Showing 1 - 20 results of 113 for search '"бык-производитель"', query time: 1.08s Refine Results
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
  6. 6
  7. 7
  8. 8
  9. 9
    Academic Journal

    Source: Agricultural Science Euro-North-East; № 5 (2018); 110-114 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; № 5 (2018); 110-114 ; 2500-1396 ; 2072-9081

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/263/263; Хайруллина Н.И., Фенченко Н.Г., Хусаинов В.Р. Химический состав, технологические свойства молока коров разных генотипов // Известия Оренбургского ГАУ. 2005. Т.1. № 1(5). С. 127-129.; Конорев В.П., Громова Т.В. Влияние линейной принадлежности на молочную продуктивность, химический состав и технологические свойства молока коров симментальской породы // Аграрная наука, образование, производство: актуальные вопросы: сб. тр. Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. уч. Новосибирск: изд-во НГ АУ, 2014. С. 47-50.; Bhat Z.F., Bhat H. Milk and Dairy Products as Functional Foods: A Review // International Journal of Dairy Science. 2011. V. 6. P. 1-12. DOI: 10.3 923/ij ds.2011.1.12.; Парфенова Г. Состав молока голштинских коров-первотелок разных линий // Молочное и мясное скотоводство. 2008. № 8. С. 23.; Приходько Н.Ф. Оценка качественного состава и технологических свойств молока коров бурой молочной породы в зависимости от происхождения // Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства. 2014. № 17. С. 260-265.; Борисенко Е.Я., Баранова К.В., Лисицын А.П. Практикум по разведению сельскохозяйственных животных. 3-е изд., перер. и доп. М.: Колос, 1984. 256 с.; Бабенко Е. О чем говорят жирность и белок молока? // Корми i факти. 2012. № 12 (28). С. 26-29.; Гафаров Ф.А., Ибатуллина Л.А., Гафарова Ф.М., Лутфрахманова Д.У. Характеристика коров разного возраста по содержанию в молоке соматических клеток // Аграрная наука: поиск, проблемы, решения: материалы международной научно-практической конференции. Волгоград: ФГБОУ ВО Волгоградский ГАУ, 2015. Том 1. С. 259-261.; Frossling J., Ohlson A., Hallen-Sandgren C. Incidence and duration of increased somatic cell count in Swedish dairy cows and associations with milking system type // Journal of Dairy Science. 2017. V. 100. Iss. 9. P. 7368-7378.; Sharma N., Singh N.K., Bhadwal M.S. Relationship of Somatic Cell Count and Mastitis: An Overview // Asian-Aust. J. Anim. Sci. 2011. Vol. 24. no. 3. P. 429-438.; Целищева О.Н. Взаимосвязь среднесуточного надоя и содержания соматических клеток в молоке помесных коров // Аграрная Россия. 2016. № 6. С. 18-20.; Целищева О.Н., Бабайлова Г.П. Влияние сезона года на количество соматических клеток в молоке за 2012-2013 гг. // Зоотехния. 2015. № 3. С. 18-20.; Курак А. Коварные соматические клетки. Как держать их «в узде»? [Электронный ресурс] // Белорусское сельское хозяйство. 2013. № 1(129). URL : http ://agriculture.by/articles/zhivotnovodstvo/ kovarnye-somaticheskie-kletki.-kak-derzhat-ih-v-uzde (дата обращения: 16.07.2018).; Качество молока коров. Физико-химические и технологические свойства [Электронный ресурс] / Л.А. Заболотнов, С.Г. Кузнецов, И.А. Баранова, П.В. Матющенко // Витасоль. - URL: http: //www.vitasol.ru/wp-content/uploads/2014 /05/Kachest-vo-moloka.pdf (дата обращения: 28.05.2018).

  10. 10
  11. 11
  12. 12
  13. 13
    Academic Journal

    Source: Agricultural Science Euro-North-East; № 5 (2016); 68-72 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; № 5 (2016); 68-72 ; 2500-1396 ; 2072-9081

    File Description: application/pdf

    Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/73/73; Алешкина С.В. Оптимизация селекции коров на продуктивное долголетие в Лесостепном Поволжье: автореф. дис. канд. с.-х. наук. Саранск, 2008. 25 с.; Руденко О.В., Комарова Г.Д. Продуктивное долголетие коров различных популяций Нижегородской области в зависимости от их линейной принадлежности // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2012. № 6 (31). С. 42-46.; Стрекозов Н.И., Левина Г. Индивидуальный подбор с учетом типа животных и селекции быков // Зоотехния. 2001. №1. С. 2-3.; Некрасов Д., Зубенко Э., Косинцева М., Зеленовский О. Прогнозирование племенной ценности быков по продуктивному долголетию и пожизненному удою дочерей // Молочное и мясное скотоводство. 2012. № 3. С. 6-8.; Некрасов Д., Зубенко Э. Прогнозирование племенной ценности быков по пожизненному удою дочерей // Молочное и мясное скотоводство. 2008. № 3. С. 30-32.

  14. 14
  15. 15
  16. 16
    Academic Journal

    Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 19, № 3 (2015); 277-285 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 19, № 3 (2015); 277-285 ; 2500-3259

    File Description: application/pdf

    Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/408/444; Смарагдов М.Г. Геномная селекция молочного скота в мире. Пять лет практического использования. Генетика. 2013;49(11): 1251-1260.; Berry D.P., McClure M.C., Mullen M.P. Within- and across-breed imputation of high-density genotypes in dairy and beef cattle from medium- and low-density genotypes. J. Anim. Breed. Genet. 2014;131(3):165-172. DOI:10.1111/jbg.12067; Boichard D., Chung H., Dassanneville R., David X., Eggen A., Fritz S., Gietzen K.J., Hayes B.J., Lawley C.T., Sonstegard T.S., Van Tassell C.P.,VanRaden P.M., Viaud-Martinez K.A., Wiggans G.R. Design of a bovine low-density SNP array optimized for imputation. PLoS One. 2012;7:e34130. DOI:10.1371/JOURNAL.PONE.0034130; Boichard D., Ducrocq V., Fritz S. Sustainable dairy cattle selection in the genomic era J. Anim. Breed Genet. 2015;132(2):135-143. DOI:10.1111/jbg.12150; Bouquet A., Juga J. Integrating genomic selection into dairy cattle breeding programmes: a review. Animal. 2013;7(5):705-713. DOI:10.1017/S1751731112002248; Bouquet A., Sorensen A.C., Juga J. Genomic selection strategies to optimize the use of multiple ovulation and embryo transfer schemes in dairy cattle breeding programs. Livestock Sci. 2015;174:18-25. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.livsci.2015.01.014; Bouwman A.C., Hickey J.M., Calus M.P., Veerkamp R.F. Imputation of non-genotyped individuals based on genotyped relatives: assessing the imputation accuracy of a real case scenario in dairy cattle. Genet. Sel. Evol. 2014;46:6. DOI:10.1186/1297-9686-46-6; Calus M.P., de Haas Y., Veerkamp R.F. Combining cow and bull reference populations to increase accuracy of genomic prediction and genome-wide association studies. J. Dairy Sci. 2013;96(10):6703-6715. DOI:10.3168/jds.2012-6013; Carneiro M.C., Takeuchi P.L., Araujo A., Lobo R.B., Elias F.P., Vila R.A., Miranda-Furtado C.L., Ramos E.S. Sexing single bovine blastomeres using TSPY gene amplification. Genet. Mol. Res. 2011;10(4):3937-3941. DOI:10.4238/2011; Cenariu M., Pall E., Cernea C., Groza I. Evaluation of bovine embryo biopsy techniques according to their ability to preserve embryo viability. J. Biomed. Biotechnol. 2012;2012:541384. DOI:10.1155/2012/541384; Clark S.A., Kinghorn B.P., Hickey J.M., van der Werf J.H. The effect of genomic information on optimal contribution selection in livestock breeding programs. Genet. Sel. Evol. 2013;45:44. DOI:10.1186/1297-9686-45-44; Ertl J., Edel C., Emmerling R., Pausch H., Fries R., Götz K.U. On the limited increase in validation reliability using high-density genotypes in genomic best linear unbiased prediction: observations from Fleckvieh cattle. J. Dairy Sci. 2014;979(1):487-496. DOI:10.3168/jds.2013-6855; Falconer D.S., Mackay T.F.C. Introduction to Quantitative Genetics. Burnt Mill, England : Longman, 1996.; Fisher P.J., Hyndman D.L., Bixley M.J., Oback F.C., Popovic L., McGowan L.T., Berg M.C., Wells D.N. Brief communication: potential for genomic selection of bovine embryos. Proc. N.Z. Soc. Anim. Prod. 2012;72:156-158.; Galli C., Duchi R., Colleoni S., Lagutina I., Lazzari G. Ovum pick up, intracytoplasmic sperm injection and somatic cell nuclear transfer in cattle, buffalo and horses: from the research laboratory to clinical practice. Theriogenology. 2014;Jan. 1;81(1):138-151. DOI:10.1016/ j.theriogenology.2013.09.008; Gamarra G., Le Bourhis D., Gall L., Laffont L., Ruffini S., Humblot P. Attempts to culture biopsied cells from in vitro bovine blastocysts for genotyping. Reprod. Fertil. Dev. 2010;22:238–239. DOI:10.1071/RDV22N1AB160; Georges M., Massey J.M. Velogenetics, or the synergistic use of marker assisted selection and germ-line manipulation. Theriogenology. 1991;35(1):151-159. DOI:10.1016/0093-691X(91)90154-6; Haskell M.J., Simm G., Turner S.P. Genetic selection for temperament traits in dairy and beef cattle. Front. Genet. 2014;5:368. DOI:10.3389/fgene.2014.00368; Hasler J.F. Forty years of embryo transfer in cattle: a review focusing on the journal Theriogenology, the growth of the industry in North America, and personal reminisces. Theriogenology. 2014;81(1):152-169. DOI:10.1016/j.theriogenology.2013.09.010; Hoze C., Fouilloux M.N., Venot E., Guillaume F., Dassonneville R., Fritz S., Ducrocq V., Phocas F., Boichard D., Croiseau P. High-density marker imputation accuracy in sixteen French cattle breeds. Genet .Sel. Evol. 2013;45: 33. DOI:10.1186/1297-9686-45-33; Hoze C., Fritz S., Phocas F., Boichard D., Ducrocq V., Croiseau P. Efficiency of multi-breed genomic selection for dairy cattle breeds with different sizes of reference population. J. Dairy Sci. 2014;97(6):3918-3929. DOI:10.3168/jds.2013-7761; Humblot P., Le Bourhis D., Fritz S., Colleau J.J., Gonzalez C., Guyader Joly C., Malafosse A., Heyman Y., Amigues Y., Tissier M., Ponsart C. Reproductive technologies and genomic selection in cattle. Vet. Med. Int. 2010;2010:1-8. DOI:10.4061/2010/192787; Illumina. Bovine HD Genotyping BeadChip. 2015a. available at http://www.illumina.com/Documents/products/datasheets/datasheet_bovineHD.pdf; Illumina. Bovine SNP50 Genotyping BeadChip. 2015b. available at http://www.illumina.com/Documents/products/datasheets/datasheet_bovine_snp5O.pdf.Illumina.%202011c.; Illumina. Bovine LD. 2015c. available at http://www.illumina.com/documents/products/product_information_sheets/product_info_bovineLD.pdf; Jimenez-Montero J.A., Gianola D., Weigel K., Alenda R., Gonzalez-Recio O. Assets of imputation to ultra-high density for productive and functional traits. J. Dairy Sci. 2013;96(9):6047-6058. DOI:10.3168/jds.2013-6793; Jonas E., de Koning D.J. Genomic selection needs to be carefully assessed to meet specific requirements in livestock breeding programs. Front Genet. 2015;Feb. 20;6:49. DOI:10.3389/fgene.2015.00049; Kasinathan P., Wei H., Xiang T., Molina J.A., Metzger J., Broek D., Kasinathan S., Faber D.C., Allan M.F. Acceleration of genetic gain in cattle by reduction of generation interval. Sci. Rep. 2015;5:8674. DOI:10.1038/srep08674; Larmer S.G., Sargolzaei M., Schenkel F.S. Extent of linkage disequilibrium, consistency of gametic phase, and imputation accuracy within and across Canadian dairy breeds. J. Dairy Sci. 2014;97(5):3128-3141. DOI:10.3168/jds.2013-6826; Lauri A., Lazzari G., Galli C., Lagutina I., Genzini E., Braga F., Mariani P., Williams J.L. Assessment of MDA efficiency for genotyping using cloned embryo biopsies. Genomics. 2013;101(1):24-29. DOI:10.1016/j.ygeno.2012.09.002; Le Bourhis D., Mullaart E., Humblot P., Coppieters W., Ponsart C. Bovine embryo genotyping using a 50k SNP chip. Reprod. Fertil. Dev. 2010;23:197. DOI:10.1071/RDV23N1AB193; Le Bourhis D., Mullaart E., Schrooten C., Fritz S., Coppieters W., Ponsart C. Breeding values concordance between embryos and corresponding calves. Reprod. Fertil. Dev. 2011;24:180. DOI:10.1071/RDV24N1AB135; Lund M.S., Roos A.P., Vries A.G., Druet T., Ducrocq V., Fritz S., Guillaume F., Guldbrandtsen B., Liu Z., Reents R., Schrooten C., Seefried F., Su G. A common reference population from four European Holstein populations increases reliability of genomic predictions. Genet. Sel. Evol. 2011;43:43. DOI:10.1186/1297-9686-43-43; Ma P., Brondum R.F., Zhang Q., Lund M.S., Su G. Comparison of different methods for imputing genome-wide marker genotypes in Swedish and Finnish Red Cattle. J. Dairy Sci. 2013;96(7):4666-4677. DOI:10.3168/jds.2012-6316; Macaulay I.C., Voet T. Single cell genomics: advances and future perspectives. PLoS Genet. 2014;10(1):e1004126. DOI:10.1371/journal.pgen.1004126; Makgahlela M.L., Mantysaari E.A., Stranden I., Koivula M., Nielsen U.S., Sillanpaa M.J., Juga J. Across breed multi-trait random regression genomic predictions in the Nordic Red dairy cattle. J. Anim. Breed Genet. 2013a;130(1):10-19. DOI:10.1111/j.1439- 0388.2012.01017.x; Makgahlela M.L., Stranden I., Nielsen U.S., Sillanpaa M.J., Mantysaari E.A. The estimation of genomic relationships using breedwise allele frequencies among animals in multibreed populations. Dairy Sci. 2013b;96(8):5364-5375. DOI:10.3168/jds.2012-6523; Makgahlela M.L., Stranden I., Nielsen U.S., Sillanpaa M.J., Mantysaari E.A. Using the unified relationship matrix adjusted by breed-wise allele frequencies in genomic evaluation of a multibreed population. J. Dairy Sci. 2014;97(2):1117-1127. DOI:10.3168/jds.2013-7167; Mc Hugh N., Meuwissen T.H., Cromie A.R., Sonesson A.K. Use of female information in dairy cattle genomic breeding programs. J. Dairy Sci. 2011;94(8):4109–4118. DOI:10.3168/JDS.2010-4016; Meuwissen T., Hayes B., Goddard M. Accelerating improvement of livestock with genomic selection. Annu. Rev. Anim. Biosci. 2013;1:221–237. DOI:10.1146/annurev-animal-031412-103705; Nicholas F.W., Hobbs M. Mutation discovery for Mendelian traits in non-laboratory animals: a review of achievements up to 2012. Anim. Genet. 2014;45(2):157-170. DOI:10.1111/age.12103; Nordic Cattle Genetic Evaluation (NCGE). 2015. available at http://www.nordicebv.info/News/NewsNAVroutineEvaluation-May2nd2014.htm; Pedersen L.D., Kargo M., Berg P., Voergaard J., Buch L.H., Sorensen A.C. Genomic selection stratefies in dairy cattle breeding programmes: sexed semen cannot replace multiple oculation and embryo transfer as superior reproductive technology. J. Anim. Breed. Genet. 2012;129:152-163. DOI:10.1111/J.1439-0388.2011.00958.X; Peters B.A., Kermani B.G., Alferov O., Agarwal M.R., McElwain M.A., Gulbahce N., Hayden D.M., Tang Y.T., Zhang R.Y., Tearle R., Crain B., Prates R., Berkeley A., Munne S., Drmanac R. Detection and phasing of single base de novo mutations in biopsies from human in vitro fertilized embryos by advanced whole-genome sequencing. Genome Res. 2015;25(3):426-434. DOI:10.1101/gr.181255.114; Ponsart C., Le Bourhis D., Knijn H., Fritz S., Guyader-Joly C., Otter T., Lacaze S., Charreaux F., Schibler L., Dupassieux D., Mullaart E. Reproductive technologies and genomic selection in dairy cattle. Reprod. Fertil. Dev. 2014;26(1):12-21. DOI:10.1071/RD13328; Pryce J.E., Daetwyler H.D. Designing dairy cattle breeding schemes under genomic selection: a review of international research. Anim. Prod. Sci. 2012;52:107–114. DOI:10.1071/AN11098; Pryce J.E., Wales W.J., de Haas Y., Veerkamp R.F., Hayes B.J. Genomic selection for feed efficiency in dairy cattle. Animal. 2014;8(1):1-10.DOI:10.1017/S1751731113001687; Ramos-Ibeas P., Calle A., Pericuesta E., Laguna-Barraza R., Moros-Mora R., Lopera-Vasquez R., Maillo V., Yanez-Mo M., Gutierrez-Adan A., Rizos D., Ramirez M.A. An efficient system to establish biopsy-derived trophoblastic cell lines from bovine embryos. Biol. Reprod. 2014;91(1):15. DOI:10.1095/biolreprod.114.118430; Sargolzaei M., Vigneault C., Blondin P., Schenkel F., Chesnais J. Results from the Boviteq embryo genotyping research project. Dairy Cattle Breeding and Genetics Committee Meeting, 18 September 2012. Available at: http://lirpa.aps.uoguelph.ca/elares/sites/default/files/msargol_Embryo_Genotyping_Project.pdf.; Schopen G.C., Schrooten C. Reliability of genomic evaluations in Holstein-Friesians using haplotypes based on the BovineHD BeadChip. J. Dairy Sci. 2013;Dec;96(12):7945-7951.; Schrooten C., Dassonneville R., Ducrocq V., Brondum R.F., Lund M.S., Chen J., Liu Z., Gonzalez-Recio O., Pena J., Druet T. Error rate for imputation from the Illumina BovineSNP50 chip to the Illumina BovineHD chip. Genet. Sel. Evol. 2014;46:10. DOI:10.1186/1297-9686-46-10; Shojaei Saadi H.A., Vigneault C., Sargolzaei M., Gagne D., Fournier E., de Montera B., Chesnais J., Blondin P., Robert C. Impact of wholegenome amplification on the reliability of pre-transfer cattle embryo breeding value estimates. BMC Genomics. 2014;15:889. DOI:10.1186/1471-2164-15-889; Sorensen M.K., Voergaard J., Pedersen L.D., Berg P., Sorensen A.C. Genetic gain in dairy cattle populations is increased using sexed semen in commercial herds. J. Anim. Breed. Genet. 2011;128:267-275. DOI:10.1111/J.1439-0388.2011.00924.X; Treff N.R., Su J., Tao X., Northrop L.E., Scott R.T. Jr. Single-cell whole-genome amplification technique impacts the accuracy of SNP microarray-based genotyping and copy number analyses. Mol. Hum. Reprod. 2011;17(6):335-343. DOI:10.1093/molehr/gaq103; Van der Aa N., Zamani Esteki M., Vermeesch J.R., Voet T. Preimplantation genetic diagnosis guided by single-cell genomics. Genome Med. 2013;5(8):71. DOI:10.1186/gm475; VanRaden P.M., Null D.J., Sargolzaei M., Wiggans G.R., Tooker M.E., Cole J.B., Sonstegard T.S., Connor E.E., Winters M., van Kaam J.B., Valentini A., Van Doormaal B.J., Faust M.A., Doak G.A. Genomic imputation and evaluation using high-density Holstein genotypes. J. Dairy Sci. 2013;96(1):668-678. DOI:10.3168/jds.2012-5702; Voet T., Kumar P., Van Loo P., Cooke S.L., Marshall J., Lin M.L., Zamani Esteki M., Van der Aa N., Mateiu L., McBride D.J., Bignell G.R., McLaren S., Teague J., Butler A., Raine K., Stebbings L.A., Quail M.A., D’Hooghe T., Moreau Y., Futreal P.A., Stratton M.R., Vermeesch J.R., Campbell P.J. Single-cell paired-end genome sequencing reveals structural variation per cell cycle. Nucleic Acids Res. 2013;41(12):6119-6138. DOI:10.1093/nar/gkt345; Zhou L., Heringstad B., Su G., Guldbrandtsen B., Meuwissen T.H., Svendsen M., Grove H., Nielsen U.S., Lund M.S. Genomic predictions based on a joint reference population for the Nordic Red cattle breeds. J. Dairy Sci. 2014;97(7):4485-4496. DOI:10.3168/jds. 2013-7580; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/408

  17. 17
  18. 18
  19. 19
  20. 20