Αποτελέσματα αναζήτησης - "конфокальная микроскопия роговицы"

1

Academic Journal

Corneal Reinnervation after Recombinant Form of Nerve Growth Factor Treatment in Patients with Neurotrophic Keratitis ; Реиннервация роговицы после лечения рекомбинантной формой фактора роста нервов у пациентов с нейротрофическим кератитом

Συγγραφείς: M. R. Taevere, D. Yu. Maychuk, М. Р. Таевере, Д. Ю. Майчук

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 21, № 4 (2024); 786-792 ; Офтальмология; Том 21, № 4 (2024); 786-792 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2024-4

Θεματικοί όροι: ценегермин, corneal confocal microscopy, subbasal nerve plexus, nerve growth factor, cenegermin, конфокальная микроскопия роговицы, суббазальное нервное сплетение, фактор роста нервов

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2504/1279; Roth M, Dierse S, Alder J, Holtmann C, Geerling G. Incidence, prevalence, and outcome of moderate to severe neurotrophic keratopathy in a German tertiary referral center from 2013 to 2017. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2022;260(6):1961– 1973. doi:10.1007/s00417-021-05535-z.; Каспарова ЕА, Марченко НР. Нейротрофический кератит. Этиология, патогенез, клинические проявления. Обзор литературы. Часть 1. Офтальмология. 2022;19(1):38–45. doi:10.18008/1816-5095-2022-1-38-45.; Puca A, Meglio M, Vari R, Tamburrini G, Tancredi A. Evaluation of fifth nerve dysfunction in 136 patients with middle and posterior cranial fossae tumors. Eur Neurol. 1995;35(1):33–37. doi:10.1159/000117086.; Lockwood A, HopeRoss M, Chell P. Neurotrophic keratopathy and diabetes mellitus. Eye (Lond). 2006;20(7):837–839. doi:10.1038/sj.eye.6702053.; Xie C, Liu B, Zhao X, He Q, Liu L, Wei R. Characteristics of the ocular surface in neurotrophic keratitis induced by trigeminal nerve injury following neurosurgery. Int Ophthalmol. 2023;43(4):1229–1240. doi:10.1007/s10792-022-02521-0.; Майчук ДЮ, Тарханова АА, Таевере МР, Шацких АВ, Судакова СА. Подсемейство бетагерпесвирусов как причина эпителиальных и стромальных кератитов. Вестник офтальмологии. 2024;140(1):25–31. doi:10.17116/oftalma202414001125.; Bonini S, Rama P, Olzi D, Lambiase A. Neurotrophic keratitis. Eye (Lond). 2003;17(8):989–995.; Müller LJ, Marfurt CF, Kruse F, Tervo TM. Corneal nerves: structure, contents and function. Exp Eye Res. 2003;76(5):521–542. doi:10.1016/s0014-4835(03)00050-2.; Shimizu T, Izumi K, Fujita S, Koja T, Sorimachi M, Ohba N, Fukuda T. Capsaicin induced corneal lesions in mice and the effects of chemical sympathectomy. J Pharmacol Exp Ther 1987;243:690–695.; Reid TW, Murphy CJ, Iwahashi CK, Foster BA, Mannis MJ. Stimulation of epithelial cell growth by the neuropeptide substance P. J Cell Biochem 1993;52:476–485. doi:10.1002/jcb.240520411.; Versura P, Giannaccare G, Pellegrini M, Sebastiani S, Campos EC. Neurotrophic keratitis: current challenges and future prospects. Eye Brain. 2018;10:37–45. doi:10.2147/EB.S117261.; AlAqaba MA, Anis FS, Mohammed I, Dua HS. Nerve terminals at the human corneoscleral limbus. Br J Ophthalmol. 2018;102(4):556–561. doi:10.1136/bjophthalmol2017311146.; LeviMontalcini R. The nerve growth factor 35 years later. Science 1987;237:1154– 1162.; Linhares ACB, Martinelli AC, Ghem MRD, Dias PB, Wasilewski D. Amniotic membrane transplantation for neurotrophic corneal ulcers. Arq Bras Oftalmol. 2024 Mar 4;87(2):e20220341. doi:10.5935/0004-2749.2023-2022-0341.; Каспарова ЕвгА, Каспаров АА, Собкова ОИ, Каспарова ЕлА, Розинова ВН. Способ лечения гнойной язвы роговицы, развившейся на глазах с нейротрофическим кератитом и лагофтальмом. Вестник офтальмологии. 2019;135(5 ч. 2):220–225. doi:10.17116/oftalma2019135052220.; Giannaccare G, Coco G, Rossi C, Borselli M, Lucisano A, Vaccaro S, Verdiglione M, Scorcia V. Combined Use of Therapeutic HyperCL Soft Contact Lens and Insulin Eye Drops for the Treatment of Recalcitrant Neurotrophic Keratopathy. Cornea. 2024;43(1):120–124. doi:10.1097/ICO.0000000000003361.; Груша ЯО, Новиков МЛ, Данилов СС, Фетцер ЕИ, Карапетян АС. Невротизация роговицы как патогенетически направленный метод лечения нейротрофического кератита у пациентов с лицевым параличом. Вестник офтальмологии. 2020;136(5):52–57. doi:10.17116/oftalma202013605152.; Catapano J, Fung SSM, Halliday W, Jobst C, Cheyne D, Ho ES, Zuker RM, Borschel GH, Ali A. Treatment of neurotrophic keratopathy with minimally invasive corneal neurotisation: longterm clinical outcomes and evidence of corneal reinnervation. Br J Ophthalmol. 2019;103(12):1724–1731. doi:10.1136/bjophthalmol-2018-313042.; Saini M, KaliaA, JainAK, Gaba S, MalhotraC, GuptaA, Soni T, SainiK, Gupta PC, Singh M. Clinical outcomes of corneal neurotization using sural nerve graft in neurotrophic keratopathy. PLoS One. 2023;18(11):e0294756. doi:10.1371/journal.pone.0294756.; Fogagnolo P, Giannaccare G, Bolognesi F, Digiuni M, Tranchina L, Rossetti L, Dipinto A, Allevi F, Lozza A, Rabbiosi D, Mariani S, Pellegrini M, Cazzola FE, Bagaglia S, Mazzotta C, Gabriele G, Gennaro P, Badiali G, Marchetti C, Campos EC, Biglioli F. Direct Versus Indirect Corneal Neurotization for the Treatment of Neurotrophic Keratopathy: A Multicenter Prospective Comparative Study. Am J Ophthalmol. 2020;220:203–214. doi:10.1016/j.ajo.2020.07.003.; Hamrah P, Yavuz Saricay L, Ozmen MC. Cutting Edge: Topical Recombinant Nerve Growth Factor for the Treatment of Neurotrophic KeratopathyBiologicals as a Novel Therapy for Neurotrophic Keratopathy. Cornea. 2022;41(6):673–679. doi:10.1016/j.ajo.2020.07.003.; Bu JB, GerickeA, PfeifferN, WasielicaPoslednik J. Neurotrophic keratopathy: Clinical presentation and effects of cenegermin. Am J Ophthalmol Case Rep. 2022;26:101488. doi:10.1016/j.ajoc.2022.101488.; Epitropoulos AT, Weiss JL. Topical human recombinant nerve growth factor for stage 1 Neurotrophic Keratitis: Retrospective case series of cenegermin treatment. Am J Ophthalmol Case Rep. 2022;27:101649. doi:10.1016/j.ajoc.2022.101649.; Hao M, Cheng Y, Wu J, Cheng Y, Wang J. Clinical observation of recombinant human nerve growth factor in the treatment of neurotrophic keratitis. Int J Ophthalmol. 2023;16(1):60–66. doi:10.18240/ijo.2023.01.09.; BalbuenaPareja A, Bogen CS, Cox SM, Hamrah P. Effect ofrecombinant human nerve growth factor treatment on corneal nerve regeneration in patients with neurotrophic keratopathy. Front Neurosci. 2023 30;17:1210179. doi:10.3389/fnins.2023.1210179.; Hamrah P, MassaroGiordano M, Schanzlin D, Holland E, Berdy G, Goisis G, Pasedis G, Mantelli F. Phase IV Multicenter, Prospective, OpenLabel Clinical Trial of Cenegermin (rhNGF) for Stage 1 Neurotrophic Keratopathy (DEFENDO). Ophthalmol Ther. 2024;13(2):553–570. doi:10.1007/s40123-023-00866-y.; Inferrera L, Aragona E, Wylęgała A, Valastro A, Latino G, Postorino EI, Gargano R, OrzechowskaWylęgała B, Wylęgała E, Roszkowska AM. The Role of HiTech Devices in Assessment of Corneal Healing in Patients with Neurotrophic Keratopathy. J Clin Med. 2022;11(6):1602. doi:10.3390/jcm11061602.; BalbuenaParejaA, BogenCS, Cox SM, HamrahP. Effect ofrecombinant human nerve growth factor treatment on corneal nerve regeneration in patients with neurotrophic keratopathy. Front Neurosci. 2023;17:1210179. doi:10.3389/fnins.2023.1210179.; Niruthisard D, Fung SSM. Recombinant Human Nerve Growth Factor for Pediatric Neurotrophic Keratopathy. Eye Contact Lens. 2022;48(7):303–305. doi:10.1097/ICL.0000000000000912.; Pedrotti E, Bonacci E, Chierego C, De Gregorio A, Cozzini T, Brighenti T, Caldarella G, Pastore G, Fasolo A, Marchini G. Eight months followup of corneal nerves and sensitivity after treatment with cenegermin for neurotrophic keratopathy. Orphanet J Rare Dis. 2022;17(1):63. doi:10.1186/s13023-022-02237-5.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2504

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2504
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2024-4-786-792

View record from BASE

2

Academic Journal

Autologous Serum and Recombinant Nerve Growth Factor in the Complex Treatment of Neurotrophic Keratitis ; Аутологичная сыворотка и рекомбинантный фактор роста нервов в комплексном лечении нейротрофического кератита

Συγγραφείς: E. A. Kasparova, Z. V. Surnina, N. R. Marchenko, L. S. Pateyuk, V. D. Yartsev, Е. A. Каспарова, З. В. Сурнина, Н. Р. Марченко, Л. С. Патеюк, В. Д. Ярцев

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 21, № 4 (2024); 777-785 ; Офтальмология; Том 21, № 4 (2024); 777-785 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2024-4

Θεματικοί όροι: ценегермин, corneal nerve fibers, in vivo CM, cenegermin, нервные волокна роговицы, конфокальная микроскопия роговицы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2503/1278; Sigelman S, Friedenwald JS. Mitotic and wound healing activities of the corneal epithelium: effect of sensory denervation. Arch Ophthalmol. 1954;52:46–57.; Mackie IA. Neuroparalytic keratitis. In: Fraunfelder F, Roy FH, Meyer SM, editors. Current Ocular Therapy. Philadelphia, PA, USA: WB Saunders; 1995:452–454.; Dua HS, Said DG, Messmer EM, Rolando M, BenitezDelCastillo JM, Hossain PN, Shortt AJ, Geerling G, Nubile M, Figueiredo FC, Rauz S, Mastropasqua L, Rama P, Baudouin C. Neurotrophic keratopathy. Prog Retin Eye Res. 2018;66:107–131. doi:10.1016/j.preteyeres.2018.04.003.; Каспарова Е.А., Марченко Н.Р. Нейротрофический кератит: консервативное и хирургическое лечение. Обзор литературы. Часть 2. Офтальмология. 2022;19(2):265–271. doi:10.18008/1816-5095-2022-2-265-27.; Бржеский В.В., Попов В.Ю., Ефимова Е.Л., Голубев С.Ю. Современные возможности диагностики и лечения нейротрофической кератопатии. Вестник офтальмологии. 2022;138(6):123–132. doi:10.17116/oftalma2022138061123.; Muller L.J., Marfurt C.F., Kruse F., Tervo T.M. Corneal nerves: structure, contents and function. Exp Eye Res. 2003;76(5):521–542. doi:10.1016/s0014-4835(03)000502.; Oddone F, Roberti G, Micera A, Busanello A, Bonini S, Quaranta L, Agnifili L, Manni G. Exploring serum levels of brain derived neurotrophic factor and nerve growth factor across glaucoma stages. PLoS One. 2017;12(1):e0168565. doi:10.1371/journal.pone.0168565.; Park KS, Kim SS, Kim JC, Kim HC, Im YS, Ahn CW, Lee HK. Serum and tear levels of nerve growth factor in diabetic retinopathy patients. Am J Ophthalmol. 2008;145(3):432–437. doi:10.1016/j.ajo.2007.11.011.; Mastropasqua L., Lanzini M., Dua H.S., D’ Uffizi A., Di Nicola M., Calienno R., Bond. J., Said D.G., Nubile M. In Vivo Evaluation of Corneal Nerves and Epithelial Healing After Treatment With Recombinant Nerve Growth Factorfor Neurotrophic Keratopathy. Am J Ophthalmol. 2020;217:278–286. doi:10.1016/j.ajo.2020.04.036.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2503

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2503
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2024-4-777-785

View record from BASE

3

Academic Journal

Laser confocal microscopy of corneal nerve fibers in patients with burning eye syndrome and dry eye disease ; Лазерная конфокальная микроскопия нервных волокон роговицы у пациентов с синдромом жжения глаз и синдромом сухого глаза

Συγγραφείς: T. N. Safonova, Z. V. Surnina, E. S. Medvedeva, Т. Н. Сафонова, З. В. Сурнина, Е. С. Медведева

Πηγή: Neuromuscular Diseases; Том 14, № 1 (2024); 34-41 ; Нервно-мышечные болезни; Том 14, № 1 (2024); 34-41 ; 2413-0443 ; 2222-8721

Θεματικοί όροι: нервные волокна роговицы, dry eye disease, corneal confocal microscopy, corneal nerve fibres, синдром сухого глаза, конфокальная микроскопия роговицы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/588/375; Rosenthal P., Borsook D. Ocular neuropathic pain. Br J Ophthalmol 2016;100(1):128–34. DOI:10.1136/bjophthalmol-2014-306280; Galor A., Moein H.R., Lee C. et al. Neuropathic pain and dry eye. Ocul Surf 2018;16:31–44. DOI:10.1016/j.jtos.2017.10.001; Kalangara J.P., Galor A., Levitt R.C. et al. Characteristics of ocular pain complaints in patients with idiopathic dry eye symptoms. Eye Contact Lens 2017;43:192–8. DOI:10.1097/ICL.0000000000000249; Vehof J., Sillevis Smitt-Kamminga N., Kozareva D. et al. Clinical characteristics of dry eye patients with chronic pain syndromes. Am J Ophthalmol 2016;166:203–4. DOI:10.1016/j.ajo.2016.03.023; Schuster A.K., Wettstein M., Gerhardt A. et. al. Eye pain and dry eye in patients with fibromyalgia. Pain Med 2018;19:2528–35. DOI:10.1093/pm/pny045; Methodologies to diagnose and monitor dry eye disease: Report of the Diagnostic Methodology Subcommittee of the International Dry Eye WorkShop (2007). Ocul Surf 2007;5(2):108–52. DOI:10.1016/s1542-0124(12)70083-6; Mastropasqua L., Nubile M., Lanzini M. et al. Epithelial dendritic cell distribution in normal and inflamed human cornea: In vivo confocal microscopy study. Am J Ophthalmol 2006;142(5):736-744. DOI:10.1016/j.ajo.2006.06.057; Bayguinov P.O., Oakley D.M., Shih C.C. et al. Modern laser scanning confocal microscopy. Curr Protoc Cytom 2018;85(1):39. DOI:10.1002/cpcy.39; Сурнина З.В., Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете. Вестник офтальмологии 2015;131(4):5–14. DOI:10.17116/oftalma201513145-14; Ganesh Kumar N., Kung T.A. Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment and prevention of neuromas and neuroma pain. Hand Clin 2021;37(3):361–71. DOI:10.1016/j.hcl.2021.05.003; Chinnery H.R., Rajan R., Jiao H. et al. Identification of presumed corneal neuromas and microneuromas using laser-scanning in vivo confocal microscopy: A systematic review. Br J Ophthalmol 2021;10:1136. DOI:10.1136/bjophthalmol-2020-318156; Guerrero-Moreno A., Liang H., Moreau N. et al. Corneal nerve abnormalities in painful dry eye disease patients. Biomedicines 2021;9(10):1424. DOI:10.3390/biomedicines9101424; Bouhassira D., Wilhelm S., Schacht A. et al. Neuropathic pain phenotyping as a predictor of treatment response in painful diabetic neuropathy: Data from the randomized, double-blind, COMBO-DN study. Pain 2014;155:2171–9. DOI:10.1016/j.pain.2014.08.020; Vollert J., Maier C., Attal N. et al. Stratifying patients with peripheral neuropathic pain based on sensory profiles: Algorithm and sample size recommendations. Pain 2017;158:1446–55. DOI:10.1097/j.pain.0000000000000935; Stettner M., Hinrichs L., Guthoff R. et al. Corneal confocal microscopy in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Ann Clin Transl Neurol 2015;3(2):88–100. DOI:10.1002/acn3.275; https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/588

Διαθεσιμότητα: https://nmb.abvpress.ru/jour/article/view/588
https://doi.org/10.17650/2222-8721-2024-14-1-34-41

View record from BASE

4

Academic Journal

Structural changes in the cornea and tear film in keratoconus associated with dry eye syndrome on the background of the use of optical correction and tear replacement therapy ; Структурные изменения роговицы и слезной пленки при кератоконусе, ассоциированном с синдромом сухого глаза, на фоне использования оптической коррекции и слезозаместительной терапии

Συγγραφείς: Z. V. Surnina, V. V. Averich, З. В. Сурнина, В. В. Аверич

Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 13 (2024); 182-190 ; Медицинский Совет; № 13 (2024); 182-190 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Θεματικοί όροι: слезозаместительный препарат, laser confocal microscopy of the cornea, tear film, tear production, tear replacement drug, лазерная конфокальная микроскопия роговицы, слезная пленка, слезопродукция

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8511/7482; Mas Tur V, MacGregor C, Jayaswal R, O'Brart D, Maycock N. A review of keratoconus: diagnosis, pathophysiology, and genetics. Surv Ophthalmol. 2017;62(6):770-783. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2017.06.0O9.; Аветисов СЭ, Аверич ВВ, Патеюк ЛС. Кератоконус: основные направления исследований. Вестник офтальмологии. 2023;139(3):11-20. https://doi.org/10.17116/oftalma202313903211.; Gomes JA, Tan D, Rapuano CJ, Belin MW, Ambrosio R Jr, Guell JL et al. Global consensus on keratoconus and ectatic diseases. Cornea. 2015;34(4):359-369. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000408.; Федотова СЮ (ред.). Синдром «сухого глаза» и заболевания глазной поверхности: клиника, диагностика, лечение. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2016. 464 с.; Аверич ВВ. Синдром «сухого глаза» при кератоконусе: аспекты этиологии и медикаментозной коррекции. Клиническая офтальмология. 2022;22(2):122-126. https://doi.org/10.32364/2311-7729-2022-22-2-122-126.; Constantin MM, Corbu C, Potop V. Evaluation of Dry Eye Symptomatology at Patients with Keratoconus. Revista de Chimie. 2019;70(1):92-95. https://doi.org/10.37358/RC.19.1.6858.; Dogru M, Karakaya H, Ozgetin H, Erturk H, Yucel A, Ozmen A et al. Tear function and ocular surface changes in keratoconus. Ophthalmology. 2003;110(6):1110-1118. https://doi.org/10.1016/S0161-6420(03)00261-6.; Егорова ГБ, Федоров АА. Кератоконус и синдром сухого глаза. Клиническая офтальмология. 2004;5(1):29-31. Режим доступа: https://clinopht.com/articles/oftalmologiya/keratokonus-i-sindrom-sukhogo-glaza.; Lema I, Duran JA. Inflammatory molecules in the tears of patients with keratoconus. Ophthalmology. 2005;112(4):654-659. https//doi.org/10.1016/j.ophtha.2004.11.050.; Lema I, Sobrino T, Durán JA, Brea D, Díez-Feijoo E. Subclinical keratoconus and inflammatory molecules from tears. Br J Ophthalmol. 2009;93(6):820-824. https://doi.org/10.1136/bjo.2008.144253.; Ozgurhan EB, Kara N, Yildirim A, Bozkurt E, Uslu H, Demirok A. Evaluation of corneal microstructure in keratoconus: a confocal microscopy study. Am J Ophthalmol. 2013;156(5):885-893. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2013.05.043.; Аветисов СЭ, Бубнова ИА, Сурнина ЗВ, Аверич ВВ, Саркисова КГ. Изменение структуры роговицы после применения кросслинкинга роговичного коллагена при кератоконусе. Медицинский совет. 2022;16(6):226-233. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2022-16-6-226-233.; Teo AWJ, Mansoor H, Sim N, Lin MT, Liu YC. In Vivo Confocal Microscopy Evaluation in Patients with Keratoconus. J Clin Med. 2022;11(2):393. https://doi.org/10.3390/jcm11020393.; Weed KH, MacEwen CJ, Cox A, McGhee CN. Quantitative analysis of corneal microstructure in keratoconus utilising in vivo confocal microscopy. Eye (Lond). 2007;21(5):614-623. https://doi.org/10.1038/sj.eye.6702286.; Efron N, Hollingsworth JG. New perspectives on keratoconus as revealed by corneal confocal microscopy. Clin Exp Optom. 2008;91(1):34-55. https://doi.org/10.1111/j.1444-0938.2007.00195.x.; Aragona P, Papa V, Micali A, Santocono M, Milazzo G. Long term treatment with sodium hyaluronate — containing artificial tears reduces ocular surface damage in patients with dry eye. Br J Ophthalmology. 2002;86(2):181—184. https://doi.org/10.1136/bjo.86.2.181.; Johnson ME, Murphy PJ, Boulton M. Effectiveness of sodium hyaluronate eyedrops in the treatment of dry eye. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2006;244(1):109-112. https://doi.org/10.1007/s00417-005-0028-1.; Nishida T, Nakamura M, Mishima H, Otori T. Hyaluronan stimulates corneal epithelial migration. Exp Eye Res. 1991;53(6):753-758. https://doi.org/10.1016/0014-4835(91)90110-z.; Vincent SJ, Fadel D. Optical considerations for scleral contact lenses: A review. Cont Lens Anterior Eye. 2019;42(6):598-613. https://doi.org/10.1016/j.clae.2019.04.012.; Fuller DG, Wang Y. Safety and Efficacy of Scleral Lenses for Keratoconus. Optom Vis Sci. 2020;97(9):741-748. https://doi.org/10.1097/OPX.0000000000001578.; Akkaya Turhan S, Ozarslan Ozcan D, Toker E. Use of a Mini-Scleral Lens in Patients with Keratoconus. Turk J Ophthalmol. 2020;50(6):339-342. https://doi.org/10.4274/tjo.galenos.2020.56804.; Shorter E, Harthan J, Nau CB, Nau A, Barr JT, Hodge DO, Schornack MM. Scleral Lenses in the Management of Corneal Irregularity and Ocular Surface Disease. Eye Contact Lens. 2018;44(6):372-378. https://doi.org/10.1097/ICL.0000000000000436.; Marty AS, Jurkiewicz T, Mouchel R, Febvay C, Caillat T, Burillon C. Benefits of Scleral Lens in the Management of Irregular Corneas and Dry Eye Syndrome After Refractive Surgery. Eye Contact Lens. 2022;48(8):318-321. https://doi.org/10.1097/ICL.0000000000000919.; Федотова К, Грабовецкий ВР, Новиков СА, Эзугбая М. Минисклеральные контактные линзы в лечении пациентов с синдромом сухого глаза (первый собственный опыт применения). Офтальмологические ведомости. 2019;12(1):5-12. https://doi.org/10.17816/OV1215-12.; Lemp MA (ed.). Dry Eye Disease: The Clinician's Guide to Diagnosis and Treatment. New York: Thieme; 2006.; Аветисов СЭ, Сурнина ЗВ, Ахмеджанова ЛТ, Георгиев С. Первые результаты клинико-диагностического анализа постковидной периферической невропатии. Вестник офтальмологии. 2021;137(4):58-64. https://doi.org/10.17116/oftalma202113704158.; Аветисов СЭ, Черненкова НА, Сурнина ЗВ, Ахмеджанова ЛТ, Фокина АС, Строков ИА. Возможности ранней диагностики диабетической полинейропатии на основе исследования нервных волокон роговицы. Вестник офтальмологии. 2020;136 (5-2):155-162. https://doi.org/10.17116/oftalma2020136052155.; Аветисов СЭ, Карабанов АВ, Сурнина ЗВ, Гамидов АА. Изменения нервных волокон роговицы на ранних стадиях болезни Паркинсона по данным лазерной конфокальной микроскопии (предварительное сообщение). Вестник офтальмологии. 2020;136 (5-2):191-196. https://doi.org/10.17116/oftalma2020136052191.; Сурнина ЗВ, Аверич ВВ. Количественная оценка структурных изменений роговицы на фоне длительного ношения контактных линз по результатам конфокальной микроскопии. Медицинский совет. 2023;17(6):214-219. https://doi.org/10.21518/ms2022-027.

Διαθεσιμότητα: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8511
https://doi.org/10.21518/ms2024-308

View record from BASE

5

Academic Journal

Acute Purulent Keratitis of Mixed Etiology Developed during Contact Lens Wearing. Clinical Case ; Острый гнойный кератит смешанной этиологии, развившийся на фоне ношения контактных линз. Клинический случай

Συγγραφείς: Evg. A. Kasparova, N. R. Marchenko, M. N. Narbut, Z. V. Surnina, D. A. Krivolapova, Евг. А. Каспарова, Н. Р. Марченко, М. Н. Нарбут, З. В. Сурнина, Д. А. Криволапова

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 4 (2022); 898-905 ; Офтальмология; Том 19, № 4 (2022); 898-905 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-4

Θεματικοί όροι: конфокальная микроскопия роговицы, purulent keratitis, infectious keratitis, mixed keratitis, Pseudomonas aeruginosa, modified crosslinking (M-CXL), acanthamoeba keratitis, scanning electron microscopy (SEM), corneal confocal microscopy, гнойный кератит, инфекционный кератит, смешанный кератит, синегнойная язва роговицы, модифицированный кросслинкинг (М-КРЛ), акантамебный кератит, сканирующая электронная микроскопия (СЭМ)

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2003/1059; Каспарова Евг.А. Гнойные язвы роговицы: этиология, патогенез, классификация. Вестник офтальмологии. 2015;131(5):87–97. DOI:10.17116/oftalma2015131587-97; Kaufman H.E., Barron B.A., McDonald M.B. Parasitic infections. The Cornea 2 nd Edition. Butterworth Heinemann; 1998. 333 p.; Hsu C.C. Dendrite like anterior stromal keratitis coinfected with Acanthamoeba and Pseudomonas in an orthokeratology contact lens wearer. Taiwan journal of ophthalmology. 2019;9(2):131–133. DOI:10.4103/tjo.tjo_114_17; Sharma R., Jhanji V., Satpathy G., Sharma N., Khokhar S., Agarwal T. Coinfection with Acanthamoeba and Pseudomonas in contact lens associated keratitis. Optometry and vision science: official publication of the American Academy of Optometry. 2013 Feb;90(2):e53–55. DOI:10.1097/OPX.0b013e31827f15b4. PMID: 23334312; Agi J., Rocchetti T.T., Yu M.C.Z., Farah M.L., Ramos F., Freitas D., Höfling Lima A.L. Three Decades of Contact Lens associated Microbial Keratitis in a Referral Hospital in São Paulo, Brazil. Arquivos brasileiros de oftalmologia. 2021 Jul 14;84(5):474–480. DOI:10.5935/0004-2749.20210079; Ting D.S.J., Ho C.S., Deshmukh R., Said D.G., Dua H.S. Infectious keratitis: an update on epidemiology, causative microorganisms, risk factors, and antimicrobial resistance. Eye (London, England). 2021 Apr;35(4):1084–1101. DOI:10.1038/s41433-020-01339-3. Epub 2021 Jan 7. Erratum in: Eye (Lond). 2021 Oct;35(10):2908.; Ян Бяо, Каспарова Е.А., Собкова О.И. Модифицированный кросслинкинг в лечении гнойных кератитов. Современные технологии хирургического лечения роговицы. 2020,35(4):108. DOI:10.25276/2312-4911-2020-4-86-87; Марченко Н.Р., Каспарова Е.А., Будникова Е.А., Макарова М.А. Поражение переднего сегмента глаза при коронавирусной инфекции (COVID 19). Вестник офтальмологии. 2021;137(6):142–148. DOI:10.17116/oftalma2021137061142; Каспарова Евг.А. Гнойные язвы роговицы: клиника, диагностика, консервативное лечение. Вестник офтальмологии. 2015;131(6):106–121. DOI:10.17116/oftalma20151316106-119; Каспарова Евг.А., Каспаров А.А., Каспарова Е.А., Зайцев А.В. Развитой двусторонний синегнойный склерокератит у пациентки в коме (клинический случай). Вестник офтальмологии. 2017;133(4):68–73. DOI:10.17116/oftalma2017133468-73; Termote K., Joe A.W., Butler A.L., McCarthy M., Blondeau J.M., Iovieno A., Holland S.P., Yeung S.N. Epidemiology of bacterial corneal ulcers at tertiary centres in Vancouver, B.C. Canadian journal of ophthalmology. Journal canadien d’ophtalmologie. 2018 Aug;53(4):330–336. DOI:10.1016/j.jcjo.2017.11.001; Каспаров А.А., Садыхов А.К., Маложен С.А. Лечение гнойных язв роговицы. Вестник офтальмологии. 1987;103(6):67–71.; Каспарова Е.А., Марченко Н.Р., Сурнина З.В., Митичкина Т.С. Возможности конфокальной микроскопии в диагностике акантамебного кератита. Вестник офтальмологии. 2021;137(5-2):201–208. DOI:10.17116/oftalma2021137052201; Ung L., Bispo P.J.M., Shanbhag S.S., Gilmore M.S., Chodosh J. The persistent dilemma of microbial keratitis: Global burden, diagnosis, and antimicrobial resistance. Survey of ophthalmology. 2019 May Jun;64(3):255–271. DOI:10.1016/j.survophthal.2018.12.003; Yugay N.M., Novikov I.A., Subbot A.M., Khalatyan K.S. Fast and easy visualization method of impression cytology probe with microbiota detection on the ocular surface. 26th International Student Congress Of (bio)Medical Sciences, Groningen (Netherlands). 2019. 412 p.; Khan M., Stapleton F., Summers S., Rice S.A., Willcox M.D.P. Antibiotic Resistance Characteristics of Pseudomonas aeruginosa Isolated from Keratitis in Australia and India. Antibiotics (Basel, Switzerland). 2020;9(9):600. Published 2020 Sep 14. DOI:10.3390/antibiotics9090600; Schulte A.J., Agan B.K., Wang H.C., McGann P.T., Davies B.W., Legault G.L., Justin G.A. Multidrug Resistant Organisms from Ophthalmic Cultures: Antibiotic Resistance and Visual Acuity. Military medicine. 2020 Aug 14;185(7–8):e1002–e1007. DOI:10.1093/milmed/usaa111. PMID: 32588895; Jhanji V., Sharma N., Satpathy G., Titiyal J. Fourth generation fluoroquinolone-resistant bacterial keratitis. Journal of cataract and refractive surgery. 2007 Aug;33(8):1488–1489. DOI:10.1016/j.jcrs.2007.04.015; Каспарова Евг.А., Ян Бяо, Собкова О.И. Модифицированный кросслинкинг в лечении гнойной язвы роговицы. Клинический случай. Офтальмология. 2017;14(3):274–277. DOI:10.18008/1816-5095-2017-3-274-277; Makdoumi K., Bäckman A., Mortensen J., Crafoord S. Evaluation of antibacterial efficacy of photo activated riboflavin using ultraviolet light (UVA). Graefe’s archive for clinical and experimental ophthalmology. 2010;248:207–212. DOI:10.1007/s00417-009-1231-2; Kymionis G.D., Kouroupaki A.I., Liakopoulos D.A., Arandjelovic I.R., Tsoulnaras K.I. Multiorganism, drug resistant keratitis treated by corneal crosslinking. European journal of ophthalmology. 2016 Jul 1;26(4):e67–e70. DOI:10.5301/ejo.5000755; Richoz O., Moore J., Hafezi F., Moore T. Corneal cross linking as an adjuvant therapy in the management of recalcitrant deep stromal fungal keratitis: a randomized trial. Am J Ophthalmol. 2015;160(3):616–617. DOI:10.1016/j.ajo.2015.06.014; Said D.G., Elalfy M.S., Gatzioufas Z., El Zakzouk E.S., Hassan M.A., Saif M.Y., Zaki A.A., Dua H.S., Hafezi F. Collagen cross linking with photoactivated riboflavin (PACK CXL) for the treatment of advanced infectious keratitis with corneal melting. Ophthalmology. 2014 Jul;121(7):1377–1382. DOI:10.1016/j.ophtha.2014.01.011; Каспарова Е.А., Каспаров А.А., Левицкий Ю.В., Ципурская О.И. Взаимосвязь фокальных одонтогенных очагов инфекции и воспалительных заболеваний глаза. Стоматология. 2019;98(6):124–130. DOI:10.17116/oftalma201913506112412; Марченко Н.Р., Каспарова Евг.А. Лечение акантамебного кератита. Вестник офтальмологии. 2016;132(5):110–116. DOI:10.17116/oftalma20161325110-116; Marquart M.E, O’Callaghan R.J. Infectious keratitis: secreted bacterial proteins that mediate corneal damage. Journal of ophthalmology. 2013;2013:369094. DOI:10.1155/2013/369094; Xu S., Liu X., Liu X., Shi Y., Jin X., Zhang N., Li X., Zhang H. Wedelolactone ameliorates Pseudomonas aeruginosa induced inflammation and corneal injury by suppressing caspase 4/5/11/GSDMD mediated non canonical pyroptosis. Experimental eye research. 2021 Oct;211:108750. DOI:10.1016/j.exer.2021.108750. Epub 2021 Sep 2. PMID: 34481822; Руднов В.А. Антибиотикотерапия госпитальных инфекций вызванных P. Aeruginosa. Российский медицинский журнал. Клиническая офтальмология, 2005;13(7):485–490.; Ковалевская М.А. Майчук Д.Ю. Бржеский В.В. Майчук Ю.Ф. Околов И.Н. Синдром «красного глаза». Практическое руководство для врачей офтальмологов. Под ред. Майчука Д.Ю. М., 2010.; McLeod S.D., LaBree L.D., Tayyanipour R., Flowers C.W., Lee P.P., McDonnell P.J. The importance of initial management in the treatment of severe infectious corneal ulcers. Ophthalmology. 1995;102(12):1943–1948 DOI:10.1016/s0161-6420(95)30771-3; Al Mujaini A., Al Kharusi, Wali U.K. Bacterial Keratitis: Perspective on Epidemiology, Clinico Pathogenesis, Diagnosis and Treatment. Sultan Qaboos University medical journal. 2009;9(2):184–195. Epub 2009 Jun 30.; Baum J., Barra M. Topical V.S. Subconjunctival treatment of bacterial corneal ulcers. Ophthalmology. 1983;90(2):162–168. DOI:10.1016/s0161-6420(83)34583-8; Baum J. Treatment of bacterial ulcers of the cornea in the rabbit: a comparison of administration by eyedrops and subconjunctival injections. Transactions of the American Ophthalmological Society. 1982;80:369–390.; Assil K.K., Frucht Perry J., Ziegler E., Schanzlin D.J., Schneiderman T., Weinreb R.N. Tobramycin Liposomes, Single Subconjuncrival Therapy of Pseudomonal Keratins. Investigative ophthalmology & visual science. 1991;32(13):3216-3220.; Bharathi M.J., Ramakrishnan R., Meenakshi R., Shivakumar C., Lional R.L. Analysis of the risk factors predisposing to fungal, bacterial & Acanthamoeba keratitis in South India. Indian Journal of Medical Research. 2009;130(6):749-757.; Каспарова Е.А., Федоров А.А., Собкова О.И. Влияние форсированных инстилляций растворов противоинфекционных средств на ткани глаза (экспериментальное исследование). Вестник офтальмологии. 2019;135(5):160–170. DOI:10.17116/oftalma2019135052160; Darusman K.R., Sitompul R., Susiyanti M., Sudarmono P., Estuningtyas A. Efficacy of Topical Levofloxacin 0.5% in Treating Levofloxacin Resistant Pseudomonas aeruginosa Induced Keratitis. Asia-Pacific journal of ophthalmology (Philadelphia, Pa.). 2012;1(2):120–125. DOI:10.1097/APO.0b013e31824a6589; Tsubota K. New approaches in dry eye management. Supplying missing tear components to the ocular surface epithelium. In: Kinoshita S, Ohashi Y, eds. Current Opinions in the Kyoto Cornea Club. Vol. 1. Amsterdam: Kugler Publications; 1997. P. 27-32.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2003

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2003
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2022-4-898-905

View record from BASE

6

Academic Journal

Clinical manifestation of corneal epithelial dystrophy after LASIK ; Клиническая манифестация эпителиальной дистрофии роговицы после LASIK

Συγγραφείς: Z. V. Surnina, E. V. Sukhanova, A. A. Gamidov, З. В. Сурнина, Е. В. Суханова, А. А. Гамидов

Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 23 (2022); 275-283 ; Медицинский Совет; № 23 (2022); 275-283 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Θεματικοί όροι: оптическая когерентная томография, LASIK, corneal dystrophies, in vivo corneal confocal microscopy, optical coherence tomography, дистрофии роговицы, конфокальная микроскопия роговицы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7304/6526; Wen D., McAlinden C., Flitcroft I., Tu R., Wang Q., Alió J. et al. Postoperative Efficacy, Predictability, Safety, and Visual Quality of Laser Corneal Refractive Surgery: A Network Meta-analysis. Am J Ophthalmol. 2017;(178):65–78. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2017.03.013.; Lau Y.T., Shih K.C., Tse R.H., Chan T.C., Jhanji V. Comparison of Visual, Refractive and Ocular Surface Outcomes Between Small Incision Lenticule Extraction and Laser-Assisted In Situ Keratomileusis for Myopia and Myopic Astigmatism. Ophthalmol Ther. 2019;8(3):373–386. https://doi.org/10.1007/s40123-019-0202-x.; Sahay P., Bafna R.K., Reddy J.C., Vajpayee R.B., Sharma N. Complications of laser-assisted in situ keratomileusis. Indian J Ophthalmol. 2021;69(7):1658–1669. https://doi.org/10.4103/ijo.ijo_1872_20.; Wang B., Naidu R.K., Chu R., Dai J., Qu X., Zhou H. Dry Eye Disease following Refractive Surgery: A 12-Month Follow-Up of SMILE versus FS-LASIK in High Myopia. J Ophthalmol. 2015;(2015):132417. https://doi.org/10.1155/2015/132417.; Wu P.Y., Tsui M.C., Chang C.K., Chang H.W., Chen W.L. Epithelial basement membrane dystrophy after femtosecond laser-assisted LASIK successfully treated with in vivo confocal microscopy-assisted photorefractive keratectomy. J Cataract Refract Surg. 2020;46(12):e17–e19. https://doi.org/10.1097/j.jcrs.0000000000000354.; Pérez-Santonja J.J., Galal A., Cardona C., Artola A., Ruíz-Moreno J.M., Alió J.L. Severe corneal epithelial sloughing during laser in situ keratomileusis as a presenting sign for silent epithelial basement membrane dystrophy. J Cataract Refract Surg. 2005;31(10):1932–1937. https://doi.org/10.1016/j.jcrs.2005.06.041.; Woreta F.A., Davis G.W., Bower K.S. LASIK and surface ablation in corneal dystrophies. Surv Ophthalmol. 2015;60(2):115–122. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2014.08.003.; Kymionis G.D., Diakonis V.F., Bouzoukis D.I., Yoo S.H., Pallikaris I.G. Photorefractive keratectomy in a patient with epithelial basement membrane dystrophy. Semin Ophthalmol. 2007;22(1):59–61. https://doi.org/10.1080/08820530601162768.; Weiss J.S., Møller H.U., Aldave A.J., Seitz B., Bredrup C., Kivelä T. et al. IC3D classification of corneal dystrophies--edition 2. Cornea. 2015;34(2):117–159. https://doi.org/10.1097/ico.0000000000000307.; Cogan D.G., Donaldson D.D., Kuwabara T., Marshall D. Microcystic dystrophy of the corneal epithelium. Trans Am Ophthalmol Soc. 1964;(62):213–225. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14269893/.; Lin Z.N., Chen J., Cui H.P. Characteristics of corneal dystrophies: a review from clinical, histological and genetic perspectives. Int J Ophthalmol. 2016;9(6):904–913. https://doi.org/10.18240/ijo.2016.06.20.; Труфанов С.В., Текеева Л.Ю., Саловарова Е.П., Баг Р.З., Суханова Е.В. Дистрофии роговицы. Вестник офтальмологии. 2018;134(5):118–125. https://doi.org/10.17116/oftalma2018134051118.; Miller D.D., Hasan S.A., Simmons N.L., Stewart M.W. Recurrent corneal erosion: a comprehensive review. Clin Ophthalmol. 2019;(13):325–335. https://doi.org/10.2147/opth.s157430.; Труфанов С.В., Текеева Л.Ю., Сурнина З.В., Маложен С.А. Морфологические изменения роговицы при синдроме рецидивирующей эрозии после шлифовки боуменовой мембраны алмазным бором. Вестник офтальмологии. 2019;135(5):24–30. https://doi.org/10.17116/oftalma201913505124.; Kobayashi A., Yokogawa H., Sugiyama K. In vivo laser confocal microscopy findings in patients with map-dot-fingerprint (epithelial basement membrane) dystrophy. Clin Ophthalmol. 2012;(6):1187–1190. https://doi.org/10.2147/opth.s34196.; Ghouali W., Sandali O., Ameline B., Basli E., Goemaere I., Borderie V., Laroche L. Dystrophie de Cogan révélée après chirurgie réfractive de type Lasik. J Fr Ophtalmol. 2013;36(8):e137–140. https://doi.org/10.1016/j.jfo.2012.11.017.; Mehra S., Tavakoli M., Kallinikos P.A., Efron N., Boulton A.J., Augustine T., Malik R.A. Corneal confocal microscopy detects early nerve regeneration after pancreas transplantation in patients with type 1 diabetes. Diabetes Care. 2007;30(10):2608–2612. https://doi.org/10.2337/dc07-0870.; Ziegler D., Papanas N., Zhivov A., Allgeier S., Winter K., Ziegler I. et al. Early detection of nerve fiber loss by corneal confocal microscopy and skin biopsy in recently diagnosed type 2 diabetes. Diabetes. 2014;63(7):2454–2463. https://doi.org/10.2337/db13-1819.; Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете. Вестник офтальмологии. 2015;131(4):5–14. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=24067677.; Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Вычисление коэффициентов анизотропии и симметричности направленности нервов роговицы на основе автоматизированного распознавания цифровых конфокальных изображений. Медицинская техника. 2015;3(291):23–25. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=24932357.; Ang M., Baskaran M., Werkmeister R.M., Chua J., Schmidl D., Aranha Dos Santos V. et al. Anterior segment optical coherence tomography. Prog Retin Eye Res. 2018;(66):132–156. https://doi.org/10.1016/j.preteyeres.2018.04.002.; Jiao H., Hill L.J., Downie L.E., Chinnery H.R. Anterior segment optical coherence tomography: its application in clinical practice and experimental models of disease. Clin Exp Optom. 2019;102(3):208–217. https://doi.org/10.1111/cxo.12835.; Sridhar M.S., Martin R. Anterior segment optical coherence tomography for evaluation of cornea and ocular surface. Indian J Ophthalmol. 2018;66(3):367–372. https://doi.org/10.4103/ijo.ijo_823_17.; Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Ахмеджанова Л.Т., Георгиев С. Первые результаты клинико-диагностического анализа постковидной периферической невропатии. Вестник офтальмологии. 2021;137(4):58–64. https://doi.org/10.17116/oftalma202113704158.; Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Новиков И.А., Черненкова Н.А., Тюрина А.А Влияние слезной пленки на результаты прямой оценки чувствительности роговицы. Вестник офтальмологии. 2020;136(2):81–85. https://doi.org/10.17116/oftalma202013602181.; Аветисов C.Э., Черненкова Н.А., Сурнина З.В. Анатомо-функциональные особенности и методы исследования нервных волокон роговицы. Вестник офтальмологии. 2018;134(6):102–106. https://doi.org/10.17116/oftalma2018134061102.; Аветисов К.С., Юсеф Н.Ю., Сурнина З.В., Аветисов С.Э., Ндари М. Изменения нервных волокон роговицы после микроинвазивной факохирургии (предварительное сообщение). Вестник офтальмологии. 2020;136(2):6–12. https://doi.org/10.17116/oftalma20201360216.; Pritchard N., Edwards K., Russell A.W., Perkins B.A., Malik R.A., Efron N. Corneal confocal microscopy predicts 4-year incident peripheral neuropathy in type 1 diabetes. Diabetes Care. 2015;38(4):671–675. https://doi.org/10.2337/dc14-2114.

Διαθεσιμότητα: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/7304
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2022-16-23-275-283

View record from BASE

7

Academic Journal

Ход и структура нервных волокон роговицы у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой

Συγγραφείς: Зоя Васильевна Сурнина

Πηγή: National Journal glaucoma; Том 21, № 3 (2022) ; Национальный журнал Глаукома; Том 21, № 3 (2022) ; 2311-6862 ; 2078-4104

Θεματικοί όροι: глаукома, нервные волокна роговицы, конфокальная микроскопия роговицы

Relation: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/377/77; Schuster AK, Erb C, Hoffmann EM, Dietlein T, Pfeiffer N. The Diagnosis and Treatment of Glaucoma. Dtsch Arztebl Int. 2020 Mar 27;117(13):225-234. https://doi:10.3238/arztebl.2020.0225.; Weinreb RN, Aung T, Medeiros FA. The pathophysiology and treatment of glaucoma: a review. JAMA. 2014 May 14;311(18):1901-11. https://doi:10.1001/jama.2014.3192.; Heijl A, Leske MC, Bengtsson B, Hyman L, Bengtsson B, Hussein M; Early Manifest Glaucoma Trial Group. Reduction of intraocular pressure and glaucoma progression: results from the Early Manifest Glaucoma Trial. Arch Ophthalmol. 2002 Oct;120(10):1268-79. doi:10.1001/archopht.120.10.1268.; Курышева Н.И., Трубилина А.В., Маслова Е.В. Оптическая когерентная томография - ангиография и паттерн-электроретинография в ранней диагностике глаукомы. Новости глаукомы. 2017; 1: 66-69.; Волков В.В. Глаукома открытоугольная. Москва: МИА, 2008; 348 с.; Нероев В.В. Работа Российского национального комитета по ликвидации устранимой слепоты в рамках программы ВОЗ ≪Зрение 2020≫. Доклад на Российском общенациональном офтальмологическом форуме. Москва, 2014. [Электронный ресурс] URL: http://www.helmholtzeyeinstitute.ru/ (дата обращения 27.07.2017) (In Russ.).; Нероев В.В., Киселева О.А., Бессмертный А.М. Результаты мультицентровых исследований эпидемиологических особенностей первичной открытоугольной глаукомы в Российской Федерации. Российский офтальмологический журнал 2013; 3:4-7.; Еричев В.П., Петров С.Ю., Козлова И.В., Макарова А.С., Рещикова В.С. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 1. Периметрия как метод функциональных исследований. Национальный журнал глаукома 2015; 14(2):75-81.; Еричев В.П., Петров С.Ю., Макарова А.С., Козлова И.В., Рещикова В.С. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 2. Диагностика структурных повреждений сетчатки и зрительного нерва. Национальный журнал глаукома 2015; 14(3):72-79.; Страхов В.В., Ермакова А.В., Корчагин Н.В., Казанова С.Ю. Асимметрия тонометрических, гемодинамических и биоретинометрических показателей парных глаз в норме и при первичной глаукоме. Глаукома 2008; 4:11-16.; Аветисов С.Э., Бубнова И.А., Антонов А.А. Биомеханические свойства роговицы: клиническое значение, методы исследования, возможности систематизации подходов к изучению. Вестник офтальмологии 2010; 126(6):3-7.; Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Новиков И.А., Черненкова Н.А., Тюрина А.А. Влияние слезной пленки на результаты прямой оценки чувствительности роговицы. Вестник офтальмологии. 2020. 136. (2):. 81-85.; https://doi.org/10.17116/oftalma20201360218; Алексеев И.Б., Страхов В.В., Мельникова Н.В., Попова А.А. Изменения фиброзной оболочки глаза у пациентов с впервые выявленной первичной открытоугольной глаукомой. Национальный журнал глаукома 2016; 15(1):13-24.; Erie JC, McLaren JW, Patel SV. Confocal microscopy in ophthalmology. Am J Ophthalmol. 2009; 148(5):639-46. https://doi:10.1016/j.ajo.2009.06.022.; Ranno S., Fogagnolo P., Rossetti L., Orzalesi N., Nucci P. Changes in corneal parameters at confocal microscopy in treated glaucoma patients. Clin Ophthalmol 2011; 5:1037-1042.; Mastropasqua L, Agnifili L, Mastropasqua R, Fasanella V, Nubile M, Toto L, Carpineto P, Ciancaglini M. In vivo laser scanning confocal microscopy of the ocular surface in glaucoma. Microsc Microanal. 2014;20(3):879-94. https://doi:10.1017/S1431927614000324; Страхов В.В., Сурнина З.В., Малахова А.И. и др. Дегенеративные изменения в слое нервных волокон роговицы у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой. Национальный журнал глаукома 2017; 16(4): 52-68; Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете. Вестник офтальмологии. 2015; 4: 5-14 https://doi:10.17116/oftalma201513145-14; Попова А.А., Страхов В.В., Мурашов А.А., Ширина Н.Ю., Сурнина З.В., Малахова А.И., Климова О.Н. Количественная характеристика клеток Лангерганса в слое нервных волокон роговицы при первичной открытоугольной глаукоме. Национальный журнал глаукома. 2019; 18(2):47-59; Петров С.Ю., Фокина Н.Д., Шерстнева Л.В., Вострухин С.В., Сафонова Д.М. Этиология первичной глаукомы: современные теории и исследования. Офтальмологические ведомости. 2015; 8(2):47-56.; Рукина Д.А., Догадова Л.П., Маркелова Е.В., Абдуллин Е.А., Осыовский А.Л., Хохлова А.С. Иммунологические аспекты патогенеза первичной открытоугольной глаукомы. Клиническая офтальмология. 2011; 12(4):162-165.; Аветисов C.Э., Черненкова Н.А., Сурнина З.В. Анатомо-функциональные особенности и методы исследования нервных волокон роговицы. Вестник офтальмологии. 2018; 134(6): 102-106.; https://doi:10.17116/oftalma2018134061102; https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/377

Διαθεσιμότητα: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/377

View record from BASE

8

Academic Journal

Histomorphological view of the cornea investigated by laser confocal microscopy in keratoplasty ; Гистоморфологическая картина роговицы по данным лазерной конфокальной микроскопии при кератопластике

Συγγραφείς: D. A. Krakhmaleva, Z. V. Surnina, S. A. Malzhoen, A. A. Gamidov, Д. А. Крахмалева, З. В. Сурнина, С. А. Маложен, А. A. Гамидов

Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 21-2 (2021); 110-117 ; Медицинский Совет; № 21-2 (2021); 110-117 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Θεματικοί όροι: дендритиформные макрофаги, graft rejection, confocal microscopy, dendritic cells, Langerhans cells, реакция отторжения трансплантата, конфокальная микроскопия роговицы, клетки Лангерганса

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/6642/6019; Coster D., Williams K. Transplantation of the cornea. Med J Aust. 1992;157(6):405–408. https://doi.org/10.5694/j.1326-5377.1992.tb137253.x.; George A., Larkin D. Corneal Transplantation: The Forgotten Graft. Amer J Transpl. 2004;4(5):678–685. https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x.; Oliva M., Gulati M., Schottman T. Turning the tide of corneal blindness. Ind J Ophthal. 2012;60(5):423. https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2004.00417.x.; Jerry Y. Niederkorn J.Y., Larkin D.P. Immune Privilege of Corneal Allografts. Ocul Immunol Inflamm. 2010;18(3):162–171. https://doi.org/10.3109/09273948.2010.486100.; Труфанов С.В., Маложен С.А., Крахмалева Д.А., Сурнина З.В., Пивин Е.А., Каспарова Е.А. Антиангиогенная терапия при кератопластике высокого риска. Вестник офтальмологии. 2020;136(4):11–18. https://doi.org/10.17116/oftalma202013604111.; Shapiro M.B., Mandel M.R., Krachmer J.H. Rejection. In: Bright B. (ed.). Corneal Surgery, Theory, Technique and Tissues. 2nd ed. St. Louis: CV Mosby; 1997, pp. 254–268.; Труфанов С.В., Суббот А.М., Маложен С.А., Саловарова Е.П., Крахмалева Д.А. Факторы риска, клинические проявления, методы профилактики и лечения реакции отторжения трансплантата роговицы Вестник офтальмологии. 2016;132(6):108–116. https://doi.org/10.17116/oftalma20161326108-116.; Panda A., Vanathi M., Kumar A., Dash Y., Priya S. Corneal Graft Rejection. Surv Ophthalmol. 2007;52(4):375396. https://doi.org/10.1016/j.survophthal.2007.04.008.; Monnereau C., Bruinsma M., Ham L., Baydoun L., Oellerich S., Melles G.R. Endothelial cell changes as an indicator for upcoming allograft rejection following descemet membrane endothelial keratoplasty. Am J Ophthalmol. 2014;158:485–495. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2014.05.030.; Benetz B., Lass J., Gal R., Sugar A., Menegay H., Dontchev M. et al. Endothelial Morphometric Measures to Predict Endothelial Graft Failure After Penetrating Keratoplasty. JAMA Ophthalmol. 2013;131(5):601. https://doi.org/10.1001/jamaophthalmol.2013.1693.; Liu Y., Lwin N., Chan N., Mehta J. Use of Anterior Segment Optical Coherence Tomography to Predict Corneal Graft Rejection in Small Animal Models. Inves Ophthalmol Visual Science. 2014;55(10):6736–6741. https://doi.org/10.1167/iovs.14-14475.; Abou Shousha M., Yoo S., Sayed M., Edelstein S., Council M., Shah R. et al. In Vivo Characteristics of Corneal Endothelium/Descemet Membrane Complex for the Diagnosis of Corneal Graft Rejection. Amer J Ophthalmol. 2017;178:27–37. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2017.02.026.; Chirapapaisan C., Abbouda A., Jamali A., Müller R.T., Cavalcanti B.M., Colon C. et al. In Vivo Confocal Microscopy Demonstrates Increased Immune Cell Densities in Corneal Graft Rejection Correlating With Signs and Symptoms. Am J Ophthalmol. 2019;203:26–36. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2019.02.013.; Resch M., Marsovszky L., Németh J., Bocskai M., Kovács L., Balog A. Dry Eye and Corneal Langerhans Cells in Systemic Lupus Erythematosus. J Ophthalmol. 2015;2015:1–8. https://doi.org/10.1155/2015/543835.; Shtein R., Kelley K., Musch D., Sugar A., Mian S. In Vivo Confocal Microscopic Evaluation of Corneal Wound Healing After Femtosecond Laser-Assisted Keratoplasty. Ophthalmic Surgery, Lasers and Imaging Retina. 2012;43(3):205–213. https://doi.org/10.3928/15428877-20120209-01.; Tham V.M., Abbott R.L. Corneal graft rejection: recent updates. Int Ophthalmol Clin. 2002;42:105–113. https://doi.org/10.1097/00004397-200201000-00015.; Kheirkhah A., Rahimi Darabad R., Cruzat A., Hajrasouliha A., Witkin D., Wong N. et al. Corneal Epithelial Immune Dendritic Cell Alterations in Subtypes of Dry Eye Disease: A Pilot In Vivo Confocal Microscopic Study. Investig Opthalmol Visual Science. 2015;56(12):7179. https://doi.org/10.1167/iovs.15-17433.; Chidambaranathan G., Mathews S., Panigrahi A., Mascarenhas J., Prajna N., Muthukkaruppan V. In vivo Confocal Microscopic Analysis of Limbal Stroma in Patients With Limbal Stem Cell Deficiency. Cornea. 2015;34(11):1478–1486. https://doi.org/10.1097/ico.0000000000000593.; Müller R., Abedi F., Cruzat A., Witkin D., Baniasadi N., Cavalcanti B. et al. Degeneration and Regeneration of Subbasal Corneal Nerves after Infectious Keratitis. Ophthalmology. 2015;122(11):2200–2209. https://doi.org/10.1016/j.ophtha.2015.06.047.; Hamrah P., Sahin A., Dastjerdi M., Shahatit B., Bayhan H., Dana R. et al. In Vivo Confocal Microscopic Changes of the Corneal Epithelium and Stroma in Patients With Herpes Zoster Ophthalmicus. Amer J Ophthalmol. 2015;159(6):1036–1044.e1. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2015.03.003.; Niederer R., Sherwin T., McGhee C. In Vivo Confocal Microscopy of Subepithelial Infiltrates in Human Corneal Transplant Rejection. Cornea. 2007;26(4):501–504. https://doi.org/10.1097/ico.0b013e3180318107.; Hamrah P., Dana M.R. Corneal antigen-presenting cells. Chem Immunol Allergy. 2007;92:58–70. https://doi.org/10.1159/000099254.; Hamrah P., Liu Y., Zhang Q., Dana M. The Corneal Stroma Is Endowed with a Significant Number of Resident Dendritic Cells. Investig Opthalmol Visual Science. 2003;44(2):581. https://doi.org/10.1167/iovs.02-0838.; Zhivov A., Stave J., Vollmar B., Guthoff R. In vivo confocal microscopic evaluation of Langerhans cell density and distribution in the normal human corneal epithelium. Graefe’s Arch Clinic Exp Ophthalmol. 2005;243(10):1056–1061. https://doi.org/10.1007/s00417-004-1075-8.; Eckard A., Stave J., Guthoff R. In Vivo Investigations of the Corneal Epithelium With the Confocal Rostock Laser Scanning Microscope (RLSM). Cornea. 2006;25(2):127–131. https://doi.org/10.1097/01.ico.0000170694.90455.f7.; Hadden O., Patel D., Gray T., Morris A., Ring C. Multifocal lamellar keratitis following laser in situ keratomileusis. J Cat Refr Surg. 2007;33(1):144–147. https://doi.org/10.1016/j.jcrs.2006.07.043.; Alsuhaibani A., Sutphin J., Wagoner M. Confocal Microscopy of Subepithelial Infiltrates Occurring After Epidemic Keratoconjunctivitis. Cornea. 2006;25(7):778–780. https://doi.org/10.1097/01.ico.0000220773.04155.7a.; Hattori T., Takahashi H., Dana R. Novel Insights Into the Immunoregulatory Function and Localization of Dendritic Cells. Cornea. 2016;35(1 Suppl.):49–54. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000001005.; Wang D., Song P., Wang S., Sun D., Wang Y., Zhang Y., Gao H. Laser Scanning In Vivo Confocal Microscopy of Clear Grafts after Penetrating Keratoplasty. BioMed Res Inter. 2016;2016:1–6. https://doi.org/10.1155/2016/5159746.

Διαθεσιμότητα: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/6642
https://doi.org/10.21518/2079-701X-2021-21-2-110-117

View record from BASE

9

Academic Journal

Course and structure of corneal nerve fibers in patients with primary open-angle glaucoma ; Ход и структура нервных волокон роговицы у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой

Συγγραφείς: Z. V. Surnina, M. A. Karpilova, З. В. Сурнина, М. А. Карпилова

Συνεισφορές: The authors received no specific funding for this work, Авторы не получали финансирование при проведении исследования и написании статьи

Πηγή: National Journal glaucoma; Том 21, № 3 (2022); 11-16 ; Национальный журнал Глаукома; Том 21, № 3 (2022); 11-16 ; 2311-6862 ; 2078-4104

Θεματικοί όροι: конфокальная микроскопия роговицы, corneal nerve fibers, corneal confocal microscopy, нервные волокна роговицы

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/395/380; Schuster A. K., Erb C., Hoffmann E. M., Dietlein T., Pfeiffer N. The Diagnosis and Treatment of Glaucoma. Dtsch Arztebl Int 2020; 117 (13): 225-234. https://doi.org/10.3238/arztebl.2020.0225.; Weinreb R. N., Aung T., Medeiros F. A. The pathophysiology and treatment of glaucoma: a review. JAMA 2014; 311 (18): 1901-11. https://doi.org/10.1001/jama.2014.3192.; Heijl A., Leske M. C., Bengtsson B., Hyman L., Bengtsson B., Hussein M. Early Manifest Glaucoma Trial Group. Reduction of intraocular pressure and glaucoma progression: results from the Early Manifest Glaucoma Trial. Arch Ophthalmol 2002; 120 (10): 1268-1279. https://doi.org/10.1001/archopht.120.10.1268.; Курышева Н. И. Оптическая когерентная томография — ангиография и паттерн-электроретинография в ранней диагностике глаукомы / Н. И. Курышева, А. В. Трубилина, Е. В. Маслова // Новости глаукомы. – 2017. – 1: 66-69.; Волков В. В. Глаукома открытоугольная / В. В. Волков. – М: МИА, 2008. – 348.; Нероев В. В. Работа Российского национального комитета по ликвидации устранимой слепоты в рамках программы ВОЗ «Зрение 2020» / В. В. Нероев // Российский общенациональный офтальмологический форум. – Москва, 2014.; Нероев В. В. Результаты мультицентровых исследований эпидемиологических особенностей первичной открытоугольной глаукомы в Российской Федерации / В. В. Нероев, О. А. Киселева, А. М. Бессмертный // Российский офтальмологический журнал. – 2013. – 3: 4-7.; Еричев В. П. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 1. Периметрия как метод функциональных исследований / В. П. Еричев [и др.] // Национальный журнал глаукома. – 2015. – 14 (2): 75-81.; Еричев В. П. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 2. Диагностика структурных повреждений сетчатки и зрительного нерва / В. П. Еричев [и др.] // Национальный журнал глаукома. – 2015. – 14 (3): 72-79.; Страхов В. В. Асимметрия тонометрических, гемодинамических и биоретинометрических показателей парных глаз в норме и при первичной глаукоме / В. В. Страхов [и др.] // Глаукома. – 2008. – 4: 11-16.; Аветисов С. Э. Биомеханические свойства роговицы: клиническое значение, методы исследования, возможности систематизации подходов к изучению / С. Э. Аветисов [и др.] Вестник офтальмологии. – 2010. – 126 (6): 3-7.; Аветисов С. Э. Влияние слезной пленки на результаты прямой оценки чувствительности роговицы / С. Э. Аветисов [и др.] // Вестник офтальмологии. – 2020. – 136 (2): 81-85. URL: https://translated.turbopages.org/proxy_u/en-ru.ru.c9edc12b-630cab41-6c4a523b-74722d776562/https/pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32366074/; Алексеев И. Б. Изменения фиброзной оболочки глаза у пациентов с впервые выявленной первичной открытоугольной глаукомой / И. Б. Алексеев [и др.] // Национальный журнал глаукома. – 2016. – 15 (1): 13-24.; Erie J. C., McLaren J. W., Patel S. V. Confocal microscopy in ophthalmology. Am J Ophthalmol 2009; 148 (5): 639-646. https://doi.org/10.1016/j.ajo.2009.06.022.; Ranno S., Fogagnolo P., Rossetti L., Orzalesi N., Nucci P. Changes in corneal parameters at confocal microscopy in treated glaucoma patients. Clin Ophthalmol 2011; 5: 1037-1042. https://doi.org/10.2147/OPTH.S22874; Mastropasqua L., Agnifili L., Mastropasqua R., Fasanella V., Nubile M., Toto L., Carpineto P., Ciancaglini M. In vivo laser scanning confocal microscopy of the ocular surface in glaucoma. Microsc Microanal 2014; 20 (3): 879-894. https://doi.org/10.1017/S1431927614000324; Страхов В. В. Дегенеративные изменения в слое нервных волокон роговицы у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой / В. В. Страхов [и др.] // Национальный журнал глаукома. – 2017. – 16 (4): 52-68; Аветисов С. Э. Новый принцип морфометрического исследования нервных волокон роговицы на основе конфокальной биомикроскопии при сахарном диабете / С. Э. Аветисов [и др.] // Вестник офтальмологии. – 2015. – 131 (4): 5-14. https://doi.org/10.17116/oftalma201513145-14; Попова А. А. Количественная характеристика клеток Лангерганса в слое нервных волокон роговицы при первичной открытоугольной глаукоме / А. А. Попова [и др.] // Национальный журнал глаукома. – 2019. – 18 (2): 47-59.; Петров С. Ю. Этиология первичной глаукомы: современные теории и исследования / С. Ю. Петров [и др.] Офтальмологические ведомости. – 2015. – 8 (2): 47-56.; Рукина Д. А. Иммунологические аспекты патогенеза первичной открытоугольной глаукомы / Д. А. Рукина [и др.] // РМЖ Клиническая офтальмология. – 2011. – 12 (4): 162-165.; Аветисов C. Э. Анатомо-функциональные особенности и методы исследования нервных волокон роговицы / С. Э. Аветисов, Н. А. Черненкова, З. В. Сурнина // Вестник офтальмологии. – 2018. – 134 (6): 102-106. https://doi.org/10.17116/oftalma2018134061102; https://www.glaucomajournal.ru/jour/article/view/395