-
1Academic Journal
Συγγραφείς: Илья Наумович Лейдерман, Е. А. Кокарев, С.М. Ефремов С.М. Ефремов, А. А. Астахов, Д. В. Бельский, Р. Р. Богданов, Е. Ю. Вашукова, С. В. Воеводин, Н. В. Говорова, В. И. Горбачев, В. C. Гороховский, А. Д. Дорожкин, В. И. Ершов, А. В. Жуков, К. Д. Зыбин, Н. З. Каншаов, М. Ю. Киров, И. В. Костецкий, К. Ю. Крылов, С.В. Кузнецов, Н. А. Лестева, О. А. Лобов, В. М. Луфт, А. Ю. Медведев, М. И. Неймарк, А. Г. Нелюбин, А. Е. Парменов, М. В. Петрова, А. Л. Потапов, А. В. Пылаев, В. Ю. Рублев, И. А. Руслякова, А. А. Рык, А. К. Саетгараев, И. Ю. Саматов, С. В. Свиридов, А. О. Сивков, М. В. Смирнов, Э. П. Сорокин, И. С. Симутис, Е. Ю. Струков, А. В. Сытов, В. В. Фишер, И. Е. Хорошилов, Д. С. Цветков, Н. В. Цыбин, А. П. Шакотько, Н. П. Шень, А. Е. Шестопалов, Д. Л. Шукевич, Р. Е. Энгаус, А. Ю. Яковлев, А. И. Ярошецкий, И. Б. Заболотских
Πηγή: Вестник интенсивной терапии, Iss 3 (2025)
Θεματικοί όροι: критические состояния, белково-энергетическая недостаточность, нутритивная поддержка, скрининг, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://intensive-care.ru/index.php/acc/article/view/722; https://doaj.org/toc/1726-9806; https://doaj.org/toc/1818-474X
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/6e8e349ebc16476d83cd19b93d5c67f5
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: Usenko, L.V., Tsariov, O.V.
Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 4.75 (2016); 72-78
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 4.75 (2016); 72-78
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 4.75 (2016); 72-78Θεματικοί όροι: energy protection, reamberin, critical states, intensive care, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, энергопротекция, реамберин, критические состояния, интенсивная терапия, енергопротекція, критичні стани, інтенсивна терапія, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: Maltseva, L.O., Mosentsev, M.F., Karas, R.K.
Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 4.75 (2016); 102-107
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 4.75 (2016); 102-107
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 4.75 (2016); 102-107Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, критические состояния, нутритивная поддержка, анаплеротические принципы, метаболический стресс, митохондриальная дисфункция, critical states, nutritional support, anaplerotic principles, metabolic stress, mitochondrial dysfunction, критичні стани, нутритивна підтримка, анаплеротичні принципи, метаболічний стрес, мітохондріальна дисфункція, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: N.V. Matolinets
Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 8.79 (2016); 27-32
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 8.79 (2016); 27-32
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 8.79 (2016); 27-32Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, critical conditions, cytokines, inflammation, fatty acids, критические состояния, цитокины, воспаление, жирные кислоты, 3. Good health, критичні стани, цитокіни, запалення, жирні кислоти
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: Orlov, Yu.P.
Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 7.78 (2016); 124-131
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 7.78 (2016); 124-131
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 7.78 (2016); 124-131Θεματικοί όροι: 0301 basic medicine, 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, reamberine, hypoxia, deficit, critical conditions, реамберин, гіпоксія, енергетичний дефіцит, критичні стани, 3. Good health, гипоксия, энергетический дефицит, критические состояния
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/86106
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: Еселевич, Р.В., Суров, Д.А., Герасимов, Д.Г., Балюра, О.В., Румянцев, В.Н., Могнуш, С.М.
Πηγή: POLYTRAUMA; № 4 (2024): декабрь; 75-84 ; ПОЛИТРАВМА / POLYTRAUMA; № 4 (2024): декабрь; 75-84 ; 2541-867X ; 1819-1495
Θεματικοί όροι: metabiotics, intestinal dysbiosis, acute and chronic critical conditions, метабиотики, дисбиоз кишечника, острые и хронические критические состояния
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Διαθεσιμότητα: http://poly-trauma.ru/index.php/pt/article/view/559
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: A. V. Kubyshkin, A. I. Balashova, E. V. Gyulbasarova, А. В. Кубышкин, А. И. Балашова, Е. В. Гюльбасарова
Πηγή: General Reanimatology; Том 20, № 2 (2024); 83-92 ; Общая реаниматология; Том 20, № 2 (2024); 83-92 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Θεματικοί όροι: правовое регулирование, gene diagnostics, gene therapy, ethics committee, critical conditions, personalized medicine, reanimatology, legal regulation, генная диагностика, генная терапия, этический комитет, критические состояния, персонализированная медицина, реаниматология
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2435/1813; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2435/1825; Wong C. UK first to approve CRISPR treatment for diseases: what you need to know. Nature. 2023; 623: 676–677. DOI:10.1038/d41586-023-03590-6. PMID: 37974039.; First baby receives life-saving gene therapy on NHS https://www.england.nhs.uk/2023/02/first-baby-receives-lifesaving-gene-therapy-on-nhs/. Дта обращения 17.11.2023/ Accessed 11/17/ 2023.; Мороз В. В., Смелая Т. В., Голубев А. М., Сальникова Л. Е. Генетика и медицина критических состояний: от теории к практике. Общая реаниматология. 2012; 8 (4): 5.; Жданов Р. И., Семенова Н. В., Арчаков А. И. Реальности и надежды генной терапии. Вопросы медицинской химии. 2000; 46 (3): 197–206.; Птицина С. Н. Применение методов редактирования генома и генной терапии в лечении заболеваний человека. РМЖ. 2021; 10: 57–62.; Федеральный закон от 21.11.2011 N 323-ФЗ «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации». Собрание законодательства РФ. 28.11.2011; 48: 6724.; Küchenhoff S., Doerflinger,J., Heinzelmann N. The genetic technologies questionnaire: lay judgments about genetic technologies align with ethical theory, are coherent, and predict behaviour. BMC Med Ethics. 2022; 23 (1): 54. DOI:10.1186/s12910-022-00792-x. PMID: 35614491.; Assessing genetic risks: implications for health and social policy. Institute of Medicine (US) Committee on Assessing Genetic Risks. Andrews L. B., Fullarton J. E., Holtzman N. A., Motulsky A. G. (eds.); Washington (DC): National Academies Press (US). 1994. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK236044/. Дата обращения 17.11.2023./ Accessed 11/17/2023. PMID: 25144102. DOI:10.17226/2057.; Хельсинкская декларация Всемирной медицинской ассоциации «Этические принципы медицинских исследований на человеке», доступно: http://acto-russia.org/index.php?option=com_content&task=view&id=21. Дата обращения 17.11.2023.; Всеобщая декларация о геноме человека и о правах человека (ЮНЕСКО, 1997 г., одобрена Генеральной Ассамблеей ООН в 1998 г.) доступно: https://www.un.org/ru/documents/decl_conv/declarations/human_genome.shtml. Дата обращения 17.11.2023.; Конвенция Совета Европы о защите прав и достоинства человека в связи с применением достижений биологии и медицины: Конвенция о правах человека и биомедицине. 1996 г. Доступно: https://rm.coe.int/168007d004. Дата обращения 17.11.2023.; World Health Organization. Human Genetics Programme. Proposed international guidelines on ethical issues in medical genetics and genetic services. (Part I). Rev Derecho Genoma Hum. 1998; 8: 219–223. PMID: 15839036.; Международная декларация о генетических данных человека (Международный биоэтический комитет ЮНЕСКО, 2003 г.), доступно: https://www.un.org/ru/documents/decl_conv/declarations/genome_dec.shtml. Дата обращения 17.11.2023.; Нюрнбергский кодекс 1947 год. доступно: http://www.psychepravo.ru/law/int/nyurnbergskij-kodeks.htm. Дата обращения 17.11.2023.; Материалы конференции «Геном человека — 1999». Человек 1999; 4–5. http://vivovoco.ibmh.msk.su/VV/PAPERS/MEN/GEN_ETHICS.HTM. Дата обращения 17.11.2023.; Руководства для работы Комитетов по Этике, проводящих экспертизу биомедицинских исследований. ВОЗ. 2000. (TDR/PRD/ETHICS/2000.1), доступно: https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/90912/TDR_PRD_ETHICS_2000.1_rus.pdf?isAllowed=y&sequence=1. Дата обращения 17.11.2023.; Руководство № 1 по созданию комитетов по биоэтике. Биоэтика. 2008; 1: 27–33. Guideline No. 1 on assisting countries in establishing National Bioethics Committees. Bioethics=Bioetika. 2008; 1: 27–33. (in Russ). eLIBRARY ID: 12947090.; ЮНЕСКО [68546]. Руководство № 2 «Деятельность комитетов по биоэтике: правила процедуры и принципы политики». SHS/BIO-2005/10. Доступно: https://unesdoc.unesco.org/search/b1384f13-4dff-41ab-8a04-52eb45c0d5c8. Дата обращения 17.11.2023.; Международные этические руководящие принципы для исследований в области здоровья с участием людей (Подготовлены Советом международных научно-медицинских организаций (СМНМО) в сотрудничестве с Всемирной организацией здравоохранения (ВОЗ), в ред. 2016 г. ISBN: 978 92 9036 088 9. Доступно: https://cioms.ch/wp-content/uploads/2019/01/3027-CIOMS-EthicalGuidelinesRussianLayout2019-1.pdf. Дата обращения 17.11.2023. 2016; Модельный закон «О защите прав и достоинства человека в биомедицинских исследованиях в государствах — участниках СНГ» (принят на двадцать шестом пленарном заседании Межпарламентской Ассамблеи государств — участников СНГ (постановление №26-10 от 18 ноября 2005 г.).; Capps B., Chadwick R., Joly Y., Lysaght T., Mills K., Mulvihill J. J., Zwart H. Statement on bioinformatics and capturing the benefits of genome sequencing for society. Human Genomics. 2019; 13: 24. DOI:10.1186/s40246-019-0208-4.; Иванюшкин А. Я., Попова О. В., Лапин Ю.Е, Смирнов И. Е. Методологические вопросы разработки этического кодекса врача-генетика. Российский педиатрический журнал. 2013; 5: 57–62.; «О Правилах регистрации и экспертизы лекарственных средств для медицинского применения». Решение Совета Евразийской экономической комиссии от 3 ноября 2016 г. № 78. Официальный сайт Евразийского экономического союза http://www.eaeunion.org.21.11.2016.; «Об утверждении Правил надлежащей клинической практики Евразийского экономического союза». Решение Совета Евразийской экономической комиссии от 3 ноября 2016 г. № 79. Официальный сайт Евразийского экономического союза: http://www.eaeunion.org/. 21.11.2016.; «Об утверждении Правил надлежащей практики фармаконадзора Евразийского экономического союза». Решение Совета Евразийской экономической комиссии от 3 ноября 2016 г. № 87 Официальный сайт Евразийского экономического союза http://www.eaeunion.org/. 21.11.2016.; Федеральный закон от 22.06.1998 № 86-ФЗ «О лекарственных средствах». Собрание законодательства РФ. 1998; 26: 3006.; Приказ Росздравнадзора от 17.08.2007 № 2314-Пр/07 «О Комитете по этике». Бюллетень нормативных актов федеральных органов исполнительной власти. 2007; 40.; Федеральный закон от 12.04.2010 № 61-ФЗ «Об обращении лекарственных средств». Собрание законодательства РФ. 2010; 16: 1815.; Приказ Минздрава России от 29.11.2012 № 986н 020 «Об утверждении Положения о Совете по этике». Российская газета. 2013; 39.; Приказ Минздрава России от 10.07.2015 № 435н «Об Этическом комитете Министерства здравоохранения Российской Федерации». Бюллетень нормативных актов федеральных органов исполнительной власти. 2015; 42.; Приказ Минздрава России от 10.07.2015 № 434н (ред. от 25.08.2017). «Об Экспертном совете Министерства здравоохранения Российской Федерации по вопросам организации клинической апробации методов профилактики, диагностики, лечения и реабилитации». Бюллетень нормативных актов федеральных органов исполнительной власти». 2015; 42.; Горбачев В. И., Шмаков А. Н. Нормативно-правовое обеспечение педиатрической анестезиолого-реанимационной помощи. Медицинское право. 2020; 1: 41–47.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2435
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: A. М. Golubev, А. М. Голубев
Πηγή: General Reanimatology; Том 20, № 3 (2024); 53-64 ; Общая реаниматология; Том 20, № 3 (2024); 53-64 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Θεματικοί όροι: клинические рекомендации, isoenzymes, multiple molecular forms, critical conditions, clinical guidelines, изоферменты, множественные молекулярные формы, критические состояния
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2475/1840; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2475/1847; Atkinson A.J., Colburn W.A., DeGruttola A.G., DeMets D.L., Downing G.J, Hoth J.F., Colburn W.A., et al. Biomarkers and surrogate endpoints: preferred definitions and conceptual framework. Clin Pharmacol Ther. 2001; 69 (3): 89–95. DOI:10.1067/mcp.2001.113989. PMID: 11240971.; Kamtchum-Tatuene J., Jickling G.C. Blood biomarkers for stroke diagnosis and management. Neuromolecular Med. 2019; 21 (4): 344–368. DOI:10.1007/s12017-019-08530-0. PMID: 30830566.; Голубев А.М. Персонализированная медицина критических состояний (обзор). Общая реаниматология. 2022; 18 (4): 45–54. DOI:10.15360/1813-9779-2022-4-45-54.; Голубев А.М., Гречко А.В., Захарченко В.Е., Канарский М.М., Петрова М.В., Борисов И.В. Сравнительная характеристика содержания кандидатных молекулярных маркеров при ишемическом и геморрагическом инсульте. Общая реаниматология. 2021; 17 (5): 23–34. DOI:10.15360/1813-9779-2021-5-23-34.; Тынтерова А.М., Моисеева Е.М., Голубев А.М., Шушарина Н.Н. Роль эндотелинергических и нитроксидергических реакций в прогнозировании функционального исхода пациентов с различной степенью тяжести ишемического инсульта. Общая реаниматология. 2023; 19 (5): 13–20. DOI:10.15360/1813-9779-2023-5-2354.; Хаджиева М.Б., Грачева А.С., Ершов А.В., Чурсинова Ю.В., Степанов В.А., Авдейкина Л.С., Гребенчиков О.А., с соавт. Биомаркеры повреждения структур аэрогематического барьера при COVID-19. Общая реаниматология. 2021; 17 (3): 16–31. DOI:10.15360/1813-9779-2021-3-2-0.; Бабкина А.С., Голубев А.М., Острова И.В., Волков А.В., Кузовлев А.Н. Морфологические изменения головного мозга при COVID-19. Общая реаниматология. 2021; 17 (3): 4–15. DOI:10.15360/1813-9779-2021-3-1-0.; Meyerhof O., Lohmann K. Uber die enzymatische Gleichgewichtsreaktion zwischen Hexosediphosphorsure und Dioxyacetonphosphorsaure. Naturwissenschaften. 1934; 22 (14): 220–220. DOI:10.1007/BF01491731.; McALEESE S.M., Dunbar B., Fothergill J.E., Hinks L.J., Day I.N. Complete amino acid sequence of the neurone-specific γ isozyme of enolase (NSE) from human brain and comparison with the non‐neuronal γ form (NNE). Eur J Biochem. 1988; 178 (2): 413–417. DOI:10.1111/j.1432-1033.1988.tb14465.x. PMID: 3208766.; Fuller G.G., Kim J.K. Compartmentalization and metabolic regulation of glycolysis. J Cell Sci. 2021; 134 (20): jcs258469. DOI:10.1242/jcs.258469. PMID: 34668544.; Piast M., Kustrzeba-Wójcicka I., Matusiewicz M., Banaś T. Molecular evolution of enolase. Acta Biochim Pol. 2005; 52 (2): 507–513. DOI:10.18388/abp.2005_3466. PMID: 15912209.; Seki S.M., Gaultier A. Exploring non-metabolic functions of glycolytic enzymes in immunity. Front. Immunol. 2017; 8: 1549. DOI:10.3389/fimmu.2017.01549. PMID: 29213268.; Nakamura K., Miyasho T., Nomura S., Yokota H., Nakade T. Proteome analysis of cerebrospinal fluid in healthy beagles and canine encephalitis. J Vet Med Sci. 2012; 74 (6): 751–756. DOI:10.1292/jvms.11-0474. PMID: 22251802.; Edwards Y.H., Grootegoed J.A. A sperm-specific enolase. J Reprod Fertil. 1983; 68 (2): 305–310. DOI:10.1530/jrf.0.0680305. PMID: 6864646.; Xu C.-M., Luo Y.-L., Li S., Li Z.-X., Jiang L., Zhang G.-X., Owusu L., et al. Multifunctional neuron-specific enolase: its role in lung diseases. Biosc Rep. 2019; 39 (11): BSR20192732. DOI:10.1042/BSR20192732. PMID: 31642468.; Rider C.C., Taylor C.B. Enolase isoenzymes: II. Hybridization studies, developmental and phylogenetic aspects. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) — Protein Structure. 1975; 405 (1): 175–187. DOI:10.1016/0005-2795(75)90328-1.; Gerlt J.A., Babbitt P.C., Rayment I. Divergent evolution in the enolase superfamily: the interplay of mechanism and specificity. Arch Biochem Biophys. 2005; 433 (1): 59–70. DOI:10.1016/j.abb.2004.07.034. PMID: 15581566.; Jickling G.C., Sharp F.R. Blood biomarkers of ischemic stroke. Neurotherapeutics. 2011; 8 (3): 349–360. DOI:10.1007/s13311-011-0050-4. PMID: 21671123.; Díaz-Ramos À., Roig-Borrellas A., García-Melero A., LópezAlemany R. α-enolase, a multifunctional protein: its role on pathophysiological situations. J Biomed Biotechnol. 2012; 2012: 156795. DOI:10.1155/2012/156795. PMID: 23118496.; Didiasova M., Schaefer L., Wygrecka M. When place matters: shuttling of enolase-1 across cellular compartments. Front Cell Dev Biol. 2019; 7: 61. DOI:10.3389/fcell.2019.00061. PMID: 31106201.; Merkulova T., Dehaupas M., Nevers M.C., Créminon C., Alameddine H., Keller A. Differential modulation of α, β and γ enolase isoforms in regenerating mouse skeletal muscle. Eur J Biochem. 2000; 267 (12): 3735–3743. DOI:10.1046/j.1432-1327.2000.01408.x. PMID: 10848992.; Marangos P.J., Schmechel D., Zis A.P., Goodwin F.K. The existence and neurobiological significance of neuronal and glial forms of the glycolytic enzyme enolase. Biol Psychiatry. 1979; 14 (4): 563–579. PMID: 385064.; Marangos P.J., Schmechel D.E., Parma A.M., Goodwin F.K. Developmental profile of neuron-specific (NSE) and nonneuronal (NNE) enolase. Brain Res. 1980; 190 (1): 185–193. DOI:10.1016/0006-8993 (80)91168-3. PMID: 6769532.; Capello M., Ferri‐Borgogno S., Cappello P., Novelli F.α‐Enolase: a promising therapeutic and diagnostic tumor target. FEBS J. 2011; 278 (7): 1064–1074. DOI:10.1111/j.1742-4658.2011.08025.x. PMID: 21261815.; Qiao G., Wu A., Chen X., Tian Y., Lin X. Enolase 1, a moonlighting protein, as a potential target for cancer treatment. Int J Biol Sci. 2021; 17 (14): 3981–3992. DOI:10.7150/ijbs.63556. PMID: 34671213.; Lee C.-H., Tsai C.-H., Leu S.-J., Liu K.-J., Wang W.-C., Tsai B.- Y., Chiang L.-C., et al. Generation and characterization of avian single chain variable fragment against human Alpha-Enolase. Int Immunopharmacol. 2023; 120: 110277. DOI:10.1016/j.intimp.2023.110277. PMID: 37196558.; Zhang K., Tian R., Zhang W., Li Y., Zeng N., Liang Y., Tang S. α-Enolase inhibits apoptosis and promotes cell invasion and proliferation of skin cutaneous melanoma. Mol Biol Rep. 2022; 49 (9): 8241–8250. DOI:10.1007/s11033-022-07540-9. PMID: 35925486.; Huang C.K., Lv L., Chen H., Sun Y., Ping Y. ENO1 promotes immunosuppression and tumor growth in pancreatic cancer. Clin Transl Oncol. 2023; 25 (7): 2250–2264. DOI:10.1007/s12094-023-03114-8. PMID: 36820953.; Zang H.-Y., Gong L.-G., Li S.-Y., Hao J.-G. Inhibition of α-enolase affects the biological activity of breast cancer cells by attenuating PI3K/Akt signaling pathway. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2020; 24 (1): 249–257. DOI:10.26355/eurrev_202001_19917. PMID: 31957838.; Inoue Y., Tasaki M., Masuda T., Misumi Y., Nomura T., Ando Y., Ueda M. α-Enolase reduces cerebrovascular Aβ deposits by protecting Aβ amyloid formation. Cell Mol Life Sci. 2022; 79 (8): 462. DOI:10.1007/s00018-022-04493-x. PMID: 35916996.; Vadlamani S., Karmakar R., Kumar A., Rajala M.S. Nonmetabolic role of alpha-enolase in virus replication. Mol Biol Rep. 2023; 50 (2): 1677–1686. DOI:10.1007/s11033-022-08067-9. PMID: 36402937.; Ogata M., Tsuganezawa O. Neuron-specific enolase as an effective immunohistochemical marker for injured axons after fatal brain injury. Int J Legal Med. 1999; 113 (1): 19–25. DOI:10.1007/s004140050273. PMID: 10654234.; Dagonnier M., Donnan G.A., Davis S.M., Dewey H.M., Howells D.W. Acute stroke biomarkers: are we there yet? Front. Neurol. 2021; 12: 619721. DOI:10.3389/fneur.2021.619721. PMID: 33633673.; Gójska-Grymajło A., Zieliński M., Wardowska A., Gąsecki D., Pikuła M., Karaszewski B. CXCR7+ and CXCR4+ stem cells and neuron specific enolase in acute ischemic stroke patients. Neurochem Int. 2018; 120: 134–139. DOI:10.1016/j.neuint.2018.08.009. PMID: 30125595.; Kim B.J., Kim Y.-J., Ahn S.H., Kim N.Y., Kang D.-W., Kim J.S., Kwon S.U. The second elevation of neuron-specific enolase peak after ischemic stroke is associated with hemorrhagic transformation. J Stroke Cerebrovasc Dis. 2014; 23 (9): 2437–2443. DOI:10.1016/j.jstrokecerebrovasdis.2014.05.020. PMID: 25183561.; Kurakina A.S., Semenova T.N., Guzanova E.V., Nesterova V.N., Schelchkova N.A., Mukhina I.V., Grigoryeva V.N. Prognostic value of investigating neuron-specific enolase in patients with ischemic stroke. Sovrem Tekhnologii Med. 2021; 13 (2): 68–72. DOI:10.17691/stm2021.13.2.08. PMID: 34513079.; Kawle A.P., Nayak A.R., Lande N.H., Kabra D.P., Chandak N.H., Badar S.R., Raje D.V., et al. Comparative evaluation of risk factors, outcome and biomarker levels in young and old acute ischemic stroke patients. Ann Neurosci. 2015; 22 (2): 70–77. DOI:10.5214/ans.0972.7531.220204. PMID: 26130910.; Bharosay A., Bharosay V.V., Saxena K., Varma M. Role of brain biomarker in predicting clinical outcome in hypertensive cerebrovascular ischemic stroke. Ind J Clin Biochem. 2018; 33 (2): 178–183. DOI:10.1007/s12291-017-0664-3. PMID: 29651208.; Iłżecki J., Przywara S., Terlecki P., Grabarska A., Stepulak A., Zubilewicz T. Serum neuron-specific enolase as a marker of brain ischemia-reperfusion injury in patients undergoing carotid endarterectomy. Acta Clin Croat. 2016; 55 (4): 579–583. DOI:10.20471/acc.2016.55.04.07 PMID: 29117648.; Glushakova O.Y., Glushakov A.V., Miller E.R., Valadka A.B., Hayes R.I. Biomarkers for acute diagnosis and management of stroke in neurointensive care units. Brain Circ. 2016; 2 (1): 28–47. DOI:10.4103/2394-8108.178546. PMID: 30276272.; Khandare P., Saluja A., Solanki R.S., Singh R., Vani K., Garg D., Dhamija R.K. Serum S100B and NSE levels correlate with infarct size and bladder-bowel involvement among acute iischemic stroke patients. J Neurosc Rural Pract. 2022; 13 (2): 218–225. DOI:10.1055/s-0042-1743214. PMID: 35694066.; Gao L., Xie J., Zhang H., Zheng H., Zheng W., Pang C., Cai Y., et al. Neuron-specific enolase in hypertension patients with acute ischemic stroke and its value forecasting longterm functional outcomes. BMC Geriatr. 2023; 23 (1): 294. DOI:10.1186/s12877-023-03986-z. PMID: 37189072.; Kang C., You Y., Ahn H.J., Park J.S., Jeong W., Min J.H., In Y.N., et al. Blood–brain barrier disruption as a cause of various serum neuron-specific enolase cut-off values for neurological prognosis in cardiac arrest patients. Sci Rep. 2022; 12 (1): 2186. DOI:10.1038/s41598-022-06233-4. PMID: 35140324.; Kim S.H., Kim H.J., Park K.N., Choi S.P., Lee B.K., Oh S.H., Jeung K.W., et al. Neuron-specific enolase and neuroimaging for prognostication after cardiac arrest treated with targeted temperature management. PLoS ONE. 2020; 15 (10): e0239979. DOI:10.1371/journal.pone.0239979. PMID: 33002033.; Lee J.H., Kim Y.H., Lee J.H., Lee D.W., Hwang S.Y., Youn C.S., Kim J.-H., et al. Combination of neuron-specific enolase measurement and initial neurological examination for the prediction of neurological outcomes after cardiac arrest. Sci Rep. 2021; 11 (1): 15067. DOI:10.1038/s41598-021-94555-0. PMID: 34302037.; Kang C., Jeong W., Park J.S., You Y., Min J.H., Cho Y.C., Ahn H.J. Comparison of prognostic performance between neuron-specific enolase and S100 calcium-binding protein B obtained from the cerebrospinal fluid of out-of-hospital cardiac arrest survivors who underwent targeted temperature management. J Clin Med. 2021; 10 (7): 1531. DOI:10.3390/jcm10071531. PMID: 33917473.; Zhai Q., Feng L., Zhang H., Wu M., Wang D., Ge H., Li S., et al. Serial disseminated intravascular coagulation score with neuron specific enolase predicts the mortality of cardiac arrest—a pilot study. J Thorac Dis. 2020; 12 (7): 3573–3581. DOI:10.21037/jtd-20-580. PMID: 32802436.; Huang H.-B., Huang J.-L., Xu X.-T., Huang K.-B., Lin Y.-J., Lin J.-B., Zhuang X.-B. Serum neuron-specific enolase: a promising biomarker of silicosis. World J Clin Cases. 2021; 9 (5): 1016–1025. DOI:10.12998/wjcc.v9.i5.1016. PMID: 33644165.; Cione E., Siniscalchi A., Gangemi P., Cosco L., Colosimo M., Longhini F., Luciani F., et al. Neuron-specific enolase serum levels in COVID-19 are related to the severity of lung injury. PLoS ONE. 2021; 16 (5): e0251819. DOI:10.1371/journal.pone.0251819. PMID: 34010310.; Li L., Zhang Z., Hu Y. Neuron — specific enolase predicts the prognosis in advanced small cell lung cancer patients treated with first-line PD-1/PD-L1 inhibitors. Medicine (Baltimore). 2021; 100 (36): e27029. DOI:10.1097/MD.0000000000027029. PMID: 34516493.; Lu L., Zha Z., Zhang P., Wang P., Liu X., Fang X., Weng C., et al. Neuron-specific enolase promotes stem cell-like characteristics of small-cell lung cancer by downregulating NBL1 and activating the BMP2/Smad/ID1 pathway. Oncogenesis. 2022; 11 (1): 21. DOI:10.1038/s41389-022-00396-5. PMID: 35487890.; Park T., Lee Y.-J., Jeong S.-H., Choi S.-K., Jung E.-J., Ju Y-T., Jeong C.-Y., et al. Overexpression of neuron-specific enolase as a prognostic factor in patients with gastric cancer. J Gastric Cancer. 2017; 17 (3): 228–236. DOI:10.5230/jgc.2017.17.e28. PMID: 28970953.; Chung-Esaki H.M., Mui G., Mlynash M., Eyngorn I., Catabay K., Hirsch K.G. The neuron specific enolase (NSE) ratio offers benefits over absolute value thresholds in postcardiac arrest coma prognosis. J Clin Neurosci. 2018; 57: 99–104. DOI:10.1016/j.jocn.2018.08.020. PMID: 30145080.; Huţanu A., Iancu M., Bălaşa R., Maier S., Dobreanu M. Predicting functional outcome of ischemic stroke patients in Romania based on plasma CRP, sTNFR-1, D-Dimers, NGAL and NSE measured using a biochip array. Acta Pharmacol Sin. 2018; 39 (7): 1228–1236. DOI:10.1038/aps.2018.26. PMID: 29926842.; Anand N., Stead L.G. Neuron-specific enolase as a marker for acute ischemic stroke: a systematic review. Cerebrovasc Dis. 2005; 20 (4): 213–219. DOI:10.1159/000087701. PMID: 16123539.; Топузова М.П., Алексеева Т.М., Панина Е.Б., Вавилова Т.В., Ковзелев П.Д., Портик О.А., Скоромец А.А. Возможность использования нейрон-специфической енолазы как биомаркера в остром периоде инсульта. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2019; 119 (8–2): 53–62. DOI:10.17116/jnevro201911908253. PMID: 31825363.; Pujol-Calderón F., Zetterberg H., Portelius E., Hendén P.L., Rentzos A., Karlsson J.-E., Höglund K., et al. Prediction of outcome after endovascular embolectomy in anterior circulation stroke using biomarkers. Transl Stroke Res. 2022; 13 (1): 65–76. DOI:10.1007/s12975-021-00905-5. PMID: 33723754.; Pelinka L.E., Hertz H., Mauritz W., Harada N., Jafarmadar M., Albrecht M., Redl H., et al. Nonspecific increase of systemic neuron-specific enolase after trauma: clinical and experimental findings: Shock. 2005; 24 (2): 119–123. DOI:10.1097/01.shk.0000168876.68154.43. PMID: 16044081.; Nomura M., Kato K., Nagasaka A., Shiga Y., Miyagi Y., Fukui R., Nakano H. et al. Serum beta-enolase in acute myocardial infarction. Br Heart J. 1987; 58 (1): 29–33. DOI:10.1136/hrt.58.1.29. PMID: 3620239.; Royds J.A., Variend S., Timperley W.R., Taylor C.B. An investigation of beta enolase as a histological marker of rhabdomyosarcoma. J Clin Pathol. 1984; 37 (8): 905–910. DOI:10.1136/jcp.37.8.905. PMID: 6381545.; Vizin T., Kos J. Gamma-enolase: a well-known tumour marker, with a less-known role in cancer. Radiol Oncol. 2015; 49 (3): 217–226. DOI:10.1515/raon-2015-0035. PMID: 26401126.; Comi G.P., Fortunato F., Lucchiari S., Bordoni A., Prelle A., Jann S., Keller A., et al. Beta-enolase deficiency, a new metabolic myopathy of distal glycolysis. Ann Neurol. 2001; 50 (2): 202–207. DOI:10.1002/ana.1095. PMID: 11506403.; Chosa E., Sekimoto T., Sonoda N., Yamamoto K., Matsuda H., Takahama K., Tajima N. Evaluation of human betaenolase as a serum marker for exercise-induced muscle damage. Clin J Sport Med. 2003; 13 (4): 209–212. DOI:10.1097/00042752-200307000-00003. PMID: 12855922.; Musumeci O., Brady S., Rodolico C., Ciranni A., Montagnese F., Aguennouz M., Kirk R., et al. Recurrent rhabdomyolysis due to muscle β-enolase deficiency: very rare or underestimated? J Neurol. 2014; 261 (12): 2424–2428. DOI:10.1007/s00415-014-7512-7. PMID: 25267339.; Keller A., Demeurie J., Merkulova T., Géraud G., CywinerGolenzer C., Lucas M., Châtelet F.P. Fibre-type distribution and subcellular localisation of alpha and beta enolase in mouse striated muscle. Biol Cell. 2000; 92 (7): 527–535. DOI:10.1016/s0248-4900(00)01103-5. PMID: 11229603.; Force A., Viallard J.-L., Saez F., Grizard G., Boucher D. Electrophoretic characterization of the human sperm-specific enolase at different stages of maturation. J Androl. 2004; 25 (5): 824–829. DOI:10.1002/j.1939-4640.2004.tb02861.x. PMID: 15292116.; Force A., Viallard J.-L., Grizard G., Boucher D. Enolase isoforms activities in spermatozoa from men with normospermia and abnormospermia. J Androl. 2002; 23 (2): 202–210. PMID: 11868813.; Isgrò M.A., Bottoni P., Scatena R. Neuron-specific enolase as a biomarker: biochemical and clinical aspects. Adv Exp Med Biol; 2015; 867: 125–143. DOI:10.1007/978-94-017-7215-0_9. PMID: 26530364.; Pancholi V. Multifunctional α-enolase: its role in diseases. CMLS, Cell Mol Life Sci. 2001; 58 (7): 902–920. DOI:10.1007/PL00000910. PMID: 11497239.; Kimura S., Hayano T., Kato K. Properties and application to immunoassay of monoclonal antibodies to neuron-specific gamma gamma enolase. Biochim Biophys Acta. 1984; 799 (3): 252–259. DOI:10.1016/0304-4165(84)90268-x. PMID: 6375733.; Kato K., Ishiguro Y., Suzuki F., Ito A., Semba R. Distribution of nervous system-specific forms of enolase in peripheral tissues. Brain Res. 1982; 237 (2): 441–448. DOI:10.1016/0006-8993(82)90455-3. PMID: 7044473.; Sterk M., Oenings A., Eymann E., Roos W. Development of a new automated enzyme immunoassay for the determination of neuron-specific enolase. Anticancer Res. 1999; 19 (4A): 2759–2762. PMID: 10470236.; Mair J. Progress in myocardial damage detection: new biochemical markers for clinicians. Crit Rev Clin Lab Sci. 1997; 34 (1): 1–66. DOI:10.3109/10408369709038215. PMID: 9055056.; Kawata K., Liu C.Y., Merkel S.F., Ramirez S.H., Tierney R.T., Langford D. Blood biomarkers for brain injury: what are we measuring? Neurosci Biobehav Rev. 2016; 68: 460–473. DOI:10.1016/j.neubiorev.2016.05.009. PMID: 27181909.; Lissner Östlund E., Levin H., Nielsen N., Frigyesi A., Lybeck A. Neuron-specific enolase and long-term neurological outcome after OHCA — a validation study. Resuscitation. 2021; 168: 206–213. DOI:10.1016/j.resuscitation.2021.09.001. PMID: 34508799.; Nyholm B., Grand J., Obling L.E.R., Hassager C., Møller J.E., Schmidt H., Othman M.H., et al. Quantitative pupillometry for neuroprognostication in comatose post-cardiac arrest patients: a protocol for a predefined sub-study of the Blood pressure and Oxygenations Targets after Out-of-Hospital Cardiac Arrest (BOX)-trial. Resusc Plus. 2023; 16100475. DOI:10.1016/j.resplu.2023.100475. PMID: 37779885.; Ferraro S., Braga F., Luksch R., Terenziani M., Caruso S., Panteghini M. Measurement of serum neuron-specific enolase in neuroblastoma: is there a clinical role? Clin Chem. 2020; 66 (5): 667–675. DOI:10.1093/clinchem/hvaa073. PMID: 32353141.; Bersani I., Pluchinotta F., Dotta A., Savarese I., Campi F., Auriti C., Chuklantseva N., et al. Early predictors of perinatal brain damage: the role of neurobiomarkers. Clin Chem Lab Med. 2020; 58 (4): 471–486. DOI:10.1515/cclm-2019-0725. PMID: 31851609.; Dobrut A., Brzozowska E., Górska S., Pyclik M., Gamian A., Bulanda M., Majewska E., et al. Epitopes of immunoreactive proteins of Streptococcus Agalactiae: enolase, inosine 5‘- monophosphate dehydrogenase and molecular chaperone GroEL. Front Cell Infect Microbiol. 2018; 8: 349. DOI:10.3389/fcimb.2018.00349. PMID: 30333963.; Ramirez-Celis A., Edmiston E., Schauer J., Vu T., Van de Water J. Peptides of neuron specific enolase as potential ASD biomarkers: from discovery to epitope mapping. Brain Behav Immun. 2020; 84: 200–208. DOI:10.1016/j.bbi.2019.12.002. PMID: 31812776.; Montaner J., Ramiro L., Simats A., Tiedt S., Makris K., Jickling G.C., Debette S. et al. Multilevel omics for the discovery of biomarkers and therapeutic targets for stroke. Nat Rev Neurol. 2020; 16 (5): 247–264. DOI:10.1038/s41582-020-0350-6. PMID: 32322099.; Горяйнова О.С., Хан Е.О., Иванова Т.И., Тиллиб С.В. Новый метод, базирующийся на использовании иммобилизованных однодоменных антител для удаления определенных мажорных белков из плазмы крови, способствует уменьшению неспецифического сигнала в иммуноанализе. Медицинская иммунология. 2019; 21 (3): 567–575. DOI:10.15789/1563-0625-2019-3-567-575.; Carney D., Ihde D., Cohen M., Marangos P., Bunn P., Minna J., Gazdar A. Serum neuron-specific enolase: a marker for disease extent and response to therapy of small-cell lung cancer. Lancet. 1982; 1 (8272): 583–585. DOI:10.1016/S0140-6736(82)91748-2. PMID: 6121182.; Marangos P.J., Campbell I.C., Schmechel D.E., Murphy D.L., Goodwin F.K. Blood platelets contain a neuron‐specific enolase subunit. J Neurochem. 1980; 34 (5): 1254–1258. DOI:10.1111/j.1471-4159.1980.tb09967.x. PMID: 7373305.; Genet S.A.A.M., Wolfs J.R.E., Vu C.B.A.K., Wolter M., Broeren M.A.C., Van Dongen J., et al. Analysis of Neuron-Specific enolase isozymes in human serum using immunoaffinity purification and liquid chromatography-tandem mass spectrometry quantification. J Chromatog B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2023; 1223: 123701. DOI:10.1016/j.jchromb.2023.123701. PMID: 37086508.; Torsetnes S.B., Løvbak S.G., Claus C., Lund H., Nordlund M.S., Paus E., Halvorsen T.G., et al. Immunocapture and LC-MS/MS for selective quantification and differentiation of the isozymes of the biomarker neuron-specific enolase in serum. J Chromatog B Analyt Technol Biomed Life Sci. 2013; 929: 125–132. DOI:10.1016/j.jchromb.2013.04.010. PMID: 23669612.; Marangos P.J., Schmechel D.E. Neuron specific enolase, a clinically useful marker for neurons and neuroendocrine cells. Annu Rev Neurosci. 1987; 10: 269–295. DOI:10.1146/annurev.ne.10.030187.001413. PMID: 3551759.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2475; undefined
Διαθεσιμότητα: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2475
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: A. V. Kubyshkin, O. S. Grin, T. O. Shilyuk, А. В. Кубышкин, О. С. Гринь, Т. О. Шилюк
Συνεισφορές: Support from the Russian Ministry of Education and Science (Theme: "Scientific and methodological support of activities on legal regulation of accelerated development of genetic technologies", registration No. 4768-23), Поддержка Минобрнауки России (Тема: «Научно-методическое обеспечение работ по правовому регулированию ускоренного развития генетических технологий», паспорт № 4768-23).
Πηγή: General Reanimatology; Том 20, № 3 (2024); 65-74 ; Общая реаниматология; Том 20, № 3 (2024); 65-74 ; 2411-7110 ; 1813-9779
Θεματικοί όροι: реаниматология, genetic information, data protection, legal regulation, genetic diagnosis, critical illness, personalized medicine, reanimatology, генетическая информация, защита информации, правовое регулирование, генетическая диагностика, критические состояния, персонализированная медицина
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2482/1841; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2482/1848; Сычев Д.А., Шуев Г.Н., Торбенков Е.С., Адриянова М.А. Персонализированная медицина: взгляд клинического фармаколога. Consilium Medicum. 2017; 19 (1): 61–68.; Федеральный закон от 21.11.2011 N 323-ФЗ «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации». Собрание законодательства РФ. 28.11.2011; 48: 6724.; Миронов П.И., Лекманов А.У. Геномная медицина и персонализированная терапия сепсиса. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2017; 14 (3): 35–43. DOI:10.21292/2078-5658-2017-14-3-35-43.; Винер Н. Кибернетика и общество. М.: Издательство иностранной литературы; 1958: 31.; Социально-экономическая природа информационного продукта и информационного ресурса. Плахотная Д.Г. (ред). М.: Изд-во МГУ; 1992: 16.; Ермишина Е.В. Международный обмен информацией: правовые аспекты. М.: Междунар. отношения; 1988: 13.; Лопатин В.Н. Информационная безопасность России: Человек. Общество. Государство. СПб.: Фонд «Университет»; 2000: 27.; Федеральный закон от 27.07.2006 № 149-ФЗ «Об информации, информационных технологиях и о защите информации». Собрание законодательства РФ: 31.07.2006; 31 (1): 3448.; Федеральный закон от 3 декабря 2008 г. № 242-ФЗ «О государственной геномной регистрации в Российской Федерации». Собрание законодательства РФ. 08.12.2008; 49: 5740.; Болтанова Е.С., Имекова М.П. Генетическая информация в системе объектов гражданских прав. Lex Russica (Русский закон). 2019; (6): 110–121. DOI:10.17803/1729-5920.2019.151.6.110-121.; Постановление Правительства РФ от 01.11.2012 № 1119 «Об утверждении требований к защите персональных данных при их обработке в информационных системах персональных данных». Собрание законодательства РФ. 05.11.2012; 45: 6257.; Федеральный закон от 27 июля 2006 г. № 152-ФЗ «О персональных данных». Собрание законодательства РФ. 31.07.2006; 31 (1): 3451; Ожегов С.И., Шведова Н.Ю. Толковый словарь русского языка: 72500 слов и 7500 фразеологических выражений. Российская АН, Ин-т рус. яз., Российский фонд культуры. 2-е изд., испр. и доп. М.: Азъ; 1994.; Постановление № 12 Совета Министров Союзного государства «О Концепции научно-технической программы Союзного государства «Разработка инновационных геногеографических и геномных технологий идентификации личности и индивидуальных особенностей человека на основе изучения генофондов регионов Союзного государства» («ДНКидентификация»)» (Принято в г. Могилеве 12 мая 2016 г.).; Конвенция о биологическом разнообразии 13 июня 1992 года. Собрание законодательства Российской Федерации. 1996; 19: 2254.; Федеральный закон от 29.12.2022 № 643-ФЗ «О внесении изменений в Федеральный закон «О государственном регулировании в области генно-инженерной деятельности». Собрание законодательства РФ. 02.01.2023; 1 (I): 90.; Большая Российская энциклопедия: в 30 т. Науч.-ред. совет: предс. Ю. С. Осипов и др. М: Большая Рос. энциклопедия; 2015: 30. ISBN 5-85270-320-6.; Курчанов Н. А. Генетика человека с основами общей генетики. Учебное пособие. СПб: СпецЛит; 2009.; Патрушев Л.И. Экспрессия генов. М.: Наука; 2000.; Международная декларация о генетических данных человека (Международный биоэтический комитет ЮНЕСКО, 2003 г.), доступно: https://www.un.org/ru/documents/decl_conv/declarations/genome_dec.shtml. Дата обращения 17.11.2023.; Закон Российской Федерации от 22 декабря 1992 г. № 4180-1 «О трансплантации органов и (или) тканей человека». Ведомости Съезда народных депутатов Российской Федерации и Верховного Совета Российской Федерации. 1993; 2: 62.; Приказ Минздрава России N 306н, РАН № 3 от 04.06.2015 «Об утверждении перечня объектов трансплантации». Российская газета. 2015; 38.; Федеральный закон от 23 июня 2016 г. № 180-ФЗ «О биомедицинских клеточных продуктах». Собрание законодательства РФ». 27.06.2016; 26 (I): 3849.; ГОСТ Р 59787-2021/ISO/TS 20658: 2017. «Национальный стандарт Российской Федерации. Лаборатории медицинские. Требования к взятию, транспортированию, получению и обработке биологического материала». https://protect.gost.ru/v.aspx?control=8&baseC=-1&page=0&month=-1&year=-1&search=&RegNum=1&DocOnPageCount=15&id=231218. Дата обращения 03.04.2024.; Рекомендации CM/Rec (2016) 6 Комитета министров государств — членов Совета Европы по исследованию биологических материалов человеческого происхождения. Приняты 11.05.2016. https://search.coe.int/cm/Pages/result_details.aspx?ObjectId=090000168064e8ff. Дата обращения 03.04.2024.; Закон Финляндии о биобанках. https://www.finlex.fi/en/laki/kaannokset/2012/en20120688_20120688.pdf. Дата обращения 25.11.2023.; Icelandic Supreme Court № 151/2003. https://epic.org/wpcontent/uploads/privacy/genetic/iceland_decision.pdf. Дата обращения 25.11.2023. Accessed 11/25/2023.; Сорокина Е.М. «Запрет на использование ДНК умерших родственников при создании генетических баз данных на примере судебной практики Исландии» в монографии. Абросимова Е.А., Агафонов В.Б., Акулин И.Мю.; ред.: А.А. Мохов, О.В. Сушкова. «Право и современные технологии в медицине». М.: Проспект; 2019: 164–168.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2482
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Dmitry L. Shukevich, Timofey A. Baev, Vladislav A. Babkov, Дмитрий Леонидович Шукевич, Тимофей Александрович Баев, Владислав Анатольевич Бабков
Συνεισφορές: Авторы заявляют об отсутствии финансирования исследования.
Πηγή: Complex Issues of Cardiovascular Diseases; Том 13, № 4S (2024); 230-240 ; Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний; Том 13, № 4S (2024); 230-240 ; 2587-9537 ; 2306-1278
Θεματικοί όροι: Экстракорпоральные методы терапии, Neutrophil extracellular traps, Critical condition, Cardiac surgery, Cardiovascular diseases, Extracorporeal therapies, Внеклеточные нейтрофильные ловушки, Критические состояния, Кардиохирургия, Сердечно-сосудистые заболевания
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.nii-kpssz.com/jour/article/view/1557/988; Liew P.X., Kubes P. The Neutrophil's Role During Health and Disease. Physiol Rev. 2019;99(2):1223-1248. doi:10.1152/physrev.00012.2018.; Mantovani A., Cassatella M.A., Costantini C., Jaillon S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat Rev Immunol. 2011;11(8):519-31. doi:10.1038/nri3024.; Ярилин, А. А. Иммунология. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2010. 752 с.; Chu H. T., Lin H., Tsao T. T., Chang C. F., Hsiao W. W., Yeh T. J., Chang C. M., Liu Y. W., Wang T. Y., Yang K. C., Chen T. J., Chen J. C., Chen K. C., Kao C. Y. Genotyping of human neutrophil antigens (HNA) from whole genome sequencing data. BMC Med Genomics. 2013;6:31. doi:10.1186/1755-8794-6-31.; Mescher A.L. Junqueira's Basic Histology. Publisher: McGraw-Hill Medical, 2016.; Takei H., Araki A., Watanabe H., Ichinose A., Sendo F. Rapid killing of human neutrophils by the potent activator phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) accompanied by changes different from typical apoptosis or necrosis. J Leukoc Biol. 1996;59(2):229-40. doi:10.1002/jlb.59.2.229.; Долгушин И.И., Aндреева Ю.С., Савочкина A.Ю. Нейтрофильные внеклеточные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. Москва : Изд-во РAМН, 2009. 203с.; Hoyer F.F., Nahrendorf M. Neutrophil contributions to ischaemic heart disease. Eur Heart J. 2017 Feb 14;38(7):465-472. doi:10.1093/eurheartj/ehx017.; Fuchs T.A., Abed U., Goosmann C., Hurwitz R., Schulze I., Wahn V., Weinrauch Y., Brinkmann V., Zychlinsky A. Novel cell death program leads to neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2007;176(2):231-41. doi:10.1083/jcb.200606027.; Sherer Y., Gorstein A., Fritzler M.J., Shoenfeld Y. Autoantibody explosion in systemic lupus erythematosus: more than 100 different antibodies found in SLE patients. Semin Arthritis Rheum. 2004;34(2):501-37. doi:10.1016/j.semarthrit.2004.07.002.; Zhu Y., Xia X., He Q., Xiao Q.A., Wang D., Huang M., Zhang X. Diabetes-associated neutrophil NETosis: pathogenesis and interventional target of diabetic complications. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14:1202463. doi:10.3389/fendo.2023.1202463.; Pieterse E, Rother N, Yanginlar C, Gerretsen J, Boeltz S, Munoz LE, Herrmann M, Pickkers P, Hilbrands LB, van der Vlag J. Cleaved N-terminal histone tails distinguish between NADPH oxidase (NOX)-dependent and NOX-independent pathways of neutrophil extracellular trap formation. Ann Rheum Dis. 2018;77(12):1790-1798. doi:10.1136/annrheumdis-2018-213223.; Villanueva E., Yalavarthi S., Berthier C.C., Hodgin J.B., Khandpur R., Lin A.M., Rubin C.J., Zhao W., Olsen S.H., Klinker M. et al. Netting neutrophils induce endothelial damage, infiltrate tissues, and expose immunostimulatory molecules in systemic lupus erythematosus. J Immunol. 2011;187(1):538–552. doi:10.4049/jimmunol.1100450.; Здравоохранение в России. 2023. М.:Стат.сб./Росстат, 2023. 179 с.; Bahit M. C., Kochar A., Granger C. B. Post-myocardial infarction heart failure. JACC. Heart Failure. 2018;6(3):179–186. doi:10.1016/j.jchf.2017.09.015; Packer M., Lam C. S. P., Lund L. H., Redfield M. M. Interdependence of atrial fibrillation and heart failure with a preserved ejection fraction reflects a common underlying atrial and ventricular myopathy. Circulation. 2020;141(1):4–6. doi:10.1161/CIRCULATIONAHA.119.042996; Bonaventura A., Vecchié A., Abbate A., Montecucco F. Neutrophil extracellular traps and cardiovascular diseases: an update. Cells. 2020;9:231. doi:10.3390/cells9010231; Chen T., Li Y., Sun R., Hu H., Liu Y., Herrmann M., Zhao Y., Muñoz L.E. Receptor-Mediated NETosis on Neutrophils. Front Immunol. 2021;12:775267. doi:10.3389/fimmu.2021.775267.; Bonaventura A., Liberale L., Carbone F., Vecchie A., Diaz-Canestro C., Camici G.G., Montecucco F., Dallegri F. The pathophysiological role of neutrophil extracellular traps in inflammatory diseases. Thromb Haemost. 2018 Jan;118(1):6-27. doi:10.1160/TH17-09-0630.; Su F., Moreau A., Savi M., Salvagno M., Annoni F., Zhao L., Xie K., Vincent J.L., Taccone F.S. Circulating Nucleosomes as a Novel Biomarker for Sepsis: A Scoping Review. Biomedicines. 2024;12(7):1385. doi:10.3390/biomedicines12071385.; James P., Kaushal D., Beaumont Wilson R. NETosis in Surgery: Pathophysiology, Prevention, and Treatment. Ann Surg. 2024;279(5):765-780. doi:10.1097/SLA.0000000000006196.; Yang K., Gao R., Chen H., Hu J., Zhang P., Wei X., Shi J., Chen Y., Zhang L., Chen J. et al. Myocardial reperfusion injury exacerbation due to ALDH2 deficiency is mediated by neutrophil extracellular traps and prevented by leukotriene C4 inhibition. Eur Heart J. 2024;45(18):1662-1680. doi:10.1093/eurheartj/ehae205.; Nunez J.H., Juan C., Sun Y., Hong J., Bancroft A.C., Hwang C., Medrano J.M., Huber A.K., Tower R.J., Levi B. Neutrophil and NETosis Modulation in Traumatic Heterotopic Ossification. Ann Surg. 2023;278(6):e1289-e1298. doi:10.1097/SLA.0000000000005940.; Li R.H., Tablin F. A comparative review of neutrophil extracellular traps in sepsis. Front Vet Sci. 2018; 5:291. doi:10.3389/fvets.2018.00291.; Abrams S.T., Zhang N., Manson J., Liu T., Dart C., Baluwa F., Wang S.S., Brohi K., Kipar A., Yu W. Circulating histones are mediators of trauma-associated lung injury. Am J Respir Crit Care Med. 2013;187(2):160–169. doi:10.1164/rccm.201206-1037OC.; Аверина Т.Б. Искусственное кровообращение. Анналы хирургии. 2013; 2:5-12.; Maisat W., Hou L., Sandhu S., Sin Y.C., Kim S., Pelt H.V., Chen Y., Emani S., Kong S.W., Emani S., Ibla J., Yuki K. Neutrophil extracellular traps formation is associated with postoperative complications in neonates and infants undergoing congenital cardiac surgery. bioRxiv [Preprint]. 2023:2023.12.21.572768. doi:10.1101/2023.12.21.572768.; Salazar-Gonzalez H., Zepeda-Hernandez A., Melo Z., Saavedra-Mayorga D.E., Echavarria R. Neutrophil Extracellular Traps in the Establishment and Progression of Renal Diseases. Medicina (Kaunas). 2019;55(8):431. doi:10.3390/medicina55080431.; Ham A., Rabadi M., Kim M., Brown K.M., Ma Z., D'Agati V., Lee H.T. Peptidyl arginine deiminase-4 activation exacerbates kidney ischemia-reperfusion injury. Am J Physiol Renal Physiol. 2014;307(9):F1052-62. doi:10.1152/ajprenal.00243.2014.; Raup-Konsavage W.M., Wang Y., Wang W.W., Feliers D., Ruan H., Reeves W.B. Neutrophil peptidyl arginine deiminase-4 has a pivotal role in ischemia/reperfusion-induced acute kidney injury. Kidney Int. 2018;93(2):365-374. doi:10.1016/j.kint.2017.08.014.; Nakazawa D., Kumar S.V., Marschner J., Desai J., Holderied A., Rath L., Kraft F., Lei Y., Fukasawa Y., Moeckel G.W., Angelotti M.L., Liapis H., Anders H.J. Histones and Neutrophil Extracellular Traps Enhance Tubular Necrosis and Remote Organ Injury in Ischemic AKI. J Am Soc Nephrol. 2017;28(6):1753-1768. doi:10.1681/ASN.2016080925.; Stapels D.A., Geisbrecht B.V., Rooijakkers S.H. Neutrophil serine proteases in antibacterial defense. Curr Opin Microbiol. 2015;23:42-8. doi:10.1016/j.mib.2014.11.002.; Urban CF, Ermert D, Schmid M, Abu-Abed U, Goosmann C, Nacken W, et al. Neutrophil extracellular traps contain calprotectin, a cytosolic protein complex involved in host defense against candida albicans. PloS Pathog (2009) 5:e1000639. doi:10.1371/journal.ppat.1000639; Carden D, Xiao F, Moak C, Willis BH, Robinson-Jackson S, Alexander S. Neutrophil elastase promotes lung microvascular injury and proteolysis of endothelial cadherins. Am J Physiology-Heart Circulatory Physiol (1998) 275:H385–92. doi:10.1152/ajpheart.1998.275.2.H385; Suzuki K., Okada H., Takemura G., Takada C., Kuroda A., Yano H., Zaikokuji R., Morishita K., Tomita H., Oda K., et al. Neutrophil elastase damages the pulmonary endothelial glycocalyx in lipopolysaccharide-induced experimental endotoxemia. Am J Pathol. 2019;189(8):1526–35. doi:10.1016/j.ajpath.2019.05.002; Martinod K., Witsch T., Farley K., Gallant M., Remold-O’Donnell E., Wagner D.D. Neutrophil elastase-deficient mice form neutrophil extracellular traps in an experimental model of deep vein thrombosis. J Thromb Haemostasis.(2016;14(3):551–8. doi:10.1111/jth.13239; Ebrahimi F., Giaglis S., Hahn S., Blum C.A., Baumgartner C., Kutz A., van Breda S.V., Mueller B., Schuetz P., Christ-Crain M., Hasler P. Markers of neutrophil extracellular traps predict adverse outcome in community-acquired pneumonia: secondary analysis of a randomised controlled trial. Eur Respir J. 2018;51(4):1701389. doi:10.1183/13993003.01389-2017.; Vassallo A., Wood A.J., Subburayalu J., Summers C., Chilvers E.R. The counter-intuitive role of the neutrophil in the acute respiratory distress syndrome. Br Med Bull. 2019;131(1):43-55. doi:10.1093/bmb/ldz024.; Clancy D.M., Sullivan G.P., Moran H.B.T., Henry C.M., Reeves E.P., McElvaney N.G., Lavelle E.C., Martin S.J. Extracellular Neutrophil Proteases Are Efficient Regulators of IL-1, IL-33, and IL-36 Cytokine Activity but Poor Effectors of Microbial Killing. Cell Rep. 2018;22(11):2937-2950. doi:10.1016/j.celrep.2018.02.062.; Toy P., Lowell C. TRALI - definition, mechanisms, incidence and clinical relevance. Best Pract Res Clin Anaesthesiol. 2007; 21(2):183–93. doi:10.1016/j.bpa.2007.01.003; Rebetz J., Semple J.W., Kapur R. The Pathogenic Involvement of Neutrophils in Acute Respiratory Distress Syndrome and Transfusion-Related Acute Lung Injury. Transfus Med Hemother. 2018;45(5):290-298. doi:10.1159/000492950.; Caudrillier A., Kessenbrock K., Gilliss B.M., Nguyen J.X., Marques M.B., Monestier M., Toy P., Werb Z., Looney M.R. Platelets induce neutrophil extracellular traps in transfusion-related acute lung injury. J Clin Invest. 2012;122(7):2661-71. doi:10.1172/JCI61303.; Hakkim A., Fuchs T.A., Martinez N.E., Hess S., Prinz H., Zychlinsky A., Waldmann H. Activation of the Raf-MEK-ERK pathway is required for neutrophil extracellular trap formation. Nat Chem Biol. 2011;7(2):75-7. doi:10.1038/nchembio.496.; Ma Y., Yang X., Chatterjee V., Meegan J.E., Beard R.S.Jr., Yuan S.Y. Role of Neutrophil Extracellular Traps and Vesicles in Regulating Vascular Endothelial Permeability. Front Immunol. 2019;10:1037. doi:10.3389/fimmu.2019.01037.; Sun S., Duan Z., Wang X., Chu C., Yang C., Chen F., Wang D., Wang C., Li Q., Ding W. Neutrophil extracellular traps impair intestinal barrier functions in sepsis by regulating TLR9-mediated endoplasmic reticulum stress pathway. Cell Death Dis. 2021;12(6):606. doi:10.1038/s41419-021-03896-1.; Гусакова Н., Ярец Ю., Гомоляко А NET: охота продолжается. Наука и инновации. 2017; 4(170): 68-72.; Хаертынов Х.С., Анохин В.А., Галина Г.В., Бойчук С.В., Донцова Н.В. Выраженность нетоза при неонатальном сепсисе. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2020;65(5):164-168. doi; 10.21508/1027-4065-2020-65-5-164-168.; Ostafin M., Pruchniak M.P., Ciepiela O., Reznick A.Z., Demkow U. Different procedures of diphenyleneiodonium chloride addition affect neutrophil extracellular trap formation. Anal Biochem. 2016;509:60-66. doi:10.1016/j.ab.2016.05.003.; Асеева ЕА, Покровский НС, Соловьев СК, Николаева ЕВ, Никишина НЮ, Абдуллин ЕТ, Решетняк ТМ, Зоткин ЕГ, Лила АМ. Первый клинический опыт применения селективной плазмосорбции ДНК с использованием сорбционной колонки «НуклеоКор®» при лечении системной красной волчанки. Современная ревматология. 2024;18(2):75-80. doi:10.14412/1996-7012-2024-2-75-80; Асвани Э. Внеклеточные нейтрофильные ловушки – новая мишень для лечебного афереза: доклинические исследования, первые клинические данные и перспективы для использования. В Лечебный гемаферез и экстракорпоральная гемокоррекция: достижения и надежд»: материалы VI конференции Национального общества специалистов в области гемафереза и экстракорпоральной гемокоррекции. Санкт-Петербург, 2023
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: Anton A. Kasatkin, V. A. Matreshkin
Πηγή: Вестник интенсивной терапии, Iss 4 (2023)
Θεματικοί όροι: прон-позиция, мониторинг, RC86-88.9, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, критические состояния, диагностическая визуализация
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/d1e9aa9e9cc944b8bc1b4d213d922159
-
12Academic Journal
Πηγή: Вестник Научного центра ВостНИИ по промышленной и экологической безопасности. :26-41
Θεματικοί όροι: MACH AND DAMKELER NUMBERS, IGNITION, ЗАЖИГАНИЕ, ГАЗО- И ПЫЛЕГАЗОВОЗДУШНЫЕ СМЕСИ, 13. Climate action, CRITICAL STATES, GAS AND DUST-GAS AIR MIXTURES, ГОРНЫЕ ВЫРАБОТКИ, ЧИСЛА МАХА И ДАМКЕЛЕРА, КРИТИЧЕСКИЕ СОСТОЯНИЯ, MINING, 7. Clean energy
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Самиевич, Баратов Суннат
Πηγή: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 2 No. 6 (2023): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 89-95 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 2 № 6 (2023): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 89-95 ; 2181-3469
Θεματικοί όροι: цитокины, новорожденные, критические состояния, COVID-19, SARS-CoV-2
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Самиевич, Баратов Суннат
Πηγή: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 2 No. 6 (2023): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 18-22 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 2 № 6 (2023): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 18-22 ; 2181-3469
Θεματικοί όροι: новорожденные, критические состояния, COVID-19, SARS-CoV-2
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Алексей Евгеньевич Ким, Вячеслав Павлович Ганапольский, Константин Петрович Головко, Евгений Борисович Шустов
Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 3 (2022)
Θεματικοί όροι: гипобиоз, терапевтическая гибернация, криостаз, критические состояния, трансплантация органов, управляемая гипотермия, Medicine (General), R5-920
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/biomedical-research/article/view/4170; https://doaj.org/toc/2658-6584; https://doaj.org/toc/2658-6576
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/c7c7ba20e0734503885d5a5913f2cb78
-
16Academic Journal
Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 7, Iss 3 (2022)
Θεματικοί όροι: криостаз, Medicine (General), R5-920, гипобиоз, терапевтическая гибернация, управляемая гипотермия, критические состояния, трансплантация органов
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/c7c7ba20e0734503885d5a5913f2cb78
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: О. Г. Смирнов, Владимир Ильич Горбачев, Н. Г. Алейникова, Н. В. Брагина
Πηγή: Вестник интенсивной терапии, Iss 2 (2022)
Θεματικοί όροι: младенцы, интенсивная терапия, критические состояния, питательный зонд, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, RC86-88.9
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://intensive-care.ru/index.php/acc/article/view/296; https://doaj.org/toc/1726-9806; https://doaj.org/toc/1818-474X
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/f72fd98f4be34404a5ae7dfbe6274ae9
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Antonov, Dmitry Vladimirovich, Fedorenko, Roman Mikhaylovich, Strizhak, Pavel Alexandrovich
Πηγή: Energies
Θεματικοί όροι: капли, капли воды, эмульсии, обогрев, испарение, микровзрывы, критические состояния, composite droplets, emulsions, heating, evaporation, puffing, micro-explosion, critical conditions, child droplets
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: Energies. 2022. Vol. 15, iss. 20; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/74788
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: A. D. Ponomareva, I. N. Leyderman, I. Y. Kasherininov, I. N. Danilov, V. L. Belikov, А. Д. Пономарева, И. Н. Лейдерман, И. Ю. Кашерининов, И. Н. Данилов, В. Л. Беликов
Πηγή: Translational Medicine; Том 9, № 3 (2022); 70-80 ; Трансляционная медицина; Том 9, № 3 (2022); 70-80 ; 2410-5155 ; 2311-4495
Θεματικοί όροι: факторы риска, clinical outcome, critical illness, perioperative period, risk factors, критические состояния, острый мезентериальный тромбоз, периоперационный период
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/695/473; Russell CE, Wadhera RK, Piazza G. Mesenteric venous thrombosis. Circulation. 2015; 131(18):1599–1603. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.114.012871.; Hmoud B, Singal AK, Kamath PS. Mesenteric venous thrombosis. J Clin Exp Hepatol. 2014; 4(3):257–263. DOI:10.1016/j.jceh.2014.03.052.; Acosta S. Mesenteric ischemia. Curr Opin Crit Care. 2015; 21(2):171–178. DOI:10.1097/MCC.0000000000000189.; Harnik IG, Brandt LJ. Mesenteric venous thrombosis. Vasc Med. 2010;15(5):407–418. DOI:10.1177/1358863X10379673.; Bala M, Kashuk J, Moore EE, et al. Acute mesenteric ischemia: guidelines of the World Society of Emergency Surgery. World J Emerg Surg. 2017; 12:38. DOI:10.1186/s13017-017-0150-5.; Clair DG, Beach JM. Mesenteric Ischemia. N Engl J Med. 2016; 374(10):959–968. DOI:10.1056/NEJMra1503884.; Acosta S, Alhadad A, Svensson P, et al. Epidemiology, risk and prognostic factors in mesenteric venous thrombosis. Br J Surg. 2008; 95(10):1245–1251. DOI:10.1002/bjs.6319.; Tripodi A, Mannucci PM. The coagulopathy of chronic liver disease. N Engl J Med. 2011; 365(2):147–156. DOI:10.1056/NEJMra1011170.; Cooke M, Sande MA. Diagnosis and outcome of bowel infarction on an acute medical service. Am J Med. 1983; 75(6):984–992. DOI:10.1016/0002-9343(83)90879-3.; Brunaud L, Antunes L, Collinet-Adler S, et al. Acute mesenteric venous thrombosis: case for nonoperative management. J Vasc Surg. 2001; 34(4):673–679. DOI:10.1067/mva.2001.117331.; Leone M, Bechis C, Baumstarck K, et al. Erratum to: Outcome of acute mesenteric ischemia in the intensive care unit: a retrospective, multicenter study of 780 cases. Intensive Care Med. 2015; 41(5):966–968. DOI:10.1007/s00134-015-3738-9.; Menke J. Diagnostic accuracy of multidetector CT in acute mesenteric ischemia: systematic review and metaanalysis. Radiology. 2010; 256(1):93–101. DOI:10.1148/radiol.10091938.; Caluwaerts M, Castanares-Zapatero D, Laterre PF, et al. Prognostic factors of acute mesenteric ischemia in ICU patients. BMC Gastroenterol. 2019; 19(1):80. DOI:10.1186/s12876-019-0999-8.; Luther B, Mamopoulos A, Lehmann C, et al. The Ongoing Challenge of Acute Mesenteric Ischemia. Visc Med. 2018; 34(3):217–223. DOI:10.1159/000490318.; Al-Diery H, Phillips A, Evennett N, et al. The Pathogenesis of Nonocclusive Mesenteric Ischemia: Implications for Research and Clinical Practice. J Intensive Care Med. 2019; 34(10):771–781. DOI:10.1177/0885066618788827.; Kärkkäinen JM, Acosta S. Acute mesenteric ischemia (part I) — Incidence, etiologies, and how to improve early diagnosis. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2017; 31(1):15–25. DOI:10.1016/j.bpg.2016.10.018.; https://transmed.almazovcentre.ru/jour/article/view/695
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: A. D. Ponomaryova, I. N. Leyderman, I. Yu. Kasherininov, А. Д. Пономарёва, И. Н. Лейдерман, И. Ю. Кашерининов
Πηγή: Russian Sklifosovsky Journal "Emergency Medical Care"; Том 11, № 2 (2022); 317-323 ; Журнал им. Н.В. Склифосовского «Неотложная медицинская помощь»; Том 11, № 2 (2022); 317-323 ; 2541-8017 ; 2223-9022
Θεματικοί όροι: лабораторная диагностика, intestinal necrosis, critical conditions, laboratory diagnostics, некроз кишки, критические состояния
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1418/1174; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1418/1175; Russel CE, Wadhera RK, Piazza G. Mesenteric Venous Thrombosis. Circulation. 2015;131(18):1599–1603. PMID: 25940967 https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.114.012871; Acosta S. Mesenteric ischemia. Curr Opin Crit Care. 2015;21(2):171–178. PMID: 25689121 https://doi.org/10.1097/MCC.0000000000000189; Bala M, Kashuk J, Moore EE, Kluger Y, Biffl W, Gomes CA, et al. Acute mesenteric ischemia: guidelines of the World Society of Emergency Surgery. World J Emerg Surg. 2017;12:38. PMID: 28794797 https://doi.org/10.1186/s13017-017-0150-5; Clair DG, Beach JM. Mesenteric Ischemia. N Engl J Med. 2016;374(10):959–968. PMID: 26962730 https://doi.org/10.1056/NEJMra1503884; Aschoff AJ, Stuber G, Becker BW, Hoffmann MH, Schmitz BL, Schelzig H, et al. Evaluation of acute mesenteric ischemia: accuracy of biphasic mesenteric multi-detector CT angiography. Abdom Imaging. 2009;34(3):345–357. PMID: 18425546 https://doi.org/10.1007/s00261-008-9392-8; Tilsed JVT, Casamassima A, Kurihara H, Mariani D, Martinez I, Pereira J, et al. ESTES guidelines: acute mesenteric ischaemia. Eur J Trauma Emerg Surg. 2016;42(2):253–270. PMID: 26820988 https://doi.org/10.1007/s00068-016-0634-0; Liberati А, Altman DG, Tetzlaff J, Mulrow C, Gøtzsche PC, Ioannidis JPA, et al. The PRISMA statement for reporting systematic reviews and meta-analyses of studies that evaluate health care interventions: explanation and elaboration. J Clin Epidemiol. 2009;62(10):e1–34. PMID: 19631507 https://doi.org/10.1016/j.jclinepi.2009.06.006; Hmoud B, Singal AK, Kamath PS. Mesenteric venous thrombosis. J Clin Exp Hepatol. 2014;4(3):257–263. PMID: 25755568 https://doi.org/10.1016/j.jceh.2014.03.052; Sogaard KK, Astrup LB, Vilstrup H, Gronbaek H. Portal vein thrombosis: risk factors, clinical presentation and treatment. BMC Gastroenterol. 2007;7:34. PMID: 17697371 https://doi.org/10.1186/1471-230X-7-34; Cheung KS, Hung IF, Chan PP, Lung K, Tso E, Liu R, et al. Gastrointestinal Manifestations of SARS-CoV-2 Infection and Virus Load in Fecal Samples from a Hong Kong Cohort: Systematic Review and Meta-analysis. Gastroenterolgy. 2020;159(1):81–95. PMID: 32251668 https://doi.org/10.1053/j.gastro.2020.03.065; Alvi AR, Khan S, Niazi SK, Ghulam M, Bibi S. Acute mesenteric venous thrombosis: improved outcome with early diagnosis and prompt anticoagulation therapy. Int J Surg. 2009;7(3):210–213. PMID: 19332155 https://doi.org/10.1016/j.ijsu.2009.03.002; Singal AK, Kamath PS, Tefferi A. Mesenteric venous thrombosis. Mayo Clin Proc. 2013;88(3):285–294. PMID: 23489453 https://doi.org/10.1016/j.mayocp.2013.01.012; Markar SR, Karthikesalingam A, Falzon A, Kan Y. The diagnostic value of neutrophil: lymphocyte ratio in adults with suspected acute appendicitis. Acta Chir Belg. 2010;110(5):543–547. PMID: 21158332; Nuzzo A, Maggiori L, Ronot M, Becq A, Plessier A, Gault N, et al. Predictive factors of intestinal necrosis in acute mesenteric ischemia: prospective study from an intestinal stroke center. Am J Gastroenterol. 2017;112(4):597–605. PMID: 28266590 https://doi.org/10.1038/ajg.2017.38; Beliaev AM, Angelo N, Booth M, Bergin C. Evaluation of neutrophil-to-lymphocyte ratio as a potential biomarker for acute cholecystitis. J Surg Res. 2017;209:93–101. PMID: 28032577 https://doi.org/10.1016/j.jss.2016.09.034; Russell CE, Wadhera RK, Piazza G. Mesenteric venous thrombosis. Circulation. 2015;131(18):1599–1603. PMID: 25940967 https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.114.012871; Emile SH. Predictive factors for intestinal transmural necrosis in patients with acute mesenteric ischemia. World J Surg. 2018;42(8):2364–2372. PMID: 29387956 https://doi.org/10.1007/s00268-018-4503-3; https://www.jnmp.ru/jour/article/view/1418