СПЕКТР МИКРОФЛОРЫ И УРОВЕНЬ ОБСЕМЕНЁННОСТИ НЕОГНЕСТРЕЛЬНЫХ РАН МЯГКИХ ТКАНЕЙ НА ДОГОСПИТАЛЬНОМ И СПЕЦИАЛИЗИРОВАННОМ ЭТАПАХ ОКАЗАНИЯ ПЕРВИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ

Subject Terms: Ключевые слова: неогнестрельные раны, микробная обсеменённость, микрофлора ран, первичная медицинская помощь, догоспитальный этап, военнослужащие, антибиотикочувствительность, бактериологический мониторинг, госпитальная инфекция

СПЕКТР МИКРОФЛОРЫ И УРОВЕНЬ ОБСЕМЕНЁННОСТИ НЕОГНЕСТРЕЛЬНЫХ РАН МЯГКИХ ТКАНЕЙ НА ДОГОСПИТАЛЬНОМ И СПЕЦИАЛИЗИРОВАННОМ ЭТАПАХ ОКАЗАНИЯ ПЕРВИЧНОЙ МЕДИЦИНСКОЙ ПОМОЩИ

Subject Terms: Ключевые слова: неогнестрельные раны, микробная обсеменённость, микрофлора ран, первичная медицинская помощь, догоспитальный этап, военнослужащие, антибиотикочувствительность, бактериологический мониторинг, госпитальная инфекция

Микроорганизмы внутренней поверхности медицинских масок и стоматологический статус лиц, использующих данные средства защиты

Subject Terms: микробная контаминация, Green-Vermillion oral hygiene index, time of use, гигиенический индекс полости рта Грина-Вермильона, disposable face masks, антибиотикочувствительность, microbial contamination, время использования, одноразовые лицевые маски, antibiotic sensitivity

Mikrobiom respiratornogo trakta pri ostrykh respiratornykh zabolevaniiakh

Authors: Anna Aleksandrovna Shakhmatova, Irina Aleksandrovna Shitova, Elena Ivanovna Antonova

Source: Fundamental and applied research for key propriety areas of bioecology and biotechnology; 90-98
Фундаментальные и прикладные исследования по приоритетным направлениям биоэкологии и биотехнологии; 90-98

Subject Terms: респираторный тракт, времяпролетная масс-спектрометрия, микробиом, антибиотикочувствительность

File Description: text/html

Access URL: https://phsreda.com/article/107071/discussion_platform
https://doi.org/10.31483/r-107071
https://phsreda.com/files/Books/10473/Cover-10473.jpg?req=107071

Piperacillin/tazobactam in modern clinical practice

Authors: Bereznyakov, Igor

Source: Perioperative Medicine, Vol 5, Iss 1 (2022)
Perioperaciina Medicina; Том 5 № 1 (2022): Perioperative Medicine; 12-20
Perioperaciina Medicina; Vol. 5 No. 1 (2022): Perioperative Medicine; 12-20

Subject Terms: пиперациллин/тазобактам, nosocomial pneumonias, prolonged infusions, Рефекс, продлённые инфузии, антибиотикочувствительность, піперацилін/тазобактам, susceptibility to antibiotics, 3. Good health, подовжені інфузії, piperacillin/tazobactam, Medicine, чутливість до антибіотиків, Refex, нозокоміальні пневмонії, нозо- комиальные пневмонии

File Description: application/pdf

Access URL: https://doaj.org/article/6150b0a86ed444c59e381a9b83f8c0cb
https://perioperative.org.ua/index.php/prtmdc/article/view/100

Антибиотикочувствительность и антибиотикорезистентность по данным Киевской городской детской клинической инфекционной больницы за период с 2012 по 2016 год

Authors: Vygovska, O.V., Grechuha, E.A., Tkachuk, O.I.

Source: Aktualʹnaâ Infektologiâ, Vol 5, Iss 5, Pp 217-222 (2017)
ACTUAL INFECTOLOGY; Том 5, № 5 (2017); 217-222
Актуальная инфектология-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 5, № 5 (2017); 217-222
Актуальна інфектологія-Aktualʹnaâ Infektologiâ; Том 5, № 5 (2017); 217-222

Subject Terms: 0301 basic medicine, Staphylococcus aureus, antibiotic resistance, Streptococcus pyogenes, Infectious and parasitic diseases, RC109-216, antibiotic susceptibility, infectious diseases, bacteria, researches, Klebsiella pneumoniae, антибіотикорезистентність, антибіотикочутливість, інфекційні захворювання, бактерії, дослідження, 3. Good health, 03 medical and health sciences, антибиотикорезистентность, антибиотикочувствительность, инфекционные заболевания, бактерии, исследования, Klebsiella pneumoniае

File Description: application/pdf

Access URL: https://doaj.org/article/9740dff642bf4128b8842360d583e692
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/121632
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/download/121632/118247
http://ai.zaslavsky.com.ua/article/view/121632

Antimicrobial Susceptibility Testing to Erythromycin and Azithromycin of Clinical Isolates of Bordetella pertussis Circulating in Russia ; Антибиотикочувствительность выделенных на территории России штаммов Bordetella pertussis к эритромицину и азитромицину

Authors: A. S. Pimenova, N. T. Gadua, I. Yu. Andrievskaya, O. Yu. Borisova, M. S. Petrova, A. B. Borisova, S. S. Afanas'ev, I. V. Podoprigora, M. S. Afanas'ev, T. I. Moskvina, G. V. Vorob'eva, I. M. Degtyareva, O. V. Timirkina, S. A. Luk'yanceva, T. N. Trigorlova, А. С. Пименова, Н. Т. Гадуа, И. Ю. Андриевская, О. Ю. Борисова, М. С. Петрова, А. Б. Борисова, С. С. Афанасьев, И. В. Подопригора, М. С. Афанасьев, Т. И. Москвина, Г. В. Воробьева, И. М. Дегтярева, О. В. Тимиркина, С. А. Лукьянцева, Т. Н. Тригорлова

Source: Epidemiology and Vaccinal Prevention; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; Эпидемиология и Вакцинопрофилактика; Том 23, № 3 (2024); 27-37 ; 2619-0494 ; 2073-3046

Subject Terms: гомозиготный фенотип, Bordetella pertussis, antimicrobial susceptibility, erythromycin, azithromycin, disk diffusion method, gradient method, minimum inhibitory concentration, homozygous phenotype, антибиотикочувствительность, эритромицин, азитромицин, диско-диффузионный метод, градиентный метод, минимальная подавляющая концентрация

File Description: application/pdf

Relation: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011/1033; Pechere J.C. Macrolide resistance mechanisms in Gram-positive cocci // International Journal of Antimicrobial Agents. 2001. Vol. 18. Suppl. 1. P. 25–28.; Bartkus J.M., Juni B.A., Ehresmann K., et al. Identification of a mutation associated with erythromycin resistance in Bordetella pertussis: implications for surveillance of antimicrobial resistance // Journal of Clinical Microbiology. 2003. Vol. 41, № 3. P. 1167–1172.; Menninger J.R. Functional consequences of binding macrolides to ribosomes // The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 1985. Vol. 16. Suppl. A. P. 23–34.; Бакулина Н. А., Ефимова О. Г., Высотский В. В. и др. Ультраструктура свежевыделенных штаммов B. Pertussis. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1984. Т. 61, № 11. С. 24–26.; Wang Z., Han R., Liu Y., et al. Direct detection of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in clinical specimens by PCR. Journal of Clinical Microbiology. 2015. Vol. 53, № 11. P. 3418–3422.; Waters V., Halperin S.A. Bordetella pertussis. In: Bennett J.E., Dolin R., Blaser M.J., editors. Mandell, Douglas, and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 8th edition. Philadelphia: Elsevier Science; 2014. P. 2619–2628.; Lewis K., Saubolle M.A., Tenover F.C., et al. Pertussis caused by an erythromycin-resistant strain of Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995. Vol. 14, № 5. P. 388–391.; Korgenski K., Daly J.A. Surveillance and detection of erythromycin resistance in Bordetella pertussis isolates recovered from a pediatric population in the Intermountain West Region of the United States. Journal of Clinical Microbiology. 1997. Vol. 35, № 11. P. 2989–2991.; Mirzaei B., Bameri Z., Babaei R., et al Isolation of high level macrolide resistant Bordetella pertussis without transition mutation at domain V in Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015. Vol. 8, № 7. P. e18190.; Guillot S., Descours G., Gillet Y., et al. Macrolide resistant Bordetella pertussis infection in newborn girl, France. Emerging Infectious Diseases. 2012. Vol. 18, № 6. P. 966–968.; Kamachi K., Duong H.T., Dang A.D., et al. Macrolide-resistant Bordetella pertussis, Vietnam, 2016–2017. Emerging Infectious Diseases. 2020. Vol. 26, № 10. P. 2511–2513.; Wilson K.E., Cassiday P.K., Popovic T., et al. Bordetella pertussis isolates with a heterogeneous phenotype for erythromycin resistance. Journal of Clinical Microbiology. 2002. Vol. 40, № 8. P. 2942–2944.; Xu Z., Wang Z., Luan Y., et al. Genomic epidemiology of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in China. Emerging Microbes & Infections. 2019. Vol. 8, № 1. P. 461–470.; Li L., Deng J., Ma X., et al. High prevalence of macrolide-resistant Bordetella pertussis and ptxP1 genotype, mainland China, 2014–2016. Emerging Infectious Diseases. 2019. Vol. 25, № 12. P. 2205–2214.; Wang Z., Cui Z., Li Y., et al. High prevalence of erythromycin-resistant Bordetella pertussis in Xi’an, China. Clinical Microbiology and Infection. 2014. Vol. 20, № 11. P. O825–O830.; Yang Y., Yao K., Ma X., et al. Variation in Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin and virulence-related genotype changes in China (1970–2014). PLoS One. 2015. Vol. 10, № 9. P. e0138941.; Feng Y., Chiu C.H., Heininger U., et al. Emerging macrolide resistance in Bordetella pertussis in mainland China: findings and warning from the global pertussis initiative. The Lancet regional health. Western Pacific. 2021. Vol. 8. P. 100098.; Dinu S., Guillot S., Dragomirescu C.C., et al. Whooping cough in South-East Romania: a 1-year study. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2014. Vol. 78, № 3. P. 302–306.; Fry N.K., Duncan J., Vaghji L., et al. Antimicrobial susceptibility testing of historical and recent clinical isolates of Bordetella pertussis in the United Kingdom using the Etest method. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 2010. Vol. 29, № 9. P. 1183–1185.; Galanakis E., Englund J.A., Abe P., et al. Antimicrobial susceptibility of Bordetella pertussis isolates in the state of Washington. International Journal of Antimicrobial Agents. 2007. Vol. 29, № 5. P. 609–611.; Horiba K., Nishimura N., Gotoh K., et al. Clinical manifestations of children with microbiologically confirmed pertussis infection and antimicrobial susceptibility of isolated strains in a regional hospital in Japan, 2008–2012. Japanese Journal of Infectious Diseases. 2014. Vol. 67, № 5. P. 345–348.; Jakubu V., Zavadilova J., Fabianova K., et al. Trends in the minimum inhibitory concentrations of erythromycin, clarithromycin, azithromycin, ciprofloxacin, and trimethoprim / sulfamethoxazole for strains of Bordetella pertussis isolated in the Czech Republic in 1967–2015. Central European Journal of Public Health. 2017. Vol. 25, № 4. P. 282–286.; Marchand-Austin A., Memari N., Patel S.N., et al. Surveillance of antimicrobial resistance in contemporary clinical isolates of Bordetella pertussis in Ontario, Canada. International Journal of Antimicrobial Agents. 2014. Vol. 44, № 1. P. 82–84.; Sintchenko V., Brown M., Gilbert G.L. Is Bordetella pertussis susceptibility to erythromycin changing? MIC trends among Australian isolates 1971–2006. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2007. Vol. 60, № 5. P. 1178–1179.; Souder E., Vodzak J., Evangelista A.T., et al. Antimicrobial susceptibility and molecular detection of pertactin-producing and pertactin-deficient Bordetella pertussis. The Pediatric Infectious Disease Journal. 2017. Vol. 36, № 1. P. 119–121.; Yao S.M., Liaw G.J., Chen Y.Y., et al. Antimicrobial susceptibility testing of Bordetella pertussis in Taiwan prompted by a case of pertussis in a paediatric patient. Journal of Medical Microbiology. 2008. Vol. 57. Pt. 12. P. 1577–1580.; Clinical and Laboratory Standards Institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing, 31st edition. USA: Clinical and Laboratory Standards Institute; 2021.; European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. Routine and extended internal quality control for MIC determination and disk diffusion as recommended by EUCAST, Version 11.0. Basel: EUCAST; 2021.; Hill B.C., Baker C.N., Tenover F.C. A simplified method for testing Bordetella pertussis for resistance to erythromycin and other antimicrobial agents. Journal of Clinical Microbiology. 2000. Vol. 38, № 3. P. 1151–1155.; Gordon K.A., Fusco J., Biedenbach D.J., et al. Antimicrobial susceptibility testing of clinical isolates of Bordetella pertussis from northern California: report from the SENTRY Antimicrobial Surveillance Program. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2001. Vol. 45, № 12. P. 3599–3600.; https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011

Availability: https://www.epidemvac.ru/jour/article/view/2011
https://doi.org/10.31631/2073-3046-2024-23-3-27-37

Микроорганизмы внутренней поверхности медицинских масок и стоматологический статус лиц, использующих данные средства защиты

Subject Terms: микробная контаминация, Green-Vermillion oral hygiene index, time of use, гигиенический индекс полости рта Грина-Вермильона, disposable face masks, антибиотикочувствительность, microbial contamination, время использования, одноразовые лицевые маски, antibiotic sensitivity

Effect of biogenic polyamines on sliding motility of mycobacteria in the presence of antibiotics ; Влияние биогенных полиаминов на скольжение микобактерий в присутствии антибиотиков

Authors: I. V. Tsyganov, A. G. Tkachenko, И. В. Цыганов, А. Г. Ткаченко

Source: Vavilov Journal of Genetics and Breeding; Том 26, № 5 (2022); 458-466 ; Вавиловский журнал генетики и селекции; Том 26, № 5 (2022); 458-466 ; 2500-3259 ; 10.18699/VJGB-22-50

Subject Terms: полиамины, sliding motility, antibiotic susceptibility, biogenic polyamines, скольжение, антибиотикочувствительность

File Description: application/pdf

Relation: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3438/1634; Gugliucci A. Polyamines as clinical laboratory tools. Clin. Chim. Acta. 2004;344(1-2):23-35. DOI 10.1016/j.cccn.2004.02.022.; Henrichsen J. Bacterial surface translocation: a survey and a classification. Bacteriol. Rev. 1972;36(4):478-503. DOI 10.1128/br.36.4. 478-503.1972.; Hölscher T., Kovács Á.T. Sliding on the surface: bacterial spreading without an active motor. Environ. Microbiol. 2017;19(7):2537-2545. DOI 10.1111/1462-2920.13741.; Kurihara S., Suzuki H., Tsuboi Y., Benno Y. Dependence of swarming in Escherichia coli K-12 on spermidine and the spermidine importer. FEMS Microbiol. Lett. 2009;294(1):97-101. DOI 10.1111/j.1574-6968.2009.01552.x.; Martínez A., Torello S., Kolter R. Sliding motility in mycobacteria. J. Bacteriol. 1999;181(23):7331-7338. DOI 10.1128/JB.181.23.7331-7338.1999.; Nolan L.M., Cavaliere R., Turnbull L., Whitchurch C.B. Extracellular ATP inhibits twitching motility-mediated biofilm expansion by Pseudomonas aeruginosa. BMC Microbiol. 2015;15:55. DOI 10.1186/s12866-015-0392-x.; Recht J., Martínez A., Torello S., Kolter R. Genetic analysis of sliding motility in Mycobacterium smegmatis. J. Bacteriol. 2000;182(15):4348-4351. DOI 10.1128/JB.182.15.4348-4351.2000.; Sarkar N.K., Shankar S., Tyagi A.K. Polyamines exert regulatory control on mycobacterial transcription: a study using RNA polymerase from Mycobacterium phlei. Biochem. Mol. Biol. Int. 1995;35:1189-1198.; Strollo S.E., Adjemian J., Adjemian M.K., Prevots D.R. The burden of pulmonary nontuberculous mycobacterial disease in the United States. Ann. Am. Thorac. Soc. 2015;12(10):1458-1464. DOI 10.1513/AnnalsATS.201503-173OC.; Tkachenko A.G., Kashevarova N.M., Sidorov R.Y., Nesterova L.Y., Akhova A.V., Tsyganov I.V., Vaganov V.Y., Shipilovskikh S.A., Rubtsov A.E., Malkov A.V. A synthetic diterpene analogue inhibits mycobacterial persistence and biofilm formation by targeting (p) ppGpp synthetases. Cell Chem. Biol. 2021;28(10):1420-1432.e9. DOI 10.1016/j.chembiol.2021.01.018.; Tran T., Bonham A.J., Chan E.D., Honda J.R. A paucity of knowledge regarding nontuberculous mycobacterial lipids compared to the tubercle bacillus. Tuberculosis (Edinb). 2019;115:96-107. DOI 10.1016/j.tube.2019.02.008.; Tsyganov I.V., Nesterova L.Yu., Tkachenko A.G. Involvement of polyamines in the regulation of “behavioral” reactions of microorganisms. In: History and Methodology of Physiological, Biochemical and Soil Research: Proceedings of the Conference dedicated to the 100th anniversary of the Department of Plant Physiology and Microorganisms, Perm State National Research University, Perm, October 18–19, 2017. Perm: Perm State University, 2017;111-112. (in Russian); Zamakhayev M.V., Grigorov A.S., Kaprel’yants A.S., Shumkov M.S. Mycobacterium smegmatis posesses active genes of polyamine metabolism. Vestnik Permskogo Universiteta. Biologiya = Bulletin of the Perm University. Series: Biology. 2018;3:284-291. DOI 10.17072/1994-9952-2018-3-284-291. (in Russian); Zamakhaev M., Tsyganov I., Nesterova L., Akhova A., Grigorov A., Bespyatykh J., Azhikina T., Tkachenko A., Shumkov M. Mycolicibacterium smegmatis possesses operational agmatinase but contains no detectable polyamines. Int. J. Mycobacteriol. 2020;9(2):138-143. DOI 10.4103/ijmy.ijmy_48_20.; https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3438

Availability: https://vavilov.elpub.ru/jour/article/view/3438
https://doi.org/10.18699/VJGB-22-56

Molecular genetic characteristics of Vibrio cholerae nono1/nono139 strain, the causative agent of a new case of acute intestinal infection in Rostov-on-Don ; Молекулярно-генетическая характеристика штамма Vibrio cholerae nono1/nono139 — возбудителя нового случая острой кишечной инфекции в Ростове-на-Дону

Authors: Monakhova E. ., Kruglikov V.D., Vodop'yanov A.S., Selyanskaya N.A., Ezhova M.I., Noskov A.K.

Source: Russian Journal of Infection and Immunity; Vol 12, No 6 (2022); 1156-1162 ; Инфекция и иммунитет; Vol 12, No 6 (2022); 1156-1162 ; 2313-7398 ; 2220-7619

Subject Terms: Vibrio cholerae nonO1/nonO139 (NAGs), acute intestinal infections, pathogenicity factors, antibiotic susceptibility, whole genome sequencing, bioinformatics analysis, холерные вибрионы нeО1/неО139 (НАГ-вибрионы), острые кишечные инфекции, факторы патогенности, антибиотикочувствительность, полногеномное секвенирование, биоинформационный анализ

File Description: application/pdf

Relation: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2022/1612; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2022/1635; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8687; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8688; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8689; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8690; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8691; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8692; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8693; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/8694; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/9170; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/9420; https://iimmun.ru/iimm/article/downloadSuppFile/2022/9421; https://iimmun.ru/iimm/article/view/2022

Availability: https://iimmun.ru/iimm/article/view/2022
https://doi.org/10.15789/2220-7619-MGC-2022

Nosocomial infectious complications in patients with urological malignancies ; Внутрибольничные инфекционные осложнения у онкоурологических больных

Authors: N. V. Dmitrieva, V. V. Aginova, I. N. Petukhova, E. N. Sokolova, S. A. Dyakova, Z. V. Grigoryevskaya, E. N. Kulaga, Н. В. Дмитриева, В. В. Агинова, И. Н. Петухова, Е. Н. Соколова, С. А. Дьякова, З. В. Григорьевская, Е. В. Кулага

Source: Cancer Urology; Том 17, № 1 (2021); 126-133 ; Онкоурология; Том 17, № 1 (2021); 126-133 ; 1996-1812 ; 1726-9776

Subject Terms: антибиотикочувствительность, nosocomial infection pathogens, taxonomic structure, ESKAPE group, antibiotic sensitivity, возбудитель нозокомиальных инфекций, таксономическая структура микроорганизмов, бактерии группы ESKAPE

File Description: application/pdf

Relation: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1334/1260; Петухова И.Н., Соколовский А.В., Григорьевская З.В. и др. Инфекции, связанные с установкой инородных материалов (протезы, сетки, импланты). Злокачественные опухоли 2017;(3s1):57-60. DOI:10.18027/2224-5057-2017-3s1-57-60.; Mulvey M.A., Klumpp D.J., Stapleton A.E. Urinary tract infections: molecular pathogenesis and clinical management. 2nd edn. 2017. 675 p.; Tancheva S., Micheva I., Marinova I. et al. Infections in urinary tract of patients with haematological malignancies undergoing antineoplastic therapy. J IMAB-Ann Proc (Sci Papers) 2009;15(3):95-7. DOI:10.5272/jimab.1512009_95.; Дмитриева Н.В., Эйдельштейн М.В., Агинова В.В. и др. Нозокомиальные инфекции, вызванные Pseudomonas aeruginosa, в онкологической клинике. Сибирский онкологический журнал 2019;18(2):28-34. DOI:10.21294/1814-4861-2019-18-2-28-34.; Землянко О.М., Рогоза Т.М., Журавлева Г.А. Механизмы множественной устойчивости бактерий к антибиотикам. Экологическая генетика 2018;16(3):4-17. DOI:10.17816/ecogen1634-17.; Гончаров А.Е. Молекулярно-генетический мониторинг за эпидемическими клонами Staphylococcus aureus и Acinetobacter baumannii в системе эпидемиологического надзора за внутрибольничными инфекциями. Дис. . д-ра медицинских наук. 14.02.02. Санкт-Петербург, 2017. 312 с.; Григорьевская З.В., Петухова И.Н., Багирова Н.С. и др. Нозокомиальные инфекции у онкологических больных: проблема нарастающей резистентности грамотрицательных микроорганизмов. Сибирский онкологический журнал 2017;16(1):91-7. DOI:10.21294/1814-4861-2017-16-1-91-97.; Talebi M., Sadeghi J., Pourshafie M.R. Molecular characterization of vancomycin-resistant Enterococcus faecium isolated from intensive care units. Curr Microbiol 2014;68:615-20. DOI:10.1007/s00284-013-0517-0.; Santajit S., Indrawattana N. Mechanisms of antimicrobial resistance in ESKAPE pathogens. Biomed Res Int 2016;2016: 2475067. DOI:10.1155/2016/2475067.; Агинова В.В. Профилактика нозокомиальных инфекций в онкологической клинике. Днс. канд. биологических наук. М., 2018. 144 с.; Naber K.G., Schito G., Botto H. et al. Surveillance study in Europe and Brazil on clinical aspects and Antimicrobial Resistance Epidemiology in Females with Cystitis (ARESC): implications for empiric therapy. Eur Urol 2008;54(5):1164-75. DOI:10.1016/j.eururo.2008.05.010.; Bonkat G. (Chair), Bartoletti R., Bruyere F. et al. EUA Guadelines Urological Infections, 2020.; https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1334

Availability: https://oncourology.abvpress.ru/oncur/article/view/1334
https://doi.org/10.17650/1726-9776-2021-17-1-126-133

МИКРОФЛОРА МОЛОКА БОЛЬНЫХ СУБКЛИНИЧЕСКИМ МАСТИТОМ КОРОВ И ОВЦЕМАТОК И ЕЁ АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ

Authors: Ayub Yusupovich Aliyev, Bulatkhan Bisoltanovich Bulatkhanov, Mustafa Zakaryaevich Magomedov, Abdulatip Saadulavich Magomedov, Nikolai Timofeevich Klimov

Source: Ветеринарная патология, Vol 0, Iss 2, Pp 43-48 (2019)

Subject Terms: коровы, овцематки, молочная железа, микрофлора, субклинический мастит, секрет молочной железы, антибиотикочувствительность, Veterinary medicine, SF600-1100

File Description: electronic resource

Relation: https://www.vetpat.ru/jour/article/view/150; https://doaj.org/toc/2949-4826

Access URL: https://doaj.org/article/1dae22fae4f44d6bae27f2d6def6bac7

TO CHARACTERISTICS OF THE ETIOLOGICAL STRUCTURE AND ANTIBIOTIC SENSITIVITY PATHOGENSOF INFECTIOUS RESPIRATORY ORGANS IN NEWBORN AFTER ARTIFICIAL PULMONARY VENTILATION

Source: PAIN, ANAESTHESIA & INTENSIVE CARE; No. 4(97) (2021); 34-40
PAIN, ANAESTHESIA & INTENSIVE CARE; № 4(97) (2021); 34-40

Subject Terms: infectious complications after mechanical ventilation, новонароджені, антибиотикочувствительность, инфекционные осложнения после ИВЛ, новорожденные, інфекційні ускладнення, ВАП, ШВЛ, antibiotic sensitivity, 3. Good health, Newborns, антибіотикочутливість

File Description: application/pdf

Access URL: http://jpaic.aaukr.org/article/view/248394

Bacterial “landscape” of purulent focus and principles of antibiotic therapy in patients with diabetic foot syndrome ; Бактериальньій “пейзаж” гнойного очага и принципьі антибактериальной терапии у больньіх c синдромом диабетической стопьі ; Бактеріальний “пейзаж” гнійного осередку та принципи антибактеріальної терапії у хворих із синдромом діабетичної стопи

Authors: Dzyubanovsky, I. Ya., Atoshchuk, R. Ya.

Source: Hospital Surgery. Journal named by L.Ya. Kovalchuk; No. 1 (2018); 67-72 ; Госпитальная хирургия. Журнал имени Л.А. Ковальчука; № 1 (2018); 67-72 ; Шпитальна хірургія. Журнал імені Л. Я. Ковальчука; № 1 (2018); 67-72 ; 2414-4533 ; 1681-2778 ; 10.11603/2414-4533.2018.1

Subject Terms: diabetic foot syndrome, bacterial landscape, antibiotic susceptibility, синдром диабетической стопы, бактериальный пейзаж, антибиотикочувствительность, синдром діабетичної стопи, бактеріальний пейзаж, антибіотикочутливість

File Description: application/pdf

Relation: https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/surgery/article/view/8880/8202; https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/surgery/article/view/8880; https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/13243

Availability: https://repository.tdmu.edu.ua//handle/123456789/13243
https://ojs.tdmu.edu.ua/index.php/surgery/article/view/8880
https://doi.org/10.11603/2414-4533.2018.1.8880

Маркеры антибиотикорезистентности – необходимый инструмент многих клинических направлений

Authors: Tutchenko, T. M., Burka, O. A., Marfina, Y. A., Tarasiuk, T. Y., Illiashenko, T. A.

Source: Reproductive Endocrinology; № 56 (2020); 49-56
Репродуктивная эндокринология; № 56 (2020); 49-56
Репродуктивна ендокринологія; № 56 (2020); 49-56

Subject Terms: 03 medical and health sciences, антибиотикорезистентность, антибиотикочувствительность, маркеры резистентности, β-лактамазы расширенного спектра, карбапенемазы, 0302 clinical medicine, антибіотикорезистентність, антибіотикочутливість, маркери резистентності, β-лактамази розширеного спектра, карбапенемази, 3. Good health, antibiotic resistance, antibiotic suseptibility, resistance markers, extended spectrum β-lactamases, carbapenemases

File Description: application/pdf

Access URL: http://reproduct-endo.com/article/view/222080

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ ИНФЕКЦИЙ МОЧЕВЫВОДЯЩЕЙ СИСТЕМЫ У ЖЕНЩИН ФЕРТИЛЬНОГО ВОЗРАСТА НА АМБУЛАТОРНОМ ЭТАПЕ: FEATURES OF THE COURSE OF URINARY TRACT INFECTIONS IN WOMEN OF CHILD BEARING AGE ON AN OUTPATIENT BASIS

Source: Наука и здравоохранение.

Subject Terms: антибиотикорезистенттілік, antibiotic resistance, diagnosis, urostomy, антибиотикочувствительность, диагностика, уроштаммдар, Urinary tract infections, инфекции мочевыделительной системы, 3. Good health, антибиотикорезистентность, уроштаммы, women of childbearing age, фертильді жастағы әйелдер, антибиотик сезімталдық, женщины фертильного возраста, зәр шығару жүйесінің инфекциялары, antibiotic susceptibility

БИОХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ФЕЦЕС КУЛЬТУР E. COLI И ЧУВСВИТЕЛЬНОСТЬ ЭШЕРИХИЙ К АНТИБИОТИКАМ

Subject Terms: жидкие среды, эшерихиоз, бактериологическое исследование, escherichiosis, антибиотикочувствительность, антибиотики, 6. Clean water, antibiotics, antibiotic sensitivity, 3. Good health, liquid media, feces, bacteriological research, фецес

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ ИНФЕКЦИЙ МОЧЕВЫВОДЯЩЕЙ СИСТЕМЫ У ЖЕНЩИН ФЕРТИЛЬНОГО ВОЗРАСТА НА АМБУЛАТОРНОМ ЭТАПЕ

Subject Terms: антибиотикорезистенттілік, antibiotic resistance, diagnosis, urostomy, антибиотикочувствительность, диагностика, уроштаммдар, Urinary tract infections, инфекции мочевыделительной системы, 3. Good health, антибиотикорезистентность, уроштаммы, women of childbearing age, фертильді жастағы әйелдер, антибиотик сезімталдық, женщины фертильного возраста, зәр шығару жүйесінің инфекциялары, antibiotic susceptibility

ДИСКО-ДИФФУЗНЫЙ МЕТОД В ОПРЕДЕЛЕНИИ ВЫБОРА АНТИБАКТЕРИАЛЬНЫХ ПРЕПАРАТОВ ПРИ ЛЕЧЕНИИ ЭНДОМЕТРИТА КОЗЫ

Subject Terms: коза, антибиотикочувствительность, эндометрит, микробиологический анализ

Анализ этиологической структуры и антибиотикочувствительности возбудителей инфекции дыхательных путей, выделенных в г. Махачкала ; Analysis of the etiological structure and antibiotic sensitivity of patents to infection of respiratory tract determined in Makhachkala

Authors: Omarova, S. M., Isaeva, R. I., Saidova, P. S., Akaeva, F. S., Bagandova, D. Sh., Омарова, С. М., Исаева, Р. И., Саидова, П. С., Акаева, Ф. С., Багандова, Д. Ш.

Subject Terms: INFECTIONS OF THE PULMONARY SYSTEM, ETIOLOGICAL STRUCTURE, ANTIBIOTIC SENSITIVITY, ИНФЕКЦИИ ОРГАНОВ ЛЕГОЧНОЙ СИСТЕМЫ, ЭТИОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА, АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ

File Description: application/pdf

Relation: Уральский медицинский журнал. 2019. Т. 171, № 3.; http://elib.usma.ru/handle/usma/12534

Availability: http://elib.usma.ru/handle/usma/12534