Αποτελέσματα αναζήτησης - "атопическая бронхиальная астма"

1

Academic Journal

Association of NADPH-Oxidase 2 (NOX2) with the Development of Atopic Asthma ; Ассоциация NADPH–оксидазы 2 (NOX2) с развитием атопической бронхиальной астмы

Συγγραφείς: Ibragimov, B.R., Demertsidis, A.S., Reshetnikova, I.D., Skibo, Yu.V., Abramov, S.N., Abramova, Z.I.

Πηγή: Biomedical Chemistry: Research and Methods; Vol. 8 No. 3 (2025); e00272 ; Biomedical Chemistry: Research and Methods; Том 8 № 3 (2025); e00272 ; 2618-7531

Θεματικοί όροι: NADPH–oxidase 2 (NOX2), LC3–associated phagocytosis, monocytes, atopic bronchial asthma, NOX2, NADPH–оксидаза 2, LС3–ассоциированный фагоцитоз, моноциты, атопическая бронхиальная астма

Περιγραφή αρχείου: application/pdf; text/html

Relation: http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/272/660; http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/272/661; http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/272/662

Διαθεσιμότητα: http://www.bmc-rm.org/index.php/BMCRM/article/view/272

View record from BASE

2

Report

Диагностика и лечение атопической бронхиальной астмы

Θεματικοί όροι: treatment, diagnosis, диагностика, лечение, атопическая бронхиальная астма, atopic asthma

3

Academic Journal

Effect of the Rubicon protein on LC3-associated phagocytosis by monocytes in the patients with severe atopic bronchial asthma ; Влияние белка Rubicon на протекание LC3-ассоциированного фагоцитоза в моноцитах больных тяжелой атопической бронхиальной астмой

Συγγραφείς: B. R. Ibragimov, Yu. V. Skibo, I. D. Reshetnikova, S. N. Abramov, A. G. Daminova, V. G. Evtyugin, Z. I. Abramova, Б. Р. Ибрагимов, Ю. В. Скибо, И. Д. Решетникова, С. Н. Абрамов, А. Г. Даминова, В. Г. Евтюгин, З. И. Абрамова

Συνεισφορές: Работа выполнена за счет средств субсидии, выделенной в рамках государственной поддержки Казанского (Приволжского) федерального университета в целях повышения его конкурентоспособности среди ведущих мировых научнообразовательных центров (Приоритет – 2030).

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 26, № 6 (2024); 1213-1222 ; Медицинская иммунология; Том 26, № 6 (2024); 1213-1222 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: LC3, phagocytosis, LC3-associated, autophagy, monocytes, atopic bronchial asthma, LС3-ассоицированный фагоцитоз, аутофагия, моноциты, атопическая бронхиальная астма

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2868/1833; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12554; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12555; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12556; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12557; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12558; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12559; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12560; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12561; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12562; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12563; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12564; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12713; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12714; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12715; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12716; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12724; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12725; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12726; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12727; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/12728; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2868/13010; Деев Р.В., Билялов А.И., Жампеисов Т.М. Современные представления о клеточной гибели // Гены и Клетки, 2018. Т. 13, № 1. С. 6-19.; Ибрагимов Б.Р., Скибо Ю.В., Абрамова З.И. Аутофагия и LC3-ассоциированный фагоцитоз: сходства и различия // Медицинская иммунология, 2023. Т. 25, № 2. С. 233-252. doi:10.15789/1563-0625-AAL-2569.; Скибо Ю.В., Тихомирова М.В., Абрамов С.Н., Биктагирова Э.М., Решетникова И.Д., Акберова Н.И., Абрамова З.И. Анализ экспрессии ключевых белков-регуляторов апоптоза и аутофагии в Т-лимфоцитах больных бронхиальной астмой // Ученые записки Казанского университета. Серия естественные науки, 2019 . Т. 161, № 4. С. 505-520.; Скибо Ю.В., Фатхуллина А.Р., Ибрагимов Б.Р., Абрамов С.Н., Исмагилова Р.Р., Биктагирова Э.М., Андрианова И.А., Максудова А.Н., Абрамова З.И. Индукция апоптоза и аутофагии в Т-лимфоцитах пациентов с системной красной волчанкой // Казанский медицинский журнал, 2020. Т. 101, № 3. С. 347-355.; Смольникова М.В., Смирнова С.В., Ильенкова Н.А., Коноплева О.С. Иммунологические маркеры неконтролируемого течения атопической бронхиальной астмы у детей // Медицинская иммунология, 2017. Т. 19, № 4. С. 453-460. doi:10.15789/1563-0625-2017-4-453-460.; Ярилин А.А., Никонова М.Ф., Ярилина А.А., Варфоломеева М.И., Григорьева Т.Ю. Апоптоз, роль в патологии и значимость его оценки при клинико-иммунологическом обследовании больных// Медицинская иммунология, 2000. Т. 2, № 1. С. 7-16.; Aguirre L.A., Montalbán-Hernández K., Avendaño-Ortiz J., Marín E., Lozano R., Toledano V., SánchezMaroto L., Terrón V., Valentín J., Pulido E., Casalvilla J.C., Rubio C., Diekhorst L., Laso-García F., Del Fresno C., Collazo-Lorduy A., Jiménez-Munarriz B., Gómez-Campelo P., Llanos-González E., Fernández-Velasco M., Rodríguez-Antolín C., Pérez de Diego R., Cantero-Cid R., Hernádez-Jimenez E., Álvarez E., Rosas R., Dies López-Ayllón B., de Castro J., Wculek S.K., Cubillos-Zapata C., Ibáñez de Cáceres I., Díaz-Agero P., Gutiérrez Fernández M., Paz de Miguel M., Sancho D., Schulte L., Perona R., Belda-Iniesta C., Boscá L., López-Collazo E. Tumor stem cells fuse with monocytes to form highly invasive tumor-hybrid cells. Oncoimmunology, 2020, Vol. 9, no. 1, 1773204. doi:10.1080/2162402X.2020.1773204.; Arteaga-Blanco L.A., Mojoli A., Monteiro R.Q., Sandim V., Menna-Barreto R.F.S., Pereira-Dutra F.S., Bozza P.T., Resende R.O., Bou-Habib D.C. Characterization and internalization of small extracellular vesicles released by human primary macrophages derived from circulating monocytes. PloS One, 2020, Vol. 15, no. 8, e0237795. doi:10.1371/journal.pone.0237795.; Boada-Romero E., Martinez J., Heckmann B.L., Green D.R. The clearance of dead cells by efferocytosis. Nat. Rev. Mol. Cell Biol., 2020, Vol. 21, no. 7, pp. 398-414.; Costa G.M.J., Lacerda S.M.S.N., Figueiredo A.F.A., Wnuk N.T., Brener M.R.G., Andrade L.M., Campolina-Silva G.H., Kauffmann-Zeh A., Pacifico L.G.G., Versiani A. F., Antunes M.M., Souza F.R., Cassali G.D., Caldeira-Brant A.L., Chiarini-Garcia H., de Souza F.G., Costa V.V., da Fonseca F.G., Nogueira M.L., Campos G.R.F., Kangussu L.M., Martins E.M.N., Antonio L.M., Bittar C., Rahal P., Aguiar R.S., Mendes B.P., Procópio M.S., Furtado T.P., Guimaraes Y.L., Menezes G.B., Martinez-Marchal A., Orwig K.E., Brieño-Enríquez M., Furtado M.H. High SARS-CoV-2 tropism and activation of immune cells in the testes of non-vaccinated deceased COVID-19 patients. BMC Biol., 2023, Vol. 21, no. 1, 36. doi:10.1186/s12915-022-01497-8.; Cunha L.D., Yang M., Carter R., Guy C., Harris L., Crawford J.C., Quarato G., Boada-Romero E., Kalkavan H., Johnson M.D.L., Natarajan S., Turnis M.E., Finkelstein D., Opferman J.T., Gawad C., Green D.R. LC3-Associated Phagocytosis in Myeloid Cells Promotes Tumor Immune Tolerance. Cell, 2018, Vol. 175, no. 2, pp. 429-441.; Florey O., Kim S.E., Sandoval C.P., Haynes C.M., Overholtzer M. Autophagy machinery mediates macroendocytic processing and entotic cell death by targeting single membranes. Nat. Cell Biol., 2011, Vol. 13, no. 11, pp. 1335-1343.; Gomzikova M.O., Zhuravleva M.N., Miftakhova R.R., Arkhipova S.S., Evtugin V.G., Khaiboullina S.F., Kiyasov A.P., Persson J.L., Mongan N.P., Pestell R.G., Rizvanov A.A. Cytochalasin B-induced membrane vesicles convey angiogenic activity of parental cells. Oncotarget, 2017, Vol. 8, no. 41, pp. 70496-70507.; Heckmann B.L., Boada-Romero E., Cunha L.D., Magne J., Green D.R. LC3-Associated Phagocytosis and Inflammation. J. Mol. Biol., 2017, Vol. 429, no. 23, pp. 3561-3576.; Heckmann B.L., Teubner B.J.W., Tummers B., Boada-Romero E., Harris L., Yang M., Guy C.S., Zakharenko S.S., Green D.R. LC3-Associated Endocytosis Facilitates β-Amyloid Clearance and Mitigates Neurodegeneration in Murine Alzheimer’s Disease. Cell, 2019, Vol. 178, no. 3, pp. 536-551.; Herb M., Gluschko A., Schramm M. LC3-associated phagocytosis – The highway to hell for phagocytosed microbes. Semin. Cell Dev. Biol., 2020, Vol. 101, pp. 68-76.; Inomata M., Xu S., Chandra P., Meydani S.N., Takemura G., Philips J.A., Leong J.M. Macrophage LC3- associated phagocytosis is an immune defense against Streptococcus pneumoniae that diminishes with host aging. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2020, Vol. 117, no. 52, pp. 33561-33569.; Ishii K.J., Kawagoe T., Koyama S., Matsui K., Kumar H., Kawai T., Uematsu S., Takeuchi O., Takeshita F., Coban C., Akira S. TANK-binding kinase-1 delineates innate and adaptive immune responses to DNA vaccines. Nature, 2008, Vol. 451, no. 7179, pp. 725-729.; Ji W.J., Ma Y.Q., Zhou X., Zhang Y.D., Lu R.Y., Sun H.Y., Z.Z. G., Zhang Z., Li Y.M., Wei L.Q. Temporal and spatial characterization of mononuclear phagocytes in circulating, lung alveolar and interstitial compartments in a mouse model of bleomycin-induced pulmonary injury. J. Immunol. Met., 2014, Vol. 403, no. 1-2, pp. 7-16.; Kelley S.M., Ravichandran K.S. Putting the brakes on phagocytosis: “don’t-eat-me” signaling in physiology and disease. EMBO Rep., 2021, Vol. 22, no. 6, e52564. doi:10.15252/embr.202152564.; Lambrecht B.N., Hammad H. The immunology of the allergy epidemic and the hygiene hypothesis. Nat. Immunol., 2017, Vol. 18, no. 10, pp. 1076-1083.; Li C.H., Tsai M.L., Chiou H.C., Lin Y.C., Liao W.T., Hung C.H. Role of Macrophages in Air Pollution Exposure Related Asthma. Int. J. Mol. Sci., 2022. Vol. 23, no. 20, 12337. doi:10.3390/ijms232012337.; Li T., Kong L., Li X., Wu S., Attri K. S., Li Y., Gong W., Zhao B., Li L., Herring L.E., Asara J. M., Xu L., Luo X., Lei Y.L., Ma Q., Seveau S., Gunn J.S., Cheng X., Singh P.K., Green D.R., Wang H., Wen H. Listeria monocytogenes upregulates mitochondrial calcium signalling to inhibit LC3-associated phagocytosis as a survival strategy. Nat. Microbiol., 2021, Vol. 6, no. 3, pp. 366-379.; Li Y., Yong Y.L., Yang M., Wang W., Qu X., Dang X., Shang D., Shao Y., Liu J., Chang Y. Fine particulate matter inhibits phagocytosis of macrophages by disturbing autophagy. FASEB J., 2020, Vol. 34, no. 12, pp. 16716-16735.; Lim J., Park H., Heisler J., Maculins T., Roose-Girma M., Xu M., Mckenzie B., van Lookeren Campagne M., Newton K., Murthy A. Autophagy regulates inflammatory programmed cell death via turnover of RHIM-domain proteins. eLife, 2019, Vol. 8, e44452. doi:10.7554/eLife.44452.; Magné J., Green D.R. LC3-associated endocytosis and the functions of Rubicon and ATG16L1. Sci. Adv., 2022, Vol. 8, no. 43, eabo5600. doi:10.1126/sciadv.abo5600.; Martinez J., Cunha L.D., Park S., Yang M., Lu Q., Orchard R., Li Q.Z., Yan M., Janke L., Guy C., Linkermann A., Virgin H.W., Green D.R. Corrigendum: Noncanonical autophagy inhibits the autoinflammatory, lupus-like response to dying cells. Nature, 2016, Vol. 539, no. 7627, 124. doi:10.1038/nature19837.; Masud S., Prajsnar T.K., Torraca V., Lamers G.E.M., Benning M., Vaart M.V.D., Meijer A.H. Macrophages target Salmonella by Lc3-associated phagocytosis in a systemic infection model. Autophagy, 2019, Vol. 15, no. 5, pp. 796-812.; Masud S., van der Burg L., Storm L., Prajsnar T.K., Meijer A.H. Rubicon-Dependent Lc3 Recruitment to Salmonella-Containing Phagosomes Is a Host Defense Mechanism Triggered Independently From Major Bacterial Virulence Factors. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2019, Vol. 9, 279. doi:10.3389/fcimb.2019.00279.; Matsunaga K., Saitoh T., Tabata K., Omori H., Satoh T., Kurotori N., Maejima I., Shirahama-Noda K., Ichimura T., Isobe T., Akira S., Noda T., Yoshimori T. Two Beclin 1-binding proteins, Atg14L and Rubicon, reciprocally regulate autophagy at different stages. Nat. Cell Biol., 2009, Vol. 11, no. 4, pp. 385-396.; Mehta P., Henault J., Kolbeck R., Sanjuan M.A. Noncanonical autophagy: one small step for LC3, one giant leap for immunity. Curr. Opin. Immunol., 2014, Vol. 26, pp. 69-75.; Minnullina L., Kostennikova Z., Evtugin V., Akosah Y., Sharipova M., Mardanova A. Diversity in the swimming motility and flagellar regulon structure of uropathogenic Morganella morganii strains. Int. Microbiol., 2022, Vol. 25, no. 1, pp. 111-122.; Morioka S., Maueröder C., Ravichandran K.S. Living on the Edge: Efferocytosis at the Interface of Homeostasis and Pathology. Immunity, 2019, Vol. 50, no. 5, pp. 1149-1162.; Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy. J. Cell Biol., 1963, Vol. 17, no. 1, pp. 208-212.; Sanjuan M.A., Dillon C.P., Tait S.W., Moshiach S., Dorsey F., Connell S., Komatsu M., Tanaka K., Cleveland J.L., Withoff S., Green D.R. Toll-like receptor signalling in macrophages links the autophagy pathway to phagocytosis. Nature, 2007, Vol. 450, no. 7173, pp. 1253-1257.; Sun Q., Westphal W., Wong K.N., Tan I., Zhong Q. Rubicon controls endosome maturation as a Rab7 effector. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2010, Vol. 107, no. 45, pp. 19338-19343.; Tabata K., Matsunaga K., Sakane A., Sasaki T., Noda T., Yoshimori T. Rubicon and PLEKHM1 negatively regulate the endocytic/autophagic pathway via a novel Rab7-binding domain. Mol. Biol. Cell, 2010, Vol. 21, no. 23, pp. 4162-4172.; Yang C.S., Lee J.S., Rodgers M., Min C.K., Lee J.Y., Kim H.J., Lee K.H., Kim C.J., Oh B., Zandi E., Yue Z., Kramnik I., Liang C., Jung J.U. Autophagy protein Rubicon mediates phagocytic NADPH oxidase activation in response to microbial infection or TLR stimulation. Cell Host Microbe, 2012, Vol. 11, no. 3, pp. 264-276.; Zhang P., Zhu J., Zhang L., Lv X., Guo D., Liao L., Huang S., Peng Z. The Effects of Ginkgo biloba Extract on Autophagy in Human Macrophages Stimulated by Cigarette Smoke Extract. Front. Biosci. (Landmark Ed.), 2023, Vol. 28, no. 3, 50. doi:10.31083/j.fbl2803050.; Zhong Y., Wang Q.J., Li X., Yan Y., Backer J.M., Chait B.T., Heintz N., Yue Z. Distinct regulation of autophagic activity by Atg14L and Rubicon associated with Beclin 1-phosphatidylinositol-3-kinase complex. Nat. Cell Biol., 2009, Vol. 11, no. 4, pp. 468-476.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2868

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2868
https://doi.org/10.15789/1563-0625-EOT-2868

View record from BASE

4

Academic Journal

Comparative characteristics of the nasal mucosa microflora at different level of allergic inflammation in the respiratory tract ; Сравнительная характеристика микрофлоры слизистой оболочки носа при различном уровне аллергического воспаления дыхательных путей

Συγγραφείς: Lazareva A.M., Smirnova S.V., Kolenchukova O.A.

Πηγή: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 2 (2022); 331-338 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 2 (2022); 331-338 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Θεματικοί όροι: atopic rhinosinusitis, polypous rhinosinusitis, atopic bronchial asthma, asthmatic triad, microbiocenosis, nasal mucous membrane, атопический риносинусит, полипозный риносинусит, атопическая бронхиальная астма, астматическая триада, микробиоценоз, слизистая оболочка носа

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Διαθεσιμότητα: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1677
https://doi.org/10.15789/2220-7619-CCO-1677

View record from BASE

5

Academic Journal

Enzymatic characterization of blood lymphocytes in various clinical and pathogenetic variants of respiratory allergy ; Энзиматическая характеристика лимфоцитов крови при различных клинико-патогенетических вариантах респираторной аллергии»

Συγγραφείς: A. M. Lazareva, O. A. Kolenchukova, S. V. Smirnova, А. М. Лазарева, О. А. Коленчукова, С. В. Смирнова

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 23, № 1 (2021); 107-116 ; Медицинская иммунология; Том 23, № 1 (2021); 107-116 ; 2313-741X ; 1563-0625

Θεματικοί όροι: внутриклеточный метаболизм, polypous rhinosinusitis, atopic bronchial asthma, asthmatic triad, lymphocytes, intracellular metabolism, полипозный риносинусит, атопическая бронхиальная астма, астматическая триада, лимфоциты

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2120/1349; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6904; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6905; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6906; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6907; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6908; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6909; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6910; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/2120/6911; Астафьева Н.Г., Кобзев Д.Ю., Гамова И.В. Многоликий ринит: современный взгляд на диагностику и алгоритм лечения // Лечащий врач, 2018. № 4. C. 7-18.; Башарина О.В., Артюхов В.Г., Коробкина И.А. Исследование активности митохондриальных ферментов лимфоцитов здоровых доноров и больных острым панкреатитом в условиях УФ-облучения // Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация, 2018. № 2. С. 75-80.; Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. М.: Медицина, 1998. 704 с.; Булыгин В.Г., Тихонова Е.П., Аксенова Н.А. Параметры метаболизма лимфоцитов крови у больных хроническим вирусным гепатитом B // Сибирское медицинское обозрение, 2010. Т. 2, № 62. С. 33-36.; Инжеваткин Е.В., Савченко А.А. Неспецифическая метаболическая реакция клеток на экстремальные условия // Известия Российской академии наук. Серия биологическая, 2016. № 1. С. 6.; Козаченко Ю.В. Развитие исследований бронхиальной астмы в России // Естественные и технические науки, 2015. Т. 6, № 84. С. 143-151.; Куртасова Л.М., Шакина Н.А., Лубнина Т.В., Николаева А.И. Иммунологические показатели и энзиматическая активность лимфоцитов периферической крови у детей с гипертрофией глоточной миндалины // Вестник оториноларингологии, 2017. Т. 82, № 2. С. 42-45.; Куртасова Л.М., Шакина Н.А. Особенности иммунного ответа и метаболические изменения лимфоцитов периферической крови у детей раннего возраста с рецидивирующим обструктивным бронхитом // Медицинская иммунология, 2017. Т. 19, № 5. С. 597-604. doi:10.15789/1563-0625-2017-5-597-604; Маркова Т.П., Ким М.Н., Чувиров Д.Г., Чувирова А.Г., Ярилина Л.Г. Особенности патогенеза и врожденного иммунитета при бронхиальной астме // Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского, 2016. Т. 95, № 4. С. 110-115.; Павлуш Д.Г., Дюйзен И.В. Анализ современных представлений об этиопатогенезе полипозного риносинусита // Российская оториноларингология, 2016. Т. 85, № 6. С. 95-102.; Савченко А.А. Биолюминесцентное определение активности НАД- и НАДФ-зависимых глутаматдегидрогеназ лимфоцитов // Лабораторное дело, 1991. № 11. С. 22-25.; Савченко А.А., Смирнова С.В., Пыцкий В.И. Метаболические особенности лимфоцитов крови у больных истинной аллергией и псевдоаллергией // Аллергология и иммунология, 2002. Т. 3, № 1. С. 180-187.; Патогенез истиной аллергии и псевдоаллергии: учебно-методическое пособие / Сост. Смирнова С.В., Пыцкий В.И. Красноярск: Диалог-Сибирь-НТ, 2002. 21 с.; Сергеева И.В., Камзалакова Н.И., Тихонова Е.П. Bзаимосвязь структурно-метаболических параметров лимфоцитов и их функциональное состояние // Фундаментальные исследования, 2015. Т. 1, № 4. С. 821-824.; Хундерякова Н.В., Захарченко М.В., Ячкула Т.В. Определение соотношения аэробного гликолиза и дыхания в лимфоцитах крови человека как персонализированного неповреждающего показателя тяжести патологии и уровня здоровья // Здоровье и образование в XXI веке, 2017. Т. 19, № 12. С. 298-300.; Чаусова С.В., Бондарева Г.П., Усанова Е.А. Изменение функциональной активности полиморфноядерных лейкоцитов периферической крови у больных с астматической триадой // Медицина критических состояний, 2014. № 2. С. 30-35.; Шагарова С.Г., Смирнова С.В., Зенкина Л.В. Особенности иммунореактивности и метаболизма лимфоцитов крови в зависимости от патогенеза бронхиальной астмы // Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской академии медицинских наук, 2012. Т. 3, №.2 (85). С. 217-221.; Bachert C., Zhang L., Gevaert P. Current and future treatment options for adult chronic rhinosinusitis: Focus on nasal polyposis. J. Allergy Clin. Immunol., 2015, Vol. 6, pp. 1431-1440.; Ban G.Y., Cho K., Kim S.H. Metabolomic analysis identifies potential diagnostic biomarkers for aspirin-exacerbated respiratory disease. Clin. Exp. Allergy, 2017. Vol. 47, no. 1, pp. 37-47.; Brozek J.L., Bousquet J., Baena-Cagnani C.E. Allergic rhinitis and its impact on asthma (ARIA) guidelines: 2017 revision. J. Allergy Clin. Immunol., 2017, Vol. 140, no. 4, pp. 950-958.; Kolenchukova O.A., Smirnova S.V., Savchenko A.A. Functional activity of neutrophilic granulocytes in polypous rhinosinusitis patients in Eastern Siberia. Int. J. Circumpolar Health, 2013, Vol. 72, Suppl. 1, pp. 731-733.; Li M., Li C., Allen A., Stanley C.A., Smith T.J. The structure and allosteric regulation of mammalian glutamate dehydrogenase. Arch. Biochem. Biophys., 2012, Vol. 519, no. 2, pp. 69-80.; Norris M.G., Malys N. What is the true enzyme kinetics in the biological system? An investigation of macromolecular crowding effect upon enzyme kinetics of glucose-6-phosphate dehydrogenase. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2011, Vol. 405, no. 3, pp. 388-392.; Smirnova S.V., Kolenchukova O.A. Peculiarities of immune, cytokine and metabolic status in allergic rhinosinusitis in Eastern Siberia inhabitants. Int. J. Circumpolar Health, 2013, Vol. 72, Suppl. 1, pp. 738-741.; Spanaki C., Plaitakis A. The role of glutamate dehydrogenase in mammalian ammonia metabolism. Neurotox. Res., 2012, Vol. 21, no. 1, pp. 117-127.; Stanton R.C. Glucose-6-phosphate dehydrogenase, NADPH, and cell survival. IUBMB Life, 2012, Vol. 64, no. 5, pp. 362-369.; Sukhan V.S. Allergic rhinitis and asthma co-morbidity. Wiad. Lek., 2019, Vol. 72, no. 4, pp. 622-626.; Wang B., Wang P., Zhend E., Chen X., Zhao H., Song P., Su R., Li X., Zhu G. Biochemical properties and physiological roles of NADP – dependent malic enzyme in Escherichia coli. J. Microbiol., 2012, Vol. 49, no. 5, pp. 797-802.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2120

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/2120
https://doi.org/10.15789/1563-0625-ECO-2120

View record from BASE

6

Academic Journal

FEATURES OF NASAL MICROBIOTA IN PATIENTS WITH RESPIRATORY ATOPY AND PSEUDOATOPY DEPENDING ON THE LEVEL OF INJURY OF RESPIRATORY TRACT

Συγγραφείς: Anna Mickailovna Lazareva, Oksana Alexandrovna Kolenchukova, Svetlana Vitalievna Smirnova

Πηγή: Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, Vol 11, Iss 5-2, Pp 62-67 (2019)

Θεματικοί όροι: микробиота, атопический риносинусит, атопическая бронхиальная астма, астматическая триада, полипозный риносинусит, Agriculture, Science

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journal-s.org/index.php/vmno/article/view/12190; https://doaj.org/toc/2658-6649; https://doaj.org/toc/2658-6657

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/020499fc475348f389f024393f477192

View record in DOAJ Full Text Finder

7

Academic Journal

INDICATORS OF CELLULAR AND HUMORAL TYPES OF THE IMMUNITY IN PATIENTS WITH RESPIRATORY ATOPY AND PSEUDOATOPY DEPENDING ON THE LEVEL OF INJURY OF RESPIRATORY TRACT

Συγγραφείς: Anna Mickailovna Lazareva, Svetlana Vitalievna Smirnova, Oksana Alexandrovna Kolenchukova

Πηγή: Siberian Journal of Life Sciences and Agriculture, Vol 11, Iss 5, Pp 81-86 (2019)

Θεματικοί όροι: клеточный иммунитет, гуморальный иммунитет, атопический риносинусит, атопическая бронхиальная астма, астматическая триада, полипозный риносинусит, Agriculture, Science

Περιγραφή αρχείου: electronic resource

Relation: http://journal-s.org/index.php/vmno/article/view/12163; https://doaj.org/toc/2658-6649; https://doaj.org/toc/2658-6657

Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/15fba8951daa46e49beaae0257c16e9d

View record in DOAJ Full Text Finder

8

Academic Journal

Structural and functional characteristics of the T helpers 17 subpopulation in allergic diseases of the respiratory organs in children ; Структурно-функциональная характеристика субпопуляции Т-хелперов 17 при аллергических заболеваниях органов дыхания у детей

Συγγραφείς: E. V. Prosekova, N. G. Plekhova, A. I. Turyanskaya, V. A. Sabynych, Е. В. Просекова, Н. Г. Плехова, А. И. Турянская, Виталий Александрович Сабыныч

Πηγή: Medical Immunology (Russia); Том 21, № 6 (2019); 1023-1032 ; Медицинская иммунология; Том 21, № 6 (2019); 1023-1032 ; 2313-741X ; 1563-0625 ; 10.15789/1563-0625-2019-6

Θεματικοί όροι: дети, 17A, 17F interleukins, allergic rhinitis, atopic bronchial asthma, children, интерлейкин-17А, ттерлейкт-nF, аллергический ринит, атопическая бронхиальная астма

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1766/1203; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4987; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4988; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4989; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4990; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4991; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4992; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4993; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4994; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4995; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/downloadSuppFile/1766/4996; Кайдашев И.П. Т-клеточная регуляция при атопических заболеваниях // Клиническая иммунология. Аллергология. Инфектология, 2011. № 9-10. С. 18-21.; Кудрявцев И.В., Борисов А.Г., Волков А.Е., Савченко А.А., Серебрякова М.К., Полевщиков А.В. Анализ уровня экспрессии CD56 и CD57 цитотоксическими Т-лимфоцитами различного уровня диффе-ренцировки // Тихоокеанский медицинский журнал, 2015. № 2. С. 30-35.; Курбачева О.М., Жестков А.В., Нагаткин Д.А., Кулагина В.В., Нагаткина О.В. Современный взгляд на иммунопатогенез бронхиальной астмы // Российский аллергологический журнал, 2016. № 2. С. 10-14.; Нурдина М.С., Купаев В.И. Взаимосвязь уровня IL-17, IL-10 со степенью контроля бронхиальной астмы // Вестник современной клинической медицины, 2017. Т. 10, № 3. С. 35-38.; Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. М.: Фолиант, 2018. 512 с.; Хайдуков С.В., Байдун Л.В., Зурочка А.В., Тотолян Арег А. Стандартизованная технология «Исследование субпопуляционного состава лимфоцитов периферической крови с применением проточных цитофлюориметров-анализаторов» // Российский иммунологический журнал, 2014. Т. 8, № 4. С. 974-992.; Acosta-Rodriguez E.V, Napolitani G., Lanzavecchia A., Sallusto F. Interleukins 1 p and 6 but not transforming growth factor-P are essential for the differentiation оf interleukin 17-producing human T helper cells. Nat. Immunol., 2007, Vol. 8, no. 9, pp. 942-949.; Agache С., Akdis C., Jutel M., Virchov J.S. Untangling asthma phenotypes and endotypes. Allergy, 2012, Vol. 67, pp. 835-846.; Agache I., Ciobanu C., Agache C., Anghel M. Increased serum IL-17 is an independent risk factor for severe asthma. Respiratory Med., 2010, Vol. 104, pp. 1131-1137.; Akdis C.A. Global atlas of asthma. Switzerland: Published by the European Academy of Allergy and Clinical Immunology (ed.: Akdis C.A., Agache I.), 2013, pp. 2-179.; Akdis M. The pathogenesis of astma. Global atlas of Asthma, 2013, pp. 28-30.; Bacharier L.B., Boner A., Carlsen K.-H., Eigenmann P.A., Frischer T., G5tz M., Helms P. J., Hunt J., Liu A., Papadopoulos N., Platts-Mills T., Pohunek P., Simons F.E.R., Valovirta E., Wahn U., Wildhaber J., The European Pediatric Asthma Group. Diagnosis and treatment of asthma in childhood: a PRACTALL consensus report. Allergy, 2008, Vol. 63, pp. 5-34.; Bhakta N.R. IL-17 and “TH2-high” asthma: Adding fuel to the fire? J. Allergy Clin. Immunol., 2014, Vol. 134, pp. 1187-1188.; Bossowski A., Moniuszko M., Idzkowska E., D^browska M., Jeznach M., Sawicka B., Borysewicz-Sanczyk H., Bossowska A., Rusak M., Bodzenta, Lukaszyk A. Evaluation of CD4+CD161+CD196+ and CD4+IL-17+ Th17 cells in the peripheral blood of young patients with Hashimoto’s thyroiditis and Graves’ disease. Pediatr. Endocrinol. Diabetes Metab., 2012, Vol. 18, no. 3, pp. 89-95.; Bousquet J., Pfaar O., Togias A. et al. Allergic Rhinitis and its Impact on Asthma (ARIA) Care pathways for allergen immunotherapy. Allergy, 2019, Vol. 74, no. 11, pp. 2087-2102.; Cosmi L., Liotta F., Maggi E., Romagnani S., Annunziato F. Th17-cells: new players in asthma pathogenesis. Allergy, 2011, Vol. 66, pp. 989-998.; Dehzad N., Bopp T., Reuter S., Klein M., Martin H., Ulges A., Stassen M., Schild H., Buhl R., Schmitt E., Taube C. Regulatory T-cells more effectively suppress Th1-incluced airway inflammation compared with Th2. J. Immunol., 2011, Vol. 186, pp. 238-244.; Doe C., Bafahel M., Siddiqui S., Desai D., Mistry V., Rugman P., McCormick M., Woods J., May R., Sleeman M.A., Anderson I.K., Brightling C.E. Expression of the T helper 17-associated cytokines IL-17A and IL-17F in asthma and COPD. CHEST, 2010, Vol. 138, no. 5, pp. 1140-1147.; Francis J.N., Sabroe I., Lloyd C.M., Durham S.R., Till S.J. Elevated CCR6+ CD4+ T lymphocytes in tissue compared with blood and induction of CCL20 during the asthmatic late response. Clin. Exp. Immunol., 2008, Vol. 152, no. 3, pp. 440-447.; Global Initiative for Asthma. Global Strategy for Asthma Management and Prevention, 2018. Available from: ginasthma.org.; Hayashida S., Uchi H., Moroi Y., Furue M. Decrease in circulating Th17 cells correlates with increased levels of CCL17, IgE and eosinophils in atopic dermatitis. J. Dermatol. Sci., 2011, Vol. 61, no. 3, pp. 180-186.; Kerzel S., Dehne J., Rogosch T., Schaub B., Maier R.F., Zemlin M. Th17 cell frequency in peripheral blood from children with allergic asthma correlates with the level of asthma control. J. Pediatr., 2012, Vol. 61, no. 6, pp. 1172-1174.; Kimura A., Kishimoto T. IL 6: regulator of Treg/Th17 balance. Eur. J. Immunol., 2010, Vol. 40, no. 7, pp. 1830-1835.; Koch S., Sopel N., Finotto S. Th9 and other IL-9-producing cells in allergic asthma. Semin. Immunopathol., 2017, Vol. 3, no. 1, pp. 55-68.; Mahnke Y.D., Roederer M. Optimizing a multicolor immunophenotyping assay. Clin. Lab. Med., 2007, Vol. 27, no. 3, pp. 469-485.; McKinley L., Alcorn J.F., Peterson A., Dupont R.B., Kapadia S., Logar A., Henry A., Irvin C.G., Piganelli J.D., Ray A., Kolls J.K. TH17 cells mediate steroid-resistant airway inflammation and airway hyperresponsiveness in mice. J. Immunol., 2008, Vol. 181, no. 6, pp. 4089-4097.; Muehling L.M., Lawrence M.G., Woodfolk J.A. Pathogenic CD4+ T cells in patients with asthma. J. Allergy Clin. Immunol., 2017, Vol. 140, no. 6, pp. 1523-1540.; Nakae S., Iwakura Y., Suto H., Galli S.J. Phenotypic differences between Th1 and Th17 cells and negative regulation by Th17. J. Leukoc. Biol., 2007, Vol. 81, pp. 1258-1268.; Nieminen K., Valovirta E., Savolainen J. Clinical outcome and IL-17, IL23, IL-27 and FOXP3 expression in peripheral blood mononuclear cells of pollen-allergic children during sublingual immunotherapy. Pediatr. Allergy Immunol., 2010, Vol. 21, pp. e174-e184.; Qian Y., Kang Z., Liu C., Li X. IL-17 signaling in host defense and inflammatory diseases. Cell. Mol. Immunol., 2010, Vol. 7, no. 5, pp. 328-333.; Qu N., Xu M., Mizoguchi I., Furusawa J., Kaneko K., Watanabe K., Mizuguchi J., Itoh M., Kawakami Y., Yoshimoto T. Pivotal roles of T-helper 17-related cytokines, IL-17, IL-22, and IL-23, in inflammatory diseases. Clin. Dev. Immunol, 2013, Vol. 2013, 968549. doi:10.1155/2013/968549.; Seoung J.P., Lee Y.C. Interleukin-17 regulation: an attractive therapeutic approach for asthma. Respir. Res., 2010, Vol. 11, no. 1, p. 78.; Singh S.P., Zhang H.H., Foley J.F., Hedrick M.N., Farber J.M. Human T cells that are able to produce IL-17 express the chemokine receptor CCR6. J. Immunol., 2008, Vol. 180, no. 1, pp. 214-221.; Sundrud M.S., Trivigno C. Identity crisis of Th17 cells: many forms, many functions, many questions. Semin. Immunol., 2013, Vol. 25, no. 4, pp. 263-272.; van de Veen W, Akdis M. Mechanisms of immune regulation in allergy. Global Atlas of Allergy, 2014, pp. 90-91.; Wenzel S. Phenotypes & Endotypes: Emerging concepts on asthma heterogeneity. Global Atlas of Asthma, 2013, pp. 34-36.; Winer R., Qin X., Harrington T., Moorman J., Zahran H. Asthma incidence among children and adults: findings from the behavioral risk factor surveillance system asthma callback survey-United States, 2006-2008. J. Asthma, 2012, Vol. 49, pp. 16-22.; Zhao Y., Yang J., Gao Y.D., Guo W. Th17 immunity in patients with allergic asthma. Int. Arch. Allergy Immunol., 2010, Vol. 151, pp. 297-307.; https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1766

Διαθεσιμότητα: https://www.mimmun.ru/mimmun/article/view/1766
https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-6-1023-1032

View record from BASE

9

Academic Journal

Immunopathogenesis of atopic diseases formation ; Иммунопатогенез формирования атопических заболеваний

Συγγραφείς: G. Poryadin V., J. Salmasi M., A. Kazimirsky N., L. Semenova Yu., Г. Порядин В., Ж. Салмаси М., А. Казимирский Н., Л. Семенова Ю.

Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 16, № 4 (2017); 233-241 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 16, № 4 (2017); 233-241 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2017-16-4

Θεματικοί όροι: atopic bronchial asthma, atopic dermatitis, pollinosis, latent sensitization, CD antigens, атопическая бронхиальная астма, атопический дерматит, поллиноз, латентная сенсибилизация, CD-антигены

Περιγραφή αρχείου: application/pdf

Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1040/761; Nagafuku M., Okuyama K., Onimaru Y., Suzuki A., Odagiri Y., Yamashita T., Iwasaki K., Fujiwara M., Takayanagi M., Ohno I., Inokuchi J. CD4 and CD8 T cells require different membrane gangliosides for activation. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2012. 109; 6: 336–342.; Albacker L.A., Chaudhary V., Chang Y.J., Kim H.Y., Chuang Y.T., Pichavant M., DeKruyff R.H., Savage P.B., Umetsu D.T. Invariant natural killer T cells recognize a fungal glycosphingolipid that can induce airway hyperreactivity // Nat. Med. 2013; 19 (10): 1297–1304.; Inokuchi J., Nagafuku M., Ohno I., Suzuki A. Distinct selectivity of gangliosides required for CD4⁺ T- and CD8⁺ T-cell activation // Biochim. Biophys. Acta. 2015; 1851 (1): 98–106.; Порядин Г.В., Оршанко А.М., Салмаси Ж.М., Казимирский А.Н, Латышева Т.В. Активационные процессы в лимфоцитах пациентов с латентной сенсибилизацией // Патофизиология и экспериментальная терапия. 2009; 1: 3–25. Poryadin G.V., Orshanko A.M., Salmasi J.M., Kazimirskiy A.N., Latysheva T.V. Ak-tivatsionnyye protsessy v limfotsitakh patsiyentov s latentnoy sensibilizatsiyey [Activation processes in lymphocytes of patients with latent sensitization] // Patofiziologiya i eksperimentalnaya terapiya – Pathophysiology and Experimental Therapy. 2009; 1: 3–25 (in Russian).; Poryadin G.V., Sharpan Yu.V., Orshanko A.M., Salmasi J.M., Kazimirskiy A.N., Latysheva T.V. Features of the immune status in patients with latent sensitization // Russian Journal of Immunology. 2009; 3 (2): 177–183.; Порядин Г.В., Салмаси Ж.М., Казимирский А.Н. Способ оценки ýффективности лечения бронхиальной астмы. Патент на изобретение № 2389023, 2010: 6. Poryadin G.V., Salmasi J.M., Kazimirskiy A.N. Sposob ocenki effektivnosti lecheniya bronkhialnoy astmy [A method of evaluating the effectiveness of treatment of bronchial asthma]. Patent № 2389023, 2010: 6 (in Russian).; Wei H., Zhang J., Xiao W., Feng J., Sun R., Tian Z. Involvement of human natural killer cells in asthma pathogenesis: natural killer 2 cells in type 2 cytokine predominance // J. Allergy Clin. Immunol. 2005. 115 (4): 841–847.; Poryadin G.V., Zhuravleva N.E., Salmasi J.M., Kazimirskiy A.N., Semenova L.Yu., Polner S.A., Chervinskaya T.A. Immunological Mechanisms of Recovery from an Acute Stage in Patients with Atopic Bronchial Asthma // Russian Journal of Immunology. 2002; 7 (3): 259–264.; Салмаси Ж.М., Порядин Г.В., Алиева З.О., Казимирский А.Н. Характеристика поверхностных рецепторов лимфоцитов крови больных атопическим дерматитом // Аллергология и иммунология. 2004; 5 (1): 54–70. Salmasi J.M., Poryadin G.V., Alieva Z.O., Kazimirskiy A.N. Kharakteristika poverkhnostnykh receptorov limfocitov krovi bolnykh atopicheskim dermatitom [Characteristics of surface receptors of blood lymphocytes in patients with atopic dermatitis] // Allergologiya i immunologiya – Allergology and Immunology. 2004; 5 (1): 54–70 (in Russian).; Fabian E., Pölöskey P., Kósa L., Elmadfa I., Réthy L.A. Activities of antioxidant enzymes in relation to oxidative and nitrosative challenges in childhood asthma // J. Asthma. 2011; 48 (4): 351–357.; Ahmad A., Shameem M., Husain Q. Relation of oxidant-antioxidant imbalance with disease progression in patients with asthma // Ann. Thorac. Med. 2012; 7 (4): 226–232.; Fatani S.H. Biomarkers of oxidative stress in acute and chronic bronchial asthma // J. Asthma. 2014; 51 (6): 578–584.; Kazimirskiy A.N., Salmasi J.M., Makarov T.V., Poryadin G.V., Terentev A.A. Immune depression effect of oligopeptides from pregnancy specific globulin and carcinoembryonic antigen J. Intern. Socity for Oncoloqy and Biomarkers // Tumor Biology. 2010; 44: 31, ОР-12.; Poryadin G.V., Salmasi J.M., Semenova L.Yu. Anti-inflammatory effect of plant composition of Tibetan medicine in vitro on early rheumatoid arthritis // Health. 2011; 3 (9): 560–565.; Oflazoglu E., Grewal I.S., Gerber H. Targeting CD30/ CD30L in oncology and autoimmune and inflammatory diseases // Adv. Exp. Med. Biol. 2009; 647: 174–185.; Rojas-Ramos E., Garfias Y., Jiménez-Martínez Mdel ., Martínez-Jiménez N., Zenteno E., Gorocica P., Lascurain R. Increased expression of CD30 and CD57 molecules on CD4(+) T cells from children with atopic asthma: a preliminary report // Allergy Asthma Proc. 2007; 28 (6): 659–666.; Беловешкин А.Г. Роль телец Гассаля тимуса человека в позитивной и негативной селекции тимоцитов // Молодой ученый. 2012; 7: 334–338. Beloveshkin A.G. Rol telecz Gassalya timusa cheloveka v pozitivnoy i negativnoy selekcii timocitov [The role of Kassala Taurus thymus of a person in positive and negative selection of thymocytes] // Molodoy uchenyy – Young Scientist. 2012; 7: 334–338 (in Russian).; Ярилин А.А., Балабанова Р.М., Латышева Т.В., Никонова М.Ф., Варфоломеева М.И., Григорьева Т.Ю., Станислав М.Л. Неравномерное вовлечение в активационный апоптоз Т-лимфоцитов субклассов CD4+ и CD8+ и высокая чувствительность к нему CD30+ клеток крови здоровых лиц и больных с иммунопато- логией // Иммунология. 2002; 5: 262–267. Yarilin A.A., Balabanova R.M., Latysheva T.V., Nikonova M.F., Varfolomeeva M.I., Grigoreva T.Yu., Stanislav M.L. Neravnomernoe vovlechenie v aktivacionnyy apoptoz T-limfocitov subklassov CD4+ i CD8+ i vysokaya chuvstvitelnost k nemu CD30+ kletok krovi zdorovykh licz i bolnykh s immunopatologiey [Uneven involvement in the activation of apoptosis of T-lymphocytes subclasses of CD4+ and CD8+ and high sensitivity to CD30+ cells in the blood of healthy individuals and patients with immunopathologies] // Immunologiya – Immunology. 2002; 5: 262–267 (in Russian).; Romagnani P., Annunziato F., Manetti R., Mavilia C., Lasagni L., Manuelli C., Vannelli G.B., Vanini V., Maggi E., Pupilli C., Romagnani S. High CD30 ligand expression by epithelial cells and hassal”s corpuscles in the medulla of human thymus. // Blood. 1998; 91 (9): 3323–3332.; Oflazoglu E., Simpson E.L., Takiguchi R., Grewal I.S., Hanifin J.M., Gerber H.P. CD30 expression on CD1a+ and CD8+ cells in atopic dermatitis and correlation with disease severity. // Eur. J. Dermatol. 2008;18 (1): 41–49.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1040

Διαθεσιμότητα: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/1040
https://doi.org/10.20538/1682-0363-2017-4-233-241

View record from BASE

10

Report