Εμφανίζονται 1 - 20 Αποτελέσματα από 240 για την αναζήτηση '"ЭТНИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ"', χρόνος αναζήτησης: 0,87δλ Περιορισμός αποτελεσμάτων
  1. 1
  2. 2
  3. 3
  4. 4
  5. 5
    Academic Journal

    Πηγή: Manchaara Games: Generational continuity in the development of national sports – 2025; 9-12 ; Игры Манчаары: преемственность поколений в развитии национальных видов спорта – 2025; 9-12

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-907965-74-4; https://phsreda.com/e-articles/10741/Action10741-139161.pdf; Мандзяк А.С. Энциклопедия традиционных видов борьбы народов мира / А.С. Мандзяк, О.Л. Артеменко. – Минск, 2010. – 562 с.; https://phsreda.com/article/139161/discussion_platform

  6. 6
  7. 7
    Academic Journal

    Πηγή: SCIENTIFIC JOURNAL OF APPLIED AND MEDICAL SCIENCES; Vol. 3 No. 5 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 304-310 ; НАУЧНЫЙ ЖУРНАЛ ПРИКЛАДНЫХ И МЕДИЦИНСКИХ НАУК; Том 3 № 5 (2024): AMALIY VA TIBBIYOT FANLARI ILMIY JURNALI; 304-310 ; 2181-3469

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

  8. 8
    Academic Journal

    Συνεισφορές: The study was funded by the Stavropol State Medical University МОH Russia., Исследование финансировалось ФГБОУ ВО «Ставропольский государственный медицинский университет» Минздрава России.

    Πηγή: Pharmacogenetics and Pharmacogenomics; № 1 (2024); 14-19 ; Фармакогенетика и фармакогеномика; № 1 (2024); 14-19 ; 2686-8849 ; 2588-0527

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.pharmacogenetics-pharmacogenomics.ru/jour/article/view/279/267; Patrono C. Aspirin resistance: definition, mechanisms and clinical read-outs. J Thromb Haemost. 2003 Aug;1(8):1710-3. doi:10.1046/j.1538-7836.2003.00284.x.; Сулимов В.А., Мороз Е.В. Резистентность к антитромбоцитарным препаратам у больных ишемической болезнью сердца. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2012;11(6):71-77. doi:10.15829/1728-8800-2012-6-71-77.; Андреев Д.А. Роль тестирования функциональной активности тромбоцитов в профилактике сердечно-сосудистых осложнений у больных, получающих антитромбоцитарную терапию. Рациональная фармакотерапия в кардиологии. 2014;10(6):679-687. doi:10.20996/1819-6446-2014-10-6-679-687; Комаров А.Л., Панченко Е.П. Тестирование функции тромбоцитов для оценки риска тромбозов и кровотечений у больных ИБС, получающих антиагреганты. Российский кардиологический журнал. 2015; 3 (119): 25-34. DOI:10.15829/1560-4071-2015-03-25-34; Батурин В.А., Царукян А.А., Яковлева Н.В., Эльканова А.И. Этнические особенности терапевтического действия сердечно-сосудистых лекарственных средств у жителей Ставропольского края. Ставрополь: Изд. СтГМУ, 2016. 154 с.; Батурин В.А., Иванова А.В., Царукян А.А., Муравьев К.А. Оценка антиагрегантного действия ацетилсалициловой кислоты в зависимости от массы тела больных. Сборник тезисов VI Съезда терапевтов СКФО. Ставрополь 28-29 апреля 2022: 9-10.; Ломакин Н.В., Бурячковская Л.И., Сумароков А.Б. и др. «Терапевтическое окно» лабораторной эффективности антитромбоцитарной терапии. Результаты субанализа регистра острого коронарного синдрома реальной клинической практики (КАРДИО-ЦКБ). Клиническая фармакология и терапия. 2019;28(3):14-20. doi:10.32756/0869-5490-2019-3-14-20.; Мазур Н.А., Ломоносова А.А., Золозова Е.А., и др. Возможности коррекции высокой остаточной реактивности тромбоцитов на терапии дезагрегантами. Российский кардиологический журнал. 2012;4(96):74-78.; Батурин В.А., Иванова А.В., Муравьев К.А., и др. Этнические особенности антиагрегантного действия ацетилсалициловой кислоты у жителей Ставропольского края. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2020;15(1):68-71. doi:10.14300/mnnc.2020.15015/

  9. 9
  10. 10
  11. 11
    Academic Journal

    Πηγή: Relevant lines of scientific research: theory and practice; 37-42 ; Актуальные направления научных исследований: перспективы развития; 37-42

    Περιγραφή αρχείου: text/html

    Relation: info:eu-repo/semantics/altIdentifier/isbn/978-5-6047675-0-4; https://interactive-plus.ru/e-articles/796/Action796-555893.pdf; Амонашвили Ш.А. Здравствуйте, дети! Пособие для учителя. – М.: Просвещение, 1983. – 208 с.; Караковский В.А. Общечеловеческие ценности – основа целостного учебно-воспитательного процесса // Воспитание школьников. – 1993. – №2–5.; Лихачев Б.Т. Введение в теорию и историю воспитательных ценностей: (Теорет.-ист. анализ воспитат. ценностей в России в XIX и XX вв.) / Самар. ин-т упр., Рос. акад. образования, Поволж. фил. Ин-та развития личности. – Самара: СИУ, 1997. – 84 с.; Сухомлинский В.А. Рождение гражданина. – М.: Молодая гвардия, 1971. – 336 с.

  12. 12
  13. 13
    Academic Journal

    Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 20, № 5 (2021); 162-169 ; Сибирский онкологический журнал; Том 20, № 5 (2021); 162-169 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2021-20-5

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1929/914; Ruijter E., van de Kaa C., Miller G., Ruiter D., Debruyne F., Schalken J. Molecular genetics and epidemiology of prostate carcinoma. Endocr Rev. 1999 Feb; 20(1): 22–45. doi:10.1210/edrv.20.1.0356.; Franceschi S., Wild C.P. Meeting the global demands of epidemiologic transition – the indispensable role of cancer prevention. Mol Oncol. 2013 Feb; 7(1): 1–13. doi:10.1016/j.molonc.2012.10.010.; Аксель Е.М. Заболеваемость злокачественными новообразованиями мочевых и мужских половых органов в России в 2003 году. Онкоурология. 2005; 1: 6–9.; Нургазиев Р.И., Сейтказина Г.Д., Байпеисов Д.М. Показатели онкологической службы Республики Казахстан за 2018 год (статистические материалы). Алматы. 2018; 2: 138 c.; Rowles J.L.3rd, Ranard K.M., Smith J.W., An R., Erdman J.W.Jr. Increased dietary and circulating lycopene are associated with reduced prostate cancer risk: a systematic review and meta-analysis. Prostate Cancer Prostatic Dis. 2017 Dec; 20(4): 361–377. doi:10.1038/pcan.2017.25.; Karunasinghe N., Lange K., Yeo Han D., Goudie M., Zhu S.H., Wang A., Bishop K.R., Ferguson L.G., Masters J. Androgen Pathway Related Gene Variants and Prostate Cancer Association in Auckland Men. Curr Pharmacog Personal Med. 2013, 11: 22–30.; Solana R., Tarazona R., Gayoso I., Lesur O., Dupuis G., Fulop T. Innate immunosenescence: effect of aging on cells and receptors of the innate immune system in humans. Semin Immunol. 2012 Oct; 24(5): 331–41. doi:10.1016/j.smim.2012.04.008.; Hajishengallis G. Aging and its Impact on Innate Immunity and Inflammation: Implications for Periodontitis. J Oral Biosci. 2014 Feb 1; 56(1): 30–37. doi:10.1016/j.job.2013.09.001.; Mahbub S., Brubaker A.L., Kovacs E.J. Aging of the Innate Immune System: An Update. Curr Immunol Rev. 2011; 7(1): 104–15. doi:10.2174/157339511794474181.; Kazma R., Mefford J.A., Cheng I., Plummer S.J., Levin A.M., Rybicki B.A., Casey G., Witte J.S. Association of the innate immunity and inflammation pathway with advanced prostate cancer risk. PLoS One. 2012; 7(12): e51680. doi:10.1371/journal.pone.0051680.; Craige S.M., Kant S., Reif M., Chen K., Pei Y., Angoff R., Sugamura K., Fitzgibbons T., Keaney J.F.Jr. Endothelial NADPH oxidase 4 protects ApoE-/- mice from atherosclerotic lesions. Free Radic Biol Med. 2015 Dec; 89: 1–7. doi:10.1016/j.freeradbiomed.2015.07.004.; Elmslie J.L., Sellman J.D., Schroder R.N., Carter F.A. The NEEDNT Food List: non-essential, energy-dense, nutritionally-deficient foods. NZ Med J. 2012 Feb 24; 125(1350): 84–92.; Zhuang L., Kim J., Adam R.M., Solomon K.R., Freeman M.R. Cholesterol targeting alters lipid raft composition and cell survival in prostate cancer cells and xenografts. J Clin Invest. 2005; 115(4): 959–68. doi:10.1172/JCI19935.; Brown A.J. Cholesterol, statins and cancer. Clin Exp Pharmacol Physiol. 2007 Mar; 34(3): 135–41. doi:10.1111/j.1440-1681.2007.04565.x.; Krycer J.R., Brown A.J. Cholesterol accumulation in prostate cancer: a classic observation from a modern perspective. Biochim Biophys Acta. 2013 Apr; 1835(2): 219–29. doi:10.1016/j.bbcan.2013.01.002.; Prabhu A.V., Krycer J.R., Brown A.J. Overexpression of a key regulator of lipid homeostasis, Scap, promotes respiration in prostate cancer cells. FEBS Lett. 2013 Apr 2; 587(7): 983–8. doi:10.1016/j.febslet.2013.02.040.; Huang C., Freter C. Lipid metabolism, apoptosis and cancer therapy. Int J Mol Sci. 2015 Jan 2; 16(1): 924–49. doi:10.3390/ijms16010924.; Rosca M.G., Vazquez E.J., Chen Q., Kerner J., Kern T.S., Hoppel C.L. Oxidation of fatty acids is the source of increased mitochondrial reactive oxygen species production in kidney cortical tubules in early diabetes. Diabetes. 2012 Aug; 61(8): 2074–83. doi:10.2337/db11-1437.; Dalleau S., Baradat M., Guéraud F., Huc L. Cell death and diseases related to oxidative stress: 4-hydroxynonenal (HNE) in the balance. Cell Death Differ. 2013 Dec; 20(12): 1615–30. doi:10.1038/cdd.2013.138.; Ellison P.T., Bribiescas R.G., Bentley G.R., Campbell B.C., Lipson S.F., Panter-Brick C., Hill K. Population variation in age-related decline in male salivary testosterone. Hum Reprod. 2002 Dec; 17(12): 3251–3. doi:10.1093/humrep/17.12.3251.; Kenny A.M., Prestwood K.M., Marcello K.M., Raisz L.G. Determinants of bone density in healthy older men with low testosterone levels. J Gerontol Am Biol Sci Med Sci. 2000 Sep; 55(9): M492–7. doi:10.1093/gerona/55.9.m49; Harman S.M., Metter E.J., Tobin J.D., Pearson J., Blackman M.R.; Baltimore Longitudinal Study of Aging. Longitudinal effects of aging on serum total and free testosterone levels in healthy men. Baltimore Longitudinal Study of Aging. J Clin Endocrinol Metab. 2001; 86(2): 724–31. doi:10.1210/jcem.86.2.7219.; Feldman H.A., Longcope C., Derby C.A., Johannes C.B., Araujo A.B., Coviello A.D., Bremner W.J., McKinlay J.B. Age trends in the level of serum testosterone and other hormones in middle-aged men: longitudinal results from the Massachusetts male aging study. J Clin Endocrinol Metab. 2002 Feb; 87(2): 589–98. doi:10.1210/jcem.87.2.8201.; Arnold J.T. DHEA metabolism in prostate: For better or worse? Mol Cell Endocrinol. 2009 Mar 25; 301(1–2): 83–8. doi:10.1016/j.mce.2008.10.019.; Wu F.C., Tajar A., Pye S.R., Silman A.J., Finn J.D., O’Neill T.W., Bartfai G., Casanueva F., Forti G., Giwercman A., Huhtaniemi I.T., Kula K., Punab M., Boonen S., Vanderschueren D.; European Male Aging Study Group. Hypothalamic-pituitary-testicular axis disruptions in older men are differentially linked to age and modifiable risk factors: the European Male Aging Study. J Clin Endocrinol Metab. 2008 Jul; 93(7): 2737–45. doi:10.1210/jc.2007-1972.; Araujo A.B., Wittert G.A. Endocrinology of the aging male. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2011; 25(2): 303–19. doi:10.1016/j.beem.2010.11.004.; Schatzl G., Madersbacher S., Thurridl T., Waldmüller J., Kramer G., Haitel A., Marberger M. High-grade prostate cancer is associated with low serum testosterone levels. Prostate. 2001 Apr; 47(1): 52–8. doi:10.1002/pros.1046.; Schaid D.J. The complex genetic epidemiology of prostate cancer. Hum Mol Genet. 2004 Apr 1; 13 Spec No 1: R103–21. doi:10.1093/hmg/ddh072.; Al Olama A.A., Kote-Jarai Z., Berndt S.I., Conti D.V., Schumacher F., Han Y., Benlloch S., Hazelett D.J., Wang Z., Saunders E., Leongamornlert D., Lindstrom S., Jugurnauth-Little S., Dadaev T., Tymrakiewicz M., Stram D.O., Rand K., Wan P., Stram A., Sheng X., Pooler L.C., Park K., Xia L., Tyrer J., Kolonel L.N., Le Marchand L., Hoover R.N., Machiela M.J., Yeager M., Burdette L., Chung C.C., Hutchinson A., Yu K., Goh C., Ahmed M., Govindasami K., Guy M., Tammela T.L., Auvinen A., Wahlfors T., Schleutker J., Visakorpi T., Leinonen K.A., Xu J., Aly M., Donovan J., Travis R.C., Key T.J., Siddiq A., Canzian F., Khaw K.T., Takahashi A., Kubo M., Pharoah P., Pashayan N., Weischer M., Nordestgaard B.G., Nielsen S.F., Klarskov P., Røder M.A., Iversen P., Thibodeau S.N., McDonnell S.K., Schaid D.J., Stanford J.L., Kolb S., Holt S., Knudsen B., Coll A.H., Gapstur S.M., Diver W.R., Stevens V.L., Maier C., Luedeke M., Herkommer K., Rinckleb A.E., Strom S.S., Pettaway C., Yeboah E.D., Tettey Y., Biritwum R.B., Adjei A.A., Tay E., Truelove A., Niwa S., Chokkalingam A.P., Cannon-Albright L., Cybulski C., Wokołorczyk D., Kluźniak W., Park J., Sellers T., Lin H.Y., Isaacs W.B., Partin A.W., Brenner H., Dieffenbach A.K., Stegmaier C., Chen C., Giovannucci E.L., Ma J., Stampfer M., Penney K.L., Mucci L., John E.M., Ingles S.A., Kittles R.A., Murphy A.B., Pandha H., Michael A., Kierzek A.M., Blot W., Signorello L.B., Zheng W., Albanes D., Virtamo J., Weinstein S., Nemesure B., Carpten J., Leske C., Wu S.Y., Hennis A., Kibel A.S., Rybicki B.A., Neslund-Dudas C., Hsing A.W., Chu L., Goodman P.J., Klein E.A., Zheng S.L., Batra J., Clements J., Spurdle A., Teixeira M.R., Paulo P., Maia S., Slavov C., Kaneva R., Mitev V., Witte J.S., Casey G., Gillanders E.M., Seminara D., Riboli E., Hamdy F.C., Coetzee G.A., Li Q., Freedman M.L., Hunter D.J., Muir K., Gronberg H., Neal D.E., Southey M., Giles G.G., Severi G.; Breast and Prostate Cancer Cohort Consortium (BPC3); PRACTICAL (Prostate Cancer Association Group to Investigate Cancer-Associated Alterations in the Genome) Consortium; COGS (Collaborative Oncological Gene-environment Study) Consortium; GAME-ON/ELLIPSE Consortium, Cook M.B., Nakagawa H., Wiklund F., Kraft P., Chanock S.J., Henderson B.E., Easton D.F., Eeles R.A., Haiman C.A. A meta-analysis of 87,040 individuals identifies 23 new susceptibility loci for prostate cancer. Nat Genet. 2014 Oct; 46(10): 1103–9. doi:10.1038/ng.3094.; Marzec J., Mao X., Li M., Wang M., Feng N., Gou X., Wang G., Sun Z., Xu J., Xu H., Zhang X., Zhao S.C., Ren G., Yu Y., Wu Y., Wu J., Xue Y., Zhou B., Zhang Y., Xu X., Li J., He W., Benlloch S., Ross-Adams H., Chen L., Li J., Hong Y., Kote-Jarai Z., Cui X., Hou J., Guo J., Xu L., Yin C., Zhou Y., Neal D.E., Oliver T., Cao G., Zhang Z., Easton D.F., Chelala C.; PRACTICAL Consortium; CHIPGECS Group, Al Olama A.A., Eeles R.A., Zhang H., Lu Y.J. A genetic study and meta-analysis of the genetic predisposition of prostate cancer in a Chinese population. Oncotarget. 2016 Apr 19; 7(16): 21393–403. doi:10.18632/oncotarget.7250.; Mao X., Yu Y., Boyd L.K., Ren G., Lin D., Chaplin T., Kudahetti S.C., Stankiewicz E., Xue L., Beltran L., Gupta M., Oliver R.T., Lemoine N.R., Berney D.M., Young B.D, Lu Y.J. Distinct genomic alterations in prostate cancers in Chinese and Western populations suggest alternative pathways of prostate carcinogenesis. Cancer Res. 2010 Jul 1; 70(13): 5207–12. doi:10.1158/0008-5472.CAN-09-4074.; Filella X., Albaladejo M.D., Allué J.A., Castaño M.A., MorellGarcia D., Ruiz M.À., Santamaría M., Torrejón M.J., Giménez N. Prostate cancer screening: guidelines review and laboratory issues. Clin Chem Lab Med. 2019 Sep 25; 57(10): 1474–1487. doi:10.1515/cclm-2018-1252.; Etzioni R., Tsodikov A., Mariotto A., Szabo A., Falcon S., Wegelin J., DiTommaso D., Karnofski K., Gulati R., Penson D.F., Feuer E. Quantifying the role of PSA screening in the US prostate cancer mortality decline. Cancer Causes Control. 2008 Mar; 19(2): 175–81. doi:10.1007/s10552-007-9083-8.; Hugosson J., Carlsson S., Aus G., Bergdahl S., Khatami A., Lodding P., Pihl C.G., Stranne J., Holmberg E., Lilja H. Mortality results from the Göteborg randomised population-based prostate-cancer screening trial. Lancet Oncol. 2010 Aug; 11(8): 725–32. doi:10.1016/S1470-2045(10)70146-7.; Gudmundsson J., Besenbacher S., Sulem P., Gudbjartsson D.F., Olafsson I., Arinbjarnarson S., Agnarsson B.A., Benediktsdottir K.R., Isaksson H.J., Kostic J.P., Gudjonsson S.A., Stacey S.N., Gylfason A., Sigurdsson A., Holm H., Bjornsdottir U.S., Eyjolfsson G.I., Navarrete S., Fuertes F., Garcia-Prats M.D., Polo E., Checherita I.A., Jinga M., Badea P., Aben K.K., Schalken J.A., van Oort I.M., Sweep F.C., Helfand B.T., Davis M., Donovan J.L., Hamdy F.C., Kristjansson K., Gulcher J.R., Masson G., Kong A., Catalona W.J., Mayordomo J.I., Geirsson G., Einarsson G.V., Barkardottir R.B., Jonsson E., Jinga V., Mates D., Kiemeney L.A., Neal D.E., Thorsteinsdottir U., Rafnar T., Stefansson K. Genetic correction of PSA values using sequence variants associated with PSA levels. Sci Transl Med. 2010 Dec 15; 2(62): 62ra92. doi:10.1126/scitranslmed.3001513.; Kim S., Shin C., Jee S.H. Genetic variants at 1q32.1, 10q11.2 and 19q13.41 are associated with prostate-specific antigen for prostate cancer screening in two Korean population-based cohort studies. Gene. 2015 Feb 10; 556(2): 199–205. doi:10.1016/j.gene.2014.11.059.; Теврюкова Н.С., Богатырев В.Н., Очиргоряев А.Б. Диагностика рака предстательной железы. Сибирский онкологический журнал. 2009; (2): 49–54.; Gilbert R., Martin R.M., Evans D.M., Tilling K., Davey Smith G., Kemp J.P., Lane J.A., Hamdy F.C., Neal D.E., Donovan J.L., Metcalfe C. Incorporating Known Genetic Variants Does Not Improve the Accuracy of PSA Testing to Identify High Risk Prostate Cancer on Biopsy. PLoS One. 2015 Oct 2; 10(10): e0136735. doi:10.1371/journal.pone.0136735.; Liss M.A., Xu J., Chen H., Kader A.K. Prostate genetic score (PGS33) is independently associated with risk of prostate cancer in the PLCO trial. Prostate. 2015 Sep; 75(12): 1322–8. doi:10.1002/pros.23012.; Grönberg H., Adolfsson J., Aly M., Nordström T., Wiklund P., Brandberg Y., Thompson J., Wiklund F., Lindberg J., Clements M., Egevad L., Eklund M. Prostate cancer screening in men aged 50-69 years (STHLM3): a prospective population-based diagnostic study. Lancet Oncol. 2015 Dec; 16(16): 1667–76. doi:10.1016/S1470-2045(15)00361-7.; Лисицкая К.В., Крахмалева И.Н., Шишкин С.С. Изучение однонуклеотидного полиморфизма семи генов (GHR, IGFBP3, IGFR1, IRS1, FMN1, ANXA2, TAGLN) у этнических русских и у больных раком предстательной железы. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2010; 2: 34–37.; Оскина Н.А., Ермоленко Н.А., Боярских У.А., Лазарев А.Ф., Петрова В.Д., Ганов Д.И., Кунин И.С., Тоначева О.Г., Лифшитс Г.И., Филипенко М.Л. Изучение ассоциации однонуклеотидных полиморфных замен в генах ферментов антиоксидантной системы с риском развития рака предстательной железы в сибирском регионе России. Сибирский онкологический журнал. 2013; (3): 37–42.; Оскина Н.А., Боярских У.А., Лазарев А.Ф., Петрова В.Д., Ганов Д.И., Тоначева О.Г., Лифшитс Г.И., Филипенко М.Л. Исследование влияния полиморфных замен в гене рецептора витамина D на риск развития рака предстательной железы в Западно-сибирском регионе РФ. Российский биотерапевтический журнал. 2011;10(4): 67–70.; Ракул С.А., КамиловаТ.А., Голота А.С., Щербак С.Г. Прогностические и предиктивные биомаркеры рака предстательной железы. Онкоурология. 2017; 4(13): 111–121.; Заридзе Д.Г., Каприн А.Д., Стилиди И.С. Динамика заболеваемости злокачественными новообразованиями и смертности от них в России. Вопросы онкологии. 2018; 5: 578–591.; Алексеев Б.Я., Нюшко К.М., Каприн А.Д. Аналоги лютеинизирующего гормона рилизинг-гормона в терапии больных раком предстательной железы. Медицинский совет. 2018; 2(19): 96–100.; Матвеев В.Б., Киричек А.А., Савинкова А.В., Хачатурян А.В., Головина Д.А., Любченко Л.Н. Влияние терминальных мутаций в гене CHEK2 на выживаемость до биохимического рецидива и безметастатическую выживаемость после радикального лечения у больных раком предстательной железы. Онкоурология. 2018; 4(14): 53–67.; Гилязова И.Р., Кунсбаева Г.Б., Мустафин А.Т., Измайлов А.А., Папоян А.О., Павлов В.Н., Хуснутдинова Э.К. Роль некоторых полиморфных вариантов гена 5-альфаредуктазы в патогенезе рака предстательной железы. Медицинский вестник Башкортостана. 2017; 3(12): 70–73.; Алексеев Б.Я. Гормональная терапия в комбинированном лечении рака предстательной железы. Вместе против рака 2004; (3): 35–38.; Канаева М.Д., Воробцова И.Е. Генетические маркеры предрасположенности к возникновению рака предстательной железы. Онкоурология. 2015; 3(11): 16–23.; Киричек А.А., Любченко Л.Н., Матвеев В.Б. Рискадаптированный подход к скринингу рака предстательной железы. Онкоурология. 2018; 2(14): 109–121. doi:10.17650/1726-9776-2018-14-2-109-121.; Шкурников М.Ю., Макарова Ю.А., Князев Е.Н., Зотиков А.А., Нюшко К.М., Алексеев Б.Я., Каприн А.Д. Экспрессия циркулирующих микроРНК в связи с лимфогенным метастазированием рака предстательной железы. Онкоурология. 2018; 14(2): 109–121. doi:10.17650/1726-9776-2018-14-1-87-93.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1929

  14. 14
  15. 15
  16. 16
  17. 17
  18. 18
    Academic Journal

    Πηγή: Bulletin of Siberian Medicine; Том 19, № 3 (2020); 52-59 ; Бюллетень сибирской медицины; Том 19, № 3 (2020); 52-59 ; 1819-3684 ; 1682-0363 ; 10.20538/1682-0363-2020-19-3

    Περιγραφή αρχείου: application/pdf

    Relation: https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2980/1790; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2980/2227; Nemade K.S., Kamdi N.Y., Parchand M.P. Ages of Epiphyseal Union Around Wrist Joint – A Radiological Study. J. Anat. Soc. India. 2010; 59 (2): 205–210. DOI:10.1016/S0003-2778(10)80027-9.; Kadam S.S., Belagatti S.L., Kulkarni V.G. A study of epiphyseal union of base of first metacarpal bone radiologically for estimation age Medico-Legal Update. 2012; 12 (1): 76–77.; Shanmugasundaram S., Thangaraj К., Gambhir Singh O. Radiological assessment of age of adolescents from wrist joint: а prospective study of 151 cases. International Archives of Integrated Med. 2015; 2 (1): 95–99.; Алпатов И.М., Звягин В.Н., Золотенкова Г.В. Возможности оперативного проведения идентификации останков человека при сильном разрушении под воздействием физических факторов. Судебно-медицинская экспертиза. 2002; 45 (4): 35–39.; Banerjee K.K., Agarwal B.B.L. Estimation of Возраст from epiphyseal union at the wrist and ankle joints in the capital city of India. Forensic Science International. 1998; 98 (1–2): 32–39. DOI:10.1016/S0379-0738(98)00134-0.; Patel D.S., Agarwal H., Shah J.V. Epiphyseal fusion at lower end of radius and ulna valuable tool for age determination. J. Indian Acad. Forensic Med. 2011; 33 (2): 125–130.; Smith T., Brownlees L. Age assessment practices: a literature review and annotated bibliography Child Protection Section. UNICEF. 2011. URL: http://www.unicef.org/protection/Возраст_Assessment_Practicis_2010.pdf.; Darmawan M.F., Yusuf S.M., Abdul Kadir M.R., Haron H. Возраст estimation based on bone length using 12 regression models of left hand X-ray images for Asian children below 19 years old. Leg. Med. (Tokyo). 2015; 17 (2): 71–78. DOI:10.1016./j.legalmed.2014.09.006.; Zulkifly N.R., Wahab R.A., Layang E., Ismail D., Desa W.N.S.M., Hisham S., Mahat N.A. Estimation of stature from hand and handprint measurements in Iban population in Sarawak, Malaysia and its applications in forensic investigation. J. of Forensic and Leg. Med. 2018; 53: 35–45. DOI:10.1016/j.jflm.2017.10.011.; Plato C.C., Garruto R.M., Yanagihara R.T., Chen K.M., Wood J.L., Gajdusek D.C., Norris A.H. Cortical bone loss and measurements of the second metacarpal bone. Comparisons between adult Guamanian chamorros and American Caucasians. Amer. J. Phys. Anthropol. 1982; 59 (4): 461–465. DOI:10.1002/ajpa.1330590415.; Щербакова Е.М. Миграция, итоги первого полугодия 2018 г. Демоскоп. Weekly. 2018; 783–784: 1–38. URL: http://demoscope.ru/weekly/2018/0783/barom01.php.; Мирзоев С.С. Влияние наследственных и средовых факторов на процессы роста и развития костей у таджиков и узбеков. Материалы научной конференции «Современная морфология физической культуре и спорту». Л., 1987: 142–143.; Полушкина Л.Е. Некоторые экспертные критерии определения возраста и их особенности в условиях Таджикистана: автореф. дис. … канд. мед. наук. Душанбе, 1966: 12.; Турсунов Н.О. Сложение и пути развития городского и сельского населения Северного Таджикистана. Душанбе: Ирфон, 1976: 302.; Григорьева М.А., Анушкина Е.С. Реконструкция длины тела человека по размерам кисти. Судебно-медицинская экспертиза. 2015; 58 (4): 37–43. DOI:10.17116/sudmed201558437-43.; https://bulletin.tomsk.ru/jour/article/view/2980

  19. 19
  20. 20