Showing 1 - 20 results of 87 for search '"газовая хроматография – масс-спектрометрия"', query time: 0.67s Refine Results
  1. 1
  2. 2
    Academic Journal

    Contributors: The study was supported by Russian Science Foundation grant No. 21‐76‐00040, https://rscf.ru/project/21‐76‐00040/ The authors express their gratitude to the International Tomographic Centre of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences for performing chromatographic profiles using the HPLC‐MS method., Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 21‐76‐00040, https://rscf.ru/project/21‐ 76‐00040/ Авторы выражают благодарность Международному томографическому центру Сибирского Отделения Российской Академии Наук за выполнение хроматографических профилей с применением метода ВЭЖХ‐МС.

    Source: South of Russia: ecology, development; Том 18, № 2 (2023); 70‐81 ; Юг России: экология, развитие; Том 18, № 2 (2023); 70‐81 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2023-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2830/1348; Harwood C.R., Mouillon J.‐M., Pohl S., Arnau J. Secondary metabolite production and the safety of industrially important members of the Bacillus subtilis group // FEMS Microbiology Reviews. 2018. V. 42. P. 721–738. https://doi.org/10.1093/femsre/fuy028; Cидорова Т.М., Асатурова А.М., Хомяк А.И. Биологически активные метаболиты Bacillus subtilis и их роль в контроле фитопагенных микроорганизмов (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53. N 1. С. 29–37. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.1.29rus; Максимов И.И., Сингх Б.П., Черепанова Е.А., Бурханова Г.Ф., Хайруллин Р.М. Перспективы применения бактерий – продуцентов липопептидов для защиты растений (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. Т. 56. N 1. С. 19–34. https://doi.org/10.31857/S0555109920010134; Fira D., Dimkić I., Berić T., Lozo J., Stanković S. Biological control of plant pathogens by Bacillus species // Journal of biotechnology. 2018. Т. 285. P. 44–55. DOI:10.3389/fmicb.2017.00925; Dimkić I., Stanković S., Nišavić M., Petković M., Ristivojević P., Fira D., Berić T. The profile and antimicrobial activity of Bacillus lipopeptide extracts of five potential biocontrol strains // Frontiers in microbiology. 2017. V. 8. P. 92–105. DOI:10.3389/fmicb.2017.00925; Асатурова А.М., Дубяга В.М. Штамм бактерий Bacillus subtilis для получения биопрепарата против фитопатогенных грибов. Пат. 2553518 РФ № RU2013151377/10A заявл. 20.11.2013; опубл. 20.06.2015.; УНУ «Технологическая линия для получения микробиологических средств защиты растений нового поколения». URL: https://ckp‐rf.ru/catalog/usu/671367/ (дата обращения: 15.02.2023); Нетрусов Ф.И. Практикум по микробиологии. М.: Издательский центр «Академия», 2005. 608 с.; Сидорова Т.М., Асатурова А.М., Хомяк А.И., Томашевич Н.С. Выделение и характеристика антигрибных метаболитов штаммов Bacillus subtilis BZR 336g и Bacillus subtilis BZR 517 модифицированным методом биоавтографии // Сельскохозяйственная биология. 2019. Т. 54. С. 178–185. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2019.1.178rus; Hosh A., Cimpoiu C. Evaluation of various biological activities of natural compounds by TLC/HPTLC // Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies. 2020. V. 43. Р. 305–318. https://doi.org/10.1080/10826076.2020.1725548; Yanshole V.V., Yanshole L.V., Snytnikova O.A., Tsentalovich Y.P. Quantitative metabolomic analysis of changes in the lens and aqueous humor under development of age‐related nuclear cataract // Metabolomics. 2019. V. 15. Article number: 29. https://doi.org/10.1007/s11306‐019‐1495‐4; Бережная А.В., Евдокимова О.В., Валентович Л.Н., Сверчкова Н.В., Титок М.А., Коломиец Э.И. Молекулярногенетический и функциональный анализ генома бактерий Bacillus velezensis БИМ в‐439д // Прикладная биохимия и микробиология. 2019. Т. 55. N 4. С. 366–377. https://doi.org/10.1134/S05551099190; Théatre A., Cano‐Prieto C., Bartolini M., Laurin Y., Deleu M., Niehren J., Fida T., Gerbinet S., Alanjary M., Medema M.H., Léonard A., Lins L., Arabolaza A., Gramajo H., Gross H., Jacques P. The surfactin‐like lipopeptides from Bacillus spp.: natural biodiversity and synthetic biology for a broader application range // Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2021. V. 2. N 9. Article number: 623701. DOI:10.3389/fbioe.2021.623701; Goswami M., Deka S. Biosurfactant production by a rhizosphere bacteria Bacillus altitudinis MS16 and its promising emulsification and antifungal activity // Colloids Surf B Biointerfaces. 2019. V. 178. Р. 285–296. DOI:10.1016/j.colsurfb.2019.03.003; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2830

  3. 3
    Academic Journal

    Contributors: The results of the work were obtained using equipment the Сore Shared Research Facilities “Analytical Center” of the Saint Petersburg State Chemical and Pharmaceutical University, with financial support from the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (Agreement No. 075-15-2021-685, dated 26 July 2021 on the provision of the Federal budget grants)., Результаты работы получены с использованием оборудования ЦКП «Аналитический центр ФГБОУ ВО СПХФУ Минздрава России» в рамках соглашения № 075-15-2021-685 от 26 июля 2021 года при финансовой поддержке Минобрнауки России.

    Source: Drug development & registration; Том 12, № 3 (2023); 80-88 ; Разработка и регистрация лекарственных средств; Том 12, № 3 (2023); 80-88 ; 2658-5049 ; 2305-2066

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1545/1153; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/downloadSuppFile/1545/1749; Yaqoob U., Nawchoo I. A. Distribution and taxonomy of Ferula L.: a review. Research & Reviews: Journal of Botany. 2016;5(3):15–23.; Hosseinzadeh N., Shomali T., Hosseinzadeh S., Raouf Fard F., Jalaei J., Fazeli M. Cytotoxic activity of Ferula persica gum essential oil on murine colon carcinoma (CT26) and Vero cell lines. Journal of Essential Oil Research. 2020;32(2):169–177. DOI:10.1080/10412905.2020.1729880.; Грудзинская Л. М., Гемеджиева Н. Г., Нелина Н. В, Каржаубекова Ж. Ж. Аннотированный список лекарственных растений Казахстана. Алматы. 2014. 200 с.; Куприянов А. Н., Хрусталева И. А., Эбель А. Л. Флористические находки в Центральном Казахстане. Систематические заметки по материалам Гербария им. П. Н. Крылова Томского государственного университета. 2015;112:14–21. DOI:10.17223/20764103.112.2.; Сводный аналитический отчет о состоянии и использовании земель республики Казахстан за 2011 год. Комитет по управлению земельными ресурсами. Астана: Агентство РК по управлению земельными ресурсами. 2012. 191 с. Доступно по: https://www.gov.kz/uploads/2022/4/11/b09469de9be9cc54d2cc0e9cc7a77e84_original.7131188.pdf. Ссылка активна на 19.03.2023.; Sonigra P., Meena M. Metabolic Profile, Bioactivities, and Variations in the Chemical Constituents of Essential Oils of the Ferula Genus (Apiaceae). Frontiers in Pharmacology. 2021;11. DOI:10.3389/fphar.2020.608649.; Niazmand R., Razavizadeh B. M. Ferula asafoetida: chemical composition, thermal behavior, antioxidant and antimicrobial activities of leaf and gum hydroalcoholic extracts. Journal of Food Science and Technology. 2021;58(6):2148–2159. DOI:10.1007/s13197-020-04724-8.; Pavela R., Morshedloo M. R., Lupidi G., Carolla G., Barboni L., Quassinti L., Bramucci M., Vitali L. A., Petrelli D., Kavallieratos N. G., Boukouvala M. C., Ntalli N., Kontodimas D. C., Maggi F., Canale A., Benelli G. The volatile oils from the oleo-gum-resins of Ferula assa-foetida and Ferula gummosa: A comprehensive investigation of their insecticidal activity and eco-toxicological effects. Food and Chemical Toxicology. 2020;140:111312. DOI:10.1016/j.fct.2020.111312.; Badar S. N., Iqbal Z., Sajid M. S., Rizwan H. M., Shareef M., Malik M. A., Khan M. N. Comparative anthelmintic efficacy of Arundo donax, Areca catechu, and Ferula assa-foetida against Haemonchus contortus. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. 2021;30(2):e001221. DOI:10.1590/S1984-29612021028.; Amin A., Tuenter E., Cos P., Maes L., Exarchou V., Apers S., Pieters L. Antiprotozoal and Antiglycation Activities of Sesquiterpene Coumarins from Ferula narthex Exudate. Molecules. 2016;21(10):1287. DOI:10.3390/molecules21101287.; Lee C.-L., Chiang L.-C., Cheng L.-H., Liaw C.-C., Abd El-Razek M. H., Chang F.-R., Wu Y.-C. Influenza A (H 1 N 1 ) Antiviral and Cytotoxic Agents from Ferula assa-foetida. Journal of Natural Products. 2009;72(9):1568–1572. DOI:10.1021/np900158f.; Macrì R., Musolino V., Gliozzi M., Carresi C., Maiuolo J., Nucera S., Scicchitano M., Bosco F., Scarano F., Ruga S., Zito M. C., Guarnieri L., Bombardelli E., Mollace V. Ferula L. Plant Extracts and Dose-Dependent Activity of Natural Sesquiterpene Ferutinin: From Antioxidant Potential to Cytotoxic Effects. Molecules. 2020;25(23):5768. DOI:10.3390/molecules25235768.; Li Y.-S., Yang B.-C., Zheng S.-M., Cheng Y.-X., Cui H.-H. Racemic Norlignans as Diastereoisomers from Ferula sinkiangensis Resins with Antitumor and Wound-Healing Promotion Activities. Molecules. 2022;27(12):3907. DOI:10.3390/molecules27123907.; Iranshahi M., Rezaee R., Najaf Najafi M., Haghbin A., Kasaian J. Cytotoxic activity of the genus Ferul (Apiaceae) and its bioactive constituents. Avicenna J. Phytomed. 2018;8(4):296–312. DOI:10.22038/AJP.2018.26953.1963.; Verma S., Khambhala P., Joshi S., Kothari V., Patel T., Seshadri S. Evaluating the role of dithiolane rich fraction of Ferula asafoetida (apiaceae) for its antiproliferative and apoptotic properties: in vitro studies. Experimental Oncology. 2019;41(2):90–94. DOI:10.32471/exp-oncology.2312-8852.vol-41-no-2.12989.; Zhong C., Zhan P., Tian H., Wang P., Lei F. Anti-ulcer activity of the three different extracts of Ferula lehmannii Boiss leaf in rats. Pak J Pharm Sci. 2019;32(6):2625–2632.; Fatehi M., Farifteh F., Fatehi-Hassanabad Z. Antispasmodic and hypotensive effects of Ferula asafoetida gum extract. Journal of Ethnopharmacology. 2004;91(2–3):321–324. DOI:10.1016/j.jep.2004.01.002.; Kiasalari Z., Khalili M., Roghani M., Heidari H., Azizi Y. Antiepileptic and Antioxidant Effect of Hydroalcoholic Extract of Ferula Assa Foetida Gum on Pentylentetrazole-induced Kindling in Male Mice. Basic Clin Neurosci. 2013;4(4):299–306.; Latifi E., Mohammadpour A. A., Fathi H B., Nourani H. Antidiabetic and antihyperlipidemic effects of ethanolic Ferula assafoetida oleo-gum-resin extract in streptozotocin-induced diabetic wistar rats. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2019;110:197–202. DOI:10.1016/j.biopha.2018.10.152.; Bagheri S. M., Dashti-R M. H., Morshedi A. Antinociceptive effect of Ferula assa-foetida oleo-gum-resin in mice. Res Pharm Sci. 2014;9(3):207–212.; Кабланова Д. А., Мирзадинов Р. А., Акымбекова Л. Д. Ферулы (Ferula) Казахстана и их народнохозяйственное значение. Вестник науки и образования.2020;20(98):18–21.; Salehi M., Naghavi M. R., Bahmankar M. A review of Ferula species: biochemical characteristics, pharmaceutical and industrial applications, and suggestions for biotechnologists. Industrial Crops and Products. 2019;139:111511. DOI:10.1016/j.indcrop.2019.111511.; Znati M., Jabrane A., Hajlaoui H., Harzallah-Skhiri F., Bouajila J. Casanova J., Ben Jannet H. Chemical composition and in vitro evaluation of antimicrobial and anti-acetylcholinesterase properties of the flower oil of Ferula lutea. Natural Product Communications. 2012;7(7):1934578X1200700. DOI:10.1177/1934578X1200700738.; Koulaei S. A., Hadjiakhoondi A., Delnavazi M. R., Tofighi Z., Ajani Y., Kiashi F., Yasa N. Chemical composition and biological activity of Ferula aucheri essential oil. Res. J. Pharmacogn. 2020;7(2):21–31. DOI:10.22127/RJP.2020.210354.1537.; Utegenova G. A., Pallister K. B., Kushnarenko S. V., Özek G., Özek T., Abidkulova K. T., Kirpotina L. N., Schepetkin I. A., Quinn M. T., Voyich J. M. Chemical Composition and Antibacterial Activity of Essential Oils from Ferula L. Species against Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus. Molecules. 2018;23(7):1679. DOI:10.3390/molecules23071679.; Zellagui A., Gherraf N., Rhouati S. Chemical composition and antibacterial activity of the essential oils of Ferula vesceritensis Coss et Dur. leaves, endemic in Algeria. Organic and Medicinal Chemistry Letters. 2012;2(1). DOI:10.1186/2191-2858-2-31.; Mohammadhosseini M., Venditti A., Akbarzadeh A. The genus Perovskia Kar.: ethnobotany, chemotaxonomy and phytochemistry: a review. Toxin Reviews. 2021;40(4):484–505. DOI:10.1080/15569543.2019.1691013.; Hassanabadi M., Ebrahimi M., Farajpour M., Dejahang A. Variation in essential oil components among Iranian Ferula assa-foetida L. accessions. Industrial Crops and Products. 2019;140:111598. DOI:10.1016/j.indcrop.2019.111598.; Сурбеева Е. С., Сипкина Н. Ю., Комова С. И., Ефремова У. А., Тернинко И. И. Скрининг липофильных фракций ботанических форм Сельдерея пахучего методом ГХ/МС. Разработка и регистрация лекарственных средств. 2022;11(3):181–194. DOI:10.33380/2305-2066-2022-11-3-181-194.; https://www.pharmjournal.ru/jour/article/view/1545

  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    File Description: application/pdf

    Relation: Изучение и анализ органических кислот травы тонколучника однолетнего / А. Р. Головач, С. В. Ковалев, В. Н. Ковалев // Azerbaijan Pharmaceutical & Pharmacotherapy Journal. – 2022. – № 2. – С. 48–52.; https://repository.pdmu.edu.ua/handle/123456789/21996

  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Contributors: The research was supported by grant of the President of the Russian Federation for state support of young Russian scientists No. MK‐1651.2021.5., Исследования выполнены при поддержке гранта Президента Российской Федерации для государственной поддержки молодых российских ученых – кандидатов наук № МК‐1651.2021.5.

    Source: South of Russia: ecology, development; Том 17, № 4 (2022); 101‐110 ; Юг России: экология, развитие; Том 17, № 4 (2022); 101‐110 ; 2413-0958 ; 1992-1098 ; 10.18470/1992-1098-2022-4

    File Description: application/pdf

    Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2665/1311; Harwood C.R, Mouillon J.-M., Pohl S., Arnau J. Secondary metabolite production and the safety of industrially important members of the Bacillus subtilis group // FEMS Microbiology Reviews. 2018. V. 42. P. 721–738. DOI:10.1093/femsre/fuy028; Cидорова Т.М., Асатурова А.М., Хомяк А.И. Биологически активные метаболиты Bacillus subtilis и их роль в контроле фитопагенных микроорганизмов (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2018. Т. 53. С. 29–37. DOI:10.15389/agrobiology.2018.1.29rus; Максимов И.В., Черепанова Е.А., Бурханова Г.Ф., Хайруллин Р.М., Сингх Б.П. Перспективы применения бактерий – продуцентов липопептидов для защиты растений (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. Т. 56. С. 19–34. DOI:10.31857/S0555109920010134; Fira D., Dimkić I., Berić T., Lozo J., Stanković S. Biological control of plant pathogens by Bacillus species // Journal of biotechnology. 2018. V. 285. P. 44–55. DOI:10.3389/fmicb.2017.00925; Dubey M.K., Meena M., Aamir M., Zehra A., Upadhyay R.S. Regulation and role of metal ions in secondary metabolite production by microorganisms // New and future developments in microbial biotechnology and bioengineering. 2019. P. 259–277. DOI:10.1016/B978-0-444-63504-4.00019-0; de Oliveira Schmidt V.K., de Souza Carvalho J., de Oliveira D., de Andrade C.J. Biosurfactant inducers for enhanced production of surfactin and rhamnolipids: an overview // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2021. V. 37. N 21. P. 27–43. DOI:10.1007/s11274-020-02970-8; Papadimitropoulos, ME.P., Vasilopoulou, C.G., Maga-Nteve, C., Klapa, M.I. Untargeted GC-MS Metabolomics. In: Theodoridis, G., Gika, H., Wilson, I. (eds). Metabolic Profiling. Methods in Molecular Biology. 2018. V. 1738. Humana Press, New York, NY. DOI:10.1007/978-1-4939-7643-0_9; Асатурова А.М., Дубяга В.М. Штамм бактерий Bacillus subtilis для получения биопрепарата против фитопатогенных грибов: пат. 2553518 Рос. Федерация № RU2013151377/10A. Заявл. 20.11.2013; опубл. 20.06.2015.; Asaturova A.M., Gyrnets E.A., Allakhverdian V.V., Astakhov M.M., Saenko K.U. The study of the antifungal activity of the Bacillus subtilis BZR 336g strain under the conditions of periodic cultivation with the addition of citric acid, corn extract and some microelements // XI International Scientific and Practical Conference «Biological Plant Protection is the Basis of Agroecosystems Stabilization». 2020. V. 21. P. 9. DOI:10.1051/bioconf/20202100015; Koek M.M., Jellema R.H., van der Greef J. et al. Quantitative metabolomics based on gas chromatography mass spectrometry: status and perspectives // Metabolomics. 2011. V. 7. P. 307–328. DOI:10.1007/s11306-010-0254-3; Сидорова Т.М., Асатурова А.М., Аллахвердян В.В. Особенности антагонизма бактерий рода Bacillus по отношению к грибам Fusarium при защите от болезни и контаминации микотоксинами // Юг России: экология, развитие. 2021. Т. 16. N 4. С. 86–103. DOI:10.18470/1992-1098-2021-4-86-103; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/2665

  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
    Academic Journal

    Source: Proceedings of the National Academy of Sciences of Belarus, Chemical Series; Том 56, № 2 (2020); 158-165 ; Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия химических наук; Том 56, № 2 (2020); 158-165 ; 2524-2342 ; 1561-8331 ; 10.29235/1561-8331-2020-56-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/579/557; General Principles and Strategies for Salting-Out Informed by the Hofmeister Series / A. M. Hyde [et al.] // Organic Process Research & Development. – 2017. – Vol. 21, № 9. – P. 1355–1370. https://doi.org/10.1021/acs.oprd.7b00197; Применение высаливания для извлечения гидрофильных физиологически активных веществ из водных растворов для их дальнейшего хроматографического определения / С. М. Лещев [и др.] // Аналитика и контроль. – 2019. – Т. 23, № 4. – С. 494–500. http://doi.org/10.15826/analitika.2019.23.4.004; Экстракция органических неэлектролитов н-гексаном из водных растворов гидрофосфата и ацетата калия / С. М. Лещев [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. хiм. навук. – 2019. – Т. 55, № 2. – С. 149–155. https://doi.org/10.29235/1561-8331-2019-55-2-149-155; Лещев, С. М. Константы распределения низших спиртов, ацетона и этилацетата в системах н-гексан–водные растворы неорганических солей и природа эффекта высаливания / С. М. Лещев, М. Ф. Заяц // Журн. физ. химии. – 2012. – Т. 86, № 6. – С. 1072–1076.; Столяров, Е. Е. Определение ряда местных анестетиков в биологических жидкостях при химико-токсикологических исследованиях / Е. Е. Столяров, Ю. И. Карпенко, Т. П. Малкова // Суд.-мед. экспертиза. – 2009. – № 3. – С. 24–27.; Leschev, S. M. Regularities of extraction in systems on the basis of polar organic solvents and use of such systems for separation of important hydrophobic substances // Ion Exchange and Solvent Extraction: A Series of Advances / eds.: Y. Marcus, A. SenGupta. – New York: Marcel Dekker. – 2001. – Vol. 15. – P. 295–330.; Лещев, С. М. Влияние разветвлений углеводородного радикала органических неэлектролитов на их экстракцию из водных растворов / С. М. Лещев, В. М. Онищук // Изв. вузов СССР. Химия и хим. технология. – 1989. – Т. 32, № 1. – С. 62–65.; Лещев, С. М. Возможности применения аддитивных методов расчета для описания и прогнозирования экстракции органических неэлектролитов циклического строения / С. М. Лещев, А. В. Зайдель, С. Ф. Фурс // Вестник БГУ. Сер. 2. Химия. Биология. География. – 2009. – № 2. – С. 20–25.; Лещев, С. М. Природа и количественная оценка эффектов внутримолекулярных взаимодействий в молекулах органических неэлектролитов–производных бензола / С. М. Лещев, А. В. Зайдель, В. С. Кондрев // Вестник БГУ. Сер. 2. Химия. Биология. География. – 2010. – № 2. – С. 22–26.; Лещев, С. М. Границы применимости правила аддитивности инкрементов энергии Гиббса функциональных групп для описания и прогнозирования распределения органических неэлектролитов между н-октаном и водой / С. М. Лещев // Журн. физ. химии. – 2002. – Т. 76, № 10. – С. 1765–1771.; Родникова, М. Н. Особенности растворителей с пространственной сеткой Н -связей / М. Н. Родникова // Журн. физ. хим. – 1993. – Т. 67, № 2. – С. 275–280.; https://vestichem.belnauka.by/jour/article/view/579

  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
    Academic Journal

    Source: Pharmacy & Pharmacology; Том 7, № 2 (2019); 70-83 ; Фармация и фармакология; Том 7, № 2 (2019); 70-83 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2019-7-2

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/362/526; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/362/527; Головко, А.И. Краткий обзор синтетических каннабиноидов, появившихся в незаконном обороте в 2014–2015 гг. / А.И. Головко, М.Б. Иванов, Е.Ю. Бонитенко, В.А. Баринов, В.А. Башарин // Наркология. – 2016. – Т. 15, №2(170). – С. 59–73.; Грибкова, С.Е. Исследование нового синтетического наркотика – метилового эфира алкилиндазола (MDMB(N)-073), поиск и идентификация его метаболитов методом ВЭЖХ-МС/МС / С.Е. Грибкова, В.А. Калашников, Е.В. Никитин // Наркология. – 2015. – Т. 14, № 10(166). – С. 87–97.; О внесении изменений в некоторые акты Правительства Российской Федерации в связи с совершенствованием контроля за оборотом наркотических средств [Электронный ресурс]: постановление Правительства Рос. Федерации от 12.10.2015 № 1097. – Режим доступа: http://www.consultant.ru/document/cons_doc_LAW_187423/.; Катаев, С.С. Идентификация метаболитов канна-бимиметика 5F-AB-PINACA в моче методом ГХ-МС / С.С. Катаев, О.Н. Дворская, М.А. Гофенберг, А.Б. Мелентьев // Бутлеровские сообщения. – 2014. – Т. 39, №8. – С. 150–160.; Дворская О.Н., Катаев С.С., Мелентьев А.Б. Идентификация маркеров некоторых синтетических каннабиноидов в биологических объектах: информационное письмо. – Ижевск: Принт, 2017. – 34 с.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/362

  18. 18
    Academic Journal

    Contributors: This study did not have any financial support from outside organizations., Данное исследование не имело какой-либо финансовой поддержки от сторонних организаций.

    Source: Pharmacy & Pharmacology; Том 7, № 4 (2019); 184-197 ; Фармация и фармакология; Том 7, № 4 (2019); 184-197 ; 2413-2241 ; 2307-9266 ; 10.19163/2307-9266-2019-7-4

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/424/555; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/424/561; Дворская, О.Н. Маркеры новых синтетических каннабимиметиков в моче / О.Н. Дворская, С.С. Катаев, А.Б. Мелентьев, Л.Н. Курдина // Наркология. – 2014. – т. 13, № 3. – С. 55–65.; Мелентьев, А. Б. Дизайнерские наркотики. Метаболизм и подходы к анализу в биологических средах / А.Б. Мелентьев, С.С. Катаев, О.Н. Дворская. – Москва: Изд-во «Перо», 2016. – 326 с.; Заикина, О.Л. Особенности обнаружения глюкуронидированных метаболитов синтетических каннабимиметиков методом ЖХ-МС/МС в моче / О.Л. Заикина, А.В. Кинд, И. Л. Гринштейн, А.М. Григорьев // Наркология. – 2015. – т. 14, № 9. – С. 77–82.; Заикина, О.Л. Метаболиты фазы II синтетических каннабимиметиков в моче: нужна ли пробоподготовка? / О.Л. Заикина, А.М. Григорьев // Судебная медицина. – 2015. – т. 1, № 2. – С. 66–67.; Лабутин. А.В., темердашев А.З. Нецелевой скрининг маркеров синтетических каннабиноидов в моче методом высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием / А.В. Лабутин, А.З. темердашев // Масс-спектрометрия. – 2015. – т. 12, № 1. – С. 30–38.; Катаев, С.С. Идентификация метаболитов каннабимиметика MDMB(N)-073F в моче методом газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием / С.С. Катаев, О.Н. Дворская, М.А. Гофенберг // Фармация и фармакология. 2019. – т. 7, № 2. – С. 70-83. DOI:10.19163/2307-9266-2019-7-2-70-83э.; Haschimi, B. Detection of the recently emerged synthetic cannabinoid 4F-MDMB-BINACA in ‘legal high’ products and human urine specimens / B. Haschimi, L. Mogler, S. Halter, A. Giorgetti, B. Schwarze, F. Westphal, S. Fischmann, V. Auwärter // Drug Test Anal. – 2019. – Jun 22. doi:10.1002/dta.2666.; https://www.pharmpharm.ru/jour/article/view/424

  19. 19
    Academic Journal

    Source: Biotechnologia Acta, Vol 8, Iss 2, Pp 58-68 (2015)

    File Description: text/html

  20. 20
    Academic Journal

    Source: Масс-спектрометрия. 16