-
1Academic Journal
Authors: N. V. Baranova, A. S. Ponomareva, L. A. Kirsanova, A. O. Nikolskaya, G. N. Bubentsova, Yu. B. Basok, V. I. Sevastianov, Н. В. Баранова, А. С. Пономарева, Л. А. Кирсанова, А. О. Никольская, Г. Н. Бубенцова, Ю. Б. Басок, В. И. Севастьянов
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 26, № 2 (2024); 94-104 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 26, № 2 (2024); 94-104 ; 1995-1191
Subject Terms: тканеспецифический скаффолд, islets of Langerhans, cell-engineered construct, pancreas, decellularization, tissue-specific scaffold, островки Лангерганса, клеточно-инженерная конструкция, поджелудочная железа, децеллюляризация
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1772/1615; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1772/1654; Shapiro AM, Pokrywczynska AM, Ricordi C. Clinical pancreatic islet transplantation. Nat Rev Endocrinol. 2017; 13 (5): 268–277. doi:10.1038/nrendo.2016.178.; Cayabyab F, Nih LR, Yoshihara E. Advances in Pancreatic Islet Transplantation Sites for the Treatment of Diabetes. Front Endocrinol (Lausanne). 2021; 12: 732431. doi:10.3389/fendo.2021.732431.; Reid L, Faye Baxter F, Forbes S. Effects of islet transplantation on microvascular and macrovascular complications in type 1 diabetes. Diabet Med. 2021; 38 (7): e14570. doi:10.1111/dme.14570.; Eguchi N, Damyar K, Alexander M, Dafoe D, Lakey JRT, Ichii H. Anti-Oxidative Therapy in Islet Cell Transplantation. Antioxidants (Basel). 2022; 11 (6): 1038. doi:10.3390/antiox11061038.; Amer LD, Mahoney MJ, Bryant SJ. Tissue engineering approaches to cell-based type 1 diabetes therapy. Tissue Eng Part B Rev. 2014; 20 (5): 455–467. doi:10.1089/ten.TEB.2013.0462.; Mirmalek-Sani S-H, Orlando G, McQuilling JP, Pareta R, Mack DL, Salvatori M et al. Porcine pancreas extracellular matrix as a platform for endocrine pancreas bioengineering. Biomaterials. 2013; 34 (22): 5488–5495. doi:10.1016/j.biomaterials.2013.03.054.; Abualhassan N, Sapozhnikov L, Pawlick RL, Kahana M, Pepper AR, Bruni A et al. Lung-derived microscaffolds facilitate diabetes reversal after mouse and human intraperitoneal islet transplantation. PLoS One. 2016; 11 (5): e0156053. doi:10.1371/journal.pone.0156053.; Damodaran G, Vermette P. Decellularized pancreas as a native extracellular matrix scaffold for pancreatic islet seeding and culture. J Tissue Eng Regen Med. 2018; 12 (5): 1230–1237; doi:10.1002/term.2655.; Lim LY, Ding SSL, Muthukumaran P, Teoh SH, Koh Y, Teo AKK. Tissue engineering of decellularized pancreas scaffolds for regenerative medicine in diabetes. Acta Biomater. 2023; 157: 49–66. doi:10.1016/j.actbio.2022.11.032.; Wu D, Wan J, Huang Y, Guo Y, Xu T, Zhu M et al. 3d Culture of MIN-6 Cells on Decellularized Pancreatic Scaffold: In Vitro and In Vivo Study. Biomed Res Int. 2015; 2015: 432645. doi:10.1155/2015/432645.; Goh S-K, Bertera S, Olsen P, Candiello JE, Halfter W, Uechi G et al. Perfusion-Decellularized Pancreas As A Natural 3d Scaffold For Pancreatic Tissue And Whole Organ Engineering. Biomaterials. 2013; 34 (28): 6760– 6772. doi:10.1016/J.Biomaterials.2013.05.066.; Sabetkish S, Kajbafzadeh AM. The Most Ideal Pancreas Extracellular Matrix as a Platform for Pancreas Bioengineering: Decellularization/Recellularization Protocols. Adv Exp Med Biol. 2021; 1345: 61–70. doi:10.1007/9783-030-82735-9_6.; Biomimetics of Extracellular Matrices for Cell and Tissue Engineered Medical Products / Eds. Victor I. Sevastianov and Yulia B. Basok. – Newcastle upon Tyne, UK: Cambridge Scholars Publishing, 2023; 339.; Sevastianov VI, Ponomareva AS, Baranova NV, Kirsanova LA, Basok YuB, Nemets EA et al. Decellularization of Human Pancreatic Fragments with Pronounced Signs of Structural Changes. Int J Mol Sci. 2023; 24 (1): 119. doi:10.3390/ijms24010119.28.; Napierala H, Hillebrandt K-H, Haep N, Tang P, Tintemann M, Gassner J et al. Engineering an endocrine neopancreas by repopulation of a decellularized rat pancreas with islets of Langerhans. Sci Rep. 2017 Feb 2; 7: 41777. doi:10.1038/srep41777.; Скалецкая ГН, Скалецкий НН, Кирсанова ЛА, Бубенцова ГН, Волкова ЕА, Севастьянов ВИ. Экспериментальная имплантация тканеинженерной конструкции поджелудочной железы. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2019; 21 (2): 104–111. doi:10.15825/1995-1191-2019-2-104-111.; Пономарева АС, Баранова НВ, Никольская АО, Кирсанова ЛА, Онищенко НА, Гоникова ЗЗ и др. Внутрибрюшинное введение клеточно-инженерной конструкции поджелудочной железы крысам с экспериментальным сахарным диабетом (предварительные результаты). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2023; 25 (2): 107–117.; Smink AM, de Vos P. Therapeutic strategies for modulating the extracellular matrix to improve pancreatic islet function and survival after transplantation. Curr Diab Rep. 2018; 18 (7): 39. doi:10.1007/s11892-018-1014-4.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1772
-
2Academic Journal
Authors: A. M. Grigoriev, Yu. B. Basok, A. D. Kirillova, L. A. Kirsanova, N. P. Shmerko, A. M. Subbot, E. A. Nemets, I. A. Miloserdov, M. Yu. Shagidulin, V. I. Sevastyanov, А. М. Григорьев, Ю. Б. Басок, А. Д. Кириллова, Л. А. Кирсанова, Н. П. Шмерко, А. М. Суббот, Е. А. Немец, И. А. Милосердов, М. Ю. Шагидулин, В. И. Севастьянов
Contributors: Работа выполнена частично при финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (грант № 18-29-06012).
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 22, № 3 (2020); 123-133 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 22, № 3 (2020); 123-133 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2020-3
Subject Terms: биореактор, decellularization, mesenchymal stem cells, HepG2, cell-engineered construct, tissue engineering, bioreactor, децеллюляризация, мезенхимальные стромальные клетки, клеточно-инженерная конструкция, тканевая инженерия
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1235/1008; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1235/1031; Croce S, Peloso A, Zoro T, Avanzini MA, Cobianchi L. A hepatic scaffold from decellularized liver tissue: food for thought. Biomolecules. 2019; 9 (12): 813. doi:10.3390/biom9120813. PMID: 31810291.; Yang W, Xia R, Zhang Y, Zhang H, Bai L. Decellularized liver scaffold for liver regeneration. Methods Mol Biol. 2018; 1577: 11–23. doi:10.1007/7651_2017_53. PMID: 28856614.; Bilodeau C, Goltsis O, Rogers IM, Post M. Limitations of recellularized biological scaffolds for human transplantation. J Tissue Eng Regen Med. 2020; 14 (3): 521–538. doi:10.1002/term.3004. PMID: 31826325.; Porzionato A, Stocco E, Barbon S, Grandi F, Macchi V, De Caro R. Tissue-engineered grafts from human decellularized extracellular matrices: a systematic review and future perspectives. Int J Mol Sci. 2018; 19 (12): 4117. doi:10.3390/ijms19124117. PMID: 30567407.; Ahmed E, Saleh T, Yu L, Kwak HH, Kim BM, Park KM et al. Micro and ultrastructural changes monitoring during decellularization for the generation of a biocompatible liver. J Biosci Bioeng. 2019; 128 (2): 218–225. doi:10.1016/j.jbiosc.2019.02.007. PMID: 3090445.; Willemse J, Verstegen MMA, Vermeulen A, Schurink IJ, Roest HP, van der Laan LJW et al. Fast, robust and effective decellularization of whole human livers using mild detergents and pressure controlled perfusion. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2020; 108: 110200. doi:10.1016/j.msec.2019.110200. PMID: 31923991.; Butter A, Aliyev K, Hillebrandt KH, Raschzok N, Kluge M, Seiffert N et al. Evolution of graft morphology and function after recellularization of decellularized rat livers. J Tissue Eng Regen Med. 2018; 12 (2): e807–e816. doi:10.1002/term.2383. PMID: 27957815.; Naeem EM, Sajad D, Talaei-Khozani T, Khajeh S, Azarpira N, Alaei S et al. Decellularized liver transplant could be recellularized in rat partial hepatectomy model. J Biomed Mater Res A. 2019; 107 (11): 2576–2588. doi:10.1002/jbm.a.36763. PMID: 31361939.; Готье СВ, Севастьянов ВИ, Шагидулин МЮ, Немец ЕА, Басок ЮБ. Тканеспецифический матрикс для тканевой инженерии паренхиматозного органа и способ его получения. Патент на изобретение RU 2693432 C2, 02.07.2019.; Elchaninov A, Fatkhudinov T, Usman N, Arutyunyan I, Makarov A, Lokhonina A et al. Multipotent stromal cells stimulate liver regeneration by influencing the macrophage polarization in rat. World J Hepatol. 2018 Feb 27; 10 (2): 287–296.; Zhou Q, Li L, Li J. Stem cells with decellularized liver scaffolds in liver regeneration and their potential clinical applications. Liver Int. 2015 Mar; 35 (3): 687–694. doi:10.1111/liv.12581.; Shimoda H, Yagi H, Higashi H, Tajima K, Kuroda K, Abe Y et al. Decellularized liver scaffolds promote liver regeneration after partial hepatectomy. Sci Rep. 2019; 9 (1): 12543. doi:10.1038/s41598-019-48948-x. PMID: 31467359.; Donato MT, Tolosa L, Gómez-Lechón MJ. Culture and Functional Characterization of Human Hepatoma HepG2 Cells. Methods Mol Biol. 2015; 1250: 77–93. doi:10.1007/978-1-4939-2074-7_5.; Sevastyanov VI, Basok YB, Grigoryev AM, Kirsanova LA, Vasilets VN. A perfusion bioreactor for making tissue-engineered constructs. Biomedical Engineering. 2017; 51 (3): 162–165.; ГОСТ ISO 10993-1-2011 «Изделия медицинские. Оценка биологического действия медицинских изделий. Часть 5. Исследование на цитотоксичность: методы in vitro». М.: Стандартинформ, 2014.; Novikov I, Subbot A, Turenok A, Mayanskiy N, Chebotar I. A rapid method of whole cell sample preparation for scanning electron microscopy using neodymium chloride. Micron. 2019; 124: 102687. doi:10.1016/j.micron.2019.102687. PMID: 31302532.; Zhang L, Guan Z, Ye J-S, Yin Y-F, Stoltz J-F, de Isla N. Research progress in liver tissue engineering. Biomed Mater Eng. 2017; 29 (s1): S113–S119.; Crapo PM, Gilbert TW, Badylak SF. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 2011; 32 (12): 3233–3243. doi:10.1016/j.biomaterials.2011.01.057.; Nibourg GA, Hoekstra R, van der Hoeven TV, Ackermans MT, Hakvoort TB, van Gulik TM, Chamuleau RA. Increased hepatic functionality of the human hepatoma cell line HepaRG cultured in the AMC bioreactor. Int J Biochem Cell Biol. 2013 Aug; 45 (8): 1860–1868.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/1235
-
3Academic Journal
Authors: Cветлана Анатольевна Божкова, Mikhail Bozhokin, Svetlana Bozhkova,, Georgy Netyl’ko, Dmitry Nakonechnyj, Miral’da Blinova, Yulia Nashchekina
Source: Transactions of the Karelian Research Centre of the Russian Academy of Sciences, Iss 4 (2018)
Subject Terms: гиалиновый хрящ, дефект, клеточно-инженерная конструкция, восстановление, ммск, Science
File Description: electronic resource
-
4Academic Journal
Authors: S. A. Gerasimov, N. A. Tenilin, D. Ia. Aleynik, S. N. Bugrov, N. Iu. Shirokova, A. A. Zykin, С. А. Герасимов, Н. А. Тенилин, Д. Я. Алейник, С. Н. Бугров, Н. Ю. Широкова, А. А. Зыкин
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 19, № 4 (2017); 97-103 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 19, № 4 (2017); 97-103 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2017-4
Subject Terms: мезенхимальные стволовые клетки (МСК), chondroplasty, cell-engineered constructs, mesenchymal stem cells (MSC), хондропластика, клеточно-инженерная конструкция (КИК)
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/833/673; Корнилов НН, Новоселов КА, Корнилов НВ. Современные взгляды на этиопатогенез, принципы диагностики и консервативную терапию дегенеративно-дистрофических заболеваний коленного сустава. Травматология и ортопедия России. 2005; 2: 47–49. Kornilov NN, Novoselov KA, Kornilov NV. Sovremennye vzgliady na etiopatogenez, printcipy diagnostiki i konservativnuiu terapiiu degenerativno-distrofi cheskikh zabolevanii kolennogo sustava. Travmatologiia i ortopediia Rossii. 2005; 2: 47–49.; Magalhaes J, Lebourg M, Deplaine H, Gmez Ribelles JL, Blanco FJ. Effect of the physicochemical properties of pure or chitosan-coated poly (-lactic acid) scaffolds on the chondrogenic differentiation of mesenchymal stem cells from osteoarthritic patients. Tissue Eng. 2015; 2: 716–728.; Fraitzl CR, Flören M, Reichel Kniegelenk H. Arthrose und Arthritis. Orthop. Unfallchir. 2008; 2: 155–176.; Hjelle K, Solheim E, Strand T, Muri R, Brittberg М. Articular cartilage defects in 1,000 knee arthroscopies. Arthroscopy. 2002; 18: 730–734.; Tetteh ES, Bajaj S, Ghodadra NS. Basic science and surgical treatment options for articular cartilage injuries of the knee. J. Orthop. Sports. Phys. Ther. 2012 Mar; 42 (3): 243–253.; Ding C, Cicuttini F, Scott F, Cooley H, Jones G. Association between age and knee structural change: a cross sectional MRI based study. Ann. Rheum. Dis. 2005; 64 (4): 549–555.; Stahl R, Luke A, Li X, Carballido-Gamio J, Ma CB, Majumdar S, Link TM. T1rho, T2 and focal knee cartilage abnormalities in physically active and sedentary healthy subjects versus early OA patients-a 3.0-Tesla MRI study. Eur. Radiol. 2009; 19 (1): 132–143.; Curl WW, Krome J, Gordon ES, Rushing J, Smith BP, Poehling GG. Cartilage injuries: a review of 31,516 knee arthroscopies. Arthroscopy.1997; 13: 456–460.; Yan Н, Yu C. Repair of Full-Thickness Cartilage Defects With Cells of Different Origin in a Rabbit Model. The Journal of Arthroscopic and Related Surgery. 2007; 23 (2): 178–187.; Magnussen RA, Dunn WR, Carey JL. Treatment of local articular cartilage defects in the knee: a systematic review. Clin. Orthop. 2008; 466 (4): 952–962.; Омельяненко НП, Слуцкий ЛИ. Соединительная ткань (гистофизиология и биохимия). М., 2011; II: 380. Omelianenko NP, Slutckii LI. Soedinitelnaia tkan (gistofi ziologiia i biokhimiia). M., 2011; II: 380.; Павлова ВН, Павлов ГГ, Шостаков ИО, Слуцкий ЛИ. Сустав: морфология, клиника, диагностика, лечение. М., 2011: 168–218. Pavlova VN, Pavlov GG, Shostakov IO, Slutckii LI. Sustav: morfologiia, klinika, diagnostika, lechenie. M., 2011: 168–218.; Becerra J, Andrades JA, Guerado Е, Zamora-Navas Р et al. Articular cartilage: structure and regeneration. Tissue Eng. Part. B. Rev. 2010 Dec; 16 (6): 617–627.; Севастьянов ВИ, Духина ГА, Григорьев АМ, Перова НВ, Кирсанова ЛА, Скалецкий НН и др. Функциональная эффективность биомедицинского клеточного продукта для регенерации суставного хряща (экспериментальная модель остеоартроза). Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2015; 17 (1): 86–96. Sevastianov VI, Dukhina GA, Grigoriev AM, Perova NV, Kirsanova LA, Skaletskiy NN et al. The functional effectiveness of a cell-engineered construct for the regeneration of articular cartilage. Russian Journal of Transplantology and Artifi cial Organs. 2015; 17 (1): 86– 96. (In Russ.) DOI:10.15825/1995-1191-2015-1-86-96.; Котельников ГП. Доказательная медицина. Научно обоснованная медицинская практика. Монография / Г .П. Котельников, А.С. Шпигель; Минздрав Россий ской Федерации, ГБОУ ВПО «Самарский гос. мед. ун-т». 2-е изд., доп. и перераб. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012; 239 (2). Kotel’nikov GP. Dokazatel’naya medicina. Nauchno obosnovannaya medicinskaya praktika. Monografi ya / G.P. Kotel’nikov, A.S. SHpigel’; Minzdrav Rossijskoj Federacii, GBOU VPO «Samarskij gos. med. un-t». 2-e izd., dop. i pererab. M.: GEHOTAR-Media, 2012; 239 (2).; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/833
-
5Academic Journal
Authors: Yu. В. Basok, A. M. Grigoryev, L. A. Kirsanova, N. P. Shmerko, К. M. Khizroev, V. I. Sevastianov, Ю. Б. Басок, А. М. Григорьев, Л. А. Кирсанова, Н. П. Шмерко, Х. М. Хизроев, В. И. Севастьянов
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 20, № 1 (2018); 70-78 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 20, № 1 (2018); 70-78 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2018-1
Subject Terms: мезенхимальные стромальные клетки, cell-engineered construct, human liver cells, biopolymer matrix, mesenchymal stromal cells, клеточно-инженерная конструкция, клетки печени человека, биополимерный матрикс
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/857/694; Zhang J, Zhao X, Liang L, Li J, Demirci U, Wang S. A decade of progress in liver regenerative medicine. Biomaterials. 2018; 157: 161–176. doi:10.1016.; Nahmias Y, Berthiaume F, Yarmush ML. Integration of technologies for hepatic tissue engineering. Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 2007; 103: 309–329.; Wagner BA, Venkataraman S, Buettner GR. The rate of oxygen utilization by cells. Free Radic Biol Med. 2011; 51: 700–712.; Wen F, Chang S, Toh YC, Arooz T, Zhuo L, Teoh SH, YuH. Development of dual-compartment perfusion bioreactor for serial coculture of hepatocytes and stellate cells in poly(lactic-co-glycolic acid)-collagen scaffolds. J. Biomed. Mater. Res. B. Appl. Biomater. 2008; 87 (1): 154– 162. doi:10.1002.; Rebelo SP, Costa R, Silva MM, Marcelino P, Brito C, Alves PM. Three-dimensional co-culture of human hepatocytes and mesenchymal stem cells: improved functionality in long-term bioreactor cultures. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017; 11 (7): 2034–2045. doi:10.1002.; Ramachandran SD, Schirmer K, Münst B, Heinz S, Ghafoory S, Wölfl S et al. In vitro generation of functional liver organoid-like structures using adult human cells. PLoS ONE. 2015; 10 (10): A1648. doi:10.1371.; Sevastianov VI, Basok YuB, Grigoryev AM, Kirsanova LA, Vasilets VN. A Perfusion Bioreactor for Making Tissue-Engineered Constructs. Biomedical Engineering. 2017; 51 (3): 162–165.; Sevastianov V, Basok Yu, Grigor’ev A, Kirsanova L, Vasilets V. (2017). Formation of Tissue-Engineered Construct of Human Cartilage Tissue in a Flow-Through Bioreactor. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2017; 164. doi:10.1007.; Fisher SA, Tam RY, Shoichet MS. Tissue mimetics: engineered hydrogel matrices provide biomimetic environments for cell growth. Tissue Engineering. 2014; part A, 20 (5, 6): 895–898.; Севастьянов ВИ, Перова НВ. Композиция гетерогенного имплантируемого геля Сферо®гель для лечения заболеваний опорно-двигательного аппарата. Современная медицина. 2017; 2: 151–155.; Севастьянов ВИ, Перова НВ. Биополимерный гетерогенный гидрогель Сферо®ГЕЛЬ – инъекционный биодеградируемый имплантат для заместительной и регенеративной медицины. Практическая медицина. 2014; 8 (84): 120–126.; Surguchenko VA, Ponomareva AS, Kirsanova LA, Skaleckij NN, Sevastianov VI. The cell-engineered construct of cartilage on the basis of biopolymer hydrogel matrix and human adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells (in vitro study). J. Biomed. Mat. Soc. Part. A. 2015; 103 (2): 463–470. doi:10.1002.; Consolo F, Fiore GB, Truscello S, Caronna M, Morbiducci U, Montevecchi FM et al. A computational model for the optimization of transport phenomena in a rotating hollow-fi ber bioreactor for artifi cial liver. Tissue Eng. Part. C. Methods. 2009; 15 (1): 41–55. doi:10.1089.; Ishii Y, Saito R, Marushima H, Ito R, Sakamoto T, Yanaga K. Hepatic reconstruction from fetal porcine liver cells using a radial fl ow bioreactor. World. J. Gastroenterol. 2008; 14 (17): 2740–2747. PMID: 18461659.; Uzarski JS, Bijonowski BM, Wang B, Ward HH, WandingerNess A, Miller WM et al. Dual-Purpose Bioreactors to Monitor Noninvasive Physical and Biochemical Markers of Kidney and Liver Scaffold Recellularization. Tissue Eng. Part. C. Methods. 2015; 21 (10): 1032–1043. doi:10.1089.; Mueller D, Tascher G, Damm G, Nüssler AK, Heinzle E, Noor F. Real-time in situ viability assessment in a 3D bioreactor with liver cells using resazurin assay. Cytotechnology. 2013; 65 (2): 297–305. doi:10.1007.; Freyer N, Knöspel F, Strahl N, Amini L, Schrade P, Bachmann S et al. Hepatic Differentiation of Human Induced Pluripotent Stem Cells in a Perfused Three-Dimensional Multicompartment Bioreactor. Biores. Open Access. 2016; 5 (1): 235–248. doi:10.1016.; Hsu MN, Tan GD, Tania M, Birgersson E, Leo HL. Computational fl uid model incorporating liver metabolic activities in perfusion bioreactor. Biotechnol. Bioeng. 2014; 111 (5): 885–895. doi:10.1002.; Sarkar U, Rivera-Burgos D, Large EM, Hughes DJ, Ravindra KC, Dyer RL et al. Metabolite profi ling and pharmacokinetic evaluation of hydrocortisone in a perfused three-dimensional human liver bioreactor. Drug. Metab. Dispos. 2015; 43 (7): 1091–1099.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/857
-
6Academic Journal
Authors: V. I. Sevastianov, G. A. Dukhina, A. M. Grigoriev, N. V. Perova, L. A. Kirsanova, N. N. Skaletskiy, D. G. Akhaladze, S. V. Gautier, В. И. Севастьянов, Г. А. Духина, А. М. Григорьев, Н. В. Перова, Л. А. Кирсанова, Н. Н. Скалецкий, Д. Г. Ахаладзе, С. В. Готье
Source: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 17, № 1 (2015); 86-96 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 17, № 1 (2015); 86-96 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2015-1
Subject Terms: жировая ткань, osteoarthrosis, hyaline cartilage, cartilaginous tissue, cell-engineered construct, biopolymer matrix, mesenchymal stromal cells, adipose tissue, экспериментальная модель, гиалиновый хрящ, клеточно-инженерная конструкция, биополимерный матрикс, мезенхимальные стромальные клетки
File Description: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/500/437; Atala A, Lanza R, Thompson J, Nerem R. Principles of regenerative medicine. Academic Press is an imprint of Elsevier, First edition; 2008.; Ревматология. Национальное руководство. Под ред. Насонова ЕЛ, Насоновой ВА. Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2010: 720. Rheumatology. National handbook. Eds. Nasonov EL, Nasonova VA. GEOTAR-Media: Moscow, 2010.; Melero-Martin JM, Al-Rubeai M. In vitro expansion of chondrocytes. Topics in Tissue Engineering. 2007; 3: 37.; Мазуров ВИ. Болезни суставов. СПб.: СпецЛит, 2008: 27–31. Mazurov VI. Joint disease. SPb: SpetsLit, 2008: 27–31.; Деев РВ. Анализ рынка клеточных препаратов для коррекции патологии скелетных тканей. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2006; 2 (4): 78–83. Deev RV. Market analysis of cell preparations for correction of the pathology of the skeletal tissues. Cell Transplantology and Tissue Engineering. 2006; 2 (4): 78–83.; Jones DG., Peterson L. Autologous chondrocyte implantation. In the book: Cartilage repair strategies. Ed. by Williams RJ. Humana Press, Totowa, New Jersey. 2007: 137–166.; Сургученко ВА. Матриксы для тканевой инженерии и гибридных органов. Биосовместимые материалы (учебное пособие). Под ред. Севастьянова ВИ, Кирпичникова МП. Москва: МИА, 2011. Ч. II; гл. 1: 199–228. Surguchenko VA. The matrices for tissue engineering and hybrid organs. Biocompatible materials (textbook). Ed. by: Sevastianov VI, Kirpichnikov MP. Moscow: MIA, 2011; 2 (1): 199–228.; http://www.genzyme.com; http://www.osiristx.com; http://www.tigenix.com; http://www.biotissue.de; http://www.arthro-kinetics.com; http://www.anikatherapeutics.com; http://www.codon.de; http://www.aci.dk; Husing B, Buhrlen B, Gaisser S. Human Tissue Engineered Products – Today's Markets and Future Prospects, Annex of the Final Report for Work Package 1: Analysis of the actual market situation – Mapping of industry and products, Fraunhofer Institute for Systems and Innovation Research, Karlsruhe, Germany. 2003: 54.; http://www.tetec-gmbh.de; Chung C, Burdick JA. Engineering Cartilage Tissue. Adv Drug Deliv Rev. 2008; 60 (2): 243–262.; Redman SN, Oldfield SF, Archer CW. Current strategies for articular cartilage repair, European Cells and Materials. 2005; 9: 23–32.; Danišovič Ľ, Lesný P, Havlas V, Teyssler P, Syrová Z, Kopáni M et al. Chondrogenic differentiation of human bone marrow and adipose tissue-derived mesenchymal stem cells. Applied Biomedicine. 2007; 5: 139–150.; Севастьянов ВИ, Перова НВ, Немец ЕА, Сургученко ВА, Пономарева АС. Примеры экспериментальноклинического применения биосовместимых материалов в регенеративной медицине. Биосовместимые материалы (учебное пособие). Под ред. Севастьянова ВИ, Кирпичникова МП. М.: МИА, 2011. Ч. II, гл. 3: 237–252. Sevastianov VI, Perova NV, Nemets EA, Surguchenko VA, Ponomareva AS. Biocompatible materials (textbook). Ed. by: Sevastianov VI, Kirpichnikov MP. Moscow: MIA. 2011; 2 (3): 237–252.; Пономарева АС, Сургученко ВА, Богданова НБ., Можейко НП., Севастьянов ВИ. Исследование дифференцировочного потенциала мезенхимальных стромальных клеток из жировой ткани человека. Вестник Саратовского государственного технического университета. 2011; 1 (53): 215–220. Ponomareva AS, Surguchenko VA, Bogdanova NB, Mozhejko NP, Sevastianov VI. The study differencirovannoe potential of mesenchymal stromal cells from human fat tissue. Vestnik Saratovskogo gosudarstvennogo tehnicheskogo universiteta. 2011; 1 (53): 215–220.; Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, Huang J, Futrell W, Katz AJ et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue engineering. 2001; 17 (1): 211–228.; Севастьянов ВИ, Духина ГА, Пономарева АС, Кирсанова ЛА, Перова НВ, Скалецкий НН. Биомедицинский клеточный материал для регенерации суставного хряща: биосовместимые и гистоморфологические свойства (экспериментальная модель подкожной имплантации). Перспективные материалы. 2014; 10: 28–39. Sevastianov VI, Dukhina GA, Ponomareva AS, Kirsanova LA, Perova NV, Skaletskiy NN. A biomedical cell product for the regeneration of articular cartilage: Biocompatible and histomorphological properties (An experimental model of subcutaneous implantation). Perspective materials. 2014; 10: 28–39.; Surguchenko VA, Ponomareva AS, Kirsanova LA, Skaleckij NN, Sevastianov VI. The cell-engineered construct of cartilage on the basis of biopolymer hydrogel matrix and human adipose tissue-derived mesenchymal stromal cells (in vitro study). J. Biomed. Mater. Research. 2015; 103A (2): 463–470.; Егорова ВА, Пономарева АС, Богданова НБ, Абрамов ВЮ, Севастьянов ВИ. Характеристика фенотипа МСК из жировой ткани человека методом проточной цитометрии. Технологии живых систем. 2009; 6 (5): 40–46. Egorova VA, Ponomareva AS, Bogdanova NB, Abramov VYu, Sevastianov VI. Characteristic phenotype MSC from the fatty tissue of humans by flow cytometry. Technologies of living systems.2009; 6 (5): 40–46.; Макушин ВД, Степанов МА, Ступина ТА. Экспериментальное моделирование остеоартроза коленного сустава у собак. Биомедицина. 2012; 3: 108–115. Makushin VD, Stepanov MA, Stupina TA. Experimental modeling of knee joint osteoarthrosis in dogs. Biomedicine. 2012; 3: 108–115.; Vallon R, Freuler F. et al. Serum amyloid A (apoSAA) expression is up-regulated in rheumatoid arthritis and transcription of matrix metalloproteinases. Immunology. 2001; 166: 2801–2807.; Шиманский ВА, Кушнир ВА, Фролов ВИ, Крашенинников МЕ, Баранова ОВ, Онищенко НА. Применение аутологичных клеток костного мозга для торможения разрушения структуры хряща при остеоартрозе коленных суставов. Биологические резервы клеток костного мозга и коррекция органных дисфункций. Под ред. Шумакова ВИ, Онищенко НА. М.: ЛАВР, 2009; гл. 10: 213–224. Shimansky VA, Kushnir VA, Frolov VI, Krasheninnikov IU, Baranova S, Onishchenko NA. The use of autologous bone marrow cells for inhibition of the destruction of the structure of cartilage in osteoarthritis of the knee. Biological reserves bone marrow cells and correction of organ dysfunction. Ed. Shumakov VI, Onishchenko NA. M.: LAVR, 2009; Ch. 10: 213–224.; Fisher SA, Tam RY, Shoichet MS. Tissue mimetics: engineered hydrogel matrices provide biomimetic environments for cell growth. Tissue Engineering. 2014; Part A, 20 (5, 6): 895–898.; Севастьянов ВИ, Перова НВ, Сайковский РС, Соловьева ИВ. Применение инъекционных форм биополимерных гетерогенных гидрогелей при дегенеративно-дистрофических поражениях суставов: Практическое пособие для врачей. М.: Триада, 2012: 27. Sevastianov VI, Perova NV, Sajkovskij RS, Solov'eva IV. The use of injectable biopolymer heterogeneous hydrogels with degenerative-dystrophic lesions of the joints. Practical manual for doctors. M.: Triada; 2012.; Сайковский РС, Савенкова НА, Аверьянов АВ, Лисица АВ. Эффективность применения препарата Сферогель для лечения гонартроза. Клиническая практика. 2013; 3: 4–10. Saykovskiy RS, Savenkova NA, Averyanov AV, Lisitsa AV. The effectiveness of Spherogel in the treatment of knee osteoarthritis. Klinicheckaya praktika. 2013; 3: 4–10.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/500