Monkeypox Virus Dissemination in Case of Intranasal Infection of Mice

Authors: Al. A. Sergeev, A. S. Kabanov, L. E. Bulychev, O. V. P’Yankov, Ar. A. Sergeev, S. A. Bodnev, D. O. Gorbatovskaya, A. S. Zamedyanskaya, L. N. Shishkina, A. P. Agafonov, A. N. Sergeev

Source: Проблемы особо опасных инфекций, Vol 0, Iss 4, Pp 86-90 (2015)

Subject Terms: динамика накопления, monkeypox virus, аутбредные мыши, dynamics of accumulation, intranasal infection, диссеминация, вирус оспы обезьян, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, интраназальное инфицирование, dissemination, outbread mice, 3. Good health

Access URL: https://journal.microbe.ru/jour/article/download/272/269
https://doaj.org/article/31647faedd1e46d4a264605086d2cff7
https://journal.microbe.ru/jour/article/view/272/269
https://journal.microbe.ru/jour/article/download/272/269

Mice as Animal Model for Evaluation of Therapeutic Efficacy of Preparations against Monkeypox

Authors: Al. A. Sergeev, A. S. Kabanov, L. E. Bulychev, O. V. P’Yankov, Ar. A. Sergeev, O. S. Taranov, S. A. Bodnev, Yu. V. Tumanov, L. N. Shishkina, A. P. Agafonov, A. N. Sergeev

Source: Проблемы особо опасных инфекций, Vol 0, Iss 2, Pp 60-65 (2013)

Subject Terms: 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 50 % infective dose, animal model, intranasal infection, вирус оспы обезьян, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, 3. Good health, 03 medical and health sciences, мышь, модельное животное, monkeypox virus, preparations against monkeypox, противооспенные препараты, клинические признаки, clinical signs, 50 % инфицирующая доза, интраназальное инфицирование, mouse

Access URL: https://journal.microbe.ru/jour/article/download/34/33
https://doaj.org/article/57e9151a7ab5456cae87a7b636828c92
https://journal.microbe.ru/jour/article/download/34/33
https://journal.microbe.ru/jour/article/view/34

Possibility of using a mouse SCID as a model animal to variola virus for evaluating anti-smallpox drug efficacy ; Мышь линии SCID как модельное животное для оценки эффективности препаратов против натуральной оспы

Authors: K. A. Titova, Al. A. Sergeev, A. S. Kabanov, L. E. Bulychev, Ar. A. Sergeev, D. O. Galahova, A. S. Zamedyanskaya, L. N. Shishkina, O. S. Taranov, V. V. Omigov, E. L. Zavjalov, A. P. Agafonov, A. N. Sergeev, К. А. Титова, Ал. А. Сергеев, А. С. Кабанов, Л. Е. Булычев, Ар. А. Сергеев, Д. О. Горбатовская, А. С. Замедянская, Л. Н. Шишкина, О. С. Таранов, В. В. Омигов, Е. Л. Завьялов, А. П. Агафонов, А. Н. Сергеев

Contributors: ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор», Роспотребнадзора

Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 19, № 4 (2015); 487-493 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 19, № 4 (2015); 487-493 ; 2500-3259

Subject Terms: профилактическая эффективность, SCID mouse, animal model, intranasal infection, 50 % infectious dose, dissemination of the virus, pathological damage, prophylactic efficacy, мышь SCID, модельное животное, интраназальное инфицирование, 50 %-я инфицирующая доза, диссеминация вируса, патоморфологическое изменение

File Description: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/440/511; Закс Л. Статистическое оценивание. M., 1976.; Капцова Т.И. Разработка экспериментальных моделей натуральной оспы. Дис. канд. мед. наук. М., 1967.; Сергеев Ар.А., Кабанов А.С., Булычев Л.Е., Сергеев Ал.А., Тара­нов О.С., Титова К.А., Пьянков О.В. Замедянская А.С., Горбатовская Д.О., Агафонов А.П., Сергеев А.Н., Шишкина Л.Н. Способ оценки активности лечебно-профилактических препаратов против вируса натуральной оспы. Патент РФ № 2522483. Бюл. № 20 от 20.07.14.; Шишкина Л.Н., Сергеев А.Н., Агафонов А.П., Сергеев А.А., Кабанов А.С., Булычев Л.Е., Сергеев А.А., Горбатовская Д.О., Пьянков О.В., Борматов Н.И., Щукин Г.И., Селиванов Б.А., Тихо­нов А.Я. Лечебно-профилактическое средство против вируса натуральной оспы и способы его получения и применения. Патент РФ № 2543338. Бюл. № 6 от 27.02.15.; Bailey T.R., Rippin S.R., Opsitnick E., Burns C.J., Pevear D.C., Collett M.S., Rhodes G., Tohan S., Huggins J.W., Baker R.O., Kern E.R., Keith K.A., Dai D., Yang G., Hruby D., Jordan R. N-(3,3a,4,4a,5, 5a,6,6a-Octahydro-1,3-dioxo-4,6-ethenocycloprop[f]isoindol-2(1H)-yl)carboxamides: identification of novel orthopoxvirus egress inhibitors. J. Med. Chem. 2007;50(7):1442-1444.; Belizário J.E. Immunodeficient mouse models: An overview. Open Immunol. J. 2009;2:79-85.; Cann J.A., Jahrling P.B., Hensley L.E., Wahl-Jensen V. Comparative pathology of smallpox and monkeypox in man and macaques. J. Comp. Path. 2013;148:6-21.; Hahon N., Wilson B.J. Pathogenesis of variola in Macaca irus monkeys. Amer. J. Hyg. 1960;71:69-80.; Huggins J., Goff A., Hensley L., Mucker E., Shamblin J., Wlazlowski C., Johnson W., Chapman J., Larsen T., Twenhafel N., Karem K., Damon I.K., Byrd C.M., Bolken T.C., Jordan R., Hruby D. Non-human primates are protected from smallpox virus or monkeypox virus challenges by the antiviral drug ST-246. Antimicrob. Agents Chemother. 2009;53(6):2620-2625.; Jahrling P.B., Hensley L.E., Martinez M.J., LeDuc J.W., Rubins K.H., Relman D.A., Huggins J.W. Exploring the potential of variola virus infection of cynomolgus macaques as a model for human smallpox. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2004;101(Iss. 42):15197-15200.; Leparc-Goffart I., Poirier B., Garin D., Tissier M.-H., Fuchs F., Cran­ce J.-M. Standartization of a neutralizing anti-vaccinia antibodies titration method: an essential step for titration of vaccinia immunoglobulins and smallpox vaccines evaluation. J. Clin. Virol. 2005; 32:47-52.; Marennikova S.S., Shchelkunov S.N. Orthopoxviruses Pathogenic for Humans. Springer: N.Y., USA, 2005.; Mayr A., Herrlich A. Zuchting des Variolavirus in der infantilen Maus. Arch. Ges. Virusforsch. 1960;10(2):226-235.; Mucker E.M., Goff A.J., Shamblin J.D., Grosenbach D.W., Damon I.K., Mehal J.M., Holman R.C., Carroll D., Gallardo N., Olson V.A., Clemmons C.J., Hudson P., Hruby D.E. Efficacy of Tecovirimat (ST246) in nonhuman primates infected with variola virus (smallpox). Antimicrob. Agents Chemother. 2013;57(Iss. 12):6246-6253.; Murti B.R., Shrivastav J.B. A study biological behavior of variola virus. II. Experimental inoculation of laboratory animals. Indian J. Med. Sci. 1957;11(Iss. 8):580-587.; National research Council: Guidelines on laboratory animal care and use, 8th ed. National research Council of the National Academies, Washington: The National Academies Press, 2011.; Sarkar J.K., Mitra A.C., Mukherjee M.K., De S.K., Guha Mazumdar D. Virus excretion in smallpox. I. Excretion in the throat, urine and conjunctive of patients. Bull. WHO. 1973;48:517-522.; Sergeev A.А., Kabanov A.S., Bulychev L.E., Sergeev A.A., Pyankov O.V., Bodnev S.A., Galahova D.O., Zamedyanskaya A.S., Titova K.A., Glotov A.G., Taranov O.S., Omigov V.V., Shishkina L.N., Agafonov A.P., Sergeev A.N. The possibility of using the ICR mouse as an animal model to assess anti-monkeypox drug efficacy. Transbound. Emerg. Dis. 2015a; DOI:10.1111/tbed.12323; Sergeev A.А., Kabanov A.S., Bulychev L.E., Sergeev A.A., Pyankov O.V., Bodnev S.A., Galahova D.O., Zamedyanskaya A.S., Titova K.A., Glotova T.I., Taranov O.S., Omigov V.V., Shishkina L.N.; Agafonov A.P., Sergeev A.N. Using the ground squirrel (Marmota bobak) as an animal model to assess monkeypox drug efficacy. Transbound. Emerg. Dis. 2015b; DOI:10.1111/tbed.12364; Smith S.K., Olson V.A., Karem K.L., Jordan R., Hruby D.E., Damon I.K. In vitro efficacy of ST246 against smallpox and monkey-pox. Antimicrob. Agents Chemother. 2009;53:1007-1012.; Wahl-Jensen V., Cann J.A., Rubins K.H., Huggins J.W., Fisher R.W., Johnson A.J., de Kok-Mercado F., Larsen T., Raymond J.L., Hensley L.E., Jahrling P.B. Progression of pathogenic events in cynomolgus macaques infected with variola virus. PLoS One. 2011;6: e24832.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/440

Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/440
https://doi.org/10.18699/VJ15.065