-
1Academic Journal
Συγγραφείς: N. Yu. Yusef, E. E. Kazaryan, A. A. Rafaelyan, S. A. Shashorina, Ю. Юсеф, Э. Э. Казарян, А. А. Рафаэлян, С. А. Шашорина
Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 20, № 1 (2023); 33-40 ; Офтальмология; Том 20, № 1 (2023); 33-40 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2023-1
Θεματικοί όροι: цветовое допплеровское картирование, blood flow, flowmetry, laser Doppler velocimetry, FD-OCT, laser speckle flowgraphy, color Doppler mapping, кровоток, флоуметрия, лазерная допплеровская велосиметрия, лазерная спеклфлоуграфия
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2039/1068; Киселева Т.Н. Цветовое допплеровское картирование в офтальмологии Вестник офтальмологии. 2001;6:51–53.; Киселева Т.Н., Ежов М.В., Аджемян Н.А., Танковский В.Э., Ильина Н.В. Особенности регионарного глазного кровотока при артериальной гипертензии I–II степени и субклиническом атеросклерозе. Российский офтальмологический журнал. 2016;9(3):26–33.; Киселева Т.Н., Котелин В.И., Лосанова О.А., Луговкина К.В. Неинвазивные методы оценки гемодинамики переднего сегмента глаза: перспективы применения в клинической практике. Офтальмология. 2017;14(4):283–290. DOI:10.18008/1816-5095-2017-4-283-290; Киселева Т.Н. Ультразвуковые методы исследования кровотока в диагностике ишемических поражений глаза. Вестник офтальмологии. 2004;4:3–5.; Мамиконян В.Р., Казарян Э.Э., Козлова И.В. Исследование пульсовового глазного кровотока в диагностике и мониторинге первичной открытоугольной глаукомы. Глаукома. 2008;3:21–25.; Rizzoni D, Agabiti Rosei C, Agabiti Rosei E. Hemodynamic consequences of changes in microvascular structure. Am J Hypertens. 2017;30:939–946. DOI:10.1093/ajh/hpx032; Burns SA, Elsner AE, Thomas J. Gast Imaging the Retinal Vasculature. Ann Rev Vis Sci. 2021 Sep 15;7:129–153. DOI:10.1146/annurev-vision-093019-113719; LaBarbera M. The design of fluid transport systems: a comparative perspective. / In Bevan JA, Kaley G, Rubanyi GM (eds): Flow Dependent Regulation of Vascular Function. New York, Oxford University Press, 1995.; Riva CE, Grunwald JE, Sinclair SH, O’Keefe K. Fundus camera based retinal LDV. Appl Opt 1981;20:117–120. https://opg.optica.org/ao/abstract.cfm?URI=ao-20-1-117; Glucksberg MR, Dunn R: Direct measurement of retinal microvascular pressures in the live, anesthetized cat. Microvasc Res. 1993;45:158–165. DOI:10.1006/mvre.1993.1015; Alarcon Martinez L, Yemisci M, Dalkara T. Pericyte morphology and function. Histopathol. 2021 Jun;36(6):633–643. DOI:10.14670/HH-18-314; Riva CE, Petrig BL. Retinal blood flow: laser Doppler velocimetry and blue field simulation technique / In Masters BR (ed): Noninvasive Diagnostic Techniques in Ophthalmology. New York, Springer, 1990. P. 390–394.; Leitgeb RA, Schmetterer L, Drexler W, Fercher AF. Real-time assessment of retinal blood flow with ultrafast acquisition by color Doppler Fourier domain optical coherence tomography. Opt Express. 2003;11:3116–3121. DOI:10.1364/oe.11.003116; Reiner A, Fitzgerald MES, Del Mar N, Chunyan Li. Neural control of choroidal blood flow. Prog Retin Eye Res. 2018 May;64:96–130. DOI:10.1016/j.preteyeres.2017.12.001; Yazdanfar S, Rollins AM, Izatt JA: Imaging and velocimetry of the human retinal circulation with color Doppler optical coherence tomography. Opt Lett 2000;25:1448–1450. DOI:10.1364/ol.25.001448; Noonan JE, Lamoureux EL, Sarossy M. Neuronal activity dependent regulation of retinal blood flow. Clin Exp Ophthalmol. 2015 Sep Oct;43(7):673–682. DOI:10.1111/ceo.12530; Pournaras CJ, Rungger Brändle E, Riva CE, Hardarson SH, Stefansson E. Regulation of retinal blood flow in health and disease. Prog Retin Eye Res. 2008 May;27(3):284–330. DOI:10.1016/j.preteyeres.2008.02.002; Fry BC, Harris A, Siesky B, Arciero A. Blood flow regulation and oxygen transport in a heterogeneous model of the mouse retina. Math Biosci. 2020 Nov;329:108476. DOI:10.1016/j.mbs.2020.108476; Guran T, Zeimer RC, Shahidi M, Mori MT: Quantitative analysis of retinal hemodynamics using targeted dye delivery. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1990;31:2300–2306.; Riva CE, Alm A, Pournaras CJ: Ocular circulation; in Levin LA, Nilsson SFE, Ver Hoeve J, Wu S, Kaufman PL, Alm A (eds): Adler’s Physiology of the Eye, ed 11. New York, Elsevier, 2011.; Khoobehi B, Aly OM, Schuele KM, Stradtmann MO, Peyman GA. Determination of retinal blood velocity with respect to the cardiac cycle using laser-triggered release of liposome encapsulated dye. Lasers Surg Med. 1990;10:469–475. DOI:10.1002/lsm.1900100512; Arend O, Harris JA, Shoemaker WE, Sponsel HK, Knabben H, Reim M. Perifoveal capillary microcirculation: comparison of blue light stimulation and scanning laser technique. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1993;34 (suppl):1391.; James CB, Trew DR, Clark K. Factors influencing the ocular pulse axial length. Graefe’s Arch Clin Exp Ophthalmol. 1991;229:341–344. DOI:10.1007/BF00170692; Lam AK, Chan ST, Chan B. The effect of axial length on ocular blood flow assessment in anisometropes. Ophthalmic Physiol Opt. 2003;23:315–320. DOI:10.1046/j.1475-1313.2003.00122.x; Geyer O, Silver DM, Mathalon N. Gender and age effects on pulsatile ocular blood flow. Ophthalmic Res. 2003;35:247–250. DOI:10.1159/000072144; Gunvant P, Baskaran M, Vijaya L. Effect of corneal parameters on measurements using the pulsatile ocular blood flow tonograph and goldmann applanation tonometer. Br J Ophthalmol. 2004;88:518–522. DOI:10.1136/bjo.2003.019331; Gunvant P, Baskaran M, Vijaya L. Comparison of pulsatile ocular blood flow in Indians and Europeans. Eye. 2005;19:1163–1168. DOI:10.1038/sj.eye.6701710; Lam AK, Chan ST, Chan H. The effect of age on ocular blood supply determined by pulsatile ocular blood flow and color Doppler ultrasonography. Optom Vis Sci. 2003;80:305–311. DOI:10.1097/00006324-200304000-00008; Lam AK, Lam CH. Effects of breath––holding on pulsatile ocular blood flow measurement in normal subjects. Optom Vis Sci. 2004;81:597–600 DOI:10.1097/01.opx.0000141795.95597.98; Rizzoni D. New Methods to Study the Microcirculation. American Journal of Hypertension. 2018;31(3):265 273. DOI:10.1093/ajh/hpx211; Bosley TM, Savino PJ, Sergott RC, Eagle RC, Sandy R, Gee W. Ocular pneumoplethysmography can help in the diagnosis of giant cell arteritis. Arch Ophthalmol. 1989;107:379–381. DOI:10.1001/archopht.1989.01070010389030; Bienfang DC. Loss of the ocular pulse in the acute phase of temporal arteritis. Acta Ophthalmol(Copenh). 1989;67:35–37. DOI:10.1111/j.1755-3768.1989.tb07085.x; Pache M, Nagel E, Flammer J: Reproducibility of measurements with the retinal vessel analyzer under optimal conditions. Klin Monatsbl Augenheilkd. 2002;219:523–527. DOI:10.1055/s-2002-33589; Riva CE, Logean E, Falsini B. Visually evoked hemodynamical response and assessment of neurovascular coupling in the optic nerve and retina. Prog Retin Eye Res. 2005;24:183–215. DOI:10.1016/j.preteyeres.2004.07.002; Warner RL, de Castro A, Sawides L, Gast T, Sapoznik K, Ting Luo, Burns SA. Fullfield flicker evoked changes in parafoveal retinal blood flow. Sci Rep. 2020 Sep 29;10(1):16051. DOI:10.1038/s41598-020-73032-0; Wang JJ, Liew G, Klein R, Rochtchina E, Knudtson MD, Klein BE, Wong TY, Burlutsky G, Mitchell P. Retinal vessel diameter and cardiovascular mortality: pooled data analysis from two older populations. Eur Heart J. 2007;28:1984–1992. DOI:10.1093/eurheartj/ehm221; Mendrinos E, Mangioris G, Papadopoulou DN, Dosso AA, Pournaras CJ. Retinal vessel analyzer measurements of the effect of panretinal photocoagulation on the retinal arteriolar diameter in diabetic retinopathy. Retina 2010;30:55. DOI:10.1097/IAE.0b013e3181bd2f79; Loukovaara S, Harju M, Kaaja R, Immonen I: Retinal capillary blood flow in diabetic and nondiabetic women during pregnancy and postpartum period. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2003;44:1486–1491. DOI:10.1167/iovs.02-0293; Riva CE, Petrig BL. Laser Doppler techniques in ophthalmology: principles and applications / In Fankhauser F, Kwasniewska S (eds): Lasers in Ophthalmology — Basic, Diagnostic and Surgical Aspects. The Hague, Kugler 2003. P. 51–59.; Makita S, Fabritius T, Yasuno Y. Quantitative retinal blood flow measurement with three dimensional vessel geometry determination using ultrahigh resolution Doppler optical coherence angiography. Opt Lett. 2008;33:836–838. DOI:10.1364/ol.33.000836; Savastano C.M., Lumbroso B., Rispoli M. In Vivo Characterization of Retinal Vascularization Morphology Using Optical Coherence Tomography Angiography. Retina. 2015 Nov;35(11):2196–2203. DOI:10.1097/IAE.0000000000000635; Riva CE, Harino S, Petrig BL, Shonat RD. Laser Doppler flowmetry in the optic nerve. Exp Eye Res. 1992;55:499–506. DOI:10.1016/0014-4835(92)90123-a; Riva CE, Schmetterer L. Microcirculation of the ocular fundus / In Tuma RF, Duran WN, Ley K (eds): Handbook of Physiology: Microcirculation. Amsterdam, Academic Press, 2008. P. 735–765.; Briers JD, Fercher AF: Retinal blood flow visualization by means of laser speckle photography. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1982;22:255–259.; Leske MC, Wu SY, Hennis A, Honkanen R, Nemesure B. Risk factors for incident openangle glaucoma: the Barbados Eye Studies. Ophthalmology. 2008;115:85–93. DOI:10.1016/j.ophtha.2007.03.017; Grunwald JE, Riva CE, Stone RA, Keates EU, Petrig BL. Retinal autoregulation in open-angle glaucoma. Ophthalmology. 1984;91:1690–1694.; Nagel E, Munch K, Vilser W. Measurement of the diameter of segments of retinal branch vessels in digital fundus images: an experimental study of the method and reproducibility. Klin Monatsbl Augenheilkd. 2001;218: 616–620. DOI:10.1055/s-2001-17640; Garhofer G, Zawinka C, Resch H, Huemer KH, Schmetterer L, Dorner GT. Response of retinal vessel diameters to flicker stimulation in patients with early open angle glaucoma. J Glaucoma. 2004;13:340–344. DOI:10.1097/00061198-200408000-00013; Ma Z, Pan X, Zhou D, Zhu Z, Xu A, Shi P, Chen H. Changes of retinal and choroidal capillary blood flow in macula after an acute intraocular pressure elevation. Medicine (Baltimore). 2020 Jun 26;99(26):e21007. DOI:10.1097/MD.0000000000021007; Gilmore ED, Hudson C, Nrusimhadevara RK, Ridout R, Harvey PT, Mandelcorn M, Lam WC, Devenyi RG. Retinal arteriolar hemodynamic response to an acute hyperglycemic provocation in early and sightthreatening diabetic retinopathy. Microvasc Res. 2007;73:191–197. DOI:10.1016/j.mvr.2007.01.001; Pemp B, Garhofer G, Weigert G, Karl K, Resch H, Wolzt M, Schmetterer L. Reduced retinal vessel response to flicker stimulation but not to exogenous nitric oxide in type 1 diabetes. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2009;50:4029–4032. DOI:10.1167/iovs.08-3260; Dawczynski J, Mandecka A, Blum M, Muller UA, Ach T, Strobel J. Endothelial dysfunction of central retinal vessels: a prognostic parameter for diabetic retinopathy? Klin Monatsbl Augenheilkd. 2007;224:827–831 (in German). DOI:10.1055/s-2007-963675; Grunwald JE, Brucker AJ, Grunwald SE, Riva CE. Retinal hemodynamics in proliferative diabetic retinopathy. A laser Doppler velocimetry study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1993 Jan;34(1):66–71.; Hanaguri J, Yokota H, Watanabe M, Yamagami S, Kushiyama A, Lih Kuo, Taiji Retinal blood flow dysregulation precedes neural retinal dysfunction in type 2 diabetic mice. NagaokaSci Rep. 2021 Sep 15;11(1):18401. DOI:10.1038/s41598-021-97651-3; Nippert AR, Newman EA. Regulation of blood flow in diabetic retinopathy. Vis Neurosci. 2020 Jul 20;37:E004. DOI:10.1017/S0952523820000036; Polak K, Luksch A, Frank B, Jandrasits K, Polska E, Schmetterer L. Regulation of human retinal blood flow by endothelin 1. Exp Eye Res. 2003 May;76(5):633–640. DOI:10.1016/s0014-4835(02)00312-3; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2039
-
2Academic Journal
Συγγραφείς: V. M. Sheludchenko, N. L. Kozlovskaya, D. V. Andzhelova, E. I. Krasnolutskaya, T. V. Smirnova, В. М. Шелудченко, Н. Л. Козловская, Д. В. Анджелова, Е. И. Краснолуцкая, Т. В. Смирнова
Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 20, № 2 (2023); 319-325 ; Офтальмология; Том 20, № 2 (2023); 319-325 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2023-2
Θεματικοί όροι: ретробульбарные сосуды, malignant hypertension, color Doppler imaging, retrobulbar vessels, злокачественная артериальная гипертония, цветовое допплеровское картирование
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2114/1107; Judd E, Calhoun DA. Apparent and true resistant hypertension: definition, prevalence and outcomes. J Hum Hypertens. 2014;28(8):463–468. doi:10.1038/jhh.2013.140.; ESH‐ESC Guidelines for the management of arterial hypertension. Blood Pressure. 2007;16 (3):135–232. doi:10.1080/08037050701461084.; Tsai HM. A mechanistic approach to the diagnosis and management of atypical hemolytic uremic syndrome. Transfus Med Rev. 2014;28(4):187–197. doi:10.1016/j.tmrv.2014.08.004.; Brocklebank V, Kavanagh D. Complement C5‐inhibiting therapy for the thrombotic microangiopathies: accumulating evidence, but not a panacea. Clin Kidney J. 2017;10(5):600–624. doi:10.1093/ckj/sfx081.; Tsai HM. Atypical hemolytic uremic syndrome may present as severe hypertension without hemolysis or thrombocytopenia. Austin J Nephrol Hypertens. 2016;3(1):1055–1058.; Hayreh SS. Prevalent misconceptions about acute retinal vascular occlusive disorders. Prog Retin Eye Res. 2005;24(4):493–519. doi:10.1016/j.preteyeres.2004.12.001.; Wong TY, Larsen EM, Klein R, Mitchell P. Cardiovascular risk factor for retinal vein occlusion and arterial emboli. The atherosclerotis risk in communities Cardiovascular Health Studies. Ophthalmol. 2005;112:540–547. doi:10.1016/j.ophtha.2004.10.039.; Киселева ТН, Аджемян НА. Методы оценки глазного кровотока при сосудистой патологии глаза. Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2015;14(4):4–10.; Lehmann VM, Schmieder RE. Remodeling of retinal small arteries in hypertension. Am J Hypertens. 2011;24(12):1267–1273. doi:10.1038/ajh.2011.166.; Polska E, Simader C, Weigert G. Regulation of choroidal blood flow during combined changes in intraocular pressure and arterial blood pressure. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2007;48(8):3768–3774. doi:10.1167/iovs.07-0307.; Pauk-Domanska M, Walasik-Szemplinska D. Color Doppler imaging of the retrobulbar vessels in diabetic retinopathy. J Ultrason. 2014 Mar;14(56):28–35. doi:10.15557/JoU.2014.0003.; Аджемян НА. Комплексное исследование гемодинамики глаза у пациентов с субклиническим атеросклерозом. Медицинская визуализация. 2015;3:43–48.; Williamson TH, Baxter GM, Dutton GN. Color Doppler Velocunetry of the Optic Nerve Head in Arterial Occlusion. Ophthalmol. 1993;100(3):312–317. doi:10.1016/s0161-6420(93)31649-0.; Ritt M, Harazny JM, Ott C, Schlaich MP, Schneider MP, Michelson G, Schmieder RE. Analysis of retinal arteriolar structure in never-treated patients with essential hypertension. J Hypertens. 2008;26(7):1427–1434. doi:10.1097/hjh.0b013e3282ffdc66.; Киселева ТН, Ежов МВ, Аджемян НА. Нарушение ретинальной циркуляции при артериальной гипертензии. Фарматека. 2014;(20):14–18.; Смирнова ТВ, Козловская НЛ, Шелудченко ВМ, Анджелова ДВ, Казарян ЭЭ, Эксаренко ОВ, Велиева ИА, Хасянова МВ. Цветовое доплеровское картирование в оценке гемодинамики глаза при синдроме тромботической микроангиопатии. Офтальмология. 2018;15(4):455–462. doi:10.18008/1816-5095-2018-4-455-462.; Steigerwalt RD, Belcaro GV, Laurora G, Cesarone MR, De Sanctis MT, Incandela L. Ocular and orbital blood flow in patients with essential hypertension treated with trandolapril. Retina. 1998;18(6):539–545. doi:10.1097/00006982-199806000-00008.; Ahmetoglu A, Erdo H, Simsek A, Gokce M, Dinc H, Gumele H. Effect of hypertension and candesartan on the blood flow velocity of the extraocular vessels in hypertensive patients. Eur J Ultrasound. 2003;16(3):177–182. doi:10.1016/s0929-8266(02)00071-x.; Reddy R. Usefulness of color Doppler imaging of orbital arteries in young hypertensive patients. Proc Bayl Univ Med Cen. 2019;32(4):514–519. doi:10.1080/08998280.2019.1624125.; Киселева ТН, Ежов МВ, Аджаменян НА, Танковский ВЭ, Ильина НВ. Особенности регионарного глазного кровотока при артериальной гипертензии I–II степени и субклиническом атеросклерозе. Российский офтальмологический журнал. 2016;9(3):26–33. doi:10.21516/2072-0076-2016-9-3-26-33.; Bommer M, Wolfle-Guter M, Bohl S, Kuchenbauer F. The differential diagnosis and treatment of thrombotic microangiopathies. Deutsches Arzteblatt International. 2018;115(19):327–334. doi:10.3238/arztebl.2018.; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/2114
-
3Academic Journal
Συγγραφείς: A. G. Amiryan, S. V. Saakyan, G. P. Zakharova, A. Yu. Tsygankov, А. Г. Амирян, С. В. Саакян, Г. П. Захарова, А. Ю. Цыганков
Πηγή: Ophthalmology in Russia; Том 19, № 3 (2022); 541-548 ; Офтальмология; Том 19, № 3 (2022); 541-548 ; 2500-0845 ; 1816-5095 ; 10.18008/1816-5095-2022-3
Θεματικοί όροι: молекулярно-генетическое исследование, extrascleral growth, echography, color Doppler imaging, molecular genetic study, экстрабульбарный рост, эхография, цветовое допплеровское картирование
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1918/1011; Collaborative Ocular Melanoma Study Group, Boldt H.C., Byrne S.F., Gilson M.M., Finger P.T., Green R.L., Straatsma B.R., Simpson E.R., Hawkins B.S. Baseline echographic characteristics of tumors in eyes of patients enrolled in the Collaborative Ocular Melanoma Study: COMS report no. 29. Ophthalmology. 2008;115(8):1390– 1397, 1397.e1-2. DOI:10.1016/j.ophtha.2007.12.015; Burris C.K.H., Papastefanou V.P., Thaung C., Restori M., Arora A.K., Sagoo M.S., Cohen V.M.L. Detection of extrascleral extension in uveal melanoma with histopathological correlation. Orbit. 2018;37(4):287–292. DOI:10.1080/01676830.2017.1423083; Coupland S.E., Campbell I., Damato B. Routes of extraocular extension of uveal melanoma: risk factors and influence on survival probability. Ophthalmology. 2008;115(10):1778–1785. DOI:10.1016/j.ophtha.2008.04.025; Isager P., Ehlers N., Overgaard J. Prognostic factors for survival after enucleation for choroidal and ciliary body melanomas. Acta Ophthalmol Scand. 2004;82(5):517– 525. DOI:10.1111/j.1600-0420.2004.00330.x; Bellmann C., Lumbroso-Le Rouic L., Levy C., Plancher C., Dendale R., SastreGarau X., Asselain B., Desjardins L. Uveal melanoma: management and outcome of patients with extraocular spread. Br J Ophthalmol. 2010;94(5):569–574. DOI:10.1136/bjo.2009.165423; Greenberg E.L., Cox K.F., Margo C.E., Leyngold I.M. Massive Extraocular Extension of Uveal Melanoma. Ophthalmic Plast Reconstr Surg. 2016;32(6):e166. DOI:10.1097/IOP.0000000000000691; Romanowska-Dixon B., Jakubowska B. Analiza dróg naciekania zewnatrzgałkowego czerniaka błony naczyniowej [Choroidal melanoma-routes of extraocular extension]. Klin Oczna. 2013;115(2):107–110.; Sioufi K., Say E.A., Gray H.M., Shields C.L. Optic nerve meningocele simulating extraocular extension of choroidal melanoma. Retin Cases Brief Rep. 2017;11 Suppl 1:S174–S177. DOI:10.1097/ICB.0000000000000417; Lemaître S., Zmuda M., Jacomet P.V., Lévy-Gabriel C., Dendale R., Berges O., Fréneaux P., Mariani P., Desjardins L., Galatoire O., Cassoux N. Small Choroidal Melanoma Revealed by a Large Extrascleral Extension. Ocul Oncol Pathol. 2017;3(3):240–246. DOI:10.1159/000455870; Kaliki S., Shields C.L., Shields J.A. Uveal melanoma: estimating prognosis. Indian J Ophthalmol.2015;63(2):93–102. DOI:10.4103/0301-4738.154367; Амирян А.Г., Пантелеева О.Г., Майбогин А.М., Цыганков А.Ю., Саакян С.В. Меланома хориоидеи, симулирующая опухоль зрительного нерва: клинический случай. Альманах клинической медицины. 2018;46(4):384–389. DOI:10.18786/2072-0505-2018-46-4-384-389; Komanski C., Hooten C., Greven C. Extrascleral Extension of Uveal Melanoma. Ophthalmol Retina. 2017;1(1):91. DOI:10.1016/j.oret.2016.09.012; Нероев В.В., Саакян С.В., Амирян А.Г., Вальский В.В. Факторы риска экстрабульбарного роста после локального лечения увеальной меланомы. Вестник офтальмологии. 2011;127(5):21–25.; Саакян С.В., Амирян А.Г., Вальский В.В., Миронова И.С., Цыганков А.Ю. Причины энуклеации после брахитерапии увеальных меланом. Российский офтальмологический журнал. 2016;9(4):46–51. DOI:10.21516/2072-00762016-9-4-46-51; van Beek J.G.M., van den Bosch Q.C.C., Naus N., Paridaens D., de Klein A., Kiliç E., Verdijk R.M. Absence of Intraocular Lymphatic Vessels in Uveal Melanomas with Extrascleral Growth. Cancers (Basel). 2019 Feb 15;11(2):228. DOI:10.3390/cancers11020228; Цыганков А.Ю., Амирян А.Г., Саакян С.В. Роль патоморфологических и молекулярно-генетических факторов в развитии экстрабульбарного роста увеальной меланомы. Современные технологии в медицине. 2016;8(2):76–83. DOI:10.17691/stm2016.8.2.11; Récsán Z., Karlinger K., Fodor M., Zalatnai A., Papp M., Salacz G. MRI for the evaluation of scleral invasion and extrascleral extension of uveal melanomas. Clin Radiol. 2002;57(5):371–376. DOI:10.1053/crad.2001.0859; Jacobsen B.H., Ricks C., Harrie R.P. Ocular ultrasound versus MRI in the detection of extrascleral extension in a patient with choroidal melanoma. BMC Ophthalmol. 2018;18(1):320. DOI:10.1186/s12886-018-0990-0; Noble J., Qazi F.A., Lakosha H.K., Simpson E.R., Yucel Y., McGowan H., Pavlin C., Altomare F. Extrascleral extension in association with ciliochoroidal melanoma: ultrasound biomicroscopy with histopathological correlation. Can J Ophthalmol. 2005;40(5):616–518. DOI:10.1016/S0008-4182(05)80056-0; Rohrbach J.M., Steuhl K.P., Kreissig I., Thiel H.J. Epidemiologie, Invasion und Wachstum nicht-iridaler Aderhautmelanome und assoziierte intraokulare Veränderungen: Histologische Untersuchung von 223 Augen [Epidemiology, invasion and growth of non-iridic choroid melanomas and associated intraocular changes: histologic study of 223 eyes]. Klin Monbl Augenheilkd. 1990;197(6):455–465. German. DOI:10.1055/s-2008-1046312; Shields C.L., Kaliki S., Furuta M., Shields J.A. Diffuse versus nondiffuse small (≤3 MM thickness) choroidal melanoma: comparative analysis in 1,751 cases. The 2012 F. Phinizy Calhoun lecture. Retina. 2013;33(9):1763–1776. DOI:10.1097/IAE.0b013e318285cd52; Murphy M.L., Mieler W.F., Williams D.F., Lewandowski M.F. Echographic pseudoextension of uveal melanomas. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 1995;233(7):399– 406. DOI:10.1007/BF00180942; https://www.ophthalmojournal.com/opht/article/view/1918
-
4Academic Journal
Συγγραφείς: T. N. Kiseleva, M. S. Zaitsev, K. A. Ramazanova, K. V. Lugovkina
Πηγή: Российский офтальмологический журнал, Vol 11, Iss 3, Pp 84-94 (2018)
Θεματικοί όροι: color doppler imaging, 0301 basic medicine, Ophthalmology, 03 medical and health sciences, глазной кровоток, 0302 clinical medicine, цветовое допплеровское картирование, ocular blood flow, импульсная допплерография, RE1-994, pulsed dopplerography, 3. Good health
-
5Academic Journal
Συγγραφείς: T. N. Kiseleva, I. V. Tsapenko, M. V. Zueva, A. N. Bedretdinov
Πηγή: Российский офтальмологический журнал, Vol 9, Iss 1, Pp 32-38 (2018)
Θεματικοί όροι: закрытая травма глаза, глазной кровоток, цветовое допплеровское картирование, зрительные вызванные потенциалы, фотопический негативный ответ, blunt eye trauma, ocular blood flow, color doppler imaging, visual evoked potential, photopic negative response, Ophthalmology, RE1-994
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://roj.igb.ru/jour/article/view/6; https://doaj.org/toc/2072-0076; https://doaj.org/toc/2587-5760
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/cba439bcd4c947038509d7c566255fa3
-
6Academic Journal
Συγγραφείς: T. N. Kiseleva, M. V. Ezhov, N. A. Adzhemian, V. E. Tankovsky, N. V. Ilyina
Πηγή: Российский офтальмологический журнал, Vol 9, Iss 3, Pp 26-33 (2018)
Θεματικοί όροι: субклинический атеросклероз, гемодинамика глаза, цветовое допплеровское картирование, калиброметрия, subclinical atherosclerosis, ocular blood flow, color doppler imaging, retinal vessel caliber measurement, Ophthalmology, RE1-994
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://roj.igb.ru/jour/article/view/39; https://doaj.org/toc/2072-0076; https://doaj.org/toc/2587-5760
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/20552b4e4f2b4caabb767a99bbc89455
-
7Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Busko, V. V. Semiglazov, A. V. Mishchenko, A. S. Shishova, V. O. Smirnova, E. V. Kostromina, A. V. Chernaya, A. S. Artemieva, P. V. Kryvorotko, Е. А. Бусько, В. В. Семиглазов, А. В. Мищенко, А. С. Шишова, В. О. Смирнова, Е. В. Костромина, А. В. Черная, А. С. Артемьева, П. В. Криворотько
Πηγή: Siberian journal of oncology; Том 18, № 6 (2019); 12-19 ; Сибирский онкологический журнал; Том 18, № 6 (2019); 12-19 ; 2312-3168 ; 1814-4861 ; 10.21294/1814-4861-2019-18-6
Θεματικοί όροι: васкуляризация, early diagnosis, benign breast lesions, ultrasound, color Doppler mapping, CDm, BI-RADS system, histological evaluation, angiogenesis, vascularization, ранняя диагностика, доброкачественные образования молочной железы, ультразвуковое исследование, цветовое допплеровское картирование, ЦДК, система BI-RADS, гистологическое заключение, ангиогенез
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1239/681; Семиглазов В.Ф., Криворотько П.В., Семиглазов В.В., Дашян Г.А., Палтуев Р.В. Рекомендации для врачей по ведению пациентов с раком молочной железы. Приложение к журналу «Медицинский совет». 2017; 14: 67.; Беляев А.М., Манихас Г.М., Мерабишвили В.М. Злокачественные новообразования в Санкт-Петербурге и других административных территориях Северо-Западного федерального округа России (заболеваемость, смертность, контингенты, выживаемость больных). Экспресс-информация. Второй выпуск. СПб., 2016. 208 c.; Мерабишвили В.М. Эпидемиология и выживаемость мужчин – больных раком молочной железы. Вопросы онкологии. 2016; 62: 245–252.; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Состояние онкологической помощи населению России в 2015 году. М., 2016. 236 c.; Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2015 году (заболеваемость и смертность). М., 2017. 250 c.; Weidner N., Semple J.P., Welch W.R., Folkman J. Tumor angiogenesis and metastasis-correlation in invasive breast carcinoma. New Engl J Med. 1991; 324(1): 1–8. doi:10.1056/NEJM199101033240101.; Weidner N., Folkman J., Pozza F., Bevilacqua P., Allred E.N., Moore D.H., Meli S., Gasparini G. Tumor angioganesis-a new significant and independed prognostic indicator in early stage breast carcinoma. J Natn Cancer Inst. 1992; 84(24): 1875–1887. doi:10.1093/jnci/84.24.1875.; Jia W.-R., Tang L., Wang D.-B., Chai W.-M., Fei X.-C., He J.-R., Chen M., Wang W.-P. Three-dimensional Contrast-enhanced Ultrasound in Response Assessment for Breast Cancer: A Comparison with Dynamic Contrast-enhanced Magnetic Resonance Imaging and Pathology. Sci Rep. 2016 Sep 22; 6: 33832. doi:10.1038/srep33832.; Watanabe T., Kaoku S., Yamaguchi T., Izumori A., Konno S., Okuno T., Tsunoda H., Ban K., Hirokaga K., Sawada T., Ito T., Nakatani S., Yasuda H., Tsuruoka M., Ueno E., Tohno E., Umemoto T., Shirakawa T. Multicenter Prospective Study of Color Doppler Ultrasound for Breast Masses: Utility of Our Color Doppler Method. Ultrasound Med Biol. 2019 Jun; 45(6): 1367–1379. doi:10.1016/j.ultrasmedbio.2019.01.02.; Zhang W., Xiao X., Xu X., Liang M., Wu H., Ruan J., Luo B. Non-Mass Breast on Ultrasound: Feature Exploration and Multimode Ultrasonic Diagnosis. Ultrasound Med Biol. 2018 Aug; 44(8): 1703–1711. doi:10.1016/j.ultrasmedbio.2018.05.005.; Cosgrove D.O., Kedar R.P., Bamber J.C., Almurrani B., Davey J.B.N., Fisher C., McKinna J A., Svensson W.E., Tohno E., Vagios E., Alsanjari N.A. Breast diseases: color Doppler US in differential diagnosis. Radiology. 1993; 189(1): 99–104. doi:10.1148/radiology.189.1.8372225.; Raza S., Baum J.K. Solid breast lesions: Evaluation with Power Doppler US. Radiology. 1997; 203(1): 164–168. doi:10.1148/radiology.203.1.9122386.; Wang M., Feng H.-L., Liu Y.-Q., Liu H., Jiang Y.-X., Zhu Q.-L., Dai Q., Li J.-C.Angiogenesis Research in Mouse Mammary Cancer Based on Contrast-enhanced Ultrasonography: Exploratory Study. Acad Radiol. 2018 Jul; 25(7): 889–897. doi:10.1016/j.acra.2017.12.004.; Faustino-Rocha A.I., Silva A., Gabriel J., da Costa R. M.G., Moutinho M., Oliveira P.A., Gama A., Ferreira R., Ginja M. Longterm exercise training as a modulator of mammary cancer vascularization. Biomed Pharmacother. 2016 Jul; 81: 273–280. doi:10.1016/j.biopha.2016.04.030.; Kapetas P., Clauser P., Woitek R., Wengert G.J., Lazar M., Pinker K., Helbich T.H., Baltzer P.A.T. Quantitative Multiparametric Breast Ultrasound: Application of Contrast-Enhanced Ultrasound and Elastography Leads to an Improved Differentiation of Benign and Malignant Lesions. Invest Radiol. 2019 May; 54(5): 257–264. doi:10.1097/RLI.0000000000000543.; Park A.Y., Seo B.K. Up-to-date Doppler techniques for breast tumor vascularity: superb microvascular imaging and contrast-enhanced ultrasound. Ultrasonography. 2018; 37(2): 98–106. doi:10.14366/usg.17043.; Watanabe R., Munemasa T., Matsumura M. Contrast-enhanced ultrasound with perflubutane in the assessment of anti-angiogenic effectc: early prediction of the anticancer activity of bevacizumab in a mouse xenografted model. Ultrasound Med Biol. 2015 Sep; 41(9): 2497–505. doi:10.1016/j.ultrasmedbio.2015.04.018.; D’Orsi C.J., Sickles E.A., Mendelson E.B. BI-RADS Atlas, Breast Imaging Reporting and Data System. Reston, VA, American College of Radiology, 2013.; https://www.siboncoj.ru/jour/article/view/1239
-
8Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Busko, V. V. Semiglazov, A. V. Mishchenko, K. V. Kozubova, A. S. Shishova, M. I. Arabachyan, E. V. Kostromina, P. V. Krivorotko, Е. А. Бусько, В. В. Семиглазов, А. В. Мищенко, К. В. Козубова, А. С. Шишова, М. И. Арабачян, Е. В. Костромина, П. В. Криворотько
Πηγή: Diagnostic radiology and radiotherapy; № 4 (2019); 6-13 ; Лучевая диагностика и терапия; № 4 (2019); 6-13 ; 2079-5343 ; 10.22328/2079-5343-2019-4
Θεματικοί όροι: гистологическое заключение, benign breast lesions, ultrasound (US), sonoelastography (SEG), Color Doppler Mapping (CDM), BI-RADS system, histological evaluation, доброкачественные образования молочной железы, ультразвуковое исследование (УЗИ), соноэластография (СЭГ), цветовое допплеровское картирование (ЦДК), система BI-RADS
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/449/365; Blank M.A.B., Antaki J.F. Breast lesion elastography region of interest selection and quantitative heterogeneity: a systematic review and meta-analysis // Ultrasound in Medicine and Biology. 2017. Vol. 43, No. 2. P. 387-397. DOI:10.1016/j.ultrasmedbio.2016.09.002.; Xiao X., Jiang Q., Wu H., Guan X., Qin W., Luo B. Diagnosis of sub-centimetre breast lesions: combining BI-RADS-US with strain elastography and contrast-enhanced ultrasound-a preliminary study in China // European Radiology. 2017. Vol. 27, No. 6. P. 2443-2450. DOI:10.1007/s00330-016-4628-4.; Zahran M.H., El-Shafei M.M., Emara D.M., Eshiba S.M. Ultrasound elastography: How can it help in differentiating breast lesions? // Egyptian Journal of Radiology and Nuclear Medicine. 2018. Vol. 49, No. 1. P. 249-258. DOI:org/10.1016/j.ejrnm.2017.08.011.; Itoh A., Ueno E., Tohno E., Kamma H., Takahashi H., Shiina T., Yamakawa M., Matsumura T. Breast disease: Clinical application of US elastography for diagnosis // Radiology. 2006. Vol. 239, No. 2. P. 341-350. DOI:dx.org/10.1148/radiol.2391041676.; Seo M., Ahn H.S., Park S.H., Lee J.B., Choi B.I., Sohn Y.-M., Shin S.Y. Comparison and Combination of Strain and Shear Wave Elastography of Breast Masses for Differentiation of Benign and Malignant Lesions by Quantitative Assessment: Preliminary Study // Journal of Ultrasound in Medicine. 2018. Vol. 37, No. 1. P. 99-109. DOI:10.1002/jum.14309.; Thomas A., Fischer T., Frey H., Ohlinger R., Grunwald S., Blohmer J.U., Winzer K.J., Weber S., Kristiansen G., Ebert B., Kuemmel S. Real-time elastography — an advanced method of ultrasound: first results in 108 patients with breast lesions // Ultrasound in Obstetrics & Gynecology. 2006. Vol. 28, No. 3. P. 335-340. DOI.org/l0.1002/uog.2823.; Thomas A., Degenhardt F., Farrokh A., Wojcinski S., Slowinski T., Fischer T. Significant Differentiation of Focal Breast Lesions Calculation of Strain Ratio in Breast Sonoelastography // Academic Radiology. 2010. Vol. 17, No. 5. P. 558-563. DOI:10.1016/j.acra.2009.12.006.; Busko E.A., Mishchenko A.V., V.V S. Cutoff value of Sonoelastography Strain-Ratio for differentiation between benign and malignant breast lesions. European Congress of Radiology, March 7th-11th 2013, Vienna, Austria, 2013.; Mercado C.L. BI-RADS Update // Radiologic Clinics of North America. 2014. Vol. 52, No. 3. P. 481. DOI:10.1016/j.rcl.2014.02.008.; Mendelson E.B., Bohm-Velez M., Berg W.A. et al. ACR BI-RADS® Ultrasound // ACR BI-RADS® Atlas, Breast Imaging Reporting and Data System. Reston, VA, American College of Radiology, 2013.; Umemoto T., Ueno E., Matsumura T., Yamakawa M., Bando H., Mitake T., Shiina T. EX vivo and in vivo assessment of the non-linearity of elasticity properties of breast tissues for quantitative strain elastography // Ultrasound in Medicine and Biology. 2014. Vol. 40, No. 8. P. 1755-1768. DOI:10.1016/j.ultrasmedbio.2014.02.005.; Li M.H., Liu Y., Liu L.S., Li P.X., Chen Q. Differential diagnostic value of realtime tissue elastography and three dimensional ultrasound imaging in breast lumps // Zhonghua yi xue za zhi. 2016. Vol. 96, No. 19. P. 1515-1518. DOI:10.3760/cma.j.issn.0376-2491.2016.19.011.; Chen Y.-l., Gao Y., Chang C., Wang F., Zeng W., Chen J.-J. Ultrasound shear wave elastography of breast lesions: correlation of anisotropy with clinical and histopathological findings // Cancer Imaging. 2018. Vol. 18. DOI:10.1186/s40644-018-0144-x.; Cheng R., Li J., Ji L., Liu H., Zhu L. Comparison of the diagnostic efficacy between ultrasound elastography and magnetic resonance imaging for breast masses // Experimental and Therapeutic Medicine. 2018. Vol. 15, No. 3. P. 2519-2524. DOI:10.3892/etm.2017.5674.; Youk J.H., Son E.J., Gweon H.M., Kim H., Park Y.J., Kim J.-A. Comparison of strain and shear wave elastography for the differentiation of benign from malignant breast lesions, combined with b-mode ultrasonography: qualitative and quantitative assessments // Ultrasound in Medicine and Biology. 2014. Vol. 40, No. 10. P. 2336-2344. DOI:10.1016/j.ultrasmedbio.2014.05.020.; Бусько Е.А., Семенов И.И., Семиглазов В.В. Возможности соноэластографии в диагностике опухолей молочных желез размерами до 2 см // Вопросы онкологии. 2012. № 3. С. 359-362.; Семиглазов В.В., Бусько Е.А., Зайцев А.Н. и др. Оптимизация диагностики непальпируемых образований молочной железы // Вопросы онкологии. 2009. № 3. С. 387-388; D’Orsi C.J., Sickles E.A., Mendelson E.B. et al. ACR BI-RADS // ® Atlas, Breast Imaging Reporting and Data System. Reston, VA: American College of Radiology, 2013.; Bamber J., Cosgrove D., Dietrich C. F., Fromageau J., Bojunga J., Calliada F., Cantisani V., Correas J.M., D’Onofrio M., Drakonaki E. E., Fink M., Friedrich-Rust M., Gilja O. H., Havre R.F., Jenssen C., Klauser A.S., Ohlinger R., Saftoiu A., Schaefer F., Sporea I., Piscaglia F. EFSUMB Guidelines and Recommendations on the Clinical Use of Ultrasound Elastography. Part 1: Basic Principles and Technology // Ultraschall in Der Medizin. 2013. Vol. 34, No. 2. P. 169-184. DOI:10.1055/s-0033-1335205.; Cosgrove D., Piscaglia F., Bamber J., Bojunga J., Correas J.M., Gilja O.H., Klauser A.S., Sporea I., Calliada F., Cantisani V., D’Onofrio M., Drakonaki E.E., Fink M., Friedrich-Rust M., Fromageau J., Havre R.F., Jenssen C., Ohlinger R., Saftoiu A., Schaefer F., Dietrich C. F. EFSUMB Guidelines and Recommendations on the Clinical Use of Ultrasound Elastography. Part 2: Clinical Applications // Ultraschall in Der Medizin. 2013. Vol. 34, No. 3. P. 238-253. DOI:10.1055/s-0033-1335375.; Бусько Е.А., Мищенко А.В., Семиглазов В.В. Определение порогового значения соноэластографического коэффициента жесткости в дифференциальной диагностике доброкачественных и злокачественных образований молочной железы // Кремлевская медицина. Клинический вестник. 2013. № 1. С. 112-115
-
9Academic Journal
Συγγραφείς: A. V. Pomortsev, O. V. Astafeva, Y. S. Degtiareova, O. I. Achrarova
Πηγή: Кубанский научный медицинский вестник, Iss 2, Pp 99-105 (2014)
Θεματικοί όροι: ультразвуковое исследование, цветовое допплеровское картирование, эластография сдвиговой волны, рак щитовидной железы, ultrasound, color doppler ultrasound, elastography of shear wave, thyroid cancer, Medicine
Περιγραφή αρχείου: electronic resource
Relation: https://ksma.elpub.ru/jour/article/view/126; https://doaj.org/toc/1608-6228; https://doaj.org/toc/2541-9544
Σύνδεσμος πρόσβασης: https://doaj.org/article/b68bc8b4d33a4819a5f45a098ec35a71
-
10Academic Journal
Συγγραφείς: Vladimir Vladimirovich Neroev, Olga Vladimirovna Zaytseva, Tatiana Nikolaevna Kiseleva, Kamila Ahmedovna Ramazanova, Zainap Vahmuradovna Kurchaeva, Владимир Владимирович Нероев, Ольга Владимировна Зайцева, Татьяна Николаевна Киселева, Камила Ахмедовна Рамазанова, Зайнап Вахмурадовна Курчаева
Πηγή: Medical Visualization; № 1 (2016); 18-24 ; Медицинская визуализация; № 1 (2016); 18-24 ; 2408-9516 ; 1607-0763
Θεματικοί όροι: vitreoretinal surgery, цветовое допплеровское картирование, импульсная допплерография, витреоретинальная хирургия, diabetic retinopathy, color Doppler imaging, pulced-wave Doppler
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/241/242; Lim A., Stewart J., Chui T.Y et al. Prevalence and risk factors of diabetic retinopathy in amulti-racial under served population. Ophthalmic Epidemiol. 2008; 6: 402409.; Диагностика и лечение диабетической ретинопатии и диабетического макулярного отека. Федеральные клинические рекомендации (протоколы лечения). ООО “Ассоциация врачей-офтальмологов”. Москва, 2013. 18 с.; Сдобникова С.В., Столяренко Г.Е. Роль задней гиалоидной мембраны в патогенезе и трансцилиарной хирургии пролиферативной диабетической ретинопатии. Вестник офтальмологии. 1999; 115 (1): 11-13.; Sawa H., Ikeda T., Matsumoto Y. et al. Neovascularization from scleral woundas cause of vitreousre bleeding after vitrectomy for proliferative diabetic retinopathy. Jpn J. Ophthalmol. 2000; 44(2): 154-160.; Киселева Т.Н. Цветовое допплеровское картирование в офтальмологии. Вестник офтальмологии. 2001; 6: 50-52.; Котляр К.Е., Дроздова Г.А., Шамшинова А.М. Гемодинамика глаза и современные методы ее исследования. Часть I. Глазное кровообращение и его количественная оценка. Глаукома. 2006; 3: 62-73.; Neidofer M., Kessner R., Goldenberg D. et al. Retrobulbar blood flow changes in eyes with diabetic retinopathy: a 10-year follow-up study. Clin. Ophthalmol. 2014; 8: 23252332.; Pauk-Domanska M., Walasik-Szemplinska D. Color Doppler imaging of the retrobulbar vessels in diabetic retinopathy. J. Ultrason. 2014; 14 (56): 28-35.; Williamson T.H., Harris A. Color Doppler ultrasound imaging of the eye and orbit. Surv. Ophthalmol. 1996; 40 (4): 255-267.; Quaranta L., Harris A., Donato F. et al. Color Doppler imaging of ophthalmic artery blood flow velocity: a study of repeatability and agreement. Ophthalmology. 1997; 104 (4): 653-658.; Nemeth J., Kovacs R., Harkanyi Z. et al. Оbserver experience improves reproducibility of color Doppler sonography of orbital blood vessels. J. Clin. Ultrasound. 2002; 30 (6): 332-335.; Gracner T. Ocular blood flow velocity determined by color Doppler imaging in diabetic retinopathy. Ophthalmologica. 2004; 218 (4): 237-242.; Karami M., Janghorbani M., Dehghani A. et al. Orbital Doppler evaluation of blood flow velocities in patients with diabetic retinopathy. Rev. Diabet. Stud. 2012; 9: 2-3.; Evans D.W., Harris А.,Danis R.P. et al. Altered retrobulbar vascular reactivity in early diabetic retinopathy. Br. J. Ophthalmol. 1997; 81 (4): 279-282.; Dimitrova G., Kato S., Tamaki Y. et al. Choroidal circulation in diabetic patients. Eye. 2001; 15(5): 602-607.; Нероев В.В., Колчин А.А., Зуева М.В., Киселева Т.Н. Ассоциации нарушений функциональной активности сетчатки, метаболических и гемодинамических изменений у больных сахарным диабетом без признаков ретинопатии. Российский офтальмологический журнал. 2013; 1: 20-25.; Вайник Д.М. Нарушение гемодинамики глаз у больных с диабетической ретинопатией и возможности их медикаментозной коррекции: Автореф. дис. канд. мед.наук. Красноярск, 2000. 23 с.; Колчин А.А., Киселева Т.Н., Зуева М.В., Рябина М.В. Глазной кровоток и его изменения у больных сахарным диабетом. Вестник офтальмологии. 2012; 128 (2): 60-65.; Patel V., Rassam S., Newsom R. Et al. Retinal bloodflow in diabetic retinopathy. Br. Med. J. 1992; 305 (6855): 678-683.; Dimitrova G., Kato S., Yamashita H. et al. Relation between retrobulbar circulation and progression of diabetic retinopathy. Br. J. Ophthalmol. 2003; 87: 622-625.; Ishikawa K., Yoshida S., Kobayashi Y. et al. Microarray analysis of gene expression in fibrovascular membranes excised from patients with proliferative diabetic retinopathy. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2015; 56 (2): 932-946.; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/241
Διαθεσιμότητα: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/241
-
11Academic Journal
Συγγραφείς: O. B. Zhukov, P. A. Shcheplev, Ya. I. Mel’nik, S. A. Maslov, О. Б. Жуков, П. А. Щеплев, Я. И. Мельник, С. А. Маслов
Πηγή: Andrology and Genital Surgery; Том 17, № 1 (2016); 34-39 ; Андрология и генитальная хирургия; Том 17, № 1 (2016); 34-39 ; 2412-8902 ; 2070-9781 ; 10.17650/2070-9781-2016-17-1
Θεματικοί όροι: эболизация, color Doppler mapping of penile vessels, selective iliacography, compression sonoelastography, puncture of cavernous bodiesа, priapism, arteriovenous fistula, embolization, цветовое допплеровское картирование сосудов полового члена, селективная илиакография, компрессионная соноэластография, пункция кавернозных тел полового члена, приапизм, артериовенозная фистула
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/174/165; Montague D. K., Jarow J., Broderick G. A. et al. American Urological Association guideline on the management of priapism. J Urol 2003;170(4 Pt 1):1318–24.; Kulmala R. V., Lehtonen T. A., Tammela T. L. Priapism, its incidence and seasonal distribution in Finland. Scand J Urol Nephrol 1995;29(1):93–6.; Eland I. A., van der Lei J., Stricker B. H. et al. Incidence of priapism in the general population. Urology 2001;57(5):970–2.; Furtado P. S., Costa M. P., Ribeiro do Prado Valladares F. et al. The prevalence of priapism in children and adolescents with sickle cell disease in Brazil. Int J Hematol 2012;95(6):648–51.; Lionnet F., Hammoudi N., Stojanovic K. S. et al. Hemoglobin sickle cell disease complications: a clinical study of 179 cases. Haematologica 2012;97(8):1136–41.; Olujohungbe A. B., Adeyoju A., Yardumian A. et al. A prospective diary study of stuttering priapismin adolescents and young men with sickle cell anemia: report of an international randomized control trialthe priapism in sickle cell study. J Androl 2011;32(4):375–82.; Adeyoju A. B., Olujohungbe A. B., Morris J. et al. Priapism in sickle-cell disease; incidence, risk factors and complications – an international multicentre study. BJU Int 2002;90(9):898–902.; Broderick G. A., Kadioglu A., Bivalacqua T. J. et al. Priapism: pathogenesis, epidemiology, and management. J Sex Med 2010;7(1 Pt 2):476–500.; Levey H. R., Kutlu O., Bivalacqua T. J. Medical management of ischemic stuttering priapism: a contemporary review of the litera ture. Asian J Androl 2012;14(1):156–63.; Morrison B. F., Burnett A. L. Stuttering priapism: insights into pathogenesis and management. Curr Urol Rep 2012;13(4):268–76.; https://agx.abvpress.ru/jour/article/view/174
-
12Academic Journal
Συγγραφείς: Narine Albertovna Adzhemian, Наринэ Альбертовна Аджемян
Πηγή: Medical Visualization; № 3 (2015); 43-48 ; Медицинская визуализация; № 3 (2015); 43-48 ; 2408-9516 ; 1607-0763
Θεματικοί όροι: retinal vessel caliber, гемодинамика глаза, цветовое допплеровское картирование, калиброметрия, subclinical atherosclerosis, ocular blood flow, Color Doppler Imaging
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/142/143; Toth P.P. Subclinical atherosclerosis: what it is, what it means and what we can do about it. Int. J. Clin. Pract. 2008; 62 (8): 1246-1254.; Rosamond W., Flegal K., Furie K. et al. Heart Disease and Stroke Statistics - 2008 Update. A Report From the American Heart Association Statistics Committee and Stroke Statistics Subcommittee. Circulation. 2008; 117: e25-e146.; Hayreh S.S. Inter-individual variation in blood supply of the optic nerve head. Doc. Ophthalmol. 1985; 59 (3): 217-246.; Hayreh S.S., Joos K.M., Podhajsky P.A., Long C.R. Systemic diseases associated with nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy. Am. J. Ophthalmol. 1994; 15 (118): 766-780.; Wong T.Y., Klein R., Klein Barbara E.K. et al. Retinal Vessel Diameters and Their Associations with Age and Blood Pressure. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2003; 44 (11): 4644-4650.; Hayreh S.S. Prevalent misconceptions about acute retinal vascular occlusive disorders. Prog. Retin. Eye Res. 2005; 24 (4): 493-519.; Sharrett A.R., Hubbard L.D., Cooper L.S. et al. Retinal arteriolar diameters and elevated blood pressure: the Atherosclerosis Risk in Communities. Study Am. J. Epidemiol. 1999; 150 (3): 263-270.; Lawrence P.F., Oderich G.S. Ophthalmologic findings as predictors of carotid artery disease. Vase. Endovascular. Surg. 2002; 36 (6): 415-424.; Киселева Т.Н., Тарасова Л.Н., Фокин А.А. Глазной ишемический синдром. М.: Медицина, 2003. 173 с.; Kiseleva T., Avetisov S., Gavrilenko A. et al. Significance of reconstructive surgery on carotid arteries for ocular ischemic syndrome management. Abstracts of 7th Meeting of European Neuro-Ophthalmology. Moscow, Russia, 2005. 53 p.; McIntosh R.L., Mohamed Q., Saw S.M., Wong T.Y. Iterventions for branch retinal vein occlusion: an evidence-based systematic review. Ophthalmology. 2007; 114: 835-854.; Gavrilenko A., Avetisov S., Kiseleva Т. et al. Reconstructive surgery on the carotid arteries for ocular ischemic disturbances correction. Abstracts 57th ESCVS International Congress. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery. Barselona, Spain, 2008; 7 (Suppl. I): 2 (V. 3-2).; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/142
Διαθεσιμότητα: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/142
-
13Academic Journal
Συγγραφείς: Anna Valerevna Babkina, Анна Валерьевна Бабкина
Πηγή: Medical Visualization; № 3 (2015); 17-22 ; Медицинская визуализация; № 3 (2015); 17-22 ; 2408-9516 ; 1607-0763
Θεματικοί όροι: impulse doppler, простая миома, пролиферирующая миома, цветовое допплеровское картирование, импульсная допплерография, subserous myoma, simple fibroids, proliferating fibroids, color doppler imaging
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/138/139; Адамян Л.В., Ткаченко Э.Р., Киселев С.И. и др. Практическая гинекология: Клинические лекции; Под ред. В.И. Кулакова, В.Н. Прилепской. М.: МЕДпресс-информ, 2001: 89-115.; Арутюнян А.Ф. Особенности органного и внутриопухолевого кровотока при миоме матки: Автореф. дис. канд. мед. наук. СПб., 2002. 23 с.; Антропова Е.Ю. Оценка альтернативных и адекватных методов терапии лейомиомы матки в зависимости от характера маточного и опухолевого кровотока: Автореф. дис. канд. мед. наук. Казань, 2007. 21 с.; Озерская И.А., Девицкий А.А. Ультразвуковая дифференциальная диагностика узлов миометрия в зависимости от гистологического строения опухоли. Медицинская визуализация. 2014; 2: 110-112.; Лютая Е.Д. Прогностическое значение допплерографии у больных миомой матки: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1999. 20 с.; Титченко И.П. Клиническое значение новых ультразвуковых диагностических технологий в выборе тактики лечения миомы матки вне и во время беременности: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 2007: 2-6.; Силина Т.Л., Голубков С.С. Способ определения эхо-однородности и степени эхогенности ультразвукового изображения. 2008149311/14 Россия. 2010.; Медведев М.В., Хохолин В.А. Ультразвуковое исследование матки. Клиническое руководство по ультразвуковой диагностике. В 3-х томах. Т.3; Под ред. В.В. Митькова, М.В. Медведева. М.: Видар, 1997: 76-119.; Зыкин Б.И., Медведев М.В. Допплерография в гинекологии. М.: Реальное время, 2000. 152 с.; Каримов А.Х. Цветное доплеровское картирование в оценке осложнений миомы матки. Тезисы докладов 5-го Съезда РАСУДМ “Ультразвуковая диагностика в акушерстве, гинекологии и перинатологии”. М., 2007. 34 с.; Kupesic S., Kurjak A. Uterin and ovarian perfusion during the periovulatory period assessed by transvaginal color ovarian. Fertil. and Steril. 1998; 60: 439-443.; Стрижаков А.Н. Клиническая трансвагинальная эхография; Под ред. А.Н. Стрижакова, А.И. Давыдова. М.: Медицина, 1999. 184 с.; Gorny K.R., Woodrum D.A., Brown D.L. et al. Magnetic resonance-guided focused ultrasound of uterine leiomyomas: review of a 12-month outcome of 130 clinical patients. Vasc. Interv. Radiol. 2011; 22 (6): 857-864.; Machado L.S., Gowri V., Al-Riyami N. et al. Caesarean Myomectomy: Feasibility and safety. Sultan Qaboos Univ. Med. J. 2012; 12 (2); 190-196.; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/138
Διαθεσιμότητα: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/138
-
14Academic Journal
Συγγραφείς: Влазнева, Ирина, Пилягина, Анастасия
Θεματικοί όροι: САХАРНЫЙ ДИАБЕТ 2-ГО ТИПА, НЕПРОЛИФЕРАТИВНАЯ СТАДИЯ ДИАБЕТИЧЕСКОЙ РЕТИНОПАТИИ, ЛАЗЕРНАЯ КОАГУЛЯЦИЯ СЕТЧАТКИ, ГЕМОДИНАМИКА ГЛАЗА, ЦВЕТОВОЕ ДОППЛЕРОВСКОЕ КАРТИРОВАНИЕ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
15Academic Journal
Συγγραφείς: E. A. Vetsmadyan, I. G. Pchelin, Е. А. Вецмадян, Игорь Георгиевич Пчелин
Πηγή: Diagnostic radiology and radiotherapy; № 2 (2014); 92-97 ; Лучевая диагностика и терапия; № 2 (2014); 92-97 ; 2079-5343 ; undefined
Θεματικοί όροι: out-patient treatment, цветовое допплеровское картирование, эластография, опухоли, опухолеподобные образования, амбулаторное лечение, стационарзамещающие технологии, the ultrasound, color Doppler flow mapping, elastography, tumors and tumor-like formations of soft tissues
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/23/24; Widmann G. State of the art HR US imaging findings of the most frequent musculoskeletal soft-tissue tumors / G. Widmann, A. Riedl et al. // Skeletal Radiology.- 2009.- Vol. 38.- P. 637-649.; Laura W. Benign fatty tumors: classification, clinical course, imaging appearance, and treatment / W. Laura, M. J. Bancroft, J. J. Kransdorf // Skeletal Radiology.- 2006.- Vol. 35.- P. 719-733.; Kempson R. L. Tumors of the soft tissues: Atlas of Tumor Pathology / R. L. Kempson, C. Fletcher, Y. L. Evans et al. // Washington, DC: Armed Forces Institute of Pathology, 2001.- P. 472-492.; Веснин А. Г. Лучевая диагностика опухолей мягких тканей / А. Г. Веснин // Практическая онкология.- 2004.- Т. 5, № 4.- С. 243-249.; Франк Г. А. Проблемы морфологической классификации и диагностики опухолей мягких тканей / Г. А. Франк // Практическая онкология.- 2004.- Т. 5, № 4.- С. 236-241.; De Schepper A. M. Imaging of Soft Tissue Tumors / A. M. De Schepper, F. Vanhoenacker, P. M. Parizel et al.- Springer, 2006.- 495 p.; Gartner L. The role of the plain radiograph in the characterisation of soft tissue tumors / L. Gartner et al. // Skeletal Radiology.- 2009.- Vol. 38.- P. 549-558.; Кочнев В. А. Клиника, дифференциальная диагностика и стадирование сарком мягких тканей / В. А. Кочнев // Практическая онкология.- 2004.- Т. 5, № 4.- С. 237-142.; Труфанов Г. Е. Ультразвуковая диагностика: руководство для врачей / Г. Е. Труфанов, В. В. Рязанов.- СПб.: Фолиант, 2009.- 800 с.; Beaman F. D. Superficial Soft Tissue Masses: analysis, diagnosis, and differential Considerations / F. D. Beaman, J. M. Kransdorf et al. // RadioGraphics.- 2007.- Vol. 27.- P. 509-523.; Kransdorf M. J. Imaging of fatte tumors: distinction of lipoma and well - differentiated liposarcoma / M. J. Kransdorf, L. W Bancroft, J. J. Peterson et al. // Radiology.- 2002.- Vol. 224.- P. 99-104.; Kransdorf M. J. Imaging of Soft Tissue Tumors / M. J. Kransdorf, D. M. Mark.- Lippincott Williams & Wilkins, 2006.- 576 p.; Bianchi S. Ultrasound of the Musculoskeletal System / S. Bianchi, C. Martinoli, A. L. Baert et al.- Abdelwahab, 2007.- 975 p.; Shung K. K. Diagnostic Ultrasaund: imaging and dlood flow measurements / K. K. Shung.- Tailor and Frabcis Grouh, 2006.- 202 p.; Morel M. Imaging of the most frequent superficial soft - tissue sarcomas / M. Morel, N. Penel et al. // Skeletal Radiology.- 2010.- Vol. 38.- P. 356-370.; Kransdorf M. J. Imaging of fatte tumors: distinction of lipoma and well - differentiated liposarcoma / M. J. Kransdorf, L. W. Bancroft, J. J. Peterson et al. // Radiology.- 2002.- Vol. 224.- P. 99-104.; Min H. L. Cyst-like solid tumors of the musculoskeletal system: an analysis of ultrasound findings / H. L. Min, N. R. Kim et al. // Skeletal Radiology.- 2010.- Vol. 38.- P. 637-649.; Митьков В. В. Клиническое руководство по ультразвуковой диагностике / В. В. Митьков.- М.: Видар, 1997.- С. 91-102.; Ophir J. Elastography: imaging the elastic properties of soft tissues with ultrasound / J. Ophir, T. A. Krouskop, B. S. Garra // Journal of Medical ultrasonics.- 2002.- Vol. 29.- P. 475-482.; Luo J. Effects of various parameters on lateral displacement estimation in ultrasound elastography / J. Luo, E. E. Konofagou // Ultrasound in Medicine and Biology.- 2009.- Vol. 35.- P. 1352-1366.; Чиссов В. И. Онкология: национальное руководство / В. И. Чиссов, М. И. Давыдов.- М.: ГЭОТАР-Медиа, 2008.- С. 1072.; Dalal K. M. Diagnosis and management of lipomatous tumors / K. M. Dalal, C. R. Antonescu, S. Singer // Surg. Oncol.- 2008.- Vol. 97.- P. 298-313.; Amatya B. M. Splenic undifferentiated high grade pleomorphic sarcoma of a small size with fatal tumor rupture / B. M. Amatya et al. // Journal of Pathology.- 2011.- Vol. 1.- P. 151-153.; undefined
Διαθεσιμότητα: https://radiag.bmoc-spb.ru/jour/article/view/23
-
16Academic Journal
Συγγραφείς: Elena Anatolievna Vetsmadyan, Igor Georgievich Pchelin, Елена Анатольевна Вецмадян, Игорь Георгиевич Пчелин
Πηγή: Medical Visualization; № 3 (2014); 135-143 ; Медицинская визуализация; № 3 (2014); 135-143 ; 2408-9516 ; 1607-0763
Θεματικοί όροι: outpatient treatment, цветовое допплеровское картирование, эластография, опухолеподобные образования, амбулаторное лечение, ultrasound examination, color Doppler flow mapping, elastography, tumor-like soft tissue masses
Περιγραφή αρχείου: application/pdf
Relation: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/58/59; Апанасенко Б.Г., Винник Л.Ф., Дергачев С.В. Доброкачественные опухоли в амбулаторной практике хирурга. Специализированная амбулаторная хирургия. СПб., 1999. 407 с.; Widmann G., Riedl A., Schoepf D. et al. State of the art HR US imaging findings of the most frequent musculoskeletal soft-tissue tumors. Skeletal Radiol. 2009; 38: 637-649.; Белевитин А.Б., Воробьев В.В. Амбулаторная хирургия. СПб.: Гиппократ, 2011. 712 с.; Новиков К.В., Александров А.Р., Хурамшин А.Е. Эпидермальные кисты. Амбулаторная хирургия. Стационарозамещающие технологии. 2008; 2: 27-32.; Новиков К.В., Волков О.В., Мурзаканов С.А. Опухоли из эпидермальных кист: Материалы Третьего съезда амбулаторных хирургов. Амбулаторная хирургия. Стационарозамещающие технологии. 2009; 3 (4): 126.; Смысленова М.В. Эхография в диагностике эпителиальных кист мягких тканей челюстно-лицевой области. Радиология - практика. 2012; 2: 32-38.; Труфанов Г.Е. Ультразвуковая диагностика: Руководство для врачей. СПб.: Фолиант, 2009. 496 с.; Spinner R.J., Scheithauer B.W., Desy N.M. et al. Coexisting secondary intraneural and vascular adventitial ganglion cysts of joint origin: a causal rather than a coincidental relationship supporting an articular theory. Skeletal Radiol. 2006; 35: 734-744.; Bianchi S., Martinoli C., Baert A.L. et al. Ultrasound of the Musculoskeletal System. Abdelwahab, 2007. 975 p.; Botar-Jid C., Damian L., Sorin M.D. et al. The contribution of ultrasonography and sonoelastography in assessment of myositis. Medical Ultrasonography. 2010; 12 (2): 120-126.; Bouilleau L., Malghem J., Omoumi P. et al. Pseudotumoral ganglion cyst of a finger with unexpected remote origin: multimodality imaging. Skeletal Radiol. 2010; 39: 375-379.; Crundwell N., O’Donnell P., Saifuddin A. Non-neoplastic conditions presenting as soft-tissue tumors. Clinical Radiol. 2007; 62: 18-27.; Choi J.Y., Hong S.H., Yoo H.J., Kim S.J. Musculoskeletal application of ultrasound elastography: soft tissue lipoma. Ultrasound Med. 2010; 29 (4): 241-245.; Kransdorf M.J., Mark D.M. Imaging of Soft Tissue Tumors. Philadelphia: Lippincott Williams &Wilkins, 2006. 576 p.; Beaman F.D., Kransdorf J.M., Andrews T.R. et al. Superficial Soft Tissue Masses: analysis, diagnosis, and differential Considerations. Radiographics. 2007; 27: 509-523.; Niitsu M. Michizaki A., Endo A. et al. Muscle hardness measurement by using ultrasound elastography: a feasibility study. Acta Radiol. 2011; 52 (2): 99-105.; Sparchez Z., Radu P. Kacso G. et al. Contrast-enhanced ultrasound guided biopsy of superficial toracoabdominal and neck lesions. Initial experience in 20 patients. Med. Ultrasonics. 2012; 14 (4): 288-293.; Shung K.K. Diagnostic Ultrasaund: imaging and dlood flow measurements. New York: Tailor and Frabcis Grouh, 2006. 202 p.; Ophir J., Krouskop T.A., Garra B.S. Elastography: imaging the elastic properties of soft tissues with ultrasound. J. Med. Ultrasonics. 2002; 29: 475-482.; Luo J., Konofagou E.E. Effects of various parameters on lateral displacement estimation in ultrasound elastography. Ultrasound Med. Biol. 2009; 35: 1352-1366.; Min H.L., Kim N.R., Ryu J.A. et al. Cyst-like solid tumors of the musculoskeletal system: an analysis of ultrasound findings. Skeletal Radiol. 2010; 38: 637-649.; Morel M., Taieb S., Penel N. et al. Imaging of the most frequent superficial soft - tissue sarcomas. Skeletal Radiol. 2011; 40 (3): 271-284.; https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/58
Διαθεσιμότητα: https://medvis.vidar.ru/jour/article/view/58
-
17Academic Journal
Συγγραφείς: ПОМОРЦЕВ А.В., АСТАФЬЕВА О.В., ДЕГТЯРЕВА Ю.С., АХРАРОВА О.И.
Θεματικοί όροι: УЛЬТРАЗВУКОВОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ, ЦВЕТОВОЕ ДОППЛЕРОВСКОЕ КАРТИРОВАНИЕ, ЭЛАСТОГРАФИЯ СДВИГОВОЙ ВОЛНЫ, РАК ЩИТОВИДНОЙ ЖЕЛЕЗЫ
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
18Academic Journal
Συγγραφείς: Чевычелов, С.
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
19Academic Journal
Συγγραφείς: Габдрахманова, А., Галлямова, Г., Александров, А.
Περιγραφή αρχείου: text/html
-
20Academic Journal
Πηγή: Андрология и генитальная хирургия.
Θεματικοί όροι: ФАЛЛОПРОТЕЗИРОВАНИЕ,ЦВЕТОВОЕ ДОППЛЕРОВСКОЕ КАРТИРОВАНИЕ СОСУДОВ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА,СЕЛЕКТИВНАЯ ИЛИАКОГРАФИЯ,КОМПРЕССИОННАЯ СОНОЭЛАСТОГРАФИЯ,ПУНКЦИЯ КАВЕРНОЗНЫХ ТЕЛ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА,ПРИАПИЗМ,АРТЕРИОВЕНОЗНАЯ ФИСТУЛА,ЭБОЛИЗАЦИЯ,PHALLOPROSTHESIS,COLOR DOPPLER MAPPING OF PENILE VESSELS,SELECTIVE ILIACOGRAPHY,COMPRESSION SONOELASTOGRAPHY,PUNCTURE OF CAVERNOUS BODIESА,PRIAPISM,ARTERIOVENOUS FISTULA,EMBOLIZATION, 3. Good health
Περιγραφή αρχείου: text/html