-
1Academic Journal
Source: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :54-58
Subject Terms: azathioprine, иммуномодулирующая активность, antibody response, immune modulating activity, 3. Good health, азатиоприн, delayed-type hypersensitivity response, ориентин, олеаноловая кислота, oleanolic acid, gentiopicroside, Gentiana algida, антителогенез, orientin, immune suppression, гентиопикрозид, Gentiana algida Pall, реакция гиперчувствительности замедленного типа, иммуносупрессия
Access URL: https://pfiet.ru/article/download/917/895
https://pfiet.ru/index.php/pfiet/article/view/917 -
2Academic Journal
Authors: Дарима Золтоевнa Цыренова
Source: ZHurnal «Patologicheskaia fiziologiia i eksperimental`naia terapiia». :52-55
Subject Terms: azathioprine, иммуномодулирующая активность, antibody response, Phlomoides tuberosa, immune modulating activity, 3. Good health, азатиоприн, delayed-type hypersensitivity response, антителогенез, форситозид В, immune suppression, forsythoside B, реакция гиперчувствительности замедленного типа, иммуносупрессия
Access URL: https://pfiet.ru/article/view/463
-
3Academic Journal
Subject Terms: rat fetal liver cells, atopic dermatitis, иммуномодулирующая активность, імуномодулююча активність, кріоконсервування, cryopreservation, атопічний дерматит, криоконсервирование, ДМСО, immunomodulating activity, клетки фетальной печени крысы, атопический дерматит, DMSO, клітини фетальної печінки щура
File Description: application/pdf
Access URL: http://cryo.net.ua/xmlui/handle/123456789/798
-
4Academic Journal
Authors: M. V. Kiselevsky, N. Yu. Anisimova, Yu. I. Dolzhikova, R. Ya. Vlasenko, F. S. Senatov, A. V. Karaulov, М. В. Киселевский, Н. Ю. Анисимова, Ю. И. Должикова, Р. Я. Власенко, Ф. С. Сенатов, А. В. Караулов
Source: Medical Immunology (Russia); Том 20, № 4 (2018); 515-522 ; Медицинская иммунология; Том 20, № 4 (2018); 515-522 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2018-4
Subject Terms: тканеинженерные конструкции, immunomodulating activity, bone bioimplants, osteoimmunology, tissue engineering constructions, иммуномодулирующая активность, биоимплантаты костей, остеоиммунология
File Description: application/pdf
Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1559/1046; Киселевский М.В., Анисимова Н.Ю., Корнюшенков Е.А., Шепелев А.Д., Чвалун С.Н., Полоцкий Б.Е., Давыдов М.И. Биосовместимые синтетические матриксы трахеи на основе полимерных ультраволокнистых материалов, колонизированные мезенхимальными мультипотентными клетками // Современные технологии в медицине, 2016. Т. 8, № 1. C. 7-13. [Kiselevsky M.V., Anisimova N.Yu., Kornushenkov E.A., Shepelev A.D., Chvalun S.N., Polotsky B.E., Davydov M.I. Biocompatible synthetic tracheal matrices based on polymer. Sovremennye tekhnologii v meditsine = Modern Technologies in Medicine, 2016, Vol. 8, no. 1, pp. 7-13. (In Russ.)]; Климович В.Б. Иммуномодулирующая активность мезенхимальных стромальных (стволовых) клеток // Медицинская иммунология, 2014. T. 16, № 2. С. 107-126. [Klimovich V.B. Immunomodulatory activity of mesenchimal stromal (stem) cells. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2014, Vol. 16, no. 2, pp. 107-126. (In Russ.)] doi:10.15789/1563-0625-2014-2-107-12.; Alcayaga-Miranda F., Cuenca. J,. Martin A., Contreras L., Figueroa F.E., Khour M. Combination therapy of menstrual derived mesenchymal stem cells and antibiotics ameliorates survival in sepsis. Stem Cell Res. Ther., 2015, Vol. 6, no. 6, p. 199.; Arck P.C., Hecher K. Fetomaternal immune cross-talk and its consequences for maternal and offspring’s health. Nat. Med., 2013, Vol. 19, no. 5, pp. 548-556.; Aubin J. Regulation of osteoblast formation and function. Rev. Endocrinol. Metab. Disord., 2001, Vol. 2, no. 1, pp. 81-94.; Bianco P., Cao X., Frenette P.S., Mao J.J., Robey, P.G., Simmons P.J., Wang C.Y. The meaning, the sense and the significance: translating the science of mesenchymal stem cells into medicine. Nat. Med., 2013, Vol. 19, no. 1, pp. 35-42.; Brandau S., Jakob M., Bruderek K., Bootz F., Giebel B., Radtke S., Mauel K., Jäger M., Flohé S.B., Lang S. Mesenchymal stem cells augment the anti-bacterial activity of neutrophil granulocytes. PLoS ONE, 2014, Vol. 9, e106903. doi:10.1371/journal.pone.0106903.; Bunpetch V., Wu H., Zhang S., Ouyang H.W. From “bench to bedside”: current advancement on large-scale production of mesenchymal stem cells. Stem Cells Dev., 2017, Vol. 26, no. 9, pp. 1662-1673.; Carty F., Mahon B.P., English K. The influence of macrophages on mesenchymal stromal cell therapy: Passive or aggressive agents? Clin. Exp. Immunol., 2012, Vol. 188, no. 1, pp. 1-11.; Cerdeira A.S., Rajakumar A., Royle C.M., Lo A., Husain Z., Thadhani R.I., Sukhatme V.P., Karumanchi S.A., Kopcow H.D. Conversion of peripheral blood NK cells to a decidual NK-like phenotype by a cocktail of defined factors. J. Immunol., 2013, Vol. 190, no. 8, pp. 3939-3948.; Chena F-M., Liu X. Advancing biomaterials of human origin for tissue engineering. Prog. Polym. Sci., 2016. Vol. 53, no. 1, pp. 86-168.; Cheng J., Liu J., Shi Z., Jules J., Xu D., Luo S., Wei S., Feng X. Molecular mechanisms of the biphasic effects of interferon-γ on osteoclastogenesis. J. Interferon Cytokine Res., 2012, Vol. 32, no. 1, pp. 34-45.; Croes M., Oner F.C., Kruyt M.C., Blokhuis T.J., Bastian O., Dhert W.J., Alblas J. Proinflammatory mediators enhance the osteogenesis of human mesenchymal stem cells after lineage commitment. PloS ONE, 2015, Vol. 10, no. 7, e0132781. doi:10.1371/journal.pone.0132781.; Сornish J., Gillespi M.T., Callon K.E., Horwood N.J., Moseley J.M., Reid I.R. Interleukin-18 is a novel mitogen of osteogenic and chondrogenic cells. Endocrinology, 2005, Vol. 144, no. 4, pp. 1194-1201.; Dawson J.I., Oreffo R.O. Bridging the regeneration gap: stem cells, biomaterials and clinical translation in bone tissue engineering. Arch. Biochem. Biophys., 2008, Vol. 473, no. 2, pp. 124-131.; Dayan V., Yannarelli G., Billia F., Filomeno P., Wang X.H., Davies J.E., Keating A. Mesenchymal stromal cells mediate a switch to alternatively activated monocytes/macrophages after acute myocardial infarction. Basic Res. Cardiol., 2011, Vol. 106, no. 6, pp. 1299-1310.; Discher D.E., Mooney D.J., Zandstra P.W. Growth factors, matrices, and forces combine and control stem cells. Science, 2009, Vol. 324, no. 5935, pp. 1673-1677.; Eggenhofer E., Hoogduijn M.J. Mesenchymal stem cell-educated macrophages. Transplant. Res., 2012, Vol. 1, no. 1, pp. 1-12.; Feinberg A.W. Engineered tissue grafts: opportunities and challenges in regenerative medicine. Wiley Interdiscip. Rev. Syst. Biol. Med., 2012, Vol. 4, no. 2, pp. 207-220.; Fisher M.B., Mauck R.L. Tissue engineering and regenerative medicine: recent innovations and the transition to translation. Tissue Eng. Part B Rev., 2013, Vol. 19, no. 1, pp. 1-13.; Galland S., Vuille J., Martin P., Letovanec I. Tumor-derived mesenchymal stem cells use distinct mechanisms to block the activity of natural killer cell subsets. Cell Rep., 2017, Vol. 20, no. 12, pp. 2891-2905.; Gao F., Chiu S.M., Motan D.A., Zhang Z., Chen L., Ji H.L., Zhang Z., Chen L., Ji H.L., Tse H.F., Fu Q.L., Lian Q. Mesenchymal stem cells and immunomodulation: current status and future prospects. Cell Death Dis., 2016, Vol. 21, no. 7, e2062. doi:10.1038/cddis.2015.327.; Griffith L.G., Naughton G. Tissue engineering – current challenges and expanding opportunities. Science, 2002, Vol. 295, no. 5556, pp. 1009-1014.; Guarino V., Causa F., Ambrosio L. Bioactive scaffolds for bone and ligament tissue. Expert. Rev. Med. Devices, 2007, Vol. 4, no. 3, pp. 405-418.; Hanker J.S., Giammara B.L. Biomaterials and biomedical devices. Science, 1988, Vol. 242, no. 4880, pp. 885-892.; Hanson S., D’Souza R.N., Hematti P. Biomaterial-mesenchymal stem cell constructs for immunomodulation in composite tissue engineering. Tissue Eng. Part A, 2014, Vol. 20, no. 15-16, pp. 2162-2168.; Hardy J.G., Villancio-Wolter M.K., Sukhavasi R.C., Mouser D.J., Aguilar D. Jr, Geissler S.A., Kaplan D.L., Schmidt C.E. Electrical stimulation of human mesenchymal stem cells on conductive nanofibers enhances their differentiation toward osteogenic outcomes. Macromolecular Rapid Communications, 2015, Vol. 36, no. 1, pp. 1884-1890.; Harrison R.H., St-Pierre J.P., Stevens M.M. Tissue engineering and regenerative medicine: a year in review. Tissue Eng. Part B Rev., 2014, Vol. 20, no. 1, pp. 1-16.; Liu D., Yi C., Fong C.C., Jin Q., Wang Z., Yu W.K., Sun D., Zhao J., Yang M. Activation of multiple signaling pathways during the differentiation of mesenchymal stem cells cultured in a silicon nanowire microenvironment. Nanomed, 2014, Vol. 10, no. 6, pp. 1153-1163.; Johnson V., Webb T., Norman A., Coy J., Kurihara J., Regan D., Dow S. Activated mesenchymal stem cells interact with antibiotics and host innate immune responses to control chronic bacterial infections. Sci. Rep., 2017, Vol. 7, no. 1, p. 9575.; Katagiri W., Osugi M., Kawai T., Hibi H. First-in-human study and clinical case reports of the alveolar bone regeneration with the secretome from human mesenchymal stem cells. Head Face Med., 2016, Vol. 12, no. 5, pp. 1-10.; Kiernan C.H., Wolvius E.B., Brama P.A.J., Farrell E. The immune response to allogeneic differentiated mesenchymal stem cells in the context of bone tissue engineering. Tissue Eng. Part B Rev., 2018, Vol. 24, no. 1, pp. 75-83.; Krasnodembskaya A., Song Y., Fang X., Gupta N., Serikov V., Lee J.W., Matthay M.A. Antibacterial effect of human mesenchymal stem cells is mediated in part from secretion of the antimicrobial peptide LL-37. Stem Cells, 2010, Vol. 28, no. 25, pp. 2229-2238.; Lee K., Silva E.A., Mooney D.J. Growth factor delivery-based tissue engineering: general approaches and a review of recent developments. J. R. Soc. Interface, 2011, Vol. 8, no. 55, pp. 153-170.; Li M., Hasegawa T., Hogo H., Tatsumi S., Liu Z., Guo Y., Sasaki M., Tabata C., Yamamoto T., Ikeda K., Amizuka N. Histological examination on osteoblastic activities in the alveolar bone of transgenic mice with induced ablation of osteocytes. Histol. Histopathol., 2013, Vol. 28, no. 3, pp. 327-335.; Lin G.L., Hankenson K.D. Integration of BMP, Wnt, and notch signaling pathways in osteoblast differentiation. J. Cell Biochem., 2011, Vol. 112, no. 12, pp. 3491-3501.; Liu H., Kemeny, D.M., Heng B.C., Ouyang H.W., Melendez A.J., Cao T. The immunogenicity and immunomodulatory function of osteogenic cells differentiated from mesenchymal stem cells. J. Immunol., 2006, Vol. 176, no. 5, pp. 2864-2871.; Liu W.H., Liu J.J., Wu J., Zhang L.L., Liu F., Yin L., Zhang M.M., Yu B. Novel mechanism of inhibition of dendritic cells maturation by mesenchymal stem cells via interleukin 10 and the JAK1/STAT3 signaling pathway. PLoS ONE, 2013, Vol. 38, no. 1, e55487. doi:10.1371/journal.pone.0055487.; Lu W., Fu C., Song L., Yao Y., Zhang X., Chen Z., Li Y., Ma G., Shen C. Exposure to supernatants of macrophages that phagocytized dead mesenchymal stem cells improves hypoxic cardiomyocytes survival. Int. J. Cardiol., 2012, Vol. 165, no. 2, pp. 333-340.; Luk F., Carreras-Planella L., Korevaar S.S. Inflammatory conditions dictate the effect of mesenchymal stem or stromal cells on b cell function. Front. Immunol., 2017, Vol. 8, 1042. doi:10.3389/ mmu.2017.01042.; Mukonoweshuro B., Brown C.J., Fisher J., Ingham E. Immunogenicity of undifferentiated and differentiated allogeneic mouse mesenchymal stem cells. J. Tissue Eng., 2014, Vol. 5, no. 1, pp. 1-15.; Neuss S., Denecke B., Gan L., Lin Q. Transcriptome analysis of MSC and MSC-derived osteoblasts on resomer® Lt706 and Pcl: impact of biomaterial substrate on osteogenic differentiation. PLoS ONE, 2011, Vol. 6, no. 9, e23195. doi:10.1371/journal.pone.0023195.; New S.E., Ibrahim A., Guasti L. Towards reconstruction of epithelialized cartilages from autologous adipose tissue-derived stem cells. J. Tissue Eng. Regen. Med., 2016, Vol. 11, no. 11, pp. 3078-3089.; Niaza K., Senatov F., Anisimova N., Kiselevskiy M., Kaloshkin S. Effect of co-incubation with mesenchymal stromal cells in cultural medium on structure and mechanical properties of polylactide-based scaffolds. BioNano Science, 2017, Vol. 7, no. 4, pp. 712-717.; Nich C., Takakubo Y., Pajarinen J., Ainola M., Salem A., Sillat T., Rao A.J., Raska M., Tamaki Y., Takagi M., Konttinen Y.T., Goodman S.B., Gallo J. Macrophages-key cells in the response to wear debris from joint replacements. J. Biomed. Mater. Res. A, 2013, Vol. 101, no. 10, pp. 3033-3045.; Petri R.M., Hackel A., Hahnel K., Dumitru C.A., Bruderek K., Flohe S.B., Paschen A., Lang S., Brandau S. Activated tissue-resident mesenchymal stromal cells regulate natural killer cell immune and tissue-regenerative function. Stem Cell Reports, 2017, Vol. 9, pp. 985-998.; Raggatt L.J., Partridge N.C. Cellular and molecular mechanisms of bone remodeling. J. Biol. Chem., 2010, Vol. 285, no. 33, pp. 25103-25108.; Raicevic G., Najar M., Najimi M., El Taghdouini A., van Grunsven L.A., Sokal E., Toungouz M. Influence of inflammation on the immunological profile of adult-derived human liver mesenchymal stromal cells and stellate cells. Cytotherapy, 2015, Vol. 17, no. 2, pp. 174-185.; Rauner M., Sipos W., Pietschmann P. Osteoimmunology. Int. Arch. Allergy Immunol., 2007, Vol. 143, no. 1, pp. 31-48.; Roszer T. Understanding the Mysterious M2 macrophage through activation markers and effector mechanisms. Mediators Inflamm., 2015, Vol. 2015, no. 1, pp. 1-16.; Santo V.E., Gomes M.E., Mano J.F., Reis R.L. Controlled release strategies for bone, cartilage, and osteochondral engineering – Part I: recapitulation of native tissue healing and variables for the design of delivery systems. Tissue Eng. Part B Rev., 2013, Vol. 19, no. 4, pp. 308-326.; Senatov F.S., Zadorozhnyy M.Yu., Niaza K.V., Medvedev V.V., Kaloshkin S.D., Anisimova N.Yu., Kiselevskiy M.V., Yang K-C. Shape memory effect in 3D-printed scaffolds for self-fitting implants. Eur. Polymer J., 2017, Vol. 93, no. 1, pp. 222-231.; Soto-Gutierrez A., Wertheim J.A., Ott H.C., Gilbert T.W. Perspectives on whole-organ assembly: moving toward transplantation on demand. J. Clin. Invest., 2012, Vol. 122, no. 11, pp. 3817-3823.; Sutton M.T., Fletcher D., Ghosh S.K., Weinberg A., van Heeckeren R., Kaur S., Sadeghi Z., Hijaz A., Reese J., Lazarus H.M., Lennon D.P., Caplan A.I., Bonfield T.L. Antimicrobial properties of mesenchymal stem cells: therapeutic potential for cystic fibrosis infection, and treatment. Stem Cells Int., 2016, Vol. 2016, no. 1, pp. 1-12.; Wang M.L., Nesti L.J., Tuli R., Lazatin J., Danielson K.G., Sharkey P.F., Tuan R.S. Titanium particles suppress expression of osteoblastic phenotype in human mesenchymal stem cells. J. Orthop. Res., 2002, Vol. 20, no. 6, pp. 1175-1184.; Xue R., Qian Y., Li L., Yao G., Yang L., Sun Y. Polycaprolactone nanofiber scaffold enhances the osteogenic differentiation potency of various human tissue-derived mesenchymal stem cells. Stem Cell Res. Ther., 2017, Vol. 8, no. 1, p. 148.; Yagi H., Soto-Gutierrez A. Parekkadan B., Kitagawa Y, Tompkins R.G., Kobayashi N., Yarmush M.L. Mesenchymal stem cells: mechanisms of immunomodulation and homing. Cell Transplant., 2010, Vol. 19, no. 6, pp. 667-679.; Zhang S., Chen X., Hu Y., Wu J., Cao Q. Chen S., Gao Y. All-trans retinoic acid modulates Wnt3A-induced osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells via activating the PI3K/AKT/GSK3beta signalling pathway. Mol. Cell. Endocrinol., 2016, Vol. 42, no. 422, pp. 243-253.; Zhou Y., Tsai T.L., Li W.J. Strategies to retain properties of bone marrow-derived mesenchymal stem cells ex vivo. Ann. N. Y. Acad. Sci., 2017, Vol. 1409, no. 1, pp. 3-17.; Zimmermann J.A., Hettiaratchi M.H., McDevitt T.C. Enhanced Immunosuppression of T cells by sustained presentation of bioactive interferon-γ within three-dimensional mesenchymal stem cell constructs. Stem Cells Transl. Med., 2017, Vol. 6, no. 1, pp. 223-237.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1559
-
5Academic Journal
Authors: Osmachko, A. P., Kovaleva, A. M., Ilyina, T. V., Kashpur, N. V., Koshovyi, O. M., Komisarenko, A. M.
Source: News of Pharmacy; No. 2(90) (2017); 37-42 ; Вестник фармации; № 2(90) (2017); 37-42 ; Вісник фармації; № 2(90) (2017); 37-42 ; 2415-8844
Subject Terms: Veronica teucrium L, polysaccharide complexes, immunomodulatory activity, UDC 615.375, 582.916.21, 577.114.7, 612.112, Вероника широколистая, полисахаридные комплексы, иммуномодулирующая активность, УДК 615.375, Вероніка широколиста, полісахаридні комплекси, імуномодулююча активність
File Description: application/pdf
Relation: http://nphj.nuph.edu.ua/article/view/nphj.17.2170/100773; http://nphj.nuph.edu.ua/article/view/nphj.17.2170
-
6Academic Journal
Authors: F. S. Pashkovsky, M. A. Shinkovich, F. A. Lakhvich, M. B. Golubeva, B. B. Kuz’mitsky, Ф. С. Пашковский, М. А. Шинкович, Ф. А. Лахвич, М. Б. Голубева, Б. Б. Кузьмицкий
Source: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Chemical Series; № 2 (2016); 83-90 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия химических наук; № 2 (2016); 83-90 ; 2524-2342 ; 1561-8331 ; undefined
Subject Terms: органический синтез, 11-oxa-13-azaprostanoid, immunomodulating activity, Meldrum’s acid, organic synthesis, 11-окса-13-азапростаноид, иммуномодулирующая активность, кис-лота Мельдрума
File Description: application/pdf
Relation: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/198/198; Pharriss, B. B. Prostaglandins in Reproduction / B. B. Pharriss, J. E. Shaw // Annu. Rev. Physiol. – 1974. – Vol. 36. – P. 391–412.; Narumiya, S. Prostanoid Receptors: Structures, Properties, and Functions / S. Narumiya, Y. Sugimoto, F. Ushikubi // Physiol. Rev. – 1999. – Vol. 79, n 4. – P. 1193–1226.; Prostaglandin E2 regulates Th17 cell differentiation and function through cyclic AMP and EP2/EP4 receptor signaling / K. Boniface [et al.] // J. Exp. Med. – 2009. – Vol. 206, N 3. – P. 535–548.; Enteric glia modulate epithelial cell proliferation and differentiation through 15-deoxy-12,14-prostaglandin J2 / K. Bach-Ngohou [et al.] // J. Physiol. –2010. – Vol. 588, pt 14. – P. 2533–2544.; Chen, Y.-C. Prostaglandin D2 and J2 induce apoptosis in human leukemia cells via activation of the caspase 3 cascade and production of reactive oxygen species / Y.-C. Chen, S.-C. Shen, S.-H. Tsai // Biochim. Biophys. Acta., Mol. Cell Res. – 2005. – Vol. 1743, n 3. – P. 291–304.; Wang, D. Prostaglandins and cancer / D. Wang, R. N. DuBois // Gut. – 2006. – Vol. 55, n 1. – P. 115–122.; Allaj, V. Non-steroid anti-inflammatory drugs, prostaglandins, and cancer / V. Allaj, C. Guo, D. Nie // Cell Biosci. – 2013. – Vol. 3, n 1. – P. 1–13.; Lote, C. J. Renal prostaglandins and sodium excretion / C. J. Lote // Quart. J. Exp. Physiol. – 1982. – Vol. 67, n 3. – P. 377–385.; Cardinali, D. P. The role of prostaglandins in neuroendocrine junctions: studies in the pineal gland and the hypothalamus / D. P. Cardinali, M. N. Ritta // Neuroendocrinology. – 1983. – Vol. 36, n 2. – P. 152–160.; Goodwin, J. S. Regulation of the immune response by prostaglandins / J. S. Goodwin, J. Ceuppens // J. Clin. Immunol. – 1983. – Vol. 3, n 4. – P. 295–315.; Prostaglandins as modulators of immunity / S. G. Harris [et al.] // Trends Immunol. – 2002. – Vol. 23, n 3. – P. 144–150.; Модифицированные простагландины – новые возможности для фармакологического контроля иммунодефицитных состояний / Г. С. Любин [и др.] // Хим.¬фарм. журн. – 2007. – Т. 41, № 11. – С. 11–18.; Модифицированные простагландины – биорегуляторы функций иммунной системы и воспаления / Б. Б. Кузьмицкий [и др.] // Сб. науч. трудов «Биорегуляторы: исследование и применение». Вып. 2. Под ред. акад. Ф. А. Лахвича. – Минск: Белорус. наука, 2008. – С. 33–39.; Метиловый эфир 7-аза-9-окса-10-метил-11-оксопрост-8(12)-еновой кислоты, обладающий иммуностимулирующей активностью, и способ его получения: пат. 10155 Респ. Беларусь: МПК (2006) С 07D 307/00, А 61Р 37/00 / М. Б. Голубева, М. Г. Грибовский, Н. А. Конопля, Б. Б. Кузьмицкий, Ф. А. Лахвич, Г. С. Любин, Ф. С. Пашковский, Е. М. Щукина; дата публ.: 30.12.2007.; Синтез и иммунобиологические свойства метилового эфира 7-аза-9-окса-10-метил-11-оксопрост-8(12)-еновой кислоты / Ф. С. Пашковский [и др.] // Докл. НАН Беларуси. – 2009. – Т. 53, № 5. – С. 63–66.; Гетероциклические аналоги простагландинов. III. Синтез 10-окса-13-аза-, 11-окса-13-аза- и 9-окса-7-аза-простаноидов на основе 3-ацил(арил-метиленацил)тетроновых кислот / Ф. С. Пашковский [и др.] // ЖОрХ. – 2006. – Т. 42, вып. 4. – С. 545–559.; Агрономов, А. Е. Лабораторные работы в органическом практикуме / А. Е. Агрономов, Ю. С. Шабаров. – М.: Химия, 1974. – С. 127.; Booth, P.M. Preparation of Acyltetronic Acids using t-Butyl Acetothio-acetate: Total Synthesis of the Fungal Metabolites Carolic, Carlosic, and Carlic Acids / P. M. Booth, C. M. J. Fox, S. V. Ley // J. Chem. Soc., Perkin Trans 1. – 1987. – n 1. – P. 121–129.; https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/198; undefined
Availability: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/198
-
7Academic Journal
Authors: ЗАРУБАЕВ ВЛАДИМИР ВИКТОРОВИЧ, АНИКИН В.Б., СМИРНОВ В.С.
Subject Terms: грипп, глицирризиновая кислота, противовирусная активность, иммуномодулирующая активность, противовирусные препараты
File Description: text/html
-
8Academic Journal
Authors: КАЛИНИН В.И., ИВАНЧИНА Н.В., АМИНИН Д.Л., КУЛЕШ Н.И., ФЕДОРЕЕВ С.А.
Subject Terms: КУМАЗИД, МАКСАР®, ГИСТОХРОМ®, КУКУМАРИОЗИД А2-2, CUCUMARIOSIDE А2-2, ИЗОФЛАВОНОИДЫ, ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ, АНТИОКСИДАНТНАЯ АКТИВНОСТЬ, ИНГИБИРОВАНИЕ РОСТА КОЛОНИЙ ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК, MAXSAR®, HYSTOCHROME®
File Description: text/html
-
9Academic Journal
Source: Инфекция и иммунитет.
Subject Terms: грипп, глицирризиновая кислота, противовирусная активность, иммуномодулирующая активность, противовирусные препараты, 3. Good health
File Description: text/html
-
10
-
11Academic Journal
Authors: Болиева, Л., Цогоев, А., Чочиева, А.
Subject Terms: ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ, ПРОЛИФЕРАТИВНАЯ АКТИВНОСТЬ Т-ЛИМФОЦИТОВ, ß-КАРОТИН, ВИТАМИН Е, ВИТАМИН С, СЕЛЕН, ß-CAROTENE
File Description: text/html
-
12Academic Journal
Authors: Лисяный, Н., Бельская, Л., Ключникова, А.
File Description: text/html
-
13Academic Journal
-
14Academic Journal
Authors: Чикаловец, Ирина, Молчанова, Валентина, Аминин, Дмитрий, Черников, Олег, Пислягин, Евгений, Лукьянов, Павел
Subject Terms: ПОЛИСАХАРИДЫ, БЕСПОЗВОНОЧНЫЕ, ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ
File Description: text/html
-
15Academic Journal
Authors: Хобракова, В., Шоболова, А., Николаев, С.
File Description: text/html
-
16Academic Journal
Authors: Барышникова, М., Ахматова, Н., Карамзин, A.
Subject Terms: ГАЛАВИТ, МОНОНУКЛЕАРНЫЕ ЛЕЙКОЦИТЫ, СЫВОРОТОЧНЫЕ ЦИТОКИНЫ, ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ
File Description: text/html
-
17
-
18Academic Journal
Взаимодействия тритерпенового гликозида кукумариозида А2-2 с мембранными рецепторами макрофагов мыши
Source: Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований.
Subject Terms: 0404 agricultural biotechnology, 0402 animal and dairy science, 04 agricultural and veterinary sciences, ТРИТЕРПЕНОВЫЕ ГЛИКОЗИДЫ ГОЛОТУРИЙ, ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ, МАКРОФАГИ, МОЛЕКУЛЯРНЫЙ МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ, ПУРИНОВЫЕ РЕЦЕПТОРЫ
File Description: text/html
-
19Academic Journal
Source: Вестник Дальневосточного отделения Российской академии наук.
Subject Terms: КУМАЗИД, МАКСАР®, ГИСТОХРОМ®, КУКУМАРИОЗИД А2-2, CUCUMARIOSIDE А2-2, ИЗОФЛАВОНОИДЫ, ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ АКТИВНОСТЬ, АНТИОКСИДАНТНАЯ АКТИВНОСТЬ, ИНГИБИРОВАНИЕ РОСТА КОЛОНИЙ ОПУХОЛЕВЫХ КЛЕТОК, MAXSAR®, HYSTOCHROME®, 3. Good health
File Description: text/html
-
20Academic Journal
Source: Український нейрохірургічний журнал; № 1 (2011); 23-29
Украинский нейрохирургический журнал; № 1 (2011); 23-29
Ukrainian Neurosurgical Journal; № 1 (2011); 23-29Subject Terms: экспериментальная злокачественная глиома, противоопухолевая и иммуномодулирующая активность, препараты чистотела, експериментальна злоякісна гліома, протипухлинна та імуномодулююча активність, препарати чистотілу, experimental malignant glioma, antitumor and immunomodulаtive activity, preparations of celandine, 3. Good health
File Description: application/pdf
Access URL: http://theunj.org/article/view/58426