Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 27 για την αναζήτηση '"гематологические и биохимические показатели крови"', χρόνος αναζήτησης: 1,37δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
    Academic Journal

    Πηγή: Medicine in Kuzbass; Том 23, № 1 (2024): март; 28-34 ; Медицина в Кузбассе; Том 23, № 1 (2024): март; 28-34 ; 2588-0411 ; 1819-0901

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf; text/html

  5. 5
  6. 6
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was carried out within the framework of and with the financial support of the Russian Science Foundation grant № 23‐26‐00151 "Development and implementation of a high‐precision method for intravital assessment of genotoxic effects in aquaculture objects for the timely correction of their physiological state based on the use of a micronucleus test and a DNA comet test", https ://rscf.ru/project/23‐26‐00151/., Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 23‐26‐00151 «Разработка и внедрение высокоточного метода прижизненной оценки генотоксических эффектов у объектов аквакультуры для своевременной коррекции их физиологического состояния на основе применения микроядерного теста и теста ДНК‐комет», https://rscf.ru/project/23‐26‐00151/.

    Πηγή: South of Russia: ecology, development; Том 19, № 2 (2024); 69-81 ; Юг России: экология, развитие; Том 19, № 2 (2024); 69-81 ; 2413-0958 ; 1992-1098

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3151/1422; Васильева Л.М. Состояние осетроводства Нижнего Поволжья // Материалы Международного научного форума «Каспий XXI века: пути устойчивого развития», Астрахань, 19–20 февраля, 2020. Астрахань: Изд-во «Астраханский университет», 2020. С. 185–188.; Загрязняющие вещества в водах Волжско-Каспийского бассейна / Отв. ред. Бреховских В.Ф., Островская Е.В. Астрахань: Издатель Сорокин Р.В., 2017. 406 с.; Петреченкова В.Г., Радованова И.Г. Загрязнение устьевой области р. Волги // Водные ресурсы. 2020. T. 47. N 2. С. 208–217. https://doi.org/10.31857/S0321059620020121; Li Y., Qu M., Sun L., Wu Y., Chen Y., Chen H., Kong Z., Liu Z. Genotoxicity study of phenol and o-cresol using the micronucleus test and the comet assay // Toxicological & environmental chemistry. 2005. V. 87. N 3. P. 365–372. https://doi.org/10.1080/02772240500043264; Vanzella T., Reis Martinez C., Colus I. Genotoxic and mutagenic effects of diesel oil water soluble fraction on a neotropical fish species // Mutation research. 2007. V. 631. N 1. P. 36–43. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2007.04.004; Hussain B., Sultana T., Sultana S., Masoud M., Ahmed Z., Mahboob S. Fish eco-genotoxicology: Comet and micronucleus assay in fish erythrocytes as in situ biomarker of freshwater pollution // Saudi journal of biological sciences. 2018. V. 25. N 2. P. 393–398. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2017.11.048; Bohne J., Catomen T. Genotoxicity in gene therapy: A report on vector integration and designer nucleases // Current opinion in molecular therapeutics. 2008. V. 10. N 3. P. 214–223.; Ревазова Ю.А., Илюшина Н.А. К вопросу о негенотоксических канцерогенах // Токсикологический вестник. 2021. Т. 29. N 4. С. 51–55. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2021-29-4-51-55; Kienzler A., Bony S., Devaux A. DNA repair activity in fish and interest in ecotoxicology. A review // Aquatic toxicology. 2013. V. 134–135. P. 47–56. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2013.03.005; Hoeijmakers J. DNA repair mechanisms // Maturitas. 2001. V. 38. N 1. P. 17–23. https://doi.org/10.1016/s0378-5122(00)00188-2; Крысанов Е.Ю., Орджоникидзе К.Г., Симановский С.А. Цитогенетические индикаторы при оценке состояния окружающей среды // Онтогенез. Т. 49. N 1. 2018. С. 41–46. https://doi.org/10.7868/S0475145018010056; Frenzilli G., Nigro M., Lyons B. The Comet assay for the evaluation of genotoxic impact in aquatic environments // Mutation research. 2008. V. 681. P. 80–92. DOI:10.1016/j.mrrev.2008.03.001; Bolognesi C., Hayashi M. Micronucleus assay in aquatic animals // Mutagenesis. 2011. V. 26. P. 205–213. https://doi.org/10.1093/mutage/geq073; Vasquez M. Combining the in vivo comet and micronucleus assays: a practical approach to genotoxicity testing and data interpretation // Mutagenesis. 2010. V. 25. N 2. P. 187–199. https://doi.org/10.1093/mutage/gep060; Gazo I., Franěk R., Šindelka R., Lebeda I., Shivaramu S., Pšenička M., Steinbach C. Аncient sturgeons possess effective dna repair mechanisms: influence of model genotoxicants on embryo development of sterlet, Acipenser ruthenus // International journal of molecular sciences. 2021. V. 22. N 1. P. 1–6. https://doi.org/10.3390/ijms22010006; Singh N., McCoy M., Tice R., Schneider E. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells // Experimental cell research. 1988. V. 175. N 1. P. 184–191. https://doi.org/10.1016/0014-4827(88)90265-0; Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб (сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб). М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1983. 184 с.; Оценка генотоксических свойств методом ДНК-комет in vitro: Методические рекомендации. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011. 16 с.; Olive P., Banáth J. The comet assay: a method to measure DNA damage in individual cells // Nature protocols. 2006. V. 1. N 1. P. 23–29. https://doi.org/10.1038/nprot.2006.5; Житенева Л.Д. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов-на-Дону: Ростовское книжное издательство, 1989. 109 с.; Schmidt W. The micronucleus test // Mutation Research/Environmental Mutagenesis and Related Subjects. 1975. V. 31. N 1. P. 9–15. https://doi.org/10.1016/0165-1161(75)90058-8; Mersh J., Beauvais M.N., Nagel P. Induction of micronuclei in haemocytes and gill cells of zebra mussels, Dreissena polymorpha, exposed to clastogens // Mutation Research. 1996. V. 371. P. 47–55. https://doi.org/10.1016/s0165-1218(96)90093-2; Крюков В.И. Анализ микроядер и ядерных аномалий в эритроцитах рыб, амфибий, рептилий и птиц: критерии выявления и типирования. Научно-методическое пособие. Красноярск: Научно-инновационный центр, 2023. 94 с. https://doi.org/10.58351/230110.2023.91.54.003; Bytyutskyy D., Kholodnyy V., Flajšhans M. 3-D structure, volume, and DNA content of erythrocyte nuclei of polyploid fish // Cell Biology International. 2014. V. 38. N 6. P. 708–715. https://doi.org/10.1002/cbin.10247; Лепилина И.Н., Романов А.А., Федорова Н.Н. Некоторые гематологические показатели стерляди в речной и морской периоды жизни // Вестник Астраханского государственного технического университета. 2006. N 3. С. 145–150.; Лепилина И.Н. Морфологический состав периферической крови предличинок осетровых // Вестник Оренбургского государственного университета. 2006. N 4(54). С. 101–105.; Серпунин Г.Г., Сементина Е.В., Савина Л.В. Характеристика крови стерляди разного возраста, выращиваемой в установке замкнутого водоснабжения // Осетровое хозяйство. 2009. N 3. С. 46–51.; Flajšhans M., Psenicka M., Rodina M., Tesitel J. Image cytometric measurements of diploid, triploid and tetraploid fish erythrocytes in blood smears reflect the true dimensions of live cells // Cell Biol. Intern. 2011. V. 35. P. 67–71. https://doi.org/10.1042/CBI20100198; Ballarin L., Dall'oro M., Bertotto D., Libertini A., Francescon A., Barbaro A. Haematological parameters in Umbrina cirrosa (Teleostei, Sciaenidae): a comparison between diploid and triploid specimens // Comp. Biochem. Physiol. A. 2004. V. 138. P. 45–51. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2004.02.019; Bickham J.W., Rowe G.T., Palatnikov G., Mekhtiev A., Mekhtiev M., Kasimov R.Y., Hauschultz D. W., Wickliffe J.K., Rogers W.J. Acute and genotoxic effects of baku harbor sediment on russian sturgeon, acipenser guildensteidti // Bulletin of environmental contamination and toxicology. 1998. V. 61. Р. 512–518. https://doi.org/10.1007/s001289900792; Ильинских Н.Н., Ильинских И.Н., Некрасов В.Н. Использование микроядерного теста в скрининге и мониторинге мутагенов // Цитология и генетика. 1988. Т. 22. N 7. С. 67–72.; Ильинских Н.Н., Новицкий В.В., Ванчугова Н.Н., Ильинских И.Н. Микроядерный анализ и цитогенетическая нестабильность. Томск: Издательство Томского Университета, 1992. 272 с.; Olive P., Banáth J. Induction and rejoining of radiationinduced DNA single-strand breaks: «tail moment» as a function of position in the cell cycle // Mutation research. 1993. V. 294. N 3. P. 275–283. https://doi.org/10.1016/0921-8777(93)90010-e; Стяжкина Е.В., Обвинцева Н.А., Шапошникова И.А., Тряпицына Г.А., Стукалов П.М., Пряхин Е.А. Оценка уровня повреждения и репарации ядерной ДНК у плотвы (Rutilus rutilus l.) из водоемов с разным уровнем радиоактивного загрязнения // Радиационная биология. Радиоэкология. 2012. Т. 52. N 2. С. 198–206.; Acolas M., Davail B., Gonzalez P., Jean S., Clérandeau C., Morin B., Gourves P., Daffe G., Labadie P., Perrault A., Lauzent M., Pierre M., Le Barh R., Baudrimont M., Peluhet L., Le Menach K., Budzinski H., Rochard E., Cachot J. Health indicators and contaminant levels of a critically endangered species in the Gironde estuary, the sturgeon // Environmental science and pollution research. 2020. V. 27. N 4. P. 3726–3745. https://doi.org/10.1007/s11356-019-05139-5; Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов // Вестник АГТУ. Серия Рыбное хозяйство. 2015. N 4. С. 103–108.; Войкина А.В., Сергеева С.Г., Лисовская В.В., Жарынина И.И. Некоторые биохимические показатели сыворотки крови пиленгаса Planilizahaematocheila (Temminck & Schlegel, 1845) Азовского моря в 2019 // Материалы II Международной научно-практической конференции «Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование», Керчь, 27–30 мая, 2020. Керчь: ООО «Издательство типография «Ариал», 2020. С. 274–278.; Cassel S.E., Yanong R.P.E., Pouder D.B., Rodriguez C., Mylniczenko N., Thompson P.M., Stilwell N.K., Heym K.J., Harmon T., Stacy N.I. Reference intervals for blood analytes of adult aquarium-housed russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii // Journal of aquatic animal health. 2021. V. 33. N 1. P. 33–43. https://doi.org/10.1002/aah.10116; Lall S., Hardy R., Kaushik S. Fish nutrition (fourth edition). Academic Press. 2022. P. 469–554. https://doi.org/10.1016/C2018-0-03211-9; Bavi Z., Zakeri M., Mousavi S., Yavari V. Еffects of dietary taurine on growth, body composition, blood parameters, and enzyme activities of juvenile sterlet (acipenser ruthenus) // Aquaculture nutrition. 2022. V. 2022. Article ID: 1713687. https://doi.org/10.1155/2022/1713687; Xue C., Yu G., Hirata T., Sakaguchi M., Terao J. Antioxidative Activity of Carp Blood Plasma on Lipid Peroxidation // Bioscience, biotechnology, and biochemistry. 1998. V. 62. N 2. P. 201–205. https://doi.org/10.1271/bbb.62.201; Гераскин П.П., Металлов Г.Ф., Аксенов В.П., Дубовская А.В., Файзулина Д.Р., Галактионова М.Л. Использование биологических индикаторов для оценки загрязненности морской среды в районах расположения ликвидированных поисково- разведочных скважин // Защита окружающей среды в нефтегазовом комплексе. 2009. N 9. С. 55–58.; Мирошникова Е.П., Аринжанов А.Е., Килякова Ю.В., Мирошникова М.С., Маленкина К.А., Мирошников И.С. Гематологические параметры молоди стерляди на фоне совместного использования культуры Bacillussubtilis и наночастиц сплава Cu-Zn // Животноводство и кормопроизводство. 2018. N 3. С. 100–109.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3151

  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Πηγή: Russian Journal of Parasitology; № 4 (2015); 95-101 ; Российский паразитологический журнал; № 4 (2015); 95-101 ; 2541-7843 ; 1998-8435

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/201/203; Государственная фармакопея. – Т. Х1, Вып. 2. – М.,1968. – С. 182.; Козлов С. А., Мусаев М. Б., Михайлицин Ф. С. и др. Изучение острой токсичности митранокса. // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2013. – № 3. – С. 47–48.; Козлов С. А., Мусаев М. Б. Антигельминтная эффективность и титрация терапевтических доз отечественного антигельминтика митранокса при мониезиозе и нематодозах овец. // Российский паразитологический журнал. – 2014. – № 2. – С. 87–91.; Козлов С. А., Мусаев М. Б., Михайлицин Ф. С. и др. Экспериментальное изучение кумулятивных свойств нового препарата митранокса. // Мед. паразитол. и паразит. бол. – 2013. – № 3. – С. 53–55.; Козлов С. А., Мусаев М. Б. Оценка раздражающего действия митранокса и надината на слизистую глаз. // Матер. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». – 2014. – Вып. 15. – С.109–110.; Козлов С. А., Мусаев М. Б. Параметры острой накожной токсичности и раздражающего действия митранокса и надината. // Матер. докл. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». – 2014. – Вып. 15. – С. 110–112.; Методические указания по гигиенической оценке новых пестицидов. – Киев, 1988. – С. 32–35.; Дыбан А. П., Баранов В. С., Акимова И. М. // Арх. анатом. гистол. эмбриол. – 1970. – Т. 59, № 10. – С. 89–100.; Правила лабораторной практики в Российской Федерации: Приказ министерства здравоохранения РФ, № 708н от 23.08.2010.; Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / под ред. Р. У. Хабриева. – Москва: Медицина, 2005.; Михайлицын Ф. С., Архипов И. А. и др. Патент №2481327 по заявке № 2011153482/04, 27.12.2011, публикация от 10.05.2013 г., Бюл. №13.; https://vniigis.elpub.ru/jour/article/view/201

  10. 10
    Academic Journal

    Πηγή: Bulletin of NSAU (Novosibirsk State Agrarian University); № 2 (2016); 60-65 ; Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет); № 2 (2016); 60-65 ; 2072-6724

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/328/145; A comparison of the nutritional adequacy of home-prepared and commercial diets for dogs / E. L. Streiff, B. Zwischenberger, R. F. Butterwick [et al.] // J. Nutr. - 2002. - N 132. - P. 1698-1700.; Буров С. В., Левченко Ю. И. Биохимические и морфологические показатели крови служебно-розыскных собак породы немецкая овчарка в условиях высокогорья при использовании высокоэнергетических кормов фирмы «Royal canin» // Вет. патология. - 2012. - № 1 (39). - С. 67-72.; Буров С. В., Гранжан Д., Левченко Ю. И. Состояние сердечно-сосудистой системы и обмен веществ у служебно-розыскных собак породы немецкая овчарка при работе в условиях высокогорья // Вет. патология. - 2012. - № 2 (40). - С. 79-84.; Саlibra - линейка гипоаллергенных сбалансированных кормов суперпремиум класса: проспект компании Novico s. r.o. - Чехия: ООО «Индустрия рекламы», 2011. - 34 с.; Мейер Д., Харви Д. Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпретация и диагностика. - М.: Софион, 2007. - 456 с.; Уиллард М., Тведтен Г., Торнвальд Г. Лабораторная диагностика в клинике мелких домашних животных. - М.: Аквариум, 2004. - 432 с.; Скопичев В. Г. Частная физиология. Ч. 3: Физиология собак и кошек. - М.: Колос, 2008. - 463 с.; Winick N. Malnutrition and brain developmen. - New York: The Nutrition Foundation, 1976. - 142 p.; Коннова Е. В. Как правильно кормить вашу собаку от рождения до старости. - Ростов н/Д: Феникс, 2001. - 160 с.; Пибо П., Бьюрж В., Эллиот Д. Энциклопедия клинического питания собак. - М.: Медиа Лайн, 2007. - 488 с.; https://vestngau.elpub.ru/jour/article/view/328

  11. 11
  12. 12
  13. 13
  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20