-
1Academic Journal
Πηγή: Интегративная физиология, Vol 5, Iss 3 (2024)
Θεματικοί όροι: главный комплекс гистосовместимости, лизосомы, Physiology, антигены, QP1-981, лимфоциты, рецепторы, антигенпрезентирующие клетки
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/e80831bc31304536be818bb5592d8c2a
-
2Academic Journal
Πηγή: Репутациология. :13-49
Θεματικοί όροι: половое размножение, гетерозис, репродуктивные стратегии, парохиальный альтруизм, эусоциальность, родственный отбор, групповой отбор, Главный комплекс гистосовместимости, социальное поведение, ксенофилия, ксенофобия
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: Baikuzina P.G., Gorbacheva D.V., Apt A.S., Korotetskaya M.V.
Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 14, No 3 (2024); 525-531 ; Инфекция и иммунитет; Vol 14, No 3 (2024); 525-531 ; 2313-7398 ; 2220-7619
Θεματικοί όροι: tuberculosis, haplotype, sensitivity, mycobacterium, major histocompatibility complex, susceptibility, туберкулез, гаплотип, чувствительность, микобактерия, главный комплекс гистосовместимости, восприимчивость
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17731/1994; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17731/137704; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17731/137705; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/17731/137706; https://iimmun.ru/iimm/article/view/17731
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: N. V. Vorobjeva, Н. В. Воробьева
Συνεισφορές: The research was carried out within the framework of the project “Molecular and cellular bases of immunity” (number 21-1-21, CITIS number 121042600047-9) and Interdisciplinary Scientific and Educational School of Moscow University “Molecular Technologies of the Living Systems and Synthetic Biology.”, Работа выполнена в рамках проекта «Молекулярные и клеточные основы иммунитета» (проект 21-1-21, номер ЦИТИС 121042600047-9) и Междисциплинарной научно-образовательной школы Московского университета «Молекулярные технологии живых систем и синтетическая биология».
Πηγή: Vestnik Moskovskogo universiteta. Seriya 16. Biologiya; Том 78, № 2 (2023); 55-63 ; Вестник Московского университета. Серия 16. Биология; Том 78, № 2 (2023); 55-63 ; 0137-0952
Θεματικοί όροι: хемокины, antigen-presenting cell, antigen presentation, major histocompatibility complex, cytokines, chemokines, антигенпрезентирующая клетка, презентация антигена, главный комплекс гистосовместимости, цитокины
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://vestnik-bio-msu.elpub.ru/jour/article/view/1229/617; Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., Fauler B., Uhlemann Y., Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 2004;303(5663):1532–1535.; Borregaard N., Sørensen O.E., Theilgaard-Mönch K. Neutrophil granules: a library of innate immunity proteins. Trends Immunol. 2007;28(8):340–345.; Price T.H., Chatta G.S., Dale D.C. Effect of recombinant granulocyte colony-stimulating factor on neutrophil kinetics in normal young and elderly humans. Blood. 1996;88(1):335–340.; Galli S.J., Borregaard N., Wynn T.A. Phenotypic and functional plasticity of cells of innate immunity: macrophages, mast cells and neutrophils. Nat. Immunol. 2011;12(11):1035–1044.; Dancey J.T., Deubelbeiss K.A., Harker L.A., Finch C.A. Neutrophil kinetics in man. J. Clin. Invest. 1976;58(3):705–715.; Martin C., Burdon P.C., Bridger G., GutierrezRamos J.C., Williams T.J., Rankin S.M. Chemokines acting via CXCR2 and CXCR4 control the release of neutrophils from the bone marrow and their return following senescence. Immunity. 2003;19(4):583–593.; Westman J., Grinstein S., Marques P.E. Phagocytosis of necrotic debris at sites of injury and inflammation. Front. Immunol. 2020;10:3030.; Dalli J., Montero-Melendez T., Norling L.V., Yin X., Hinds C., Haskard D., Mayr M., Perretti M. Heterogeneity in neutrophil microparticles reveals distinct proteome and functional properties. Mol. Cell. Proteomics. 2013;12(8):2205–2219.; Polak D., Hafner C., Briza P., Kitzmüller C., ElbeBürger A., Samadi N., Gschwandtner M., Pfützner W., Zlabinger G.J., Jahn-Schmid B., Bohle B. A novel role for neutrophils in IgE-mediated allergy: Evidence for antigen presentation in late-phase reactions. J. Allergy Clin. Immunol. 2019;143(3):1143–1152.e4.; Oehler L., Majdic O., Pickl W.F., Stöckl J., Riedl E., Drach J., Rappersberger K., Geissler K., Knapp W. Neutrophil granulocyte-committed cells can be driven to acquire dendritic cell characteristics. J. Exp. Med. 1998;187(7):1019–1028.; Hayashi F., Means T.K., Luster A.D. Toll-like receptors stimulate human neutrophil function. Blood. 2003;102(7):2660–2669.; Metzemaekers M., Gouwy M., Proost P. Neutrophil chemoattractant receptors in health and disease: doubleedged swords. Cell. Mol. Immunol. 2020;17(5):433–450.; Nauseef W.M. How human neutrophils kill and degrade microbes: an integrated view. Immunol. Rev. 2007;219(1):88–102.; Liew P.X., Kubes P. The neutrophil’s role during health and disease. Physiol. Rev. 2019;99(2):1223–1248.; Steinberg B.E., Grinstein S. Unconventional roles of the NADPH oxidase: signaling, ion homeostasis, and cell death. Sci. STKE. 2007;2007(379):pe11.; Vorobjeva N.V., Chernyak B.V. NETosis: Molecular mechanisms, role in physiology and pathology. Biochemistry (Mosc.). 2020;85(10):1178–1190.; Vorobjeva N.V. Neutrophil extracellular traps: New aspects. Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2020;75(4):173–188.; Vorobjeva N., Dagil Y., Pashenkov M., Pinegin B., Chernyak B. Protein kinase C isoforms mediate the formation of neutrophil extracellular traps. Int. Immunopharmacol. 2023;114: 109448.; Pinegin B., Vorobjeva N., Pinegin V. Neutrophil extracellular traps and their role in the development of chronic inflammation and autoimmunity. Autoimmun. Rev. 2015;14(7):633–640.; Tecchio C., Micheletti A., Cassatella M.A. Neutrophil-derived cytokines: facts beyond expression. Front. Immunol. 2014;5:508.; Robertson A.L., Holmes G.R., Bojarczuk A.N., et al. A zebrafish compound screen reveals modulation of neutrophil reverse migration as an anti-inflammatory mechanism. Sci. Transl. Med. 2014;6(225):225ra29.; Scapini P., Cassatella M.A. Social networking of human neutrophils within the immune system. Blood. 2014;124(5):710–719.; Tsuboi N., Asano K., Lauterbach M., Mayadas T.N. Human neutrophil Fcgamma receptors initiate and play specialized nonredundant roles in antibody-mediated inflammatory diseases. Immunity. 2008;28(6):833–846.; Puga I., Cols M., Barra C.M., et al. B cell-helper neutrophils stimulate the diversification and production of immunoglobulin in the marginal zone of the spleen. Nat. Immunol. 2011;13(2):170–180.; Pelletier M., Maggi L., Micheletti A., Lazzeri E., Tamassia N., Costantini C., Cosmi L., Lunardi C., Annunziato F., Romagnani S., Cassatella M.A. Evidence for a cross-talk between human neutrophils and Th17 cells. Blood. 2010;115(2):335–343.; Kambayashi T., Laufer T.M. Atypical MHC class II-expressing antigen-presenting cells: can anything replace a dendritic cell? Nat. Rev. Immunol. 2014;14(11):719–730.; Reis e Sousa C. Dendritic cells in a mature age. Nat. Rev. Immunol. 2006;6(6):476–483.; Takashima A., Yao Y. Neutrophil plasticity: acquisition of phenotype and functionality of antigenpresenting cell. J. Leukoc. Biol. 2015;98(4):489–496.; Vono M., Lin A., Norrby-Teglund A., Koup R.A., Liang F., Loré K. Neutrophils acquire the capacity for antigen presentation to memory CD4+ T cells in vitro and ex vivo. Blood. 2017;129(14):1991–2001.; Harding C.V., Unanue E.R. Quantitation of antigenpresenting cell MHC class II/peptide complexes necessary for T-cell stimulation. Nature. 1990;346(6284):574–576.; Gosselin E.J., Wardwell K., Rigby W.F., Guyre P.M. Induction of MHC class II on human polymorphonuclear neutrophils by granulocyte/macrophage colony-stimulating factor, IFN-gamma, and IL-3. J. Immunol. 1993;151(3):1482–1490.; Radsak M., Iking-Konert C., Stegmaier S., Andrassy K., Hänsch G.M. Polymorphonuclear neutrophils as accessory cells for T-cell activation: major histocompatibility complex class II restricted antigen-dependent induction of T-cell proliferation. Immunology. 2000;101(4):521–530.; Matsushima H., Geng S., Lu R., Okamoto T., Yao Y., Mayuzumi N., Kotol P.F., Chojnacki B.J., Miyazaki T., Gallo R.L., Takashima A. Neutrophil differentiation into a unique hybrid population exhibiting dual phenotype and functionality of neutrophils and dendritic cells. Blood. 2013;121(10):1677–1689.; Iking-Konert C., Csekö C., Wagner C., Stegmaier S., Andrassy K., Hänsch G.M. Transdifferentiation of polymorphonuclear neutrophils: acquisition of CD83 and other functional characteristics of dendritic cells. J. Mol. Med. (Berl.). 2001;79(8):464–474.; Spagnoli G.C., Juretic A., Rosso R., Van Bree J., Harder F., Heberer M. Expression of HLA-DR in granulocytes of polytraumatized patients treated with recombinant human granulocyte macrophage-colonystimulating factor. Hum. Immunol. 1995;43(1):45–50.; Sandilands G.P., McCrae J., Hill K., Perry M., Baxter D. Major histocompatibility complex class II (DR) antigen and costimulatory molecules on in vitro and in vivo activated human polymorphonuclear neutrophils. Immunology. 2006;119(4):562–571.; Cross A., Bucknall R.C., Cassatella M.A., Edwards S.W., Moots R.J. Synovial fluid neutrophils transcribe and express class II major histocompatibility complex molecules in rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 2003;48(10):2796–2806.; Iking-Konert C., Vogt S., Radsak M., Wagner C., Hänsch G.M., Andrassy K. Polymorphonuclear neutrophils in Wegener’s granulomatosis acquire characteristics of antigen presenting cells. Kidney Int. 2001;60(6):2247–2262.; Müller I., Munder M., Kropf P., Hänsch G.M. Polymorphonuclear neutrophils and T lymphocytes: strange bedfellows or brothers in arms? Trends Immunol. 2009;30(11):522–530.; Sandilands G.P., Hauffe B., Loudon E., Marsh A.G., Gondowidjojo A., Campbell C., Ferrier R.K., Rodie M.E. Detection of cytoplasmic CD antigens within normal human peripheral blood leucocytes. Immunology. 2003;108(3):329–337.; Sandilands G.P., Ahmed Z., Perry N., Davison M., Lupton A., Young B. Cross-linking of neutrophil CD11b results in rapid cell surface expression of molecules required for antigen presentation and T-cell activation. Immunology. 2005;114(3):354–368.; van den Elsen P.J. Expression regulation of major histocompatibility complex class I and class II encoding genes. Front. Immunol. 2011;2:48.; Berard M., Tough D.F. Qualitative differences between naïve and memory T cells. Immunology. 2002;106(2):127–138.; Ethuin F., Gérard B., Benna J.E., Boutten A., Gougereot-Pocidalo M.A., Jacob L., Chollet-Martin S. Human neutrophils produce interferon gamma upon stimulation by interleukin-12. Lab. Invest. 2004;84(10):1363–1371.; Abi Abdallah D.S., Egan C.E., Butcher B.A., Denkers E.Y. Mouse neutrophils are professional antigenpresenting cells programmed to instruct Th1 and Th17 T-cell differentiation. Int. Immunol. 2011;23(5):317–326.; Feuk-Lagerstedt E., Jordan E.T., Leffler H., Dahlgren C., Karlsson A. Identification of CD66a and CD66b as the major galectin-3 receptor candidates in human neutrophils. J. Immunol. 1999;163(10):5592–5598.; Pantouris G., Syed M.A., Fan C., Rajasekaran D., Cho T.Y., Rosenberg E.M. Jr., Bucala R., Bhandari V., Lolis E.J. An analysis of MIF structural features that control functional activation of CD74. Chem. Biol. 2015;22(9):1197–1205.; Tato M., Kumar S.V., Liu Y., Mulay S.R., Moll S., Popper B., Eberhard J.N., Thomasova D., Rufer A.C., Gruner S., Haap W., Hartmann G., Anders H.J. Cathepsin S inhibition combines control of systemic and peripheral pathomechanisms of autoimmune tissue injury. Sci. Rep. 2017;7(1):2775.; Nordenfelt P., Tapper H. Phagosome dynamics during phagocytosis by neutrophils. J. Leukoc. Biol. 2011;90(2):271–284.; Воробьева Н.В. Молекулярные механизмы фагоцитоза. Часть 1. Рос. иммунол. журн. 2014;8(2):107–120.; Fernando M.M., Stevens C.R., Walsh E.C., De Jager P.L., Goyette P., Plenge R.M., Vyse T.J., Rioux J.D. Defining the role of the MHC in autoimmunity: a review and pooled analysis. PLoS Genet. 2008;4(4):e1000024.; Potter N.S., Harding C.V. Neutrophils process exogenous bacteria via an alternate class I MHC processing pathway for presentation of peptides to T lymphocytes. J. Immunol. 2001;167(5):2538–2546.; Beauvillain C., Delneste Y., Scotet M., Peres A., Gascan H., Guermonprez P., Barnaba V., Jeannin P. Neutrophils efficiently cross-prime naive T cells in vivo. Blood. 2007;110(8):2965–2973.; Davey M.S., Morgan M.P., Liuzzi A.R., Tyler C.J., Khan M.W.A., Szakmany T., Hall J.E., Moser B., Eberl M. Microbe-specific unconventional T cells induce human neutrophil differentiation into antigen cross-presenting cells. J. Immunol. 2014;193(7):3704–3716.; Singhal S., Bhojnagarwala P.S., O’Brien S., Moon E.K., Garfall A.L., Rao A.S., Quatromoni J.G., Stephen T.L., Litzky L., Deshpande C., Feldman M.D., Hancock W.W., Conejo-Garcia J.R., Albelda S.M., Eruslanov E.B. Origin and role of a subset of tumorassociated neutrophils with antigen-presenting cell features in early-stage human lung cancer. Cancer Cell. 2016;30(1):120–135.; Hampton H.R., Chtanova T. The lymph node neutrophil. Semin. Immunol. 2016;28(2):129–136.; Abadie V., Badell E., Douillard P., Ensergueix D., Leenen P.J., Tanguy M., Fiette L., Saeland S., Gicquel B., Winter N. Neutrophils rapidly migrate via lymphatics after Mycobacterium bovis BCG intradermal vaccination and shuttle live bacilli to the draining lymph nodes. Blood. 2005;106(5):1843–1850.; Liang F., Lindgren G., Sandgren K.J., Thompson E.A., Francica J.R., Seubert A., De Gregorio E., Barnett S., O’Hagan D.T., Sullivan N.J., Koup R.A., Seder R.A., Loré K. Vaccine priming is restricted to draining lymph nodes and controlled by adjuvant-mediated antigen uptake. Sci. Transl. Med. 2017;9(393):eaal2094.
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: E. S. Fedorova, O. I. Stanishevskaya, Е. С. Федорова, О. И. Станишевская
Συνεισφορές: The Russian Federation within the state assignment of the L.K. Ernst Federal Research Center for Animal Husbandry (theme No. 121052600357-8). The authors thank the reviewers for their contribution to the expert evaluation of this work., Работа выполнена при поддержке Минобрнауки России в рамках Государственного задания ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л. К. Эрнста» (тема № 121052600357-8). Авторы благодарят рецензентов за их вклад в экспертную оценку этой работы.
Πηγή: Agricultural Science Euro-North-East; Том 24, № 6 (2023); 1029-1037 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 24, № 6 (2023); 1029-1037 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Θεματικοί όροι: белки теплового шока, infectious activity, influenza virus, infectious bronchitis virus of chicken, major histocompatibility complex, heat shock proteins, инфекционная активность, вирус гриппа, вирус инфекционного бронхита кур, главный комплекс гистосовместимости
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1488/729; Somes R. G. International Registry of Poultry Genetic Stocks. The University of Connecticut Storrs, 1988. 98 p. URL: http://digitalcommons.uconn.edu/saes/29; Gul H., Habib G., Khan I. M., Rahman S. U., Khan N. M., Wang H., Khan N. U., Liu Y. Genetic resilience in chickens against bacterial, viral and protozoal pathogens. Frontiers in Veterinary Science. 2022;9:1032983. DOI: https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1032983; Kheimar A., Klinger R., Bertzbach L. D., Sid H., Yu Y., Conradie A. M., Schade B., Böhm B., Preisinger R., Nair V., Kaufer B. B., Schusser B. A Genetically Engineered Commercial Chicken Line Is Resistant to Highly Pathogenic Avian Leukosis Virus Subgroup J. Microorganisms. 2021;9(5):1066. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms9051066; Koslová A., Trefil P., Mucksová J., Reinišová M., Plachý J., Kalina J., Kučerová D., Geryk J., Krchlíková V., Lejčková B., Hejnar J. Precise CRISPR/Cas9 editing of the NHE1 gene renders chickens resistant to the J subgroup of avian leukosis virus. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2020;117(4):2108-2112. DOI: https://doi.org/10.1073/pnas.1913827117; Challagulla A., Jenkins K. A., O'Neil T. E., Shi S., Morris K. R., Wise T. G., Paradkar P. N., Tizard M. L., Doran T. J., Schat K. A. In Vivo Inhibition of Marek's Disease Virus in Transgenic Chickens Expressing Cas9 and gRNA against ICP4. Microorganisms. 2021;9(1):164. DOI: https://doi.org/10.3390/microorganisms9010164; McGrew M. J., Sherman A., Ellard F. M., Lillico S. G., Gilhooley H. J., Kingsman A. J., Mitrophanous K. A., Sang H. Efficient production of germline transgenic chickens using lentiviral vectors. EMBO Reports. 2004;5(7):728-733. DOI: https://doi.org/10.1038/sj.embor.7400171; Barjesteh N., O'Dowd K., Vahedi S. M. Antiviral responses against chicken respiratory infections: Focus on avian influenza virus and infectious bronchitis virus. Cytokine. 2020;127:154961. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cyto.2019.154961; Schilling M. A., Katani R., Memari S., Cavanaugh M., Buza J., Radzio-Basu J., Mpenda F. N., Deist M. S., Lamont S. J., Kapur V. Transcriptional Innate Immune Response of the Developing Chicken Embryo to Newcastle Disease Virus Infection. Frontiers in Genetics. 2018;9:61. DOI: https://doi.org/10.3389/fgene.2018.00061; Kaufman J., Salomonsen J. The "minimal essential ГКГ" revisited: both peptide-binding and cell surface expression level of ГКГ molecules are polymorphisms selected by pathogens in chickens. Hereditas. 1997;127(1-2):67-73. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1601-5223.1997.t01-1-00067.x; Torigoe T., Tamura Y., Sato N. Heat shock proteins and immunity: application of hyperthermia for immunomodulation. International Journal of Hyperthermia. 2009;25(8):610-616. DOI: https://doi.org/10.3109/02656730903315831; Stewart G. R., Young D. B. Heat-shock proteins and the host-pathogen interaction during bacterial infection. Current Opinion in Immunology. 2004;16(4):506-510. DOI: https://doi.org/10.1016/j.coi.2004.05.007; Zhao F. Q., Zhang Z. W., Qu J. P., Yao H. D., Li M., Li S., Xu S. W. Cold stress induces antioxidants and HSPs in chicken immune organs. Cell Stress and Chaperones. 2014;19(5):635-648. DOI: https://doi.org/10.1007/s12192-013-0489-9; Станишевская О. И., Федорова Е. С. Сравнительная оценка особенностей стресс-реактивности организма кур русской белой породы с мутацией sw+ и амрокс на условия гипотермии в эмбриональном и раннем постнатальном периодах онтогенеза. Сельскохозяйственная биология. 2019;54(6):1135-1143. DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.6.1135rus EDN: JIVYWR; Stanishevskaya O. I., Fedorova E. S. Comparative evaluation of the peculiarities of stress reactivity of the Russian white breed chicken with sw+ mutation and Amrox in hypothermia conditions during embryonal and early postnatal periods of ontogenesis. Sel'skokhozyaystvennaya biologiya = Agricultural Biology. 2019;54(6):1135-1143. (In Russ.). DOI: https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.6.1135rus; De Maio A., Vazquez D. Extracellular heat shock proteins: a new location, a new function. Shock. 2013;40(4):239-246. DOI: https://doi.org/10.1097/SHK.0b013e3182a185ab; Habich C., Burkart V. Heat shock protein 60: regulatory role on innate immune cells. Cellular and Molecular Life Sciences. 2007;64(6):742-751. DOI: https://doi.org/10.1007/s00018-007-6413-7
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: M. V. Epifanova, A. A. Kostin, E. V. Gameeva, K. R. Ikonova, S. A. Artemenko, A. A. Epifanov, V. B. Chernykh, М. В. Епифанова, А. А. Костин, Е. В. Гамеева, К. Р. Иконова, С. А. Артеменко, А. А. Епифанов, В. Б. Черных
Συνεισφορές: This publication has been supported by project № 033032-0-000., Публикация выполнена в рамках проекта № 033032-0-000.
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 24, № 3 (2023); 23-32 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 24, № 3 (2023); 23-32 ; 2412-8902 ; 2070-9781
Θεματικοί όροι: главный комплекс гистосовместимости, Dupuytren’s contracture, genetic predictors, molecular markers, transforming growth factor β1, myostatin, matrix metalloproteinases, Wnt signaling pathway, microRNA, major histocompatibility complex, контрактура Дюпюитрена, генетические факторы предрасположенности, молекулярные маркеры, трансформирующий фактор роста β1, миостатин, матриксные металлопротеиназы, сигнальный путь Wnt, микроРНК
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/691/541; Hellstrom W.J., Feldman R., Rosen R.C. et al. Bother and distress associated with Peyronie’s disease: validation of the Peyronie’s disease questionnaire. J Urol 2013;190(2):627–34. DOI:10.1016/j.juro.2013.01.090; Tal R., Hall M.S., Alex B. et al. Peyronie’s disease in teenagers. J Sex Med 2012;9(1):302–8. DOI:10.1111/j.1743-6109.2011.02502.x; Stuntz M., Perlaky A., des Vignes F. et al. The prevalence of Peyronie’s disease in the United States: a population-based study. PloS One 2016;11(2):e0150157. DOI:10.1371/journal.pone.0150157; Moreno S.A., Morgentaler A. Testosterone deficiency and Peyronie’s disease: pilot data suggesting a significant relationship. J Sex Med 2009;6(6):1729–35. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01250.x; Al-Thakafi S., Al-Hathal N. Peyronie’s disease: a literature review on epidemiology, genetics, pathophysiology, diagnosis and work-up. Transl Androl Urol 2016;5(3):280–9. DOI:10.21037/tau.2016.04.05; Habous M., Malkawi I., Han E. et al. Peyronie’s disease is common in poorly controlled diabetics but is not associated with the metabolic syndrome. Urol Ann 2019;11(3):252–6. DOI:10.4103/UA.UA_164_18; Schneider D., Afyouni A.S., Yafi F.A. Peyronie’s disease and testosterone: a narrative review. Androg Clin Res Ther 2022;3(1):105–12. DOI:10.1089/andro.2021.0027; Can O., Özbir S., Atalay H.A. et al. The relationship between testosterone levels and Peyronie’s disease. Andrologia 2020;52(9):e13727. DOI:10.1111/and.13727; Ширин Г.В., Федорова Н.А. Болезнь Пейрони и первый опыт использования Пейрофлекса®. Вестник урологии 2021;9(2):150–6. DOI:10.21886/2308-6424-2021-9-2-150-156; Shindel A.W., Sweet G., Thieu W. et al. Prevalence of Peyronie’s disease-like symptoms in men presenting with Dupuytren contractures. Sex Med 2017;5(3):e135–e41. DOI:10.1016/j.esxm.2017.06.001; Akbal C., Tanidir Y., Ozgen M.B., Simşek F. Erectile dysfunction and Peyronie’s disease in patient with retroperitoenal fibrosis. Int Urol Nephrol 2008;40(4):971–5. DOI:10.1007/s11255-008-9381-4; Tal R., Heck M., Teloken P. et al. Peyronie’s disease following radical prostatectomy: incidence and predictors. J Sex Med 2010;7(3):1254–61. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01655.x; EAU Guidelines. Edn. presented at the EAU Annual Congress, Milan, 2023.; Krakhotkin D.V., Chernylovskyi V.A., Mottrie A. et al. New insights into the pathogenesis of Peyronie’s disease: a narrative review. Chronic Dis Transl Med 2020;6(3):165–81. DOI:10.1016/j.cdtm.2020.06.001; Herati A.S., Pastuszak A.W. The genetic basis of Peyronie disease: a review. Sex Med Rev 2016;4(1):85–94. DOI:10.1016/j.sxmr.2015.10.002; Gabrielsen J.S. Peyronie’s disease: is it genetic or not? Transl Androl Urol 2020;9(Suppl2):S262–S8. DOI:10.21037/tau.2019.10.21; Sharma K.L., Alom M., Trost L. The etiology of Peyronie’s disease: pathogenesis and genetic contributions. Sex Med Rev 2020;8(2): 314–23. DOI:10.1016/j.sxmr.2019.06.004; Dolmans G.H., Werker P.M., de Jong I.J. et al. WNT2 locus is involved in genetic susceptibility of Peyronie’s disease. J Sex Med 2012;9(5):1430–4. DOI:10.1111/j.1743-6109.2012.02704.x; Sergovich F.R., Botz J.S., McFarlane R.M. Nonrandom cytogenetic abnormalities in Dupuytren’s disease. N Engl J Med 1983;308(3):162–3. PMID: 6848917.; Dal Cin P., De Smet L., Sciot R. et al. Trisomy 7 and trisomy 8 in dividing and non-dividing tumor cells in Dupuytren’s disease. Cancer Genet Cytogenet 1999;108(2):137–40. DOI:10.1016/s0165-4608(98)00126-5; Casalone R., Mazzola D., Meroni E. et al. Cytogenetic and interphase cytogenetic analyses reveal chromosome instability but no clonal trisomy 8 in Dupuytren contracture. Cancer Genet Cytogenet 1997;99(1):73–6. DOI:10.1016/s0165-4608(96)00430-x; Nyberg L.M. Jr., Bias W.B., Hochberg M.C. et al. Identification of an inherited form of Peyronie’s disease with autosomal dominant inheritance and association with Dupuytren’s contracture and histocompatibility B7 cross-reacting antigens. J Urol 1982;128(1):48–51. DOI:10.1016/s0022-5347(17)52751-2; Nugteren H.M., Nijman J.M., de Jong I.J., van Driel M.F. The association between Peyronie’s and Dupuytren’s disease. Int J Impot Res 2011;23(4):142–5. DOI:10.1038/ijir.2011.18; Allen-Brady K.L., Christensen M.B., Sandberg A.D., Pastuszak A.W. Significant familial clustering of Peyronie’s disease in close and distant relatives. Andrology 2022;10(7):1361–7. DOI:10.1111/andr.13223; Perinchery G., El-Sakka A.I., Angan A. et al. Microsatellite alterations and loss of heterozygosity in Peyronie’s disease. J Urol 2000;164(3 Pt 1):842–6. DOI:10.1097/00005392-200009010-00059; Qian A., Meals R.A., Rajfer J. et al. Comparison of gene expression profiles between Peyronie’s disease and Dupuytren’s contracture. Urology 2004;64(2):399–404. DOI:10.1016/j.urology.2004.04.006; Gonzalez-Cadavid N.F., Magee T.R., Ferrini M. et al. Gene expression in Peyronie’s disease. Int J Impot Res 2002;14(5):361–74. DOI:10.1038/sj.ijir.3900873; Dullea A., Efimenko I., Firdaus F. et al. Whole-genome sequencing identifies novel heterozygous mutation in ALMS1 in three men with both Peyronie’s and Dupuytren’s Disease. Urology 2022;166:76–8. DOI:10.1016/j.urology.2022.02.023; Moses H.L., Roberts A.B., Derynck R. The discovery and early days of TGF-β: a historical perspective. Cold Spring Harbor Perspect Biol 2016;8(7):a021865. DOI:10.1101/cshperspect.a021865; Baba A.B., Rah B., Bhat G.R. et al. Transforming growth factor-beta (TGF-β) signaling in cancer – a betrayal within. Front Pharmacol 2022;13:791272. DOI:10.3389/fphar.2022.791272; Papageorgis P. TGFβ signaling in tumor initiation, epithelial-to-mesenchymal transition, and metastasis. J Oncol 2015;2015:587193. DOI:10.1155/2015/587193; Hassoba H., El-Sakka A., Lue T. Role of increased transforming growth factor beta protein expression in the pathogenesis of Peyronie’s disease. Egypt J Immunol 2005;12(1):1–8. PMID: 16734133.; Piao S., Choi M.J., Tumurbaatar M. et al. Transforming growth factor (TGF)-β type I receptor kinase (ALK5) inhibitor alleviates profibrotic TGF-β1 responses in fibroblasts derived from Peyronie’s plaque. J Sex Med 2010;7(10):3385–95. DOI:10.1111/j.1743-6109.2010.01753.x; Wang J., Xiang H., Lu Y., Wu T. Role and clinical significance of TGF-β1 and TGF-βR1 in malignant tumors (Review). Int J Mol Med 2021;47(4):55. DOI:10.3892/ijmm.2021.4888; Biernacka A., Dobaczewski M., Frangogiannis N.G. TGF-β signaling in fibrosis. Growth Factors (Chur, Switzerland) 2011;29(5):196–202. DOI:10.3109/08977194.2011.595714; Frangogiannis N. Transforming growth factor-β in tissue fibrosis. J Exp Med 2020;217(3):e20190103. DOI:10.1084/jem.20190103; Eftimie R., Brenner H.R., Buonanno A. Myogenin and MyoD join a family of skeletal muscle genes regulated by electrical activity. Proc Natl Acad Sci U S A 1991;88(4):1349–53. DOI:10.1073/pnas.88.4.1349; Cantini L.P., Ferrini M.G., Vernet D. et al. Profibrotic role of myostatin in Peyronie’s disease. J Sex Med 2008;5(7):1607–22. DOI:10.1111/j.1743-6109.2008.00847.x; Chen M.M., Zhao Y.P., Zhao Y. et al. Regulation of myostatin on the growth and development of skeletal muscle. Front Cell Dev Biol 2021;9:785712. DOI:10.3389/fcell.2021.785712; Beutel B., Song J., Konken C.P. et al. New in vivo compatible matrix metalloproteinase (MMP)-2 and MMP-9 inhibitors. Bioconjug Chem 2018;29(11):3715–25. DOI:10.1021/acs.bioconjchem.8b00618; Bormann T., Maus R., Stolper J. et al. Role of matrix metalloprotease-2 and MMP-9 in experimental lung fibrosis in mice. Respir Res 2022;23(1):180. DOI:10.1186/s12931-022-02105-7; Cohen D.J., Reynaldo W.V., Borba V.B. et al. New in vivo model to assess macroscopic, histological, and molecular changes in Peyronie’s disease. Andrology 2022;10(1):154–65. DOI:10.1111/andr.13092; Rompel R., Mueller-Eckhardt G., Schroeder-Printzen I. et al. HLA antigens in Peyronie’s disease. Urol Int 1994;52(1):34–7. DOI:10.1159/000282566; Cushing L., Kuang P.P., Qian J. et al. miR-29 is a major regulator of genes associated with pulmonary fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol 2011;45(2):287–94. DOI:10.1165/rcmb.2010-0323OC; Dos Santos V.G., Dos Santos G.A., Neto C.B. et al. Downregulation of miR-29b is associated with Peyronie’s disease. Urologia 2022;89(3):451–5. DOI:10.1177/03915603211036628; Ten Dam E.P.M., van Driel M.F., de Jong I.J. et al. Glimpses into the molecular pathogenesis of Peyronie’s disease. Aging Male 2020;23(5):962–70. DOI:10.1080/13685538.2019.1643311; De Young L.X., Bella A.J., O’Gorman D.B. et al. Protein biomarker analysis of primary Peyronie’s disease cells. J Sex Med 2010;7(1 Pt 1):99–106. DOI:10.1111/j.1743-6109.2009.01556.x; Weis M.A., Hudson D.M., Kim L. et al. Location of 3-hydroxyproline residues in collagen types I, II, III, and V/XI implies a role in fibril supramolecular assembly. J Biol Chem 2010;285(4):2580–90. DOI:10.1074/jbc.M109.068726; Stone R.C., Pastar I., Ojeh N. et al. Epithelial-mesenchymal transition in tissue repair and fibrosis. Cell Tissue Res 2016;365(3):495–506. DOI:10.1007/s00441-016-2464-0; Сабирзянова А.А., Галявич А.С., Балеева Л.В. и др. Прогностическое значение фактора дифференцировки роста-15 у пациентов с инфарктом миокарда. Российский кардиологический журнал 2021;26(2):4288. DOI:10.18087/cardio.2023.2.n2152; Кукес В.Г., Газданова А.А., Фуралев В.А. и др. Современное представление о биологической роли и клиническом значении миостатина – главного регулятора роста и дифференцировки мышц. Медицинский вестник Северного Кавказа 2021;16(3):327–32.; Гервальд В.Я., Привалихина А.В., Спицын П.С. и др. Болезнь Пейрони как фактор эректильной дисфункции. Механизмы фиброза. Современные проблемы науки и образования 2017;4. URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=26654; Willscher M.K., Cwazka W.F., Novicki D.E. The association of histocompatibility antigens of the B7 cross-reacting group with Peyronie’s disease. J Urol 1979;122(1):34–5. DOI:10.1016/s0022-5347(17)56238-2; Ralph D.J., Schwartz G., Moore W. et al. The genetic and bacteriological aspects of Peyronie’s disease. J Urol 1997;157(1):291–4. DOI:10.1016/S0022-5347(01)65362-X; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/691
-
7Academic Journal
Πηγή: Генетика. 2019. Т. 55, № 2. С. 199-206
Θεματικοί όροι: главный комплекс гистосовместимости, 0301 basic medicine, 0303 health sciences, 03 medical and health sciences, сайгаки, ген DRB3, аллельный полиморфизм генов
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Σύνδεσμος πρόσβασης: http://vital.lib.tsu.ru/vital/access/manager/Repository/vtls:000661301
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: N. A. Shilova, I. N. Fetisova, S. S. Mezhinskiy, T. V. Chasha, I. A. Panova, L. V. Kulida, S. Yu. Ratnikova, Н. А. Шилова, И. Н. Фетисова, С. С. Межинский, Т. В. Чаша, И. А. Панова, Л. В. Кулида, С. Ю. Ратникова
Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 65, № 5 (2020); 47-53 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 65, № 5 (2020); 47-53 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2020-65-5
Θεματικοί όροι: главный комплекс гистосовместимости, congenital pneumonia, risk factors, genetic factors, gene polymorphism, detoxification genes, major histocompatibility complex, врожденная пневмония, факторы риска, генетические факторы, полиморфизм генов, гены детоксикации
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1236/981; Савельева Г.М., Шалина Р.И., Плеханова Е.Р., Клименко П.А., Сичинава Л.Г., Выхристюк Ю.В. и др. Современные проблемы преждевременных родов. Российский вестник акушера-гинеколога 2010; 10(3): 52—59.; Доброхотова Ю.Э., Керчелаева С.Б., Кузнецова О.В., Бурденко М.В. Преждевременные роды: анализ перинатальных исходов. РМЖ 2015; 12: 1220-1223.; Акушерство. Национальное руководство. Под ред. Г.М. Савельевой, Г.Т. Сухих, В.Н. Серова, В.Е. Радзинского. 2-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2018; 1088.; Белоусова В.С., Стрижаков А.Н., Свитич О.А., Тимохина Е.В., Кукина П.И., Богомазова И.М., Пицхелаури Е.Г. Преждевременные роды: причины, патогенез, тактика. Акушерство и гинекология 2020; 2: 82—87.; Torchin Н, Ancel P.-Y. Epidemiologie et facteurs de risque de la prematurite. J Gynecol Obstet Biol Reprod 2016; 45(10): 1213-1230. DOI:10.1016/j.jgyn.2016.09.013; Газазян М.Г., Стребкова Е.Д. Факторы риска реализации внутриутробной инфекции у новорожденного. Здоровье и образование в XXI веке 2016; 18(12): 83-86.; Ткаченко А.К., Марочкина Е.М., Романова О.Н. К понятию «Внутриутробное инфицирование и внутриутробная инфекция». Журнал Гродненского государственного медицинского университета 2017; 1: 103-109.; Кузьмин В.Н., Адамян Л.В. Проблема внутриутробной инфекции в современном акушерстве. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение 2017; 3: 32-36.; Ломова Н.А., Ганичкина М.Б., Хачатурян А.А., Мантрова Д.А., Кан Н.Е., Донников А.Е., Тютюнник В.Л. Молекулярно-генетические предикторы врожденной инфекции при задержке роста плода. Медицинский совет 2016; 17: 156-159.; Ионов О.В., Донников А.Е., Безлепкина М.Б., Никитина И.В., Балашова Е.Н., Киртбая А.Р. и др. Влияние полиморфизма генов NOS3, AGTR1, TLR9, DRD4 на тяжесть течения врожденной пневмонии у новоро-жденныхдетей.Акушерствоигинекология2019;5:102-111.; Никитина И.В., Донников А.Е., Крог-Йенсен О.А., Ленюш-кина А.А., Быстрицкий А.А., Крючко Д.С. и др. Генетические полиморфизмы у детей, ассоциированные с развитием врожденных инфекций. Акушерство и гинекология 2019; 11: 175-185.; Хамидуллина Л.И., Данилко К.В., Викторова Т.В., Файзуллина Р.М., Викторов В.В. Генетические маркеры предрасположенности к развитию дыхательных нарушений у новорожденных. Вопросы диагностики в педиатрии 2012; 5: 26-30.; Karody V., Reese S., Kumar N., Liedel J., Jarzembowski J., Sampath V. A toll-like receptor 9 (rs352140) variant is associated with placental inflammation in newborn infants. J Fetal Neonatal Med 2016; 29(13): 2210-2216. DOI:10.3109/14767058.2015.1081590; Danilko K.V., Bogdanova R.Z., Fatykhova A.I., Kuvatova D.N., Iskhakova G.M., Viktorova T.V. Cytokine gene polymorphism in children with respiratory disorders. Modern problems of science and education 2015; 6. https://science-education.ru/en/article/view?id=22928.; Межинский С.С., Шилова Н.А., Чаша Т.В., Фетисова И.Н., Харламова Н.В., Ратникова С.Ю. и др. Полиморфизм генов системы детоксикации у глубоконедоношенных новорожденных с бронхолегочной дисплазией. Клиническая лабораторная диагностика 2018; 63(10): 658-650.; Сальникова Л.Е., Смелая Т.В., Мороз В.В., Голубев А.М., Понасенков Н.Х., Хоменко Р.В. и др. Гены детоксикации ксенобиотиков и их роль в развитии пневмонии. Общая реаниматология 2008; 4: 6-15.; Фетисова И.Н., Чаша Т.В., Межинский С.С., Ратникова С.Ю., Фетисов Н.С. Полиморфизм генов системы HLA II класса у недоношенных новорожденных с бронхолегочной дисплазией. Вестник Ивановской медицинской академии 2017; 22(3): 13-18.; Ведение новорожденных с респираторным дистресс-синдромом. Клинические рекомендации. Под ред. Н.Н. Володина. М., 2016; 48.; Антонов А.Г., Байбарина Е.Н., Балашова Е.Н., Дегтярев Д.Н., Зубков В.В., Иванов Д.О. и др. Врожденная пневмония (клинические рекомендации). Неонато-логия: новости, мнения, обучение 2017; 4: 133-148.; Хаитов Р.М., Алексеев Л.П., Болдырева М.Н., Сароянц Л.В. Полиморфизм генов иммунного ответа и его роль в противоинфекционной защите. Иммунология 2013; 3: 132-140.
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: H. A. Yatskiu, M. V. Zlotnikova, A. V. Sukalo, R. I. Goncharova, А. А. Яцкив, М. В. Злотникова, А. В. Сукало, Р. И. Гончарова
Συνεισφορές: The study was performed within the framework of task 6.4 С-G Scientific and Technical Program of the Union State “DNA identification”., Работа выполнена в рамках задания 6.4 С-Г НТП Союзного государства «ДНК-идентификация».
Πηγή: Doklady of the National Academy of Sciences of Belarus; Том 64, № 2 (2020); 209-216 ; Доклады Национальной академии наук Беларуси; Том 64, № 2 (2020); 209-216 ; 2524-2431 ; 1561-8323 ; 10.29235/1561-8323-2020-64-2
Θεματικοί όροι: генетический полиморфизм, Major Histocompatibility Complex, genetic polymorphism, главный комплекс гистосовместимости
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/872/869; International League of Associations for Rheumatology classification of juvenile idiopathic arthritis: second revision, Edmonton, 2001 / R. E. Petty [et al.] // J. Rheumatol. – 2004. – Vol. 31, N 2. – P. 390–392.; The HLA genomic loci map: expression, interaction, diversity and disease / T. Shiina [et al.] // J. Hum. Genet. – 2009. – Vol. 54. – P. 15–39.; The MHC locus and genetic susceptibility to autoimmune and infectious diseases / V. Matzaraki [et al.] // Genome Biology. – 2017. – Vol. 18, N 1. – Art. 76. https://doi.org/10.1186/s13059-017-1207-1; Dense genotyping of immune-related disease regions identifies 14 new sus-ceptibility loci for juvenile idiopathic arthritis / A. Hinks [et al.] // Nat. Genet. – 2013. – Vol. 45, N 6. – P. 664–669. https://doi.org/10.1038/ng.2614; HLA [Electronic Resource] // SNPedia. – Mode of access: https://www.snpedia.com/index.php/HLA. – Date of access: 03.02.2020.; Allele Frequency Net Database [Electronic Resource]. – Mode of access: http://www.allelefrequencies.net/default.asp. – Date of access: 03.02.2020.; Частота HLA-DRB1 аллелей и генотипов у пациентов с АЦЦП-позитивным вариантом ревматоидного артрита и их родственников 1-й и 2-й степеней родства / Е. А. Аксенова [и др.] // Молекулярная и прикладная генетика. – Минск, 2016. – Т. 20. – С. 55–60.; Fine-mapping the MHC locus in juvenile idiopathic arthritis (JIA) reveals genetic heterogeneity corresponding to distinct adult inflammatory arthritic diseases / A. Hinks [et al.] // Ann. Rheum. Dis. – 2017. – Vol. 76, N 4. – P. 765–772. https://doi.org/10.1136/annrheumdis-2016-210025; Juvenile idiopathic arthritis and HLA class I and class II interactions and age-at-onset effects / J. A. Hollenbach [et al.] // Arthritis Rheum. – 2010. – Vol. 62, N 6. – P. 1781–1791. https://doi.org/10.1002/art.27424; HLA associations in a cohort of children with juvenile idiopathic arthritis with and without uveitis / S. T. Angeles-Han [et al.] // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2015. – Vol. 56, N 10. – P. 6043–6048. https://doi.org/10.1167/iovs.15-17168; Салугина, С. О. Функциональный статус и качество жизни взрослых больных ювенильным артритом при длительном течении заболевания / С. О. Салугина // Современная ревматология. – 2011. – Т. 5, № 1. – С. 33–39.; Prahalad, S. A comprehensive review of the genetics of juvenile idiopathic arthritis / S. Prahalad, D. N. Glass // Pediatr. Rheumatol. – 2008. – Vol. 6, N 1. – Art. 11. https://doi.org/10.1186/1546-0096-6-11; Age-specific effects of juvenile rheumatoid arthritis–associated HLA alleles / K. J. Murray [et al.] // Arthritis & Rheumatism. – 1999. – Vol. 42, N 9. – P. 1843–1853. https://doi.org/10.1002/1529-0131(199909)42:9%3C1843::aid-anr8%3E3.0.co;2-m; Juvenile idiopathic arthritis classified by the ILAR criteria: HLA associations in UK patients / W. Thomson [et al.] // Rheumatology. – 2002. – Vol. 41, N 10. – P. 1183–1189. https://doi.org/10.1093/rheumatology/41.10.1183; Predisposing and protective HLA-DR and -DQ alleles for rheumatoid arthritis in South African mixed-ancestry and Xhosa populations: research letter / J. Rousseau [et al.] // South African Journal of Science. – 2003. – Vol. 99, N 1. – Р. 89–91.; Simplifying genetic locus assignment of HLA-DRB genes / G. Andersson [et al.] // Immunology Today. – 1994. – Vol. 15, N 2. – P. 58–62. https://doi.org/10.1016/0167-5699(94)90134-1; https://doklady.belnauka.by/jour/article/view/872
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Kazanskiy D.B., Silaeva Y.Y., Kalinina A.A., Zamkova M.A., Khromykh L.M., Persiyantseva N.A., Dzholokhava L.K.
Πηγή: Advances in Molecular Oncology; Vol 3, No 1 (2016); 14-27 ; Успехи молекулярной онкологии; Vol 3, No 1 (2016); 14-27 ; 2413-3787 ; 2313-805X
Θεματικοί όροι: transplantation, antitumor immunity, major histocompatibility complex, T-cell receptor, immunological memory, cloning, allelic exclusion, immunological surveillance, трансплантация, противоопухолевый иммунитет, главный комплекс гистосовместимости, Т-клеточный рецептор, иммунологическая память, клонирование, аллельное исключение, иммунологический надзор
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/51/52; https://umo.abvpress.ru/jour/article/view/51
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: A. S. Berkos, G. V. Nikolaev, А. С. Беркос, Г. В. Николаев
Πηγή: Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs; Том 17, № 4 (2015); 104-117 ; Вестник трансплантологии и искусственных органов; Том 17, № 4 (2015); 104-117 ; 1995-1191 ; 10.15825/1995-1191-2015-4
Θεματικοί όροι: Т-клеточный рецептор, allorecognition, major histocompatibility complex, antigen presenting cells, T-cell receptor, аллораспознавание, главный комплекс гистосовместимости, антигенпрезентирующие клетки
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/597/513; Afzali B, Lombardi G and Lechler R. Pathways of major histocompatibility complex allorecognition. Curr Opin Organ Transplant. 2008; 13 (4): 1–12.; D’Orsogna LJ, Roelen DL, Doxiadis IIN and Claas FHG. TCR cross-reactivity and allorecognition: new insights into the immunogenetics of allorecognition. Immunogenetics. 2012; 64: 77–85.; Heeger PS. T-Cell Allorecognition and Transplant Rejection: A Summary and Update. American Journal of Transplantation. 2003; 3: 525–533.; Bracamonte-Baran W, Burlingham W. Non-inherited Maternal Antigens, Pregnancy and Allotolerance. Biomed J. 2015; 38 (1): 39–51.; Zinkernagel RM, Doherty PC. Immunological surveillance against alteredself components by sensitized T-lymphocytes in lymphocytic choriomeningitis. Nature. 1974; 251: 547–548.; Marsh SGE, Albert ED, Bodmer WF et al. Nomenclature for factors of the HLA system. Tissue Antigens. 2010; 75: 291–455.; Шевченко ОП, Орлова ОВ, Халилулин ТА. Иммуносупрессия, иммунная толерантность и костимуляция Т-лимфоцитов. Иммуносупрессия при трансплантации солидных органов / Под ред. С.В. Готье. М.–Тверь: Триада, 2008: 472. Shevchenko OP, Orlova OV, Halilulin TA. Immunosupressija, immunnaja tolerantnost' i kostimuljacija T-limfocitov. Immunosupressija pri transplantacii solidnyh organov / Pod red. S.V. Got'e. M.–Tver': Triada, 2008: 472.; Рабсон А, Ройт А, Делвз П. Основы медицинской иммунологии. М.: Мир, 2006. Rabson A, Roitt A, Delvz P. Osnovi medizinskoy immunologii. M.: Mir, 2006.; Rolls HK, Kishimoto K, Dong VM et al. T-cell response to cardiac myosin persists in the absence of an alloimmune response in recipients with chronic cardiac allograft rejection. Transplantation. 2002; 74 (7): 1053–1057.; Sivaganesh S, Harper SJ, Conlon TM et al. Co-presentation of intact and processed MHC alloantigen by recipient dendritic cells enables delivery of linked help to alloreactive CD8 T-cells by indirect-pathway CD4 T-cells. J. Immunol. 2013; 190 (11): 5829–5838.; Benichou G, Yamada Y, Yun S et al. Immune recognition and rejection of allogeneic skin grafts. Immunotherapy. 2011; 3 (6): 757–770.; Gould DS, Auchincloss HJr. Direct and indirect recognition: the role of MHC antigens in graft rejection. Immunol. Today. 1999; 20 (2): 77–82.; Ingulli E. Mechanism of cellular rejection in transplantation. Pediatr. Nephrol. 2010; 25: 61–74.; Starr TK, Jameson SC, Hogquist KA. Positive and negative selection of T-cells. Annu. Rev. Immunol. 2003; 21: 139–176.; Ross JO, Melichar HJ, Au-Yeung BB et al. Distinct phases in the positive selection of CD8 T cells distinguished by intrathymic migration and T-cell receptor signaling patterns. PNAS. 2014; 2550–2558.; Reiser JB, Darnault C, Gregoire C et al. CDR3 loop flexibility contributes to the degeneracy of TCR recognition. Nat. Immunol. 2003; 4 (3): 241.; Salomon B, Bluestone JA. Complexities of CD28/B7: CTLA-4 costimulatory pathways in autoimmunity and transplantation. Annu. Rev. Immunol. 2001; 19: 225–252.; Lee KH, Holdorf AD, Dustin ML et al. T-cell receptor signaling precedes immunological synapse formation. Science. 2002; 295: 1539–1542.; Lopez-Neblina F, Toledo AH, Toledo-Pereyra LH. Molecular biology of apoptosis in ischemia and reperfusion. J. Invest. Surg. 2005; 18: 335–350.; Warger T, Hilf N, Rechtsteiner G et al. Interaction of TLR2 and TLR4 ligands with the N-terminal domain of Gp96 amplifies innate and adaptive immune responses. J. Biol. Chem. 2006; 281: 22 545–22 553.; Piotti G, Palmisano A, Maggiore U et al. Vascular endothelium as a target of immune response in renal transplant rejection. Frontiers in immunology. 2014; 505 (5): 1–9.; Lee RS, Grusby MJ, Glimcher LH et al. Indirect recognition by helper cells can induce donor-specific cytotoxic T-lymphocytes in vivo. J. Exp. Med. 1994; 179 (3): 865–872.; Schoenberger SP, Toes RE, van der Voort EI et al. T-cell help for cytotoxic T-lymphocytes is mediated by CD40–CD40L interactions. Nature. 1998; 393 (6684): 480–483.; Bharat A and Mohanakumar T. Allopeptides and the Alloimmune Response. Cell Immunol. 2007; 248 (1): 31–43.; Jiang S, Herrera O, Lechler RI. New spectrum of allorecognition pathways: implications for graft rejection and transplantation tolerance. Curr. Opin. Immunol. 2004; 16: 550–557.; Benichou G, Fedoseyeva E, Lehmann PV et al. Limited T-cell response to donor MHC peptides during allograft rejection. Implications for selective immune therapy in transplantation. J. Immunol. 1994; 153 (3): 938–945.; Demaria S, Bushkin Y. Soluble HLA proteins with bound peptides are released from the cell surface by the membrane metalloproteinase. Hum. Immunol. 2000: 61 (12): 1332–1338.; Denton MD, Geehan CS, Alexander SI et al. Endothelial cells modify the costimulatory capacity of transmigrating leukocytes and promote CD28-mediated CD4 (+) Tcell alloactivation. J. Exp. Med. 1999; 190 (4): 555–566.; Rogers NJ and Lechler RI. Allorecognition. American Journal of Transplantation. 2001; 1: 97–102.; Albert ML, Sauter B, Bhardwaj N. Dendritic cells acquire antigen from apoptotic cells and induce class Irestricted CTLs. Nature. 1998; 392: 86–89.; Taylor AL, Negus SL, Negus M et al. Pathways of helper CD4 T-cell allorecognition in generating alloantibody and CD8 T-cell alloimmunity. Transplantation. 2007; 83: 931–937.; Arakelov A, Lakkis FG. The alloimmune response and effector mechanisms of allograft rejection. Semin Nephrol. 2000; 20: 95–102.; Benichou G, Tam RC, Soares LR et al. Indirect T-cell allorecognition: perspectives for peptide-based therapy in transplantation. Immunol. Today. 1997; 18 (2): 67–71.; Rechavi O, Goldstein I, Kloog Y. Intercellular exchange of proteins: The immune cell habit of sharing. FEBS Letters. 2009; 583: 1792–1799.; Smyth LA, Afzali B, Tsang J et al. Intercellular Transfer of MHC and Immunological Molecules: Molecular Mechanisms and Biological Significance. Am. J. Transplant. 2007; 7 (6): 1–14.; Hudson L, Sprent J, Miller JF et al. B cell-derived immunoglobulin on activated mouse T-lymphocyte. Nature. 1974; 251: 60–62.; Merkenschlager M. Tracing interactions of thymocytes with individual stromal cell partners. Eur. J. Immunol. 1996; 26: 892–896.; Herrera OB, Golshayan D, Tibbott R et al. A novel pathway of alloantigen presentation by dendritic cells. J. Immunol. 2004; 173: 4828–4837.; Smyth LA, Herrera OB, Golshayan D et al. A novel pathway of antigen presentation by dendritic and endothelial cells: implications for allorecognition and infectious diseases. Transplantation. 2006; 82: S15–S18.; Game DS, Rogers NJ, Lechler RI. Acquisition of HLADR and costimulatory molecules by T-cells from allogeneic antigen presenting cells. Am. J. Transplant. 2005; 5: 1614–1625.; Morelli AE, Larregina AT, Shufesky WJ et al. Endocytosis, intracellular sorting, and processing of exosomes by dendritic cells. Blood. 2004; 104: 3257–3266.; de Candia P, Torri A, Pagani M et al. Serum microRNAs as biomarkers of human lymphocyte activation in health and disease. Front Immunol. 2014; 5: 43.; Raposo G, Stoorvogel W. Extracellular vesicles: Exosomes, microvesicles and friends. J. Cell Biol. 2013; 200: 373-83.; Fevrier B and Raposo G. Exosomes: endosomal-derived vesicles shipping extracellular messages. Curr. Opin. Cell Biol. 2004; 16: 415–442.; Delamarre L, Pack M, Chang H et al. Differential lysosomal proteolysis in antigen-presenting cells determines antigen fate. Science. 2005; 307: 1630–1634.; Montecalvo A, Larregina AT, Morelli AE. Methods of analysis of dendritic cell-derived exosomes-shuttle micro RNA and its horizontal propagation between dendritic cells. Methods Mol. Biol. 2013; 1024: 19–40.; https://journal.transpl.ru/vtio/article/view/597
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: КАЗАНСКИЙ Д.Б., СИЛАЕВА Ю.Ю., КАЛИНИНА А.А., ЗАМКОВА М.А., ХРОМЫХ Л.М., ПЕРСИЯНЦЕВА Н.А., ДЖОЛОХАВА Л.Х.
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Mikhail Ivanovich Balabolkin, Ivan Ivanovich Dedov
Πηγή: Сахарный диабет, Vol 3, Iss 1, Pp 2-10 (2000)
Θεματικοί όροι: главный комплекс гистосовместимости, 03 medical and health sciences, сахарный диабет, RC620-627, 0302 clinical medicine, лептин, предрасположенность к сахарному диабету, фно-альфа, ожирение, инсулинорезистентность, Nutritional diseases. Deficiency diseases
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: ЦВЕТКОВ ВАЛЕРИЙ ВЛАДИМИРОВИЧ, КИСЕЛЕВ ОЛЕГ ИВАНОВИЧ, СОЛОГУБ ТАМАРА ВАСИЛЬЕВНА, СЛИТА АЛЕКСАНДР ВАЛЕНТИНОВИЧ, ТОКИН ИВАН ИВАНОВИЧ, АНХИМОВА ЕЛЕНА СТЕПАНОВНА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: Dmitrieva N.G., Jakovchik O.N., Vatazin A.V., Zul’karnaev A.B., Fedulkina V.A.
Πηγή: Almanac of Clinical Medicine; No 31 (2014); 83-87 ; Альманах клинической медицины; No 31 (2014); 83-87 ; 2587-9294 ; 2072-0505 ; 10.18786/2072-0505-2014-31
Θεματικοί όροι: major histocompatibility complex, human leukocyte antigens, proteins, genes, renal transplantation, главный комплекс гистосовместимости, лейкоцитарные антигены человека, белки, гены, трансплантация почки
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://almclinmed.ru/jour/article/view/117/118; https://almclinmed.ru/jour/article/view/117
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: ЗАХАРОВА ИРИНА НИКОЛАЕВНА, БОРОВИК ТАТЬЯНА ЭДУАРДОВНА, РОСЛАВЦЕВА ЕЛЕНА АЛЕКСАНДРОВНА, КАСАТКИНА ЕЛЕНА НИКОЛАЕВНА, ДМИТРИЕВА ЮЛИЯ АНДРЕЕВНА
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: Дмитриева, Надежда, Яковчик, Ольга, Ватазин, Андрей, Зулькарнаев, Алексей, Федулкина, Вероника
Θεματικοί όροι: ГЛАВНЫЙ КОМПЛЕКС ГИСТОСОВМЕСТИМОСТИ, ЛЕЙКОЦИТАРНЫЕ АНТИГЕНЫ ЧЕЛОВЕКА, БЕЛКИ, ГЕНЫ, ТРАНСПЛАНТАЦИЯ ПОЧКИ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Соловьева, Анна
Θεματικοί όροι: ИММУНОГЕНЕТИКА, ГЛАВНЫЙ КОМПЛЕКС ГИСТОСОВМЕСТИМОСТИ, НLА-СИСТЕМА, ИММУННЫЙ ОТВЕТ, ПОЛИМОРФИЗМ, НLА SYSTEM
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
19Academic Journal
Πηγή: Успехи молекулярной онкологии.
Θεματικοί όροι: ТРАНСПЛАНТАЦИЯ,ПРОТИВООПУХОЛЕВЫЙ ИММУНИТЕТ,ГЛАВНЫЙ КОМПЛЕКС ГИСТОСОВМЕСТИМОСТИ,Т-КЛЕТОЧНЫЙ РЕЦЕПТОР,ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ ПАМЯТЬ,КЛОНИРОВАНИЕ,АЛЛЕЛЬНОЕ ИСКЛЮЧЕНИЕ,ИММУНОЛОГИЧЕСКИЙ НАДЗОР, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
20Academic Journal
Συγγραφείς: Vatazin A.V., Zulkarnayev A.B., Dmitrieva N.G., Jakovchik O.N., Fedulkina V.A.
Πηγή: Almanac of Clinical Medicine; No 29 (2013); 79-83 ; Альманах клинической медицины; No 29 (2013); 79-83 ; 2587-9294 ; 2072-0505 ; 10.18786/2072-0505-2013-29
Θεματικοί όροι: major histocompatibility complex, human leukocyte antigens, rejection, antibodies, renal transplantation, главный комплекс гистосовместимости, лейкоцитарные антигены человека, отторжение, антитела, трансплантация почки
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
