., De Backer D. et al. Persistent microcirculatory alterations are assotiated with organ failure and death in patients with septic shock. Crit Care Med. 2004; 32 (9): 1825–1831. PMID:15343008; Sjövall F., Morota S., Hansson M.J. et al. Temporal increase of platelet mitochondrial is negatively associated with clinical outcome in patients with sepsis. Crit. Care. 2010; 14 (6): R214. PMID:21106065 DOI:10.1186/cc9337; Leverve X.M. Mitochondrial function and substrate availability. Crit. Care Med. 2007; 35 (9, Suppl): S454– 460. PMID:17713393 DOI:10.1097/01.CCM.0000278044.19217.73; Lescot T., Karvellas C., Beaussier M., Magder S. Asquired Liver Injury in the Intensive Care Unit. Anesthesiology. 2012; 117 (4): 898–904. PMID:22854981 DOI:10.1097/ALN.0b013e318266c6df; Bauer M., Press A.T., Trauner M. The liver in sepsis: patterns of response and injury. Curr. Opin. Crit. Care. 2013; 19 (2): 123–127.; Geier A., Frickert P., Trauner M. Mechanisms of disease: mechanisms and clinical applications of cholestasis in sepsis. Nat. Clin. Pract. Gastroenterol Hepatol. 2006; 3 (10): 574–585. PMID:17008927 DOI:10.1038/ncpgasthep0602; Su G.L., Simmons R.L., Wang S.C. Lipopolysaccharide binding protein participation in cellular activation by LPS. Crit. Rev. Immunol. 1995; 15 (3–4): 201– 214. PMID:8834448; Ефимов Д.Ю., Коротков С.В., Киреева А.И. и др. Ассоциация между полиморфизмом рецепторов TLR-4 донора и риском острого отторжения после трансплантации печени. Военная медицина. 2016; (3): 49–55.; Ефимов Д.Ю., Коритко А.А., Янушевская Е.А. и др. Ассоциация уровня растворимых цитокинов с развитием послеоперационных осложнений после трансплантации печени. Военная медицина. 2016; (1): 75–80.; Ефимов Д.Ю., Носик А.В., Жук Г.В. и др. Механизмы и оценка аллореактивности при трансплантации печени. Медицинский журнал 2016; (1): 50–55.; Efimov D., Shcherba A.E., Dzyadzko A.M. et al. Association between donor toll-like receptors-4 polymorphism and acute rejection after liver transplantation in Belarus. Transplantation. 2016; 100 (7S: Abst. 26th International Congress of Transplantation Society, Hong Kong, 18–23 Aug. 2016): S487. DOI:10.1097/01.tp.0000490147.72544.1a; Shcherba A.E., Kustanovich A.M., Kireyeva A.I. et al. Association of rs 913930 genotypes of TLR-4 gene with early graft dysfunction after liver transplantation. Transplantation. 2015; 99 (7S– 1: Abst. 21st Annual International Congress, Chicago, 8–11 July 2015): 236–237.; Howell J., Gow P., Angus P., Visvanathan K. Role of toll-like receptors in liver transplantation. Liver Transpl. 2014; 20(3): 270–280. PMID:24243591 DOI:10.1002/lt.23793; Testro A.G., Visvanathan K., Skinner N. et al. Acute allograft rejection in human liver transplant recipients is associated with signaling through tolllike receptor 4: TLR4 and liver allograft rejection. J. Gastroenterol. Hepatol. 2011; 26 (1): 155–163. PMID:21175809 DOI:10.1111/j.1440-1746.2010.06324.x; Wang F.P., Li L., Li J. et al. High mobility group Box-1 promotes the proliferation and migration of hepatic stellate cells via TLR4-Dependent signal pathways of PI3K/Akt and JNK. PLoS One. 2013; 8 (5): e64373. PMID:23696886 DOI:10.1371/journal.pone.0064373; John B., Klein I., Crispe I.N. Immune role of hepatic TLR-4 revealed by orthotopic mouse liver transplantation. Hepatology. 2007; 45 (1): 178–186. PMID:17187407 DOI:10.1002/hep.21446; Matzinger P. The danger model: a renewed sense of self. Science. 2002; 296 (5566): 301– 305. PMID: 11951032 DOI:10.1126/science.1071059; Laskin D.L. Nonparenchymal cells and hepatotoxicity. Semin. Liver Dis. 1990; 10 (4): 293– 304. PMID:2281337 DOI:10.1055/s-2008-1040485; Rappaport A.M. The microcirculatory acinar concept of normal and pathological hepatic structure. Beitr. Pathol. 1976; 157 (3): 215–43. PMID:1275864; Trauner M., Fickert P., Stauber R.E. Inflammation induced cholestasis. J. Gastroenterol. Hepatol. 1999; 14 (10): 946– 959. PMID:10530489; Meynaar I.A., Droog W., Batstra M. et al. In critically ill patients, serum procalcitonin is more useful in dif ferentiating between sepsis and SIRS then CRP, IL-6 or LPB. Crit. Care Res. Pract. 2011; 2011: 594645. PMID:21687569 DOI:10.1155/2011/594645; Leli C., Ferranti M., Marrano U. et al. Diagnostic accuracy of presepsin (sCD14-ST) and procalcitonin for prediction of bacteraemia and bacterial DNAaemia in patients with suspected sepsis. J. Med. Microbiol. 2016; 65 (8): 713–719. PMID:27170331 DOI:10.1099/jmm.0.000278; Zheng Z., Jiang L., Ye L. et al. The accuracy of presepsin for the diagnosis of sepsis from SIRS: a systematic review and meta-analysis. Ann. Intensive Care. 2015; 5 (1): 48. PMID:26642970 DOI:10.1186/s13613-015-0089-1; Zhang X., Liu D., Liu Y.N. et al. The accuracy of presepsin (sCD14-ST) for the diagnosis of sepsis in adults: a meta-analysis. Crit. Care. 2015; 19: 323. PMID:26357898 DOI:10.1186/s13054-015-1032-4; Richardson P.D. Physiological regulation of the hepatic circulation. Fed. Proc. 1982; 41(6): 2111–2116. PMID:6804268; Schreiber G., Urban J. The synthesis and secretion of albumin. Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 1978; 82: 27–95. PMID:210488; Abdelmegeed M.A., Song B.J. Functional Roles of Protein Nitration in Acute and Chronic Liver Diseases. Oxid. Med. Cell. Longev. 2014; 2014: 149627. PMID:24876909 DOI:10.1155/2014/149627; Dembic Z. The Cytokines of the Immune System. The Role of Cytokines in Disease Related to Immune Response. 1st ed. 2015: 320.; Perrakis A., Stirkat F., Croner R.S. et al. Prognostic and diagnostic value of procalcitonin in the post-transplant setting after liver transplantation. Arch. Med. Sci. 2016; 12 (2): 372– 379. DOI:10.5114/aoms.2016.59264; Conti F., Dall'Agata M., Gramenzi A., Biselli M. Biomarkers for the early diagnosis of bacterial infection and the surveillance of hepatocellular carcinoma in cirrhosis. Biomark. Med. 2015; 9 (12): 1343–1351. PMID:26580585 DOI:10.2217/bmm.15.100; Kaido T., Ogawa K., Fujimoto Y. et al. Perioperative changes of procalcitonin levels in patients undergoing liver transplantation. Transpl. Infect. Dis. 2014; 16 (5): 790–796. PMID:25154523 DOI:10.1111/tid.12282; Strande J.L., Routhu K.V., Hsu A. et al. Gadolinium decreases inflammation related to myocardial ischemia and reperfusion injury. J. Inflamm. (Lond). 2009; 6: 34. PMID:20003243 DOI:10.1186/1476-9255-6-34; Uchida M., Takemoto Y., Nagasue N. et al. Effect of verapamil on hepatic reperfusion injury after prolonged ischemia in pigs. J. Hepatol. 1994; 21 (2): 217–223. PMID:7989712; Hardy K.J., Tancheroen S., Shulkes A. Hepatic ischemia-reperfusion injury modification during liver surgery in rats: pretreatment with nifedipine or misoprostol. Liver Transpl. Surg. 1995; 1 (5): 302–310. PMID:9346587; Isozaki H., Fujii K., Nomura E., Hara H. Calcium concentration in hepatocytes during liver ischaemia-reperfusion injury and the effects of diltiazem and citrate on perfused rat liver. Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 2000; 12 (3): 291–297. PMID:10750649; Strieter R.M., Remick D.G., Ward P.A. et al. Cellular and molecular regulation of tumor necrosis factor-alpha production by pentoxifylline. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1988; 155 (3): 1230–1236. PMID: 2460096; Lemasters J.J., Thurman R.G. Reperfusion injury after liver preservation for transplantation. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1997; 37: 327–338. PMID:9131256 DOI:10.1146/annurev.pharmtox.37.1.327; Wu X., Qian G., Zhao Y., Xu D. LBP inhibitory peptide reduces endotoxininduced macrophage activation and mortality. Inflamm. Res. 2005; 54 (11): 451–457. PMID:16307218 DOI:10.1007/s00011-005-1378-1; Ackland G.L., Gutierrez Del Arroyo A., Yao S.T. et al. Low-molecular-weight polyethylene glycol improves survival in experimental sepsis. Crit. Care Med. 2010; 38 (2): 629–636. PMID:20009757 DOI:10.1097/CCM.0b013e3181c8fcd0; Closa D., Bardají M., Hotter G. et al. Hepatic involvement in pancreatitisinduced lung damage. Am. J. Physiol. 1996; 270 (1, Pt 1): G6-13. PMID:8772495; Hoyos S., Granell S., Heredia N. et al. Influence of portal blood on the development of systemic inflammation associated with experimental acute pancreatitis. Surgery. 2005; 137 (2): 186–191.; Brockmann J.G. Liver damage du ring organ donor procurement in donation after circulatory death compared with donation after brain death. Br. J. Surg. 2013; 100 (3): 386– 387. PMID:23300073 DOI:10.1002/bjs.9010; Щерба А.Е., Коротков С.В, Ефимов Д.Ю. и др. Предреперфузионная портально- артериальная перфузия трансплантата печени раствором HTK, cодержащим такролимус, уменьшает частоту возникновения ранней дисфункции трансплантата печени. Вестн. трансплантологии и искусств. органов. 2015; (3): 24–31.; Shcherba A., Korotkov S., Efimov D. et al. Portal and arterial flushing with HTK and tacrolimus can attenuate the incidence of early liver allograft dysfunction. J. Transl. Med. Res. 2016; 21 (2): 109–115. DOI:10.21614/jtmr-21-2-82; Zhou F., Peng Z., Murugan R., Kellum J.A. Blood purification and mortality in sepsis: a meta-analysis a randomized trials. Crit. Care Med. 2013; 41 (9): 2209– 2220. PMID:23860248 DOI:10.1097/CCM.0b013e31828cf412; Livigni S., Bertolini G., Rossi C. et al. Efficacy of coupled plasma filtration adsorption (СPFA) in patients with septic shock. A multicenter randomized controlled clinical trial. BMJ Open. 2014; 4 (1): e003536. DOI:10.1136/bmjopen-2013-003536; Born F., Pichmaier M., Peter S. et al. Systemic Inflammatory Response Syndrome in der Herzchirurgie: Neue Therapiemӧglichkeiten durch den Einsatz eines Cytokin-Adsorbers während EKZ? Kardiotechnik. 2014; 2: 41–46. DOI:10.3410/f.726162225.793514812; Ярустовский М.Б., Абрамян M.В., Кротенко Н.П. и др. Новая концепция сочетанного применения экстракорпоральных методов гемокоррекции в комплексной интенсивной терапии тяжелого сепсиса у пациентов после кардиохирургических операций. Анестезиол. и реаним. 2015; 60 (5): 75–80.; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/153

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/153
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2017-9-1-52-70

СИНДРОМ КИШЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ ПРИ ДЕСТРУКТИВНОМ ПАНКРЕАТИТЕ: ПАТОГЕНЕТИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ

Συγγραφείς: СТЕКОЛЬНИКОВ Н.Ю., ДУБЯКОВА Е.Ю., СТАРЧИХИНА Д.В., УРЯДОВ С.Е., ОДНОКОЗОВА Ю.С.

Θεματικοί όροι: ЛИПОПОЛИСАХАРИД-СВЯЗЫВАЮЩИЙ БЕЛОК, ЭНДОТОКСИН, СИНДРОМ КИШЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ, ДЕСТРУКТИВНЫЙ ПАНКРЕАТИТ

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/sindrom-kishechnoy-nedostatochnosti-pri-destruktivnom-pankreatite-patogeneticheskie-aspekty
http://cyberleninka.ru/article_covers/15942466.png

Синдром кишечной недостаточности при деструктивном панкреатите: патогенетические аспекты

Πηγή: Современные проблемы науки и образования.

Θεματικοί όροι: ЛИПОПОЛИСАХАРИД-СВЯЗЫВАЮЩИЙ БЕЛОК, ЭНДОТОКСИН, СИНДРОМ КИШЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ, ДЕСТРУКТИВНЫЙ ПАНКРЕАТИТ, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: text/html

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://cyberleninka.ru/article_covers/15942466.png
http://cyberleninka.ru/article/n/sindrom-kishechnoy-nedostatochnosti-pri-destruktivnom-pankreatite-patogeneticheskie-aspekty