Αποτελέσματα αναζήτησης - "бронхоальвеолярная лаважная жидкость"

1

Academic Journal

New possibilities to diagnose pulmonary tuberculosis at a pulmonology inpatient department ; Новые возможности диагностики туберкулеза в пульмонологическом отделении стационара

Συγγραφείς: E. A. Borodulina, B. E. Borodulin, A. T. In’kova, E. S. Vdoushkina, L. V. Povalyayeva, Е. А. Бородулина, Б. Е. Бородулин, А. Т. Инькова, Е. С. Вдоушкина, Л. В. Поваляева

Συνεισφορές: The authors thank N.N. Viktor, Hospital Chief Executive Officer of Samara City Hospital No.4., Авторы выражают благодарность главному врачу Государст вен - ного бюджетного учреждения здравоохранения Самарской области «Самарская городская больница № 4» Н.Н.Виктор.

Πηγή: PULMONOLOGIYA; Том 29, № 3 (2019); 321-326 ; Пульмонология; Том 29, № 3 (2019); 321-326 ; 2541-9617 ; 0869-0189 ; 10.18093/0869-0189-2019-29-3

Θεματικοί όροι: GeneXpert MTB / RIF, mycobacterium tuberculosis, microscopy, BAL, molecular genetic methods, BACTEC MGIT, GeneXpert MTB/RIF, микобактерии туберкулеза, микроскопия, бронхоальвеолярная лаважная жидкость, молекулярно-генетический метод

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1175/925; Васильева И.А., Белиловский Е.М., Борисов С.Е., Стерликов С.А. Заболеваемость, смертность и распространенность как показатели бремени туберкулеза в регионах ВОЗ, странах мира и в Российской Федерации. Часть 1. Заболеваемость и распространенность туберкулеза. Туберкулез и болезни легких. 2017; 95 (6): 9–21. DOI:10.21292/2075-1230-2017-95-6-9-21.; Павлунин А.В., Шарафутдинова М.А., Борисова С.Б. и др. Причины несвоевременного выявления и ошибки диагностики туберкулеза органов дыхания в общей лечебной сети. Туберкулез и социально-значимые заболевания. 2015; (2): 63–64.; Бородулина Е.А., Поваляева Л.В., Бородулина Э.В. и др. Проблема диагностики туберкулеза в практике врача-пульмонолога. Вестник современной клинической медицины. 2017; 10 (1): 89–93. DOI:10.20969/VSKM.2017.10(1).89-93.; Поваляева Л.В., Бородулина Е.А., Бородулин Б.Е., Еремеев А.Е. Впервые выявленный туберкулез легких и способ его выявления. Туберкулез и болезни легких. 2011; 88 (5): 113–114.; Севастьянова Э.В., Пузанов В.А., Смирнова Т.Г. и др. Оценка комплекса микробиологических и молекулярно-генетических методов исследований для диагностики туберкулеза. Туберкулез и болезни легких. 2015; (1): 35–41.; Залуцкая О. М., Сагальчик Е.Р., Суркова Л.К. Руководство по лабораторной диагностике туберкулеза. Минск: 2013.; Серегина В.А., Будрицкий А.М. Современные возможности диагностики туберкулеза легких. Вестник Ви теб ского государственного медицинского университета. 2016; 15 (4): 7–17.; Бородулина Э.В., Суслин С.А. Совершенствование организации диагностики туберкулеза в практике участкового терапевта. Бюллетень Национального научноисследовательского института общественного здоровья имени Н.А. Семашко. 2017; (4): 16–21.; Гуревич Л.Г., Скрягина Е.М., Залуцкая О.М. Диагностика и дифференциальная диагностика туберкулеза легких на различных уровнях оказания медицинской помощи. Туберкулез и болезни легких. 2014; 91 (1): 14–19.; Бородулина Е.А., Бородулин Б.Е., Поваляева Л.В. и др. Дифференциальная диагностика внебольничной пневмонии и инфильтративного туберкулеза легких Диаскинтестом®. Пульмонология. 2010; (3): 89–91.; Родионова Ю.Д., Гусякова О.А., Лямин А.В. и др. Оценка влияния условий хранения мокроты на витальные свойства микобактерий туберкулеза. Туберкулез и болезни легких. 2017; 95 (1): 42–46. DOI:10.21292/2075-1230-2017-95-1-42-46.; Корецкая Н.М., Наркевич А.Н. Биологические свойства возбудителя у больных туберкулезом легких при различных путях выявления заболевания. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2014; 158 (7): 78–81.; Разнатовская Е. Н., Ясинский Р. Н., Конакова О. В. и др. [Актуальность использования GenoType MTBDRplus для ранней диагностики мультирезистентных форм туберкулеза]. Запорожский медицинский журнал. 2017; (2): 210–216. DOI:10.14739/2310-1210.2017.2.95741 (на украинском).; Ерохин В.В., Черноусова Л.Н. Значение молекулярногенетических исследований в модернизации фтизиатрии. Фтизиатрия и пульмонология. 2011; (2): 52–53.; Mansfeld M., Skrahina A., Shepherd L. et al. Major differences in organization and availability of health care and medicines for HIV/TB coinfected patients across Europe. HIV Med. 2015; 16 (9) 544–552. DOI:10.1111/hiv.12256.; Бородулина Е., Уханова С., Ревина О., Пронина Е. Участковый врач-фтизиатр в условиях мегаполиса XXI века. Врач. 2016; (11): 25–27.; Слогоцкая Л.В., Богородская Е.М., Сенчихина О.Ю. и др. Формирование групп риска заболевания туберкулезом при различных иммунологических методах обследования детского населения. Российский педиатрический журнал. 2017; 20 (4): 207–213. DOI:10.18821/1560-9561-2017-20-4-207-213.; Slogotskaya L.V., Bogorodskaya Е., Ivanova D. et al. Sensitivity and specificity of new skin test with recombinant protein CFP10-ESAT6 in patients with tuberculosis and individuals with non- tuberculosis diseases. Eur. Respir. J. 2013; 42 (Suppl. 57): P1995.; Аксенова В.А., Барышникова Л.А., Долженко Е.Н., Кудлай Д.А. Актуальные вопросы массового обследования детского населения на туберкулез в современных условиях. Доктор.Ру. 2012; 8 (76): 27–29.; Слогоцкая Л.И., Литвинов В.И., Сельцовский П.П. и др. Применение кожной пробы с аллергеном туберкулезным рекомбинантным (Диаскинтест®) для диагностики туберкулезной инфекции у больных с ВИЧ инфекцией. Пульмонология. 2011; (1): 60–64. DOI: 10. 18093/0869-0189-2011-0-1-60-64.; Мамаев А.Н., Кудлай Д.А. Визуализация данных в презентациях, отчетах и исследованиях. М.: Практическая медицина; 2011.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1175

Διαθεσιμότητα: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1175
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2019-29-3-321-326

View record from BASE

2

Academic Journal

Use of the routine complete blood count to predict steroid resistance in patients with chronic obstructive pulmonary disease ; Использование рутинных тестов общего анализа крови для прогнозирования устойчивости к глюкокортикостероидной терапии у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких

Συγγραφείς: A. G. Kadushkin, A. D. Taganovich, L. V. Movchan, T. V. Shman, V. K. Panasyuk, G. K. Novskaya, А. Г. Кадушкин, А. Д. Таганович, Л. В. Мовчан, Т. В. Шман, В. К. Панасюк, Г. К. Новская

Πηγή: PULMONOLOGIYA; Том 28, № 6 (2018); 681-692 ; Пульмонология; Том 28, № 6 (2018); 681-692 ; 2541-9617 ; 0869-0189 ; 10.18093/0869-0189-2018-28-6

Θεματικοί όροι: ингибирующий миграцию макрофагов, alveolar macrophages, glucocorticoids, steroid resistance, bronchoalveolar lavage fluid, prediction, response, macrophage migration inhibitory factor, альвеолярные макрофаги, глюкокортикостероиды, резистентность к глюкокортикостероидам, бронхоальвеолярная лаважная жидкость, прогнозирование, ответ, фактор

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1084/878; Vestbo J., Edwards L.D., Scanlon P.D. et al. Changes in forced expiratory volume in 1 second over time in COPD. N. Engl. J. Med. 2011; 365 (13): 1184–1192. DOI:10.1056/NEJMoa1105482.; Calverley P., Pauwels R., Vestbo J. et al. Combined salmeterol and fluticasone in the treatment of chronic obstructive pulmonary disease: a randomised controlled trial. Lancet. 2003; 361 (9356): 449–456. DOI:10.1016/S0140-6736(03)12459-2.; Nannini L.J., Poole P., Milan S.J., Kesterton A. Combined corticosteroid and long-acting beta(2)-agonist in one inhaler versus inhaled corticosteroids alone for chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst. Rev. 2013; (8): CD006826. DOI:10.1002/14651858.CD006826.pub2.; Kew K.M., Seniukovich A. Inhaled steroids and risk of pneumonia for chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst. Rev 2014; (3): CD010115. DOI:10.1002/14651858.CD010115.pub2.; Saha S., Brightling C.E. Eosinophilic airway inflammation in COPD. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2006; 1 (1): 39–47. Available at: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2706606/; Tashkin D.P., Wechsler M.E. Role of eosinophils in airway inflammation of chronic obstructive pulmonary disease Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2018; 13: 335–349. DOI:10.2147/COPD.S152291.; Barnes N.C., Sharma R., Lettis S., Calverley P.M. Blood eosinophils as a marker of response to inhaled corticosteroids in COPD. Eur. Respir. J. 2016; 47 (5): 1374–1382. DOI:10.1183/13993003.01370-2015.; Siddiqui S.H., Guasconi A., Vestbo J. et al. Blood eosinophils: a biomarker of response to extrafine beclomethasone/formoterol in chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 2015; 192 (4): 523–525. DOI:10.1164/rccm.201502-0235LE.; Selders G.S., Fetz A.E., Radic M.Z., Bowlin G.L. An overview of the role of neutrophils in innate immunity, inflammation and host-biomaterial integration. Regen. Biomater. 2017; 4 (1): 55–68. DOI:10.1093/rb/rbw041.; Calandra T., Roger T. Macrophage migration inhibitory factor: a regulator of innate immunity. Nat. Rev. Immunol. 2003; 3 (10): 791–800. DOI:10.1038/nri1200.; Кадушкин А.Г., Таганович А.Д. Молекулярные механизмы формирования стероидорезистентности у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2016; 26 (6): 736–747. DOI:10.18093/0869-0189-2016-26-6-736–747.; Arman M., Payne H., Ponomaryov T., Brill A. Role of platelets in inflammation. In: Kerrigan S.W., Moran N., eds. The Non-Thrombotic Role of Platelets in Health and Disease. Intech Publishers; 2015: 37–53. DOI:10.5772/60536.; Paliogiannis P., Fois A.G., Sotgia S. et al. Neutrophil to lymphocyte ratio and clinical outcomes in COPD: recent evidence and future perspectives. Eur. Respir. Rev. 2018; 27 (147): pii: 170113. DOI:10.1183/16000617.0113-2017.; Kumar P., Law S., Sriram K.B. Evaluation of platelet lymphocyte ratio and 90-day mortality in patients with acute exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. J. Thorac. Dis. 2017; 9 (6): 1509–1516. DOI:10.21037/jtd.2017.05.77.; Jones P.W., Harding G., Berry P. et al. Development and first validation of the COPD Assessment Test. Eur. Respir. J. 2009; 34 (3): 648–654. DOI:10.1183/09031936.00102509.; Кадушкин А.Г., Таганович А.Д., А.А. Арабей и др. Чувствительность к глюкокортикоидам и гетерогенность ответа клеток in vitro у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2018; 28 (5): 558–566. DOI:10.18093/0869-0189-2018-28-5-558-566.; Lang T. Documenting research in scientific articles: Guidelines for authors: 3. Reporting multivariate analyses. Chest. 2007; 131 (2): 628–632. DOI:10.1378/chest.06-2088.; Youngstrom E.A. A primer on receiver operating characteristic analysis and diagnostic efficiency statistics for pediatric psychology: we are ready to ROC. J. Pediatr. Psychol. 2014; 39 (2): 204–221. DOI:10.1093/jpepsy/jst062.; Higham A., Booth G., Lea S. et al. The effects of corticosteroids on COPD lung macrophages: a pooled analysis. Respir. Res. 2015; 16 (1): 98. DOI:10.1186/s12931-015-0260-0.; Hinds D.R., DiSantostefano R.L., Le H.V., Pascoe S. Identification of responders to inhaled corticosteroids in a chronic obstructive pulmonary disease population using cluster analysis. BMJ Open. 2016; 6 (6): e010099. DOI:10.1136/bmjopen-2015-010099.; Calverley P.M.А., Tetzlaff K., Vogelmeier C. et al. Eosinophilia, frequent exacerbations, and steroid response in chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2017; 196 (9): 1219–1221. DOI:10.1164/rccm.201612-2525LE.; Sørensen A.K., Holmgaard D.B., Mygind L.H. et al. Neutrophil-to-lymphocyte ratio, calprotectin and YKL-40 in patients with chronic obstructive pulmonary disease: correlations and 5-year mortality – a cohort study. J. Inflamm. (Lond). 2015; 12: 20. DOI:10.1186/s12950-015-0064-5.; Lee H., Um S.J., Kim Y.S. et al. Association of the neutrophil-to-lymphocyte ratio with lung function and exacerbations in patients with chronic obstructive pulmonary disease. PLoS One. 2016; 11 (6): e0156511. DOI:10.1371/journal.pone.0156511.; Karadeniz G., Aktoğu S., Erer O.F. et al. Predictive value of platelet-to-lymphocyte ratio in exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. Biomark. Med. 2016; 10 (7): 701–710. DOI:10.2217/bmm-2016-0046.; Kurtipek E., Bekci T.T., Kesli R. et al. The role of neutrophil-lymphocyte ratio and platelet-lymphocyte ratio in exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. J. Pak. Med. Assoc. 2015; 65 (12): 1283–1287.; Richard V., Kindt N., Saussez S. Macrophage migration inhibitory factor involvement in breast cancer (Review). Int. J. Oncol. 2015; 47 (5): 1627–1633. DOI:10.3892/ijo.2015.3185.; Daun J.M., Cannon J.G. Macrophage migration inhibitory factor antagonizes hydrocortisone-induced increases in cytosolic IκBα. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2000; 279 (3): R1043–R1049. DOI:10.1152/ajpregu.2000.279.3.R1043.; Roger T., Chanson A.L., Knaup-Reymond M., Calandra T. Macrophage migration inhibitory factor promotes innate immune responses by suppressing glucocorticoid-induced expression of mitogen-activated protein kinase phosphatase-1. Eur. J. Immunol. 2005; 35 (12): 3405–3413. DOI:10.1002/eji.200535413.; Wang F.F., Zhu L.A., Zou Y.Q. et al. New insights into the role and mechanism of macrophage migration inhibitory factor in steroid-resistant patients with systemic lupus erythematosus. Arthritis Res. Ther. 2012; 14 (3): R103. DOI:10.1186/ar3828.; Yao C., Liu X., Tang Z. Prognostic role of neutrophil-lymphocyte ratio and platelet-lymphocyte ratio for hospital mortality in patients with AECOPD. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2017; 12: 2285–2290. DOI:10.2147/COPD.S141760.; Stolz D., Meyer A., Rakic J. et al. Mortality risk prediction in COPD by a prognostic biomarker panel. Eur. Respir. J. 2014; 44 (6): 1557–1570. DOI:10.1183/09031936.00043814.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1084

Διαθεσιμότητα: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1084
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2018-28-6-681-692

View record from BASE

3

Academic Journal

Sensitivity to glucocorticosteroids and heterogeneity of in vitro cell response in patients with chronic obstructive pulmonary disease ; Чувствительность к глюкокортикостероидам и гетерогенность ответа клеток in vitro у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких

Συγγραφείς: A. G. Kadushkin, A. D. Taganovich, A. A. Arabey, L. M. Shishlo, A. P. Lyubetskaya, L. V. Aleshkevich, А. Г. Кадушкин, А. Д. Таганович, А. А. Арабей, Л. М. Шишло, А. П. Любецкая, Л. В. Алешкевич

Πηγή: PULMONOLOGIYA; Том 28, № 5 (2018); 558-566 ; Пульмонология; Том 28, № 5 (2018); 558-566 ; 2541-9617 ; 0869-0189 ; 10.18093/0869-0189-2018-28-5

Θεματικοί όροι: интерлейкин-8, alveolar macrophages, glucocorticosteroids, steroid resistance, bronchoalveolar lavage fluid, cytokines, interleukin 8, альвеолярные макрофаги, глюкокортикостероиды, резистентность к глюкокортикостероидам, бронхоальвеолярная лаважная жидкость, цитокины

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1055/864; Halbert R.J., Natoli J.L., Gano A. et al. Global burden of COPD: systematic review and meta-analysis. Eur. Respir. J. 2006; 28 (3): 523–532. DOI:10.1183/09031936.06.00124605.; Hogg J.C.,Chu F.,Utokaparch S. et al. The nature of small-airway obstruction in chronic obstructive pulmonary disease. N. Engl. J. Med. 2004; 350 (26): 2645–2653. DOI:10.1056/NEJMoa032158.; Barnes P.J. The cytokine network in chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2009; 41 (6): 631–638. DOI:10.1165/rcmb.2009-0220TR.; Кадушкин А.Г., Таганович А.Д. Молекулярные механизмы формирования стероидорезистентности у пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2016; 26 (6): 736–747. DOI:10.18093/0869-0189-2016-26-6-736-747.; Calverley P.M.A., Tetzlaff K., Vogelmeier C. et al. Eosinophilia, frequent exacerbations, and steroid response in chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2017; 196 (9): 1219–1221. DOI:10.1164/rccm.201612-2525LE.; Price D., Yawn B., Brusselle G., Rossi A. Risk-to-benefit ratio of inhaled corticosteroids in patients with COPD. Prim. Care Respir. J. 2013; 22 (1): 92–100. DOI:10.4104/pcrj.2012.00092.; Rossios C., To Y., Osoata G. et al. Corticosteroid insensitivity is reversed by formoterol via phosphoinositide-3-kinase inhibition. Br. J. Pharmacol. 2012; 167 (4): 775–786. DOI:10.1111/j.1476-5381.2012.01864.x.; Ratcliffe M.J., Dougall I.G. Comparison of the anti-inflammatory effects of cilomilast, budesonide and a p38 mitogen activated protein kinase inhibitor in COPD lung tissue macrophages. BMC. Pharmacol. Toxicol. 2012; (13):15. DOI:10.1186/2050-6511-13-15.; Siddiqui S.H., Guasconi A., Vestbo J. et al. Blood eosinophils: a biomarker of response to extrafine beclomethasone/formoterol in chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir. Crit. Care. Med. 2015; 192 (4): 523–525. DOI:10.1164/rccm.201502-0235LE.; Baughman R.P. Technical aspects of bronchoalveolar lavage: recommendations for a standard procedure. Semin. Respir. Crit. Care Med. 2007; 28 (5): 475–485. DOI:10.1055/s-2007-991520.; Van der Velden V.H. Glucocorticoids: mechanisms of action and antiinflammatory potential in asthma. Mediators Inflamm. 1998; 7 (4): 229–237. DOI:10.1080/09629359890910.; Oakley R.H., Jewell C.M., Yudt M.R. et al. The dominant negative activity of the human glucocorticoid receptor beta isoform. Specificity and mechanisms of action. J. Biol. Chem. 1999; 274 (39): 27857–27866. DOI:10.1074/jbc.274.39.27857.; Marwick J.A., Caramori G., Stevenson C.S. et al. Inhibition of PI3Kdelta restores glucocorticoid function in smoking-induced airway inflammation in mice. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2009; 179 (7): 542–548. DOI:10.1164/rccm.200810-1570OC.; Khalaf R.M., Lea S.R., Metcalfe H.J. et al. Mechanisms of corticosteroid insensitivity in COPD alveolar macrophages exposed to NTHi. Respir. Res. 2017. (18): 61. DOI:10.1186/s12931-017-0539-4.; Zeng M., Li Y., Jiang Y. et al. Local and systemic oxidative stress and glucocorticoid receptor levels in chronic obstructive pulmonary disease patients. Can. Respir. J. 2013; 20 (1): 35–41. DOI:10.1155/2013/985382.; Esmailpour N., Högger P., Rabe K.F. et al. Distribution of inhaled fluticasone propionate between human lung tissue and serum in vivo. Eur. Respir. J. 1997; 10 (7): 1496–1499.; Higham A., Booth G., Lea S. et al. The effects of corticosteroids on COPD lung macrophages: a pooled analysis. Respir. Res. 2015; (16): 98. DOI:10.1186/s12931-015-0260-0.; Khorasani N., Baker J., Johnson M. et al. Reversal of corticosteroid insensitivity by p38 MAPK inhibition in peripheral blood mononuclear cells from COPD. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2015; (10): 283–291. DOI:10.2147/COPD.S72403.; Knobloch J., Hag H., Jungck D. et al. Resveratrol impairs the release of steroid-resistant cytokines from bacterial endotoxin-exposed alveolar macrophages in chronic obstructive pulmonary disease. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 2011; 109 (2): 138–143. DOI:10.1111/j.1742-7843.2011.00707.x.; Armstrong J., Harbron C., Lea S. et al. Synergistic effects of p38 mitogen-activated protein kinase inhibition with a corticosteroid in alveolar macrophages from patients with chronic obstructive pulmonary disease. J. Pharmacol. Exp. Ther. 2011; 338 (3): 732–740. DOI:10.1124/jpet.111.180737.; Кадушкин А.Г., Таганович А.Д., Картун Л.В. и др. Уровень цитокинов в плазме крови некурящих и курящих пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2013; (6): 27–32. DOI:10.18093/0869-0189-2013-0-6-718-723.; Keatings V.M., Collins P.D., Scott D.M., Barnes P.J. Differences in interleukin-8 and tumor necrosis factor-alpha in induced sputum from patients with chronic obstructive pulmonary disease or asthma. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 1996; 153 (2): 530–534. DOI:10.1164/ajrccm.153.2.8564092.; Soler N., Ewig S., Torres A. et al. Airway inflammation and bronchial microbial patterns in patients with stable chronic obstructive pulmonary disease. Eur. Respir. J. 1999; 14 (5): 1015–1022.; Barnes N.C., Sharma R., Lettis S., Calverley P.M. Blood eosinophils as a marker of response to inhaled corticosteroids in COPD. Eur. Respir. J. 2016; 47 (5): 1374–1382. DOI:10.1183/13993003.01370-2015.; Tunçay E.A., Karakurt Z., Aksoy E. et al. Eosinophilic and non-eosinophilic COPD patients with chronic respiratory failure: neutrophil-to-lymphocyte ratio as an exacerbation marker. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis. 2017; (12): 3361–3370. DOI:10.2147/COPD.S147261.; https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1055

Διαθεσιμότητα: https://journal.pulmonology.ru/pulm/article/view/1055
https://doi.org/10.18093/0869-0189-2018-28-5-558-566

View record from BASE

4

Academic Journal