Showing 1 - 20 results of 54 for search '"допинг-контроль"', query time: 0.66s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Source: Fine Chemical Technologies; Vol 19, No 5 (2024); 393-407 ; Тонкие химические технологии; Vol 19, No 5 (2024); 393-407 ; 2686-7575 ; 2410-6593

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/2157/2055; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/2157/2056; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/downloadSuppFile/2157/1452; Левченкова О.С., Новиков В.Е., Пожилова Е.В. Фармакодинамика и клиническое применение антигипоксантов. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2012;10(3):3–12. https://doi.org/10.17816/RCF1033-12; Шаталин Ю.В., Наумов А.А., Поцелуева М.М. Сравнительная характеристика антиоксидантных свойств гипоксена и дурохинона методом хемилюминисценции. Биофизика. 2008;53(1):100–106.; Мурзаева С.В., Белова С.П., Миронова Г.Д. Определение антиоксидантных свойств активаторов митохондриального АТФ-зависимого калиевого канала с помощью флуоресцентного индикатора Amplex Red. Прикладная биохимия и микробиология. 2013;49(4):345–352. https://doi.org/10.7868/s0555109913040107; Семиголовский Н.Ю. Применение антигипоксантов в остром периоде инфаркта миокарда. Анестезиология и реаниматология. 1998;(2):56–59.; Иванова Л.А., Павлова М.В., Арчакова Л.И. Антиоксиданты в комбинированной терапии больных хроническим деструктивным туберкулезом легких. Терапевтический архив. 1994;66(11):54–56.; Ганапольский В.П., Шабанов П.Д. Метеоадаптогенные свойства антигипоксантов. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2009;72(6):36–41.; Долгарева С.А., Сорокин А.В., Конопля Н.А., Бушмина О.Н., Быстрова Н.А., Овод А.И. Использование иммуномодуляторов, антиоксидантов и гепатопротекторов для коррекции нарушений в печени, эритроцитах и иммунной системе при хронической интоксикации этанолом. Биомедицинская химия. 2018;64(4):360–367. http://dx.doi.org/10.18097/PBMC20186404360; Новиков В.Е., Крюкова Н.О., Новиков А.С. Гастропротекторные свойства мексидола и гипоксена. Экспериментальная и клиническая фармакология. 2010;73(5):15–18.; Чурганов О.А., Гаврилова Е.А. Влияние препарата гипоксен на некоторые показатели психологического, иммунного, биохимического и функционального статуса спортсменов. Вестник спортивной науки. 2009;(1):36–38.; Загорский А.Л., Калниньш К.К., Торопов Д.К. Смесь поли (1,4-дигидрокси)-фениленов (полигидрохинонов): пат. 2294918 РФ. Заявка № 2005139599/04; заявл. 20.12.2005; опубл. 10.03.2007. https://yandex.ru/patents/doc/RU2294918C1_20070310. Дата обращения 29.01.2024 г.; Zagorsky A.L., Kalninsh K.K., Toropov D.K. Mixtures of poly(1,4-dihydroxy)-phenylenes (polyhydroquinones): Pat. WO2007073236. Publ. 28.06.2007. https://patentscope.wipo.int/search/en/detail.jsf?docId=WO2007073236. Дата обращения 02.02.2024 г.; Савельева Н.Б., Ишутенко Г.В., Полосин А.В., Радус Ф.В., Полянский Д.С., Курбаткин С.А., Ефимова Ю.А., Постников П.В. Валидация методики количественного определения наркотических и психотропных веществ в моче методом СВЭЖХ-МС/МС. Тонкие химические технологии. 2022;17(3): 253–267. https://doi.org/10.32362/2410-6593-2022-17-3-253-267; Шойбонов Б.Б., Онтобоев А.Н., Зинченко А.А., Алёшкин В.А. Гипоксен – ингибитор c1q субкомпонента и c1 компонента системы комплемента человека: пат. 2205002 РФ. Заявка № 2002118468/14; заявл. 11.07.2002; опубл. 27.05.2003. https://patents.google.com/patent/RU2205002C1/ru. Дата обращения 05.02.2024 г.; James A.M., Cochemé H.M., Smith R.A.J., Murphy M.P. Interactions of mitochondria-targeted and untargeted ubiquinones with the mitochondrial respiratory chain and reactive oxygen species. Implications for the use of exogenous ubiquinones as therapies and experimental tools. J. Biol. Chem. 2005;280(22):21295–21312. https://doi.org/10.1074/jbc.M501527200; Гришина Е.В., Хаустова Я.В., Погорелова В.Г., Погорелов А.Г., Кузьмич М.К., Маевский Е.И. Ускорение утилизации лактата под влиянием гипоксена после напряженной мышечной работы. Журнал экспериментальной биологии и медицины. 2008;145(2):158–161.; Мурзаева С.В., Абрамова М.Б., Попова И.И., Гриценко Е.Н., Миронова Г.Д., Лежнев Э.И. Влияние гипоксена на биоэнергетические процессы в митохондриях и активность АТФ-чувствительного калиевого канала. Биофизика. 2010;55(5):814–821.; Игнатьев В.А., Петрова И.В., Цветкова Л.Н. Опыт применения гипоксена (Олифена) в лечении пациентов с хронической обструктивной болезнью легких среднетяжелого и тяжелого течения. Terra Medica. 2010;3(62):19–24.

  8. 8
    Academic Journal

    Source: Политическая лингвистика. :53-59

    Subject Terms: media discourse, content analysis, информационное противоборство, Russian sport, политические коммуникации, лингвистические исследования, английский язык, медиалингвистика, языковые средства, политическая лингвистика, media texts, медиадискурс, информационное воздействие, information attacks, дискурс-анализ, информационные атаки, спортивный дискурс, British mass media, допинг-контроль, 16. Peace & justice, российский спорт, журналистика, освещение событий, контент-анализ, информационно-психологические войны, American mass media, американские СМИ, допинг, информационные войны, политический дискурс, допинговые скандалы, дисквалификации спортсменов, СМИ, journalism, media linguistics, кейс-метод, язык СМИ, mass media, методологические алгоритмы, English, антидопинговый контроль, политические тексты, political communication, information-psychological warfare, медиатексты, linguistic means, средства массовой информации, методологические принципы, case method, британские СМИ, российские спортсмены

  9. 9
    Academic Journal

    Source: Fine Chemical Technologies; Vol 18, No 1 (2023); 65–74 ; Тонкие химические технологии; Vol 18, No 1 (2023); 65–74 ; 2686-7575 ; 2410-6593

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/1933/1912; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/1933/1913; https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/downloadSuppFile/1933/891; Robinson J.C., James III G.W., Kark R.M. The effect of oral therapy with cobaltous chloride on the blood of patients suffering with chronic suppurative infection. New Engl. J. Med. 1949;240(19):749–753. https://doi.org/10.1056/NEJM194905122401902; Ebert B., Jelkmann W. Intolerability of cobalt salt as erythropoietic agent. Drug Test. Anal. 2014;6(3):185–189. https://doi.org/10.1002/dta.1528; Pronina I.V., Mochalova E.S., Efimova Yu. A., Postnikov P.V. Biological functions of cobalt and its toxicology and detection in anti-doping control. Tonk. Khim. Tekhnol. = Fine. Chem. Technol. 2021;16(4):318–336 (Russ., Eng.). https://doi.org/10.32362/2410-6593-2021-16-4-318-336; Hoffmeister T., Schwenke D., Wachsmuth N., Krug O., Thevis M., Byrnes W.C., Schmidt W.F.J. Erythropoietic effects of low-dose cobalt application. Drug Test Anal. 2019;11(2):200–207. https://doi.org/10.1002/dta.2478; Beuck S., Schanzer W., Thevis M. Hypoxia-inducible factor stabilizers and other small-molecule erythropoiesis- stimulating agents in current and preventive doping analysis. Drug Test. Anal. 2012;4(11):830–845. https://doi.org/10.1002/dta.390; Muñoz-Sánchez J., Chánez-Cárdenas M.E. The use of cobalt chloride as a chemical hypoxia model. J. Appl. Toxicol. 2019;39(4):556–570. https://doi.org/10.1002/jat.3749; Finley B.L., Monnot A.D., Paustenbach D.J., Gaffney S.H. Derivation of a chronic oral reference dose for cobalt. Regul. Toxicol. Pharmacol. 2012;64(3):491–503. https://doi.org/10.1016/j.yrtph.2012.08.022; Gault N., Sandre C., Poncy J.-L., Moulin C., Lefaix J.-L., Bresson C. Cobalt toxicity: chemical and radiological combined effects on HaCaT keratinocyte cell line. Toxicol. in Vitro. 2010;24(1):92–98. https://doi.org/10.1016/j.9tiv.2009.08.027; Catalani S., Rizzetti M.C., Padovani A., Apostoli P. Neurotoxicity of cobalt. Hum. Exp. Toxicol. 2012;31(5):421–437. https://doi.org/10.1177/0960327111414280; Gómez-Arnaiz S., Tate R.J., Grant M.H. Cytotoxicity of cobalt chloride in brain cell lines – a comparison between astrocytoma and neuroblastoma cells. Toxicol. in Vitro. 2020;68:104958. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2020.104958; Jelkmann W. Efficacy of recombinant erythropoietins: Is there unity of international units? Nephrol. Dial. Transpl. 2009;24(5):1366–1368. https://doi.org/10.1093/ndt/gfp058; Krug O., Kutscher D., Piper T., Geyer H., Schänzer W., Thevis M. Quantifying cobalt in doping control urine samples – a pilot study. Drug Test. Anal. 2014;6(11–12):1186–1190. https://doi.org/10.1002/dta.1694; Ho E.N.M., Chan G.H.M., Wan T.S.M., Curl P., Riggs C.M., Hurley M.J., Sykes D. Controlling the misuse of cobalt in horses. Drug Test. Anal. 2015;7(1):21–30. https://doi.org/10.1002/dta.1719; Thevis M., Krug O., Piper T., Geyer H., Schanzer W. Solutions Advertised as Erythropoiesis-stimulating Products were Found to Contain Undeclared Cobalt and Nickel Species. Int. J. Sports Med. 2016;37(1):82–84. https://doi.org/10.1055/s-0035-1569350; Knoop A., Görgens C., Geyer H., Thevis M. Elevated urinary cobalt concentrations identified in routine doping controls can originate from vitamin B12. Rapid Commun. Mass Spectrom. 2020;34(7):e8649. https://doi.org/10.1002/rcm.8649; Sobolevsky T., Ahrens B. Measurement of urinary cobalt as its complex with 2-(5-chloro-2-pyridylazo)- 5-diethylaminophenol by liquid chromatography-tandem mass spectrometry for the purpose of anti-doping control. Drug Test. Anal. 2021;13(6):1145–1157. https://doi.org/10.1002/dta.3004; Minakata K., Suzuki M., Suzuki O. Application of electrospray ionization tandem mass spectrometry for the rapid and sensitive determination of cobalt in urine. Anal. Chim. Acta. 2008;614(2):161–164. https://doi.org/10.1016/j.aca.2008.03.043; Hillyer L.L., Ridd Z., Fenwick S., Hincks P., Paine S.W. Pharmacokinetics of inorganic cobalt and a vitamin B12 supplement in the Thoroughbred horse: differentiating cobalt abuse from supplementation. Equine Vet. J. 2018;50(3):343–349. https://doi.org/10.1111/evj.12774; Postnikov P.V., Ordzhonikidze Z.G., Badtieva V.A., Turin I.A., Pavlov V.I. Determination of cobalt in plasma blood samples by the ICP-MS method after oral intake of low doses of Co-containing dietary supplements. Voprosy pitaniia = Problems of Nutrition. 2022;91(6):100–109.; Hoffmeister T., Schwenke D., Krug O., Wachsmuth N., Geyer H., Thevis M, Byrnes W.C., Schmidt W.F.J. Effects of 3 Weeks of Oral Low-Dose Cobalt on Hemoglobin Mass and Aerobic Performance. Front. Physiol. 2018;9:1289. https://doi.org/10.3389/fphys.2018.01289; Postnikov P.V., Efimova Yu. A., Pronina I.V. Circulating MicroRNAs as a New Class of Biomarkers of Physiological Reactions of the Organism to the Intake of Dietary Supplements and Drugs. Microrna. 2022;11(1):25–35. http://dx.doi.org/10.2174/2211536611666220422123437; Пронина И.В., Постников П.В., Павлов В.И., Орджоникидзе З.Г. Сравнение профилей экспрессии микроРНК атлетов, выступающих в видах спорта, ориентированных на выносливость, и добровольцев, не занимающихся спортом, с использованием панели сигнального пути гипоксии. Спортивная медицина наука и практика. 2022;12(2):13–21. https://doi.org/10.47529/2223-2524.2022.2.10; Sessa F., Salerno M., Di Mizio G., Bertozzi G., Messina G., Tomaiuolo B., Pisanelli D., Maglietta F., Ricci P., Pomara C. Anabolic Androgenic Steroids: Searching New Molecular Biomarkers. Front. Pharmacol. 2018;9:1321. https://doi.org/10.3389/fphar.2018.01321; Leuenberger N., Saugy M. Circulating microRNAs: The Future of Biomarkers in Anti-doping Field. In: Santulli G. (Ed.). MicroRNA: Medical Evidence. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2015;888:401–408. https://doi.org/10.1007/978-3-319-22671-2_20; Guo X.-Y., Liu Q.-L., Liu W., Cheng J.-X., Li Z.-J. Effect and mechanism of miR-135a-5p/CXCL12/JAK-STAT axis on inflammatory response after myocardial infarction. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2020;24(24):12912–12928. https://doi.org/10.26355/eurrev_202012_24195; Yin N., Zhu L., Ding L., Yuan J., Du L., Pan M., Xue F., Xiao H. MiR-135-5p promotes osteoblast differentiation by targeting HIF1AN in MC3T3-E1 cells. Cell. Mol. Biol. Lett. 2019;24:51. https://doi.org/10.1186/s11658-019-0177-6; Zhang Z., Ren L., Zhao Q., Lu G., Ren M., Lu X., Yin Y., He S., Zhu C. TRPC1 exacerbate metastasis in gastric cancer via ciRS-7/miR-135a-5p/TRPC1 axis. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2020;529(1):85–90. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2020.05.181; Li Y., Peng B., Li Y., Huang A., Peng Y., Yu Q., Li Y. MiR-203a-3p/153-3p improves cognitive impairments induced by ischemia/reperfusion via blockade of SRC-mediated MAPK signaling pathway in ischemic stroke. Chem. Biol. Interact. 2022;358:109900. https://doi.org/10.1016/j.cbi.2022.109900; Huang H., Dong H., Zhang J., Ke X., Li P., Zhang E., Xu G., Sun B., Gao Y. The Role of Salivary miR-134-3p and miR-15b-5p as Potential Non-invasive Predictors for Not Developing Acute Mountain Sickness. Front. Physiol. 2019;10:898. https://doi.org/10.3389/fphys.2019.00898

  10. 10
    Conference

    File Description: application/pdf

    Relation: Теория и практика в сфере физической культуры и спорта : материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием. — Екатеринбург, 2024; http://elar.urfu.ru/handle/10995/136661

  11. 11
  12. 12
  13. 13
    Conference

    Contributors: Слепченко, Галина Борисовна

    Relation: Химия и химическая технология в XXI веке : материалы XIX Международной научно-практической конференции студентов и молодых ученых имени профессора Л. П. Кулёва, 21-24 мая 2018 г., г. Томск. — Томск, 2018.; http://earchive.tpu.ru/handle/11683/49780

  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
    Academic Journal

    Source: Fine Chemical Technologies; Vol 12, No 2 (2017); 81-99 ; Тонкие химические технологии; Vol 12, No 2 (2017); 81-99 ; 2686-7575 ; 2410-6593 ; 10.32362/2410-6593-2017-12-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.finechem-mirea.ru/jour/article/view/85/86; Mareck U., Geyer H., Opfermann G., Thevis M., Schänzer W. Factors influencing the steroid profile in doping control analysis // J. Mass Spectrom. 2008. V. 43. № 7. P. 877-891.; Handelsman D.J. The rationale for banning human chorionic gonadotropin and estrogen blockers in sport // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2006. V. 91. № 5. P. 1646-1653.; Stenman U.H., Hotakainen K., Alfthan H. Gonadotropins in doping: pharmacological basis and detection of illicit use // Br. J. Pharmacol. 2008. V. 154. № 3. P. 569-583.; Gore A.C. Gonadotropin-releasing hormone (GnRH) neurons: gene expression and neuroanatomical studies // Prog. Brain Res. 2002. V. 141. P. 193-208.; Esposito S., Deventer K., Geldof L., Van Eenoo P. In vitro models for metabolic studies of small peptide hormones in sport drug testing // J. Pept. Sci. 2015. V. 21. № 1. P. 1-9.; Richards S.L., Cawley A.T., Cavicchioli R., Suann C.J., Pickford R., Raftery M.J. Aptamer based peptide enrichment for quantitative analysis of gonadotropin-releasing hormone by LC-MS/MS // Talanta. 2016. V. 150. P. 671-680.; Thomas A., Walpurgis K., Krug O., Schänzer W., Thevis M. Determination of prohibited, small peptides in urine for sports drug testing by means of nano-liquid chromatography/benchtop quadrupole orbitrap tandem-mass spectrometry // J. Chromatogr. A 2012. V. 1259. P. 251-257.; Thomas A., Geyer H., Kamber M., Schänzer W., Thevis M. Mass spectrometric determination of gonadotrophin-releasing hormone (GnRH) in human urine for doping control purposes by means of LC-ESI-MS/MS // J. Mass Spectrom. 2008. V. 43. № 7. P. 908-915.; Handelsman D.J., Swerdloff R.S. Pharmacokinetics of gonadotropin-releasing hormone and its analogs // Endocr. Rev. 1986. V. 7. № 1. P. 95-105.; Yoshida T. Peptide separation by Hydrophilic-Interaction Chromatography: a review // J. Biochem. Biophys. Methods. 2004. V. 60. № 3. P. 265-280.; Sample preparation and chromatografic columns of company Waters // Analiticheskiy kontrol'. Farmatcevticheskaya otrasl' (Analytical Control. Pharmaceutical Industry). 2010. V. 23. № 6. P. 88-89 (in Russ.).; Garcia M.C. The effect of the mobile phase additives on sensitivity in the analysis of peptides and proteins by high-performance liquid chromatographyelectrospray mass spectrometry // J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life. Sci. 2005. V. 825. № 2. P. 111-123.; Roepstorff P., Fohlman J. Proposal for a common nomenclature for sequence ions in mass spectra of peptides // Biomed. Mass Spectrom. 1984. V. 11. № 11. P. 601.; Johnson R.S., Martin S.A., Biemann K., Stults J.T., Throck Watson J. Novel fragmentation process of peptides by collision-induced decomposition in a tandem mass spectrometer: differentiation of leucine and isoleucine // Anal. Chem. 1987. V. 59. № 21. P. 2621-2625.; Bakhtiar R., Guan Z. Electron capture dissociation mass spectrometry in characterization of peptides and proteins // Biotechnol. Lett. 2006. V. 28. № 14. P. 1047-1059.; Sofianos Z.D., Katsila T., Kostomitsopoulos N., Balafas V., Matsoukas J., Tselios T., Tamvakopoulos C. In vivo evaluation and in vitro metabolism of leuprolide in mice - mass spectrometry-based biomarker measurement for efficacy and toxicity // J. Mass Spectrom. 2008. V. 43. № 10. P. 1381-1392.; Michalet S., Favreau P., Stocklin R. Profiling and in vivo quantification of proteins by high resolution mass spectrometry: the example of goserelin, an analogue of luteinizing hormone-releasing hormone // Clin. Chem. Lab. Med. 2003. V. 41. № 12. P. 1589-1598.; Kim H.K. Lee T.H., Suh J.H., Eom H.Y., Min J.W., Yeom H., Kim U., Jung H.J., Cha K.H., Choi Y.S., Youm J.R., Han S.B. Development and validation of a liquid chromatography-tandem mass spectrometry method for the determination of goserelin in rabbit plasma // J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life. Sci. 2010. V. 878. № 24. P. 2235-2242.; Bioanalysis of biotherapeutics summary [electronic resource] // Waters : [site] : - URL: http://www.waters.com/webassets/cms/library/docs/local_seminar_presentations/DA_Waters_Biotherapeutic_Bioanalysis_summary.pdf.Date of access: 15.08.2016.

  19. 19
  20. 20