Search Results - "клеточные технологии"

Source: Eurasian Journal of Medical and Natural Sciences; Vol. 5 No. 10 Part 2 (2025): Eurasian Journal of Medical and Natural Sciences; 215-222 ; Евразийский журнал медицинских и естественных наук; Том 5 № 10 Part 2 (2025): Евразийский журнал медицинских и естественных наук; 215-222 ; Yevrosiyo tibbiyot va tabiiy fanlar jurnali; Jild 5 Nomeri 10 Part 2 (2025): Евразийский журнал медицинских и естественных наук; 215-222 ; 2181-287X

File Description: application/pdf

Relation: https://in-academy.uz/index.php/EJMNS/article/view/64709/40705

Availability: https://in-academy.uz/index.php/EJMNS/article/view/64709

View record from BASE

5

Academic Journal

Влияние DMSO-криопротектора на биологию фибробластов кожи человека в культуре in vitro ; The effect of DMSO cryoprotector on the biology of human skin fibroblasts in in vitro culture

Authors: Фирсова Наталья Викторовна, Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Natalia V. Firsova, Nauchno-issledovatel'skii tsentr fundamental'nykh i prikladnykh problem bioekologii i biotekhnologii FGBOU VO "Ul'ianovskii gosudarstvennyi pedagogicheskii universitet im. I.N. Ul'ianova", Казанцева Татьяна Николаевна, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Tatiana N. Kazantseva, Ulyanovsk State Pedagogical University named after I. N. Ulyanov, Ленгесова Наталья Анатольевна, Natal'ia A. Lengesova, Антонова Елена Ивановна, Elena I. Antonova

Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 132-135 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 132-135

Subject Terms: клеточные технологии, фибробласты, DMSO, криоконсервация, размораживание

File Description: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-64-5; https://phsreda.com/e-articles/10716/Action10716-138740.pdf; Гринчук Т.М. Влияние криоконсервации на стабильность кариотипа трансформированных фибробластов легкого китайского хомячка in vitro / Т.М. Гринчук, М.А. Шилина // Цитология. – 2021. – T. 63. №1. – С. 63–73. DOI 10.31857/S0041377121010053. EDN VYZZGU; Фибробласты дермы в фокусе современной косметологии: старение и ответ на косметологические процедуры / Л.В. Кирсанова, Е.Р. Аравийская, М.Г. Рыбакова [и др.] // Consilium Medicum. – 2024. – Т. 26. №8. – С. 541–549.; Влияние длительности хранения криоконсервированных культивированных клеток кожи человека на их жизнеспособность / Н.В. Фирсова, В.А. Савельева, Н.А. Ленгесова [и др.] // Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии: сборник материалов VI Всероссийской научно-практической конференции с международным участием / гл. ред. Е.И. Антонова. – Чебоксары: Среда, 2023. – С. 160–167. DOI 10.31483/r-106721. EDN BYMDDL; Ekpo M.D., Boafo G.F., Xie J. [et al.]. Strategies in developing dimethyl sulfoxide (DMSO)-free cryopreservation protocols for biotherapeutics // Front. Immunol. – 2022. – 13:1030965.; Gao D. [et al.]. Mitochondrial dysfunction in cryopreserved fibroblasts: Role of antioxidants // Free Radical Biology and Medicine. – 2022. – №180. – P. 1–10.; Guan H., Jia C.Y., Chen B. [et al.]. Influence of different thawing temperature on the morphology and type I collagen metabolism of the human fibroblasts processed at – 10 degrees C in vitro // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. – 2005. – №5. – P. 370–373.; Humphrey S., Brown S.M., Cross S.J. Defining skin quality: clinical relevance, terminology, and assessment // Dermatol Surg. – 2021. – Vol. 47. №7. – P. 974–981. DOI 10.1097/dss.0000000000003079. EDN LXKGLG; Naing A.H., Kim C.K. A brief review of applications of antifreeze proteins in cryopreservation and metabolic genetic engineering // Biotech. – 2019. – №9 (9) : 329.; https://phsreda.com/article/138740/discussion_platform

Availability: https://phsreda.com/article/138740/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/10716/Cover-10716.jpg?req=138740
https://doi.org/10.31483/r-138740

View record from BASE

6

Academic Journal

Технологии будущего: новые возможности для бизнеса и человечества

Subject Terms: искусственный интеллект, компьютерное зрение, технологии будущего, симуляторы, клеточные технологии, генная терапия, облачный гейминг

File Description: application/pdf

Access URL: https://elib.belstu.by/handle/123456789/68305

7

Academic Journal

Философский аспект технологизации человека с использованием методов регенеративной медицины ; Philosophical aspect of human technologization using regenerative medicine methods

Authors: Ivanov, V. A., Knyazev, V. M., Иванов, В. А., Князев, В. М.

Source: Сборник статей

Subject Terms: PHILOSOPHY, CELLULAR TECHNOLOGIES, TECHNOLOGIZATION, REGENERATIVE MEDICINE, HUMAN IDENTITY, ФИЛОСОФИЯ, КЛЕТОЧНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ, ТЕХНОЛОГИЗАЦИЯ, РЕГЕНЕРАТИВНАЯ МЕДИЦИНА, ИДЕНТИЧНОСТЬ ЧЕЛОВЕКА

File Description: application/pdf

Relation: Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения : Сборник статей IX Международной научно-практической конференции молодых ученых и студентов, 17-18 апреля 2024 г. Т. 1.; http://elib.usma.ru/handle/usma/21318

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/21318

View record from BASE

8

Academic Journal

Биотехнология в биомедицине: прогресс и перспективы

Authors: Мустафаев, Хусен Мамедкулович, Яхёева, Моҳинабону Равшановна

Source: Science and Education; Vol. 4 No. 12 (2023): Science and Education; 118-128 ; 2181-0842

Subject Terms: биотехнологии, биомедицина, прогресс, перспективы, генетическая инженерия, клеточные технологии

File Description: application/pdf

Relation: https://openscience.uz/index.php/sciedu/article/view/6458/5878; https://openscience.uz/index.php/sciedu/article/view/6458

Availability: https://openscience.uz/index.php/sciedu/article/view/6458

View record from BASE

9

Academic Journal

Mesenchymal stromal cells based bioengineered implants in vocal folds and tympanic membrane restoration (рilot experimental results) ; Биоинженерные импланты на основе мезенхимных стромальных клеток в восстановлении повреждений голосовых складок и барабанной перепонки (пилотные экспериментальные результаты)

Contributors: The work was supported by the Russian Science Foundation No. 21-15-00339, Работа выполнена при поддержке Российского научного фонда №21-15-00339.

Source: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 7 (2024); 110-121 ; Медицинский Совет; № 7 (2024); 110-121 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Subject Terms: сфероид, chronic otitis media, vocal fold scars, cellular technologies, spheroid, хронический средний отит, рубцы голосовых складок, клеточные технологии

File Description: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8285/7307; Seonwoo H, Kim SW, Kim J, Chunjie T, Lim KT, Kim YJ et al. Regeneration of chronic tympanic membrane perforation using an EGF-releasing chitosan patch. Tissue Eng Part A. 2013;19(17-18):2097–2107. https://doi.org/10.1089/TEN.TEA.2012.0617.; Rana AK, Upadhyay D, Yadav A, Prasad S. Correlation of Tympanic Membrane Perforation with Hearing Loss and Its Parameters in Chronic Otitis Media: An Analytical Study. Indian J Otolaryngol Head Neck Surg. 2020;72(2):187–193. https://doi.org/10.1007/s12070-019-01740-9.; Hussain Z, Pei R. Necessities, opportunities, and challenges for tympanic membrane perforation scaffolding-based bioengineering. Biomed Mater. 2021;16(3). https://doi.org/10.1088/1748-605X/ABCF5D.; Aleemardani M, Bagher Z, Farhadi M, Chahsetareh H, Najafi R, Eftekhari B et al. Can Tissue Engineering Bring Hope to the Development of Human Tympanic Membrane? Tissue Eng Part B Rev. 2021;27(6):572–589. https://doi.org/10.1089/TEN.TEB.2020.0176.; Нажмудинов ИИ, Вавин ВВ, Давудов ХШ, Гаращенко ТИ, Давудова БХ, Магомедова КМ, Хоранова МЮ. Варианты хирургического лечения рубцовых стенозов среднего (складкового) отдела гортани. Медицинский совет. 2019;(21):118–125. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2019-21-118-125.; Гаращенко ТИ, Назарочкин ЮВ, Бойкова НЭ, Стройков МА, Аведисян ВЭ. Осложнения интубации трахеи и трахеотомии после длительной искусственной вентиляции легких у детей. Вопросы практической педиатрии. 2015;10(5):68–72. Режим доступа: https://www.phdynasty.ru/katalog/zhurnaly/voprosy-prakticheskoy-pediatrii/2015/tom-10-nomer-5/26761.; Friedrich G, Dikkers FG, Arens C, Remacle M, Hess M, Giovanni A et al. Vocal fold scars: Current concepts and future directions. Consensus report of the phonosurgery committee of the European laryngological society. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2013;270(9):2491–2507. https://doi.org/10.1007/S00405-013-2498-9.; Hantzakos A, Dikkers FG, Giovanni A, Benninger MS, Remacle M, Sjögren EV, Woo P. Vocal fold scars: a common classification proposal by the American Laryngological Association and European Laryngological Society. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2019;276(8):2289–2292. https://doi.org/10.1007/s00405-019-05489-3.; Hirano S. Current treatment of vocal fold scarring. Curr Opin Otolaryngol Head Neck Surg. 2005;13(3):143–147. https://doi.org/10.1097/01.moo.0000162261.49739.b7.; Ремакль М, Эккель ХЭ, Янова ЮК (ред.). Хирургия гортани и трахеи. М.: БИНОМ; 2014. 198 с. Режим доступа: https://glavkniga.su/filecont/50071.pdf; Maharajan N, Cho GW, Jang CH. Application of mesenchymal stem cell for tympanic membrane regeneration by tissue engineering approach. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2020;133. https://doi.org/10.1016/J.IJPORL.2020.109969.; Azimi B, Milazzo M, Danti S. Cellulose-Based Fibrous Materials From Bacteria to Repair Tympanic Membrane Perforations. Front Bioeng Biotechnol. 2021;9:669863. https://doi.org/10.3389/fbioe.2021.669863.; Fisch U, May JS, Linder T. Tympanoplasty, Mastoidectomy, and Stapes Surgery, 2nd edn. Ann R Coll Surg Engl. 2010;92(1):81. Available at: https://www.researchgate.net/publication/317058345_Tympanoplasty_Mastoidectomy_and_Stapes_Surgery_2nd_edn.; Zahnert T, Bornitz M, Hüttenbrink KB. Acoustic and mechanical properties of tympanic membrane transplants. Laryngorhinootologie. 1997;76(12):717–723. https://doi.org/10.1055/S-2007-997513.; Heermann H. Tympanoplasty with fascial tissue taken from the temporal muscle after straightening the anterior wall of the auditory meatus. HNO. 1961;9:136–137. Available at: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/13712731/.; Villar-Fernandez MA, Lopez-Escamez JA. Outlook for Tissue Engineering of the Tympanic Membrane. Audiol Res. 2015;5(1):117. https://doi.org/10.4081/AUDIORES.2015.117.; Крюков АИ, Гуров АВ, Кирасирова ЕА, Кулабухов ЕВ. Современные методы профилактики и терапии осложнений при реконструктивной хирургии у пациентов со стенозом гортани и трахеи. Вестник оториноларингологии. 2019;84(6)48–53. https://doi.org/10.17116/otorino20198406148.; Benninger MS, Alessi D, Archer S, Bastian R, Ford C, Koufman J et al. Vocal fold scarring: current concepts and management. Otolaryngol Head Neck Surg. 1996;115(5):474–482. https://doi.org/10.1177/019459989611500521.; Remacle M, Lawson G, Hedayat A, Trussart C, Jamart J. Medialization framework surgery for voice improvement after endoscopic cordectomy. Eur Arch Otorhino laryngol. 2001;258(6):267–271. https://doi.org/10.1007/s004050100350.; Martínez Arias À, Remacle M, Lawson G. Treatment of vocal fold scar by carbon dioxide laser and collagen injection: retrospective study on 12 patients. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2010;267(9):1409–1414. https://doi.org/10.1007/s00405-010-1231-1.; Finck CL, Harmegnies B, Remacle A, Lefebvre P. Implantation of esterified hyaluronic acid in microdissected Reinke’s space after vocal fold microsurgery: shortand long-term results. J Voice. 2010;24(5):626–635. https://doi.org/10.1016/J.JVOICE.2008.12.015.; Mortensen MM, Woo P, Ivey C, Thompson C, Carroll L, Altman K. The Use of the Pulse Dye Laser in the Treatment of Vocal Fold Scar: A Preliminary Study. Laryngoscope. 2008;118(10):1884–1888. https://doi.org/10.1097/MLG.0b013e31817d7546.; Neuenschwander MC, Sataloff RT, Abaza MM, Hawkshaw MJ, Reiter D, Spiegel JR. Management of Vocal Fold Scar with Autologous Fat Implantation. J Voice. 2001;15(2):295–304. https://doi.org/10.1016/S0892-1997(01)00031-5.; Sataloff RT, Spiegel JR, Heuer RJ, Baroody MM, Emerich KA, Hawkshaw MJ, Rosen DC. Laryngeal mini-microflap: a new technique and reassessment of the microflap saga. J Voice. 1995;9(2):198–204. https://doi.org/10.1016/S0892-1997(05)80253-X.; Schneider B, Denk D, Bigenzahn W. Functional Results After External Vocal Fold Medialization Thyroplasty With the Titanium Vocal Fold Medialization Implant. Laryngoscope. 2003;113(4):628–634. https://doi.org/10.1097/00005537-200304000-00008.; Sulica L, Rosen CA, Postma GN, Simpson B, Amin M, Courey M, Merati A. Current practice in injection augmentation of the vocal folds: indications, treatment principles, techniques, and complications. Laryngoscope. 2010;120(2):319–325. https://doi.org/10.1002/LARY.20737.; Tsunoda K, Kondou K, Kaga K, Niimi S, Baer T, Nishiyama K, Hirose H. Autologous Transplantation of Fascia into the Vocal Fold: Long‐Term Result of Type‐1 Transplantation and the Future. Laryngoscope. 2005;115(S108):1–10. https://doi.org/10.1097/01.mlg.0000183966.72921.31.; Вавин ВВ, Давудов ХШ, Гаращенко ТИ, Юнусов АС, Нажмудинов ИИ, Поляков ДП. Использование СО2-лазера в эндоларингеальной хирургии постинтубационных стенозов гортани у детей. Вопросы практической пе диатрии. 2019;14(5):34–38. https://doi.org/10.20953/1817-7646-2019-5-34-38.; Вавин ВВ, Нажмудинов ИИ, Давудов ХШ, Гаращенко ТИ, Давудова БХ, Магомедова КМ, Хоранова МЮ. Микрохирургия хронических постинтубационных стенозов гортани с использованием СО2-лазера. Медицинский совет. 2020;(6):132–138. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-6-132-138.; Вавин ВВ, Нажмудинов ИИ, Давудов ХШ, Гаращенко ТИ, Давудова БХ, Магомедова КМ, Хоранова МЮ. Особенности применения СО2-лазера при хирургическом лечении хронических рубцовых стенозов гортани. Медицинский совет. 2020;(6):108–113. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-6-108-113.; Нажмудинов ИИ, Гусейнов ИГ, Давудов ХШ, Магомедова КМ, Вавин ВВ, Давудова БХ и др. Cпособ лечения рубцового стеноза голосового отдела гортани в области передней комиссуры. Патент RU 2729354 С1, 05.12.2019. Режим доступа: https://i.moscow/patents/ru2729354c1_20200807.; Захарова МЛ, Павлов ПВ. Cпособ ларинготрахеопластики при сочетанных межголосовых и подголосовых стенозах гортани. Патент RU 2665458 С1, 29.08.2018. Режим доступа: https://patenton.ru/patent/RU2665458C1.pdf.; Крюков АИ, Кунельская НЛ, Кирасирова ЕА, Пиминиди ОК, Лафуткина НВ, Мамедов РФ. Способ послеоперационного протезирования голосового отдела гортани после ларингопластики и стент для его осуществления. Патент RU 2609777 С, 03.02.2017. Режим доступа: https://i.moscow/patents/ru2609777c1_20170203.; Цветков ЭА, Павлов ПВ, Попов АВ. Способ лечения мембран гортани и эндопротез для его осуществления. Патент RU 2153300 С2, 27.07.2000. Режим доступа: https://patents.google.com/patent/RU2153300C2/ru.; Graupp M, Bachna-Rotter S, Gerstenberger C, Friedrich G, Fröhlich-Sorger E, Kiesler K, Gugatschka M. The unsolved chapter of vocal fold scars and how tissue engineering could help us solve the problem. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2016;273(9):2279–2284. https://doi.org/10.1007/s00405-015-3668-8.; Mattei A, Magalon J, Bertrand B, Philandrianos C, Veran J, Giovanni A. Cell therapy and vocal fold scarring. Eur Ann Otorhinolaryngol Head Neck Dis. 2017;134(5):339–345. https://doi.org/10.1016/j.anorl.2017.06.006.; Свистушкин ВМ, Старостина СВ, Люндуп АВ, Дедова МГ, Будейкина ЛС, Свистушкин МВ и др. Возможности клеточных технологий в лечении рубцовых поражений голосовых складок. Вестник Российской академии медицинских наук. 2016;71(3):190–199. https://doi.org/10.15690/vramn586.; Li L, Stiadle JM, Lau HK, Zerdoum AB, Jia X, Thibeault SL, Kiick KL.Tissue engineering-based therapeutic strategies for vocal fold repair and regeneration. Biomaterials. 2016;108:91–110. https://doi.org/10.1016/j.biomaterials.2016.08.054.; Ohno S, Hirano S, Kanemaru S, Kitani Y, Kojima T, Tateya I et al. Implantation of an atelocollagen sponge with autologous bone marrowderived mesenchymal stromal cells for treatment of vocal fold scarring in a canine model. Ann Otol Rhinol Laryngol. 2011;120(6):401–408. https://doi.org/10.1177/000348941112000610.; Kanemaru S, Nakamura T, Omori K, Kojima H, Magrufov A, Hiratsuka Y et al. Regeneration of the vocal fold using autologous mesenchymal stem cells. Ann Otol Rhinol Laryngol. 2003;112(11):915–920. https://doi.org/10.1177/000348940311201101.; Lee BJ, Wang SG, Lee JC, Jung JS, Bae YC, Jeong HJ et al. The prevention of vocal fold scarring using autologous adipose tissue-derived stromal cells. Cells Tissues Organs. 2006;184(3-4):198–204. https://doi.org/10.1159/000099627.; Hiwatashi N, Hirano S, Suzuki R, Kawai Y, Mizuta M, Kishimoto Y et al. Comparison of ASCs and BMSCs combined with atelocollagen for vocal fold scar regeneration. Laryngoscope. 2016;126(5):1143–1150. https://doi.org/10.1002/LARY.25667.; Park H, Karajanagi S, Wolak K, Aanestad J, Daheron L, Kobler JB et al. Threedimensional hydrogel model using adipose-derived stem cells for vocal fold augmentation. Tissue Eng Part A. 2010;16(2):535–543. https://doi.org/10.1089/TEN.TEA.2009.0029.; Long JL, Neubauer J, Zhang Z, Zuk P, Berke GS, Chhetri DK. Functional testing of a tissue-engineered vocal fold cover replacement. Otolaryngol Head Neck Surg. 2010;142(3):438–440. https://doi.org/10.1016/J.OTOHNS.2009.11.020.; Remacle M, Eckel HE (eds.). Surgery of Larynx and Trachea. Springer; 2010. 308 p. https://doi.org/10.1007/978-3-540-79136-2.; Jang CH, Cho YB, Yeo M, Lee H, Min EJ, Lee BH, Kim GH. Regeneration of chronic tympanic membrane perforation using 3D collagen with topical umbilical cord serum. Int J Biol Macromol. 2013;62:232–240. https://doi.org/10.1016/J.IJBIOMAC.2013.08.049.; Kanemaru SI, Kanai R, Omori K, Yamamoto N, Okano T, Kishimoto I et al. Multicenter phase III trial of regenerative treatment for chronic tympanic membrane perforation. Auris Nasus Larynx. 2021;48(6):1054–1060. https://doi.org/10.1016/J.ANL.2021.02.007.; Kim SH, Jeong JY, Park HJ, Moon BM, Park YR, Lee OJ et al. Application of a Collagen Patch Derived from Duck Feet in Acute Tympanic Membrane Perforation. Tissue Eng Regen Med. 2017;14(3):233–241. https://doi.org/10.1007/S13770-017-0039-0.; Teh BM, Marano RJ, Shen Y, Friedland PL, Dilley RJ, Atlas MD. Tissue engineering of the tympanic membrane. Tissue Eng Part B Rev. 2013;19(2):116–132. https://doi.org/10.1089/TEN.TEB.2012.0389.; Li X, Zhang H, Zhang Y. Repair of large traumatic tympanic membrane perforation using ofloxacin otic solution and gelatin sponge. Braz J Otorhinolaryngol. 2022;88(1):9–14. https://doi.org/10.1016/J.BJORL.2020.03.007.; Rezvani Ghomi E, Nourbakhsh N, Akbari Kenari M, Zare M, Ramakrishna S. Collagen-based biomaterials for biomedical applications. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2021;109(12):1986–1999. https://doi.org/10.1002/JBM.B.34881.; Svistushkin MV, Kotova S, Shpichka A, Starostina S, Shekhter A, Bikmulina P et al. Stem cell therapy for vocal fold regeneration after scarring: a review of experimental approaches. Stem Cell Res Ther. 2022;13:176. https://doi.org/10.1186/S13287-022-02853-9.; Mokoyan Z, Svistushkin V, Zolotova A, Svistushkin M. Chronic tympanic membrane perforation: Histopathological evidence of the experimental model. Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 2021;151:110964. https://doi.org/10.1016/J.IJPORL.2021.110964.

Availability: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/8285
https://doi.org/10.21518/ms2024-088

View record from BASE

10

Academic Journal

ПРИМЕНЕНИЕ СОВРЕМЕННЫХ КЛЕТОЧНЫХ ТЕХНОЛОГИЙВ ЛЕЧЕНИИ ЭНТЕЗОПАТИЙ: CELLULAR TECHNOLOGIES IN THE TREATMENT OF ENTHESOPATHIES

Source: Госпитальная медицина: наука и практика. :23-27

Subject Terms: скаффолд, энтезопатия, тканевая инженерия, клеточные технологии, стволовые клетки, энтез, 3. Good health

11

Academic Journal

The Choice of Treatment Tactics in Young Patients with Femoral Head Necrosis

Source: Хирургия. Восточная Европа. :390-401

Subject Terms: некроз головки бедренной кости, алгоритм лечения, 03 medical and health sciences, decompression, 0302 clinical medicine, декомпрессия, cell technologies, hip replacement, клеточные технологии, treatment algorithm, эндопротезирование, femoral head necrosis, 3. Good health

12

Academic Journal

Риски развития генетических технологий и возможности их преодоления: международный и национальный правовой аспект: Risks of Development of Genetic Technologies and Possibilities of their Overcoming: International and National Legal Aspects

Source: СОВРЕМЕННОЕ ПРАВО. :37-42

Subject Terms: биомедицина, genetic engineering, Biomedicine, конфиденциальность, защита частной жизни, privacy protection, cell technologies, клеточные технологии, генная инженерия, privacy, генное тестирование, 3. Good health, gene testing

13

Academic Journal

К вопросу об истории развития клеточных технологий на кафедре патологической физиологии Уральского государственного медицинского университета ; On the history of the development of cellular technologies at the Department of Pathological Physiology of the Ural State Medical University

Authors: Bazarnyi, V. V., Grebnev, D. Yu., Maklakova, I. Yu., Базарный, В. В., Гребнев, Д. Ю., Маклакова, И. Ю.

Subject Terms: CELL TECHNOLOGIES, LYMPHOCYTES, STEM CELLS, PATHOLOGICAL PHYSIOLOGY, КЛЕТОЧНЫЕ ТЕХНОЛОГИИ, ЛИМФОЦИТЫ, СТВОЛОВЫЕ КЛЕТКИ, ПАТОЛОГИЧЕСКАЯ ФИЗИОЛОГИЯ

File Description: application/pdf

Relation: Вестник Уральского государственного медицинского университета, 2023, № 4; http://elib.usma.ru/handle/usma/18597

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/18597

View record from BASE

14

Academic Journal

Features of the local cytokine profile of patients with bullous keratopathy by using personalized therapy with cellular technologies ; Динамика локального цитокинового профиля при эндотелиально-эпителиальной дистрофии роговицы на фоне персонифицированной терапии с использованием клеточных технологий

Authors: M. S. Denisko, T. A. Zhigalskaya, O. I. Krivosheina, М. С. Дениско, Т. А. Жигальская, О. И. Кривошеина

Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 1 (2023); 127-133 ; 2587-9596 ; 2541-9420

Subject Terms: цитокины, cellular technologies, autologous mononuclear leukocytes, cytokines, клеточные технологии, аутологичные мононуклеарные лейкоциты

File Description: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3995/2505; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3995/2557; Каспарова Е.А., Суббот А.М. Пролиферативный потенциал заднего эпителия роговицы человека. Вестник офтальмологии. 2013; 129(3): 82-88.; Forest F, Thuret G, Gain P. Optimization of immunostaining on flat-mounted human corneas. Molecular Vision. 2015; 21: 1345-1356.; Heeren T, Holz FG, Löffler KU. Bullous keratopathy. Ophthalmology. 2013; 110(11): 1069-1072. doi:10.1007/s00347-013-2893-z; Каспаров А.А., Каспарова Е.А., Труфанов С.В. Послеоперационная буллезная кератопатия: трансплантационные и не трансплантационные методы лечения. Тезисы докладов Девятого съезда офтальмологов России. 2010: 307.; Мороз З.И. Современные направления хирургического лечения патологии роговицы. Тезисы докладов Девятого съезда офтальмологов России. 2010: 298-299.; Tomida D, Yagi-Yaguchi Y, Higa K, Satake Y, Shimazaki J, Yamaguchi T. Correlations between tear fluid and aqueous humor cytokine levels in bullous keratopathy. Ocul Surf. 2020; 18(4): 801- 807. doi:10.1016/j.jtos.2020.06.010; Suzuki N, Yamaguchi T, Shibata S, Nagai T, Noma H, Tsubota K, Shimazaki J. Cytokine levels in the aqueous humor are associated with corneal thickness in eyes with bullous keratopathy. Am J Ophthalmol. 2019; 198: 174-180. doi:10.1016/j.ajo.2018.10.008; Yamaguchi T, Higa K, Suzuki T, Nakayama N, Yagi-Yaguchi Y, Dogru M, et al. Elevated cytokine levels in the aqueous humor of eyes with bullous keratopathy and low endothelial cell density. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2016; 57(14): 5954-5962. doi:10.1167/iovs.16-20187; Черных В.В., Шваюк А.П., Горбенко О.М., Сафронов И.Д., Чехова Т.А., Трунов А.Н., Трунова Л.А. Особенности иммунобиохимических показателей слёзной жидкости при начальной и развитой стадиях первичной открытоугольной глаукомы. Проблемы клинической медицины. 2005; 2(2): 83-86.; Бикбов М.М., Шевчук Н.Е., Мальханов В.Б. Цитокины в офтальмологии. Уфа: Уфимский полиграфкомбинат; 2008.; Jun AS, Cope L, Speck C, Feng X, Lee S, Meng H, Hamad A, Chakravarti S. Subnormal cytokine profile in the tear fluid of keratoconus patients. PLoS One. 2011; 6(1): e16437. doi:10.1371/journal.pone.0016437; Kumar A, Sharma SP, Agarwal A, Gupta V, Katoch D, Sehgal S, Singh N. Tear IL-6 and IL-10 levels in HLA-B27-associated uveitis and its clinical implications. Ocul Immunol Inflamm. 2021; 29(2): 237-243. doi:10.1080/09273948.2019.1704022; Маркелова Е.В., Кириенко А.В., Чикаловец И.В., Догадова Л.П. Характеристика системы цитокинов и её роль в патогенезе первичных глауком. Фундаментальные исследования. 2014; 2: 110-116.; Кетлинский С.А., Симбирцев А.С. Цитокины. СПб.: ООО «Издательство Фолиант»; 2008.; Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. СПб.: Фолиант; 2018.; Ip WKE, Hoshi N, Shouval DS, Snapper S, Medzhitov R. Anti-inflammatory effect of IL-10 mediated by metabolic reprogramming of macrophages. Science. 2017; 356(6337): 513-519. doi:10.1126/science.aal3535; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3995

Availability: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/3995
https://doi.org/10.29413/ABS.2023-8.1.14

View record from BASE

15

Academic Journal

Natural components as the structure of hydrogels for cellular therapy and tissue engineering ; Природные компоненты как структура гидрогелей для клеточной терапии и тканевой инженерии

Authors: N. N. Dremina, I. S. Trukhan, I. A. Shurygina, Н. Н. Дремина, И. С. Трухан, И. А. Шурыгина

Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 5 (2023); 23-35 ; 2587-9596 ; 2541-9420

Subject Terms: тканевая инженерия, natural materials, cellular technologies, tissue engineering, природные материалы, клеточные технологии

File Description: application/pdf

Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4433/2650; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4433/2869; Rehman WU, Asim M, Hussain S, Khan SA, Khan SB. Hydrogel: A promising material in pharmaceutics. Curr Pharm Des. 2020; 26(45): 5892-5908. doi:10.2174/1381612826666201118095523; El-Sherbiny IM, Yacoub MH. Hydrogel scaffolds for tissue engineering: Progress and challenges. Glob Cardiol Sci Pract. 2013; 3: 316-342. doi:10.5339/gcsp.2013.38; Catoira MC, Fusaro L, Francesco DD, Ramella M, Boccafoschi F. Overview of natural hydrogels for regenerative medicine applications. JMater Sci Mater Med. 2019; 30(10): 115. doi:10.1007/s10856-019-6318-7; Mansour HM, Sohn M, Al-Ghananeem A, Deluca PP. Materials for pharmaceutical dosage forms: Molecular pharmaceutics and controlled release drug delivery aspects. Int J Mol Sci. 2010; 11(9): 3298-3322. doi:10.3390/ijms11093298; Shtilman MI. Biodegradation of polymers. Journal of Siberian Federal University. Biology. 2015; 8: 113-130. doi:10.17516/1997-1389-2015-8-2-113-130; Liu H, Wang Y, Cui K, Guo Y, Zhang X, Qin J. Advances in hydrogels in organoids and organs-on-a-chip. Adv Mater. 2019; 31(50): e1902042. doi:10.1002/adma.201902042; Lu L, Yuan S, Wang J, Shen Y, Deng S, Xie L, et al. The formation mechanism of hydrogels. Curr Stem Cell Res Ther. 2018; 13(7): 490-496. doi:10.2174/1574888X12666170612102706; El-Sherbiny IM, Lins RJ, Abdel-Bary EM, Harding DRK. Preparation, characterization, swelling and in vitro drug release behaviour of poly[N-acryloylglycine-chitosan] interpolymeric pH and thermally-responsive hydrogels. Eur Polym J. 2005; 41: 2584-2591. doi:10.1016/j.eurpolymj.2005.05.035; Sun J, Tan H. Alginate-based biomaterials for regenerative medicine applications. Materials (Basel). 2013; 6(4): 1285-1309. doi:10.3390/ma6041285; Nakashima T, Takakura K, Komoto Y. Thromboresistance of graft-type copolymers with hydrophilic-hydrophobic microphase-separated structure. J Biomed Mater Res. 1977; 11: 787-798. doi:10.1002/jbm.820110512; Ashfaq A, Clochard M-C, Coqueret X, Dispenza C, Driscoll MS, Ulański P, et al. Polymerization reactions and modifications of polymers by ionizing radiation. Polymers (Basel). 2020; 12(12): 2877. doi:10.3390/polym12122877; Jabbari E, Nozari S. Swelling behavior of acrylic acid hydrogels prepared by γ-radiation crosslinking of polyacrylic acid in aqueous solution. Eur Polymer J. 2000; 36(12): 2685-2692. doi:10.1016/s0014-3057(00)00044-6; Chen Y, Sheng W, Lin J, Fang C, Deng J, Zhang P, et al. Magnesium oxide nanoparticle coordinated phosphate-functionalized chitosan injectable hydrogel for osteogenesis and angiogenesis in bone regeneration. ACS Appl Mater Interfaces. 2022; 14(6): 7592-7608. doi:10.1021/acsami.1c21260.; Chen J, Huang T, Liu R, Wang C, Jiang H, Sun H. Congenital microtia patients: The genetically engineered exosomes released from porous gelatin methacryloyl hydrogel for downstream small RNA profiling, functional modulation of microtia chondrocytes and tissue-engineered ear cartilage regeneration. J Nanobiotechnology. 2022; 20(1): 164. doi:10.1186/s12951-022-01352-6; Wei C, Tang P, Tang Y, Liu L, Lu X, Yang K, et al. Sponge-like macroporous hydrogel with antibacterial and ROS scavenging capabilities for diabetic wound regeneration. Adv Healthc Mater. 2022; 11(20): e2200717. doi:10.1002/adhm.202200717; Lin K, Zhang D, Macedo MH, Cui W, Sarmento B, Shen G. Advanced collagen-based biomaterials for regenerative biomedicine. Adv Function Mater. 2019; 29: 1804943. doi:10.1002/adfm.201804943; Walimbe T, Panitch A. Best of both hydrogel worlds: harnessing bioactivity and tunability by incorporating glycosaminoglycans in collagen hydrogels. Bioengineering (Basel). 2020; 7(4): 156. doi:10.3390/bioengineering7040156; Zeltz C, Gullberg D. The integrin-collagen connection – a glue for tissue repair? J Cell Sci. 2016; 129(4): 653-664. doi:10.1242/jcs.180992; Gardner H. Integrin α1β1. Adv Exp Med Biol. 2014; 819: 21-39. doi:10.1007/978-94-017-9153-3_2; Madamanchi A, Santoro SA, Zutter MM. α2β1 integrin. Adv Exp Med Biol. 2014; 819: 41-60. doi:10.1007/978-94-017-9153-3_3; Lian J, Mansel BW, Ingham B, Prabakar S, Williams MAK. Controlling chain flexibility in collagen networks to produce hydrogels with distinct properties. Soft Mater. 2017; 15: 145-152. doi:10.1080/1539445x.2016.1268626; Kreger ST, Bell BJ, Bailey J, Stites E, Kuske J, Waisner B, et al. Polymerization and matrix physical properties as important design considerations for soluble collagen formulations. Biopolymers. 2010; 93(8): 690-707. doi:10.1002/bip.21431; Antman-Passig M, Shefi O. Remote magnetic orientation of 3D collagen hydrogels for directed neuronal regeneration. Nano Lett. 2016; 16(4): 2567-2573. doi:10.1021/acs.nanolett.6b00131; Vrana NE, Elsheikh A, Builles N, Damour O, Hasirci V. Effect of human corneal keratocytes and retinal pigment epithelial cells on the mechanical properties of micropatterned collagen films. Biomaterials. 2007; 8(29): 4303-4310. doi:10.1016/j.biomaterials.2007.06.013; Feng Y, Borrelli M, Reichl S, Schrader S, Geerling G. Review of alternative carrier materials for ocular surface reconstruction. Current Eye Research, 2014; 39(6): 541-552. doi:10.3109/02713683.2013.853803; Vázquez-Portalatı NN, Kilmer CE, Panitch A, Liu JC. Characterization of collagen type I and II blended hydrogels for articular cartilage tissue engineering. Biomacromolecules. 2016; 17(10): 3145-3152. doi:10.1021/acs.biomac.6b00684; Winter WE, Flax SD, Harris NS. Coagulation testing in the core laboratory. Lab Med. 2017; 48(4): 295-313. doi:10.1093/labmed/lmx050; Thottappillil N, Nair PD. Scaffolds in vascular regeneration: Current status. Vasc Health Risk Manag. 2015; 11: 79-91. doi:10.2147/VHRM.S50536; Mithieux SM, Weiss AS. Elastin. Adv Protein Chem. 2005; 70: 437-461. doi:10.1016/S0065-3233(05)70013-9; Audelo MLDP, Mendoza-Muñoz N, Escutia-Guadarrama L, Giraldo-Gomez D, González-Torres M, Florán B, et al. Recent advances in elastin-based biomaterial. J Pharm Pharm Sci. 2020; 23: 314-332. doi:10.18433/jpps31254; Petersen W, Rahmanian-Schwarz A, Werner J-O, Schiefera J, Rothenberger J, Hübner G, et al. The use of collagen-based matrices in the treatment of full-thickness wounds. Burns. 2016; 42(6): 1257-1264. doi:10.1016/j.burns.2016.03.017; Kawabata S, Kawai K, Somamoto S, Noda K, Matsuura Y, Nakamura Y, et al. The development of a novel wound healing material, silk-elastin sponge. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2017; 28(18): 2143-2153. doi:10.1080/09205063.2017.1382829; Megeed Z, Cappello J, Ghandehari H. Controlled release of plasmid DNA from a genetically engineered silk-elastin like hydrogel. Pharm Res. 2002; 19(7): 954-959. doi:10.1023/a:1016406120288; Arias FJ, Santos M, Ibanez-Fonseca A, Pina MJ, Serrano S. Elastin-like recombinamers as smart drug delivery systems. Curr Drug Targets. 2018; 19(4): 360-379. doi:10.2174/1389450117666160201114617; Khalili S, Khorasani SN, Razav SM, Hashemibeni B, Tamayol A. Nanofibrous scaffolds with biomimetic composition for skin regeneration. Appl Biochem Biotechnol. 2019; 187(4): 1193-1203. doi:10.1007/s12010-018-2871-7; Torre IG, Alonso M, Rodriguez-Cabello J-C. Elastin-based materials: promising candidates for cardiac tissue regeneration. Front Bioeng Biotechnol. 2020; 8: 657. doi:10.3389/fbioe.2020.00657; Crosby CO, Zoldan J. Mimicking the physical cues of the ECM in angiogenic biomaterials. Regen Biomater. 2019; 6(2): 61-73. doi:10.1093/rb/rbz003; Fernández-Colino A, Wolf F, Rütten S, Schmitz-Rode T, Rodríguez-Cabello JC, Jockenhoevel S, et al. Small caliber compliant vascular grafts based on elastin-like recombinamers for in situ tissue engineering. Front Bioeng Biotechnol. 2019; 7: 340. doi:10.3389/fbioe.2019.00340; Bobryshev YV. Calcification of elastic fibers in human atherosclerotic plaque. Atherosclerosis. 2005; 180(2): 293-303. doi:10.1016/j.atherosclerosis.2005.01.024; Perrotta I, Russo E, Camastra C, Filice G, Mizio GD, Colosimo F, et al. New evidence for a critical role of elastin in calcification of native heart valves: Immunohistochemical and ultrastructural study with literature review. Histopathology. 2011; 59(3): 504-513. doi:10.1111/j.1365-2559.2011.03977.x; Grassl ED, Oegema TR, Tranquillo RT. Fibrin as an alternative biopolymer to type-I collagen for the fabrication of a media equivalent. JBiomed Mater Res. 2002; 60(4): 607-612. doi:10.1002/jbm.10107; Heher P, Mühleder S, Mittermayr R, Redl H, Slezak P. Fibrinbased delivery strategies for acute and chronic wound healing. Adv Drug Deliv Rev. 2018; 129: 134-147. doi:10.1016/j.addr.2017.12.007; Gülşen A. Endoscopic lung volume reduction with autologous blood: What is the evidence? Turk Thorac J. 2021; 22(1): 67-74. doi:10.5152/TurkThoracJ.2020.19118; Yu Z, Li H, Xia P, Kong W, Chang Y, Fu C, et al. Application of fibrin-based hydrogels for nerve protection and regeneration after spinal cord injury. J Biol Eng. 2020; 14: 22. doi:10.1186/s13036-020-00244-3; Chrobak MO, Hansen KJ, Gershlak JR, Vratsanos M, Kanellias M, Gaudette GR, et al. Design of a fibrin microthread-based composite layer for use in a cardiac patch. ACS Biomater Sci Eng. 2017; 3(7): 1394-1403. doi:10.1021/acsbiomaterials.6b00547; Boran G, Regenstein JM. Fish gelatin. Adv Food Nutr Res. 2010; 60: 119-143. doi:10.1016/S1043-4526(10)60005-8; Xiao J, Ma Y, Wang W, Zhang K, Tian X, Zhao K, et al. Incorporation of gelatin improves toughness of collagen films with a homo-hierarchical structure. Food Chem. 2021; 345: 128802. doi:10.1016/j.foodchem.2020.128802; Choi YH, Kim S-H, Kim I-S, Kim KM, Kwon SK, Hwang NS. Gelatin-based micro-hydrogel carrying genetically engineered human endothelial cells for neovascularization. Acta Biomater. 2019; 95: 285-296. doi:10.1016/j.actbio.2019.01.057; Satapathy MK, Manga YB, Ostrikov KK, Chiang W-H, Pandey A, Lekha R, et al. Microplasma cross-linked graphene oxidegelatin hydrogel for cartilage reconstructive surgery. ACS Appl Mater Interfaces. 2020; 12(1): 86-95. doi:10.1021/acsami.9b14073; Hsieh C-T, Hsu S-H. Double-network polyurethane-gelatin hydrogel with tunable modulus for high-resolution 3D bioprinting. ACS Appl Mater Interfaces. 2019; 11(36): 32746-32757. doi:10.1021/acsami.9b10784; Ashe S, Behera S, Dash P, Nayak D, Nayak B. Gelatin carrageenan sericin hydrogel composites improves cell viability of cryopreserved SaOS-2 cells. Int J Biol Macromol. 2020; 154: 606-620. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.03.039; Adukauskiene D, Mazeikiene S, Veikutiene A, Rimaitis K. Infusion solutions of gelatin derivate. Medicina (Kaunas). 2009; 45(1): 77-84.; Morshedloo F, Khoshfetrat AB, Kazemi D, Ahmadian M. Gelatin improves peroxidase-mediated alginate hydrogel characteristics as a potential injectable hydrogel for soft tissue engineering applications. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2020; 108(7): 2950-2960. doi:10.1002/jbm.b.34625; Kundu B, Rajkhowa R, Kundu SC, Wang X. Silk fibroin biomaterials for tissue regenerations. Adv Drug Deliv Rev. 2013; 65(4): 457-470. doi:10.1016/j.addr.2012.09.043; Han F, Liu S, Liu X, Pei Y, Bai S, Zhao H, et al. Woven silk fabric-reinforced silk nanofibrous scaffolds for regenerating load-bearing soft tissues. Acta Biomater. 2014; 10(2): 921-930. doi:10.1016/j.actbio.2013.09.026; Sultan MT, Lee OJ, Kim SH, Ju HW, Park CH. Silk fibroin in wound healing process. Adv Exp Med Biol. 2018; 1077: 115-126. doi:10.1007/978-981-13-0947-2_7; Wang D, Liu H, Fan Y. Silk fibroin for vascular regeneration. Microsc Res Tech. 2017; 80(3): 280-290. doi:10.1002/jemt.22532; Vepari C, Kaplan DL. Silk as a biomaterial. Prog Polym Sci. 2007; 32: 991-1007. doi:10.1016/j.progpolymsci.2007.05.013; Marolt D, Augst A, Freed LE, Vepari C, Fajardo R, Patel N, et al. Bone and cartilage tissue constructs grown using human bone marrow stromal cells, silk scaffolds and rotating bioreactors. Biomaterials. 2006; 27(6): 6138-6149. doi:10.1016/j.biomaterials.2006.07.015; Liu HF, Fan HB, Wang Y, Toh SL, Goh JC. The interaction between a combined knitted silk scaffold and microporous silk sponge with human mesenchymal stem cells for ligament tissue engineering. Biomaterials. 2008; 29(6): 662-674. doi:10.1016/j.biomaterials.2007.10.035; Megeed Z, Haider M, Li D, O’Malley Jr BW, Cappello J, Ghandehari H. In vitro and in vivo evaluation of recombinant silkelastinlike hydrogels for cancer gene therapy. J Control Release. 2004; 94(2–3): 433-445. doi:10.1016/j.jconrel.2003.10.027; Purama RK, Goswami P, Khan AT, Goyal A. Structural analysis and properties of dextran produced by Leuconostoc mesenteroides NRRL B-640. Carbohydr Polym. 2009; 76(1): 30-35. doi:10.1016/j.carbpol.2008.09.018; Sun G, Mao JJ. Engineering dextran-based scaffolds for drug delivery and tissue repair. Nanomedicine (Lond). 2012; 7(11): 1771-1784. doi:10.2217/nnm.12.149; Askari M, Fisher C, Wenige FG, Bidic S, Lee WPA. Anticoagulation therapy in microsurgery: A review. J Hand Surg. 2006; 31(5): 836-846. doi:10.1016/j.jhsa.2006.02.023; Gombocz K, Beledi A, Alotti N, Kecskés G, Gábor V, Bogár L, et al. Influence of dextran-70 on systemic inflammatory response and myocardial ischaemia-reperfusion following cardiac operations. Randomized controlled trial. Crit Care. 2007; 11(4): R87. doi:10.1186/cc6095; Steinbauer M, Harris AG, Messmer K. Effects of dextran on microvascular ischemia-reperfusion injury in striated muscle. Am J Physiol. 1997; 272(4 Pt 2): 1710-1716. doi:10.1152/ajpheart.1997.272.4.H1710; Huang G, Huang H. Application of dextran as nanoscale drug carriers. Nanomedicine. 2018; 13(24): 3149-3158. doi:10.2217/nnm-2018-0331; Sun G, Shen Y-I, Ho CC, Kusuma S, Gerecht S. Functional groups affect physical and biological properties of dextranbased hydrogels. J Biomed Mater Res A. 2010; 93(3): 1080-1090. doi:10.1002/jbm.a.32604; Liu ZQ, Wei Z, Zhu XL, Huang GY, Xu F, Yang JH, et al. Dextran-based hydrogel formed by thiol-Michael addition reaction for 3D cell encapsulation. Colloids Surf B Biointerfaces. 2015; 128: 140-148. doi:10.1016/j.colsurfb.2015.02.005; Muxika A, Etxabide A, Uranga J, Guerrero P, Caba K. Chitosan as a bioactive polymer: Processing, properties and applications. Int J Biol Macromol. 2017; 105(2): 1358-1368. doi:10.1016/j.ijbiomac.2017.07.087; Sapuła P, Bialik-Wąs K, Malarz K. Are natural compounds a promising alternative to synthetic cross-linking agents in the preparation of hydrogels? Pharmaceutics. 2023; 15(1): 253. doi:10.3390/pharmaceutics15010253; Vunain E, Mishra AK, Mamba BB. Fundamentals of chitosan for biomedical applications. Chitosan Based Biomaterials. 2017; 1: 3-30. doi:10.1016/b978-0-08-100230-8.00001-7; Zhou HY, Chen XG, Kong M, Liu CS, Cha DS, Kennedyd JF. Effect of molecular weight and degree of chitosan deacetylation on the preparation and characteristics of chitosan thermosensitive hydrogel as a delivery system. Carbohydrate Polymers. 2008; 73(2): 265-273. doi:10.1016/j.carbpol.2007.11.026; Song F, Kong Y, Shao C, Cheng Y, Lu J, Tao Y, et al. Chitosanbased multifunctional flexible hemostatic bio-hydrogel. Acta Biomater. 2021; 136: 170-183. doi:10.1016/j.actbio.2021.09.056; Sudha PN, Rose MH. Beneficial effects of hyaluronic acid. Adv Food Nutr Res. 2014; 72: 137-176. doi:10.1016/B978-0-12-800269-8.00009-9; Ifkovits JL, Burdick JA. Review: Photopolymerizable and degradable biomaterials for tissue engineering applications. Tissue Eng. 2007; 13(10): 2369-2385. doi:10.1089/ten.2007.0093; Miki D, Dastgheib K, Kim T, Pfister-Serres A, Smeds KA, Inoue M, et al. A photopolymerized sealant for corneal lacerations. Cornea. 2002; 21(4): 393-399. doi:10.1097/00003226-200205000-00012; Prata JE, Barth TA, Bencherif SA, Washburn NR. Complex fluids based on methacrylated hyaluronic acid. Biomacromolecules. 2010; 11(3): 769-775. doi:10.1021/bm901373x; Sahoo S, Chung C, Khetan S, Burdick JA. Hydrolytically degradable hyaluronic acid hydrogels with controlled temporal structures. Biomacromolecules. 2008; 9(4): 1088-1092. doi:10.1021/bm800051m; Pawar SN, Edgar KJ. Alginate derivatization: A review of chemistry, properties and applications. Biomaterials. 2012; 33(11): 3279-3305. doi:10.1016/j.biomaterials.2012.01.007; Zhang M, Zhao X. Alginate hydrogel dressings for advanced wound management. IntJ Biol Macromol. 2020; 162: 1414-1428. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.07.311; Abbasi AR, Sohail M, Minhas MU, Khaliq T, Kousar M, Khan S, et al. Bioinspired sodium alginate based thermosensitive hydrogel membranes for accelerated wound healing. Int J Biol Macromol. 2020; 155: 751-765. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.03.248; Nazarnezhada S, Abbaszadeh-Goudarzi G, Samadian H, Khaksari M, Ghatar JM, Khastar H, et al. Alginate hydrogel containing hydrogen sulfide as the functional wound dressing material: In vitro and in vivo study. IntJ Biol Macromol. 2020; 164: 3323-3331. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.08.233; Batool SR, Nazeer MA, Ekinci D, Sahin A, Kizilel S. Multifunctional alginate-based hydrogel with reversible crosslinking for controlled therapeutics delivery. IntJ Biol Macromol. 2020; 150: 315-325. doi:10.1016/j.ijbiomac.2020.02.042; Lei X, Wu Y, Peng X, Zhao Y, Zhou X, Yu X. Research on alginate-polyacrylamide enhanced amnion hydrogel, a potential vascular substitute material. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2020; 115: 111145. doi:10.1016/j.msec.2020.111145; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4433

Availability: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4433
https://doi.org/10.29413/ABS.2023-8.5.3

View record from BASE

16

Academic Journal

Анализ современного состояния подготовки студентов вузов по клеточным технологиям ; Analiz sovremennogo sostoianiia podgotovki studentov vuzov po kletochnym tekhnologiiam

Authors: Галимова Эльмира Рамилевна, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Elmira R. Galimova, Ulyanovsk State Pedagogical University named after I. N. Ulyanov, Ленгесова Наталья Анатольевна, Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Natal'ia A. Lengesova, Nauchno-issledovatel'skii tsentr fundamental'nykh i prikladnykh problem bioekologii i biotekhnologii FGBOU VO "Ul'ianovskii gosudarstvennyi pedagogicheskii universitet im. I.N. Ul'ianova", Беззубенкова Ольга Евгеньевна, Ol'ga E. Bezzubenkova, Антонова Елена Ивановна, Elena I. Antonova

Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 235-238 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 235-238

Subject Terms: профессиональные компетенции, образовательная программа, уровень подготовки, Ключевые термины: клеточные технологии, направление подготовки

File Description: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907561-33-5; https://phsreda.com/e-articles/10364/Action10364-102528.pdf; Словарь-справочник современного российского профессионального образования [Текст]. Вып. 1 / авторы-составители: В.И. Блинов, И.А. Волошина, Е.Ю. Есенина, А.Н. Лейбович, П.Н. Новиков. – М.: ФИРО, 2010. – 19 с.; Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского, рабочий учебный план по программе бакалавриата, 06.03.01 Биология [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.sgu.ru/sites/default/files/education/plan; Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского, рабочий учебный план по программе бакалавриата, 06.03.01 Биология [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.sgu.ru/sites/default/files/education/plan (дата обращения: 25.04.2022).; «Казанский (Приволжский) федеральный университет, программа дисциплины «Генные и клеточные технологии» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://kpfu.ru/pdf/portal/oop/159563.pdf (дата обращения: 25.04.2022).; Самарский государственный медицинский университет, аннотация рабочей программы учебной дисциплины «Клеточные технологии (адаптационная дисциплина)» по направлению подготовки (специальности) «33.05.01. Фармация» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://sgmu.ru/sveden/education/tables/oop/spec/33.05.01.farm.fgosvo/annot/Annot_kleteh_Farm_01.06.2018.pdf (дата обращения: 25.04.2022).; Казанский (Приволжский) федеральный университет, программа дисциплины «Нано- и клеточные технологии в биологии и медицине» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://kpfu.ru/pdf/portal/oop/163659.pdf (дата обращения: 25.04.2022).; Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова, аннотация рабочей программы дисциплины «Клеточные технологии. Инженерия живых тканей» [Электронный ресурс]. – Режим доступа: http://old.rsmu.ru/fileadmin/rsmu/documents/obrazovanie/annotacii/lech_delo/annot_ld_klet_tekhnologii.pdf (дата обращения: 25.04.2022).; https://phsreda.com/files/Books/62b19487cf261.jpg?req=102528; https://phsreda.com/article/102528/discussion_platform

Availability: https://phsreda.com/article/102528/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/62b19487cf261.jpg?req=102528

View record from BASE

17

Academic Journal

Оптимизация протоколов выделения и культивирования клеток различных топографических участков кожи человека ; Optimization of Protocols for Isolation and Cultivation of Cells of Various Topographic Areas of Human Skin

Authors: Киямова Марита Ринатовна, Научно-исследовательский центр фундаментальных и прикладных проблем биоэкологии и биотехнологии ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Marita R. Kiiamova, Nauchno-issledovatel'skii tsentr fundamental'nykh i prikladnykh problem bioekologii i biotekhnologii FGBOU VO "Ul'ianovskii gosudarstvennyi pedagogicheskii universitet im. I.N. Ul'ianova", Антонова Елена Ивановна, Elena I. Antonova, Фирсова Наталья Викторовна, Natalia V. Firsova, Ленгесова Наталья Анатольевна, Natal'ia A. Lengesova, Безрукова Ульяна Алексеевна, ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный педагогический университет им. И.Н. Ульянова», Uliana A. Bezrukova, Ulyanovsk State Pedagogical University named after I. N. Ulyanov, Сихарулидзе Сергей Владимирович, Многопрофильная больница «ВМ-клиник», Sergei V. Sikharulidze, Mnogoprofil'naia bol'nitsa "VM-klinik"

Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 107-116 ; Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 107-116

Subject Terms: меланома, клеточные технологии, фибробласты, меланоциты, протокол выделения, клетки кожи

File Description: text/html

Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907561-33-5; https://phsreda.com/e-articles/10364/Action10364-102248.pdf; Антонова Е.И. Клеточные линии меланоцитов и их биология при меланоме / Е.И. Антонова, С.А. Бармина, Е.С. Волкова, О.М. Костина // Научное обозрение. Педагогические науки. – 2019. – №5 (2). – С. 15–18.; Джуссоева, Е.В. Изучение функциональной активности меланоцитов, культивированных in vitro в 2D и 3D условиях: автореф. дис. . канд. биол. наук: 14.03.03. – М., 2020. – 27 с.; Доклад Министра здравоохранения Скворцовой В.И. на заседании Коллегии Минздрава РФ «Об итогах работы Министерства в 2014 и задачах на 2015 год [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://www.rosminzdrav.ru/news/2015/04/15/2300-ministr-veronika-skvortsova-vystupila-na-kollegiiminzdrava-rossiiobitogah-raboty-ministerstva-v-2014-godu-i-zadachah-na-2015-god; Колокольцова Т.Д. Современные способы выделения и культивирования клеток человека и животных: учебное пособие / Т.Д. Колокольцова, И.Н. Сабурина, А.А. Кубатиев. – М., 2016. – 50 с.; Крылова, Т.А. Получение и характеристика неиммортализованных клеточных линий дермальных фибробластов человека, выделенных из кожи век взрослых доноров разного возраста / Т.А. Крылова, А.С. Мусорина, В.В. Зенин, [и др.] // Цитология. – 2016. – Т. 58. №11. – С. 850–864.; Озерская О.С. Экспериментальные подходы к обоснованию применения клеточных композиций на основе фибробластов в дерматокосметологии / О.С. Озерская, В.В. Щеголев // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. – 2008. – Т. 3. №2. – С. 66–67.; Пинаев Г.П. Клеточная биотехнология: учебно-метод. пособ. / Г.П. Пинаев, М.И. Блинова, Н.С. Николаенко [и др.]. – СПб., 2011. – 209 с.; Фадеев Ф.А. Адгезия фибробластов кожи человека на модифицированном для применения в имплантологии титане с анодированным нанотрубчатым покрытием / Ф.А. Фадеев, Ю.Я. Хрунык, С.В. Беликов [и др.] // Доклады Академии Наук. – 2019. – Т. 486. №1. – С. 123–126.; Фадеев Ф.А. Разработка и оптимизация технологии автоматизированного культивирования клеточных линий для терапевтического применения / Ф.А. Фадеев, А.В. Сулимов, А.В. Штукатуров [и др.] // Сборник научных работ. Клеточные технологии – практическому здравоохранению / под общ. ред. проф. Леонтьева С.Л. – Екатеринбург: Вестник Уральской медицинской академической науки – 2016. – С. 68–73.; Федеральный закон «О биомедицинских клеточных продуктах» от 23 июня 2016 г. №180-ФЗ (с изменениями и дополнениями от 3 августа 2018 г., 27 декабря 2019 г.).; Фрешни Р.Я. Культура животных клеток: практическое руководство. пер. 5-го англ. изд. – М.: БИНОМ. Лаборатория знаний, 2010. – 691 с.; Черкасова Е.И. Работа с культурами клеток: учебно-метод. пособ. / Е.И. Черкасова, А.А. Брилкина. – Н. Новгород, 2015. – 57 с.; Banakh I. A comparative study of engineered dermal templates for skin wound repair in a mouse model / I. Banakh, P. Cheshire, M. Rahman [et al.] // Int. J. Mol. Sci. – 2020. – 21 (12). – P. 2–15.; Bertolotti A. Assessment of non-cultured autologous epidermal cell grafting resuspended in hyaluronic acid for repigmenting vitiligo and piebaldism lesions: a randomized clinical trial / A. Bertolotti, G. Leone, A. Taïeb [et al.] // Acta Derm Venereol. – 2021. – 101 (7). – P. 1–7.; Carvalhães J.L. The effect of aging in primary human dermal fibroblasts / J.C. Lago, M.B. Puzzi // PLoS One. – 2019. – 14 (7). – P. 1–14.; Castell J.V. Liver cell culture techniques / J.V. Castell, M.J. Gomes-Lechon // Hepatocyte transplantation. – 2009. – P. 35–46.; Chen R. Dedifferentiation of human epidermal melanocytes in vitro by long-term trypsinization / R. Chen, L. Xiao, R.Z. Zhang [et al.] // Cell Tissue Bank. – 2021. – 22 (1). – P. 67–75.; Cunningham D.E. Blocking resolution. How external states can prolong civil wars // J. Peace Res. – 2010. – V. 47. №2. – P. 115–127.; Fernandes I.R. Fibroblast sources: Where can we get them? / I.R. Fernandes, F.B. Russo, G.C. Pignatari [et al.] // Cytotechnology. – 2016. – 68(2). – P. 223–228.; Francesco F.D. Non-Enzymatic Method to obtain a fat tissue derivate highly enriched in adipose stem cells (ASCs) from human lipoaspirates: preliminary results / F.D. Francesco, S. Mannucci, G. Conti [et al.] // Int. J. Mol. Sci. – 2018. – V. 19. №7. – P. 2061.; Freshney R. Cell line provenance // Cytotechnology. – 2002. – 39. – P. 55–67.; Fusenig N. Culture of keratinocytes on collagen gels and use of transplantation chambers for grafting onto mouse skin. In: «Keratinocyte methods» ed by Leigh I.M. and Watt F.M // Cambrige University Press. – 1994. – P. 57–61.; Herlyn M. Characteristics of cultured human melanocytes isolated from different stages of tumor progression / M. Herlyn, J. Thurin, G. Balaban [et al.] // Cancer Research. – 1985. – 45. – P. 5670–5676.; Hirata E. Tumor Microenvironment and differential responses to therapy / E. Hirata, E. Sahai // Cold Spring Harb. Perspect. Med. – 2017. – 7 (7). – P. 1–14.; Janik K. Efficient and simple approach to in vitro culture of primary epithelial cancer cells / K. Janik, M. Popeda, J. Peciak [et al.] // Biosci. Rep. – 2016. – 36 (6).; Liu C. Y-27632 enriches the yield of human melanocytes from adult skin tissues / C. Liu, S. Wang, M. Liu [et al.] // Biology. – 2020. – P. 1–5.; McNeal A. BRAFV600E induces reversible mitotic arrest in human melanocytes via microRNA-mediated suppression of AURKB Cancer Biology / A. McNeal, R.L. Belote, H. Zeng [et al.] // Genetics and Genomics. – 2021. – С. 1–20.; Shevchenko E.K. Transplantation of modified human adipose derived stromal cells expressing VEGF165 results in more efficient angiogenic response in ischemic skeletal muscle / E.K. Shevchenko, P. Makarevich, Z. Tsokolaeva [et al.] // Journal of Translational Medicine. – 2013. – 11 (138). – P. 1–18.; https://phsreda.com/files/Books/62b19487cf261.jpg?req=102248; https://phsreda.com/article/102248/discussion_platform

Availability: https://phsreda.com/article/102248/discussion_platform
https://phsreda.com/files/Books/62b19487cf261.jpg?req=102248
https://doi.org/10.31483/r-102248

View record from BASE

18

Academic Journal

Cell technologies as a platform for personalized therapy: global challenges in oncology ; Клеточные технологии как платформа для персонализированной терапии: глобальные вызовы в онкологии

Authors: M. Yu. Rykov, G. L. Mentkevich, I. S. Dolgopolov, М. Ю. Рыков, Г. Л. Менткевич, И. С. Долгополов

Source: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 67, № 3 (2022); 5-10 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 67, № 3 (2022); 5-10 ; 2500-2228 ; 1027-4065

Subject Terms: дендритные вакцины, oncology, pediatric oncology, cell technologies, bone marrow transplantation, hematopoietic stem cell, dendritic vaccines, онкология, детская онкология, клеточные технологии, трансплантация костного мозга, гемопоэтическая стволовая клетка

File Description: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1645/1237; Долгополов И.С., Чкадуа Г.З. Иммунотерапия и иммунопрофилактика некоторых видов рака: смена парадигмы. Онкопедиатрия 2018; 5(1): 70–75. DOI:10.15690/onco.v5i1.1867; Robert C., Thomas L., Bondarenko I., O’Day S., Weber J., Garbe Claus. et al. Ipilimumab plus dacarbazine for previously untreated metastatic melanoma. N Engl J Med 2011; 364(26): 2517–2526. DOI:10.1056/NEJMoa1104621; Middleton M.R., Grob J.J., Aaronson N., Fierlbeck G., Tilgen W., Seiter S. et al. Randomized phase III study of temozolomide versus dacarbazine in the treatment of patients with advanced metastatic malignant melanoma. J Clin Oncol 2000; 18(1): 158–166. DOI:10.1200/JCO.2000.18.1.158; Falkson C.I., Ibrahim J., Kirkwood J.M., Coates A.S., Atkins M.B., Blum R.H. et al. Phase III trial of dacarbazine versus dacarbazine with interferon alpha-2b versus dacarbazine with tamoxifen versus dacarbazine with interferon alpha-2b and tamoxifen in patients with metastatic malignant melanoma: an Eastern Cooperative Oncology Group Study. J Clin Oncol 1998; 16(5): 1743–1751. DOI:10.1200/JCO.1998.16.5.1743; Rusthoven J.J., Quirt I.C., Iscoe N.A., McCulloch P.B., James K.W., Lohmannet R.C. et al. Randomized, double-blind, placebo-controlled trial comparing the response rates of carmustine, dacarbazine, and cisplatin with and without tamoxifen in patients with metastatic melanoma. J Clin Oncol 1996; 14(7): 2083–2090. DOI:10.1200/JCO.1996.14.7.2083; Govindan R., Szczesna A., Ahn M.J., Schneider C.-P., Mella P.F.G., Barlesi F. et al. Phase III trial of ipilimumab combined with paclitaxel and carboplatin in advanced squamous non-small-cell lung cancer. J Clin Oncol 2017; 35(30): 3449–3457. DOI:10.1200/JCO.2016.71.7629; Rosenberg S., Yang J., Sherry R., Kammula U.S., Hughes M.S., Phan G.Q. et al. Durable complete responses in heavily pretreated patients with metastatic melanoma using T-cell transfer immunotherapy. Clin Cancer Res 2011; 17(13): 4550–4557. DOI:10.1158/1078-0432.CCR-11-0116; Рыков М.Ю., Манерова О.А., Турабов И.А., Козлов В.В., Решетников В.А. Роль педиатров в ранней диагностике злокачественных новообразований у детей. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2020; 65(1): 94–99. DOI:10.21508/1027-4065-2020-65-1-94-99; Рыков М.Ю., Манерова О.А., Турабов И.А., Козлов В.В., Решетников В.А. Алгоритм определения целесообразности направления пациента на консультацию к врачу — детскому онкологу: результаты внедрения. Российский вестник перинатологии и педиатрии 2019; 64(6): 84–88. DOI:10.21508/1027-4065-2019-64-6-84-88; Wolchok J.D., Kluger H., Callahan M.K., Postow M.A., Rizvi N.A., Lesokhin A.M. et al. Nivolumab plus ipilimumab in advanced melanoma. N Engl J Med 2013; 369(2): 122–133. DOI:10.1056/NEJMoa1302369; Sakai K., Shimodaira S., Maejima S., Udagawa N., Sano K., Higuchi Y. et al. Dendritic cell-based immunotherapy targeting Wilms’ tumor 1 in patients with recurrent malignant glioma. J Neurosurg 2015; 123(4): 989–997. DOI:10.3171/2015.1.JNS141554; Vik-Mo E.O., Nyakas M., Mikkelsen B.V., Moe M.C., Due-Tønnesen P., Suso E.M. et al. Therapeutic vaccination against autologous cancer stem cells with mRNA-transfected dendriticcells in patients with glioblastoma. Cancer Immunol Immunother 2013; 62(9): 1499–1509. DOI:10.1007/s00262-013-1453-3; Долгополов И.C., Чкадуа Г.З., Менткевич Г.Л. Роль и место иммунотерапии в детской онкологии: некоторые клинические примеры. Иммунология гемопоэза 2015; 13(1): 63–78.; Менткевич Г.Л. К 30-летнему юбилею первому в России отделению трансплантации костного мозга. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2021; 66(5): 7–9. DOI:10.21508/1027-4065-2021-66-5-7-9; Петенко Н.Н., Михайлова И.Н., Чкадуа Г.З. Вакцинотерапия меланомы кожи дендритными клетками после хирургического лечения. Саркомы костей, мягких тканей и опухоли кожи 2015; 1: 43–49.; Баринский И.Ф., Махмудов Ф.Р. Инактивированная дивакцина против вирусов простого герпеса 1-го и 2-го типа как средство эффективной иммунопрофилактики рецидивов генитального герпеса. Вопросы вирусологии; 2010; 1: 35-40. http://www.fesmu.ru/elib/Article.aspx?id=217773

Availability: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1645
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2022-67-3-5-10

View record from BASE

19

Academic Journal