Etiological structure and profile of antimicrobial resistance of pathogens in bacteremia in COVID-19 patients ; Этиологическая структура и профиль антибиотикорезистентности возбудителей при бактериемии у больных новой коронавирусной инфекцией

Συγγραφείς: D. A. Gusev, V. B. Musatov, E. V. Karnaukhov, K. V. Zhdanov, S. A. Gordeeva, A. V. Pavlov, Д. А. Гусев, В. Б. Мусатов, Е. В. Карнаухов, К. В. Жданов, С. А. Гордеева, А. В. Павлов

Πηγή: Journal Infectology; Том 16, № 4 (2024); 32-39 ; Журнал инфектологии; Том 16, № 4 (2024); 32-39 ; 2072-6732 ; undefined

Θεματικοί όροι: летальность, COVID­19, bacteremia, etiology, resistant microorganisms, mortality rate, бактериемия, этиология, резистентность к антимикробным препаратам

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1707/1167; Goto M, Al-Hasan MN. Overall burden of bloodstream infection and nosocomial bloodstream infection in North America and Europe. Clin Microbiol Infect 2013;19:501–9; Лобзин, Ю.В. Руководство по инфекционным болезням. В 2 кн. / Ю.В. Лобзин, К.В. Жданов. – СПб.: Фолиант, 2011. – Кн. 1. – 4-е изд., доп. и перераб. – 664 с.; Susana P Costa, Carla M Carvalho, Burden of bacterial bloodstream infections and recent advances for diagnosis, Pathogens and Disease, Volume 80, Issue 1, 2022, ftac027, https://doi.org/10.1093/femspd/ftac027; Rudd KE, Johnson SC, Agesa KM et al. Global, regional, and national sepsis incidence and mortality, 1990-2017: analysis for the global burden of disease study. Lancet 2020;395:200–11.; Пшеничная Н.Ю., COVID-19 – новая глобальная угроза человечеству / Н.Ю. Пшеничная [и др.] // Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. – 2020. – № 10(1). – С. 6–13. – DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2020.10.1.6-13; Bradley J. Langford, Miranda So, Sumit Raybardhan, Valerie Leung, Duncan Westwood, Derek R. MacFadden, Jean-Paul R. Soucy, Nick Daneman, Bacterial co-infection and secondary infection in patients with COVID-19: a living rapid review and meta-analysis, Clinical Microbiology and Infection, Volume 26, Issue 12, 2020,1622-1629, https://doi.org/10.1016/j.cmi.2020.07.016; Акимкин В.Г. Пандемия COVID-19: новый виток нарастания антибиотикорезистентности / В.Г. Акимкин [и др.] // Инфекционные болезни. – 2021. – № 19 (3). – С. 133–138. – DOI:10.20953/1729-9225-2021-3-133-138; Langford BJ, So M, Simeonova M, Leung V, Lo J, Kan T, et al. Antimicrobial resistance in patients with COVID-19: a systematic review and meta-analysis. SSRN J [Internet] 2022 [cited 2022 May 12]; Available from: https://www.ssrn.com/abstract-4099404.; Перфильева, Д.Ю. Антибиотикорезистентность микроорганизмов у пациентов с внебольничной пневмонией, ассоциированной с новой коронавирусной инфекцией (COVID-19), в многопрофильном стационаре города Томска / Д.Ю. Перфильева [и др.] // Тихоокеанский медицинский журнал. – 2023. – С. 48–51. – DOI:10.34215/1609-11752023-3-48-51; Белобородов, В.Б. Методические рекомендации Российской некоммерческой общественной организации «Ассоциация анестезиологов-реаниматологов», Межрегиональной общественной организации «Альянс клинических химиотерапевтов и микробиологов», Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии (МАКМАХ), общественной организации«Российский Сепсис Форум» «Диагностика и антимикробная терапия инфекций, вызванных полирезистентными микроорганизмами» / В.Б. Белобородов [и др.] // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2020. – Т. 17, № 1. – С. 52–83. – http://doi.org/10.21292/2078-5658-2020-17-152-83.; Etiology and antimicrobial resistance of secondary bacterial infections in patients hospitalized with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective analysis. Jie Li, Junwei Wang, Yi Yang, Peishan Cai, Jingchao Cao, Xuefeng Cai and Yu Zhang Antimicrobial Resistance and Infection Control (2020) 9:153 https://doi.org/10.1186/s13756-020-00819-1; Bahceci I, Yildiz I E, Duran O F, et al. (February 18, 2022) Secondary Bacterial Infection Rates Among Patients With COVID-19. Cureus 14(2): e22363. DOI:10.7759/cureus.22363; Ramos R., de la Villa S., GarcíaRamos S., Padilla B., GarcíaOlivares P., Piñero P., et al. COVID19 associated infections in the ICU setting: a retrospective analysis in a tertiarycare hospital. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2021. DOI:10.1016/j.EIMC.2021.10.014; Kubin CJ, McConville TH, Dietz D, Zucker J, May M, Nelson B, Istorico E, Bartram L, Small-Saunders J, Sobieszczyk ME, Gomez-Simmonds A, Uhlemann AC. Characterization of Bacterial and Fungal Infections in Hospitalized Patients With Coronavirus Disease 2019 and Factors Associated With Health Care-Associated Infections. Open Forum Infect Dis. 2021 May 5;8(6):ofab201. doi:10.1093/ofid/ofab201. PMID: 34099978; PMCID: PMC8135866.; Giannitsioti, E.; Louka, C.; Mamali, V.; Kousouli, E.; Velentza, L.; Papadouli, V.; Loizos, G.; Mavroudis, P.; Kranidiotis, G.; Rekleiti, N.; et al. Bloodstream Infections in a COVID-19 Non-ICU Department: Microbial Epidemiology, Resistance Profiles and Comparative Analysis of Risk Factors and Patients’ Outcome. Microorganisms 2022, 10, 1314.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1707

Διαθεσιμότητα: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/1707
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2024-16-4-32-39

Анализ структуры бактериемий и чувствительности к антибиотикам микроорганизмов, выделенных в отделениях реанимации и интенсивной терапии в скоропомощном стационаре в период с 2003 по 2021 г.: ретроспективное наблюдательное исследование

Συγγραφείς: А. О. Bykov, M. P. Suvorova, D. N. Protsenko, Sergey V. Yakovlev, O. V. Ignatenko, E. N. Burmistrova, I. N. Sychev, N. P. Krotenko

Πηγή: Вестник интенсивной терапии, Iss 2 (2023)

Θεματικοί όροι: Acinetobacter baumannii, Klebsiella pneumoniae, RC86-88.9, бактериемия, антимикробная резистентность, Medical emergencies. Critical care. Intensive care. First aid, карбапенемазы, антибиотики

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/6bb48c2cfb8f437e84cd2716b712720d

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ И ДИАГНОСТИКИ КАМПИЛОБАКТЕРИОЗА У ВЗРОСЛЫХ

Θεματικοί όροι: acute intestinal infections, ПЦР, complications, кампилобактериоз, diagnosis, острые кишечные инфекции, диагностика, Campylobacter, антибиотикорезистентность, serodiagnostics, antibiotic resistance, взрослые, PCR, бактериемия, adults, bacteremia, культуральное исследование, серодиагностика, осложнения, culture examination, gastroenteritis, гастроэнтерит, campylobacteriosis

КЛИНИКО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ИНФЕКЦИЙ КРОВОТОКА, ВЫЗВАННЫХ КАРБАПЕНЕМРЕЗИСТЕНТНЫМИ ENTEROBACTERIACEAE (CRE)

Θεματικοί όροι: Epidemiology, Эпидемиология, Антимикробная резистентность, CRE, Bacteremia, Карбапенемазы, Bloodstream infection, Грам-отрицательные бактерии, Antimicrobial resistance, Carbapenemases, Бактериемия, Факторы риска, Инфекция кровотока, KPC, Carbapenem-resistant Enterobacteriaceae, Gram-negative bacteria, Clinical outcomes, Sepsis, Nosocomial infections, Risk factors, Сепсис, Карбапенемрезистентные Enterobacteriaceae, Нозокомиальные инфекции, OXA-48, Клинические исходы

МЕНИНГОКОККОВАЯ ИНФЕКЦИЯ: ЭТИОЛОГИЯ, ПАТОГЕНЕЗ И КЛИНИЧЕСКИЕ ПРОЯВЛЕНИЯ

Θεματικοί όροι: Meningococcal disease, сепсис, microbiology, инфекционные болезни, meningitis, infectious diseases, immunity, микробиология, менингит, иммунитет, sepsis, Менингококковая инфекция, Neisseria meningitides, бактериемия, bacteremia, Neisseria meningitis

Bacterial complications after liver transplantation. Promising directions for further research ; Бактериальные осложнения после трансплантации печени. Перспективы дальнейших исследований

Συγγραφείς: U. R. Salimov, A. E. Shcherba, O. O. Rummo, У. Р. Салимов, А. Е. Щерба, О. О. Руммо

Πηγή: Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation; Том 15, № 2 (2023); 238-250 ; Трансплантология; Том 15, № 2 (2023); 238-250 ; 2542-0909 ; 2074-0506

Θεματικοί όροι: бактериемия, bacterial complications, pneumonia, urogenital infection, bacteriobilia, bacteremia, бактериальные инфекции, пневмония, урогенитальная инфекция, бактериобилия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/777/781; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/777/794; Руммо О.О. Трансплантация печени при синдроме портальной гипертензии. Анналы хирургической гепатологии. 2015;20(1):59–65. https://doi.org/10.16931/1995-5464.2015159-65; Щерба А.Е., Коротков С.В., Минов А.Ф., Слободин Ю.В., Савчук М.М., Дзядзько А.М. и др. Влияние севофлюрана и ацетилцистеина на ишемически-реперфузионное повреждение печени донора со смертью мозга. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2013;15(1):39–44. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2013-1-39-44; Ait Faqih S, Guebre-Egziabher F. Microbiote en transplantation d’organe solide. Le Courrier de la Transplantation – 2016;XVI – n 2 – avril-mai-juin.; Cherqui D, Ciria R, Kwon CHD, Kim KH, Broering D, Wakabayashi G, et al. expert consensus guidelines on minimally invasive donor hepatectomy for living donor liver transplantation from innovation to implementation: a joint initiative from the International Laparoscopic Liver Society (ILLS) and the Asian-Pacific Hepato-Pancreato-Biliary Association (A-PHPBA). Ann Surg. 2021;273(1):96–108. PMID: 33332874 https://doi.org/10.1097/SLA.0000000000004475; Møller DL, Sørensen SS, Wareham NE, Rezahosseini O, Knudsen AD, Knudsen JD, et al. Bacterial and fungal bloodstream infections in pediatric liver and kidney transplant recipients. BMC Infect Dis. 2021;21(1):541. PMID: 34103013 https://doi.org/10.1186/s12879-021-06224-2; Idossa DW, Simonetto DA. Infectious complications and malignancies arising after liver transplantation. Anesthesiol Clin. 2017;35(3):381–393. PMID: 28784215 https://doi.org/10.1016/j.anclin.2017.04.002; Savier E, Lim C, Rayar M, Orlando F, Boudjema K, Mohkam K, et al. Favorable outcomes of liver transplantation from controlled circulatory death donors using normothermic regional perfusion compared to brain death donors. Transplantation. 2020;104(9):1943–1951. PMID: 32639402 https://doi.org/10.1097/TP.0000000000003372; Adam R, Karam V, Cailliez V, Trunečka P, Samuel D, Tisone G, et al. Improved survival in liver transplant patients receiving prolonged-release tacrolimus-based immunosuppression in the European Liver Transplant Registry (ELTR): an extension study. Transplantation. 2019;103(9):1844–1862. PMID: 31343568 https://doi.org/10.1097/TP.0000000000002700; Zhang W, Wang W, Kang M, Wu S, Liu Y, Liao Q, et al. Bacterial and fungal infections after liver transplantation: microbial epidemiology, risk factors for infection and death with infection. Ann Transplant. 2020;25:e921591. PMID: 32424111 https://doi.org/10.12659/AOT.921591; Albillos A, de Gottardi A, Rescigno M. The gut-liver axis in liver disease: pathophysiological basis for therapy. J Hepatol. 2019;72(3):558–577. PMID: 31622696 https://doi.org/10.1016/j.jhep.2019.10.003; Ancona G, Alagna L, Lombardi A, Palomba E, Castelli V, Renisi G, et al. The interplay between gut microbiota and the immune system in liver transplant recipients and its role in infections. Infect Immun. 2021;89(11):e0037621. PMID: 34460287 https://doi.org/10.1128/IAI.00376-21; Kim SI. Bacterial infection after liver transplantation. World J Gastroenterol. 2014;20(20):6211–6220. PMID: 24876741 https://doi.org/10.3748/wjg.v20.i20.6211; Singh N, Paterson DL, Chang FY, Gayowski T, Squier C, Wagener MM, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: the other emerging resistant gram-positive coccus among liver transplant recipients. Clin Infect Dis. 2000;30(2):322–327. PMID: 10671336 https://doi.org/10.1086/313658; Lin M, Mah A, Wright A. Infectious complications of liver transplantation. AME Med J. 2018;3(1):5. https://doi.org/10.21037/amj.2017.12.10; Shepherd RW, Turmelle Y, Nadler M, Lowell JA, Narkewicz MR, McDiarmid SV, et al. Risk factors for rejection and infection in pediatric liver transplantation. Am J Transplant. 2008;8(2):396-403. PMID: 18162090 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2007.02068.x; Lee SO, Kang SH, Abdel-Massih RC, Brown RA, Razonable RR. Spectrum of early-onset and late-onset bacteremias after liver transplantation: implications for management. Liver Transpl. 2011;17(6):733–741. PMID: 21412966 https://doi.org/10.1002/lt.22296; Хлебников Е.П., Кубышкин В.А., Чжао А.В. Инфекционные осложнения у пациентов, подвергшихся пересадке печени. Трансплантология. 2011;(2–3):57–62. https://doi.org/10.23873/2074-0506-2011-0-2-3-57-62; Romero FA, Razonable RR. Infections in liver transplant recipients. World J Hepatol. 2011;3(4):83–92. PMID: 21603030 https://doi.org/10.4254/wjh.v3.i4.83; Hernandez MDP, Martin P, Simkins J. Infectious complications after liver transplantation. Gastroenterol Hepatol (NY). 2015;11(11):741–753. PMID: 27134589; Nemes B, Gelley F, Dabasi E, Gámán G, Fehérvári I, Görög D, et al. Bakteriális infekciók májátültetés után [Bacterial infection after orthotopic liver transplantation]. Orv Hetil. 2015;156(34):1366-1382. PMID: 26278482 https://doi.org/10.1556/650.2015.30204; Оспанова Г.К. Бактериальные и грибковые осложнения в раннем периоде после трансплантации печени: дисс. . канд. мед. наук. Москва; 2018. URL: https://search.rsl.ru/ru/record/01008587843 [Дата обращения 3 апреля 2023 г.].; Kriss M, Verna EC, Rosen HR, Lozupone CA. Functional microbiomics in liver transplantation: identifying novel targets for improving allograft outcomes. Transplantation. 2019;103(4):668–678. PMID: 30507741 https://doi.org/10.1097/TP.0000000000002568; Dohna Schwake C, Guiddir T, Cuzon G, Benissa MR, Dubois C, Miatello J, et al. Bicêtre Pediatric Liver Transplant Group. Bacterial infections in children after liver transplantation: a single-center surveillance study of 345 consecutive transplantations. Transpl Infect Dis. 2020;22(1):e13208. PMID: 31693773 https://doi.org/10.1111/tid.13208; Singh N, Limaye AP. Infections in solid-organ transplant recipients. In: Bennet JE, Dolin R, Blaser MJ (eds.) Mandell, Douglas, and Bennett's Principles and Practice of Infectious Diseases. Saunders; 2015. Vol. 2. p. 3440–3452. https://doi.org/10.1016/B978-1-4557-4801-3.00313-1; Fishman JA. Infection in solid-organ transplant recipients. N Engl J Med. 2007;357(25):2601–2614. PMID: 18094380 https://doi.org/10.1056/NEJMra064928; Jiang JW, Ren ZG, Lu HF, Zhang H, Li A, Cui GY, et al. Optimal immunosuppressor induces stable gut microbiota after liver transplantation. World J Gastroenterol. 2018;24(34):3871–3883. PMID: 30228781 https://doi.org/10.3748/wjg.v24.i34.3871; Ison MG, Nalesnik MA. An update on donor-derived disease transmission in organ transplantation. Am J Transplant. 2011;11(6):1123–1130. PMID: 21443676 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2011.03493.x; Wade JJ, Rolando N, Hayllar K, Philpott-Howard J, Casewell MW, Williams R. Bacterial and fungal infections after liver transplantation: an analysis of 284 patients. Hepatology. 1995;21(5):1328–1336. PMID: 7737639 https://doi.org/10.1002/hep.1840210517; Garbino J, Romand JA, Pittet D, Giostra E, Mentha G, Suter P. Infection and rejection in liver transplant patients: a 10-year Swiss single-centre experience. Swiss Med Wkly. 2005;135(39–40):587–593. PMID: 16333770 https://doi.org/10.4414/smw.2005.10399; Florescu DF, McCartney AM, Qiu F, Langnas AN, Botha J, Mercer DF, et al. Staphylococcus aureus infections after liver transplantation. Infection. 2012;40(3):263–269. PMID: 22124952 https://doi.org/10.1007/s15010-011-0224-3; Ichai P. Infections après transplantation hépatique. La Lettre de l’Infectiologue. 2012;XXVII(4):155–159.; van Hoek B, de Rooij BJ, Verspaget HW. Risk factors for infection after liver transplantation. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2012;26(1):61–72. PMID: 22482526 https://doi.org/10.1016/j.bpg.2012.01.004; Angarita SAK, Russell TA, Kaldas FM. Pneumonia after liver transplantation. Curr Opin Organ Transplant. 2017;22(4):328–335. PMID: 28542110 https://doi.org/10.1097/MOT.0000000000000427; Weiss E, Dahmani S, Bert F, Janny S, Sommacale D, Dondero F, et al. Earlyonset pneumonia after liver transplantation: microbiological findings and therapeutic consequences. Liver Transpl. 2010;16(10):1178–1185. PMID: 20879016 https://doi.org/10.1002/lt.22132; Ikegami T, Shirabe K, Matono R, Yoshizumi T, Soejima Y, Uchiyama H, et al. Etiologies, risk factors, and outcomes of bacterial pneumonia after living donor liver transplantation. Liver Transpl. 2012;18(9):1060–1068. PMID: 22674905 https://doi.org/10.1002/lt.23483; Camus C. Complications infectieuses chez le transplanté hépatique. Réanimation. 2014;23:317–326 https://doi.org/10.1007/s13546-014-0888-7; Xia D, Yan LN, Xu L, Li B, Zeng Y, Wen TF, et al. Postoperative severe pneumonia in adult liver transplant recipients. Transplant Proc. 2006;38(9):2974–2978. PMID: 17112878 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2006.08.184; Bozbas SS, Eyuboglu FO, Ozturk Ergur F, Gullu Arslan N, Sevmis S, Karakayali H, et al. Pulmonary complications and mortality after liver transplant. Exp Clin Transplant. 2008;6(4):264–270. PMID: 19338487; Chen C, Yang D, Gao S, Zhang Y, Chen L, Wang B, et al. Development and performance assessment of novel machine learning models to predict pneumonia after liver transplantation. Respir Res. 2021;22(1):94. PMID: 33789673 https://doi.org/10.1186/s12931-021-01690-3; Zhang ML, Xu J, Zhang W, Liu XY, Zhang M, Wang WL, et al. Microbial epidemiology and risk factors of infections in recipients after DCD liver transplantation. Int J Clin Pract. 2016;70(Suppl 185):17–21. PMID: 27198000 https://doi.org/10.1111/ijcp.12812; Zhong L, Men TY, Li H, Peng ZH, Gu Y, Ding X, et al. Multidrug-resistant gram-negative bacterial infections after liver transplantation – spectrum and risk factors. J Infect. 2012;64(3):299–310. PMID: 22198738 https://doi.org/10.1016/j.jinf.2011.12.005; Siniscalchi A, Aurini L, Benini B, Gamberini L, Nava S, Viale P, et al. Ventilator associated pneumonia following liver transplantation: etiology, risk factors and outcome. World J Transplant. 2016;6(2):389–395. PMID: 27358784 https://doi.org/10.5500/wjt.v6.i2.389; Pedersen MR, Choi M, Brink JA, Seetharam AB. Pretransplant factors and associations with postoperative respiratory failure, ICU length of stay, and shortterm survival after liver transplantation in a high MELD population. J Transplant. 2016;2016:6787854. PMID: 27980860 https://doi.org/10.1155/2016/6787854; Petrowsky H, Rana A, Kaldas FM, Sharma A, Hong JC, Agopian VG, et al. Liver transplantation in highest acuity recipients: identifying factors to avoid futility. Ann Surg. 2014;259(6):1186–1194. PMID: 24263317 https://doi.org/10.1097/SLA.0000000000000265; Vidal E, Cervera C, Cordero E, Armiñanzas C, Carratalá J, Cisneros JM, et al. Study Group of Infection in Transplant Recipients (GESITRA) of the Spanish Society of Infectious Diseases, Clinical Microbiology (SEIMC); Spanish Network for Research in Infectious Diseases (REIPI). Management of urinary tract infection in solid organ transplant recipients: Consensus statement of the Group for the Study of Infection in Transplant Recipients (GESITRA) of the Spanish Society of Infectious Diseases and Clinical Microbiology (SEIMC) and the Spanish Network for Research in Infectious Diseases (REIPI). Enferm Infecc Microbiol Clin. 2015;33(10):679. e1–679.e21. PMID: 25976754 https://doi.org/10.1016/j.eimc.2015.03.024; Vidal E, Torre-Cisneros J, Blanes M, Montejo M, Cervera C, Aguado JM, et al. Bacterial urinary tract infection after solid organ transplantation in the RESITRA cohort. Transpl Infect Dis. 2012;14(6):595–603. PMID: 22650416 https://doi.org/10.1111/j.1399-3062.2012.00744.x; San Juan R, Aguado JM, Lumbreras C, Díaz-Pedroche C, López-Medrano F, Lizasoain M, et al. Incidence, clinical characteristics and risk factors of late infection in solid organ transplant recipients: data from the RESITRA study group. Am J Transplant. 2007;7(4):964–971. PMID: 17391136 https://doi.org/10.1111/j.1600-6143.2006.01694.x; Pouladfar G, Jafarpour Z, Firoozifar M, Malek Hosseini SA, Rasekh R, Khosravifard L, et al. Urinary tract infections among hospitalized adults in the early post-liver transplant period: prevalence, risk factors, causative agents, and microbial susceptibility. Exp Clin Transplant. 2017;15(Suppl 1):190–193. PMID: 28260465 https://doi.org/10.6002/ect.mesot2016.P68; Men TY, Wang JN, Li H, Gu Y, Xing TH, Peng ZH, et al. Prevalence of multidrug-resistant gram-negative bacilli producing extended-spectrum β-lactamases (ESBLs) and ESBL genes in solid organ transplant recipients. Transpl Infect Dis. 2013;15(1):14–21. PMID: 23013385 https://doi.org/10.1111/tid.12001; Tandon P, Delisle A, Topal JE, Garcia-Tsao G. High prevalence of antibiotic-resistant bacterial infections among patients with cirrhosis at a US liver center. Clin Gastroenterol Hepatol. 2012;10(11):1291–1298. PMID: 22902776 https://doi.org/10.1016/j.cgh.2012.08.017; Wagener MM, Yu VL. Bacteremia in transplant recipients: a prospective study of demographics, etiologic agents, risk factors, and outcomes. Am J Infect Control. 1992;20(5):239–247. PMID: 1443756 https://doi.org/10.1016/s0196-6553(05)80197-x; Sganga G, Spanu T, Bianco G, Fiori B, Nure E, Pepe G, et al. Bacterial bloodstream infections in liver transplantation: etiologic agents and antimicrobial susceptibility profiles. Transplant Proc. 2012;44(7):1973–1976. PMID: 22974885 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2012.06.055; Bert F, Larroque B, Paugam-Burtz C, Janny S, Durand F, Dondero F, et al. Microbial epidemiology and outcome of bloodstream infections in liver transplant recipients: an analysis of 259 episodes. Liver Transpl. 2010;16(3):393–401. PMID: 20209598 https://doi.org/10.1002/lt.21991; Linares L, García-Goez JF, Cervera C, Almela M, Sanclemente G, Cofán F, et al. Early bacteremia after solid organ transplantation. Transplant Proc. 2009;41(6):2262-2264. PMID: 19715892 https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2009.06.079; Shi SH, Kong HS, Xu J, Zhang WJ, Jia CK, Wang WL, et al. Multidrug resistant gram-negative bacilli as predominant bacteremic pathogens in liver transplant recipients. Transpl Infect Dis. 2009;11(5):405–412. PMID: 19638006 https://doi.org/10.1111/j.1399-3062.2009.00421.x; Hashimoto M, Sugawara Y, Tamura S, Kaneko J, Matsui Y, Moriya K, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus infection after living-donor liver transplantation in adults. Transpl Infect Dis. 2008;10(2):110–116. PMID: 17605737 https://doi.org/10.1111/j.1399-3062.2007.00253.x; Yao S, Yagi S, Nagao M, Uozumi R, Iida T, Iwamura S, et al. Etiologies, risk factors, and outcomes of bacterial cholangitis after living donor liver transplantation. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2018;37(10):1973–1982. PMID: 30039291 https://doi.org/10.1007/s10096-018-3333-4; Sung JY, Costerton JW, Shaffer EA. Defense system in the biliary tract against bacterial infection. Dig Dis Sci. 1992;37(5):689–696. PMID: 1563308 https://doi.org/10.1007/BF01296423; D'Amico F, Bertacco A, Finotti M, Di Renzo C, Rodriguez-Davalos MI, Gondolesi GE, et al. Bile microbiota in liver transplantation: proof of concept using gene amplification in a heterogeneous clinical scenario. Front Surg. 2021;8:621525. PMID: 33796547 https://doi.org/10.3389/fsurg.2021.621525 eCollection 2021.; Csendes A, Burdiles P, Maluenda F, Diaz JC, Csendes P, Mitru N. Simultaneous bacteriologic assessment of bile from gallbladder and common bile duct in control subjects and patients with gallstones and common duct stones. Arch Surg. 1996;131(4):389–394. PMID: 8615724 https://doi.org/10.1001/archsurg.1996.01430160047008; Merritt ME, Donaldson JR. Effect of bile salts on the DNA and membrane integrity of enteric bacteria. J Med Microbiol. 2009;58(Pt12):1533–1541. PMID: 19762477 https://doi.org/10.1099/jmm.0.014092-0; Салимов У.Р., Стома И.О., Щерба А.Е., Федорук А.М., Ковалев А.А., Руммо О.О. «Микробиом» осложнений после трансплантации печени. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2022;24(2):8–22. https://doi.org/10.15825/1995-1191-2022-2-8-22; Salimov UR, Stoma IO, Kovalev AA, Hubanova TN, Fedoruk AM, Shcherba AE, et al. Gut microbiota might influence the risk of rejection after liver transplantation. J Liver Transplant. 2023; 9:100140. https://doi.org/10.1016/j.liver.2023.100140; Kim YJ, Kim SI, Wie SH, Kim YR, Hur JA, Choi JY, et al. Infectious complications in living-donor liver transplant recipients: a 9-year single-center experience. Transpl Infect Dis. 2008;10(5):316–324. PMID: 18507752 https://doi.org/10.1111/j.1399-3062.2008.00315.x; Li C, Wen TF, Mi K, Wang C, Yan LN, Li B. Analysis of infections in the first 3-month after living donor liver transplantation. World J Gastroenterol. 2012;18(16):1975–1980. PMID: 22563180 https://doi.org/10.3748/wjg.v18.i16.1975; https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/777

Διαθεσιμότητα: https://www.jtransplantologiya.ru/jour/article/view/777
https://doi.org/10.23873/2074-0506-2023-15-2-238-250

Cytokine expression profile of native heart valves obtained from patients with infective endocarditis ; Оценка локального профиля цитокинов, экспрессируемых нативными клапанами сердца, полученными от пациентов с инфекционным эндокардитом

Συγγραφείς: A. V. Sinitskaya, M. Yu. Sinitsky, Ya. V. Kazachek, A. V. Evtushenko, M. V. Khutornaya, M. A. Asanov, A. O. Poddubnyak, A. V. Ponasenko, А. В. Синицкая, М. Ю. Синицкий, Я. В. Казачек, А. В. Евтушенко, М. В. Хуторная, М. А. Асанов, А. О. Поддубняк, А. В. Понасенко

Συνεισφορές: Исследование выполнено при поддержке комплексной программы фундаментальных научных исследований СО РАН в рамках фундаментальной темы НИИ КПССЗ № 0419-2022-0001.

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 6 (2024); 1223-1234 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 6 (2024); 1223-1234 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: цитокины, native heart valves, pathogenic bacteremia, inflammation, gene expression, proteomic profile, нативные клапаны сердца, патогенная бактериемия, воспаление, генная экспрессия

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2869/1835; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12566; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12567; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12568; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12569; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12570; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12571; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12572; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12573; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12574; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12717; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12718; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12719; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12720; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12721; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12722; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/12723; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2869/13012; Завырылина И.Н., Барбараш Н.А., Начева Л.В. Паразитарные поражения сердца // Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний, 2012. № 2. С.60-63.; Синицкий М.Ю., Асанов М.А., Тхоренко Б.А., Одаренко Ю.Н., Понасенко А.В. Микрофлора периферической крови пациентов с инфекционным эндокардитом // Клиническая лабораторная диагностика, 2018. Т. 63, № 10. С. 636-640.; Appay V., Rowland-Jones S.L. RANTES: a versatile and controversial chemokine. Trends Immunol., 2001, Vol. 22, no. 2, pp. 83-87.; Araújo I.R., Ferrari T.C., Teixeira-Carvalho A., Campi-Azevedo A.C., Rodrigues L.V., Guimarães Júnior M.H., Barros T.L., Gelape C.L., Sousa G.R., Nunes M.C. Cytokine signature in infective endocarditis. PLoS One, 2015, Vol. 10, no. 7, e0133631. doi:10.1371/journal.pone.0133631.; Arend W.P. The balance between IL-1 and IL-1Ra in disease. Cytokine Growth Factor Rev., 2002, Vol. 13, no. 4-5, pp. 323-340.; Baddour L.M., Wilson W.R., Bayer A.S., Fowler V.G., Tleyjeh I.M., Rybak M.J., Barsic B., Lockhart P.B., Gewitz M.H., Levison M.E., Bolger A.F., Steckelberg J.M., Baltimore R.S., Fink A.M., O’Gara P., Taubert K.A. Infective endocarditis in adults: diagnosis, antimicrobial therapy, and management of complications: a scientific statement for healthcare professionals from the american heart association. Circulation, 2015, Vol. 132, no. 15, pp. 1435-1486.; Bone R.C. Modulators of coagulation. A critical appraisal of their role in sepsis. Arch. Intern. Med., 1992, Vol. 152, no. 7, pp. 1381-1389.; Bustamante J., Arévalo A., Tamayo E., Sarria C., Aguilar-Blanco E.M., Heredia M., Almansa R., Rico L., Iglesias V., Bermejo-Martin J.F. Cytokine profiles linked to fatal outcome in infective prosthetic valve endocarditis. APMIS, 2014, Vol. 122, no. 6, pp. 526-529.; Bustin S.A., Benes V., Garson J.A., Hellemans J., Huggett J., Kubista M., Mueller R., Nolan T., Pfaffl M.W., Shipley G.L., Vandesompele J., Wittwer C.T. The MIQE Guidelines: minimum information for publication of quantitative real-time PCR experiments. Clin. Chem., 2009, Vol. 55, no. 4, pp. 611-622.; Buyukasýk N.S., Ileri M., Alper A., Senen K., Atak R., Hisar I., Yetkin E., Turhan H., Demirkan D. Increased blood coagulation and platelet activation in patients with infective endocarditis and embolic events. Clin. Cardiol., 2004, Vol. 27, no. 3, pp. 154-158.; Clark B.C., Krishnan A., McCarter R., Scheel J., Sable C., Beaton A. Using a low-risk population to estimate the specificity of the World Heart Federation criteria for the diagnosis of rheumatic heart disease. J. Am. Soc. Echocardiogr., 2016, Vol. 29, no. 3, pp. 253-258.; Diab M., Tasar R., Sponholz C., Lehmann T., Pletz M.W., Bauer M., Brunkhorst F.M., Doenst T. Changes in inflammatory and vasoactive mediator profiles during valvular surgery with or without infective endocarditis: A case control pilot study. PLoS One, 2020, Vol. 15, no. 2, e0228286. doi:10.1371/journal.pone.0228286.; Gewitz M.H., Baltimore R.S., Tani L.Y., Sable C.A., Shulman S.T., Carapetis J., Remenyi B., Taubert K.A., Bolger A.F., Beerman L., Mayosi B.M., Beaton A., Pandian N.G., Kaplan E.L. American Heart Association Committee on Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease of the Council on Cardiovascular Disease in the Young, Revision of the Jones criteria for the diagnosis of acute rheumatic fever in the era of doppler echocardiography: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation, 2015, Vol. 131, no. 20, pp. 1806-1818.; Golias C., Batistatou A., Bablekos G., Charalabopoulos A., Peschos D., Mitsopoulos P., Charalabopoulos K. Physiology and pathophysiology of selectins, integrins, and IgSF cell adhesion molecules focusing on inflammation. A paradigm model on infectious endocarditis. Cell Commun. Adhes., 2011, Vol. 18, no. 3, pp. 19-32.; Grammer J.B., Eichinger W.B., Bleiziffer S., Benz M.R., Lange R., Bauernschmitt R. Valvular chondromodulin-1 expression is downregulated in a rabbit model of infective endocarditis. J. Heart Valve Dis., 2007, Vol. 16, no. 6, pp. 623-630.; Habib G., Lancellotti P., Antunes M.J., Bongiorni M.G., Casalta J.P., Del Zotti F., Dulgheru R., El Khoury G., Erba P.A., Iung B., Miro J.M., Mulder B.J., Plonska-Gosciniak E., Price S., Roos-Hesselink J., Snygg-Martin U., Thuny F., Tornos Mas P., Vilacosta I., Zamorano J.L. ESC Scientific Document Group, 2015 ESC Guidelines for the management of infective endocarditis: the Task Force for the Management of Infective Endocarditis of the European Society of Cardiology (ESC). Endorsed by: European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS), the European Association of Nuclear Medicine (EANM). Eur. Heart J., 2015, Vol. 36, no. 44, pp. 3075-3128.; Korbecki J., Barczak K., Gutowska I., Chlubek D., Baranowska-Bosiacka I. CXCL1: gene, promoter, regulation of expression, mRNA stability, regulation of activity in the intercellular space. Int. J. Mol. Sci., 2022, Vol. 23, no. 2, 792. doi:10.3390/ijms23020792.; Maghazachi A.A., Al-Aoukaty A., Schall T.J. CC chemokines induce the generation of killer cells from CD56+ cells. Eur. J. Immunol., 1996, Vol. 26, no. 2, pp. 315-319.; Malik M., Chen Y.Y., Kienzle M.F., Tomkowicz B.E., Collman R.G., Ptasznik A. Monocyte migration and LFA-1-mediated attachment to brain microvascular endothelia is regulated by SDF-1 alpha through Lyn kinase. J. Immunol., 2008, Vol. 181, no. 7, pp. 4632-4637.; Marques R.E., Guabiraba R., Russo R.C., Teixeira M.M. Targeting CCL5 in inflammation. Expert Opin. Ther. Targets, 2013, Vol. 17, no. 12, pp. 1439-1460.; Mathy N.L., Scheuer W., Lanzendörfer M., Honold K., Ambrosius D., Norley S., Kurth R. 2000 Interleukin-16 stimulates the expression and production of pro-inflammatory cytokines by human monocytes. Immunology, 2000, Vol. 100, no. 1, pp. 63-69.; Maurer M., von Stebut E. Macrophage inflammatory protein-1. Int. J. Biochem. Cell Biol., 2004, Vol. 36, no. 10, pp. 1882-1886.; Menten P., Wuyts A., Van Damme J. Macrophage inflammatory protein-1. Cytokine Growth Factor Rev., 2002, Vol. 13, no. 6, pp. 455-481.; Perrier S., Darakhshan F., Hajduch E. IL-1 receptor antagonist in metabolic diseases: Dr Jekyll or Mr Hyde? FEBS Lett., 2006, Vol. 580, no. 27, pp. 6289-6294.; Prendergast B.D., Tornos P. Surgery for infective endocarditis: who and when? Circulation, 2010, Vol. 121, no. 9, pp. 1141-1152.; Ris T., Teixeira-Carvalho A., Coelho R.M.P., Brandao-de-Resende C., Gomes M.S., Amaral L.R., Pinto P.H.O.M., Santos L.J.S., Salles J.T., Roos-Hesselink J., Verkaik N., Ferrari T.C.A., Nunes M.C.P. Inflammatory biomarkers in infective endocarditis: machine learning to predict mortality. Clin. Exp. Immunol., 2019, Vol. 196, no. 3, pp. 374-382.; Sillen M., Declerck P.J. Targeting PAI-1 in cardiovascular disease: structural insights into PAI-1 functionality and inhibition. Front. Cardiovasc. Med., 2020, Vol. 7, 622473. doi:10.3389/fcvm.2020.622473.; Souza V.H., Visentainer J.E.L., Zacarias J.M.V., Alencar J.B., Tsuneto P.Y., Silva C.O., Salmeron S., Colli C.M., Sell A.M. Association of IL16 polymorphisms with periodontitis in Brazilians: A case-control study. PLoS One, 2020, Vol. 15, no. 9, e0239101. doi:10.1371/journal.pone.0239101.; Steckelberg J.M., Murphy J.G., Ballard D., Bailey K., Tajik A.J., Taliercio C.P., Giuliani E.R., Wilson W.R. Emboli in infective endocarditis: the prognostic value of echocardiography. Ann. Intern. Med., 1991, vol.114, no. 8, pp. 635-640.; Stewart A.G., Beart P.M. Inflammation: maladies, models, mechanisms and molecules. Br. J. Pharmacol., 2016, Vol. 173, no. 4, pp. 631-634.; van Tilborg A.A., Sweep F.C., Geurts-Moespot A.J., Wetzels A.M., de Waal R.M., Westphal J.R., Massuger L.F. Plasminogen activators are involved in angiostatin generation in vivo in benign and malignant ovarian tumor cyst fluids. Int. J. Oncol., 2014, Vol. 44, no. 4, pp. 1394-1400.; Vandesompele J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., van Roy N., De Paepe A., Speleman F. Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes. Genome Biol., 2002, Vol. 3, no. 7, research0034.1. doi:10.1186/gb-2002-3-7-research0034.; Veltrop M.H., Thompson J., Beekhuizen H. Monocytes augment bacterial species- and strain-dependent induction of tissue factor activity in bacterium-infected human vascular endothelial cells. Infect. Immun., 2011, Vol. 69, no. 5, pp. 2797-2807.; Weinstock M., Grimm I., Dreier J., Knabbe C., Vollmer T. Genetic variants in genes of the inflammatory response in association with infective endocarditis. PLoS One, 2014, Vol. 9, no. 10, e110151. doi:10.1371/journal.pone.0110151.; Wilson C., Purcell C., Seaton A., Oladipo O., Maxwell P.J., O’Sullivan J.M., Wilson R.H., Johnston P.G., Waugh D.J. Chemotherapy-induced CXC-chemokine/CXC-chemokine receptor signaling in metastatic prostate cancer cells confers resistance to oxaliplatin through potentiation of nuclear factor-kappaB transcription and evasion of apoptosis. J. Pharmacol. Exp. Ther., 2008, Vol. 327, no. 3, pp. 746-759.; Yamauchi R., Tanaka M., Kume N., Minami M., Kawamoto T., Togi K., Shimaoka T., Takahashi S., Yamaguchi J., Nishina T., Kitaichi M., Komeda M., Manabe T., Yonehara S., Kita T. Upregulation of SR-PSOX/ CXCL16 and recruitment of CD8+ T cells in cardiac valves during inflammatory valvular heart disease. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2004, Vol. 24, no. 2, pp. 282-287.; Yeh C.Y., Shun C.T., Kuo Y.M., Jung C.J., Hsieh S.C., Chiu Y.L., Chen J.W., Hsu R.B., Yang C.J., Chia J.S. Activated human valvular interstitial cells sustain interleukin-17 production to recruit neutrophils in infective endocarditis. Infect. Immun., 2015, Vol. 83, no. 6, pp. 2202-2212.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2869

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2869
https://doi.org/10.15789/1563-0625-CEP-2869

Intense bacteremia in sepsis in an HIV-infected patient, detected by microscopy of a peripheral blood smear ; Интенсивная бактериемия при сепсисе у ВИЧ-инфицированной пациентки, выявленная при микроскопии мазка периферической крови

Συγγραφείς: D. Yu. Sosnin, V. V. Bazarnyj, A. P. Shhjokotova, N. I. Nasibullina, Д. Ю. Соснин, В. В. Базарный, А. П. Щёкотова, Н. И. Насибуллина

Πηγή: HIV Infection and Immunosuppressive Disorders; Том 15, № 1 (2023); 67-70 ; ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии; Том 15, № 1 (2023); 67-70 ; 2077-9828 ; 10.22328/2077-9828-2023-15-1

Θεματικοί όροι: мазок крови, AIDS, sepsis, bacteremia, general blood test, blood smear, СПИД, сепсис, бактериемия, общий анализ крови

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/777/520; Bone R.C., Balk R.A., Cerra F.B., Dellinger R.P., Fein A.M., Knaus W.A., Schein R.M., Sibbald W.J. Definitions for sepsis and organ failure and guidelines for the use of innovative therapies in sepsis. The ACCP/SCCM Consensus Conference Committee. American College of Chest Physicians/Society of Critical Care Medicine // Chest. 1992. Vol. 101, No.6. P. 1644–55. doi:10.1378/chest.101.6.1644.; Singer M., Deutschman C S., Seymour C.W., Shankar-Hari M., Annane D., Bauer M., Bellomo R., Bernard G.R., Chiche J.D., Coopersmith C.M., Hotchkiss R.S., Levy M.M., Marshall J.C., Martin G.S., Opal S.M., Rubenfeld G.D., van der Poll T., Vincent J.L., Angus D.C. The Third International Consensus Definitions for Sepsis and Septic Shock (Sepsis-3) // JAMA. 2016. Vol. 315. No. 8. P. 801–810. doi:10.1001/jama.2016.0287.; Zahid M.F., Bains A.P.S. Rapidly fatal Klebsiella pneumoniae sepsis in a patient with pyruvate kinase deficiency and asplenia // Blood. 2017. Vol. 130. No. 26. P. 2906. doi:10.1182/blood-2017-08-803841.; Souza T.H., Nadal J.A., Lopes C.E., Nogueira R.J.N. Association of meningitis and pericarditis in invasive pneumococcal disease: a rare case // Rev. Paul. Pediatr. 2019. Vol. 37, No. 1. P. 126–129. doi:10.1590/1984–0462/;2019;37;1;00009.; Dybowska M., Błasińska K., Gątarek J., Klatt M., Augustynowicz-Kopeć E., Tomkowski W., Szturmowicz M. Tuberculous Pericarditis-Own Experiences and Recent Recommendations // Diagnostics (Basel). 2022. Vol. 12, No. 3. P. 619. doi:10.3390/diagnostics12030619.; Пиотрович П.А., Макарова Т.Е., Савосина Г.В., Заварцева Л.И., Головкова Н.Ф., Горбачева Е.В., Троян О.В., Адмидина О.В., Царненко О.С., Отводникова Н.И., Константинов С.В., Горбатко Т.А., Митяева И.Е. Поражение нервной системы при стрептококковой инфекции // Здравоохранение Дальнего Востока. 2009. №. 1. C. 80–84.; Луговская С.А., Почтарь М.Г. Гематологический атлас. Москва — Тверь: Триада, 2011. 368 с.; Томилов А.Ф., Базарный В.В. Цитологическая диагностика болезней системы крови. Екатеринбург: Изд-во УГМУ, 2017. 124 c.; Кривицкая Л.В., Красавцев Е.Л. Поздний дебют сепсиса, вызванного Streptococcus agalactiae у ребенка // Проблемы здоровья и экологии, 2018, Т. 58, № 4, С. 82–85. doi:10.51523/2708-6011.20118-15-4-16.; Каргальцева Н.М., Борисова О.Ю., Кочеровец И.И. Микроскопия мазка крови как способ быстрой диагностики фунгемии у стационарных терапевтических больных // Успехи медицинской микологии. 2016. Т. 15. С. 68–69.; Меньшиков В.В., Делекторская Л.Н., Золотницкая Р.П. и др. Лабораторные методы исследования в клинике: справочник / под ред. В. В. Меньшикова. М.: Медицина, 1987, 368 с.

Διαθεσιμότητα: https://hiv.bmoc-spb.ru/jour/article/view/777
https://doi.org/10.22328/2077-9828-2023-15-1-67-70

Molecular Genetic Typing of Enterobacteriaceae Producing an Extended Spectrum Beta-Lactamase in Patients with Hemoblastoses

Συγγραφείς: A. G. Korobova, S. A. Khrulnova, V. A. Okhmat, G. A. Klyasova

Πηγή: Антибиотики и Химиотерапия, Vol 62, Iss 5-6, Pp 26-34 (2020)

Θεματικοί όροι: enterobacteriaceae, блрс, ctx-m, бактериемия, колонизация, генотипирование, enterobacteriaceae, esbl, ctx-m, bacteremia, colonization, genotyping, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, RC254-282

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: https://www.antibiotics-chemotherapy.ru/jour/article/view/26; https://doaj.org/toc/0235-2990

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/da611b8066c043b4a310934af53df187

PATHOGENESIS OF VISCERAL FUNCTIONS DISORDER IN DIFFUSE PERITONITIS

Συγγραφείς: V. N. Chernov, B. M. Belik, S. Yu. Efanov

Πηγή: Вестник хирургии имени И.И. Грекова, Vol 173, Iss 4, Pp 35-38 (2018)

Θεματικοί όροι: распространённый перитонит, транслокация микрофлоры, портальная и системная бактериемия, эндотоксикоз, висцеральные нарушения, diffuse peritonitis, translocation of gut organisms, portal and systemic bacteremia, endotoxicosis, visceral disorders, Surgery, RD1-811

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: https://www.vestnik-grekova.ru/jour/article/view/550; https://doaj.org/toc/0042-4625

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/389207b947044efe9c5c4799fcd9cca9

Modern aspects of prevention of bacteremia in patients with chronic rheumatoid heart disease in dental practice ; Современные аспекты профилактики бактериемии у пациентов с хронической ревматической болезнью сердца в стоматологической практике ; Сучасні аспекти профілактики бактеріємії у пацієнтів із хронічною ревматичною хворобою серця в стоматологічній практиці

Συγγραφείς: Myhal, O. O., Ohonovsky, R. Z.

Πηγή: Clinical Dentistry; No. 4 (2018); 12-18 ; Клінічна стоматологія; № 4 (2018); 12-18 ; 2415-3036 ; 2311-9624 ; 10.11603/2311-9624.2018.4

Θεματικοί όροι: chronic rheumatic heart disease, transient bacteremia, dental pathology, specific and non-specific prophylaxis, хроническая ревматическая болезнь сердца, транзиторная бактериемия, стоматологическая патология, специфическая и неспецифическая профилактика, хронічна ревматична хвороба серця, транзиторна бактеріємія, стоматологічна патологія, специфічна та неспецифічна профілактика

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/kl-stomat/article/view/9747/9397

Διαθεσιμότητα: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/kl-stomat/article/view/9747
https://doi.org/10.11603/2311-9624.2018.4.9747

Occult bacteremia as a manifestation of invasive pneumococcal infection ; Оккультная бактериемия как одно из проявлений инвазивной пневмококковой инфекции

Συγγραφείς: Kh. S. Khaertynov, V. A. Anokhin, S. V. Khaliullina, P. N. Emelyanova, T. G. Stepanova, А. Kh. Bulatova, Х. С. Хаертынов, В. А. Анохин, С. В. Халиуллина, П. Н. Емельянова, Т. Г. Степанова, А. Х. Булатова

Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 65, № 5 (2020); 215-218 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 65, № 5 (2020); 215-218 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2020-65-5

Θεματικοί όροι: антибиотикотерапия, bacteremia, pneumococcal infection, foci of infection, antibiotic therapy, бактериемия, пневмококковая инфекция, очаги инфекции

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1262/1007; Filho E.M., de Carvalho W.B. Current management of occult bacteremia in infants. J Pediatr (Rio J) 2015; 91(6): S61—S66. DOI:10.1016/j.jped.2015.06.004; Arora R., Mahajan P. Evaluation of child with fever without source: review of literature and update. Pediatr Clin North Am 2013; 60: 1049-1062. DOI:10.1016/j.pcl.2013.06.009; Baraff L.J, Bass J.W., Fleisher G.R., Klein J.O., McCracken G.H., Powell K.R. et al. Practice Guideline for the Management of Infants and Children 0 to 36 Months of Age With Fever Without Source. Ann Emerg Med 1993; 22(7): 1198— 1210. DOI:10.1016/s0196-0644(05)80991-6; Jaffe D.M., Tanz, R.R., Davis A.T., Henretig F., Fleisher G. Antibiotic administration to treat possible occult bacteremia in febrile children. N Engl J Med 1987; 317: 1175-1180.; Bass J.W., Steele R.W., Wittler R.R., Weisse M.E., Bell V, Heisser A.H. et al. Antimicrobial treatment of occult bacteremia: a multi-center cooperative study. Pediatr Infect Dis J 1993; 12: 466-473.; Gomez B., Hernandez-Bou S., Garcia-Garcia J.J., Mintegi S. Bacteremia in previously healthy children in emergency departments: clinical and microbiological characteristics and outcome. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2015; 34: 453-460. DOI:10.1007/s10096-014-2247-z; Баранов А.А., Таточенко В.К. Клинические рекомендации. Педиатрия (Пневмония у детей). М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005; 28.; Van de Beek D., Cabellos C., Dzupova O., Esposito S, Klein M., Kloek A.T. et al. ESCMID guideline: diagnosis and treatment of acute bacterial meningitis. Clinical Microbiology and Infection. 2016; 22(S3): S37-S62. DOI:10.1016/j.cmi.2016.01.007; Brouwer M.C., Tunkel A.R., van de Beek D. Epidemiology, Diagnosis, and Antimicrobial Treatment of Acute Bacterial Meningitis. Clin Microbiol Rev 2010; 23(3): 467-492. DOI:10.1128/CMR.00070-09; Arditi M., Mason E.O.Jr., Bradley J.S., Tan T.Q., Bar-son W.J., Schutze G.E. et al. Three-year multicenter surveillance of pneumococcal meningitis in children: clinical characteristics, and outcome related to penicillin susceptibility and dexamethasone use. Pediatrics 1998; 102(5): 1087-1097. DOI:10.1542/peds.102.5.1087; Polk D.B., Steele R.W. Bacterial meningitis presenting with normal cerebrospinal fluid. Pediatr Infect Dis J 1987; 6: 1040-1042.; Domingo P., Mancebo J., Blanch L., Coll P., Net A., Nol-la J. Bacterial meningitis with “normal” cerebrospinal fluid in adults: A report on five cases. Scand J Infect Dis 1990; 22: 115-116.; Hase R., Hosokawa N., Yaegashi M., Muranaka K. Bacterial meningitis in the absence of cerebrospinal fluid pleocytosis: A case report and review of the literature. Can J Infect Dis Med Microbiol 2014; 25(5): 249-251. DOI:10.1155/2014/568169; Lukes S.A., Posner J.B., Nielsen S., Armstrong D. Bacterial infections of the CNS in neutropenic patients. Neurol 1984; 34: 269-275.; Лекманов А.У., Миронов П.И., Руднов В.А., Кулабухов В.В. Современные дефиниции и принципы интенсивной терапии сепсиса у детей. Вестник анестезиологии и реаниматологии 2018; 15(4): 61-69. DOI 10.21292/2078-5658-2018-15-4-61-69; Knapp K.M., Schutze G.E. The Approach to Treatment of Invasive Pneumococcal Disease in the 1990s. J Ark Med Soc 1997;94(6):263-266.; American academy of pediatrics. Therapy for Children With Invasive Pneumococcal Infections. American Academy of Pediatrics Committee on Infectious Diseases. Pediatrics 1997; 99(2): 289-299.

Διαθεσιμότητα: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/1262
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2020-65-5-215-218

ВОЗМОЖНОСТИ И ПРОБЛЕМЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ВЕРИФИКАЦИИ ДИАГНОЗА ПРИ ИНВАЗИВНЫХ ИНФЕКЦИЯХ У ДЕТЕЙ В НЕОНАТАЛЬНОМ ПЕРИОДЕ

Θεματικοί όροι: sepsis, newborns, fungemia, сепсис, маркеры резистентности, intensive care units, бактериемия, resistance markers, новорожденные, bacteremia, отделения интенсивной терапии, фунгемия

Особенности микробиологической диагностики бруцеллеза на эпидемиологически благополучной территории ; Features microbiological diagnosis of brucellosis in epidemiologically safe territory

Συγγραφείς: Boronina, L. G., Боронина, Л. Г.

Πηγή: Вестник Уральского государственного медицинского университета

Θεματικοί όροι: BRUCELLOSIS, MICROBIOLOGICAL DIAGNOSTICS, BACTEREMIA, БРУЦЕЛЛЕЗ, МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА, БАКТЕРИЕМИЯ

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: Вестник Уральского государственного медицинского университета. 2019. №1; http://elib.usma.ru/handle/usma/1305

Διαθεσιμότητα: http://elib.usma.ru/handle/usma/1305

ETIOLOGICAL VERIFICATION OF TUBERCULOSIS IN CASE OF SYSTEM INFLAMMATORY SYNDROME IN HIV PATIENTS

Συγγραφείς: K. B. Vladimirov, G. Yu. Marfina, E. V. Karaseva, B. D. Damadanov, V. Yu. Zhuravlev

Πηγή: Туберкулез и болезни лёгких, Vol 97, Iss 3, Pp 26-30 (2019)

Θεματικοί όροι: туберкулез, тб/вич-и, микобактерии, пцр, бактериемия, Diseases of the respiratory system, RC705-779

Relation: https://www.tibl-journal.com/jour/article/view/1248; https://doaj.org/toc/2075-1230; https://doaj.org/toc/2542-1506; https://doaj.org/article/be84626ded0e4c4c92d43dd631cd4f2e

Διαθεσιμότητα: https://doi.org/10.21292/2075-1230-2019-97-3-26-30
https://doaj.org/article/be84626ded0e4c4c92d43dd631cd4f2e

Таксономическая структура и резистентность к антибиотикам возбудителей инфекций кровотока у онкогематологических больных

Πηγή: Клиническая онкогематология, Vol 8, Iss 2 (2015)

Θεματικοί όροι: рак, бактериемия, Neoplasms. Tumors. Oncology. Including cancer and carcinogens, инфекции кровотока, антимикробная резистентность, инфекции, онкогематологические заболевания, RC254-282

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/0ef1aa9633234dacb2eec44d051fae7b

DETECTION OF MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS IN BLOOD FOR DIAGNOSIS OF GENERALISED TUBERCULOSIS IN HIV-POSITIVE PATIENTS ; ВЫЯВЛЕНИЕ МИКОБАКТЕРИЙ ТУБЕРКУЛЕЗА В КРОВИ КАК МЕТОД ДИАГНОСТИКИ ГЕНЕРАЛ ИЗОВАННОГО ТУБЕРКУЛЕЗА У ПАЦИЕНТОВ С ВИЧ-ИНФЕКЦИЕЙ

Συγγραφείς: V. N. Zimina, O. E. Mikova, T. A. Varetskaya, D. A. Oborin, A. G. Zemskov, S. Yu. Degtyareva, В. Н. Зимина, О. Е. Микова, Т. А. Варецкая, Д. А. Оборин, А. Г. Земсков, С. Ю. Дегтярева

Πηγή: Journal Infectology; Том 9, № 1 (2017); 62-66 ; Журнал инфектологии; Том 9, № 1 (2017); 62-66 ; 2072-6732 ; 10.22625/2072-6732-2017-9-1

Θεματικοί όροι: инфекция кровотока, tuberculosis, mycobacterial bacteremia, tuberculous sepsis, MBT-bacteremia, blood culture, bloodstream infection, туберкулез, микобактериальная бактериемия, туберкулезный сепсис, МБТ-бактериемия, гемокультура

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/563/516; Clough MC. The cultivation of tubercle bacilli from the circulating blood in miliary tuberculosis. Am. Rev. Tuberc. 1917;1:598-621.; Negre L, Bretey J. Role of Mycobacterium tuberculosis not completely developed in experimental tuberculous bactaremia in laboratory animals. C R Hebd. Seances Acad. Sci. 1954;238(1):171-172.; Eng RH, Bishburg E, Smith SM, Mangia A. Diagnosis of Mycobacterium bacteremia in patients with acquired immunodeficiency syndrome by direct examination of blood films. Journal of clinical microbiology. 1989;27(4):768-769.; Jacob ST, Pavlinac PB, Nakiyingi L, Banura P, Baeten JM, Morgan K, Magaret A, Manabe Y, Reynolds SJ, Liles WC, Wald A, Joloba ML, Mayanja-Kizza H, Scheld WM. Mycobacterium tuberculosis bacteremia in a cohort of hiv-infected patients hospitalized with severe sepsis in Uganda–high frequency, low clinical suspicion [corrected] and derivation of a clinical prediction score. PLoS One. 2013;8(8):e7030510.; Varma JK, McCarthy KD, Tasaneeyapan T, Monkongdee P, Kimerling ME, Buntheoun E, Sculier D, Keo C, Phanuphak P, Teeratakulpisarn N, Udomsantisuk N, Dung NH, Lan NT, Yen NT, Cain KP. Bloodstream Infections among HIV-Infected Outpatients, Southeast Asia. Emerging Infectious Diseases. 2010;16(10):1569-1575.; Motyl, MR., Saltzman B, Levi MH, McKitrick JC, Friedland GH, Klein RS. The recovery of Mycobacterium avium complex and Mycobacterium tuberculosis from blood specimens of AIDS patients using the nonradiometric Bactec NR 660 medium. American Journal of Clinical Pathology. 1990;94(1):84-86.; Archibald LK, den Dulk MO, Pallangyo KJ, Reller LB. Fatal Mycobacterium tuberculosis bloodstream infections in febrile hospitalized adults in Dar es Salaam, Tanzania. Clinical Infectious Diseases. 1998; 26(2):290-296.; https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/563

Διαθεσιμότητα: https://journal.niidi.ru/jofin/article/view/563
https://doi.org/10.22625/2072-6732-2017-9-1-62-66

Characteristics of gram-negative microflora isolated from the blood of cardiac patients over 5 years

Συγγραφείς: Л. М. Самойлова, А. Н. Шилова, Ю. Н. Горбатых, С. Н. Прохоров, О. В. Струнин, М. А. Новикова

Πηγή: Патология кровообращения и кардиохирургия, Vol 18, Iss 2, Pp 49-54 (2015)

Θεματικοί όροι: БАКТЕРИЕМИЯ, GRAM-NEGATIVE PATHOGENS, RESISTANCE, Surgery, RD1-811

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journalmeshalkin.ru/index.php/heartjournal/article/view/67; https://doaj.org/toc/1681-3472; https://doaj.org/toc/2500-3119

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/d9906d606513461caf3fe4d743b5e950

CLINICAL VALUE OF BACTEREMIA IN PATIENTS AFTER COLOPROCTOLOGICAL OPERATIONS ; КЛИНИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ БАКТЕРИЕМИИ У ПАЦИЕНТОВ ПОСЛЕ КОЛОПРОКТОЛОГИЧЕСКИХ ОПЕРАЦИЙ

Συγγραφείς: L. L. Plotkin, M. P. Zlakazov, A. V. Krasnopeev, Л. Л. Плоткин, М. П. Злаказов, А. В. Краснопеев

Πηγή: Messenger of ANESTHESIOLOGY AND RESUSCITATION; Том 12, № 1 (2015); 40-45 ; Вестник анестезиологии и реаниматологии; Том 12, № 1 (2015); 40-45 ; 2541-8653 ; 2078-5658

Θεματικοί όροι: sepsis, bacteremia, бактериемия, сепсис, coloproctological operations

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/8/81; Ветшева М. С., Свиридова С. П., Ларионова В. Б. Национальное руководство по интенсивной терапии. - М.: ГЭОТАР - Медиа. - 2009. - Т. 2. - С. 67-68.; Исхаков Х. И., Вахидов Х. М. Модификация методов посевов гемокультур // Лабораторное дело. - 1996. - № 5. - С. 31-32.; Нехаев И. В. Сепсис в торакоабдоминальной онкохирургии. - «АБВ-пресс». - 2011. - 208 с.; Петухов И. Н. Сопроводительная терапия в онкологии. - 2005. - № 2. - С. 2-8.; Сергиенко В. И., Бондарева И. Б. Математическая статистика в клинических исследованиях. - М.: ГЭОТАР Медицина, 2000. - 256 с.; Charlson M. E., Pompei P., Ales K. L. et al. A new method of classifying prognostic comorbidity in longitudinal studies: development and validation // J. Chron. Dis. - 1987. - Vol. 40. - P. 373-383.; Knaus W. A., Sun V., Nyston P. O. et al. Evaluation of definition for sepsis // Chest. - 1992. - Vol. 101. - P. 1656-1662.; Levy M. M., Fink M. P., Marschal J. C. et al. 2001 SCCM /ESICM /ACCP /ATS/SIS International Sepsis Divisions Conference // Crit. Care Med. - 2003. - Vol. 31, № 4. - P. 1250-1256.; Tayek C. J., Tayek J. A. Diabetes patients and non-diabetic patients intensive care unit and hospital mortality risks associated with sepsis // World J. Diabetes. - 2012. - Vol. 15, № 3. - P. 29-34.; Vincent J-L., de Mendonsa A., Cantraine T. et al. Use SOFA scores to asses the incichece of organ dysfunction failure in intensive care units: results of a multicenter, prospective study. Working group on’ sepsis problems of the European Society of Intensive Care // Crit. Care Med. - 1998. - Vol. 26. - P. 1793-1800.

Διαθεσιμότητα: https://www.vair-journal.com/jour/article/view/8
https://doi.org/10.21292/2078-5658-2015-12-1-40-45

Clinical observation of bacteraemia with a probiotic containing Enterococcus faecium M74 ; Клиническое наблюдение бактериемии на фоне приема пробиотика, содержащего Enterococcus faecium М74

Συγγραφείς: R. N. Mamleev, V. A. Kochetova, Р. Н. Мамлеев, В. А. Кочетова

Πηγή: Rossiyskiy Vestnik Perinatologii i Pediatrii (Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics); Том 62, № 5 (2017); 198-202 ; Российский вестник перинатологии и педиатрии; Том 62, № 5 (2017); 198-202 ; 2500-2228 ; 1027-4065 ; 10.21508/1027-4065-2017-62-5

Θεματικοί όροι: Enterococcus faecium М74, newborns, bacteriemia, intestinal microbiota, colonization of the intestine, probiotics, Enterococcus faecium M74, children, новорожденные, бактериемия, кишечная микробиота, колонизация кишечника, пробиотики

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/577/564; Shreiner A.B., Kao J.Y., Young V.B. The gut microbiome in health and in disease. Curr Opin Gastroenterol 2015; 31 (1): 69–75. DOI:10.1097/MOG.0000000000000139; Захарова И.Н., Дмитриева Ю.А. Кишечная микробиота и применение пробиотиков с позиции доказательной медицины. Consilium Medicum. Педиатрия (Прил.) 2016; 4: 24– 28. [Zaharova I.N., Dmitrieva Yu.A. Intestinal microbiota and the use of probiotics from the perspective of evidence-based medicine. Consilium Medicum. Pediatrija (Suppl.) 2016; 4: 24– 28. (in Russ)]; Шабалов Н.П., Маркова И.В. Антибиотики и витамины в лечении новорожденных. СПб: СОТИС 1993; 255. [Shabalov N.P., Markova I.V. Antibiotics and vitamins in the treatment of newborns. SPb: SOTIS 1993; 255. (in Russ)]; Гончар Н.В., Алехина Л.А., Суворов А.Н. Пробиотические штаммы энтерококков как средства терапии и профилактики заболеваний кишечника у детей (обзор литературы). Экспер и клин гастроэнтерол 2013; 1: 74–78. [Gonchar N.V., Alehina L.A., Suvorov A.N. Probiotic strains of enterococci as a means of therapy and prevention of bowel diseases in children ( literature review). Ehksper I klin gastroehnterol 2013; 1: 74–78. (in Russ)]; Klein G. Taxonomy, ecology and antibiotic resistance of enterococci from food and the gastro-intestinal tract. Int J Food Microbiol 2003; 88: 123–131.; Creti R., Imperi M., Bertuccini L., Fabretti F., Orefici G., Di Rosa R., Baldassarri L. Survey for virulence among Enterococcus faecalis isolated from different sources. J Med Microbiol 2004; 53: 13–20. DOI:10.1099/jmm.0.05353-0; Бондаренко В.М., Суворов А.Н. Симбиотические энтерококки и проблемы энтерококковой оппортунистической инфекции. http://medi.ru/doc/1951126.htm (ссылка активна на 30.07.2017). [Bondarenko V.M., Suvorov A.N. Symbiotic Enterococci and Problems of Enterococcal Opportunistic Infection. http://medi.ru/doc/1951126.htm ( the link is active on 30.07.2017). (in Russ)]; Горобченко В., Купряшина И., Миллер Ю. Клиническая и бактериологическая эффективность пробиотика Линекс у недоношенных детей. Врач 2008; 5: 70. [Gorobchenko V., Kuprjashina I., Miller Yu. Clinical and bacteriological efficacy of the probiotic Linex in premature infants. Vrach 2008; 5: 70. (in Russ)]; Отраслевой стандарт «Протокол ведения больных. Дисбактериоз кишечника» (ОСТ 91500.11.0004–2003, Приказ Министерства здравоохранения РФ № 231 от 09.06.2003). http://docs.cntd.ru/document/1200119089 (ссылка активна на 30.07.2017). [Branch Standard “Protocol of patients management. Dysbacteriosis of the intestine” (OST 91500.11.0004- 2003, Order of the Ministry of Health of the Russian Federation No. 231 of 09.06.2003). http://docs.cntd.ru/document/1200119089 (the link is active on 30.07.2017). (in Russ)]; Byappanahallia M.N., Neversa M.B., Korajkicb А., Staleyc Z.R., Harwoodc V.J. Enterococci in the Environment. Microbiol Mol Biol Rev 2012; 76 (4): 685–706. DOI:10.1128/MMBR.00023-12; Румянцев А.Г., Картелишев А.В., Смирнова Н.С. Краткий справочник врача-педиатра участкового. АБВ-пресс 2017; 280. [Rumyantsev A.G., Cartelishev A.V., Smirnova N.S. A brief reference book of the pediatrician. ABC-Press 2017; 280. (in Russ)]; Стратегия и тактика рационального применения антимикробных средств в амбулаторной практике. Евразийские клинические рекомендации. Под ред. С.В. Яковлева, С.В. Сидоренко, В.В. Рафальского, Т.В. Спичак. М: Издательство «Пре100 Принт» 2016; 57. [Strategy and tactics of rational use of antimicrobial agents in outpatient practice. Eurasian clinical recommendations. S.V. Yakovlev, S.V. Sidorenko, V.V. Rafal’skij, T.V. Spichak ( eds). M: Publishing house “ Pre100 Print” 2016; 57 (in Russ)]; Franz C.M., Stiles M.E., Schleifer K.H., Holzapfel W.H. Enterococci in foods – a conundrum for food safety. Int J Food Microbiol 2003; 88 (2–3): 105–122. https://doi.org/10.1016/S0168-1605(03)00174-0; Franz C.M., Huch M., Abriouel H., Holzapfel W., Gálvez A. Enterococci as probiotics and their implications in food safety. Int J Food Microbiol 2011; 151 (2): 125–140. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2011.08.014

Διαθεσιμότητα: https://www.ped-perinatology.ru/jour/article/view/577
https://doi.org/10.21508/1027-4065-2017-62-5-198-202