A clinical case of successful treatment of surgical site infection in a kidney and pancreas recipient ; Клинический случай успешного лечения инфекции области хирургического вмешательства у реципиента почки и поджелудочной железы

Συγγραφείς: M. Sh. Khubutiya, N. S. Zhuravel, N. V. Shmarina, A. G. Balkarov, I. V. Dmitriev, R. V. Storozhev, K. E. Lazareva, М. Ш. Хубутия, Н. С. Журавель, Н. В. Шмарина, А. Г. Балкаров, И. В. Дмитриев, Р. В. Сторожев, К. Е. Лазарева

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 17, № 3 (2025); 309-317 ; Трансплантология; Том 17, № 3 (2025); 309-317 ; 2542-0909 ; 2074-0506

Θεματικοί όροι: трансплантация почки и поджелудочной железы, infectious complications, kidney and pancreas transplantation, инфекционные осложнения

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/1035/960; Deng Y, Li N, Wu Y, Wang M, Yang S, Zheng Y, et al. Global, regional, and national burden of diabetes-related chronic kidney disease from 1990 to 2019. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12:672350. PMID: 34276558 https://doi.org/10.3389/fendo.2021.672350; Jha R, Lopez-Trevino S, Kankanamalage HR, Jha JC. Diabetes and renal complications: an overview on pathophysiology, biomarkers and therapeutic interventions. Biomedicines. 2024;12(5):1098. PMID: 38791060 https://doi.org/10.3390/biomedicines12051098; Хубутия М.Ш., Пинчук А.В., Дмитриев И.В., Лазарева К.Е., Балкаров А.Г., Сторожев Р.В. и др. Сочетанная трансплантация почки и поджелудочной железы: ранние послеоперационные осложнения. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2014;16(2):24–29.; Nagendra L, Fernandez CJ, Pappachan JM. Simultaneous pancreas-kidney transplantation for end-stage renal failure in type 1 diabetes mellitus: current perspectives. World J Transplant. 2023;13(5):208–220. PMID: 37746036 https://doi.org/10.5500/wjt.v13.i5.208; Martin D, Alberti P, Demartines N, Phillips M, Casey J, Sutherland A. Whole-organ pancreas and islets transplantations in UK: an overview and future directions. J Clin Med. 2023;12(9):3245. PMID: 37176684 https://doi.org/10.3390/jcm12093245; Журавель Н.С., Балкаров А.Г., Дмитриев И.В., Шмарина Н.В., Лазарева К.Е., Анисимов Ю.А. и др. Сочетанная трансплантация почки и поджелудочной железы: 16-летний опыт НИИ СП имени Н.В. Склифосовского. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2024;26(S):117. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2024-S-117; Vidal Crespo N, López Cubillana P, López González PA, Alarcón CM, Hernández JR, Martínez LA, et al. Simultaneous pancreas-kidney transplantation: early complications and long-term outcomes - a single-center experience. Can Urol Assoc J. 2022;16(7):E357–E362. PMID: 35230938 https://doi.org/10.5489/cuaj.7635; King EA, Kucirka LM, McAdams-DeMarco MA, Massie AB, Al Ammary F, Ahmed R, et al. Early hospital readmission after simultaneous pancreas-kidney transplantation: patient and center-level factors. Am J Transplant. 2016;16(2):541– 549. PMID: 26474070 https://doi.org/10.1111/ajt.13485; Schreiber PW, Laager M, Boggian K, Neofytos D, van Delden C, Egli A, et al. Surgical site infections after simultaneous pancreas kidney and pancreas transplantation in the Swiss Transplant Cohort Study. J Hosp Infect. 2022;128:47–53. PMID: 35840001 https://doi.org/10.1016/j.jhin.2022.07.009; Sartelli M, Coccolini F, Kluger Y, Agastra E, Abu-Zidan FM, Sayed AEl, et al. WSES/GAIS/WSIS/SIS-E/AAST global clinical pathways for patients with skin and soft tissue infections. World J Emerg Surg. 2022;17(1):3. PMID: 35033131 https://doi.org/10.1186/s13017-022-00406-2; Zabaglo M, Leslie SW, Sharman T. Postoperative wound infections. Stat-Pearls Publishing; 2025. PMID: 32809368; Silva JT, Fernandez-Ruiz M, Aguado JM. Multidrug-resistant gram-negative infection in solid organ transplant recipients: implications for outcome and treatment. Curr Opin Infect Dis. 2018;31(6):499–505. PMID: 30299353 https://doi.org/10.1097/QCO.0000000000000488; Freire MР, Pouch S, Manesh A, Giannella M. Burden and management of multi-drug resistant organism infections in solid organ transplant recipients across the world: a narrative review. Transplant Int. 2024;37:12469. PMID: 38952482 https://doi.org/10.3389/ti.2024.12469; Cardoso C, Bravo P, Messias A, Martins J, Oliveira C. Prophylaxis in kidney transplantation. Braz J Transpl. 2024;27:e3324. https://doi.org/10.53855/bjt.v27i1.608_ENG; Schreiber PW, Hoessly LD, Boggian K, Neofytos D, van Delden C, Egli A, et al. Surgical site infections after kidney transplantation are independently associated with graft loss. Am J Transplant. 2024;24(5):795–802. PMID: 38042413 https://doi.org/10.1016/j.ajt.2023.11.013; Гельфанд Б.Р., Кубышкин В.А., Козлов Р.С., Хачатрян Н.Н. (ред.) Хирургические инфекции кожи и мягких тканей. Российские национальные рекомендации. 2-е изд., перераб., доп. Москва: Издательство МАИ; 2015.; Журавель Н.С. Забрюшинная трансплантация поджелудочной железы с кишечным дренированием панкреатического сока: дисс. . канд. мед. наук. Москва; 2023. URL: https://www.dissercat.com/content/zabryushinnaya-transplantatsiya-podzheludochnoizhelezy-s-kishechnym-drenirovaniempankreati [Дата обращения 1 июля 2025 г.].; Yetmar ZA, McCord M, Lahr BD, Kudva YC, Seville MT, Bosch W, et al. Impact of perioperative prophylaxis with enterococcus activity on risk of surgical-site infection after pancreas transplantation. Transplant Direct. 2023;9(7):e1496. PMID: 37305653 https://doi.org/10.1097/TXD.0000000000001496; Kalil AC, Dakroub H, Freifeld AG. Sepsis and solid organ transplantation. Curr Drug Targets. 2007;8(4):533-541. PMID: 17430124 https://doi.org/10.2174/138945007780362746; Кулабухов В.В., Зубарева Н.А., Ярцев П.А. Сепсис: контроль очага инфекции. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2021;18(5):89–96. https://doi.org/10.21292/2078-5658-2021-18-5-89-96; Abbo LM, Grossi PA. Surgical site infections: Guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Clin Transplant. 2019;33(9):e13589. PMID: 31077619 https://doi.org/10.1111/ctr.13589; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/1035

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/1035
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2025-17-3-309-317

Efficiacy of Prostatex Plus in the prevention of prostate biopsy complications ; Эффективность препарата Простатекс Плюс в профилактике осложнений биопсии предстательной железы

Συγγραφείς: I. A. Aboyan, S. V. Grachev, S. M. Pakus, K. I. Badyan, И. А. Абоян, С. В. Грачёв, С. М. Пакус, К. И. Бадьян

Συνεισφορές: The study was conducted with support «Gerofarm», Исследование имело спонсорскую поддержку «Герофарм»

Πηγή: Urology Herald; Том 12, № 6 (2024); 5-17 ; Вестник урологии; Том 12, № 6 (2024); 5-17 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2024-12-6

Θεματικοί όροι: Простатекс Плюс, transrectal biopsy, infectious complications, Prostatex Plus, трансректальная биопсия, инфекционные осложнения

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/974/605; Cornford P, van den Bergh RCN, Briers E, Van den Broeck T, Brunckhorst O, Darraugh J, Eberli D, De Meerleer G, De Santis M, Farolfi A, Gandaglia G, Gillessen S, Grivas N, Henry AM, Lardas M, van Leenders GJLH, Liew M, Linares Espinos E, Oldenburg J, van Oort IM, Oprea-Lager DE, Ploussard G, Roberts MJ, Rouvière O, Schoots IG, Schouten N, Smith EJ, Stranne J, Wiegel T, Willemse PM, Tilki D. EAU-EANM-ESTRO-ESUR-ISUP-SIOG Guidelines on Prostate Cancer-2024 Update. Part I: Screening, Diagnosis, and Local Treatment with Curative Intent. Eur Urol. 2024;86(2):148-163. DOI:10.1016/j.eururo.2024.03.027; Каприн А.Д., Алексеев Б.Я., Матвеев В.Б., Пушкарь Д.Ю., Говоров А.В., Горбань Н.А., Киричек А.А., Бирюков В.А., Волкова М.И., Гулидов И.А., Гуменецкая Ю.В., Крылов В.В., Карякин О.Б., Крашенинников А.А., Мардынский Ю.С., Нюшко К.М., Захарова Т.И., Костин А.А., Хмелевский Е.В., Феденко А.А., Болотина Л.В., Фалалеева Н.А., Филоненко Е.В., Невольских А.А., Иванов С.А., Хайлова Ж.В., Геворкян Т.Г. Рак предстательной железы. Современная онкология. 2021;23(2):211-247. DOI:10.26442/18151434.2021.2.200959; Wenzel M, Theissen L, Preisser F, Lauer B, Wittler C, Humke C, Bodelle B, Ilievski V, Kempf VAJ, Kluth LA, Chun FKH, Mandel P, Becker A. Complication Rates After TRUS Guided Transrectal Systematic and MRI-Targeted Prostate Biopsies in a High-Risk Region for Antibiotic Resistances. Front Surg. 2020;7:7. DOI:10.3389/fsurg.2020.00007; Кельн А.А., Зырянов А.В., Измайлов А.А., Зотов П.Б., Знобищев В.Г., Пономарев А.В. Сравнительный анализ нежелательных явлений при использовании различных методик биопсии предстательной железы. Онкоурология. 2019;15(1):66-74. DOI:10.17650/1726-9776-2019-15-1-66-74; Borghesi M, Ahmed H, Nam R, Schaeffer E, Schiavina R, Taneja S, Weidner W, Loeb S. Complications After Systematic, Random, and Image-guided Prostate Biopsy. Eur Urol. 2017;71(3):353-365. DOI:10.1016/j.eururo.2016.08.004; Попов С.В., Орлов И.Н., Чернышева Д.Ю., Топузов Т.М., Малевич С.М., Нерадовский В.А. Варианты антибактериальной профилактики инфекционных осложнений биопсии предстательной железы. Обзор международных клинических рекомендаций. Экспериментальная и клиническая урология. 2021;14(3):150-155. DOI:10.29188/2222-8543-2021-14-3-150-155; Палагин И.С., Сухорукова М.В., Дехнич А.В., Эйдельштейн М.В., Перепанова Т.С., Козлов Р.С., исследовательская группа «ДАРМИС-2018». Антибиотикорезистентность возбудителей внебольничных инфекций мочевых путей в России: результаты многоцентрового исследования «ДАРМИС-2018». Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2019;21(2):134-146. DOI:10.36488/cmac.2019.2.134-146; Нашивочникова Н.А. Сравнительная оценка эффективности использования препаратов с экстрактом предстательной железы в комплексной терапии пациентов с хроническим простатитом. Экспериментальная и клиническая урология. 2023;16(3):119-128. DOI:10.29188/2222-8543-2023-16-3-119-128; Неймарк А.И., Ноздрачев Н.А., Кульчавеня Е.В., Холтобин Д.П., Давыдов А.В., Неймарк А.Б., Ковалева Ю.С., Яковлев А.В. Применение препарата Простатекс плюс у пациентов с хроническим абактериальным простатитом на фоне ДГПЖ. Урология. 2024;(2):41-46. DOI:10.1016/j.eururo.2011.12.058; Loeb S, van den Heuvel S, Zhu X, Bangma CH, Schröder FH, Roobol MJ. Infectious complications and hospital admissions after prostate biopsy in a European randomized trial. Eur Urol. 2012;61(6):1110-1114. DOI:10.1016/j.eururo.2011.12.058; Нестеров С.Н., Ханалиев Б.В., Бонецкий Б.А., Володичев В.В., Васильев В.Р., Магомедов Ш.С. Инфекционно-воспалительные поражения у пациентов с сопутствующим хроническим простатитом после хирургических вмешательств на предстательной железе в раннем послеоперационном периоде. Вестник Национального медико-хирургического Центра им. Н.И. Пирогова. 2018;13(1):85-87.; Григорьев Н.А., Абдуллин И.И., Гвасалия Б.Р., Логинов А.В., Жиляев Е.В. Комбинированная антибиотикопрофилактика инфекционных осложнений биопсии предстательной железы. Андрология и генитальная хирургия. 2021;22(3):49-55. DOI:10.17650/1726-9784-2021-22-3-49-55; Кадыров З.А., Фаниев М.В., Сосновский И.Б., Шевченко Н.П. Профилактика инфекционных осложнений после трансректальной мультифокальной биопсии предстательной железы: оценка эффективности комбинированного противомикробного препарата Комбифлокс®. Экспериментальная и клиническая урология. 2019;(1):140-145. DOI:10.29188/2222-8543-2019-11-1-140-144; Спивак Л.Г., Платонова Д.В. Эффективность и безопасность применения препарата Витапрост® Плюс у пациентов с хроническим бактериальным простатитом, а также у пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы до и после трансуретральной резекции. Эффективная фармакотерапия. 2017;24:16-21.; Павлов В.Н., Казихинуров А.А., Казихинуров Р.А., Сабирзянов С.Ш., Салеева Ю.Д., Казихинурова К.А. Применение препарата экстракта простаты у пациентов после трансуретральной биполярной резекции по поводу доброкачественной гиперплазии. Урология. 2022;(6):42-46. DOI:10.18565/urology.2022.6.42-46; https://www.urovest.ru/jour/article/view/974

Διαθεσιμότητα: https://www.urovest.ru/jour/article/view/974
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2024-12-6-5-17

A case of surgical site infection in a recipient after transplantation of the kidney infected with Klebsiella pneumoniae ; Случай инфекции области хирургического вмешательства у реципиента после трансплантации почки, инфицированной Klebsiella pneumoniae

Συγγραφείς: N. V. Shmarina, A. Rustambek Uulu, I. V. Dmitriev, A. G. Balkarov, R. V. Storozhev, N. S. Zhuravel, D. V. Lonshakov, K. E. Lazareva, Н. В. Шмарина, А. Рустамбек Уулу, И. В. Дмитриев, А. Г. Балкаров, Р. В. Сторожев, Н. С. Журавель, Д. В. Лоньшаков, К. Е. Лазарева

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 17, № 1 (2025); 56-65 ; Трансплантология; Том 17, № 1 (2025); 56-65 ; 2542-0909 ; 2074-0506

Θεματικοί όροι: глубокие инфекции кожи и мягких тканей, вызванные бактериями Klebsiella pneumonia, infectious complications after kidney transplantation, deep skin and soft tissue infections caused by Klebsiella pneumonia bacteria, инфекционные осложнения после трансплантации почки

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/966/928; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/966/938; Ison MG, Nalesnik MA. An update on donor-derived disease transmission in organ transplantation. Am J Transplant. 2011;11(6):1123–1130. PMID: 21443676 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2011.03493.x; Kovacs Jr CS, Koval CE, van Duin D, de Morais AG, Gonzalez BE, Avery RK, et al. Selecting suitable solid organ transplant donors: reducing the risk of donortransmitted infections. World J Transplant. 2014;4(2):43–56. PMID: 25032095 https://doi.org/10.5500/wjt.v4.i2.43; Fischer SA, Lu K. AST Infectious Diseases Community of Practice. Screening of donor and recipient in solid organ transplantation. Am J Transplant. 2013;13(Suppl 4):9–21. PMID: 23464994 https://doi.org/10.1111/ajt.12094; TSANZ The Transplantation Society of Australia and New Zealand. Clinical Guidelines for Organ Transplantation from Deceased Donors Version 1.11 – May 2023. Available at: https://tsanz.com.au/storage/documents/TSANZ_Clinical_Guidelines_Version-111_13062023FinalVersion.pdf [Accessed September 04, 2024]; Kaul DR, Vece G, Blumberg E, La Hoz RM, Ison MG, Green M, et al. Ten years of donor-derived disease: a report of the disease transmission advisory committee. Am J Transplant. 2021;21(2):689–702. PMID: 32627325 https://doi.org/10.1111/ajt.16178; Wendt JM, Kaul D, Limbago BM, Ramesh M, Cohle S, Denison AM, et al. Transmission of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection through solid organ transplantation: confirmation via whole genome sequencing. Am J Transpl. 2014;14(11):2633–2639 PMID: 25250717 https://doi.org/10.1111/ajt.12898; Anesi JA, Blumberg EA, Han JH, Lee DH, Clauss H, Climaco A, et al. Risk factors for multidrug-resistant organisms among deceased organ donors. Am J Transpl. 2019;19(9):2468–2478. PMID: 31162785 https://doi.org/10.1111/ajt.15488; Watkins AC, Vedula GV, Horan J, Dellicarpini K, Pak SW, Daly T, et al. The deceased organ donor with an “open abdomen”: proceed with caution. Transpl Infect Dis. 2012;14(3):311–315. PMID: 22283979 https://doi.org/10.1111/j.1399-3062.2011.00712.x; Hellinger WC, Crook JE, Heckman MG, Diehl NN, Shalev JA, Zubair AC, et al. Surgical site infection after liver transplantation: risk factors and association with graft loss or death. Transplantation. 2009;87(9):1387–1393. PMID: 19424041 https://doi.org/10.1097/TP.0b013e3181a25133; Schreiber PW, Hoessly LD, Boggian K, Neofytos D, van Delden C, Egli A, et al. Surgical site infections after kidney transplantation are independently associated with graft loss. Am J Transplant. 2024;24(5):795–802. PMID: 38042413 https://doi.org/10.1016/j.ajt.2023.11.013; Capocasale E, De Vecchi E, Mazzoni MP, Dalla Valle R, Pellegrino C, Ferretti S, et al. Surgical site and early urinary tract infections in 1000 kidney transplants with antimicrobial perioperative prophylaxis. Transplant Proc. 2014;46(10):3455–3458. PMID: 25498071 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2014.07.071; Perdiz LB, Furtado GH, Linhares MM, Gonzalez AM, Pestana JO, Medeiros EA. Incidence and risk factors for surgical site infection after simultaneous pancreas-kidney transplantation. J Hosp Infect. 2009;72(4):326–331. PMID: 19592136 https://doi.org/10.1016/j.jhin.2009.04.016; Carugati M, Arif S, Sudan DL, Collins BH, Haney JC, Schroder JN, et al. Epidemiology of surgical site infections after solid organ transplants in the period 2015–2019: a single-center retrospective cohort study. Am J Transplant. 2022;22(12):3021–3030. PMID: 36056456 https://doi.org/10.1111/ajt.17189; Wong RBK, Minkovich M, Famure O, Li Y, Lee JY, Selzner M, et al. Surgical site complications in kidney transplant recipients: incidence, risk factors and outcomes in the modern era. Can J Surg. 2021;64(6):E669–E676. PMID: 34933944 https://doi.org/10.1503/cjs.015820; Candel FJ, Grima E, Matesanz M, Cervera C, Soto G, Almela M, et al. Bacteremia and septic shock after solidorgan transplantation. Transplant Proc. 2005;37(9):4097–4099. PMID: 16386636 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2005.09.181; Fishman JA. Infection in organ transplantation. Am J Transplant. 2017;17(4):856–879. PMID: 28117944 https://doi.org/10.1111/ajt.14208; Moreno A, Cervera C, Gavaldá J, Rovira M, de la Cámara R, Jarque I, et al. Bloodstream infections among transplant recipients: results of a nationwide surveillance in Spain. Am J Transplant. 2007;7(11):2579–2586. PMID: 17868067 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2007.01964.x; Camargo LF, Marra AR, Pignatari AC, Sukiennik T, Behar PP, Medeiros EA, et al. Nosocomial bloodstream infections in a nationwide study: comparison between solid organ transplant patients and the general population. Transpl Infect Dis. 2015;17(2):308–313. PMID: 25726707 https://doi.org/10.1111/tid.12356; Silva M Jr, Marra AR, Pereira CA, Medina-Pestana JO, Camargo LF. Bloodstream infection after kidney transplantation: epidemiology, microbiology, associated risk factors, and outcome. Transplantation. 2010;90(5):581– 587. PMID: 20585281 https://doi.org/10.1097/TP.0b013e3181e8a680; Schachtner T, Stein M, Reinke P. Sepsis after renal transplantation: clinical, immunological, and microbiological risk factors. Transpl Infect Dis. 2017;19(3). PMID: 28296035 https://doi.org/10.1111/tid.12695; Abbo LM, Grossi PA. AST ID Community of Practice. Surgical site infections: guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Clin Transplant. 2019;33(9):e13589. PMID: 31077619 https://doi.org/10.1111/ctr.13589; Drago F, Ciccarese G, Gasparini G, Cogorno L, Javor S, Toniolo A, et al. Contemporary infectious exanthems: an update. Future Microbiol. 2017;12:171– 193. PMID: 27838923 https://doi.org/10.2217/fmb-2016-0147; Casacci M, Carpentier O, Truffert P, Piette F, Catteau B. Neonatal maculopapular exanthema revealing septicemia due to Klebsiella pneumoniae via maternofetal infection. Ann Dermatol Venereol. 2006;133(1):31–33. PMID: 16495848 https://doi.org/10.1016/s0151-9638(06)70839-0; Cheng NC, Cheng Y, Tai HC, Chien KL, Wang SH, Chen YH, et al. High mortality risk of type III monomicrobial gram-negative necrotiz ing fasciitis: the role of extraintestinal pathogenic Escherichia coli (ExPEC) and Klebsiella pneumoniae. Int J Infect Dis. 2023;132:64–71. PMID: 37059297 https://doi.org/10.1016/j.ijid.2023.04.390; DiNubile MJ, Lipsky BA. Complicated infections of skin and skin structures: when the infection is more than skin deep. J Antimicrob Chemother. 2004;53 Suppl 2:ii37-50. PMID: 15150182 https:// doi.org/10.1093/jac/dkh202; Cheng NC, Yu YC, Tai HC, Hsueh PR, Chang SC, Lai SY, et al. Recent trend of necrotizing fasciitis in Taiwan: focus on monomicrobial Klebsiella pneumoniae necrotizing fasciitis. Clin Infect Dis. 2012;55(7):930–939. PMID: 22715175 https://doi.org/10.1093/cid/cis565; Bair MJ, Chi H, Wang WS, Hsiao YC, Chiang RA, Chang KY. Necrotizing fasciitis in southeast Taiwan: clinical features, microbiology, and prognosis. Int J Infect Dis. 2009;13(2):255–260. PMID: 18922719 https://doi.org/10.1016/j.ijid.2008.04.015; Fang CT, Lai SY, Yi WC, Hsueh PR, Liu KL, Chang SC. Klebsiella pneumoniae genotype K1: an emerging pathogen that causes septic ocular or central nervous system complications from pyogenic liver abscess. Clin Infect Dis. 2007;45(3):284–293. PMID: 17599305 https://doi.org/10.1086/519262; Haidar G, Green M; American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Intra-abdominal infections in solid organ transplant recipients: guidelines from the American Society of Transplantation Infectious Diseases Community of Practice. Clin Transplant. 2019;33(9):e13595. PMID: 31102546 https://doi.org/10.1111/ctr.13595; Tamma PD, Han JH, Rock C, Harris AD, Lautenbach E, Hsu AJ, et al. Carbapenem therapy is associated with improved survival compared with piperacillin-tazobactam for patients with extended-spectrum beta-lactamase bacteremia. Clin Infect Dis. 2015;60(9):1319– 1325. PMID: 25586681 https://doi.org/10.1093/cid/civ003; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/966

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/966
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2025-17-1-56-65

Features of intestinal microbiota composition in cancer patients ; Особенности состава кишечной микробиоты у онкологических больных

Συγγραφείς: V. V. Aginova, Z. V. Grigorievskaya, I. N. Petukhova, N. S. Bagirova, I. V. Tereshchenko, I. V. Samoylenko, A. O. Kuzmenko, P. V. Kononets, В. В. Агинова, З. В. Григорьевская, И. Н. Петухова, Н. С. Багирова, И. В. Терещенко, И. В. Самойленко, А. О. Кузьменко, П. В. Кононец

Συνεισφορές: The study was financially supported by the Ministry of Health of the Russian Federation under the R&D program 123021600103-5., Исследование выполнено при финансовой̆ поддержке Министерства здравоохранения Российской̆ Федерации в рамках НИР по теме 123021600103-5.

Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 23, № 6 (2024); 51-61 ; Сибирский онкологический журнал; Том 23, № 6 (2024); 51-61 ; 2312-3168 ; 1814-4861

Θεματικοί όροι: иммунотерапия, esophageal cancer, skin melanoma, intestinal microbiota, dysbiosis, infectious complications, immunotherapy, рак пищевода, меланома кожи, кишечная микробиота, дисбиоз, инфекционные осложнения

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3363/1306; Bagheri Z., Moeinzadeh L., Razmkhah M. Roles of Microbiota in Cancer: From Tumor Development to Treatment. J Oncol. 2022. doi:10.1155/2022/3845104.; Kim J., Lee H.K. The Role of Gut Microbiota in Modulating Tumor Growth and Anticancer Agent Efficacy. Mol Cells. 2021; 44(5): 356–62. doi:10.14348/molcells.2021.0032.; Григорьевская З.В., Петухова И.Н., Багирова Н.С., Агинова В.В., Кононец П.В. Роль микробиоты в онкогенезе. Сибирский онкологический журнал. 2023; 22(2): 129–42. doi:10.21294/1814-4861-2023-22-2-129-142.; Багирова Н.С., Григорьевская З.В., Терещенко И.В., Петухова И.Н., Казимов А.Э., Винникова В.Д., Вершинская В.А. Микробиологическая и молекулярная идентификация анаэробного компонента микробиоты полости рта у больных раком орофарингеальной области. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 66(5): 301–8. doi:10.51620/0869-2084-2022-67-5-301-308.; Багирова Н.С., Петухова И.Н., Григорьевская З.В., Сытов А.В., Слукин П.В., Горемыкина Е.А., Хохлова О.Е., Фурсова Н.К., Казимов А.Э. Микробиота полости рта у больных раком орофарингеальной области с акцентом на Candida spp. Опухоли головы и шеи. 2022; 12(3): 71–85. doi:10.17650/2222-1468-2022-12-3-71-85.; Bhatt A.P., Redinbo M.R., Bultman S.J. The role of the microbiome in cancer development and therapy. CA Cancer J Clin. 2017; 67(4): 326–44. doi:10.3322/caac.21398.; Fan X., Jin Y., Chen G., Ma X., Zhang L. Gut Microbiota Dysbiosis Drives the Development of Colorectal Cancer. Digestion. 2021; 102(4): 508–15. doi:10.1159/000508328.; Collado M.C., Derrien M., Isolauri E., de Vos W.M., Salminen S. Intestinal integrity and Akkermansia muciniphila, a mucin-degrading member of the intestinal microbiota present in infants, adults, and the elderly. Appl Environ Microbiol. 2007; 73(23): 7767–70. doi:10.1128/AEM.01477-07.; Dai Z., Zhang J., Wu Q., Chen J., Liu J., Wang L., Chen C., Xu J., Zhang H., Shi C., Li Z., Fang H., Lin C., Tang D., Wang D. The role of microbiota in the development of colorectal cancer. Int J Cancer. 2019; 145(8): 2032–41. doi:10.1002/ijc.32017.; Yu T., Guo F., Yu Y., Sun T., Ma D., Han J., Qian Y., Kryczek I., Sun D., Nagarsheth N., Chen Y., Chen H., Hong J., Zou W., Fang J.Y. Fusobacterium nucleatum Promotes Chemoresistance to Colorectal Cancer by Modulating Autophagy. Cell. 2017; 170(3): 548–63. doi:10.1016/j.cell.2017.07.008.; Yachida S., Mizutani S., Shiroma H., Shiba S., Nakajima T., Sakamoto T., Watanabe H., Masuda K., Nishimoto Y., Kubo M., Hosoda F., Rokutan H., Matsumoto M., Takamaru H., Yamada M., Matsuda T., Iwasaki M., Yamaji T., Yachida T., Soga T., Kurokawa K., Toyoda A., Ogura Y., Hayashi T., Hatakeyama M., Nakagama H., Saito Y., Fukuda S., Shibata T., Yamada T. Metagenomic and metabolomic analyses reveal distinct stage-specific phenotypes of the gut microbiota in colorectal cancer. Nat Med. 2019; 25(6): 968–76. doi:10.1038/s41591-019-0458-7.; Liu S., Dai J., Lan X., Fan B., Dong T., Zhang Y., Han M. Intestinal bacteria are potential biomarkers and therapeutic targets for gastric cancer. Microb Pathog. 2021; 151. doi:10.1016/j.micpath.2021.104747.; Сухина М.А., Ставцев М.Г., Ачкасов С.И., Юдин С.М. Особенности кишечной микробиоты у пациентов с колоректальным раком. Колопроктология. 2023; 22(3): 94–103. doi:10.33878/2073-7556-2023-22-3-94-103.; Vadhwana B., Tarazi M., Boshier P.R., Hanna G.B. Evaluation of the Oesophagogastric Cancer-Associated Microbiome: A Systematic Review and Quality Assessment. Cancers (Basel). 2023; 15(10): 2668. doi:10.3390/cancers15102668.; Gopalakrishnan V., Helmink B.A., Spencer C.N., Reuben A., Wargo J.A. The Influence of the Gut Microbiome on Cancer, Immunity, and Cancer Immunotherapy. Cancer Cell. 2018; 33(4): 570–80. doi:10.1016/j.ccell.2018.03.015.; Бондаренко В.М., Мацулевич Т.В. Дисбактериоз кишечника как клинико-лабораторный синдром: современное состояние проблемы. М., 2007. 304 с.; Chen D.S., Mellman I. Elements of cancer immunity and the cancer-immune set point. Nature. 2017; 541(7637): 321–30. doi:10.1038/nature21349.; Lapébie P., Lombard V., Drula E., Terrapon N., Henrissat B. Bacteroidetes use thousands of enzyme combinations to break down glycans. Nat Commun. 2019; 10(1): 2043. doi:10.1038/s41467-019-10068-5.; Feng J., Qian Y., Zhou Z., Ertmer S., Vivas E.I., Lan F., Hamilton J.J., Rey F.E., Anantharaman K., Venturelli O.S. Polysaccharide utilization loci in Bacteroides determine population fitness and community-level interactions. Cell Host Microbe. 2022; 30(2): 200–15. doi:10.1016/j.chom.2021.12.006.; Olekhnovich E.I., Ivanov A.B., Babkina A.A., Sokolov A.A., Ulyantsev V.I., Fedorov D.E., Ilina E.N. Consistent Stool Metagenomic Biomarkers Associated with the Response To Melanoma Immunotherapy. mSystems. 2023; 8(2). doi:10.1128/msystems.01023-22.; Bredin P., Naidoo J. The gut microbiome, immune check point inhibition and immune-related adverse events in non-small cell lung cancer. Cancer Metastasis Rev. 2022; 41(2): 347–66. doi:10.1007/s10555-022-10039-1. Erratum in: Cancer Metastasis Rev. 2024; 43(2): 865. doi:10.1007/s10555-022-10062-2.; Zakharevich N.V., Morozov M.D., Kanaeva V.A., Filippov M.S., Zyubko T.I., Ivanov A.B., Ulyantsev V.I., Klimina K.M., Olekhnovich E.I. Systemic metabolic depletion of gut microbiome undermines responsiveness to melanoma immunotherapy. Life Sci Alliance. 2024; 7(5). doi:10.26508/lsa.202302480.; Ситкин С.И., Вахитов Т.Я., Демьянова Е.В. Микробиом, дисбиоз толстой кишки и воспалительные заболевания кишечника: когда функция важнее таксономии. Альманах клинической медицины. 2018; 46(5): 396–425. doi:10.18786/2072-0505-2018-46-5-396-425.; ОСТ 91500.11.0004-2003. Отраслевой стандарт. Протокол ведения больных. Дисбактериоз кишечника (утв. Приказом Минздрава России от 09.06.2003 № 231).; Zheng Z., Hu Y., Tang J., Xu W., Zhu W., Zhang W. The implication of gut microbiota in recovery from gastrointestinal surgery. Front Cell Infect Microbiol. 2023; 13. doi:10.3389/fcimb.2023.1110787.; Lederer A.K., Chikhladze S., Kohnert E., Huber R., Müller A. Current Insights: The Impact of Gut Microbiota on Postoperative Complications in Visceral Surgery-A Narrative Review. Diagnostics (Basel). 2021; 11(11): 2099. doi:10.3390/diagnostics11112099.; Liu Y., He W., Yang J., He Y., Wang Z., Li K. The effects of preoperative intestinal dysbacteriosis on postoperative recovery in colorectal cancer surgery: a prospective cohort study. BMC Gastroenterol. 2021; 21(1): 446. doi:10.1186/s12876-021-02035-6.; Zhao L., Cho W.C., Nicolls M.R. Colorectal Cancer-Associated Microbiome Patterns and Signatures. Front Genet. 2021; 12. doi:10.3389/fgene.2021.787176.; Cheng W.T., Kantilal H.K., Davamani F. The Mechanism of Bacteroides fragilis Toxin Contributes to Colon Cancer Formation. Malays J Med Sci. 2020; 27(4): 9–21. doi:10.21315/mjms2020.27.4.2.; Witt R.G., Cass S.H., Tran T., Damania A., Nelson E.E., Sirmans E., Burton E.M., Chelvanambi M., Johnson S., Tawbi H.A., Gershenwald J.E., Davies M.A., Spencer C., Mishra A., Wong M.C., Ajami N.J., Peterson C.B., Daniel C.R., Wargo J.A., McQuade J.L., Nelson K.C. Gut Microbiome in Patients With Early-Stage and Late-Stage Melanoma. JAMA Dermatol. 2023; 159(10): 1076–84. doi:10.1001/jamadermatol.2023.2955.; Stoma I., Littmann E.R., Peled J.U., Giralt S., van den Brink M.R.M., Pamer E.G., Taur Y. Compositional Flux Within the Intestinal Microbiota and Risk for Bloodstream Infection With Gram-negative Bacteria. Clin Infect Dis. 2021; 73(11): 4627–35. doi:10.1093/cid/ciaa068.; Стома И.О., Усс М.А., Миланович Н.Ф., Стома В.О., Губанова Т.Н., Модулева Е.А. Мониторинг состава микробиома кишечника при трансплантации гемопоэтических стволовых клеток: применение в клинической практике. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2022; 11(2): 85–90. doi:10.33029/2305-3496-2022-11-2-85-90.; Fonseca D.C., Marques Gomes da Rocha I., Depieri Balmant B., Callado L., Aguiar Prudêncio A.P., Tepedino Martins Alves J., Torrinhas R.S., da Rocha Fernandes G., Linetzky Waitzberg D. Evaluation of gut microbiota predictive potential associated with phenotypic characteristics to identify multifactorial diseases. Gut Microbes. 2024; 16(1). doi:10.1080/19490976.2023.2297815.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3363

Διαθεσιμότητα: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/3363
https://doi.org/10.21294/1814-4861-2024-23-6-51-61

Prevention and treatment of infectious and inflammatory complications in gynecological patients in the postoperative period ; Профилактика и лечение инфекционно-воспалительных осложнений у пациентов гинекологического профиля в послеоперационном периоде

Συγγραφείς: Ju. E. Dobrokhotova, A. E. Markarov, T. S. Kotomina, S. А. Khlynova, E. A. Markova, O. A. Slyusareva, Ю. Э. Доброхотова, A. Э. Маркаров, Т. С. Котомина, С. А. Хлынова, Э. А. Маркова, О. А. Слюсарева

Πηγή: Meditsinskiy sovet = Medical Council; № 4 (2025); 76-84 ; Медицинский Совет; № 4 (2025); 76-84 ; 2658-5790 ; 2079-701X

Θεματικοί όροι: инфекционные осложнения, acute vaginitis, bacterial vaginosis, Depantol, postoperative period, infectious complications, острый вагинит, бактериальный вагиноз, Депантол, послеоперационный период

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/9027/7845; Noé G.K. Genital prolapse surgery: what options do we have in the age of mesh issues? J Clin Med. 2021;10(2):267. https://doi.org/10.3390/jcm10020267.; Беженарь ВФ, Линде ВА, Плеханов АН (ред.). Влагалищный доступ в гинекологии. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2024. 200 с. https://doi.org/10.33029/9704-8150-9-VIG-2024-1-200.; Maher C, Yeung E, Haya N, Christmann-Schmid C, Mowat A, Chen Z et al. Surgery for women with apical vaginal prolapse. Cochrane Database Syst Rev. 2023;7(7):CD012376. https://doi.org/10.1002/14651858.CD012376.pub2.; Лапина ИА, Доброхотова ЮЭ, Таранов ВВ, Чирвон ТГ, Волкова П, Малахова АА. Комплексное ведение пациенток с пролапсом тазовых органов и метаболическим синдромом. Гинекология. 2021;23(3):260–266. https://doi.org/10.26442/20795696.2021.3.200962.; Balgobin S, Balk EM, Porter AE, Misal M, Grisales T, Meriwether KV et al.; Society of Gynecologic Surgeons Systematic Review Group. Enabling Technologies for Gynecologic Vaginal Surgery: A Systematic Review. Obstet Gynecol. 2024;143(4):524–537. https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000005522.; Lowenstein L, Mor O, Matanes E, Justman N, Stuart A, Baekelandt J. Conventional vaginal approach vs. transvaginal natural orifice transluminal endoscopic surgery for treating apical prolapse, a randomized controlled study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2024;303:180–185. https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2024.10.032.; Miranne JM, Gabriel I, Cohen SL, Abdalian T, Ajao MO, Minassian VA. Oxycodone Use During the Postoperative Period After Hysterectomy for Benign Indications. Female Pelvic Med Reconstr Surg. 2022;28(2):90–95. https://doi.org/10.1097/SPV.0000000000001084.; Худолей ЕП, Ищенко АИ, Александров ЛС, Ищенко АА. Применение принципов fast track хирургии в лечении тазового пролапса. Архив акушерства и гинекологии им. В.Ф. Снегирева. 2019;6(2):98–102. https://doi.org/10.18821/2313-8726-2019-6-2-98-102.; Волков ОА, Шрамко СВ, Марченко ЕЕ, Карапетян АЖ, Власенко АЕ. Влияние технологии ускоренного восстановления на результаты лапароскопических негистерэктомических операций. Акушерство и гинекология. 2024;(9):99–107. https://doi.org/10.18565/aig.2024.155.; Доброхотова ЮЭ, Лапина ИА, Тян АГ, Таранов ВВ, Чирвон ТГ, Глебов НВ, Кайкова ОВ. Профилактика инфекционных осложнений после операции по поводу пролапса гениталий. Акушерство и гинекология. 2024;(4):139–146. https://doi.org/10.18565/aig.2024.70.; Nowakowski Ł, Gałczyński K, Dybowski M, Typek R, Dawidowicz A, Miotła P, Olcha P, Rechberger T. Effects of topical dehydroepiandrosterone therapy in women after pelvic organ prolapse surgery. Menopause. 2023;30(6):629–634. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000002183.; Søgaard NB, Glavind K. Complications and re-operations after tension-free vaginal tape operation in women with stress urinary incontinence. Int Urogynecol J. 2021;32(1):159–166. https://doi.org/10.1007/s00192-020-04402-5.; Lundmark Drca A, Alexandridis V, Andrada Hamer M, Teleman P, Söderberg MW, Ek M. Dyspareunia and pelvic pain: comparison of midurethral sling methods 10 years after insertion. Int Urogynecol J. 2024;35(1):43–50. https://doi.org/10.1007/s00192-023-05585-3.; Daly JO, Frazer M, Cartwright R, Veit-Rubin N, Giles M. The role of microbial colonisation and infection in pelvic floor mesh complications and implications for management: a commentary. BJOG. 2020;127(2):260–263. https://doi.org/10.1111/1471-0528.15965.; Манухин ИБ, Манухина ЕИ, Сафарян ИР. Санация влагалища как способ профилактики послеоперационных осложнений у пациенток с различной гинекологической патологией. РМЖ. Мать и дитя. 2021;4(4):322–327. https://doi.org/10.32364/2618-8430-2021-4-4-322-327.; Ciarolla AA, Lapin N, Williams D, Chopra R, Greenberg DE. Physical approaches to prevent and treat bacterial biofilm. Antibiotics. 2022;12(1):54. https://doi.org/10.3390/antibiotics12010054.; Harris JB, Monir RL, Schoch JJ. Chlorhexidine gluconate for antisepsis in preterm neonates: A review of safety and efficacy. Pediatr Dermatol. 2024;41(5):786–792. https://doi.org/10.1111/pde.15709.; Шалепо КВ, Спасибова ЕВ, Будиловская ОВ, Крысанова АА, Хуснутдинова ТА, Чеберя АС и др. Оценка эффективности in vitro компонентов препарата «Депантол» против биопленок, сформированных вагинальными микроорганизмами. Акушерство и гинекология. 2024;(10):158–166. https://doi.org/10.18565/aig.2024.256.; Назарова НМ, Некрасова МЕ, Довлетханова ЭР, Абакарова ПР. Вагиниты и цервициты: выбор эффективного метода терапии (обзор литературы). Медицинский совет. 2020;(3):17–23. https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-3-17-23.; Радзинский ВЕ, Хамошина МБ, Оразов МР, Тулупова МС, Пестрикова ТЮ, Ярмолинская МИ, Рымашевский АН. Результаты многоцентрового наблюдательного исследования: терапия острого вагинита неспецифи ческой и смешанной этиологии у пациенток репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2019;(8):150–158. https://doi.org/10.18565/aig.2019.8.150-158.; Лапина ИА, Доброхотова ЮЭ, Таранов ВВ, Чирвон ТГ. Профилактика дисбиотических и воспалительных заболеваний влагалища и вульвы после хирургической коррекции генитального пролапса и стрессового недержания мочи. Гинекология. 2020;22(6):111–114. https://doi.org/10.26442/20795696.2020.6.200547.; Баринова ЭК, Арютин ДГ, Ордиянц ЕГ, Ордиянц ИМ, Зулумян ТН, Камарова ЗН. Mesh-ассоциированные осложнения в гинекологии. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2021;9(3):102–107. https://doi.org/10.33029/2303-9698-2021-9-3suppL-102-107.; Савичева АМ, Спасибова ЕВ, Шалепо КВ. Исследование чувствительности клинических изолятов микроорганизмов, выделенных из урогенитального тракта женщин, к действующим веществам, входящим в состав препарата Депантол. Российский вестник акушера-гинеколога. 2019;19(1):86–91. https://doi.org/10.17116/rosakush20191901192.

Διαθεσιμότητα: https://www.med-sovet.pro/jour/article/view/9027
https://doi.org/10.21518/ms2025-135

ОСТЕОМИЕЛИТ ГРУДИНЫ ПОСЛЕ АКШ

Θεματικοί όροι: остеомиелит грудины, аортокоронарное шунтирование, инфекционные осложнения, диагностика, антибактериальная терапия, хирургическое лечение

ОСТЕОМИЕЛИТ ГРУДИНЫ ПОСЛЕ АКШ

Θεματικοί όροι: остеомиелит грудины, аортокоронарное шунтирование, инфекционные осложнения, диагностика, антибактериальная терапия, хирургическое лечение

PSA density as a predictor of long-term infectious complications during transurethral resection of the prostate: determining an optimal cut-off value ; Плотность ПСА как предиктор отдалённых инфекционных осложнений при трансуретральной резекции простаты: определение оптимального порогового значения показателя

Συγγραφείς: S. N. Ivanov, M. I. Kogan, Yu. L. Naboka, V. L. Medvedev, G. A. Palaguta, С. Н. Иванов, М. И. Коган, Ю. Л. Набока, В. Л. Медведев, Г. А. Палагута

Πηγή: Urology Herald; Том 12, № 1 (2024); 19-26 ; Вестник урологии; Том 12, № 1 (2024); 19-26 ; 2308-6424 ; 10.21886/2308-6424-2024-12-1

Θεματικοί όροι: простатит, BPH, transurethral resection of the prostate gland, TURP, infectious complications, urinary tract infections, UTI, prostate-specific antigen density, PSA, pyelonephritis, epididymo-orchitis, prostatitis, ДГПЖ, трансуретральная резекция предстательной железы, ТУРП, инфекционные осложнения, инфекции мочевых путей, ИМП, плотность простатспецифического антигена, ПСА, пиелонефрит, эпидидимоорхит

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.urovest.ru/jour/article/view/826/530; Jo JK, Shinn SH, Kim KS, Moon HS. Changes in Prevalence and Treatment Pattern of Benign Prostatic Hyperplasia in Korea. Int Neurourol J. 2021;25(4):347-354. DOI:10.5213/inj.2040412.206; Lin YH, Hou CP, Chen TH, Juang HH, Chang PL, Yang PS, Chen CL, Tsui KH. Transurethral resection of the prostate provides more favorable clinical outcomes compared with conservative medical treatment in patients with urinary retention caused by benign prostatic obstruction. BMC Geriatr. 2018;18(1):15. DOI:10.1186/s12877-018-0709-3; Vivien A, Lazard T, Rauss A, Laisné MJ, Bonnet F. Infection after transurethral resection of the prostate: variation among centers and correlation with a long-lasting surgical procedure. Association pour la Recherche en AnesthésieRéanimation. Eur Urol. 1998;33(4):365-369. DOI:10.1159/000019617; Guo RQ, Yu W, Meng YS, Zhang K, Xu B, Xiao YX, Wu SL, Pan BN. Correlation of benign prostatic obstruction-related complications with clinical outcomes in patients after transurethral resection of the prostate. Kaohsiung J Med Sci. 2017;33(3):144-151. DOI:10.1016/j.kjms.2017.01.002; Mayer EK, Kroeze SG, Chopra S, Bottle A, Patel A. Examining the 'gold standard': a comparative critical analysis of three consecutive decades of monopolar transurethral resection of the prostate (TURP) outcomes. BJU Int. 2012;110(11):1595-1601. DOI:10.1111/j.1464-410X.2012.11119.x; Osman T, ElSaeed KO, Youssef HA, Shabayek M, Emam A, Hussein MS. Evaluation of the risk factors associated with the development of post-transurethral resection of the prostate persistent bacteriuria. Arab J Urol. 2017;15(3):260-266. DOI:10.1016/j.aju.2017.05.004; El Basri A, Petrolekas A, Cariou G, Doublet JD, Hoznek A, Bruyere F. Clinical significance of routine urinary bacterial culture after transurethral surgery: results of a prospective multicenter study. Urology. 2012;79(3):564-569. DOI:10.1016/j.urology.2011.11.018; Girou E, Rioux C, Brun-Buisson C, Lobel B; Infection Committee of the French Association of Urology. The postoperative bacteriuria score: a new way to predict nosocomial infection after prostate surgery. Infect Control Hosp Epidemiol. 2006;27(8):847-854. DOI:10.1086/506398; Wagenlehner FM, Wagenlehner C, Schinzel S, Naber KG; Working Group "Urological Infections" of German Society of Urology. Prospective, randomized, multicentric, open, comparative study on the efficacy of a prophylactic single dose of 500 mg levofloxacin versus 1920 mg trimethoprim/ sulfamethoxazole versus a control group in patients undergoing TUR of the prostate. Eur Urol. 2005;47(4):549-556. DOI:10.1016/j.eururo.2005.01.004; Коган М.И., Набока Ю.Л., Иванов С.Н. Факторы риска, антибиотикопрофилактика и лечение инфекции мочевых путей при трансуретральной хирургии гиперплазии простаты. Вестник урологии. 2022;10(2):99-108. DOI:10.21886/2308-6424-2022-10-2-99-108; Коган М.И., Набока Ю.Л., Иванов С.Н. Оценка инфекционного фактора при трансуретральной хирургии гиперплазии простаты. Вестник урологии. 2021;9(3):79-91. DOI:10.21886/2308-6424-2021-9-3-79-91; Fenton JJ, Weyrich MS, Durbin S, Liu Y, Bang H, Melnikow J. Prostate-Specific Antigen-Based Screening for Prostate Cancer: A Systematic Evidence Review for the U.S. Preventive Services Task Force. USA, Rockville: Agency for Healthcare Research and Quality (US); 2018.; Arjunlal TS, Deepanjali S, Manikandan R, Medha R. Frequency and clinical significance of prostatic involvement in men with febrile urinary tract infection: a prospective observational study. F1000Res. 2020;9:617. DOI:10.12688/f1000research.24094.3; Иванов С.Н., Коган М.И., Набока Ю.Л., Медведев В.Л. Инфекционный фактор при трансуретральной хирургии доброкачественной гиперплазии простаты: систематический обзор и мета-анализ. Урология. 2023;(4):141-149. DOI:10.18565/urology.2023.4.141-149; Coric J, Mujic J, Kucukalic E, Ler D. Prostate-Specific Antigen (PSA) and Prostate Volume: Better Predictor of Prostate Cancer for Bosnian and Herzegovina Men. Open Biochem J. 2015;9:34-36. DOI:10.2174/1874091X01509010034; https://www.urovest.ru/jour/article/view/826

Διαθεσιμότητα: https://www.urovest.ru/jour/article/view/826
https://doi.org/10.21886/2308-6424-2024-12-1-19-26

Rare cases of primarily infected kidney graft transplantation with the development of purulent complications ; Редкие случаи пересадки первично инфицированных трансплантатов почки с развитием гнойных осложнений

Συγγραφείς: N. V. Shmarina, K. E. Lazareva, I. V. Dmitriev, A. G. Balkarov, D. V. Lonshakov, N. S. Zhuravel, V. V. Smirnova, Н. В. Шмарина, К. Е. Лазарева, И. В. Дмитриев, А. Г. Балкаров, Д. В. Лоньшаков, Н. С. Журавель, В. В. Смирнова

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 16, № 3 (2024); 353-363 ; Трансплантология; Том 16, № 3 (2024); 353-363 ; 2542-0909 ; 2074-0506

Θεματικοί όροι: сепсис у реципиента почки, primary graft infection, infectious complications, purulent complications after kidney transplantation, septic complications after kidney transplantation, первично инфицированный трансплантат, инфекционные осложнения, гнойные осложнения у реципиентов почки

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/918/887; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/918/899; Hole B, Tonkin-Crine S, Caskey FJ, Roderick P. Treatment of end-stage kidney failure without renal replacement therapy. Semin Dial. 2016;29(6):491–506. PMID: 27559004 https://doi.org/10.1111/sdi.12535; Len Ó, Ramos A, Pahissa A. Evaluating the risk of transmission of infection from donor to recipient of a solid organ transplantation. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2012;Suppl 2:19–26. PMID: 22542031 https://doi.org/10.1016/S0213-005X(12)70078-2; White SL, Rawlinson W, Boan P, Sheppeard V, Wong G, Waller K, et al. Infectious disease transmission in solid organ transplantation: donor evaluation, recipient risk, and outcomes of transmission. Transplant Direct. 2019;5(1):e416. PMID: 30656214 https://doi.org/10.1097/TXD.0000000000000852; Хубутия М.Ш., Солонин С.А., Кобзева Е.Н., Годков М.А. Гемоконтактные вирусные инфекции у доноров крови, потенциальных доноров органов и тканей. Трансплантология. 2016;2:45–57.; Westphal GA, Garcia VD, Souza RL, Franke CA, Vieira KD, Zaclikevis Birckholz VR, et al. Guidelines for the assessment and acceptance of potential brain-dead organ donors. Rev Bras Ter Intensiva. 2016;28(3):220–255. PMID: 27737418 https://doi.org/10.5935/0103-507X.20160049; Kovacs Jr CS, Koval CE, Duin D, Morais AG, Gonzalez BE, Avery RK, et al. Selecting suitable solid organ transplant donors: reducing the risk of donortransmitted infections. World J Transplant. 2014;4(2):43–56. PMID: 25032095 https://doi.org/10.5500/wjt.v4.i2.43; Green M, Covington S, Taranto S, Wolfe C, Bell W, Biggins SW, et al. Donor-derived transmission events in 2013: a report of the Organ Procurement. Transplant Network Ad Hoc Disease Transmission Advisory Committee. Transplantation. 2015;99(2):282– 287. PMID: 25594557 https://doi.org/10.1097/TP.0000000000000584; Fishman JA, Greenwald MA, Grossi PA. Transmission of infection with human allografts: essential considerations in donor screening. Clin Infect Dis. 2012;55(5):720–727. PMID: 22670038 https://doi.org/10.1093/cid/cis519; Ison MG, Nalesnik MA. An update on donor-derived disease transmission in organ transplantation. Am J Transplant. 2011;11(6):1123–1130. PMID: 21443676 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2011.03493.x; Fishman JA, Grossi PA. Donorderived infection—the challenge for transplant safety. Nat Rev Nephrol. 2014;10(11):663–672. PMID: 25178971 https://doi.org/10.1038/nrneph.2014.159; Хубутия М.Ш. (ред). Трансплантация органов и тканей в многопрофильном научном центре. Москва: АирАрт; 2011.; Fischer SA, Lu K. AST Infectious Diseases Community of Practice. Screening of donor and recipient in solid organ transplantation. Am J Transplant. 2013;13(Suppl 4):9–21. PMID: 23464994 https://doi.org/10.1111/ajt.12094; Outerelo C, Gouveia R, Mateus A, Cruz P, Oliveira C, Ramos A. Infected donors in renal transplantation: expanding the donor pool. Transplant Proc. 2013;45(3):1054–1056. PMID: 23622623 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2013.02.014; Mo H, Lee J, Park JB, Park SC, Kim YH, Han A, et al. Kidney transplantation from deceased donors with bloodstream infection: a multicenter retrospective study. J Korean Med Sci. 2022;37(1):e4. PMID: 34981680 https://doi.org/10.3346/jkms.2022.37.e4; Barreto S, Martins J, Outerelo C, Silva JR, Bravo P, Ferreira MJ, et al. Safe use of infected donor organs in kidney transplantation. Transplant Proc. 2020;52(5):1243–1246. PMID: 32220479 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2020.01.068; European Directorate for the Quality of Medicines & Health Care: Guide to the quality and safety of organs for transplantation. 6th ed. Strasbourg; 2016. Available at: https://dondorganes-centre.fr/wp-content/uploads/Guide-ofquality.pdf [Accessed June 27, 2024].; Lanini S, Costa AN, Puro V, Procaccio F, Grossi PA, Vespasiano F, et al. Incidence of carbapenem-resistant gram negatives in Italian transplant recipients: a nationwide surveillance study. PLoS One. 2015;10(4):e0123706. PMID: 25835018 https://doi.org/10.1371/journal.pone.0123706; Carbapenemase-producing bacteria in Europe: Interim results from the European Survey on carbapenemase-producing Enterobacteriaceae (EuSCAPE) project. Stockholm: ECDC; 2013. https://doi.org/10.2900/91714 Available at: https://www.ecdc.europa.eu/sites/default/files/media/en/publications/Publications/antimicrobial-resistance-carbapenemase-producing-bacteria-europe.pdf [Accessed June 27, 2024].; Sawinski D, Blumberg EA. 40-infection in renal transplant recipients. In: Chronic Kidney Disease, Dialysis, and Transplantation. Elsevier; 2019. p. 621– 638.e6. https://doi.org/10.1016/B978-0-323-52978-5.00040-9; Chakraborty RK, Burns B. Systemic Inflammatory Response Syndrome. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2024 Jan. 2023 May 29. PMID: 31613449; Fishman JA. Infection in organ transplantation. Am J Transplant. 2017;17(4):856–879. PMID: 28117944 https://doi.org/10.1111/ajt.14208; Abbott KC, Oliver JD 3rd, Hypolite I, Lepler LL, Kirk AD, Ko CW, et al. Hospitalizations for bacterial septicemia after renal transplantation in the United States. Am J Nephrol. 2001;21(2):120– 127. PMID: 11359019 https://doi.org/10.1159/000046234; Karuthu S, Blumberg A. Common infections in kidney transplant recipients. Clin J Am Soc Nephrol. 2012;7(12):2058– 2070. PMID: 22977217 https://doi.org/10.2215/CJN.04410512; Kalil AC, Dakroub H, Freifeld AG. Sepsis and solid organ transplantation. Curr Drug Targets. 2007;8(4):533– 541. PMID: 17430124 https://doi.org/10.2174/138945007780362746; Fishman JA. Infection in solid-organ transplant recipients. N Engl J Med. 2007;357(25):2601–2614. PMID: 18094380 https://doi.org/10.1056/NEJMra064928; Napolitano LM. Sepsis 2018: definitions and guideline changes. Surg Infect (Larchmt). 2018;19(2):117–125. PMID: 29447109 https://doi.org/10.1089/sur.2017.278; Seymour CW, Liu VX, Iwashyna TJ, Brunkhorst FM, Rea TD, Scherag A, et al. Assessment of clinical criteria forsepsis: for the third international consensus definitions for sepsis and septic shock (Sepsis-3). JAMA. 2016;315(8):762–774. PMID: 26903335 https://doi.org/10.1001/jama.2016.0288; Киров М.Ю., Кузьков В.В., Проценко Д.Н., Щеголев А.В., Бабаев М.А., Белоцерковский Б.З. и др. Септический шок у взрослых: клинические рекомендации общероссийской общественной организации «Федерация анестезиологов и реаниматологов». Вестник интенсивной терапии имени А.И. Салтанова. 2023;4:7–42. https://doi.org/10.21320/1818-474X-2023-4-7-42; Schachtner T, Stein M, Reinke P. Sepsis after renal transplantation: clinical, immunological, and microbiological risk factors. Transpl Infect Dis. 2017;19(3):e12695. PMID: 28296035 https://doi.org/10.1111/tid.12695; Пинчук А.В., Шмарина Н.В., Сторожев Р.В., Дмитриев И.В., Анисимов Ю.А., Ходилина И.В. и др. Инфекционные осложнения после пересадки первично-инфицированных почечных аллотрансплантатов от одного донора. Инфекционные болезни. 2019;17(1):141–147.https://doi.org/10.20953/1729-9225-2019-1-141-147; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/918

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/918
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2024-16-3-353-363

Salvage of a comminuted proximal tibial polymicrobial infected non-union with antibiotic loaded bio-composite and intramedullary nailing: a case report ; Лечение инфицированного несросшегося оскольчатого перелома проксимального отдела большеберцовой кости методом интрамедуллярного остеосинтеза в сочетании с биокомпозитом, импрегнированным антибиотиком: клинический случай

Συγγραφείς: Stanley C., Woods R., Hassan M., McInerney N., Sheridan G.

Συνεισφορές: 1

Πηγή: Traumatology and Orthopedics of Russia; Vol 30, No 3 (2024); 112-119 ; Травматология и ортопедия России; Vol 30, No 3 (2024); 112-119 ; 2542-0933 ; 2311-2905 ; 10.17816/2311-2905-2024-30-3

Θεματικοί όροι: comminuted tibial fractures, infected non-union, intramedullary nailing, antibiotic loaded bio-composite, оскольчатый перелом большеберцовой кости, инфекционные осложнения перелома, интрамедуллярный остеосинтез, импрегнированный антибиотиком биокомпозит

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.rniito.org/jour/article/view/17560/pdf; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151172; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151173; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151174; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151175; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151176; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151177; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151178; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151179; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151180; https://journal.rniito.org/jour/article/downloadSuppFile/17560/151181; https://journal.rniito.org/jour/article/view/17560

Διαθεσιμότητα: https://journal.rniito.org/jour/article/view/17560
https://doi.org/10.17816/2311-2905-17560

Мультицентровое рандомизированное исследование пролонгированной антибиотикопрофилактики при цистэктомии в клиниках, работающих по протоколу раннего послеоперационного восстановления (ERAS)

Συγγραφείς: М. В. Беркут, А. М. Беляев, Т. Ю. Галунова, Н. И. Тяпкин, С. А. Рева, А. К. Носов

Συνεισφορές: Исследование проведено при поддержки гранта РакФонда от 22.05.2022 г.

Πηγή: Malignant tumours; Том 14, № 3s1 (2024); 63-71 ; Злокачественные опухоли; Том 14, № 3s1 (2024); 63-71 ; 2587-6813 ; 2224-5057

Θεματικοί όροι: ERAS протокол, радикальная цистэктомия, антибиотикопрофилактика, инфекционные осложнения

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1349/956; Witjes J.A., Bruins H.M., Cathomas R. et.al. European Association of Urology Guidelines on Muscle-invasive and Metastatic Bladder Cancer: Summary of the 2020 Guidelines. Eur Urol 2021;79(1):82–104. https://doi.org/10.1016/j.eururo.2020.03.055; Hautmann R.E., de Petriconi R.C., Volkmer B.G. Lessons learned from 1,000 neobladders: the 90-day complication rate. J Urol 2010;184(3):990–1235. https://doi.org/10.1016/j.juro.2010.05.037; Даренков С.П., Кривобородов Г.Г., Котов С.В. Осложнения радикальной цистэктомии с орто- и гетеротопической кишечной пластикой (обзор литературы). Вестник РГМУ 2013;4:49–53.; Lawrentschuk N., Colombo R., Hakenberg O.W., et al. Prevention and management of complications following radical cystectomy for bladder cancer. Eur Urol 2010;57(6):983–1001. https://doi.org/10.1016/j.eururo.2010.02.024; Носов А.К., Рева С.А., Джалилов И.Б., Петров С.Б. Радикальная цистэктомия при раке мочевого пузыря: сравнение ранних хирургических осложнений при лапароскопической, открытой и видеоассистированyой операции. Онкоурология 2015;11(3):71–78. https://doi.org/10.17650/1726-9776-2015-11-3-71-78; Котов С.В., Хачатрян А.Л., Котова Д.П. и соавт. Анализ результатов применения протокола ERAS в реальной клинической практике при радикальной цистэктомии (первое проспективное мультицентровое исследование в России). Урология 2019;6:60–66. https://dx.doi.org/10.18565/urology.2019.6.60-66; Peerbocus M., Wang Z.J. Enhanced Recovery After Surgery and Radical Cystectomy: A Systematic Review and Meta-Analysis. Res Rep Urol 2021;13:535–547. https://dx.doi.org/10.2147/RRU.S307385; Профилактика инфекций области хирургического вмешательства. Клинические рекомендации под редакцией Брико Н.И., Божкова С.А., Брусина Е.Б. и соавт. Н. Новгород: Изд-во «Ремедиум Приволжье» 2018:72; Асланов Б.И., Зуева Л.П., Колосовская Е.Н. и соавт. Принципы организации периоперационной антибиотикопрофилактики в учреждениях здравоохранения. Федеральные клинические рекомендации. М; 2014:42; Altemeier W.A., Burke J.F., Pruitt B.A.Jr., Sanduskiy W.R. Manual on control of infection in surgical patients. Philadelphia: Lippincott 1972:20–32; Атдуев В.А., Гасраталиев В.Э., Ледяев Д.С., Шевелев И.С., Бельский В.А. Предикторы послеоперационных осложнений радикальной цистэктоми. Онкология, Журнал им. П.А. Герцена 2019;8(5):348–357. https://dx.doi.org/10-17116/onkolog20198051348; Беркут М. В, Мамижев Э.М., Галунова Т.Ю. и соавт. Клиническое исследование: мультицентровое исследование по использованию превентивной антибиотикотерапии при цистэктомии в условиях раннего послеоперационного восстановления (исследование MACS). Вопросы онкологии 2023;69(3):415–421. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2023-69-3-415-421; Berkut M.V., Belyaev A.M., Galunova T.Yu., et al. Effectiveness of Prolonged Antibiotic Prophylaxis in Radical Cystectomy: Preliminary Analysis of the MACS Randomized Clinical Trial. Bladder Cancer 2024;1–12. https://doi.org/10.3233/BLC-240012; Berkut M.V., Belyaev A.M., Galunova T.Y. et.al. Prolonged 120-h meropenem antibiotic prophylaxis in radical cystectomy compared to 24h standard antibiotic prophylaxis: Final analysis of the randomized clinical trial. Arab J Urol 2024;22(4):235–242. https://doi.org/10.1080/20905998.2024.2373399; Volland H., Girlich D., Laguide M., et al. Improvement of the Immunochromatographic NG-Test Carba 5 Assay for the Detection of IMP Variants Previously Undetected. Antimicrob Agents Chemother 2019;64(1):e01940–19. https://doi.org/10.1128/AAC.01940-19; Van Hemelrijck M., Thorstenson A., Smith P. et.al. Risk of in-hospital complications after radical cystectomy for urinary bladder carcinoma: population-based follow-up study of 7608 patients. BJU Int 2013;112(8):1113–1120. https://doi.org/110.1111/bju.12239; Clifford T.G., Katebian B., Van Horn C.M., et al. Urinary tract infections following radical cystectomy and urinary diversion: a review of 1133 patients. World J Urol 2018;36(5):775–781. https://doi.org/10.1007/s00345-018-2181-2; Pellegrino F., Leni R., Basile G., et al. Peri- and post-operative outcomes of robot-assisted radical cystectomy after the implementation of the EAU guidelines recommendations for collecting and reporting complications at a high-volume referral center. World J Urol 2024;42(1):270. https://doi.org/10.1007/s00345-024-04970-x; Williams S.B., Cumberbatch M.G.K., Kamat A.M., et al. Reporting Radical Cystectomy Outcomes Following Implementation of Enhanced Recovery After Surgery Protocols: A Systematic Review and Individual Patient Data Meta-analysis. Eur Urol 2020;78(5):719–730. https://doi.org/10.1016/j.eururo.2020.06.039; Черненькая Т.В., Борисова Л.А., Воробьева Т.Ю. и соавт. Карбапенемазы, продуцируемые полирезистентными штаммами Klebsiella pneumoniae, выделенными от пациентов реанимационного профиля. Журнал им. Н.В. Склифосовского Неотложная медицинская помощь 2024;13(1):22–28. https://doi.org/10.23934/2223-9022-2024-13-1-22-28; Radko M, Guzek A, Syryło T, Rybicki Z, Zieliński H. Preliminary trial of 24 vs 72 hour perioperative meropenem in patients with ESBL-producing Enterobacterales bacteriuria scheduled for urological procedures. Cent European J Urol 2022;75(2):209–215. https://doi.org/10.5173/ceju.2022.0109; Невежина А.В. Карбапенемазы как фактор устойчивости к антибактериальным препаратам. Acta biomedica scientifica 2020;5(6):95–105. https://doi.org/10.29413/ABS.2020-5.6.11; Полищук А.Г., Якубович Е.И., Полухина О.В. и соавт. Карбапенемаза-продуцирующие грамотрицательные бактерии в специализированном стационаре Санкт-Петербурга. Инфекция и иммунитет 2017;7(2):181–192. https://doi.org/10.15789/2220-7619-2017-2-181-192; Эйдельштейн М.В., Шайдуллина Э.Р., Иванчик Н.В. и соавт. Антибиотикорезистентность клинических изолятов Klebsiella pneumoniae и Escherichia coli в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия 2024;26(1):67–78. https://doi.org/10.36488/cmac.2024.1.67-78; Platt, J.J., Ramanathan, M.L., Crosbie, R.A., et al. C-reactive protein as a predictor of postoperative infective complications after curative resection in patients with colorectal cancer. Ann Surg Oncol 2012;19(13):4168–4177. https://doi.org/10.1245/s10434-012-2498-9; Charbonneau J., Brind ’Amour A., Sideris L., et al. Predictive Value of C-Reactive Protein for Infectious Complications After Cytoreductive Surgery and Hyperthermic Intraperitoneal Chemotherapy: A Single-Center Prospective Study. Ann Surg Oncol 2024. https://doi.org/10.1245/s10434-024-15986-3; Straatman J., Harmsen A.M.K., Cuesta M.A. et.al. Predictive Value of C-Reactive Protein for Major Complications after Major Abdominal Surgery: A Systematic Review and Pooled-Analysis. PLoS One 2015;10(7):e0132995. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0132995; https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1349

Διαθεσιμότητα: https://www.malignanttumors.org/jour/article/view/1349
https://doi.org/10.18027/2224-5057-2024-14-3s1-63-71

The Main Effects of the Original Oral Care Protocol Implementation in Patients on Invasive Mechanical Ventilation ; Основные эффекты применения оригинального протокола обработки полости рта у пациентов на инвазивной искусственной вентиляции легких

Συγγραφείς: I. N. Leyderman, A. О. Marichev, I. U. Kasherininov, N. A. Lesteva, A. D. Ponomareva, A. О. Sivcov, D. V. Ryabova, M. М. Nosenko, G. A. Ablesimov, И. Н. Лейдерман, А. О. Маричев, И. Ю. Кашерининов, Н. А. Лестева, А. Д. Пономарева, А. О. Сивков, Д. В. Рябова, М. М. Носенко, Г. А. Аблесимов

Πηγή: General Reanimatology; Том 20, № 4 (2024); 39-47 ; Общая реаниматология; Том 20, № 4 (2024); 39-47 ; 2411-7110 ; 1813-9779

Θεματικοί όροι: тупфер, mechanical ventilation, infectious complications, ventilator-associated pneumonia, disposable toothbrushes, cotton swabs, искусственная вентиляция легких, инфекционные осложнения, вентилятор-ассоциированная пневмония, одноразовые зубные щетки

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2508/1854; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2508/1862; Fernando S.M., Tran A., Cheng W., Klompas M., Kyeremanteng K., Mehta S., English S.W., et al. Diagnosis of ventilator-associated pneumonia in critically ill adult patients — a systematic review and meta-analysis. Intensive Care Med. 2020; 46 (6): 1170–1179. DOI:10.1007/s00134-020-06036-z. PMID: 32306086.; Zhao T., Wu X., Zhang Q., Li C., Worthington H.V., Hua F. Oral hygiene care for critically ill patients to prevent ventilator‐associated pneumonia. Cochrane Database Syst Rev. 2020: 12 (12): CD008367. DOI:10.1002/14651858.CD008367.pub4. PMID: 33368159.; Klompas M., Branson R., Cawcutt K., Crist M., Eichenwald E.C., Greene L.R., Lee G., et al. Strategies to prevent ventilator-associated pneumonia, ventilator-associated events, and nonventilator hospital-acquired pneumonia in acute-care hospitals: 2022 Update. Infect Control Hosp Epidemiol. 2022; 43 (6): 687–713. DOI:10.1017/ice.2022.88. PMID: 35589091.; Бычинин М.В., Антонов И.О., Клыпа Т.В., Мандель И.А., Минец А.И., Колышкина Н.А., Голобокова Я.Б. Нозокомиальная инфекция у пациентов с тяжелым и крайне тяжелым течением COVID-19. Общая реаниматология. 2022; 18 (1): 4–10. DOI; 10.15360/1813-9779-2022-1-4-10.; Wu D., Wu C., Zhang S., Zhong Y. Risk factors of ventilator associated pneumonia in critically III patients. Front Pharmacol. 2019; 10: 482. DOI:10.3389/fphar.2019.00482. PMID: 31143118.; Edwardson S., Cairns C. Nosocomial infections in the ICU. Anaesth Intensive Care Med. 2019; 20 (1): 14–18. DOI:10.1016/j.mpaic.2018.11.004.; Yekefallah L., Shafaei M., Dehghankar L. Strategies for the prevention of ventilator-associated pneumonia in the intensive care units: a review. J Qazvin Univ Med Sci. 2019; 23 (4): 352–363. DOI:10.32598/JQUMS.23.4.352.; Ибадов Р.А., Сабиров Д.М., Эшонходжаев О.Д., Ибрагимов С.Х., Азизова Г.М., Угарова Т.Б. Факторы риска развития и тяжелого течения вентилятор-ассоциированного трахеобронхита у пациентов на пролонгированной искусственной вентиляции легких. Общая реаниматология. 2023; 19 (5): 46–52. DOI:10.15360/1813-9779-2023-5-2320.; Белобородова Н.В., Гречко А.В., Гуркова М.М., Зурабов А.Ю., Зурабов Ф.М.,Кузовлев А.Н.,Меглей А.Ю.,с соавт. Адаптивная фаготерапия пациентов с рецидивирующими пневмониями (пилотное исследование). Общая реаниматология. 2021; 17 (6): 4–14. DOI:10.15360/1813-9779-2021-6-4-14.; Munro C.L., Grap M.J. Oral health and care in the intensive care unit: state of the science. Am J Crit Care. 2004; 13 (1): 25–33. PMID: 14735645.; Stonecypher K. Ventilator-associated pneumonia: the importance of oral care in intubated adults. Crit Care Nurs Q. 2010; 33 (4): 339–347. DOI:10.1097/CNQ.0b013e3181f649a6. PMID: 20827066.; Prendergast V., Hallberg I.R., Jahnke H., Kleiman C., Hagell P. Oral health, ventilator-associated pneumonia, and intracranial pressure in intubated patients in a neuroscience intensive care unit. Am J Crit Care. 2009; 18 (4): 368–376. DOI:10.4037/ajcc2009621.PMID: 19556415.; Munro C.L., Grap M.J., Elswick R.K. Jr, McKinney J., Sessler C.N., Hummel 3rd R.S. Oral health status and development of ventilator-associated pneumonia: a descriptive study. Am J Crit Care. 2006; 15 (5): 453–460. PMID: 16926366.; El-Solh A.A., Pietrantoni C., Bhat A., Okada M., Zambon J., Aquilina A., Berbary E. Colonization of dental plaques: a reservoir of respiratory pathogens for hospital-acquired pneumonia in institutionalized elders. Chest 2004; 126 (5): 1575–1582. DOI:10.1378/chest.126.5.1575. PMID: 15539730.; Heo S.-M., Haase E.M., Lesse A.J., Gill S.R., Scannapieco F.A. Genetic relationships between respiratory pathogens isolated from dental plaque and bronchoalveolar lavage fluid from patients in the intensive care unit undergoing mechanical ventilation. Clin Infect Dis. 2008; 47 (12): 1562–1570. DOI:10.1086/593193. PMID: 18991508.; Hojo K., Nagaoka S., Ohshima T., Maeda N. Bacterial interactions in dental biofilm development. J Dent Res. 2009; 88 (11): 982–990. DOI:10.1177/0022034509346811. PMID: 19828884.; Колесов С.А., Коркоташвили Л. В. Протеом слюны и его диагностические возможности. Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 60 (5): 54–58. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/proteom-slyuny-i-ego-diagnosticheskie-vozmozhnosti.; Лапин К.С., Фот Е.В., Кузьков В.В., Киров М.Ю. Влияние мультизональной деконтаминации верхних дыхательных путей на частоту вентилятор-ассоциированной пневмонии: многоцентровое рандомизированное пилотное исследование. Вестник интенсивной терапии им. А. И. Салтанова. 2023, 3: 66–81. DOI:10.21320/18-474X-2023-3-66-81.; Khan M., Mohamed Z., Ali S., Saddki N., Masudi S. M., Sukminingrum N. Oral care effect on intubated patient with 0.2% chlorhexidine gluconate and tooth brushing in intensive care unit. Journal of Advanced Oral Research. 2017; 8 (1): 1–8. DOI:10.1177/2377960819850975.; Zuckerman L. M. Oral chlorhexidine use to prevent ventilator-associated pneumonia in adults: review of the current literature. Dimens Crit Care Nurs. 2016; 35 (1): 25–36. DOI:10.1097/DCC.0000000000000154. PMID: 26627070.; Lorente L., Lecuona M., Jimeґnez A., Palmero S., Pastor E., Lafuente N., Ramos M.J., et al. Ventilator-associated pneumonia with or without toothbrushing: a randomized controlled trial. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2012; 31 (10): 2621–2629. DOI:10.1007/s10096-012-1605-y. PMID: 22422274.; Hua F., Xie H; , Worthington H.V., Furness S., Zhang Q., Li C. Oral hygiene care for critically ill patients to prevent ventilator-associated pneumonia. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 10 (10): CD008367. DOI:10.1002/14651858.CD008367.pub3. PMID: 27778318.; Dikmen Y., Filiz Y.N. A recent view and evidence-based approach to oral care of intensive care patient. International Journal of Caring Sciences. 2016; 9, 1177–1185. DOI:10.1177/2377960819850975.; Khasanah I.H., Sae-Sia W., Damkliang J. The effectiveness of oral care guideline implementation on oral health status in critically ill patients. SAGE Open Nurs. 2019; 5: 23. DOI:10.1177/2377960819850975. PMID: 33415244.; American Association of Critical Care Nurses. Oral care for acutely and critically ill patients. Critical Care Nurse. 2017; 37 (3): 19–21. DOI:10.4037/ccn2017179. PMID: 28572113; Yao L.-Y., Chang C.-K., Maa S.-H., Wang C., Chen C. C.-H. Brushing teeth with purified water to reduce ventilator-associated pneumonia. J Nurs Res. 2011; 19 (4): 289–297 DOI:10.1097/JNR.0b013e318236d05f. PMID: 22089654.; Binkley C., Furr L.A., Carrico R., McCuren C. Survey of oral care practices in US intensive care units. Am J Infect Control. 2004; 32 (3): 161–169. DOI:10.1016/j.ajic.2003.05.001. PMID: 15153928.; Jones H., Newton J.T., Bower E.J. A survey of the oral care practices of intensive care nurses. Intensive Crit Care Nurs. 2004; 20 (2): 69–76. DOI:10.1016/j.iccn.2004.01.004. PMID: 15072774.; Beck S. Impact of a systematic oral care protocol on stomatitis after chemotherapy. Cancer Nurs. 1979; 2 (3): 185–199. PMID: 255358.; Collins T., Plowright C., Gibson V., Stayt L. Clarke S., Caisley J., Watkins C.H., et al. British Association of Critical Care Nurses: evidence-based consensus paper for oral care within adult critical care units. Nurs Crit Care. 2021; 26 (4): 224–233. DOI:10.1111/nicc.12570. PMID: 33124119.; Gaudet A., Martin-Loeches I., Povoa P., Rodriguez A., Salluh J., Duhamel A., Nseir S. Accuracy of the clinical pulmonary infection score to differentiate ventilator-associated tracheobronchitis from ventilator-associated pneumonia. Ann Intensive Care. 2020; 10 (1): 101. DOI:10.1186/s13613-02000721-4. PMID: 32748025.; Sahai H., Khurshid A. Statistics in epidemiology: methods, techniques, and applications. CRC-Press; 1st edition; 1996: 172-174. ISBN: 0-8493-9444-9.; Gerald van Belle, Lloyd D. Fisher, Patrick J. Heagerty, and Thomas S. Lumley. Biostatistics: a methodology for the health sciences. Second Edition; 2004. ISBN 0-471-03185-2.; Fourrier F., Duvivier B., Boutigny H., Roussel-Delvallez M., Chopin C. Colonization of dental plaque: a source of nosocomial infections in intensive care unit patients. Crit Care Med.1998; 26 (2): 301–308. DOI:10.1097/00003246-19980200000032. PMID: 9468169.; Shi Y., Huang Y., Zhang T.-T., Cao B., Wang H., Zhuo C., Ye F., et al. Chinese guidelines for the diagnosis and treatment of hospital-acquired pneumonia and ventilator-associated pneumonia in adults (2018 edition). J Thorac Dis. 2019; 11 (6): 2581–2616. DOI:10.21037/jtd.2019.06.09. PMID: 31372297.; El-Solh A.A., Pietrantoni C., Bhat A., Okada M., Zambon J., Aquilina A., Berbary E. Colonization of dental plaques: a reservoir of respiratory pathogens for hospital-acquired pneumonia in institutionalized elders. Chest. 2004; 126 (5): 1575–1582. DOI:10.1378/chest.126.5.1575. PMID: 15539730.; Bahrani-Mougeot F.K., Paster B.J., Coleman S., Barbuto S., Brennan M.T., Noll J., Kennedy T., et al. Molecular analysis of oral and respiratory bacterial species associated with ventilator-associated pneumonia. J Clin Microbiol. 2007; 45 (5): 1588–1593. DOI:10.1128/JCM.01963-06. PMID: 17301280.; Fourrier F., Dubois D., Pronnier P., Herbecq P., Leroy O., Desmettre T., Pottier-Cau E., et al; PIRAD Study Group. Effect of gingival and dental plaque antiseptic decontamination on nosocomial infections acquired in the intensive care unit: a double-blind placebo controlled multicenter study. Crit Care Med. 2005; 33 (8): 1728–1735. DOI:10.1097/01.ccm.0000171537.03493.b0. PMID: 16096449.; Carvajal C., Pobo A., Díaz E., Lisboa T., Llauradó M., Rello J. Oral hygiene with chlorhexidine on the prevention of ventilator-associated pneumonia in intubated patients: a systematic review of randomized clinical trials. Med Clin (Barc). 2010; 135 (11): 491–497. DOI:10.1016/j.medcli.2010.02.039. PMID: 20557902.; Labeau S.O., Van de Vyver K., Brusselaers N., Vogelaers D., Blot S.I. Prevention of ventilator-associated pneumonia with oral antiseptics: a systematic review and meta-analysis. Lancet Infect Dis. 2011; 11 (11): 845–854. DOI:10.1016/S14733099(11)70127-X. PMID: 21798809.; Mori H., Hirasawa H., Oda S., Shiga H., Matsuda K., Nakamura M. Oral care reduces incidence of ventilator-associated pneumonia in ICU populations. Intensive Care Med. 2006; 32 (2): 230–236. DOI:10.1007/s00134-005-0014-4. PMID: 16435104.; Hutchins K., Karras G., Erwin J., Sullivan K.L. Ventilator-associated pneumonia and oral care: a successful quality improvement project. Am J Infect Control. 2009; 37 (7): 590–597. DOI:10.1016/j.ajic.2008.12.007.PMID: 19716460.; de Lacerda Vidal C.F., de Lacerda Vidal A.K., de Moura Monteiro J.G., Cavalcanti A., da Costa Henriques A.P., Oliveira M., Godoy M., et al. Impact of oral hygiene involving toothbrushing versus chlorhexidine in the prevention of ventilator-associated pneumonia: a randomized study. BMC Infect Dis. 2017; 17 (1): 112. DOI:10.1186/s12879-017-2188-0. PMID: 28143414.; de Camargo L., da Silva S.N., Chambrone L. Efficacy of toothbrushing procedures performed in intensive care units in reducing the risk of ventilator‐associated pneumonia: a systematic review. J Periodontal Res. 2019; 54 (6): 601–611. DOI:10.1111/jre.12668. PMID: 31206663.; Ory J., Raybaud E., Chabanne R., Cosserant B., Faure J.S., Guérin R., Calvet L., et al. Comparative study of 2 oral care protocols in intensive care units. Am J Infect Control. 2017; 45 (3): 245–250. DOI:10.1016/j.ajic.2016.09.006. PMID: 28341071.; https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2508

Διαθεσιμότητα: https://www.reanimatology.com/rmt/article/view/2508
https://doi.org/10.15360/1813-9779-2024-4-2384

Инфекционные осложнения после плановых операций в многопрофильном стационаре

Συγγραφείς: Аль-Канани, Э. С., Солошенко, А. В., Олейник, Н. В., Герасимов, И. В., Ярош, А. Л., Слетов, А. А.

Θεματικοί όροι: медицина, хирургия, общая хирургическая патология, инфекционные осложнения, предикторы гнойных осложнений, инфекции, плановые операции, послеоперационные раны

Relation: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/63322

Διαθεσιμότητα: http://dspace.bsu.edu.ru/handle/123456789/63322

Оптимизация оказания помощи при открытых переломах костей скелета

Θεματικοί όροι: surgery, антибиотикопрофилактика, операция, infectious complications, переломы, antibiotic prophylaxis, external fixation apparatus, инфекционные осложнения, аппарат внешней фиксации, fractures, 3. Good health

Віково-статева характеристика постраждалих з інфекційними ускладненнями політравми в результаті ДТП

Συγγραφείς: Guriev, S.A., Tanasienko, P.V., Kovalishen, I.V.

Πηγή: TRAUMA; Том 20, № 1 (2019); 38-42
ТРАВМА; Том 20, № 1 (2019); 38-42

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, політравма, інфекційні ускладнення, ДТП, постраждалі, 0302 clinical medicine, 11. Sustainability, политравма, инфекционные осложнения, пострадавшие, polytrauma, infectious complications, road accident, victims, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://trauma.zaslavsky.com.ua/article/download/158667/160821
http://trauma.zaslavsky.com.ua/article/view/158667

В помощь практикующему врачу: энтеральный путь коррекции синдрома кишечной недостаточности у больных после хирургических вмешательств

Συγγραφείς: Tkhorevsky, A.V., Prisyazhnyuk, A.O., Slobodyanyuk, R.M.

Πηγή: EMERGENCY MEDICINE; № 2.97 (2019); 130-137
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; № 2.97 (2019); 130-137
МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; № 2.97 (2019); 130-137

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, кишкова недостатність, раннє ентеральне харчування, інфекційні ускладнення, спланхнічний кровообіг, кишечная недостаточность, раннее энтеральное питание, инфекционные осложнения, спланхническое кровообращение, intestinal insufficiency, early enteral nutrition, infectious complications, splanchnic circulation, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/download/161654/163057
http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/download/161654/163057
http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/161654
http://emergency.zaslavsky.com.ua/article/view/161654

Инфекционные осложнения при множественной миеломе в условиях современной эпидемиологической обстановки: обзор литературы

Συγγραφείς: Tatyana P. Kuzmina, Elizaveta Vladimirovna Mordvinova, Igor L. Davydkin

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 14, Iss 3 (2021)

Θεματικοί όροι: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, инфекционные осложнения, иммунный статус, COVID-19, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, множественная миелома, RC254-282, 3. Good health

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/df7ea3adad914df5bcbdf1678b237546

Levofloxacin efficacy in current surgical practice

Συγγραφείς: Oleksandr Nazarchuk, Yu M Babina, V L Vitkovskiy, Dmytro Dmytriiev

Πηγή: Perioperative Medicine, Vol 3, Iss 2 (2021)
Perioperaciina Medicina; Vol. 3 No. 2 (2020): Perioperative Medicine; 11-16
Perioperaciina Medicina; Том 3 № 2 (2020): Perioperative Medicine; 11-16

Θεματικοί όροι: levofloxacin, treatment, фторхинолоны, інфекційні ускладнення в хірургії, fluorchinolones, лечение, 3. Good health, лікування, infectious complications in surgery, левофлоксацин, Medicine, инфекционные осложнения в хирургии, фторхінолони

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://perioperative.org.ua/index.php/prtmdc/article/download/48/45
https://doaj.org/article/25f44ae00aae458c9dc8a2eba6cf1306
https://perioperative.org.ua/index.php/prtmdc/article/view/48

РОЛЬ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОГО КОНТРОЛЯ В СТРАТЕГИИ ПРОДЛЕННОЙ РЕГИОНАРНОЙ АНЕСТЕЗИИ: ПРОСПЕКТИВНОЕ, ОТКРЫТОЕ, СРАВНИТЕЛЬНОЕ, ОДНОЦЕНТРОВОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 2 (2023)

Θεματικοί όροι: Medicine (General), R5-920, катетеризация, инфекционные осложнения, регионарная анестезия

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/2647fdcff9b94c70a101a5229ae6e54f

РОЛЬ АНТИБАКТЕРИАЛЬНОГО КОНТРОЛЯ В СТРАТЕГИИ ПРОДЛЕННОЙ РЕГИОНАРНОЙ АНЕСТЕЗИИ: ПРОСПЕКТИВНОЕ, ОТКРЫТОЕ, СРАВНИТЕЛЬНОЕ, ОДНОЦЕНТРОВОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Συγγραφείς: Е.С. Яковлева, Н.А. Головинская, М.С. Панова, Е.А. Адкина, Р.В. Шагурин, С.В. Яковлев, Ю.М. Кулагина, А.В. Диордиев

Πηγή: Российские биомедицинские исследования, Vol 8, Iss 2 (2023)

Θεματικοί όροι: регионарная анестезия, катетеризация, инфекционные осложнения, Medicine (General), R5-920

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://ojs3.gpmu.org/index.php/biomedical-research/article/view/5621; https://doaj.org/toc/2658-6584; https://doaj.org/toc/2658-6576

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/2647fdcff9b94c70a101a5229ae6e54f