Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 473 για την αναζήτηση '"клеточный иммунитет"', χρόνος αναζήτησης: 1,16δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
    Academic Journal

    Συνεισφορές: 1

    Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 15, No 4 (2025); 673-680 ; Инфекция и иммунитет; Vol 15, No 4 (2025); 673-680 ; 2313-7398 ; 2220-7619

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  2. 2
    Academic Journal

    Πηγή: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 107-112 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 107-112

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-64-5; https://phsreda.com/e-articles/10716/Action10716-138828.pdf; Экспрессия «неклассических» молекул главного комплекса гистосовместимости при бронхиальной астме и атопическом дерматите / О.С. Боева, В.И. Борисевич, В.С. Аббасова [и др.] // Российский иммунологический журнал. – 2025. – Т. 28. №2. – C. 229–234. – DOI 10.46235/1028-7221-17027-EON. – EDN MTKWLV; Ватутин Н.Т. Лимфопения: основные причины развития / Н.Т. Ватутин, Е.В. Ещенко // Архивъ внутренней медицины. – 2016. – №2 (28). – С. 22–27.; Уровень иммуноглобулинов в периферической крови у детей различной возрастной группы с клиническим диагнозом атопический дерматит / А.Р. Зимнуров, С.Д. Рашитова, Л.Н. Цвилик [и др.] // Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии: материалы VI Всерос. науч.-практич. конф. с международным участием (Ульяновск, 22 мая 2023 г.) / редкол.: Е. И. Антонова [и др.] – Чебоксары: Среда, 2023. – С. 183-190. – ISBN 978-5-907688-37-7. – DOI 10.31483/r-107056. EDN KDDZFR; Активность фагоцитоза у больных атопическим дерматитом с подтвержденной контаминацией кожи дрожжами рода Candida spp. / М.В. Тарасова, И.В. Елистратова, О.Б. Иванченко [и др.] // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. – 2020. – №64 (1). – С. 47–53. – DOI 10.25557/0031-2991.2020.01.47-53. – EDN YYYFWO; Ярец Ю.И. Интерпретация результатов иммунограммы / Ю.И. Ярец, – Гомель: ГУ «РНПЦ РМиЭЧ», 2020. – 38 с.; Chong A.C., Visitsunthorn K., Ong P.Y. Genetic/Environmental Contributions and Immune Dysregulation in Children with Atopic Dermatitis. J Asthma Allergy. 2022. 15. Pp. 1681–1700. DOI 10.2147/jaa.s293900. EDN HJADTC; Hawerkamp H.C., Fahy C.M.R., Fallon P.G. [et al.]. Proryv: rol' vrozhdennogo immuniteta i bar'yernoy zashchity pri atopicheskom dermatite i psoriaze. Skin Health Dis. 2022. 2 (2). 99 p.; Kim C.H., Samra M.S. Moderate to severe atopic dermatitis in children: focus on systemic Th2 cytokine receptor antagonists and Janus kinase inhibitors. Clin Exp Pediatr. 2024. 67 (2). Pp. 64–79.; Pan Y., Wang Y., Xu M. [et al.]. The roles of innate immune cells in atopic dermatitis. J Innate Immun. 2024. 16(1). Pp. 385–396.; Riaz B., Islam S.M.S., Ryu H.M., Sohn S. CD83 Regulates the Immune Responses in Inflammatory Disorders. Int J Mol Sci. 2023 Feb 1. Pp. 24–30.; Rojas-Espinosa O., Islas -Trujillo P., Villanueva S. [et al.]. Phagocytosis: A practical approach for evaluating neutrophil function in health and disease. Modern Research in Inflammation. 13. 2024. Pp. 9–28. DOI 10.4236/mri.2024.132002. EDN MLTWPD; Silverberg J.I., Barbarot S., Gadkari A. [et al.]. Atopic dermatitis in the pediatric population: A cross-sectional, international epidemiologic study. Ann Allergy Asthma Immunol. 2021 Apr; 126 (4). Pp. 417–428. DOI 10.1016/j.anai.2020.12.020. EDN HZILPQ; Zheng P., Chang X., Lu Q., Liu Y. Cytopenia and autoimmune diseases: a vicious cycle fueled by mTOR dysregulation in hematopoietic Stem Cells. J. Autoimmun. 2013; 41: 182–187.; https://phsreda.com/article/138828/discussion_platform

  3. 3
    Academic Journal

    Πηγή: Problems of Particularly Dangerous Infections; № 1 (2025); 105-111 ; Проблемы особо опасных инфекций; № 1 (2025); 105-111 ; 2658-719X ; 0370-1069

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2121/1549; Silva N.I.O., de Oliveira J.S., Kroon E.G., Trindade G.S., Drumond B.P. Here, there, and everywhere: The wide host range and geographic distribution of zoonotic orthopoxviruses. Viruses. 2020; 13(1):43. DOI:10.3390/v13010043.; Gao J., Gigante C., Khmaladze E., Liu P., Tang S., Wilkins K., Zhao K., Davidson W., Nakazawa Y., Maghlakelidze G., Geleishvili M., Kokhreidze M., Carroll D.S., Emerson G., Li Y. Genome sequences of Akhmeta virus, an early divergent old world orthopoxvirus. Viruses. 2018; 10(5):252. DOI:10.3390/v10050252.; Cardetti G., Gruber C.E.M., Eleni C., Carletti F., Castilletti C., Manna G., Rosone F., Giombini E., Selleri M., Lapa D., Puro V., Di Caro A., Lorenzetti R., Scicluna M.T., Grifoni G., Rizzoli A., Tagliapietra V., De Marco L., Capobianchi M.R., Autorino G.L. Fatal outbreak in Tonkean macaques cause by possible novel orthopoxvirus, Italy, January 2015. Emerg. Infect. Dis. 2017; 23(12):1941–9. DOI:10.3201/eid2312.162098.; Gruber C.E.M., Giombini E., Selleri M., Tausch S.H., Andrusch A., Tyshaieva A., Cardeti G., Lorenzetti R., De Marco L., Carletti F., Nitsche A., Capobianchi M.R., Ippolito G., Autorino G.L., Castilletti C. Whole genome characterization of orthopoxvirus (OPV) Abatino, a zoonotic virus representing a putative novel clade of old world orthopoxvirus. Viruses. 2018; 10(10):546. DOI:10.3390/v10100546.; Gigante C.M., Gao J., Tang S., McCollum A.M., Wilkins K., Reynolds M.G., Davidson W., McLaughlin J., Olson V.A., Li Y. Genome of Alaskapox virus, a novel orthopoxvirus isolated from Alaska. Viruses. 2019; 11(8):708. DOI:10.3390/v11080708.; Gorse G.J., Newman M.J., deCamp A., Hay C.M., De Rosa S.C., Noonan E., Livingston B.D., Fuchs J.D., Kalams S.A., CassisGhavami F.L.; NIAID HIV Vaccine Trials Network. DNA and modified vaccinia virus Ankara vaccines encoding multiple cytotoxic and helper T-lymphocyte epitopes of human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) are safe but weakly immunogenic in HIV-1-uninfected, vaccinia virus-naive adults. Clin. Vaccine Immunol. 2012; 19(5):649–58. DOI:10.1128/CVI.00038-12.; Vasan S., Schlesinger S.J., Chen Z., Hurley A., Lombardo A., Than S., Adesanya P., Bunce C., Boaz M., Boyle R., Sayeed E., Clark L., Dugin D., Boente-Carrera M., Schmidt C., Fang Q., LeiBa, Huang Y., Zaharatos G.J., Gardiner D.F., Caskey M., Seamons L., Ho M., Dally L., Smith C., Cox J., Gill D., Gilmour J., Keefer M.C., Fast P., Ho D.D. Phase 1 safety and immunogenicity evaluation of ADMVA, a multigenic, modified vaccinia Ankara-HIV-1B'/C candidate vaccine. PLoS One. 2010; 5(1):e8816. DOI:10.1371/journal. pone.0008816.; Walsh S.R., Seaman M.S., Grandpre L.E. Charbonneau C., Yanosick K.E., Metch B., Keefer M.C., Dolin R., Baden L.R. Impact of anti-orthopoxvirus neutralizing antibodies induced by heterologous prime-boost HIV-1 vaccine on insert-specific immune responses. Vaccine. 2012; 31(1):114–9. DOI:10.1016/jvaccine.2012.10.093.; Sandström E., Nilsson C., Hejdeman B., Bråve A., Bratt G., Robb M., Cox J., Vancott T., Marovich M., Stout R., Aboud S., Bakari M., Pallangyo K., Ljungberg K., Moss B., Earl P., Michael N., Birx D., Mhalu F., Wahren B., Biberfeld G.; HIV Immunogenicity Study 01/02 Team. Broad immunogenicity of a multigene, multiclade HIV-1 DNA vaccine boosted with heterologous HIV-1 recombinant modified vaccinia virus Ankara. J. Infect. Dis. 2008; 198(10):1482– 90. DOI:10.1086/592507.; Nilsson C., Godoy-Ramirez K., Hejdeman B., Bråve A., Gudmundsdotter L., Hallengärd D., Currier J.R., Wieczorek L., Hasselrot K., Earl P.L., Polonis V.R., Marovich M.A., Robb M.L., Sandström E., Wahren B., Biberfeld G. Broad and potent cellular and humoral immune responses after a second late HIV-modified vaccinia virus Ankara vaccination in HIV-DNA-primed and HIV-modified vaccinia virus Ankara-boosted Swedish vaccinees. AIDS Res. Hum. Retroviruses. 2014; 30(3):299–311. DOI:10.1089/AID.2013.0149.; García F., Bernaldo de Quirós J.C.L., Gómez C.E., Perdiguero B., Nájera J.L., Jiménez V., García-Arriaza J., Guardo A.C., Pérez I., Díaz-Brito V., Conde M.S., González N., Alvarez A., Alcamí J., Jiménez J.L., Pich J., Arnaiz J.A., Maleno M.J., León A., Muñoz-Fernández M.A., Liljeström P., Weber J., Pantaleo G., Gatell J.M., Plana M., Esteban M. Safety and immunogenicity of a modified pox vector-based HIV/AIDS vaccine candidate expressing Env, Gag, Pol and Nef proteins of HIV-1 subtype B (MVA-B) in healthy HIV-1-uninfected volunteers: A phase I clinical trial (RISVAC02). Vaccine. 2011; 29(46):8309–16. DOI:10.1016/j.vaccine.2011.08.098.; Guardo A.C., Gómez C.E., Díaz-Brito V., Pich J., Arnaiz J.A., Perdiguero B., García-Arriaza J., González N., Sorzano C.O.S., Jiménez L., Jiménez J.L., Muñoz-Fernández M.Á., Gatell J.M., Alcamí J., Esteban M., de Quirós J.C.L.B., García F., Plana M.; RISVAC02boost study. Safety and vaccine-induced HIV-1 immune responses in healthy volunteers following a late MVA-B boost 4 years after the last immunization. PLoS One. 2017; 12(10):e0186602. DOI:10.1371/journal.pone.0186602.; Mehendаle S., Thakar M., Sahay S., Kumar M., Shete A., Sathyamurthi P., Verma A., Kurle S., Shrotri A., Gilmour J., Goyal R., Dally L., Sayeed E., Zachariah D., Ackland J., Kochhar S., Cox J.H., Excler J.-L., Kumaraswami V., Paranjape R., Ramanathan V.D. Safety and immunogenicity of DNA and MVA HIV-1 subtype C vaccine prime-boost regimens: a phase I randomised trial in HIVuninfected Indian volunteers. PLoS One. 2013; 8(2):e55831. DOI:10.1371/journal.pone.0055831.; Hayes P., Gilmour J., von Lieven A., Gill D., Clark L., Kopycinski J., Cheeseman H., Chung A., Alter G., Dally L., Zachariah D., Lombardo A., Ackland J., Sayeed E., Jackson A., Boffito M., Gazzard B., Fast P.E., Cox J.H., Laufer D. Safety and immunogenicity of DNA prime and modified vaccinia Ankara virus-HIV sub-type C vaccine boost in healthy adults. Clin. Vaccine Immunol. 2013; 20(3):397–408. DOI:10.1128/CVI.00637-12.; Gómez C.E., Perdiguero B., García-Arriaza J., Cepeda V., Sánchez-Sorzano C.Ó., Mothe B., Jiménez J. L., Muñoz-Fernández M.Á., Gatell J.M., López Bernaldo de Quirós J.C., Brander C., García F., Esteban M. A phase I randomized therapeutic MVA-B vaccination improves the magnitude and quality of the T cell immune responses in HIV-1-infected subjects on HAART. PLoS One. 2015; 10(11):e0141456. DOI:10.1371/journal.pone.0141456.; Goepfert P.A., Elizaga M.L., Sato A., Qin L., Cardinali M., Hay C.M., Hural J., DeRosa S.C., DeFawe O.D., Tomaras G.D., Montefiori D.C., Xu Y., Lai L., Kalams S.A., Baden L.R., Frey S.E., Blattner W.A., Wyatt L.S., Moss B., Robinson H.L.; National Institute of Allergy and Infectious Diseases HIV Vaccine Trials Network. Phase 1 safety and immunogenicity testing of DNA and recombinant modified vaccinia Ankara vaccines expressing HIV-1 virus-like particles. J. Infect. Dis. 2011; 203(5):610–9. DOI:10.1093/infdis/jiq105.; Satti I., Meyer J., Harris S.A., Manjaly Thomas Z.-R., Griffiths K., Antrobus R.D., Rowland R., Ramon R.L., Smith M., Sheehan S., Bettinson H., McShane H. Safety and immunogenicity of a candidate tuberculosis vaccine MVA85A delivered by aerosol in BCG-vaccinated healthy adults: a phase 1, double-blind, randomized controlled trial. Lancet. Infect. Dis. 2014; 14(10):939–46. DOI:10.1016/S1473-3099(14)70845-X.; von Krempelhuber A., Vollmar J., Pokorny R., Rapp P., Wulff N., Petzold B., Handley A., Mateo L., Siersbol H., Kollaritsch H., Chaplin P. A randomized, double-blind, dose-finding Phase II study to evaluate immunogenicity and safety of the third generation smallpox vaccine candidate IMVAMUNE®. Vaccine. 2010; 28(5):1209–16. DOI:10.1016/j.vaccine.2009.11.030.; Frey S.E., Winokur P.L., Hill H., Goll J.B., Chaplin P., Belshe R.B. Phase II randomized, double-blinded comparison of a single high dose (5·108 TCID50) of modified vaccinia Ankara compared to a standard dose (1·108 TCID50) in healthy vaccinianaïve individuals. Vaccine. 2014; 32(23):2732–9. DOI: 10/1016/j. vaccine.2014.02.043.; Greenberg R.N., Hay C.M., Stapleton J.T., Marbury T.C., Wagner E., Kreitmeir E., Röesch S., von Krempelhuber A., Young P., Nichols R., Meyer T.P., Schmidt D., Weigl J., Virgin G., ArndtzWiedemann N., Chaplin P. A randomized, double-blind, placebo controlled Phase II trial investigating the safety and immunogeni city of modified vaccinia Ankara smallpox vaccine (MVA-BN®) in 56-80-year-old subjects. PLoS One. 2016; 11(6):e0157335. DOI:10.1371/journal.pone.0157335.; https://journal.microbe.ru/jour/article/view/2121

  4. 4
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was supported by a grant from the Russian Science Foundation, No. 23-25-00219 (https://rscf.ru/project/23-25-00219)., Авторы заявляют, что получили финансовую поддержку для проведения исследования, написания и/или публикации данной статьи. Исследование было профинансировано грантом Российского научного фонда, № 23-25-00219, https://rscf.ru/project/23-25-00219/.

    Πηγή: General Reanimatology; Том 21, № 1 (2025); 15-27 ; Общая реаниматология; Том 21, № 1 (2025); 15-27 ; 2411-7110 ; 1813-9779

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2517/1909; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2517/1915; Hiller J. G., Perry N. J., Poulogiannis G., Riedel B., Sloan E. K. Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery. Nat Rev Clin Oncol. 2018; 15 (4): 205–218. DOI:10.1038/nrclinonc.2017.194. PMID: 29283170.; Chang C.-Y., Wu M.-Y., Chien Y.-J., Su I.-M., Wang S.-C., Kao M.-C. Anesthesia and long-term oncological outcomes: a systematic review and meta-analysis. Anesth Analg. 2021; 132 (3): 623–634. DOI:10.1213/ANE.0000000000005237. PMID: 33105278.; Степанов А. В., Шаповалов К. Г. Мониторинг иммунной системы у пациентов в критическом состоянии (обзор). Общая Реаниматология. 2024; 20 (3): 42–52.; Овечкин А. М., Политов М. Е., Сокологорский С. В., Евсюкова М. А. Пропофол или ингаляционные анестетики: можно ли говорить о ренессансе тотальной внутривенной анестезии? Анестезиология и Реаниматология. 2021; (5): 71–79.; Sumi C., Matsuo Y., Kusunoki M., Shoji T., Uba T., Iwai T., Bono H., Hirota K. Cancerous phenotypes associated with hypoxia-inducible factors are not influenced by the volatile anesthetic isoflurane in renal cell carcinoma. PLoS One. 2019; 14 (4): e0215072. DOI:10.1371/journal.pone.0215072. PMID: 30986231.; Efremov S. M., Kozireva V. S., Moroz G. B., Abubakirov M. N., Shkoda O. S., Shilova A. N., Yarmoshuk S. V., et al. The immunosuppressive effects of volatile versus intravenous anesthesia combined with epidural analgesia on kidney cancer: a pilot randomized controlled trial. Korean J Anes-thesiol. 2020; 73 (6): 525–533. DOI:10.4097/kja.19461. PMID: 32098012.; Cho J. S., Lee M.-H., Kim S. Il., Park S., Park H. S., Lee J. H., Koo B.-N. The effects of perioperative anesthesia and analgesia on immune function in patients undergoing breast cancer resection: a prospective randomized study. Int J Med Sci. 2017; 14 (10): 970. PMID: 28924368.; Buckley A., McQuaid S., Johnson P., Buggy D. J. Effect of anaesthetic technique on the natural killer cell anti-tumour activity of serum from women undergoing breast cancer surgery: a pilot study. Br J Anaesth. 2014; 113 (suppl_1): i56–62. PMID: 25009196.; Ситкин С. И. Возможности ингаляционных анестетиков в блокировании чрезмерной воспалительной реакции: обзор литературы. Вестник Интенсивной Терапии Имени А И Салтанова. 2022; 2022 (3): 102–110.; Ackerman R. S., Luddy K. A., Icard B. E., Piñeiro Fernández J., Gatenby R. A., Muncey A. R. The effects of anesthetics and perioperative medications on immune function: a narrative review. Anesth Analg. 2021; 133 (3): 676–689. DOI:10.1213/ANE.0000000000005607. PMID: 34100781.; Лихванцев В. В., Ландони Д., Субботин В. В., Каданцева К. К., Жукова Л. А., Ядгаров М. Я., Белетти А., с соавт. Влияние выбора метода анестезии на иммунный ответ пациенток, перенесших радикальную операцию по поводу рака молочной железы (мета-анализ сравнительных клинических исследований). Общая Реаниматология. 2022; 18 (4): 20–28.; Kadantseva K., Subbotin V., Akchulpanov R., Berikashvili L., Yadgarov M., Zhukova L., Kvetenadze G., et al. The impact of inhalation versus total intravenous anesthesia on the immune status in patients undergoing breast cancer surgery: a double-blind randomized clinical trial (TeMP). Front Oncol. 2024; 14. DOI:10.3389/fonc.2024.1401910. PMID: 39132502.; Resources for Correlation > Spearmans Correlation Coefficient from statstutor n.d.: https://www.statstutor.ac.uk/topics/correlation/spearmans-correlation-coefficient/ (accessed July 29, 2024).; Snyder G. L., Greenberg S. Effect of anaesthetic technique and other perioperative factors on cancer recurrence. Br J Anaesth. 2010; 105 (2): 106–115. PMID: 20627881.; Rossaint J., Zarbock A. Perioperative inflammation and its modulation by anesthetics. Anesth Analg. 2018; 126 (3): 1058–1067. DOI:10.1213/ANE.0000000000002484. PMID: 28922235.; Stollings L. M., Jia L.-J., Tang P., Dou H., Lu B., Xu Y. Immune modulation by volatile nesthetics. Anesthesiology. 2016; 125 (2): 399–411. DOI:10.1097/ALN.0000000000001195. PMID: 27286478.; Kvarnström A. L., Sarbinowski R. T., Bengtson J.-P., Jacobsson L. M., Bengtsson A. L. Complement activation and interleukin response in major abdominal surgery. Scand J Immunol. 2012; 75 (5): 510–516. DOI:10.1111/j.1365-3083.2012.02672.x. PMID: 22229650.; Vivier E., Tomasello E., Baratin M., Walzer T., Ugolini S. Functions of natural killer cells. Nat Immunol. 2008; 9 (5): 503–510. DOI:10.1038/ni1582. PMID: 18425107.; Griffith C. D., Kamath M. B. Effect of halothane and nitrous oxide anaesthesia on natural killer lymphocytes from patients with benign and malignant breast disease. Br J Anaesth. 1986; 58 (5): 540–543. DOI:10.1093/bja/58.5.540. PMID: 3964519.; Ferlazzo G., Morandi B. Cross-talks between natural killer cells and distinct subsets of dendritic cells. Front Immunol. 2014; 5: 159. DOI:10.3389/fimmu.2014.00159. PMID: 24782864.; Jafarzadeh A., Hadavi M., Hassanshahi G., Rezaeian M., Vazirinejad R. General anesthetics on immune system cytokines: a narrative review article. Anesthesiol Pain Med. 2020; 10 (4): e103033. DOI:10.5812/aapm.103033. PMID: 33134146.; Chaudhry A., Rudra D., Treuting P., Samstein R. M., Liang Y., Kas A., Rudensky A. Y. CD4+ regulatory T cells control TH17 responses in a Stat3-dependent manner. Science. 2009; 326 (5955): 986–991. DOI:10.1126/science.1172702. PMID: 19797626.; Perry N., Wigmore T. Propofol (TIVA) versus volatile-based anesthetics: is there any oncological benefit? Curr Anesthesiol Rep. 2018; 8. DOI:10.1007/s40140-018-0296-z.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2517

  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal
  8. 8
    Academic Journal

    Πηγή: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 119-125 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 119-125

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907830-38-7; https://phsreda.com/e-articles/10590/Action10590-112102.pdf; Дементьева Е.А. Гуморальный иммунный ответ при атопическом дерматите у детей / Е.А. Дементьева, О.П. Гурина, А.Е. Блинов [и др.] // Медицина: теория и практика. – 2019. – №3 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/gumoralnyy-immunnyy-otvet-pri-atopicheskom-dermatite-u-detey (дата обращения: 11.03.2024).; Дементьева Е.А. Цитометрический анализ показателей клеточной дисфункции при атопическом дерматите у детей / Е.А. Дементьева, О.П. Гурина, А.Е. Блинов [и др.] // Медицина: теория и практика. – 2019. – №3 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/tsitometricheskiy-analiz-pokazateley-kletochnoy-disfunktsii-pri-atopicheskom-dermatite-u-detey (дата обращения: 12.03.2024). – EDN TKSNKI; Дементьева Е.А. Особенности клеточного и гуморального иммунитета при атопическом дерматите у детей первого года жизни / Е.А. Дементьева, О.П. Гурина, А.Е. Блинов [и др.] // Педиатр. – 2019. – №6 [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/osobennosti-kletochnogo-i-gumoralnogo-immuniteta-pri-atopicheskom-dermatite-u-detey-pervogo-goda-zhizni (дата обращения: 12.03.2024). – DOI 10.17816/PED10635-44. – EDN OGMGJK; Касохов Т.Б. Атопический дерматит у детей / Т.Б. Касохов, З.А. Цораева, В.В. Касохова [и др.] // Научное обозрение. Медицинские науки. – 2016. – №1. – С. 8–26. EDN WLXHOR; Мавлянова Ш.З. Некоторые показатели гуморального иммунного ответа на candida albicans у детей с атопическим дерматитом / Ш.З. Мавлянова, Ю.А. Алимухамедова, Г.Р. Ибрагимова [и др.] // Проблемы медицинской микологии. – 2022. – №24 (4). – С. 47–50. doi:10.24412/1999-6780-2022-4-47-50. – EDN JXYVUE; Мельник В.А. Состояние функций полиморфно-ядерных нейтрофилов при атопических дерматитах у детей / В.А. Мельник, Л.И. Слюсарь, Е.И. Беседина // Аллергические заболевания у детей: современные проблемы диагностики, терапии и реабилитации: материалы научно-практической конференции (декабрь, 1998). – Новосибирск, 1998. – С. 23–30.; Моргуль Е.В. Содержание иммуноглобулина Е, гормонов и перекисей у детей с атопическим дерматитом / Е.В. Моргуль, Т.С. Колмакова, О.С. Оксенюк // Журнал фундаментальной медицины и биологии. – 2016. – №1. – С. 37–40. – EDN TWREVM; Нестерова И.В. Методы комплексной оценки функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов в норме и патологии. Методические рекомендации для иммунологов-аллергологов, врачей и биологов клинической лабораторной диагностики / И.В. Нестерова, Г.А. Чудилова, С.В. Ковалева [и др.]. – Краснодар, 2017. – С. 8.; Самойликов П.В. IgE- и IgG-аутореактивность у детей с атопическим дерматитом / П.В. Самойликов, В.Б. Гервазиева, С.А. Кожевников // Российский вестник перинатологии и педиатрии. – 2012. – №1. – С. 97–103. – EDN PBBPOD; Chen K., Magri G., Grasset E.K. [et al.] Rethinking mucosal antibody responses: IgM, IgG and IgD join IgA. Nat Rev Immunol 20, 427–441 (2020). https://doi.org/10.1038/s41577-019-0261-1.; Odales J., Valle J.G., Martínez-Cortés F., Manoutcharian K. Immunogenic properties of immunoglobulin superfamily members within complex biological networks // Cell Immunol. 2020. Dec; 358:104235.; https://phsreda.com/article/112102/discussion_platform

  9. 9
    Academic Journal

    Συνεισφορές: Данное исследование выполнено при финансовой поддержке АНО «Московский Центр Инновационных Технологий в Здравоохранении» (грант на реализацию научно-практического проекта в сфере медицины: «Разработка методов регенеративной и клеточной терапии заболеваний и повреждений центральной нервной системы»).

    Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 27, № 2 (2025); 303-310 ; Медицинская иммунология; Том 27, № 2 (2025); 303-310 ; 2313-741X ; 1563-0625

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3037/2037; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14035; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14036; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14037; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14038; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14039; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14040; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14041; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14042; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14043; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14044; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/3037/14374; Гришина В.В. Пуповинная кровь – источник стволовых клеток // Онкогематология, 2007. № 3. С. 56-60.; Масчан А.А., Масчан М.А., Новичкова Г.А., Румянцев А.Г., Калинина И.И. Острые миелоидные лейкозы: клинические рекомендации. М., 2020. 55 с. Режим доступа: https://oncology.ru/specialist/treatment/references/actual/586.pdf.; Морозова Я.В., Смирнов В.Н., Макаров И.В., Емелина Д.А. Применение ядросодержащих клеток пу повинной крови в лечении регрессивного аутизма: клинический случай // Consortium Psychiatricum, 2023. Т. 4, № 4. С. 39-47.; Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть 1 / Под ред. А.Н. Миронова. М.: Гриф и К, 2012. С. 94-115.; Смирнов В.Н., Незнанов Н.Г., Морозова Я.В., Макаров И.В., Емелина Д.А., Гасанов Р.Ф., Базанович С.А. Применение концентрата ядросодержащих клеток пуповинной крови у детей с аутизмом: безопасность и эффективность метода // Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпу ски, 2021. Т. 121, № 11-2. С. 31-37.; Шаманская Т.В., Осипова Е.Ю., Румянцев С.А. Ex vivo экспансия гемопоэтических стволовых кле ток пуповинной крови (обзор литературы) // Онкогематология, 2012. № 1. С. 35-45.; Arisz L., Noble B., Milgrom M., Brentjens J.R., Andres G.A. Experimental chronic serum sickness in rats. A model of immune complex glomerulonephritis and systemic immune complex deposition. Int. Arch. Allergy Appl. Immunol., 1979, Vol. 60, no. 1, pp. 80-88.; Barker J.N., Wagner J.E. Umbilical cord blood transplantation: current state of the art. Curr. Opin. Oncol., 2002, Vol. 14, no. 2, pp. 160-164.; Gierlikowska B., Stachura A., Gierlikowski W., Demkow U. The impact of cytokines on neutrophils’ phagocytosis and NET formation during sepsis-a review. Int J Mol Sci., 2022, Vol. 23, no. 9, 5076. doi:10.3390/ijms23095076.; Glenn J.D., Whartenby K.A. Mesenchymal stem cells: Emerging mechanisms of immunomodulation and therapy. World J. Stem Cells, 2014, Vol. 6, Iss. 5, pp. 526-539.; Gluckman E., Broxmeyer H.A., Auerbach A.D., Friedman H.S., Douglas G.W., Devergie A., Esperou H., Thierry D., Socie G., Lehn P., Cooper S., English D., Kurtzberg J., Bard J., Boyse E.A. Hematopoietic reconstitution in a patient with Fanconi’s anemia by means of umbilical-cord blood from an HLA-identical sibling. N. Engl. J. Med., 1989, Vol. 321, pp. 1174-1178.; González-González A., García-Sánchez D., Dotta M., Rodríguez-Rey J.C., Pérez-Campo F.M. Mesenchymal stem cells secretome: The cornerstone of cell-free regenerative medicine. World J. Stem Cells., 2020, Vol. 12, Iss. 12, pp. 1529-1552.; Han J., Wu J., Silke J. An overview of mammalian p38 mitogen-activated protein kinases, central regulators of cell stress and receptor signaling. F1000Res., 2020, Vol. 9, F1000 Faculty Rev-653. doi:10.12688/f1000research.22092.1.; Jiang W., Xu J. Immune modulation by mesenchymal stem cells. Cell Prolif., 2020, Vol. 53, no. 1, e12712. doi:10.1111/cpr.12712.; Niederwieser D., Baldomero H., Bazuaye N., Bupp C., Chaudhri N., Corbacioglu S., Elhaddad A., Frutos C., Galeano S., Hamad N., Hamidieh A.A., Hashmi S., Ho A., Horowitz M.M., Iida M., Jaimovich G., Karduss A., Kodera Y., Kröger N., Péffault de Latour R., Lee J.W., Martínez-Rolón J., Pasquini M.C., Passweg J., Paulson K., Seber A., Snowden J.A., Srivastava A., Szer J., Weisdorf D., Worel N., Koh M.B.C., Aljurf M., Greinix H., Atsuta Y., Saber W. One and a half million hematopoietic stem cell transplants: continuous and differential improvement in worldwide access with the use of non-identical family donors. Haematologica, 2021, Vol. 107, no. 5, pp. 1045-1053.; Ray S.K., Mukherjee S. Clinical practice of umbilical cord blood stem cells in transplantation and regenerative medicine – prodigious promise for imminent times. Recent Pat. Biotechnol., 2022, Vol. 16, no. 1, pp. 16-34.; Romanov Y.A., Tarakanov O.P., Radaev S.M., Dugina T.N., Ryaskina S.S., Darevskaya A.N., Morozova Ya.V., Khachatryan W.A., Lebedev K.E., Zotova N.S., Burkova A.S., Sukhikh G.T., Smirnov V.N. Human allogeneic AB0/Rh-identical umbilical cord blood cells in the treatment of juvenile patients with cerebral palsy. Cytotherapy, 2015, Vol. 17, no. 7, pp. 969-978.; Sanz J., Veys P., Rocha V. Umbilical cord blood transplantation in children and adults. In: Carreras E., Dufour C., Mohty M., Kröger N., editors. The EBMT Handbook: Hematopoietic Stem Cell Transplantation and Cellular Therapies. 7th edition. Cham (CH): Springer; 2019. Chapter 64. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK554021/.; Sun L., Sha J., Meng C., Zhu D. Mesenchymal stem cell-based therapy for allergic rhinitis. Stem Cells Int., 2020, Vol. 2020, 2367524. doi:10.1155/2020/2367524.; Ternovoy S., Ustyuzhanin D., Morozova Y., Shariya M., Roldan-Valadez E., Smirnov V. Functional MRI evince the safety and efficacy of umbilical cord blood cells therapy in patients with schizophrenia. Schizophr. Res., 2020, Vol. 224, pp. 175-177.; Thornton T.M., Rincon M. Non-classical p38 map kinase functions: cell cycle checkpoints and survival. Int. J. Biol. Sci., 2009, Vol. 5, no. 1, pp. 44-51.; Vanegas D., Galindo C.C., Páez-Gutiérrez I.A., González-Acero L.X., Medina-Valderrama P.T., Lozano J.C., Camacho-Rodríguez B., Perdomo-Arciniegas A.M. Human Leukocyte Antigen and Red Blood Cells Impact Umbilical Cord Blood CD34+ Cell Viability after Thawing. Int. J. Mol. Sci., 2019, Vol. 20, no. 19, 4875. doi:10.3390/ijms20194875.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/3037

  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Συγγραφείς: SAKHELASHVILI-BIL, Olha, PLATONOVA, Iryna

    Πηγή: Bulletin of the Academy of Sciences of Moldova. Medical Sciences; Vol. 77 No. 3 (2023): Medical Sciences; 94-102 ; Buletinul Academiei de Științe a Moldovei. Științe medicale; Vol. 77 Nr. 3 (2023): Ştiinţe medicale; 94-102 ; Вестник Академии Наук Молдовы. Медицина; Том 77 № 3 (2023): Медицина; 94-102 ; 1857-0011

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  12. 12
    Academic Journal

    Συγγραφείς: Borysenko, M.I.

    Πηγή: Zdorovʹe Rebenka, Vol 11, Iss 3.71, Pp 40-44 (2016)
    CHILD`S HEALTH; № 3.71 (2016); 40-44
    Здоровье ребенка-Zdorovʹe rebenka; № 3.71 (2016); 40-44
    Здоров'я дитини-Zdorovʹe rebenka; № 3.71 (2016); 40-44

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal
  17. 17
  18. 18
  19. 19
    Academic Journal

    Συνεισφορές: Not specified, Отсутствует

    Πηγή: Current Pediatrics; Том 22, № 5 (2023); 415-424 ; Вопросы современной педиатрии; Том 22, № 5 (2023); 415-424 ; 1682-5535 ; 1682-5527

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf; application/msword

    Relation: https://vsp.spr-journal.ru/jour/article/view/3303/1323; https://vsp.spr-journal.ru/jour/article/view/3303/1334; Oji V, Tadini G, Akiyama M, et al. Revised nomenclature and classification of inherited ichthyoses: results of the First Ichthyosis Consensus Conference in Sorèze 2009. J Am Acad Dermatol. 2010;63(4):607–641. doi: https://doi.org/10.1016/j.jaad.2009.11.020; Richard G. Autosomal Recessive Congenital Ichthyosis. 2001 Jan 10 [Updated 2023 Apr 20]. In: GeneReviews® [Internet]. Adam MP, Mirzaa GM, Pagon RA, et al., eds. Seattle (WA): University of Washington, Seattle; 1993–2023. Available online: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK1420. Accessed on October 19, 2023.; Мурашкин Н.Н., Аветисян К.О., Иванов Р.А., Макарова C.Г. Врожденный ихтиоз: клинико-генетические характеристики заболевания // Вопросы современной педиатрии. — 2022. — Т. 21. — № 5. — С. 362–377. — doi: https://doi.org/10.15690/vsp.v21i5.2459; Sun Q, Burgren NM, Cheraghlou S, et al. The Genomic and Phenotypic Landscape of Ichthyosis: An Analysis of 1000 Kindreds. JAMA Dermatol. 2022;158(1):16–25. doi: https://doi.org/10.1001/jamadermatol.2021.4242; Ихтиоз у детей: клинические рекомендации. — Союз педиатров России; 2016. — С. 6.; Lee AY. Molecular Mechanism of Epidermal Barrier Dysfunction as Primary Abnormalities. Int J Mol Sci. 2020;21(4):1194. doi: https://doi.org/10.3390/ijms21041194; Malik K, He H, Huynh TN, et al. Ichthyosis molecular fingerprinting shows profound TH17 skewing and a unique barrier genomic signature. J Allergy Clin Immunol. 2019;143(2):604–618. doi: https://doi.org/10.1016/j.jaci.2018.03.021; Кондратенко И.В., Бологов А.А. Первичные иммунодефициты: учебное пособие. — М.: ИндексМед Медиа; 2020. — С. 31.; Czarnowicki T, He H, Leonard A, et al. The Major Orphan Forms of Ichthyosis Are Characterized by Systemic T-Cell Activation and Th-17/Tc-17/Th-22/Tc-22 Polarization in Blood. J Invest Dermatol. 2018;138(10):2157–2167. doi: https://doi.org/10.1016/j.jid.2018.03.1523; Paller AS, Renert-Yuval Y, Suprun M, et al. An IL-17-dominant immune profile is shared across the major orphan forms of ichthyosis. J Allergy Clin Immunol. 2017;139(1):152–165. doi: https://doi.org/10.1016/j.jaci.2016.07.019; Mazereeuw-Hautier J, Vahlquist A, Traupe H, et al. Management of congenital ichthyoses: European guidelines of care, part one. Br J Dermatol. 2019;180(2):272–281. doi: https://doi.org/10.1111/bjd.17203; Mazereeuw-Hautier J, Hernández-Martín A, O’Toole EA, et al. Management of congenital ichthyoses: European guidelines of care, part two. Br J Dermatol. 2019;180(3):484–495. doi: https://doi.org/10.1111/bjd.16882; Youssefian L, Vahidnezhad H, Saeidian AH, et al. Autosomal recessive congenital ichthyosis: Genomic landscape and phenotypic spectrum in a cohort of 125 consanguineous families. Hum Mutat. 2019;40(3):288–298. doi: https://doi.org/10.1002/humu.23695; Sabat R, Wolk K, Loyal L, et al. T cell pathology in skin inflammation. Semin Immunopathol. 2019;41(3):359–377. doi: https://doi.org/10.1007/s00281-019-00742-7; Купцова Д.Г., Радыгина Т.В., Курбатова О.В. и др. Содержание субпопуляций CD4+T-клеток в прогнозе эффективности биологической терапии псориаза у детей // Медицинская иммунология. — 2023. — Т. 25. — № 5. — С. 1071–1078. — doi: https://doi.org/10.15789/1563-0625-COC-2704; Mansouri Y, Guttman-Yassky E. Immune Pathways in Atopic Dermatitis, and Definition of Biomarkers through Broad and Targeted Therapeutics. J Clin Med. 2015;4(5):858–873. doi: https://doi.org/10.3390/jcm4050858; Мурашкин Н.Н., Опрятин Л.А., Епишев Р.В. и др. Новая эра в лечении атопического дерматита: результаты длительного применения дупилумаба // Вопросы современной педиатрии. — 2021. — Т. 20. — № 5. — С. 390–395. — doi: https://doi.org/10.15690/vsp.v20i5.2312; Купцова Д.Г., Петричук С.В., Мурашкин Н.Н. и др. Ранние предикторы эффективности биологической терапии псориаза у детей // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2023. — № 1. — С. 49–52. — doi: https://doi.org/10.53529/2500-11752023-1-49-52; Tausend W, Downing C, Tyring S. Systematic review of interleukin-12, interleukin-17, and interleukin-23 pathway inhibitors for the treatment of moderate-to-severe chronic plaque psoriasis: ustekinumab, briakinumab, tildrakizumab, guselkumab, secukinumab, ixekizumab, and brodalumab. J Cutan Med Surg. 2014;18(3):156–169. doi: https://doi.org/10.2310/7750.2013.13125; Menter A, Strober BE, Kaplan DH, et al. Joint AAD-NPF guidelines of care for the management and treatment of psoriasis with biologics. J Am Acad Dermatol. 2019;80(4):1029–1072. doi: https://doi.org/10.1016/j.jaad.2018.11.057; Wollenberg A, Thomsen SF, Lacour JP, et al. Targeting immunoglobulin E in atopic dermatitis: A review of the existing evidence. World Allergy Organ J. 2021;14(3):100519. doi: https://doi.org/10.1016/j.waojou.2021.100519; Agache I, Akdis CA, Akdis M, et al. EAACI Biologicals Guidelinesdupilumab for children and adults with moderate-to-severe atopic dermatitis. Allergy. 2021;76(4):988–1009. doi: https://doi.org/10.1111/all.14690; Bieber T. Interleukin-13: Targeting an underestimated cytokine in atopic dermatitis. Allergy. 2020;75(1):54–62. doi: https://doi.org/10.1111/all.13954; Ghoreschi K, Balato A, Enerbäck C, Sabat R. Therapeutics targeting the IL-23 and IL-17 pathway in psoriasis. Lancet. 2021;397(10275):754–766. doi: https://doi.org/10.1016/s0140-6736(21)00184-7; Briot A, Deraison C, Lacroix M, et al. Kallikrein 5 induces atopic dermatitis-like lesions through PAR2-mediated thymic stromal lymphopoietin expression in Netherton syndrome. J Exp Med. 2009;206(5):1135–1147. doi: https://doi.org/10.1084/jem.20082242; Reche PA, Soumelis V, Gorman DM, et al. Human thymic stromal lymphopoietin preferentially stimulates myeloid cells. J Immunol. 2001;167(1):336–343. doi: https://doi.org/10.4049/jimmunol.167.1.336; Fontao L, Laffitte E, Briot A, et al. Infliximab infusions for Netherton syndrome: sustained clinical improvement correlates with a reduction of thymic stromal lymphopoietin levels in the skin. J Invest Dermatol. 2011;131(9):1947–1950. doi: https://doi.org/10.1038/jid.2011.124; Кондратенко И.В., Бологов А.А. Первичные иммунодефициты: учебное пособие. — М.: ИндексМед Медиа; 2020. — С. 117–120.; Eränkö E, Ilander M, Tuomiranta M, et al. Immune cell phenotype and functional defects in Netherton syndrome. Orphanet J Rare Dis. 2018;13(1):213. doi: https://doi.org/10.1186/s13023-018-0956-6; Hannula-Jouppi K, Laasanen SL, Ilander M, et al. Intrafamily and Interfamilial Phenotype Variation and Immature Immunity in Patients With Netherton Syndrome and Finnish SPINK5 Founder Mutation. JAMA Dermatol. 2016;152(4):435–442. doi: https://doi.org/10.1001/jamadermatol.2015.5827; Paller AS. Profiling Immune Expression to Consider Repurposing Therapeutics for the Ichthyoses. J Invest Dermatol. 2019;139(3): 535–540. doi: https://doi.org/10.1016/j.jid.2018.08.027; Paller AS, Czarnowicki T, Renert-Yuval Y, et al. The spectrum of manifestations in desmoplakin gene (DSP) spectrin repeat 6 domain mutations: Immunophenotyping and response to ustekinumab. J Am Acad Dermatol. 2018;78(3):498–505.e2. doi: https://doi.org/10.1016/j.jaad.2017.10.026; Luchsinger I, Knöpfel N, Theiler M, et al. Secukinumab Therapy for Netherton Syndrome. JAMA Dermatol. 2020;156(8):907–911. doi: https://doi.org/10.1001/jamadermatol.2020.1019; Yogarajah J, Gouveia C, Iype J, et al. Efficacy and safety of secukinumab for the treatment of severe ABCA12 deficiencyrelated ichthyosis in a child. Skin Health Dis. 2021;1(2):e25. doi: https://doi.org/10.1002/ski2.25

  20. 20
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The article was prepared based on the materials of studies carried out within the framework of the Grant of the Kazan State Medical University of the Ministry of Health of Russia No. 2/22–1 dated August 1, 2022 “Clinical and laboratory predictors of post-COVID conditions in different age groups”, Статья подготовлена по материалам исследований, выполненных в рамках гранта ФГБОУ ВО Казанского ГМУ Минздрава России № 2/22–1 от 1.08.2022 года «Клинико-лабораторные предикторы постковидных состояний в разных возрастных группах».

    Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 68, № 5 (2023); 37-44 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 68, № 5 (2023); 37-44 ; 2500-2228 ; 1027-4065

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1872/1411; Sehrawat S., Kumar D., Rouse B.T. Herpesviruses: Harmonious Pathogens but Relevant Cofactors in Other Diseases? Front Cell Infect Microbiol 2018; 25(8): 177. DOI:10.3389/fcimb.2018.00177; Barton E., White D., Cathelyn J., Brett-McClellan K.A., Engle M., Diamond M.S. et al. Herpesvirus latency confers symbiotic protection from bacterial infection. Nature 2007; 447: 326–329. DOI:10.1038/nature05762; Litjens N., van der Wagen L., Kuball J., Kwekkeboom J. Potential Beneficial Effects of Cytomegalovirus Infection after Transplantation. Front Immunol 2018; 1(9): 389. DOI:10.3389/fimmu.2018.00389; Paces J., Strizova Z., Smrz D., Cerny J. COVID-19 and the immune system. Physiol Res 2020; 69(3): 379–388. DOI:10.33549/physiolres.934492; Khairallah C., Déchanet-Merville J., Capone M. γδ T Cell-Mediated Immunity to Cytomegalovirus Infection. Front Immunol. 2017; 8: 105. DOI:10.3389/fimmu.2017.00105; Shafiee A., Teymouri Athar M.M., Amini M.J., Hajishah H., Siahvoshi S., Jalali M. et al. Reactivation of herpesviruses during COVID-19: A systematic review and meta-analysis. Rev Med Virol 2023; 33(3): e2437. DOI:10.1002/rmv.2437; Chen J., Song J., Dai L., Post S.R., Qin Z. SARS-CoV-2 infection and lytic reactivation of herpesviruses: A potential threat in the postpandemic era? J Med Virol 2022; 94(11): 5103–5111. DOI:10.1002/jmv.27994; Banko A., Miljanovic D., Cirkovic A. Systematic review with meta-analysis of active herpesvirus infections in patients with COVID-19: Old players on the new field. Int J Infect Dis 2023; 130: 108–125. DOI:10.1016/j.ijid.2023.01.036; Su Y., Yuan D., Chen D.G., Ng R.H., Wang K., Choi J. et al. Multiple early factors anticipate post-acute COVID-19 sequelae. Cell 2022; 185(5): 881–895.e20. DOI:10.1016/j.cell.2022.01.014; Хайдуков С.В., Байдун Л.В., Зурочка А.В., Тотолян А.А. Стандартизированная технология «исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметрованализаторов». Росcийский иммунологический журнал 2014; 8(17): 4: 974–992. DOI:10.15789/1563–0625–2012–3–255–268; Сологуб Т.В., Ледванов М.Ю., Малый В.П., Стукова Н.Ю., Романцов М.Г., Бизенкова М.Н., Полякова Т.Д. Иммунный ответ при вирусных инфекциях. Успехи современного естествознания 2009; 12: 29–33.; Sulik A., Oldak E., Kroten A., Lipska A., Radziwon P. Epstein–Barr virus effect on frequency of functionally distinct T cell subsets in children with infectious mononucleosis. Adv Med Sc. 2014; 59(2): 227–222. DOI:10.1016/j.advms.2014.04.003; Кашуба Э.А., Антонова М.В., Дроздова Т.Г., Рычкова О.А., Любимцева О.А., Ханипова Л.В. и др. Показатели клеточного и гуморального иммунитета дошкольников с инфекционным мононуклеозом при первичном инфицировании и реактивации Эпштейна–Барр вирусной инфекции. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение 2022; 11(2): 57–63. DOI:10.33029/2305–3496–2022–11–2–57–63; Moss P. The T cell immune response against SARSCoV-2. Nat Immunol 2022; 23:186–193. DOI:10.1038/s41590–021–01122-w; Lu X., Yamasaki S. Current understanding of T cell immunity against SARS-CoV-2. Inflamm Regener 2022; 42: 51. DOI:10.1186/s41232–022–00242–6