Αποτελέσματα αναζήτησης - "дифференциальная спектрофотометрия"

Πηγή: Drug development & registration; Том 11, № 3 (2022); 75-83 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 11, № 3 (2022); 75-83 ; 2658-5049 ; 2305-2066

Θεματικοί όροι: чабрец, flavonoids, differential spectrophotometry, leonurus, hypericum, melissa, thyme, флавоноиды, дифференциальная спектрофотометрия, пустырник, зверобой, мелисса

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1287/1002; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1287/1314; Turkmen N., Sari F., Velioglu Y. S. Effects of Extraction Solvents on Concentration and Antioxidant Activity of Black and Black Mate Tea Polyphenols Determined by Ferrous Tartrate and Folin-Ciocalteu Methods. Food Chem. 2006;99:835–841. DOI:10.1016/j.foodchem.2005.08.034.; Hayyan M., Hashim M. A., Hayyan A., Al-Saadi M. A., Alnashef I. M., Mirghani M. E. et al. Are deep eutectic solvents benign or toxic? Chemosphere. 2006;90(7):2193–2195. DOI:10.1016/j.chemosphere.2012.11.004.; Paiva P., Craveiro R., Aroso I., Martins M., Reis R. L., Duarte A. R. C. Natural deep eutectic solvents solvents for the 21st century. ACS Sustain. Chem. Eng. 2014;2(5):1063–1071. DOI:10.1021/sc500096j.; Radošević K., Cvjetko Bubalo M., Gaurina Srcek V., Grgas D., Landeka Dragičević T., Radojčić Redovniković I. Evaluation of toxicity and biodegradability of choline chloride based deep eutectic solvents. Ecotoxicol. Environ. Saf. 2015;112:46–53. DOI:10.1016/j.ecoenv.2014.09.034.; Wen Q., Chen J. X., Tang Y. L., Wang J., Yang Z. Assessing the toxicity and biodegradability of deep eutectic solvents. Chemosphere. 2015;132:63–69. DOI:10.1016/j.chemosphere.2015.02.061.; Dai Y., van Spronsen J., Witkamp G.-J., Verpoorte R., Choi Y. H. Natural deep eutectic solvents as new potential media for green technology. Anal. Chim. Acta. 2013;766:61–68. DOI:10.1016/j.aca.2012.12.019.; Andrew C., Etim E. E., Ushie O. A., Job J. N. Deep eutectic solvents: an overview of its application as a "green" extractant. IJARCS. 2017;4(6):23–30. DOI:10.20431/2349-0403.0406003.; Smith E. L., Abbott A. P., Ryder K. S. Deep eutectic solvents (DESs) and their applications. Chem. Rev. 2014;114(21):11060–11082. DOI:10.1021/cr300162p.; Zhao B.-Y., Xu P., Yang F.-X., Wu H., Zong M.-H., Lou W.-Y. Biocompatible deep eutectic solvents based on choline chloride: characterization and application to the extraction of rutin from Sophora japonica. ACS Sustain. Chem. Eng. 2015;3(11):2746–2755. DOI:10.1021/acssuschemeng.5b00619.; Tang W., Li G., Chen B., Zhu T., Row K. H. Evaluating ternary deep eutectic solvents as novel media for extraction of flavonoids from Ginkgo biloba. Sep. Sci. Technol. 2016;52(1):91–99. DOI:10.1080/01496395.2016.1247864.; Obluchinskaya E. D., Daurtseva A. V., Pozharitskaya O. N., Flisyuk E. V., Shikov A. N. Natural deep eutectic solvents as alternatives for extracting phlorotannins from brown algae. Pharm. Chem. J. 2019;53(3):243–247. DOI:10.1007/s11094-019-01987-0.; Abbott A. P., Capper G., Davies D. L., Rasheed R. K., Tambyrajah V. Novel solvent properties of choline chloride/urea mixtures. Chem. Commun. 2003;70–71. DOI:10.1039/b210714g.; Mele A., Tran C. D., De Paoli Lacerda S. H. The structure of a room-temperature ionic liquid with and without trace amounts of water: the role of C–H.O and C–H.F interactions in 1-n-butyl-3-methylimidazolium tetrafluoroborate. Angew. Chem. Int. edit. 2003;115(36):4500–4502. DOI:10.1002/ange.200351783.; Francisco M., van den Bruinhorst A., Kroon M. Low-Transition-Temperature Mixtures (LTTMs): a new generation of designer solvents. Angew. Chem. Int. edit. 2013;52(11):3074–3085. DOI:10.1002/anie.201207548.; Токарева М. Г., Прожогина Ю. Е., Каленикова Е. И., Джавахян М. А. Фармакогностические и фармакологические аспекты создания новых седативных препаратов на основе лекарственного растительного сырья. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018;21(3):3−11. DOI:10.29296/25877313-2018-03-01.; Tursymatova O. I., Dilmakhanova M. M. Flavonoid physicochemical properties. Science and world. 2015;5(21):30–31.; Бабаджанян А. А., Кайшева Н. А., Умняхина И. В. Применение фотометрических методов в анализе растительных лекарственных средств. Беликовские чтения: материалы IV Всероссийской научно-практической конференции. 2015. 17–18 с.; Shang X., Tan J.-N., Du Y., Liu X., Zhang Z. Environmentally-friendly extraction of flavonoids from Cyclocarya paliurus (Batal.) iljinskaja leaves with deep eutectic solvents and evaluation of their antioxidant activities. Molecules. 2018;23(9):2110. DOI:10.3390/molecules23092110.; Dai Y., Row K. H. Application of natural deep eutectic solvents in the extraction of quercetin from vegetables. Molecules. 2019;24(12):2300. DOI:10.3390/molecules24122300.; Bajkacz S., Adamek J. Development of a method based on natural deep eutectic solvents for extraction of flavonoids from food samples. Food Anal. Methods. 2017;11:1330–1344. DOI:10.1007/s12161-017-1118-5.; Peng F., Zhao Y., Li F.-Z., Zong M.-H., Lou W.-Y. The effect of deep eutectic solvents on the asymmetric hydrolysis of styrene oxide by mung bean epoxide hydrolases. Bioresources and Bioprocessing. 2018;5:5. DOI:10.1186/s40643-018-0191-y.; Huang Y., Feng F., Jiang J., Qiao Y., Wu T., Voglmeir J., Chen Z.-G. Green and efficient extraction of rutin from tartary buckwheat hull by using natural deep eutectic solvents. Food Chem. 2017;221:1400–1405. DOI:10.1016/j.foodchem.2016.11.013.; Mulia K., Muhammad F., Krisanti E. Extraction of vitexin from binahong (Anredera cordifolia (Ten.) Steenis) leaves using betaine - 1,4 butanediol natural deep eutectic solvent (NADES). AIP Conf. Proc. 2017;1823. DOI:10.1063/1.4978091.; Bi W., Tian M., Row K. H. Evaluation of alcohol-based deep eutectic solvent in extraction and determination of flavonoids with response surface methodology optimization. J. Chromatogr. A. 2013;1285:22–30. DOI:10.1016/j.chroma.2013.02.041.; Abbott A. P., Al-Murshedi A. Y. M., Alshammari O. A. O. Thermodynamics of phase transfer for polar molecules from alkanes to deep eutectic solvents. Fluid Phase Equilibr. 2017;448:99–104. DOI:10.1016/j.fluid.2017.05.008.; Świergiel J., Bouteiller L., Jadżyn J. Compliance of the Stokes–Einstein model and breakdown of the Stokes–Einstein–Debye model for a urea-based supramolecular polymer of high viscosity. Soft. Matter. 2014;10:8457–8463. DOI:10.1039/c4sm01556h.; Dietrych-Szostak D., Oleszek W. Effect of processing on the flavonoid content in buckwheat (Fagopyrum esculentum Möench) grain. J. Agric. Food Chem. 1999:47(10):4384–4387. DOI:10.1021/jf990121m.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1287

Διαθεσιμότητα: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1287
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-3-75-83

View record from BASE

7

Academic Journal

Choline Chloride Based Deep Eutectic Solvents as Promising Extractants of Flavonoids from Sedative Plant Composition ; Глубокие эвтектические растворители на основе холина хлорида как перспективные экстрагенты флавоноидов из седативной растительной композиции

Συγγραφείς: M. A. Dzhavakhyan, Yu. E. Prozhogina, М. А. Джавахян, Ю. Э. Прожогина

Πηγή: Drug development & registration; Том 11, № 4 (2022); 79-86 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 11, № 4 (2022); 79-86 ; 2658-5049 ; 2305-2066

Θεματικοί όροι: холина хлорид, flavonoids, differential spectrophotometry, motherwort, John's wort, lemon balm, thyme, choline chloride, флавоноиды, дифференциальная спектрофотометрия, пустырник, зверобой, мелисса, чабрец

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1361/1039; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1361/1422; Abubakar A. R., Haque M. Preparation of Medicinal Plants: Basic Extraction and Fractionation Procedures for Experimental Purposes. J. Pharm. Bioallied Sci. 2020;12:1–10. DOI:10.4103/jpbs.JPBS_175_19.; Choi Y. H., van Spronsen J., Dai Y., Verberne M., Hollmann F., Arends I. W. C. E., Witkamp G.-J., Verpoorte R. Are natural deep eutectic solvents the missing link in understanding cellular metabolism and physiology? Plant Physiology. 2011;156(4):1701–1705. DOI:10.1104/pp.111.178426.; Dai Y., van Spronsen J., Witkamp G.-J., Verpoorte R., Choi Y. H. Natural deep eutectic solvents as new potential media for green technology. Analytica Chimica Acta. 2013;766:61–68. DOI:10.1016/j.aca.2012.12.019.; Castro V. I. B., Mano F., Reis R. L., Paiva A., Rita A., Duarte C. Synthesis and Physical and Thermodynamic Properties of Lactic Acid and Malic Acid-Based Natural Deep Eutectic Solvents. Journal of Chemical and Engineering Data. 2018; 63(7):2548–2556. DOI:10.1021/acs.jced.7b01037.; Mulia K., Adam D., Zahrina I., Krisanti E. A. Green extraction of palmitic acid from palm oil using betaine-based Natural Deep Eutectic Solvents. International Journal of Technology. 2018;9(2):335–344. DOI:10.14716/ijtech.v9i2.1008.; Dai Y., Witkamp G.-J., Verpoorte R., Choi Y. H. Tailoring properties of natural deep eutectic solvents with water to facilitate their applications. Food Chem. 2015;187:14–19. DOI:10.1016/j.foodchem.2015.03.123.; Craveiro R., Aroso I., Flammia V., Carvalho T., Viciosa M. T., Dionísio M., Barreiros S., Reis R. L., Duarte A. R. C., Paiva A. Properties and thermal behavior of natural deep eutectic solvents. J. Mol. Liq. 2016;215:534–540. DOI:10.1016/j.molliq.2016.01.038.; Savi L. K., Carpiné D., Waszczynskyj N., Ribani R. H., Haminiuk C. W. I. Influence of temperature, water content and type of organic acid on the formation, stability and properties of functional natural deep eutectic solvents. Fluid Phase Equilibria. 2019;488:40–47. DOI:10.1016/j.fluid.2019.01.025; Shikov A. N., Kosman V. M., Flissyuk E. V., Smekhova I. E., Elameen A., Pozharitskaya O. N. Natural Deep Eutectic Solvents for the Extraction of Phenyletanes and Phenylpropanoids of Rhodiola rosea L. Molecules. 2020;25:1826. DOI:10.3390/molecules25081826.; Obluchinskaya E. D., Daurtseva A. V., Pozharitskaya O. N., Flisyuk E. V., Shikov A. N. Natural Deep Eutectic Solvents as Alternatives for Extracting Phlorotannins from Brown Algae. Pharm Chem J. 2019;53:243–247. DOI:10.1007/s11094-019-01987-0.; Obluchinskaya E. D., Pozharitskaya O. N., Zakharova L. V., Daurtseva A. V., Flisyuk E. V., Shikov A. N. Efficacy of Natural Deep Eutectic Solvents for Extraction of Hydrophilic and Lipophilic Compounds from Fucus vesiculosus. Molecules. 2021;26:4198. DOI:10.3390/molecules26144198.; Hayyan M., Looi C. Y., Hayyan A., Wong W. F., Hashim M. A. In vitro and in vivo toxicity profiling of ammonium-based deep eutectic solvents. PLoS ONE. 2015;10(2):e0117934. DOI:10.1371/journal.pone.0117934.; Mbous Y. P., Hayyan M., Wong W. F., Looi C. Y., Hashim M. A. Unraveling the cytotoxicity and metabolic pathways of binary natural deep eutectic solvent systems. Sci.Rep. 2017;7:41257. DOI:10.1038/srep41257.; Джавахян М. А., Прожогина Ю. Э., Павельева О. К., Каленикова Е. И. Природные глубокие эвтектические растворители как альтернативные экстрагенты флавоноидов из растительного сбора седативного действия. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2022;11(3):75–83. DOI:10.33380/2305-2066-2022-11-3-75-83.; Prozhogina Y. E., Dzhavakhyan M. A. Natural deep eutectic solvents as alternative flavonoid extractants from the sedative plant composition. From Plant Biochemistry to Human Biochemistry: International scientific conference. Moscow.June 16–17, 2022. Moscow: "All-Russian Scientific Research Institute of Medicinal and Aromatic Plants"; 2022. 289–295. DOI:10.52101/9785870191041_289.; Токарева М. Г., Прожогина Ю. Е., Каленикова Е. И., Джавахян М. А. Фармакогностические и фармакологические аспекты создания новых седативных препаратов на основе лекарственного растительного сырья. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2018;21(3):3−11. DOI:10.29296/25877313-2018–03–01.; Liu Y., Friesen J. B., McAlpine J. B., Lankin D. C., Chen S. N., Pauli G. F. Natural Deep Eutectic Solvents: Properties, Applications, and Perspectives. J Nat Prod. 2018;81(3):679–690. DOI:10.1021/acs.jnatprod.7b00945.; Jung D., Jung J., Kang S., Li K., Hwang I., Jeong J. H., Kim H. S., Lee J. Toxico-metabolomics study of a deep eutectic solvent comprising choline chloride and urea suggests in vivo toxicity involving oxidative stress and ammonia stress. Green Chem. 2021;23:1300–1311. DOI:10.1039/D0GC03927F.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1361

Διαθεσιμότητα: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1361
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2022-11-4-79-86

View record from BASE

8

Academic Journal

METHODS FOR QUANTITATIVE DETERMINATION OF TOTAL FLAVONOIDS IN QUERCUS ROBUR L. BUDS ; МЕТОДИКА КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В ПОЧКАХ ДУБА ЧЕРЕШЧАТОГО QUERCUS ROBUR L.

Συγγραφείς: N. A. Ryabov, V. M. Ryzhov, V. A. Kurkin, Н. А. Рябов, В. М. Рыжов, В. А. Куркин

Συνεισφορές: This study did not have any external support., Данное исследование не имело какой-либо финансовой поддержки от сторонних организаций.

Πηγή: Pharmacy & Pharmacology; Том 9, № 5 (2021); 356-366 ; Фармация и фармакология; Том 9, № 5 (2021); 356-366 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2021-9-5

Θεματικοί όροι: стандартизация, buds, flavonoids, cynaroside, differential spectrophotometry, standardization, Quercus robur L, почки, флавоноиды, цинарозид, дифференциальная спектрофотометрия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/936/760; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/936/761; Маевский П.Ф. Флора средней полосы европейской части России. 11-е изд. – М.: Товарищество научных изданий КМК. – 2014. – 635 с.; Grotewold E. The Science of Flavonoids. New York: Springer. – 2006. – Vol. 35. DOI:10.1007/978-0-387-28822-2.; Cushnie T.P., Lamb A.J. Recent advances in understanding the antibacterial properties of flavonoids // Int. J. Antimimicrob Agents. – 2011. – P. 38:99–107. DOI:10.1016/j.ijantimicag.2011.02.014.; Magnus S., Gazdik F., Anjum N.A., Kadlecova E., Lackova Z., Cernei N., Brtnicky M., Kynicky J., Klejdus B., Necas T., Zitka O. Assessment of Antioxidants in Selected Plant Rootstocks // Antioxidants (Basel). – 2020. – Vol. 9, No.3. – Art. No.209. DOI:10.3390/antiox9030209.; Dureshahwar K., Mubashir M., Upaganlwar A.B., Sangshetti J., Upasani C., Une H. Quantitative assessment of tactile allodynia and protective effects of flavonoids of Ficus carica Lam. leaves in diabetic neuropathy // Pharmacognosy Magazine. – 2019. – Vol. 15, Issue 62. – P. 128–134. DOI:10.4103 / pm.pm_553_18.; Макарова Н.В., Игнатова Д.Ф., Еремеева Н.Б. Влияние технологии экстрагирования на содержание фенолов, флавоноидов и уровень антиоксидантной активности для плодов шиповника (Rosa L.), коры дуба (Quercus robur L.), корня ревеня (Rheum officinale), корня женьшеня (Panax L.), почек березы (Betula L.) // Химия растительного сырья, – 2020. – № 3. – С. 271–278. DOI:10.14258/jcprm.2020036608.; Eaton E., Caudullo G., Oliveira S., de Rigo D. Quercus robur and Quercus petraea in Europe: distribution, habitat, usage and threats. European Atlas of Forest Tree Species. Publi.: Public Office of the European Union, Luxembourg. – 2016. – С. 162–163.; Буданцев А.Л., Растительные ресурсы России: Дикорастущие цветковые растения, их компонентный состав и биологическая активность. Том. 1. Семейства Actinidiaceae-Malvaceae, Euphorbiaceae-Haloragaceae. / отв. ред. А.В. Буданцев. СПб.; М., Товарищество научных изданий КМК, 2009. – 158 с.; Okuda T. Systematics and health effects of chemically distinct tannins in medicinal plants. Phytochemistry. – 2005. – Vol. 66. – P. 2012–2031.; Elansary O.H., Szopa A., Kubica P., Ekiert H., Mattar A.M., Al-Yafrasi M.A., et al. Polyphenol Profile and Pharmaceutical Potential of Quercus spp. Bark Extracts // Plants. – 2019. – Vol. 8, No.11. – Art. No.486. DOI: https://doi.org/10.3390/plants8110486.; Milton Prabu S. Quercetin: a flavonol with universal therapeutic use and its interactions with other drugs. Nonvitamin and Nonmineral Nutritional Supplements. – 2019. – Vol. 106. – P. 256–271. DOI:10.1016 / B978-0-12-812491-8.00010-2.; Pérez A.J., Pecio Ł., Kowalczyk M., Kontek R., Gajek G., Stopinsek L., Mirt I., Oleszek W., Stochmal A. Triterpenoid Components from Oak Heartwood (Quercus robur) and Their Potential Health Benefits // J Agric Food Chem. – 2017. – Vol. 65, No.23. – P. 4611–4623. DOI:10.1021/acs.jafc.7b01396.; Nassima B., Behidj-Benyounes N., Ksouri R. Antimicrobial and antibiofilm activities of phenolic compounds extracted from Populus nigra and Populus alba buds (Algeria) // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. – 2019. – Vol. 55. DOI:10.1590/s2175-97902019000218114.; Куркин В.А., Павел П.В., Рыжов В.М. Количественное определение суммы флавоноидов в почках каштана конского обыкновенного // Химико-фармацевтический журнал. – 2019. – Т. 53, №2. – С. 47–51. DOI:10.30906/0023-1134-2019-53-2-47-51.; Куркин В.А., Белов П.В., Рыжов В.М., Браславский В.Б. Определение содержания рамноцитрина в почках каштана конского обыкновенного методом ВЭЖХ // Химико-фармацевтический журнал. – 2019. – Т. 53, №12. – С. 21–25. DOI:10.30906/0023-1134-2019-53-12-21-25.; Куркина А.В., Савельева А.Е., Куркин В.А. Количественное определение суммы флавоноидов в цветках бархатцев отклоненных // Химико-фармацевтический журнал. – 2021. – Т. 55, №2. – С. 46–50. DOI:10.30906/0023-1134-2021-55-2-46-50.; Lysiuk R., Hudz N. Differential Spectrophotometry: Application for Quantification of Flavonoids in Herbal Drugs and Nutraceuticals Editorial // International Journal of Trends in Food and Nutrition. – 2017. – Vol. 1. – Art. No. 102.; Адекенов С.М., Байсаров Г.М., Хабаров И.А., Поляков В.В. Флавоноиды почек тополя бальзамического Populus balsamifera L. и способы их выделения // Химия растительного сырья. – 2020. – Т. 2. – С. 181–188. DOI:10.14258/jcprm.2020027602.; Bunaciu A.A., Vu Dang H., Hassan Y. Aboul-Enein. Applications of Differential Spectrophotometry in Analytical Chemistry // Critical Reviews in Analytical Chemistry. – 2013. – Vol. 43, No.3. – P. 25–130. DOI:10.1080/10408347.2013.803357.; Бубенчиков Р.А., Гончаров Н.Н. Разработка и валидация методики количественного определения флавоноидов в траве кульбабы осенней (Leontodon autumnalis L.) // Фармация и фармакология. – 2016. – Т. 4, №1(14). – С. 26–35. DOI:10.19163/2307-9266-2016-4-1(14)-26-35.; Бубенчикова В.Н., Старчак Ю.А. Изучение фенольных соединений тимьяна мелового (Thymus cretaceus Klok. et Schost.) // Scientific Bulletin of Belgorod State University. – 2011. – Vol. 16/2, No.22. – P. 203–206.; Зименкина Н.И., Куркин В.А. Разработка подходов к стандартизации листьев ореха грецкого // Фармация. – 2020. – Т. 69, №7. – С. 23–28. DOI:10.29296/25419218-2020-07-04.; Рябов Н.А., Рыжов В.М., Тарасенко Л.В., Сохина А.А. Анатомо-морфологическое исследование почек дуба черешчатого Quercus robur L. Фармацевтическая ботаника: современность и перспективы: Сб. мат. конф. ФГБОУ ВО Самарский государственный медицинский университет Минздрава России; Изд-во Самарский государственный медицинский университет, 2017. – С. 149–158.; Рябов Н.А., Куркин В.А., Рыжов В.М., Лямин А.В., Жестков А.В., Сохина А.А. Определение антимикробной активности спиртовых извлечений коры и почек дуба черешчатого // Аспирантский Вестник Поволжья. – 2020. – №1–2. – С. 152–157. DOI:10.17816/2072-2354.2020.20.1.152-157.; Халилов Р.М., Адилов З.Х., Юсупова С.М., Сулейманова З.Р., Маматханов А.У., Турахожаев М.Т., Котенко Л.Д., Сыров В.Н. Технология получения очищенной суммы флавоноидов из корней Pseudosophora alopecuroides и оценка ее гепатопротекторной и желчесекреторной активности // Химико-фармацевтический журнал. – 2005. – Т. 39, №2. – С. 25–27. DOI:10.30906/0023-1134-2005-39-2-25-27.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/936

Διαθεσιμότητα: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/936
https://doi.org/10.19163/2307-9266-2021-9-5-356-366

View record from BASE

9

Academic Journal

Разработка методики количественного определения флавоноидов в воробейнике лекарственном

Θεματικοί όροι: дифференциальная спектрофотометрия, воробейник лекарственный, флавоноиды, травянистые растения, экстракт листьев воробейника, количественное определение флавоноидов

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://elib.belstu.by/handle/123456789/37150

10

Academic Journal

Содержание ряда ценных биологически активных компонентов в растительном лекарственном сырье Горного Алтая

Πηγή: Вестник Томского государственного университета. Химия. 2021. № 21. С. 18-31

Θεματικοί όροι: дифференциальная спектрофотометрия, перманганатометрия, вторичные метаболиты, 3. Good health

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/koha:000719282

View record at OpenAIRE

11

Academic Journal

Изучение спектрофотометрического поведения лигнина Бьеркмана в растворах щелочи

Συγγραφείς: Зильберглейт М. А., Шевчук М. О., Нестерова С. В., Алексеев А. Д., Флейшер В. Л.

Πηγή: Труды БГТУ: Серия 2. Химические технологии, биотехнологии, геоэкология, Iss 1, Pp 29-34 (2017)

Θεματικοί όροι: лигнин бьеркмана, дифференциальная спектрофотометрия, деструкция лигнина, Chemical engineering, TP155-156

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: https://elib.belstu.by/bitstream/123456789/20485/1/5Zil%e2%80%99bergleyt.pdf; https://doaj.org/toc/2520-2669

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/0937a7d7530545008686868cd05f922b

View record in DOAJ

12

Academic Journal

Research in the Development and Validation of the Method of Quantitative Determination of Flavonoids in the Common Sorrel Herba, Gathered in the Altai Territory ; Исследования по разработке и валидации методики количественного определения флавоноидов в щавеля кислого траве, заготовленной на территории Алтайского края

Συγγραφείς: G. R. Kutateladze, L. M. Fedoseeva, Г. Р. Кутателадзе, Л. М. Федосеева

Πηγή: Drug development & registration; Том 8, № 2 (2019); 80-86 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 8, № 2 (2019); 80-86 ; 2658-5049 ; 2305-2066

Θεματικοί όροι: валидация, herba, quantitative determination, flavonoids, differential spectrophotometry, rutin, validation, трава, количественное определение, флавоноиды, дифференциальная спектрофотометрия, рутин

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/685/666; Азарова О. В., Галактионова Л. П. Флавоноиды: механизм противовоспалительного действия. Химия растительного сырья. 2012; 4: 61–78.; Государственная фармакопея Российской Федерации XIII издание. М., 2015; 1: 1470. Available at: http://193.232.7.120/feml/clinical_ref/pharmacopoeia_1/HTML/; Евдокимова О. В. Валидация методики количественного определения суммы флавоноидов в столбиках с рыльцами кукурузы. Фармация. 2008; 7: 14–17.; Зверев Я. Ф. Флавоноиды глазами фармаколога. Антиоксидантная и противовоспалительная активность. Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2017; 15(4): 5–13. https://doi.org/10.17816/RCF1545-13; Куркина А. В. Флавоноиды фармакопейных растений. Самара: ООО «Офорт». 2012; 290 с.; Сорокина А. А., Марахова А. И., Станишевский Я. М, Ковалева Т. Ю. Фотометрические методы в анализе лекарственного растительного сырья и препаратов на его основе: монография. М.: РУДН. 2015: 155.; Федосеева Л. М., Кутателадзе, Г. Р. Изучение некоторых фенольных соединений надземной части щавеля кислого, произрастающего на территории Алтайского края. Химия растительного сырья. 2017; 4: 91–96. https://doi.org/10.14258/jcprm.2017041861.; Эрмер Й., Миллер Д. Валидация методик в фармацевтическом анализе. Примеры наилучшей практики. М.: Группа компаний «Виалек», 2013: 512.; Bicker J., Petereit F., Hensel A. Proanthocyanidins and a phloroglucinol derivative from Rumex acetosaL. Fitoterapia. 2009; 80 (8): 483–495. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2009.08.015.; Castle T. Lexicon Pharmaceuticum or a pharmaceutical dictionary, comprehending the pharmacopoeias of London, Edinburgh, and Dublin, with a variety of other useful information relative to medicine and pharmacy. Charleston: Nabu Press. 2011: 4.; Duke J. A. Handbook of Medicinal Herbs. Boca Raton: CRC Press, 2002: 683–684.; Kato T., Morita Y. C-glycosylflavones with acetyl substitution from Rumex acetosaL. Chem. Pharm. Bull. 1990; 38(8): 2277–2280. https://doi.org/10.1248/cpb.38.2277.; Oliff H. S. Scientific and clinical monograph for Sinupret. American botanical council: 14. Available at: http://abc.herbalgram.org/site/DocServer/Sinupret_fullmono.pdf; Thompson A. T. A conspectus of the Pharmacopoeias of the London, Edinburgh, and Dublin Colleges of Physicians being a practical compendium of Materia medica and pharmacy. London: Forgotten Books. 2017: 2–3.; Vasas A., Orban-Gyapai O., Hohmann J. The Genus Rumex: Review of traditional uses, phytochemistry and pharmacology. Journal of Ethnopharmacology. 2015; 175: 198–228. https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.09.001.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/685

Διαθεσιμότητα: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/685
https://doi.org/10.33380/2305-2066-2019-8-2-80-86

View record from BASE

13

Academic Journal

ДИНАМІКА ВМІСТУ ПЛАСТИДНИХ ПІГМЕНТІВ У ЛИСТКАХ СМОРОДИНИ ЧОРНОЇ (RIBES NIGRUM L.) ; The Dynamics of Plastid Pigments Content in Leaves of Blackcurrant (Ribes Nigrum L.) ; Сезонная динамика содержания пластидных пигментов в листьях смородины черной (Ribes nigrum L.)

Συγγραφείς: Likhanov, A.F., Rozhko, M.S., Kliuvadenko, A.A., Kostenko, S.M.

Πηγή: Scientific Bulletin of UNFU; Том 26 № 5 (2016): Науковий вісник НЛТУ України; 73-79 ; Научный вестник НЛТУ Украины; Том 26 № 5 (2016): Научный Вестник НЛТУ Украины; 73-79 ; Scientific Bulletin of UNFU; Vol 26 No 5 (2016): Scientific Bulletin of UNFU; 73-79 ; 2519-2477 ; 1994-7836 ; 10.15421/402605

Θεματικοί όροι: Blackcurrant, Ribes nigrum L, leaves, plastid pigments, chlorophylls, carotenoids, листья, пластидные пигменты, каротиноиды, рН-дифференциальная спектрофотометрия, листки, пластидні пігменти, хлорофіли, каротиноїди

Relation: https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/397/358; https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/397

Διαθεσιμότητα: https://nv.nltu.edu.ua/index.php/journal/article/view/397
https://doi.org/10.15421/40260510

View record from BASE

14

Academic Journal

РАЗРАБОТКА И ВАЛИДАЦИЯ МЕТОДИКИ КОЛИЧЕСТВЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФЛАВОНОИДОВ В ТРАВЕ КУЛЬБАБЫ ОСЕННЕЙ (LEONTODON AUTUMNALIS L.)

Συγγραφείς: Бубенчиков Роман Александрович, Гончаров Николай Николаевич

Θεματικοί όροι: дифференциальная спектрофотометрия, флавоноиды, кульбаба осенняя

Περιγραφή αρχείου: text/html

Διαθεσιμότητα: http://cyberleninka.ru/article/n/razrabotka-i-validatsiya-metodiki-kolichestvennogo-opredeleniya-flavonoidov-v-trave-kulbaby-osenney-leontodon-autumnalis-l
http://cyberleninka.ru/article_covers/16520095.png

View record from BASE

15

Academic Journal

КОЛИЧЕСТВЕННОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ СУММЫ ФЛАВОНОИДОВ В НАДЗЕМНОЙ ЧАСТИ И НАСТОЙКЕ IRIS LACTEA (IRIDACEAE)

Συγγραφείς: Загорулько (Zagorulko), Елена (Elena) Юрьевна (Jur'evna), Ожигова (Ozhigova), Мария (Marija) Георгиевна (Georgievna), Чемесова (Chemesova), Ирина (Irina) Ивановна (Ivanovna), Лужанин (Luzhanin), Владимир (Vladimir) Геннадьевич (Gennad'evich)

Πηγή: chemistry of plant raw material; No 2 (2018); 105-113
Химия растительного сырья; № 2 (2018); 105-113

Θεματικοί όροι: apigenin, дифференциальная спектрофотометрия, tincture, differential spectrophotometry, Iris lactea, надземная часть, апигенин, настойка, 3. Good health, aerial part

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Σύνδεσμος πρόσβασης: http://journal.asu.ru/cw/article/view/3368

View record at OpenAIRE

16

Academic Journal

Изучение спектрофотометрического поведения лигнина Бьеркмана в растворах щелочи

Πηγή: Труды БГТУ: Серия 2. Химические технологии, биотехнологии, геоэкология, Iss 1, Pp 29-34 (2017)

Θεματικοί όροι: дифференциальная спектрофотометрия, деструкция лигнина, Chemical engineering, лигнин бьеркмана, TP155-156

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/0937a7d7530545008686868cd05f922b

View record at OpenAIRE

17

Academic Journal

Anthocyanidin pigments in clinical ophthalmology. Analysis of their profile in eye supplements and food additives containing bilberry extract ; Роль антоцианидиновых пигментов в клинической офтальмологии: определение их профиля в лекарственных препаратах и пищевых добавках, содержащих экстракт черники

Συγγραφείς: M. B. Gottikh, I. V. Vorob’eva, V. N. Tashlitskiy, М. Б. Готтих, И. В. Воробьева, В. Н. Ташлицкий

Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 12, № 1 (2015); 83-90 ; Офтальмология; Том 12, № 1 (2015); 83-90 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2015-1

Θεματικοί όροι: рН-дифференциальная спектрофотометрия, bilberry extract, diabetic retinopathy, HPLC, pH-differential spectrophotometry, экстракт черники, диабетическая ретинопатия, ВЭЖХ

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/229/251; Egorov E.A., Stavitskaya T.V., Strizhkova A.V. [The study of «Mirtilene forte» efficacy in age-related macular degeneration patients]. Izuchenie effektivnosti primeneniya preparata «Mirtilene forte» u bol’nykh s vozrastnoy makulyarnoy degeneratsiey. [Clinical Ophthalmology]. Klinicheskaya oftal’mologiya. 2005; 46: 163. (in Russ.).; Stavitskaya T.V. [Bilberry extract use in ophthalmology]. Primenenie ekstrakta cherniki v oftal’mologii. [Clinical Ophthalmology]. Klinicheskaya oftal’mologiya. 2002; 3 (2): 86. (in Russ.).; Milen’kaya T. M. [Efficacy of anthocyanidines in non-proliferative diabetic retinopathy treatment]. Effektivnost’ primeneniya antotsianidinov v lechenii bol’nykh s neproliferativnoy diabeticheskoy retinopatiey. [Clinical Ophthalomology]. Klinicheskaya oftal’mologiya. 2008; 4: 159. (in Russ.).; Milen’kaya T. M., Bessmertnaya E. G., Aleksandrova V. K., Ishchenko I. M. [Diabetic retinopathy and antioxidants]. Diabeticheskaya retinopatiya i antioksidanty. [Diabetes]. Sakharnyy diabet. 2003; 2: 32-34. (in Russ.).; Malishevskaya T. N., Dolgova D. L., Ortenberg E. A. [Strix and Strix Forte effect on visual functions in age-related retinal and optic nerve disorders]. Izuchenie vliyaniya preparatov Striks i Striks forte na zritel’nye funktsii bol’nykh s vozrastnoy patologiey setchatki i zritel’nogo nerva. [Clinical Ophthalmology]. Klinicheskaya oftal’mologiya. 2008; 1: 20. (in Russ.).; Egorov E. A., Romanenko I. A. [Modern aspects of pathogenesis, diagnosis, clinics and treatment of age-related macular degeneration]. Sovremennye aspekty patogeneza, diagnostiki, kliniki i lecheniya vozrastnoy makulyarnoy degeneratsii. [Ophthalmology]. Oftal’mologiya. 2009; 6 (1): 51-55. (in Russ.).; Yang Y., Shi Z., Reheman A., Jin J. W., Li C., Wang Y., Andrews M. C., Chen P., Zhu G., Ling W, Ni H. Plant food delphinidin-3-glucoside significantly inhibits platelet activation and thrombosis: novel protective roles against cardiovascular diseases. PLoS ONE. 2012; 7 (5): e37323.; Rispoli E., Tommasini P., Carrozzoni M.P., De Leo A., Guizzi M., Rispoli M. Studio della scotopic threshold response su pazienti miopi e diabetici prima e dopo trattamento con antocianosidi. Boll. Oculistica. 1995; 74 (6): 5.; Hwang J.W., Kim E.K., Lee S.J., Kim Y.S., Moon S.H., Jeon B.T., Sung S.H., Kim E.T., Park P.J. Antioxidant activity and protective effect of anthocyanin oligomers on H2O2-triggered G2/M arrest in retinal cells. J. Agric. Food Chem. 2012; 60 (17): 4282-4288.; Esselen M., Fritz J., Hutter M., Teller N., Baechler S., Boettler U., Marczylo T.H., Gescher A. J., Marko D. Anthocyanin-rich extracts suppress the DNA-damaging effects of topoisomerase poisons in human colon cancer cells. Mol. Nutr. Food Res. 2011; 55 (S1): 143-153.; Shih, P. H., Chan Y.C., Liao J.W. Antioxidant and cognitive promotion effects of anthocyanin-rich mulberry (Morusatropurpurea L.) on senescence-accelerated mice and prevention of Alzheimer’s disease. J. Nutr. Biochem. 2010; 21 (7): 598-605.; Zhu Y., Ling W., Guo H., Song F, Ye Q, Zou T, Li D, Zhang Y, Li G, Xiao Y, Liu F, Li Z, Shi Z, Yang Y. Anti-inflammatory effect of purified dietary anthocyanin in adults with hypercholesterolemia: A randomized controlled trial. Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis. 2013; 23 (9): 843-849.; Tsuda T. Dietary anthocyanin-rich plants: Biochemical basis and recent progress in health benefits studies. Mol. Nutr. Food Res. 2011; 56 (1): 159-170.; Seymour E. M., Lewis S. K., Urcuyo-Llanes D. E., Tanone I. I., Kirakosyan A., Kaufman P. B., Bolling S. F. Anthocyanin pharmacokinetics and dose-dependent plasma antioxidant pharmacodynamics following whole tart cherry intake in healthy humans. J. Funct. Foods. 2014; 11: 509-516.; Gottikh M. B., Tashlitskiy V. N. [Expertise of eye supplements and biologically active additives. Qualitative and quantitative assessment of anthocyanidin pigments]. [Annals of Optometry]. Vestnik optometrii. 2010; 1: 50-53. (in Russ.).; Shapovalova E. N., Pirogov A. V. [Chromatography: Guidelines for a specialized course]. Khromatograficheskie metody analiza: Metodicheskoe posobie dlya spetsial’nogo kursa. Moscow, Moscow State University, 2007.; Vlasova I. V., Shilova A. V., Fokina Yu. S. [Spectrophotometric methods in drug analysis (a review)]. Spektrofotometricheskie metody v analize lekarstvennykh preparatov (obzor). [Factory Laboratory. Diagnostics of Materials]. Zavodskaya laboratoriya. Diagnostika materialov. 2011; 77 (1): 21-28. (in Russ.).; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/229

Διαθεσιμότητα: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/229
https://doi.org/10.18008/1816-5095-2015-1-83-90

View record from BASE

18

Academic Journal