-
1Academic Journal
-
2
-
3
-
4Academic Journal
Authors: Олег Андреевич Савченко, Евгений Анатольевич Новиков, Ирина Игоревна Новикова, Наталья Федоровна Чуенко, Полина Евгеньевна Свечкарь
Source: Медицина в Кузбассе, Vol 23, Iss 1, Pp 28-34 (2024)
Subject Terms: производственные факторы, шум, вибрация, промышленные аэрозоли, лабораторные мыши icr, гематологические и биохимические показатели крови, преждевременное старение, Medicine
File Description: electronic resource
-
5Academic Journal
Source: Vestnik MGTU, Vol 25, Iss 3, Pp 207-218 (2022)
Subject Terms: 0301 basic medicine, cow colostrum, microcapsulation, 0303 health sciences, subchronic toxicity, псевдокипящий слой, лабораторные животные, микрокапсулирование, General Works, молозиво коров, 3. Good health, 03 medical and health sciences, субхроническая токсичность, hematological and biochemical parametersof blood, peptides, pseudo-boiling layer, гематологические и биохимические показатели крови, пептиды, laboratory animals
-
6
-
7Academic Journal
Source: Медицина в Кузбассе, Vol 23, Iss 1, Pp 28-34 (2024)
-
8Academic Journal
Subject Terms: 2. Zero hunger, Dietary supplements, chlorella, strain Chlorella vulgaris IGF No. C-111, laboratory animals, clinical and biochemical blood parameters, behavior, Биологически активные добавки, хлорелла, Chlorella vulgaris штамм № С-111, лабораторные животные, клинические и биохимические показатели крови, поведение, 6. Clean water, 3. Good health
-
9Academic Journal
Authors: Losatskaya, D. V., Ketsko, P. S., Dorokhin, K. M., Orekhov, S. D., Khlyupina, N. P., Лосацкая, Д. В., Кецко, П. С., Дорохин, К. М., Орехов, С. Д., Хлюпина, Н. П.
Source: Сборник статей
Subject Terms: CHRONIC KIDNEY DISEASE, PROGRAM HEMODIALYSIS, BIOCHEMICAL BLOOD PARAMETERS, ХРОНИЧЕСКАЯ БОЛЕЗНЬ ПОЧЕК, ПРОГРАММНЫЙ ГЕМОДИАЛИЗ, БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ
File Description: application/pdf
Relation: Актуальные вопросы современной медицинской науки и здравоохранения : Сборник статей IX Международной научно-практической конференции молодых ученых и студентов, 17-18 апреля 2024 г. Т. 1.; http://elib.usma.ru/handle/usma/21187
Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/21187
-
10Academic Journal
Authors: Савченко, Олег Андреевич, Новиков, Евгений Анатольевич, Новикова, Ирина Игоревна, Чуенко, Наталья Федоровна, Свечкарь, Полина Евгеньевна
Source: Medicine in Kuzbass; Том 23, № 1 (2024): март; 28-34 ; Медицина в Кузбассе; Том 23, № 1 (2024): март; 28-34 ; 2588-0411 ; 1819-0901
Subject Terms: production factors, noise, vibration, industrial aerosols, laboratory mice ICR, hematological and biochemical parameters of blood, premature aging, производственные факторы, шум, вибрация, промышленные аэрозоли, лабораторные мыши ICR, гематологические и биохимические показатели крови, преждевременное старение
File Description: application/pdf; text/html
Relation: http://mednauki.ru/index.php/MK/article/view/1045/1805; http://mednauki.ru/index.php/MK/article/view/1045/1829; http://mednauki.ru/index.php/MK/article/downloadSuppFile/1045/1576; http://mednauki.ru/index.php/MK/article/view/1045
Availability: http://mednauki.ru/index.php/MK/article/view/1045
-
11Academic Journal
Authors: Kuznetsova T.A., Klimovich A.A., Chingizova E.A., Polovov S.F.
Source: Marine Medicine; Vol 10, No 3 (2024); 108-116 ; Морская медицина; Vol 10, No 3 (2024); 108-116 ; 2587-7828 ; 2413-5747
Subject Terms: marine medicine, wound coverings, gels, polysaccharides of brown seaweed, toxicity, hematological and biochemical blood values, allergenic properties, морская медицина, раневые покрытия, гели, полисахариды из морских водорослей, токсичность, гематологические и биохимические показатели крови, аллергизирующие свойства
File Description: application/pdf
Relation: https://seamed.bmoc-spb.ru/jour/article/view/754/656; GUMCWH
-
12Academic Journal
Authors: A. V. Konkova, D. R. Faizulina, Yu. M. Shirina, I. A. Bogatov, А. В. Конькова, Д. Р. Файзулина, Ю. М. Ширина, И. А. Богатов
Contributors: The study was carried out within the framework of and with the financial support of the Russian Science Foundation grant № 23‐26‐00151 "Development and implementation of a high‐precision method for intravital assessment of genotoxic effects in aquaculture objects for the timely correction of their physiological state based on the use of a micronucleus test and a DNA comet test", https ://rscf.ru/project/23‐26‐00151/., Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда № 23‐26‐00151 «Разработка и внедрение высокоточного метода прижизненной оценки генотоксических эффектов у объектов аквакультуры для своевременной коррекции их физиологического состояния на основе применения микроядерного теста и теста ДНК‐комет», https://rscf.ru/project/23‐26‐00151/.
Source: South of Russia: ecology, development; Том 19, № 2 (2024); 69-81 ; Юг России: экология, развитие; Том 19, № 2 (2024); 69-81 ; 2413-0958 ; 1992-1098
Subject Terms: гематологические и биохимические показатели крови, sterlet, micronucleus, DNA comets, hematological and biochemical blood parameters, стерлядь, микроядро, ДНК‐кометы
File Description: application/pdf
Relation: https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3151/1422; Васильева Л.М. Состояние осетроводства Нижнего Поволжья // Материалы Международного научного форума «Каспий XXI века: пути устойчивого развития», Астрахань, 19–20 февраля, 2020. Астрахань: Изд-во «Астраханский университет», 2020. С. 185–188.; Загрязняющие вещества в водах Волжско-Каспийского бассейна / Отв. ред. Бреховских В.Ф., Островская Е.В. Астрахань: Издатель Сорокин Р.В., 2017. 406 с.; Петреченкова В.Г., Радованова И.Г. Загрязнение устьевой области р. Волги // Водные ресурсы. 2020. T. 47. N 2. С. 208–217. https://doi.org/10.31857/S0321059620020121; Li Y., Qu M., Sun L., Wu Y., Chen Y., Chen H., Kong Z., Liu Z. Genotoxicity study of phenol and o-cresol using the micronucleus test and the comet assay // Toxicological & environmental chemistry. 2005. V. 87. N 3. P. 365–372. https://doi.org/10.1080/02772240500043264; Vanzella T., Reis Martinez C., Colus I. Genotoxic and mutagenic effects of diesel oil water soluble fraction on a neotropical fish species // Mutation research. 2007. V. 631. N 1. P. 36–43. https://doi.org/10.1016/j.mrgentox.2007.04.004; Hussain B., Sultana T., Sultana S., Masoud M., Ahmed Z., Mahboob S. Fish eco-genotoxicology: Comet and micronucleus assay in fish erythrocytes as in situ biomarker of freshwater pollution // Saudi journal of biological sciences. 2018. V. 25. N 2. P. 393–398. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2017.11.048; Bohne J., Catomen T. Genotoxicity in gene therapy: A report on vector integration and designer nucleases // Current opinion in molecular therapeutics. 2008. V. 10. N 3. P. 214–223.; Ревазова Ю.А., Илюшина Н.А. К вопросу о негенотоксических канцерогенах // Токсикологический вестник. 2021. Т. 29. N 4. С. 51–55. https://doi.org/10.36946/0869-7922-2021-29-4-51-55; Kienzler A., Bony S., Devaux A. DNA repair activity in fish and interest in ecotoxicology. A review // Aquatic toxicology. 2013. V. 134–135. P. 47–56. https://doi.org/10.1016/j.aquatox.2013.03.005; Hoeijmakers J. DNA repair mechanisms // Maturitas. 2001. V. 38. N 1. P. 17–23. https://doi.org/10.1016/s0378-5122(00)00188-2; Крысанов Е.Ю., Орджоникидзе К.Г., Симановский С.А. Цитогенетические индикаторы при оценке состояния окружающей среды // Онтогенез. Т. 49. N 1. 2018. С. 41–46. https://doi.org/10.7868/S0475145018010056; Frenzilli G., Nigro M., Lyons B. The Comet assay for the evaluation of genotoxic impact in aquatic environments // Mutation research. 2008. V. 681. P. 80–92. DOI:10.1016/j.mrrev.2008.03.001; Bolognesi C., Hayashi M. Micronucleus assay in aquatic animals // Mutagenesis. 2011. V. 26. P. 205–213. https://doi.org/10.1093/mutage/geq073; Vasquez M. Combining the in vivo comet and micronucleus assays: a practical approach to genotoxicity testing and data interpretation // Mutagenesis. 2010. V. 25. N 2. P. 187–199. https://doi.org/10.1093/mutage/gep060; Gazo I., Franěk R., Šindelka R., Lebeda I., Shivaramu S., Pšenička M., Steinbach C. Аncient sturgeons possess effective dna repair mechanisms: influence of model genotoxicants on embryo development of sterlet, Acipenser ruthenus // International journal of molecular sciences. 2021. V. 22. N 1. P. 1–6. https://doi.org/10.3390/ijms22010006; Singh N., McCoy M., Tice R., Schneider E. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells // Experimental cell research. 1988. V. 175. N 1. P. 184–191. https://doi.org/10.1016/0014-4827(88)90265-0; Иванова Н.Т. Атлас клеток крови рыб (сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб). М.: Легкая и пищевая пром-сть, 1983. 184 с.; Оценка генотоксических свойств методом ДНК-комет in vitro: Методические рекомендации. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011. 16 с.; Olive P., Banáth J. The comet assay: a method to measure DNA damage in individual cells // Nature protocols. 2006. V. 1. N 1. P. 23–29. https://doi.org/10.1038/nprot.2006.5; Житенева Л.Д. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов-на-Дону: Ростовское книжное издательство, 1989. 109 с.; Schmidt W. The micronucleus test // Mutation Research/Environmental Mutagenesis and Related Subjects. 1975. V. 31. N 1. P. 9–15. https://doi.org/10.1016/0165-1161(75)90058-8; Mersh J., Beauvais M.N., Nagel P. Induction of micronuclei in haemocytes and gill cells of zebra mussels, Dreissena polymorpha, exposed to clastogens // Mutation Research. 1996. V. 371. P. 47–55. https://doi.org/10.1016/s0165-1218(96)90093-2; Крюков В.И. Анализ микроядер и ядерных аномалий в эритроцитах рыб, амфибий, рептилий и птиц: критерии выявления и типирования. Научно-методическое пособие. Красноярск: Научно-инновационный центр, 2023. 94 с. https://doi.org/10.58351/230110.2023.91.54.003; Bytyutskyy D., Kholodnyy V., Flajšhans M. 3-D structure, volume, and DNA content of erythrocyte nuclei of polyploid fish // Cell Biology International. 2014. V. 38. N 6. P. 708–715. https://doi.org/10.1002/cbin.10247; Лепилина И.Н., Романов А.А., Федорова Н.Н. Некоторые гематологические показатели стерляди в речной и морской периоды жизни // Вестник Астраханского государственного технического университета. 2006. N 3. С. 145–150.; Лепилина И.Н. Морфологический состав периферической крови предличинок осетровых // Вестник Оренбургского государственного университета. 2006. N 4(54). С. 101–105.; Серпунин Г.Г., Сементина Е.В., Савина Л.В. Характеристика крови стерляди разного возраста, выращиваемой в установке замкнутого водоснабжения // Осетровое хозяйство. 2009. N 3. С. 46–51.; Flajšhans M., Psenicka M., Rodina M., Tesitel J. Image cytometric measurements of diploid, triploid and tetraploid fish erythrocytes in blood smears reflect the true dimensions of live cells // Cell Biol. Intern. 2011. V. 35. P. 67–71. https://doi.org/10.1042/CBI20100198; Ballarin L., Dall'oro M., Bertotto D., Libertini A., Francescon A., Barbaro A. Haematological parameters in Umbrina cirrosa (Teleostei, Sciaenidae): a comparison between diploid and triploid specimens // Comp. Biochem. Physiol. A. 2004. V. 138. P. 45–51. https://doi.org/10.1016/j.cbpb.2004.02.019; Bickham J.W., Rowe G.T., Palatnikov G., Mekhtiev A., Mekhtiev M., Kasimov R.Y., Hauschultz D. W., Wickliffe J.K., Rogers W.J. Acute and genotoxic effects of baku harbor sediment on russian sturgeon, acipenser guildensteidti // Bulletin of environmental contamination and toxicology. 1998. V. 61. Р. 512–518. https://doi.org/10.1007/s001289900792; Ильинских Н.Н., Ильинских И.Н., Некрасов В.Н. Использование микроядерного теста в скрининге и мониторинге мутагенов // Цитология и генетика. 1988. Т. 22. N 7. С. 67–72.; Ильинских Н.Н., Новицкий В.В., Ванчугова Н.Н., Ильинских И.Н. Микроядерный анализ и цитогенетическая нестабильность. Томск: Издательство Томского Университета, 1992. 272 с.; Olive P., Banáth J. Induction and rejoining of radiationinduced DNA single-strand breaks: «tail moment» as a function of position in the cell cycle // Mutation research. 1993. V. 294. N 3. P. 275–283. https://doi.org/10.1016/0921-8777(93)90010-e; Стяжкина Е.В., Обвинцева Н.А., Шапошникова И.А., Тряпицына Г.А., Стукалов П.М., Пряхин Е.А. Оценка уровня повреждения и репарации ядерной ДНК у плотвы (Rutilus rutilus l.) из водоемов с разным уровнем радиоактивного загрязнения // Радиационная биология. Радиоэкология. 2012. Т. 52. N 2. С. 198–206.; Acolas M., Davail B., Gonzalez P., Jean S., Clérandeau C., Morin B., Gourves P., Daffe G., Labadie P., Perrault A., Lauzent M., Pierre M., Le Barh R., Baudrimont M., Peluhet L., Le Menach K., Budzinski H., Rochard E., Cachot J. Health indicators and contaminant levels of a critically endangered species in the Gironde estuary, the sturgeon // Environmental science and pollution research. 2020. V. 27. N 4. P. 3726–3745. https://doi.org/10.1007/s11356-019-05139-5; Пронина Г.И., Корягина Н.Ю. Референсные значения физиолого-иммунологических показателей гидробионтов разных видов // Вестник АГТУ. Серия Рыбное хозяйство. 2015. N 4. С. 103–108.; Войкина А.В., Сергеева С.Г., Лисовская В.В., Жарынина И.И. Некоторые биохимические показатели сыворотки крови пиленгаса Planilizahaematocheila (Temminck & Schlegel, 1845) Азовского моря в 2019 // Материалы II Международной научно-практической конференции «Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование», Керчь, 27–30 мая, 2020. Керчь: ООО «Издательство типография «Ариал», 2020. С. 274–278.; Cassel S.E., Yanong R.P.E., Pouder D.B., Rodriguez C., Mylniczenko N., Thompson P.M., Stilwell N.K., Heym K.J., Harmon T., Stacy N.I. Reference intervals for blood analytes of adult aquarium-housed russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii // Journal of aquatic animal health. 2021. V. 33. N 1. P. 33–43. https://doi.org/10.1002/aah.10116; Lall S., Hardy R., Kaushik S. Fish nutrition (fourth edition). Academic Press. 2022. P. 469–554. https://doi.org/10.1016/C2018-0-03211-9; Bavi Z., Zakeri M., Mousavi S., Yavari V. Еffects of dietary taurine on growth, body composition, blood parameters, and enzyme activities of juvenile sterlet (acipenser ruthenus) // Aquaculture nutrition. 2022. V. 2022. Article ID: 1713687. https://doi.org/10.1155/2022/1713687; Xue C., Yu G., Hirata T., Sakaguchi M., Terao J. Antioxidative Activity of Carp Blood Plasma on Lipid Peroxidation // Bioscience, biotechnology, and biochemistry. 1998. V. 62. N 2. P. 201–205. https://doi.org/10.1271/bbb.62.201; Гераскин П.П., Металлов Г.Ф., Аксенов В.П., Дубовская А.В., Файзулина Д.Р., Галактионова М.Л. Использование биологических индикаторов для оценки загрязненности морской среды в районах расположения ликвидированных поисково- разведочных скважин // Защита окружающей среды в нефтегазовом комплексе. 2009. N 9. С. 55–58.; Мирошникова Е.П., Аринжанов А.Е., Килякова Ю.В., Мирошникова М.С., Маленкина К.А., Мирошников И.С. Гематологические параметры молоди стерляди на фоне совместного использования культуры Bacillussubtilis и наночастиц сплава Cu-Zn // Животноводство и кормопроизводство. 2018. N 3. С. 100–109.; https://ecodag.elpub.ru/ugro/article/view/3151
-
13Academic Journal
Authors: N. V. Shadrin, P. S. Ostapchuk, T. A. Kuevda, A. V. Prazukin, Yu. K. Firsov, D. D. Gassiev, D. V. Zubochenko, E. V. Anufriieva, Н. В. Шадрин, П. С. Остапчук, Т. А. Куевда, А. В. Празукин, Ю. К. Фирсов, Д. Д. Гассиев, Д. В. Зубоченко, Е. В. Ануфриева
Contributors: the study was supported by the Russian Science Foundation Grant № 24-66-00001, https://rscf.ru/project/24-66-00001/, Исследование выполнено за счёт гранта Российского научного фонда № 24-66-00001, https://rscf.ru/project/24-66-00001/
Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 25, № 6 (2024); 1137-1146 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 25, № 6 (2024); 1137-1146 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Subject Terms: физиологическое состояние, biochemical parameters of blood, young rabbits, physiological state, биохимические показатели крови, молодняк кроликов
File Description: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1815/845; Liu X., Liu W., Tang Q., Liu B., Wada Y., Yang H. Global agricultural water scarcity assessment incorporating blue and green water availability under future climate change. Earth’s Future. 2022;10(4):e2021EF002567. DOI: https://doi.org/10.1029/2021EF002567; FAO. The state of world fisheries and aquaculture 2016. Contributing to food security and nutrition for all. Food and Agricultural Organization of the United Nations. Italy, Rome: 2016. 200 p. URL: https://www.fao.org/3/I5555E/i5555e.pdf; World Bank. World development report 2008. Agriculture for Development. Washington, DC, 2007. 390 p. DOI: https://doi.org/10.1596/978-0-8213-6807-7; Cordeiro M. R., Mengistu G. F., Pogue S. J., Legesse G., Gunte K. E., Taylor A. M., et al. Assessing feed security for beef production within livestock–intensive regions. Agricultural Systems. 2022;196:103348. DOI: https://doi.org/10.1016/j.agsy.2021.103348; Wu G. Nutrition and metabolism: foundations for animal growth, development, reproduction, and health. Advances in Experimental Medicine and Biology. 2022;1354:1–24. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-85686-1_1; Dawson I. K., Attwood S. J., Park S. E., Jamnadass R., Powell W., Sunderland T., et al. Contributions of biodiversity to the sustainable intensification of food production. Thematic study for The State of the World’s Biodiversity for Food and Agriculture. FAO, Rome, 2019. pp. 23–37. URL: https://openknowledge.fao.org/server/api/core/bitstreams/229138c2-f17f-43ae-a15a-1b73a45e7277/content; Prazukin A. V., Anufriieva E. V., Shadrin N. V. Is biomass of filamentous green algae Cladophora spp. (Chlorophyta, Ulvophyceae) an unlimited cheap and valuable resource for medicine and pharmacology? A review. Reviews in Aquaculture. 2020;12(4):2493–2510. DOI: https://doi.org/https://doi.org/10.1111/raq.12454; Costa M., Cardoso C., Afonso C., Bandarra N. M., Prates J. A. Current knowledge and future perspectives of the use of seaweeds for livestock production and meat quality: a systematic review. The Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. 2021;105(6):1075–1102. DOI: https://doi.org/10.1111/jpn.13509; Anufriieva E. V. How can saline and hypersaline lakes contribute to aquaculture development? A review. Journal of Oceanology and Limnology. 2018;36:2002–2009. DOI: https://doi.org/10.1007/s00343-018-7306-3; Prazukin A. V., Anufriieva E. V., Shadrin N. V. Biomass of Cladophora (Chlorophyta, Cladophorales) is a promising resource for agriculture with high benefits for economics and the environment. Aquaculture International. 2024;23(3):3637–3673. DOI: https://doi.org/10.1007/s10499-023-01342-x; Иванов C. В., Гук М. Г., Фазылова Ф. Р., Плиско Е. Ф. Взаимосвязь химического состава почвы и поверхностных вод Республики Крым и их влияние на развитие эндемичных заболеваний. Центральный научный вестник. 2018;3(10):15–19. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=34998549 EDN; Карабаева М. Э. Проблема йододефицита у животных. Эффективное животноводство. 2018;2(141):28–29. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=32735626 EDN: YUSRIV; Zubochenko D., Pashtetsky V., Ostapchuk P., Kuevda T., Zyablitskaya Ye., Makalish T., Kopylova A. Effect of antioxidants in a liposomal form containing organic iodine of the blood serum biochemical composition and the structure of muscle tissue formation of young rabbits. EE3S Web of Conferences. 2020;224:04003. DOI: https://doi.org/10.1051/e3sconf/202022404003; Mantri V. A., Gajaria T. K., Rathod S. G., Prasad K. A Mini Review on Iodinophyte Seaweed Resources of India. Proceedings of the National Academy of Sciences, India, Section B: Biological Sciences. 2024:1–12. DOI: https://doi.org/10.1007/s40011-024-01571-x; Ferraz S., Ragonezi C., Nunes N., Valente S., Carvalho M. A. Different seaweeds use for iodine deficiency overcome. Biomedical – Journal of Scientific & Technical Research. 2019;15(3):11405–11407. DOI: https://doi.org/10.26717/BJSTR.2019.15.002710; Серая О. Ю., Квартникова Е. Г. Нетрадиционные корма для кроликов и домашней птицы. Эффективное животноводство. 2022;(7(182)):108–110. DOI: https://doi.org/10.24412/cl-33489-2022-7-108-110 EDN: ZXITMD; Zamaratskaia G., Havrysh O., Korzeniowska M., Getya A. Potential and limitations of rabbit meat in maintaining food security in Ukraine. Meat science. 2023;204:109293. DOI: https://doi.org/10.1016/j.meatsci.2023.109293; Nutautaitė M., Racevičiūtė-Stupelienė A., Bliznikas S., Pockevičius A., Vilienė V. River-sourced Cladophora glomerata macroalgal biomass as a more sustainable and functional feed raw material for growing rabbits. Italian Journal of Animal Science. 2024;23(1):607–617. DOI: https://doi.org/10.1080/1828051X.2024.2342380; Юшков Б. Г., Корнева Е. А., Черешнев В. А. Понятие нормы в физиологии и патофизиологии. Физиологические константы лабораторных животных. Екатеринбург: УрО РАН, 2021. 864 с. Режим доступа: https://elib.usma.ru/handle/usma/4814; Войтенко Н. Г., Макарова М. Н., Ковалева М. А. Вариабельность биохимических показателей крови и установление референсных интервалов в доклинических исследованиях. Сообщение 2: кролики. Лабораторные животные для научных исследований. 2020;(2):3–10. DOI: https://doi.org/10.29296/2618723X-2020-02-01 EDN: SBSUST
-
14Academic Journal
Authors: A. M. Dolgorukova, M. S. Tishenkova, I. M. Gupalo, А. М. Долгорукова, М. С. Тишенкова, И. М. Гупало
Contributors: the research was carried out under the support of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation within the state assignment of the Federal Scientific Center "All-Russian Research and Technological Poultry Institute" of Russian Academy of Sciences, (theme No. 12101300013-3)., работа выполнена при поддержке Минобрнауки РФ в рамках Государственного задания ФГБНУ Федеральный научный центр «Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства» Российской академии наук (тема № 12101300013-3).
Source: Agricultural Science Euro-North-East; Том 25, № 6 (2024); 1163-1170 ; Аграрная наука Евро-Северо-Востока; Том 25, № 6 (2024); 1163-1170 ; 2500-1396 ; 2072-9081
Subject Terms: биохимические показатели крови, incubation, overheating, broilers, growth, blood biochemical parameters, инкубация, перегрев, бройлеры, рост
File Description: application/pdf
Relation: https://www.agronauka-sv.ru/jour/article/view/1818/848; Buzała M., Janicki B., Czarnecki R. Consequences of different growth rates in broiler breeder and layer hens on embryogenesis, metabolism and metabolic rate: A review. Poultry Science. 2015;94(4):728–733. DOI: https://doi.org/10.3382/ps/pev015; Druyan S. The effects of genetic line (broilers vs. layers) on embryo development. Poultry Science. 2010;89(7):1457–1467. DOI: https://doi.org/10.3382/ps.2009-00304; Zuidhof M. J., Schneider B. L., Carney V. L., Korver D. R., Robinson F. E. Growth, efficiency, and yield of commercial broilers from 1957, 1978, and 2005. Poultry Science. 2014;93(12):2970–2982. DOI: https://doi.org/10.3382/ps.2014-04291; Журавлев И. В., Долгорукова А. М., Саламатин А. В., Фисинин В. И. Некоторые особенности метаболизма аминокислот и липидов при развитии эмбрионов мясных кур в яйцах с разной величиной массы желтка. Онтогенез. 2005;36(1):3–8. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=9149033 EDN: HSFKSV; Долгорукова А. М., Зотов А. А., Гупало И. М., Мелехина Т. А., Михалева М. С., Рузакова Е. В. Совместное влияние углеводов и L-карнитина на эмбриональное развитие и постнатальную скорость роста цыплят-бройлеров. Птицеводство. 2019;(11-12):63–67. DOI: https://doi.org/10.33845/0033-3239-2019-68-11-12-63-67 EDN: PKTVBA; Moran E. T. Nutrition of the Developing Embryo and Hatchling. Poultry Science. 2007;86(5):1043–1049. DOI: https://doi.org/10.1093/ps/86.5.1043; Golzar Adabi Sh., Cooper R. G., Ceylan N., Corduk M. L-carnitine and its functional effects in poultry nutrition. World‘s Poultry Science Journal. 2011;67(2):277–296. DOI: https://doi.org/10.1017/S0043933911000304; Долгорукова А. М. Эффективность применения L-карнитина при тепловом стрессе в выводном периоде инкубации. Новое в технике и технологии переработки птицы и яиц: сб. научн. тр. Под ред. В. В. Гущина. Ржавки, 2017. Вып. 46. С. 115–121. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=32602931 EDN: VYTTNB; Долгорукова А. М. Влияние экзогенного карнитина на жизнеспособность эмбрионов и рост цыплят. Птицеводство. 2017;(1):22–25. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=28150454 EDN: XSAKVR; Tong Q., Romanini C. E., Exadaktylos V., Bahr C., Berckmans D., Eterradossi N., et al. Embryonic development and the physiological factors that coordinate hatching in domestic chickens. Poultry Science. 2013;92(3):620–628. DOI: https://doi.org/10.3382/ps.2012-02509; Citil M., Gunes V., Atakisi O., Ozcan A., Tuzcu M., Dogan A. Protective effect of L-carnitine against oxidative damage caused by experimental chronic aflatoxicosis in quail (Coturnix coturnix). Acta Veterinaria Hungarica. 2005;53(3):319–324. DOI: https://doi.org/10.1556/avet.53.2005.3.5; Surai P. F. Antioxidant Action of Carnitine: Molecular Mechanisms and Practical Applications. EC Veterinary Science. 2015:2:66–84. URL: https://www.feedfood.co.uk/download/Carnitine_2015.pdf; Molenaar R., Van den Borne J. J. G. C., Hazejager E., Kristensen N. B., Heetkamp M. J. W. 2013. High environmental temperature increases glucose requirement in the developing chicken embryo. PLoS One. 2013;8(4): e59637. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0059637; Lu J. W., Mc Murtry J. P., Coon C. N. Developmental changes of plasma insulin, glucagon, insulin-like growth factors, thyroid hormones, and glucose concentrations in chick embryos and hatched chicks. Poultry Science. 2007;86(4):673–683. DOI: https://doi.org/10.1093/ps/86.4.673; De Oliveira J. I., Uni Z., Ferket P. R. Important metabolic pathways in poultry embryos prior to hatch. World's Poultry Science Journal. 2008;64(4):488−499. DOI: https://doi.org/10.1017/S0043933908000160; Speake B. K., Murphy A. M. B., Noble R. C. Transport and transformation of yolk lipids during development of the avian embryo. Progress in Lipid Research. 1998;37(1):1–32. DOI: https://doi.org/10.1016/S0163-7827(97)00012-X
-
15Academic Journal
Authors: S. Yu. Batueva, G. P. Lamazhapova, Yu. A. Kapustina, O. A. Rodnaeva, S. A. Chukaev, С. Ю. Батуева, Г. П. Ламажапова, Ю. А. Капустина, О. А. Роднаева, С. А. Чукаев
Source: Acta Biomedica Scientifica; Том 8, № 6 (2023); 234-240 ; 2587-9596 ; 2541-9420
Subject Terms: биохимические показатели крови, paracetamol experimental hepatitis, complex pharmacotherapy regimens, paracetamol, ademethionine, blood biochemical parameters, парацетамоловый экспериментальный гепатит, комплексные схемы фармакотерапии, парацетамол, адеметионин
File Description: application/pdf
Relation: https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4511/2698; Lee WM. Acute liver failure. Semin Respir Crit Care Med. 2012; 1(33): 36-45. doi:10.1055/s-0032-1301733; Коваленко Л.А., Ипатова М.Г., Долгинов Д.М., Афуков И.И. Острое отравление парацетамолом (Ацетаминофеном) у детей. Эффективная фармакотерапия. Гастроэнтерология. 2018; 3(32): 14-18.; Ивашкин В.Т., Буеверова А.О. (ред.). Рациональная фармакотерапия в гепатологии: руководство для практикующих врачей. М.: Литтерра; 2009.; Выпова Н.Л., Фомина М.А., Нурбекова Н.Б., Тагайалиева Н.А., Юлдашев Х.А., Гафуров М.Б., и др. Влияние комплексных препаратов на основе МАСГК, карнитина и метионина на биохимические показатели крови крыс с парацетамоловым гепатитом. Universum: Химия и биология. 2022; 4(94): 34-39. doi:10.32743/UniChem.2022.94.4.13311; Оковитый С.В. Комбинированное применение гепатопротекторов. Лечащий врач. 2020; 8: 38-43. doi:10.26295/OS.2020.65.19.005; Кукина Т.П., Щербаков Д.Н., Геньш К.В., Тулышева Е.А., Сальникова О.И., Гражданников А.Е., и др. Биоактивные компоненты древесной зелени облепихи Hippophae Rhamnoides L. Химия растительного сырья. 2016; 1: 37-42.; Górnaś P, Šnē E, Siger A, Segliņa D. Sea buckthorn (Hippophae rhamnoides L.) vegetative parts as an unconventional source of lipophilic antioxidants. Saudi J Biol Sci. 2016; 23(4): 512-516. doi:10.1016/j.sjbs.2015.05.015; Николаев С.М. Фитофармакотерапия и фитофармакопрофилактика заболеваний. Улан-Удэ: Изд-во БГУ; 2012.; Николаев С.М., Мондодоев А.Г., Шантанова Л.Н. Перспективы использования многокомпонентных препаратов в фармакотерапии заболеваний. Medicus. 2015; 6(6): 139-141.; Yoshino M, Murakami K. Interaction of iron with polyphenolic compounds: Application to antioxidant characterization. Anal Biochem. 1998; 257(1): 40-44. doi:10.1006/abio.1997.2522; Шатихин А.И. Адеметионин: горизонты клинического применения. Эффективная фармакотерапия. 2011; 6: 58-64.; Friedel HA, Goa KL, Benfield P. S-adenosyl-L-methionine. A review of its pharmacological properties end therapeutic potential in liver dysfunction and affective disorders in relation to its physiological role in cell metabolism. Drugs. 1989; 38(3): 389-416. doi:10.2165/00003495-198938030-00004; Миронов А.Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. М.: Гриф и К; 2013.; Чукаев С.А., Николаев С.М., Роднаева О.А., Нагаслаева Л.А. Гепатопротекторное действие сухого экстракта облепихи крушиновидной. Сибирский медицинский журнал. 2005; 53(4): 61-64.; Венгеровский А.И., Удут В.В., Рейхарт Д.В. Методические рекомендации по изучению гепатопротективной активности лекарственных средств. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств; часть первая. М.: Гриф и К; 2012.; Prescott LF. Paracetamol: Past, present and future. Am J Ther. 2000; 7: 143-147. doi:10.1097/00045391-200007020-00011; Карпищенко А.И., Москалев А.В., Кузнецов В.В., Жерегеля С.Н. Клиническая лабораторная диагностика заболеваний печени и желчевыводящих путей: руководство для врачей. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2020.; Henderson N, Pollock K, Frewet J, Mackinnon A, Flavell R, Davis R, et al. Critical role of c-jun (NH2) terminal kinase in paracetamol-induced acute liver failure. Gut. 2007; 56(7): 982-990. doi:10.1136/gut.2006.104372; Подымова С.Д. Болезни печени: Руководство для врачей; изд. 5-е, перераб. и доп. М.: ООО «Медицинское информационное агентство»; 2018.; Giangrandi I, Dinu M, Pagliai G, Sofi F, Casini A. Efficacy of oral supplementation with silymarin and s-adenosyl-l-methionine in patients with non-alcoholic fatty liver disease – A pilot study. Altern Integr Med. 2016; 5(4): 224. doi:10.4172/2327-5162.1000224; Au AY, Hasenwinkel JM, Frondoza CG. Hepatoprotective effects of S-adenosylmethionine and silybin on canine hepatocytes in vitro. J Anim Physiol Anim Nutr. 2013; 97(2): 331-341. doi:10.1111/j.1439-0396.2012.01275.x; https://www.actabiomedica.ru/jour/article/view/4511
-
16Academic Journal
Authors: Globa, V.Yu., Samburg, Ya.Yu., Bozhok, G.A., Legach, E.I.
Source: МЕДИЦИНА НЕВІДКЛАДНИХ СТАНІВ; Том 16, № 4 (2020); 115-120
МЕДИЦИНА НЕОТЛОЖНЫХ СОСТОЯНИЙ; Том 16, № 4 (2020); 115-120
EMERGENCY MEDICINE; Том 16, № 4 (2020); 115-120Subject Terms: 03 medical and health sciences, 0302 clinical medicine, обструктивна уропатія, спінальний ганглій, мантійні гліоцити, кріоекстракт, кріоконсервування, біохімічні показники крові, obstructive uropathy, spinal ganglion, satellite cells, cryoextract, cryopreservation, biochemical parameters of the blood, обструктивная уропатия, спинальный ганглий, мантийные глиоциты, криоэкстракт, криоконсервирование, биохимические показатели крови, 3. Good health
File Description: application/pdf
-
17Academic Journal
Source: Horse breeding and equestrian sports. :30-32
Subject Terms: повышенная температура среды, нагрузка, лошади, биохимические показатели крови, ферменты
-
18Academic Journal
Subject Terms: 2. Zero hunger, mass fraction of protein, удой, физиологическая норма, массовая доля жира, milk productivity, биохимические показатели крови, массовая доля белка, milk yield, mass fraction of fat, physiological norm, blood biochemical parameters, молочная продуктивность, уровень, level
-
19Academic Journal
Source: Современная наука и инновации, Vol 0, Iss 1, Pp 127-129 (2022)
Subject Terms: депрессивные расстройства, биохимические показатели крови, осложнения психофармакотерапии, depressive disorders, blood biochemistry, complications pharmacotherapy, International relations, JZ2-6530
File Description: electronic resource
-
20Academic Journal
Source: Horse breeding and equestrian sports. :7-10
Subject Terms: blood biochemical parameters, estradiol, stallions, testosterone, эстрадиол, тестостерон, дигидротестостерон, жеребцы, биохимические показатели крови, dihydrotestosterone